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MANUAL DE
DIAGNÓSTICO DE
Brucella ovis
Versión 1.0/2015
DIRECCION GENERAL DE LABORATORIOS Y CONTROL
TECNICO
DIRECCION NACIONAL DE SANIDAD ANIMAL
SERVICIO NACIONAL DE SANIDAD Y CALIDAD
AGROALIMENTARIA
�Manual de Diagnóstico de Brucella ovis
AUTORIDADES
Ing. Agr. Diana Guillén
Presidente
M. V. Luis Carné
Vicepresidente
Dr. J.L. Ferro
Director Nacional de Sanidad Animal
Lic. Verónica Torres Leedham
Directora General de Laboratorio y Control Técnico
Dr. Jorge Rodríguez Toledo
Director de Laboratorio Animal
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�Manual de Diagnóstico de Brucella ovis
OBJETIVO
El presente Manual está dirigido a los Laboratorios veterinarios que realicen el diagnóstico
serológico de la Brucelosis ovina. Contiene los requisitos técnicos necesarios para realizar las
pruebas con carácter oficial.
Las mencionadas técnicas son internacionalmente reconocidas y recomendadas por la
ORGANIZACIÓN MUNDIAL DE SANIDAD ANIMAL (OIE) y EL SENASA.
Versión 1.0/2015.
Elaborado por:
Miguel Trezeguet, M.V., MSc
Ana M. Nicola, M.V., MSc
Sebastián Elena. M.V., MSc
Cristina Franco, Vet.
Nicolás Venditti, Vet.
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�Manual de Diagnóstico de Brucella ovis
INDICE
1. Introducción
1.1 Etiología
1.2 Epidemiologia
1.3 Patogenia
1.4 Manifestaciones clínicas
2. Diagnóstico de Laboratorio
2.1 Medidas Generales
2.2 Aseguramiento de calidad
2.3 Control de calidad de insumos
2.4 Equipos
2.5 Registro de entrada de muestras
2.6 Características y condiciones de las muestras
2.6.1 Condiciones de recepción de las muestras
2.6.2 Condiciones de rechazo de las muestras
3. Diagnóstico de Brucella ovis
3.1 Identificación del Agente
3.2 Pruebas serológicas
3.3 Inmunodifusión en gel de agar
3.4 Fijación de complemento
4. Elisa indirecto
4.1 Equipos
4.2 Materiales
4.3 Guía de problemas y soluciones
5.Referencias
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8
9
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�Manual de Diagnóstico de Brucella ovis
ABREVIATURAS
Ag: Antígeno
C’: Complemento de cobayo
DILAB: Dirección de Laboratorios y Control Técnico
ELISA: Enzimoinmunoensayo
FC: Fijación de Complemento
IDGA: Inmunodifusión en gel de agar
IELISA: Enzimoinmnnoensayo Indirecto
LPS: Lipopolisacárido
M: Molar
OIE: Organización Mundial de Sanidad animal
PA: Poder anticomplementario
RENSPA: Registro Nacional Productor agropecuario
UI/ml: Unidades Internacionales por mililitro
UIFC: Unidad Internacional fijadora del complemento
UC: Unidad de complemento
UH: Unidad de hemolisina
SH: Sistema hemolítico
TV: Tampón veronal calcio- magnesio
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�Manual de Diagnóstico de Brucella ovis
1. INTRODUCCION
La Brucella ovis es el agente causal de la “Epididimitis Ovina”; esta es una enfermedad
infecciosa transmisible que afecta únicamente a ovinos. No es considerada una
zoonosis.
En los machos se caracteriza por epididimitis e infertilidad.
La patogenicidad en la oveja es discutida, causa infertilidad, fundamentalmente en
hembras de primer servicio, abortos tardíos y mortalidad neonatal.
1.1. Etiología
Género: Brucella
Especie: Brucella ovis
Es un cocobacilo Gram-negativo; inmóvil; no hemolítico; no esporulado; sin cápsula;
microaerófilo (debe cultivarse en ambiente con 10% de CO 2 para su aislamiento);
catalasa positivo; intracelular facultativo.
B. ovis, así como las otras integrantes del género, resiste la decoloración por ácidos
débiles, en la tinción de Ziehl-Neelsen modificada por Stamp, se observan cocobacilos
rojos en fondo azul. El resultado debe ser siempre confirmado por el cultivo
bacteriológico.
B. ovis presenta inmunogenicidad cruzada con B. canis, ambas especies son las
únicas integrantes del género Brucella que son morfológicamente de forma rugosa
(cepas rugosas).
1.2. Epidemiología
La epididimitis de los carneros producida por B. ovis ha sido diagnosticada
prácticamente en todos los países donde se crían ovinos.
Tanto machos como hembras pueden infectarse, pudiendo transformarse en
portadores; pero, en la epidemiología de la enfermedad, el macho es quien adquiere
un papel predominante debido a su capacidad de difundir la enfermedad a otras
majadas; siendo la puerta de entrada de la infección al establecimiento libre, la
introducción de animales enfermos.
Es una enfermedad de carácter venéreo, el material de elección para la transmisión
el semen, siendo la vía más importante la encarnerada. Un macho infectado lo
transmite a una hembra sana que actúa como vector mecánico, transmitiendo la
enfermedad a los machos que la cubren.
Los carneros vasectomizados o retajos también pueden infectarse participando en la
transmisión de la enfermedad.
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�Manual de Diagnóstico de Brucella ovis
La B. ovis se acantona en las vesículas seminales, epidídimos y también se elimina
por la orina. Los contagios se producen con mayor frecuencia entre la pubertad y los
15 a 18 meses de edad.
La prevalencia en machos reactores serológicos positivos y con manifestaciones
clínicas de epididimitis, aumenta con la edad. En los machos jóvenes B. ovis es de
menor importancia que otras bacterias (Actinobacillus seminis y Histophilus ovis)
como agente etiológico de epididimitis.
El agente se elimina por semen, secreciones vaginales, leche y orina, de forma
intermitente. También, se ha comprobado, que la bacteria puede recuperarse de
secreciones uterinas de ovejas hasta 10 días después del aborto.
Aunque se ha descripto como vías de entradas al organismo animal por mucosas
nasal, ocular y oral, estas parecen no tener la importancia que tiene la enfermedad
provocada por otras especies del género Brucella que afecta a otras especies
domésticas.
1.3. Patogenia
Las vías más frecuentes de penetración de la bacteria es a través de las mucosas
peneana, rectal o vaginal, donde puede permanecer por algún tiempo, para después
migrar a los linfonódulos regionales. En estos se multiplica y va siendo liberada al
torrente sanguíneo a medida que las células infectadas son destruidas. Esta constante
eliminación de bacterias estimula el sistema inmune, que produce inmunoglobulinas
G, cuya presencia es de importancia en el diagnóstico.
Al final del segundo mes de infección se produce una bacteriemia y el agente se
localiza preferentemente en el área genital. En el 90 % de los casos se ubica en la
cola del epidídimo, donde provoca una reacción de edema intersticial e inflamación en
los tejidos adyacentes a la capa basal del epitelio. Produce edema con llegada de
polimorfonucleares y macrófagos, hiperplasia y degeneración vacuolar de epitelio
tubular, con ruptura y extravasación del material seminal al intersticio, con la
consecuente formación de un granuloma espermático.
Durante estas primeras etapas hay un ligero aumento de tamaño y consistencia de la
cola del epidídimo, que es prácticamente impalpable, pero en este momento ya existe
serología positiva y alteraciones seminales.
Las mayores lesiones no son debidas al agente, sino que son debidas al granuloma
espermático. Estas alteraciones se desarrollan durante un periodo de meses, tiempo
durante el cual se encuentran gran cantidad de microorganismos en el eyaculado. El
granuloma espermático resultante semeja a un absceso y la cola puede estar
agrandada de tamaño 4 ó 5 veces por la reacción fibrosa. Si el material seminal pasa
a la cavidad vaginal causa una severa inflamación con fuertes adherencias.
No se produce orquitis primaria, sino que la degeneración testicular es secundaria al
estasis en los túbulos seminíferos, que a menudo lleva a calcificación. El órgano
afectado es estéril. La Brucella ovis también puede provocar seminovesiculitis.
En las ovejas la patogenicidad es baja, pudiendo darse placentitis a nivel trofoblástico,
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llevando a isquemia y necrosis de los cotiledones, dando como consecuencia el
aborto.
1.4. Manifestaciones clínicas
No existen manifestaciones clínicas generales. Solamente 1/3 de los carneros
enfermos presentan lesiones palpables.
Los casos agudos, son difíciles de detectar clínicamente, se ve en animales jóvenes
con edema y aumento del tamaño del escroto, fiebre, depresión y anorexia, a los 3 a
5 días baja la inflamación pero las colas del epidídimo continúan agrandadas.
En los casos crónicos la manifestación clínica característica de la enfermedad es una
inflamación en la cola del epidídimo, que puede extenderse al cuerpo y cabeza del
órgano, los epidídimos se palpan aumentados de tamaño, indurados y con menor
elasticidad. En la mayoría de los casos las lesiones son unilaterales, pero pueden
observarse ambos testículos afectados.
En casos avanzados puede detectarse orquitis con aumento de tamaño o atrofia
testicular y degeneración del testículo afectado, así como adherencias de las túnicas
que lo envuelven.
La fertilidad puede variar desde normal a nula dependiendo del grado de la lesión.
En el espermograma se observan gran número de leucocitos, anomalías secundarias
(cabezas sueltas y defectos de cola) y células en bote, que son células epiteliales que
sufren necrosis; baja concentración espermática y motilidad de masa disminuida.
También puede evidenciarse la presencia de microorganismos (no siempre).
En las hembras puede observarse vaginitis y cervicitis post-servicio.
También se observa aborto e infertilidad, especialmente en las borregas de primera
cría. El aborto ocurre en el último tercio de la gestación y el porcentaje es reducido.
Luego del aborto puede observarse retención de placenta y lesiones de la placenta
fetal, que consisten en placas amarillo-grisáceas en los espacios intercotiledonarios.
La infertilidad es temporaria, comportándose normalmente en la próxima época de
servicios. También provoca nacimientos de corderos débiles que mueren al poco
tiempo de nacidos.
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2. DIAGNÓSTICO DE LABORATORIO
2.1 Medidas generales de bioseguridad y seguridad en el laboratorio
Las personas que trabajan con agentes infecciosos o materiales potencialmente
infectados deben conocer los riesgos potenciales, y estar capacitados en las prácticas
y técnicas requeridas para manipular dichos materiales en forma segura.
El director o la persona a cargo del laboratorio es responsable de brindar u organizar
la capacitación adecuada del personal.
Cada laboratorio debe desarrollar o adoptar un manual con procedimientos de
bioseguridad que identifique los riesgos que se encontrarán o puedan producirse, y
que especifique las prácticas y procedimientos destinados a minimizar o eliminar las
exposiciones a estos riesgos.
Se debe alertar al personal acerca de los riesgos especiales y se les debe exigir que
lea y cumpla las prácticas y procedimientos requeridos.
El acceso al laboratorio debe ser limitado o restringido. El laboratorio debe ser
diseñado para que su limpieza sea sencilla y contar con una pileta para el lavado de
manos. Las superficies de las mesas de trabajo deben ser impermeables al agua y
ser resistentes al calor moderado y a solventes orgánicos, ácidos, álcalis y productos
químicos utilizados para descontaminar la superficie de trabajo y los equipos.
Los muebles de laboratorio deben tener la capacidad de soportar cargas y usos
previstos. Los espacios entre las mesas de trabajo, gabinetes y equipos deben ser
accesibles para su limpieza.
Si el laboratorio tiene ventanas que se abren hacia el exterior, deben estar provistas
de mosquiteros.
Se deben usar ambos, batas o uniformes de laboratorio de protección adecuados
durante la permanencia en el mismo. Se debe retirar y dejar esta ropa de protección
en el laboratorio antes de dirigirse a otras áreas (por ejemplo, cafetería, biblioteca,
oficinas administrativas).Se debe usar además calzado cerrado y cabello recogido.
Se deben usar guantes cuando las manos entren en contacto con materiales
infecciosos, superficies o equipos contaminados. Puede ser apropiado el uso de dos
pares de guantes. Los guantes se retiran al terminar el trabajo o se descartan y se
hace cambio de guantes cuando estos entraron en contacto directo con el material
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�Manual de Diagnóstico de Brucella ovis
infeccioso o cuando está comprometida la integridad del guante. Los guantes
descartables no se lavan, no se vuelven a usar ni se utilizan para tocar superficies
“limpias” (teclados, teléfonos, entre otras), y no se deben usar fuera del
laboratorio.
Las personas deben lavarse las manos frecuentemente durante el trabajo en el
laboratorio, luego de manipular materiales potencialmente viables, luego de quitarse
los guantes y antes de retirarse del laboratorio
No está permitido comer, beber, fumar, usar lentes de contacto, maquillarse o
almacenar alimentos para consumo personal en áreas de trabajo. Se debe utilizar
protección ocular para los procedimientos en los que se puedan producir salpicaduras
de material infeccioso u otros materiales peligrosos.
La iluminación debe ser adecuada para todas las actividades, evitando los reflejos y
el brillo que puedan molestar la visión.
Está prohibido pipetear con la boca; se debe utilizar dispositivos mecánicos y aplicar
procedimientos para el manejo seguro de objetos cortantes o punzantes.
Todos los procedimientos se llevan a cabo con precaución a fin de minimizar la
creación de salpicaduras o aerosoles.
Las superficies de trabajo se descontaminan antes y después de finalizar las tareas y
ante todo derrame de material viable.
Todos los cultivos, stocks y otros desechos debidamente segregados se
descontaminan antes de ser desechados mediante un método de descontaminación
aprobado, como por ejemplo, mediante autoclave. Los materiales que se deben
descontaminar fuera del laboratorio inmediato son colocados en un recipiente
duradero, estanco y cerrado para su transporte desde el laboratorio. Los materiales
que se deben descontaminar fuera del laboratorio inmediato se embalan de
conformidad con las normas locales, estatales y federales aplicables antes de
retirarlos del establecimiento de acuerdo a las indicaciones de la Ley 24051 de
Residuos Peligrosos.
Agente: Brucella (B. abortus, B. canis, B. melitensis, B. suis y B. ovis).
El género Brucella clasificado por el “Manual de Bioseguridad en el Laboratorio de la
OMS”, en el Grupo de riesgo 3 (riesgo individual elevado, riesgo poblacional
bajo) agentes patógenos que suelen provocar enfermedades humanas o animales
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graves, pero que de ordinario no se propagan de un individuo a otro. Existen medidas
preventivas y terapéuticas eficaces.
La brucelosis sigue siendo la infección bacteriana de laboratorio más comúnmente
reportada. Tanto B. abortus, B. canis, B. melitensis como B. suis pueden provocar la
enfermedad en personal de laboratorio atribuidos a la exposición directa o accidental
a material infeccioso
Hasta la fecha, no se han reportado casos humanos, provocados por B. ovis y es
considerada como no zoonótica. Sin embargo, en las zonas donde coexiste infección
de B. melitensis con B. ovis, se requiere especial cuidado al manipular muestras, que
serán transportados al laboratorio en recipientes para sustancias infecciosas (6.2)
Riesgos de laboratorio: El agente puede estar en sangre, en el fluido cerebroespinal,
en el semen y, a veces, en la orina. La mayoría de los casos de laboratorio se han
producido en instalaciones de investigación y producción y, se debieron a la
exposición a las cepas de Brucella patógenas para el hombre, cultivados en grandes
cantidades. También se han producido casos en el ámbito del laboratorio clínico por
aspirar cultivos bacteriológicos. En estos casos, generalmente, ha habido contacto
directo de la piel con los cultivos o con especímenes clínicos infecciosos de animales
(por ejemplo, sangre, descargas uterinas).
Los aerosoles generados durante los procedimientos de laboratorio, el pipeteo, las
inoculaciones parenterales accidentales y los aerosoles hacia los ojos, nariz y boca
también han provocado infecciones.
Precauciones: Para toda la manipulación de cultivos de Brucella spp. y para estudios
experimentales con animales, se debe trabajar con equipos de contención y en
instalaciones del Nivel de Bioseguridad 3.
2.2. Aseguramiento de calidad en el Laboratorio
Los laboratorios deberán cumplimentar la reglamentación vigente de acuerdo a las
BPL (SENASA), Norma ISO/IEC 17025, OIE Quality Standard and guidelines for
veterinary Laboratorios: Infectious diseases (2008)
Para que los resultados del diagnóstico sean uniformes y confiables, deben efectuarse
siguiendo técnicas estandarizadas, con operadores capacitados en la realización e
interpretación de los resultados, utilizando equipos y reactivos controlados.
Los procedimientos de laboratorio están sujetos a múltiples causas de error que deben
ser detectados para poder aplicar acciones correctivas.
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�Manual de Diagnóstico de Brucella ovis
Los procedimientos se pueden monitorear mediante el control interno, con la
utilización diaria de sueros con títulos conocidos y el control externo con
interlaboratorios con un laboratorio de referencia. El control permanente de la calidad
de los resultados, junto a las buenas prácticas de laboratorio que incluyen la utilización
de técnicas evaluadas, personal capacitado y operaciones estandarizadas, garantizan
el diagnóstico.
2.3. Control de calidad de insumos
Todos los insumos y reactivos que se utilizan en el laboratorio deben estar
establecidos con fórmulas y procedimientos detallados en manuales disponibles en el
área de trabajo.
La composición, tipo de envase, identificación y lugar de almacenamiento debe ser la
indicada en los manuales. No introducir cambios que no estén registrados y
autorizados por el responsable del laboratorio.
Todos los insumos y materiales de referencia deben cumplir con las especificaciones
establecidas.
El agua empleada en el laboratorio de diagnóstico debe ajustarse a las
especificaciones recomendadas para cada uso. En general para el lavado del material
de vidrio se usa agua de tipo III, purificada y con una conductividad específica máxima
de 5.0 micromhs/cm, 0.2 mega Homs/cm de resistencia específica (mínima), 0.01 mg/l
(como máximo) de silicatos y de metales pesados.
En la preparación de soluciones para pruebas serológicas, soluciones tamponadas,
medios de cultivo y colorantes se emplea agua purificada de tipo II. Admite como
máximo una conductividad específica de 2.0 micromhs/cm, 0.5 mega Homs/cm
(mínimo) de resistencia específica, 0.01 mg/l (máximo) de silicatos y de metales
pesados.
Para preparar reactivos y soluciones de referencia, realizar pruebas de ELISA y
reconstituir liofilizados se utiliza agua de tipo I. Debe tener una conductividad
específica de 0.1 micromhs/cm (máximo), una resistencia específica de 10.0 mega
Homs/cm (mínimo) y el mismo límite de silicatos y metales pesados que los tipos
anteriores.
Los reactivos biológicos que se emplean en las técnicas, deben utilizarse de acuerdo
a las especificaciones del Manual de Procedimientos Operativos, respetando las
indicaciones para la conservación, almacenamiento y titulación.
Los reactivos y kits diagnósticos que se utilizarán y comercializarán en el país, para
diagnóstico oficial deberán ser debidamente registrados y aprobados ante el SENASA.
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�Manual de Diagnóstico de Brucella ovis
2.4. Equipos
El laboratorio debe tener un inventario, programa de control y mantenimiento de los
equipos que emplea en el diagnóstico.
2.5. Registro de entrada de muestras
Los laboratorios deben contar con un registro de entrada de muestras, en el que
conste como mínimo la siguiente información:
Fecha de recepción de muestras.
Cantidad de muestras.
Especie.
Fecha de extracción de muestras.
Procedencia: establecimiento, número de RENSPA.
Localidad: departamento, partido, provincia.
Remitente: veterinario acreditado, nombre y número de registro, otorgado por la
Dirección Nacional de Sanidad Animal (DNSA) SENASA.
Motivo del envío: saneamiento, traslado, importación, exportación y otros.
Fecha de emisión de los resultados.
2.6. Características y condiciones de las muestras
2.6.1. Condiciones de "recepción" de las muestras:
Sangre entera o suero refrigerados.
Suero congelado.
Tubos con identificación clara, de preferencia sobre cinta de papel o similar
adherida al tubo; con marcación firme e indeleble en el cuerpo del tubo.
2.6.2. Condiciones de "rechazo" o demora del procesamiento de las muestras:
Falta de planillas protocolo o planillas incompletas.
Sangre entera congelada.
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Sangre entera o suero, contaminados.
Sueros hemolizados.
Tubos no identificados.
Los Laboratorios deberán ser exigentes con la calidad de las muestras a procesar,
como así también con la planilla de toma de muestra firmada por el veterinario
acreditado actuante que debe acompañar a las muestras.
Los informes que elabore el Laboratorio deberán ser precisos para poder desarrollar
adecuadamente las acciones de saneamiento.
3. Diagnóstico de Brucella ovis
3.1 Identificación del agente:
Lesiones clínicas (epididimitis y orqui-epididimitis) en carneros puede ser indicativo de
la existencia de la infección, pero se requieren exámenes de laboratorio para confirmar
la enfermedad. La confirmación de laboratorio puede basarse en métodos directos o
indirectos. El diagnóstico directo se realiza mediante el aislamiento bacteriológico de
B. ovis de muestras de semen o tejidos de carneros, o secreciones vaginales, la leche
y los tejidos de ovejas, en medios selectivos adecuados. Brucella ovis es similar a las
otras Brucella spp. en su morfología, propiedades de tinción y las características
culturales, excepto que da reacciones negativas a las pruebas de oxidasa y ureasa.
Los métodos moleculares se han desarrollado para la identificación complementaria
basado en secuencias genómicas específicas. La reacción en cadena de la
polimerasa (PCR) puede proporcionar medios adicionales de detección. Sin embargo,
se prefiere el diagnóstico indirecto basado en pruebas serológicas para el diagnóstico
de rutina.
3.2 Pruebas serológicas:
La prueba de Fijación del Complemento (FC), la prueba de inmunodifusión en gel de
agar (IDGA) y ensayos inmunoenzimáticos indirectos (I-ELISA) usando antígenos de
superficie solubles obtenidos de la cepa B. ovis REO 198, se deben utilizar para el
diagnóstico. La sensibilidad de la pruebas de IDGA y I-ELISA son similares y pueden
ser más elevada que el FC. Una combinación en paralelo de la prueba IDGA y I-ELISA
parece dar los mejores resultados en términos de sensibilidad, pero con respecto a la
sencillez y el costo, la prueba IDGA es la prueba más factible para el diagnóstico de
B. ovis en laboratorios no especializados. Sin embargo, debido a la falta de métodos
normalizados reconocidos a nivel internacional para la IDGA y I-ELISA, la prueba
prescrita para el comercio internacional sigue siendo la FC.
Antígenos HS para su uso en pruebas serológicas deben ser preparados a partir de
Brucella ovis cepa REO 198 es CO 2 y suero independiente.
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�Manual de Diagnóstico de Brucella ovis
El Suero Estándar Internacional anti-Brucella ovis (1985) es la referencia utilizada para
comparar y estandarizar el resto de los patrones secundarios. Este estándar de
referencia está disponible para los laboratorios de referencia nacionales y debe
utilizarse para establecer los estándares secundarios o nacionales frente a los cuales
puedan prepararse los estándares de trabajo que se utilizarán en el laboratorio de
diagnóstico de forma sistemática en el día a día.
3.3. Inmunodifusión en gel de agar
Materiales:
Micropipetas de 10-100µl.
Placas de Petri (100mm de diámetro) / porta objetos
Recipientes varios.
Puntas de pipetas (tips).
Equipos:
Centrífuga.
Heladera.
Freezer.
Vortex.
Sacabocado perforador de agar.
Bomba de vacío.
Cámara húmeda.
Caja de lectura con fondo oscuro.
Reactivos:
Antígeno HS preparado a partir de Brucella ovis cepa Reo 198 aprobado por
SENASA. Conservar el Antígeno en el freezer a -20 ± 5° C, en envase de vidrio,
No de poliestireno. No se debe conservar en la heladera.
Suero control positivo.
Drogas y Soluciones:
Agar Noble o agarosa.
Cloruro sódico.
Ácido Bórico.
Cloruro Potásico.
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�Manual de Diagnóstico de Brucella ovis
Agua destilada.
Preparación de tampón borato (preparado con ácido bórico [12,4 g]; cloruro potásico
[14,5 g] y agua destilada [1.600 ml]; ajustado a pH 8,3 con una solución de NaOH (0.2
M), y llevado hasta 2.000 ml de volumen final con agua destilada).
Para preparar el agar se disuelve 1g de agarosa (o agar Noble), 10 g de NaCl en 100
ml de tampón borato hirviendo mientras se agita continuamente. Se cubren los
portaobjetos o placas de petri colocados sobre una superficie plana, con la cantidad
necesaria del agar fundido para formar un lecho de 2,5 mm de espesor
(aproximadamente 3,5 ml para los portaobjetos estándar y 13-14 ml en placas de Petri
de 100 mm)
Después de que el agar se haya solidificado (15–20 minutos) en una superficie
nivelada, se recomienda dejar al menos una hora en heladera para asegurar que el
agar este bien firme cuando se perfora, se recortan los pocillos utilizando un
sacabocado para agar. Los pocillos deberán ser de 3 mm de diámetro y estar
separados 3 mm entre ellos, y estar dispuestos según un patrón hexagonal alrededor
de un pocillo central que también tendrá 3 mm de diámetro.
Ejecución del ensayo:
Descongelar y mezclar bien los sueros y el antígeno utilizando
preferentemente vortex o invirtiendo el tubo (o envase) varias veces.
Con micropipeta cargar los pocillos 2, 4 y 6 en forma individual con los sueros a
procesar y en los pocillos 1, 3 y 5 el suero control positivo. Por último cargar en el
pocillo central el antígeno. (Fig. 1)
Los pocillos serán llenados completamente teniendo la precaución de no desbordar,
ni dejar burbujas. A su vez ningún pocillo debe quedar sin cargar. Revisar bien las
rosetas y descatar aquellas donde, por una mala perforación, el agar esté rajado y
haya comunicación entre los pocillos.
Incubar en cámara húmeda a temperatura ambiente 22 ± 4 ºC, 48 horas.
Realizar una primera lectura a las 24 hs y la lectura definitiva a las 48 hs.
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Fig. 1 Diagrama de siembra de sueros y antígeno
Suero problemas: Pocillos 2, 4 y 6
Sueros controles: Pocillos 1, 3 y 5
Antígeno: Pocillo central
1
6
2
5
3
4
Lectura e interpretacion de resultados:
La lectura se efectúa bajo haz de luz suave indirecta sobre un fondo oscuro revelando
las bandas de precipitación.
Antes de una lectura definitiva, si se observan líneas inespecíficas, se recomienda
lavar las placas de agar durante una (1) hora en una solución en agua de citrato sódico
al 5% para limpiar las líneas de precipitación inespecíficas.
Las reacciones se clasifican en:
POSITIVAS:
Cuando se aprecia una banda o línea de precipitación definida entre el pocillo central
(Ag) y los orificios de los sueros problemas, mostrando una identidad total o parcial
con la del suero control positivo.
También pueden aparecer líneas de precipitado que no den una identidad total y que
pueden corresponder a componentes antigénicos minoritarios de los extractos HS (en
las infecciones debidas a otras especies del género Brucella también pueden
generarse con frecuencia anticuerpos frente a estos componentes). Estas reacciones
también deben considerarse positivas.
NEGATIVAS:
Cuando no se aprecia ninguna banda de precipitación entre el orificio central (Ag) y
los orificios de los sueros problema.
Criterios de aceptación del resultado
De no observar la presencia de la banda de precipitación de los controles positivo, la
prueba será considerada como no válida y deberá ser repetida.
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�Manual de Diagnóstico de Brucella ovis
3.4 Fijación de complemento
Materiales:
Material de vidrio de volúmenes varios.
Pipetas de : 1 ml, 2 ml, 5 ml y 10 ml.
Gradillas.
Parafilm para cubrir placas.
Puntas de pipetas (Tips).
Tubos de centrífuga cónicos.
Tubos de Khan.
Placas de polipropileno de 96 pocillos con fondo en U.
Equipos:
Estufa 37 ± 2°C.
Termo de nitrógeno líquido o freezer (- 70°C ± 10ºC).
Baño termostático 60-63°C.
Agitador de placas.
Espectrofotómetro (540nm).
Micropipetas automáticas monocanales y multicanales de rango 10 µl a 200 µl.
Termométros certificados.
Peachímetro.
Balanza.
Reactivos:
Suspensión de glóbulos rojos 2% (GR 2%).
Hemolisina producida en conejo (H).
Complemento de cobayo (C).
Antígeno de Brucella ovis (Cepa Reo 198) (Ag).
Sueros:
Suero control positivo.
Suero control negativo.
Sueros problemas a analizar.
Soluciones (Anexo I):
Tampón veronal calcio magnesio 5X (TV 5X).
Tampón veronal calcio magnesio 1X , pH 7,3-7,4. (TV 1X).
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EJECUCION DE LA PRUEBA (Microtécnica):
Utilizar microplacas de 96 pocillos fondo en U. Presentar la microplaca de manera que
las letras indiquen columnas (diluciones del suero) y los números indiquen las filas
(sueros a analizar). De esta manera, en cada placa se incluyen 12 muestras de suero
para análisis y a cada muestra se le realizan 8 diluciones en base 2 (1:2 a 1:256).
El procedimiento se desarrolla en caliente (incubación en estufa a 37 ± 2°C) y utiliza
los siguientes reactivos en volumenes de 25 µl:
a)
b)
c)
d)
e)
Tampón Veronal 1X.
Sueros inactivados a 60 – 63°C
Solución de complemento de cobayo en TV 1X que contenga 2
UC/ml.
Solución de antígeno en TV 1X a la dilución de trabajo.
Sistema hemolítico obtenido por la mezcla de volúmenes iguales de una
solución de hemolisina en TV 1X que contenga 2 UH/ml y de una
suspensión de eritrocitos de carnero en TV 1X al 2%.
Inactivación de los sueros
Las muestras de suero se inactivan en baño termostático para eliminar el
complemento natural contenido en las mismas.
La temperatura del baño se controlará mediante la introducción de un termómetro
certificado durante todo el tiempo de exposición de las muestras al agua.
Los sueros se inactivan por 30 minutos en baño termostático a 60ºC – 63°C (en caso
de que los sueros sean anticomplementarios, se recomienda realizar otra ciclo de
inactivación de 30 minutos).
Las muestras podrán ser sumergidas en el baño termostático de la siguiente forma:
En tubos de khan tapados herméticamente, contenidos en gradillas,
debidamente identificados.
La inactivación de las muestras podrá realizarse un día antes del análisis. En este
caso, una vez retiradas del baño termostático se dejarán a temperatura ambiente
durante al menos 30 minutos para luego conservar en heladera. Si el análisis se
realizaría después de las 24 hs, las muestras ya inactivadas se conservaran a -20 ±
5° C.
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Controles utilizados
Sueros controles:
Control positivo
o
o
o
Pre-diluir el suero control positivo 1/12,5 con TV 1X, inactivar, alicuotar y
conservar a –20 ± 5 º C.
Dispensar 25 µl/pocillo de TV 1X en la fila 1 de la placa control desde 1G
hasta la 1A.
Dispensar en el pocillo H1, 50 µl del suero control positivo diluido
previamente 1/12,5 con TV 1X, tomar 25 µl de suero del pocillo H1 y pasarlo
al pocillo G1, homogeneizar bien los dos componentes, luego pasar 25 µl
al siguiente pocillo F1, y repetir la misma secuencia hasta el pocillo A1.
Tabla 1
Control negativo
Se realiza una dilución en base 1:2 de la siguiente manera:
o Dispensar 25 µl/pocillo de TV 1X en la fila 2 de la placa control desde 2H
hasta la 2A,
o Dispensar en el pocillo H2, 25µl del suero control negativo, homogeneizar
bien, tomar 25 µl del pocillo H2 y pasarlo al pocillo G2, homogeneizar bien
los dos componentes, luego pasar 25 µl al siguiente pocillo F2, y repetir la
misma secuencia hasta el pocillo A2. Tabla 1
Control de la ausencia de poder anticomplementario del antígeno
o
o
o
o
Dispensar por duplicado (H3 y G3) en la microplaca de los controles
25 µl/pocillo de la solución de antígeno
25 µl/pocillo de TV 1X
25 µl/pocillo de C
Controles del sistema hemolítico
Sin complemento: Dispensar 75 µl de TV 1X por duplicado (H4 y G4) en la placa
de controles.
Con complemento: Se dispensa en H5
o 50 µl/pocillo de TV 1X
o 25 µl/pocillo de C
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Tabla 1: Placa de controles
C
B
A
Control de
SH con C’
D
Control del SH
sin C'
E
Control de
ausencia de
ant. delAg
1:25
1:50
1:100
1:200
1:400
1:800
1:1600
25µl
50 µl
Suero
POS
1:2
Dilución suero
control negativo
F
Dilución suero
control positivo
G
H
1:12,5
25µl
25µl
25µl
25µl
25µl
25µl
25µl
1
25µl TV
1:4
25 µl
Suero
25µl
puro NEG
25µl TV
25µl TV
25µl TV
25µl TV
25µl TV
25µl TV
25µl TV
25µl TV
1:8
1:16
1:32
1:64
1:128
1:256
25µl
25µl
25µl
25µl
25µl
25µl
25µl TV
25µl TV
25µl TV
25µl TV
25µl TV
25µl TV
2
25µl
25µl TV
25µl Ag
25µl C’
25µl TV
25µl Ag
25µl C’
75µl TV
75µl TV
4
50µl TV
25µl C’
50µl TV
25µl C’
5
3
Dilución de las muestras de sueros problemas
En otra placa,
Dispensar en cada pocillo 25 µl de TV 1X, de acuerdo a la cantidad de sueros
a procesar.
Dispensar 25 µl de suero en el pocillo H1, homogeneizar bien los dos
componentes con pipetas monocanal o multicanal, luego pasar 25 µl del pocillo
H1 al G1, homogenizar y pasar 25 µl al pocillo F1, luego repetir la misma
secuencia hasta el pocillo A1.
La secuencia de operaciones se detalla en la Tabla 2. Las diluciones se
realizarán con pipetas monocanal o multicanal. La homogenización de los dos
componentes de cada dilución se mezclan mediante el pipeteo por cinco veces
consecutivas como mínimo.
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Preparación de la solución de antígeno y complemento y su distribución en la
microplaca de los sueros controles positivo y negativo y en los sueros a
analizar.
Se preparan las soluciones de C y Ag según la dilución de trabajo establecida
como óptima.(Ver Anexo II)
Una vez diluidos los sueros con la TV 1X, dispensar la solución de antígeno a
razón de 25 µl /pocillo, en todos los pocillos excepto en la columna H de la
dilución 1:2 que actuarán como controles de poder anticomplementario
(AC) de cada suero.
A continuación dispensar 25 µl/pocillo de la solución de C en todos los pocillos
de la microplaca. Tabla 3.
Primera incubación en caliente
Cubrir y agitar las microplacas en agitador de placas durante 2 – 4 minutos
Incubar las microplacas en estufa a 37 ± 2°C durante 30 minutos.
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Tabla 2: Distribución de las muestras problemas a analizar en una microplaca de
96 pocillos fondo en U (12 sueros × 8 diluciones)
25µl suero 6
25 µl TV
25µl
suero 7
25 µl TV
25µl suero 8
25 µl TV
25µl suero 9
25 µl TV
25µl suero 10
25 µl TV
25µl suero 11
25 µl TV
25µl suero 12
25 µl TV
1:8
1:16
1:32
1:64
A
25µl suero 5
25 µl TV
1:4
B
25µl suero 4
25 µl TV
C
25µl suero 3
25 µl TV
D
25µl suero 2
25 µl TV
E
25µl suero 1
25 µl TV
F
25 µl
G
H
1:2
1:128 1:256
25µl
1
25µl TV
25µl TV 25µl TV 25µl TV 25µl TV 25µl TV
25µl TV
25µl TV
25µl TV 25µl TV 25µl TV 25µl TV 25µl TV
25µl TV
25µl TV
25µl TV 25µl TV 25µl TV 25µl TV 25µl TV
25µl TV
25µl TV
25µl TV 25µl TV 25µl TV 25µl TV 25µl TV
25µl TV
25µl TV
25µl TV 25µl TV 25µl TV 25µl TV 25µl TV
25µl TV
25µl TV
25µl TV 25µl TV 25µl TV 25µl TV 25µl TV
25µl TV
25µl TV
25µl TV 25µl TV 25µl TV 25µl TV 25µl TV
25µl TV
25µl TV
25µl TV 25µl TV 25µl TV 25µl TV 25µl TV
25µl TV
25µl TV
25µl TV 25µl TV 25µl TV 25µl TV 25µl TV
25µl TV
25µl TV
25µl TV 25µl TV 25µl TV 25µl TV 25µl TV
25µl TV
25µl TV
25µl TV 25µl TV 25µl TV 25µl TV 25µl TV
25µl TV
25µl TV
25µl TV 25µl TV 25µl TV 25µl TV 25µl TV
25µl TV
2
3
4
5
6
7
8
9
10
11
12
En la columna H con la dilución 1:2 se evalúa la actividad anticomplementaria de cada
suero a analizar. En lugar del antígeno se debe completar el volumen final con 25 µl
solución TV 1X.
Agregado del sistema hemolítico
Finalizada la primera incubación, dispensar el sistema hemolítico a razón
de 25 µl en todos los pocillos de las placas. Tabla 3
Segunda incubación en caliente (ídem anterior)
Centrifugación/reposo de la microplaca
Finalizada la segunda incubación, centrifugar las microplacas a 2000 rpm
durante 5 minutos o bien dejar en reposo en heladera durante una hora
antes de su lectura.
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Tabla 3: Distribución final de los reactivos por pocillo de la placa
H
G
F
E
D
C
B
A
1:2
1:4
1:8
1:16
1:32
1:64
1:128
1:256
25µl TV
25µl Ag
25µl C’
25µl TV
25µl Ag
25µl C’
25µl suero 1
50 µl TV
25µl C’
25µl TV
25µl Ag
25µl C’
25µl TV
25µl Ag
25µl C’
25µl TV
25µl Ag
25µl C’
25µl TV
25µl Ag
25µl C’
25µl TV
25µl Ag
25µl C’
1
1ºincubación
25µl SH
25µl SH
25µl SH
25µl SH
25µl SH
25µl SH
25µl SH
25µl SH
2ºincubación
Cálculos y expresión de los resultados
El grado de fijación del complemento se manifiesta por la presencia o ausencia de
hemólisis del sistema hemolítico. Se expresa en forma de UIFC (unidades
internacionales fijadoras del complemento) según el título o dilución de la muestra
(1:4,1:8, etc) seguido de 1, 2, 3 o 4 cruces según el grado de fijación de complemento
en dicha dilución.
El título menor que se cuantifica es 1:4 + (16,6 UIFC) y el rango de trabajo esta
comprendido entre 1:4 + y 1:256 ++++ (16,6 a 1702,7 UIFC).
El poder anticomplementario de los sueros se controla en la columna H, dilución 1:2.
La presencia de al menos un 25% de sedimento de eritrocitos (+) en la fila H (dilución
1:2) indica que el suero problema puede tener poder anticomplementario. En tal caso
se informa el resultado ¨PA¨, y se solicitará una nueva extracción de suero para
repetición del ensayo.
El resultado de la reacción será “positivo” o “negativo”. En el primer caso la reacción
positiva se cuantificará mediante la determinación del título y su grado de hemólisis o
fijación del complemento.
Reacción positiva:
Sedimentación en grado variable de los eritrocitos en el fondo del pocillo.
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El sobrenadante estará afectado por un cierto tinte rojizo en función de la
hemólisis que se haya producido.
++++
+++
++
+
0% de hemólisis o 100% fijación del complemento (completa)
Sobrenadante translúcido, en el fondo de la placa un botón de
depósito de eritrocitos
25% de hemólisis o 75% de fijación del complemento
Sobrenadante rojizo en un 25% de intensidad; en el fondo un
depósito claro de eritrocitos
50% de hemólisis o 50% de fijación del complemento
Sobrenadante rojizo en un 50% de intensidad; en el fondo un
depósito tenue de eritrocitos
75% de hemólisis o 25% de fijación del complemento.
Sobrenadante rojizo en un 75% de intensidad; en el fondo un
depósito muy tenue de eritrocitos
Reacción negativa: 100% de hemólisis con ausencia de depósito de eritrocitos.
Interpretación de los resultados
Existe un sistema de unidades basado en el Estándar Internacional para el Suero antiBrucella ovis (Estándar Internacional 1985). Este suero contiene 1000 UlFC/ml. Si
este suero se analiza con un método determinado y da, por ejemplo, un título de 100,
entonces el factor para un suero desconocido analizado mediante ese método se
puede hallar a partir de la fórmula: 1.000/100 × título del suero problema = número de
UIFC (unidades internacionales de FC) de anticuerpo en el suero problema por ml.
Los resultados deben expresarse siempre en UIFC, calculados con relación a aquellos
obtenidos en una titulación en paralelo con un suero patrón nacional, que a su vez ha
sido estandarizado con el suero Estándar Internacional.
Se considerara la muestra positiva cualquier valor ≥50 UIFC/ml (1/8 ++++).
Para la expresión de los resultados se puede utilizar la formula con el suero patrón
antes mencionada o emplear una tabla establecida (Tabla 4) basada en el presente
manual en el Procedimiento IZS TE B2. 1.6 SOP 004 del Centro Internacional de
Referencia OIE para Brucelosis Istituto Zooprofilattico Sperimentale dell ”Abruzzo e
del Molise G. Caporale. Teramo. Italia
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Dilución
% de fijación del C
UIFC
+
16,6
++
20
+++
23,2
++++
26,6
+
33,2
++
40
+++
46,4
++++
53,2
+
66,4
++
80
+++
92,8
++++
106,4
+
132, 8
++
160
+++
185,6
++++
212,8
+
265,6
++
320
+++
371,2
++++
425,6
+
531,2
++
640
+++
742,4
++++
851,2
+
1062,4
++
1280
+++
1484,8
++++
1702,4
1:4
1:8
1:16
1:32
1:64
1:128
1:256
Tabla 4. Interpretación de los resultados expresada en UIFC
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Lectura de los controles
El ensayo es satisfactorio si los controles han dado los resultados esperados:
Controles
Resultado Esperado
50 % de fijación (++)
Suero control positivo
en la dilución 1:200 que corresponde
a 1000 UIFC
100% de hemólisis
Suero control negativo
en todos las diluciones, ausencia de fijación de
complemento
100% de hemólisis
Control de poder anticomplementario de los
sueros
ausencia de fijación del complemento en la
dilución 1/2 (sin antígeno)
Control de ausencia de poder
anticomplementario del antígeno
100 %hemólisis
Control del sistema hemolítico sin C
0% de hemólisis
Control del sistema hemolítico con C
100% de hemólisis
En el caso que los controles no se encuentren dentro de los límites aceptables, el
ensayo será considerado como no válido y la prueba deberá ser repetida.
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3.4.1. ANEXO I
Preparación de soluciones
Tampón Veronal Calcio magnesio (TV)
Solución madre (5X)
NaCl
Na 5-5 dietil barbiturato
Ácido clorhídrico 1 N (*)
Solución concentrada de Ca++ y Mg++
Agua destilada c.s.p.
83 g
10,19 g
34,58 ml
5 ml
2000 ml
a) En un matraz aforado de 2000 ml, disolver el NaCl y el barbiturato de sodio en
500 ml de agua destilada.
b) Agregar el ácido clorhídrico 1N.
c) Agregar 5 ml de la solución concentrada de Ca++ y Mg++, la cual se prepara de
la siguiente manera:
CaCl 2 .2 H 2 O
Mg Cl 2 .6 H 2 O
Agua destilada
4,4 g
20,3 g
100 ml
d) Completar el volumen hasta 2000 ml con agua destilada y mezclar.
Solución de trabajo 1X (pH 7,3 -7,4)
Realizar una dilución 1:5 con agua destilada de la solución madre 5X.
Conservar en heladera 5 ± 3°C
Tiempo de validez: 5 días.
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3.4.2. ANEXO II
Metodología para la preparación estandarización de la suspensión de glóbulos
rojos de carnero al 2%
Materiales:
Cámara de Neubauer.
Material de vidrio de volúmenes varios.
Pipetas de: 1 ml, 2 ml, 5 ml y 10 ml.
Gradillas.
Tips.
Tubos de centrifuga graduado.
Micropipetas de 10 – 200 µl.
Equipos
Se utilizan los mismos equipos descriptos en 3.4 (ensayo de FC).
Soluciones
Tampón veronal 1X pH 7,3-7,4.
Glóbulos rojos de carnero (adquiridos comercialmente)
Drogas
Cloruro de Sodio.
5-5 dietilbarbiturato de sodio.
Cloruro de Magnesio.
Cloruro de Calcio.
Ácido Clorhídrico.
Citrato de Sodio.
Preparación de los Glóbulos rojos
a) Lavado de glóbulos rojos:
Filtrar la sangre a través de una gasa y depositar en un tubo cónico de centrífuga
graduado en 10 ml.
Centrifugar la sangre aproximadamente a 2000 rpm durante 5 minutos.
Descartar el sobrenadante, tratando de arrastrar los leucocitos que forman una capa
amarillenta en la parte superior de la columna de hematíes.
Suspender los eritrocitos en TV 1X en una proporción 1 volumen de GR + 5
volúmenes de TV 1X, homogeneizar cuidadosamente.
Centrifugar aproximadamente a 2000 rpm durante 5 minutos y luego eliminar el
sobrenadante con una pipeta.
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Repetir la suspensión de los eritrocitos y la centrifugación dos veces más. Luego de
la última centrifugación descartar el sobrenadante.
b) Estandarización de glóbulos rojos al 2%:
El método para la estandarización de la suspensión de glóbulos rojos se
puede realizar por medio de dos técnicas:
Método espectrofotométrico.
Método en cámara de Neubauer.
Método espectrofotométrico:
Preparar la concentración de GR al 2%(0,2 ml GR + 9,80 ml de TV 1X).
Tubo 1: blanco de lectura para el espectrofotómetro. Agregar en un tubo:
5,6 ml de agua destilada + 0,4 ml de TV 1X.
Dispensar 2,5 ml en cada cubeta del espectrofotómetro (dependerá del modelo
de espectrofotómetro utilizado).
Tubo 2: Para determinar la lisis 100% de los GR
Realizar una dilución 1:15, con agua destilada: 0,2 ml de glóbulos rojos al 2% + 2,8
ml de agua destilada.
Una vez lisados los eritrocitos, se lee la densidad óptica (DO) a 540nm contra
el blanco.
La DO esperada es de 0.330 ± 0.05 (Esto deberá ser determinado según el
modelo de espectrofotómetro utilizado en el laboratorio).
Método en cámara de Neubauer:
Determinar el volumen de la columna de glóbulos y calcular la cantidad de
solución TV 1 X necesaria para hacer una suspensión al 2%aproximadamente
(0,2 ml GR + 9,80 de TV).
Realizar el recuento de glóbulos rojos en la cámara.
La suspensión deberá tener 5,4 X 108 GR/ml.
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3.4.3. ANEXO III
Determinación de la dilución de trabajo óptima del complemento y hemolisina
Se realiza previamente al ensayo.
Se busca determinar en conjunto el valor de sensibilización de la hemolisina para los
GR de carnero expresado como UH (Unidades Hemolíticas) y la concentración de uso
del complemento en la reacción de fijación del complemento expresado como UC
(unidad complemento).
Reactivos y Soluciones
Suspensión de glóbulos rojos al 2%.
Hemolisina: se conservará según instrucción del fabricante. Se titulará cada
lote recibido, previa dilución 1:100 con agua destilada (dilución ¨madre¨), que
se conservará a -20º C ± 5ºC hasta el momento de su uso, en cantidades
suficientes para un día de trabajo.
Complemento de cobayo: conservado a (-70ºC) o en nitrógenos líquido a (186°C).
Tampón veronal calcio 1X.
Tampón veronal 5X.
Condiciones de realización
Trabajar a temperatura de laboratorio22°C ± 4°C.
Las incubaciones del ensayo se realizarán en estufa a 37°C ± 2º C.
La titulación simultánea del complemento y la hemolisina se debe realizar cada
vez que un nuevo lote de complemento, hemolisina y/o glóbulos rojos son
producidos.
El control de 2 Unidades de C debe ser realizado cada día antes del ensayo
usando GR 2%.
El complemento que sea objeto de titulación debe descongelarse a temperatura
de laboratorio. Una vez descongelado se mantendrá en refrigeración y solo se
sacará de la heladera en el momento de su utilización. Si se prevee que se va a
utilizar más de un vial se mezclan y se titula el pool. Tras su uso diario se
guardará a una temperatura de (-70º C) o en nitrogeno líquido a (– 186° C.)
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Preparacion de las diluciones
Dilución del complemento:
Preparar una dilución 1:10 de complemento en TV 1X (130µl de
complemento + 1170 µl de TV 1X) y conservar en una caja con hielo durante
la titulación.
Realizar las siguientes diluciones de complemento a partir de la dilución 1:10 (Tabla
5) y conservar en caja con hielo durante la titulación
Tabla 5. Diluciones del complemento
Dilución
Complemento 1/10
TV 1X
1/30
1/40
1/50
1/60
1/70
1/80
1/100
1/120
1/140
1/160
1/240
1/280
200 µl
100 µl
100 µl
100 µl
100 µl
100 µl
100 µl
50 µl
50 µl
50 µl
50 µl
50 µl
400 µl
300 µl
400 µl
500 µl
600 µl
700 µl
900 µl
550 µl
650 µl
750 µl
1150 µl
1350 µl
Dilución de hemolisina:
Hemolisina 1:100 en TV 1X
o 10 µl de hemolisina
o 990 µl de TV 1X
Hemolisina 1:500 en TV 1X
o 500 µl de (hemolisina 1:100)
o 2000 µl de TV 1X
A partir de la dilución de hemolisina 1:500 preparar en tubos las siguientes
diluciones (Tabla 6 )
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Tabla 6. Dilución de hemolisina
Hemolisina
Tubo
Dilución
1/500
TV 1X
1
2
3
4
5
6
7
500 µl
500 µl
250 µl
125 µl
250 µl
250 µl
250 µl
1/1000
1/1500
1/2000
1/4000
1/6000
1/ 8000
1/10000
500 µl
1000 µl
1000 µl
1500 µl
2500 µl
3500 µl
4500 µl
Preparación del sistema hemolítico
o Preparar y enumerar un set de 7 tubos, uno por cada dilución de
hemolisina.
o Agregar en cada tubo 500 µl de hemolisina de cada dilución.
o Agregar 500 µl de glóbulos rojos estandarizados al 2 % en todos
los tubos que contienen las diluciones de hemolisina.
o Incubar en estufa a 37º ±2 °C durante 15 minutos.
Titulación cruzada en microplaca del complemento y la hemolisina (Tabla 9)
a) Distribución de TV 1X
Desde la fila A hasta la fila G de la microplaca agregue 50 µl/pocillo
de TV 1X.
b) Distribución del Complemento
Agregue 25 µl/pocillo de cada dilución del complemento en todos los
pocillos de la microplaca excepto en la fila H como se muestra en la
Tabla 7.
Tabla 7. Distribución de las diluciones del complemento
1
2
3
4
5
6
7
8
9
10
11
12
A
1/30
1/40
1/50
1/60
1/70
1/80
1/100
1/120
1/140
1/160
1/240
1/280
B
1/30
1/40
1/50
1/60
1/70
1/80
1/100
1/120
1/140
1/160
1/240
1/280
C
1/30
1/40
1/50
1/60
1/70
1/80
1/100
1/120
1/140
1/160
1/240
1/280
D
1/30
1/40
1/50
1/60
1/70
1/80
1/100
1/120
1/140
1/160
1/240
1/280
E
1/30
1/40
1/50
1/60
1/70
1/80
1/100
1/120
1/140
1/160
1/240
1/280
F
1/30
1/40
1/50
1/60
1/70
1/80
1/100
1/120
1/140
1/160
1/240
1/280
G
1/30
1/40
1/50
1/60
1/70
1/80
1/100
1/120
1/140
1/160
1/240
1/280
H
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c) Distribución del Sistema Hemolítico
Finalizada la incubación de las diluciones del sistema hemolítico
distribuir 25 µl/pocillo del sistema hemolítico en la misma microplaca
según el esquema indicado en la tabla 8
Tabla 8. Distribución de las diluciones de la hemolisina
1
2
3
4
5
6
7
8
9
10
11
12
A
1000
1000
1000
1000
1000
1000
1000
1000
1000
1000
1000
1000
B
1500
1500
1500
1500
1500
1500
1500
1500
1500
1500
1500
1500
C
2000
2000
2000
2000
2000
2000
2000
2000
2000
2000
2000
2000
D
4000
4000
4000
4000
4000
4000
4000
4000
4000
4000
4000
4000
E
6000
6000
6000
6000
6000
6000
6000
6000
6000
6000
6000
6000
F
8000
8000
8000
8000
8000
8000
8000
8000
8000
8000
8000
8000
G
10000
10000
10000
10000
10000
10000
10000
10000
10000
10000
10000
10000
H
CSH
c/C
1000
CSH
s/C
1000
CI
GR
Tabla 9
Complemento
Hemolisina
1000
A
1500
B
2000
C
4000
D
6000
E
8000
F
10000
G
H
30
40
50
60
70
80
100
120
140
160
240
280
1
2
3
4
5
6
7
8
9
10
11
12
CSH
c/C
1000
CSH
s/C
1000
CI
GR
d) Distribución de los controles
Control del sistema hemolítico con complemento (CSH c/C)
Dispensar en el pocillo H1:
50 µl de TV 1X
25 µl de complemento dilución 1:30
25 µl del sistema hemolítico 1:1000
Control del sistema hemolítico sin complemento (CSH s/C)
Agregar en el pocillo H2:
75 µl de TV 1X
25 µl del sistema hemolítico 1:1000
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Control de integridad de glóbulos rojos (CI GR)
Agregar en el pocillo H3:
75 µl de TV 1X
25 µl de glóbulos rojos al 2 %
e) Incubación: Ídem explicación de la técnica de complemento (3.4).
f) Centrifugación/reposo de la placa: Ídem explicación de la técnica de complemento.
(3.4).
Expresión de resultados: Ídem explicación de la técnica de complemento (3.4).
Lectura de controles. Ídem explicación de la técnica de complemento (3.4).
Lectura de la titulación
Título del complemento: Es la mayor dilución del complemento donde se
observa un 100 % de hemólisis con la mayor dilución de la hemolisina.
Esto representa 1 unidad de complemento (UC), pero para la ejecución del
ensayo se usará 2 unidades de complemento (2UC)
Título de la hemolisina: Es la mayor dilución de hemolisina donde se
observa un 100 % de hemólisis con la mayor dilución del complemento.
Esto representa 1 unidad de hemolisina (UH), pero para el ensayo principal se
usará 2 unidades de hemolisina (2UH).
Cálculo de la dilución de trabajo (DDT)
Supongamos que UC = 1/120(según el desarrollo en el presente procedimiento).
DDT 2 x UC = 2 x 1/ 120 = 1/60
Para calcular la dilución de trabajo de la hemolisina se procede de la misma manera:
Supongamos que UH = 1/2000
DDT 2 x UH = 2 x 1/2000 = 1/:1000
Control de 2 Unidades de complemento (2 U)
Una vez obtenida la dilución de trabajo se realizará el control de 2 UC y 2 UH, también
se chequeará las diluciones de complemento 1/50 y 1/70 y para la hemolisina la
dilución 1/1000 y 1/2000; esto nos permitirá seleccionar la dilución óptima de trabajo.
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La prueba se efectuará por duplicado utilizando 4 pocillos por cada dilución de
complemento.
a) Preparación de sistema hemolítico:
Preparar dos tubos con 1000 µl de las diluciones de hemolisina 1/1000 y
1/2000
Agregar a los tubos 1000 µl de glóbulos rojos estandarizado al 2%
Agitar e incubar en estufa a 37º C ±2 °C 15 minutos.
b) Preparación del complemento:
Preparar 3 diluciones de complemento (1/50, 1/60, 1/70)
c) Distribución en la microplaca
Dispensar 25 µl/pocillo de TV 1X en las columnas según el esquema
indicado en la Tabla 10.
Tabla 10. Distribución de TV
1
2
3
4
5
6
7
8
9
10
11
12
A
B
25 µl 25 µl 25 µl
25 µl 25 µl 25 µl
25 µl 25 µl 25 µl
25 µl 25 µl 25 µl
25 µl 25 µl 25 µl
25 µl 25 µl 25 µl
C
D
25 µl 25 µl 25 µl
25 µl 25 µl 25 µl
25 µl 25 µl 25 µl
25 µl 25 µl 25 µl
25 µl 25 µl 25 µl
25 µl 25 µl 25 µl
En la misma placa dispensar 50 µ/pocillo de complemento de la
diluciones 1/50, 1/60 y 1/70 en las columna 1, 5 y 9 respectivamente
como se indica en la Tabla 11.
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Tabla 11. Distribución del complemento
1
2
3
4
5
6
1/50
1/60
7
8
9
10
1/70
A
B
50µl
50µl
50µl
50µl
50µl
50µl
C
D
50µl
50µl
50µl
50µl
50µl
50µl
11
12
Con la pipeta multicanal pasar 25 µl /pocillo de la columna 1 a la columna
2. La homogenización de los dos componentes de cada dilución se
realizará mezclando mediante la acción de pipetear durante 5 veces.
Recoger 25 µl/pocillo de la columna 2 y pasar a la columna 3, volver a
homogeneizar, recoger 25 µl/pocillo y pasar a la columna 4, homogeneizar
y recoger 25 µl/pocillo y descartar.
Repita la misma operación con las diluciones que se encuentran en la
columna 5a 8 y 9 a 12
Las diluciones del complemento quedarán dispuestas en la microplaca
como muestra la Tabla 12
Tabla 12. Diluciones del complemento
1
2
3
4
5
6
7
8
9
10
11
12
A
25µl
2UC
25µl
1UC
25µl
1UC
25µl
2UC
25µl
1UC
25µl
2UC
25µl
1UC
C
25µl
2UC
25µl
1UC
25µl
2UC
25µl
1UC
25µl
2UC
25µl
1UC
D
25µl
2UC
25µl
1UC
25µl
2UC
25µl
1UC
25µl
0,25
UC
25µl
0,25
UC
25µl
0,25
UC
25µl
0,25
UC
25µl
1UC
25µl
1UC
25µl
0,5
UC
25µl
0,5
UC
25µl
0,5
UC
25µl
0,5
UC
25µl
2UC
25µl
2UC
25µl
0,25
UC
25µl
0,25
UC
25µl
0,25
UC
25µl
0,25
UC
25µl
2UC
B
25µl
0,5
UC
25µl
0,5
UC
25µl
0,5
UC
25µl
0,5
UC
25µl
2UC
25µl
1UC
25µl
0,5
UC
25µl
0,5
UC
25µl
0,5
UC
25µl
0,5
UC
25µl
0,25
UC
25µl
0,25
UC
25µl
0,25
UC
25µl
0,25
UC
Dispensar 50 µl de TV 1X en todos los pocillos.
Agregar 25 µl/pocillo de SH 1/1000 (previamente incubado 15 min a 37º ±
2 °C) en la fila A y B y 25 µl /pocillo de SH 1/2000en la fila C y D.
d) Incubación: Ídem explicación de la técnica de complemento (3.4)
e) Centrifugación/reposo de la placa: Ídem explicación de la técnica de
complemento (3.4)
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Lectura y elección de la dilución de trabajo
La dilución del complemento y hemolisina que se aceptará deberá dar como
resultado
Resultado Esperado
En la primera y segunda dilución (2 UC y 1UC)
100% de hemólisis
En la tercera dilución (0,5 UC)
50 % de hemolisis
En la cuarta dilución (0,25 UC)
0 % de hemolisis
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3.5.4. ANEXO IV
Titulación del Antígeno
La titulación tiene como objeto determinar la dilución de trabajo óptima del antígeno
que debe emplearse en la cuantificación de anticuerpos para el serodiagnóstico de
brucelosis. Este procedimiento se aplicará para cada lote de antígeno que vaya a
emplearse como reactivo en dicho ensayo.
Está reacción requiere de un título mínimo para que la misma se lleve a cabo, es decir,
se debe garantizar una concentración mínima de antígeno que reaccione con los
anticuerpos y sea capaz de fijar el complemento. Para garantizar esta concentración
se realizará esta titulación de antígeno.
Realización
1. Dilución e inactivación de los sueros controles positivos y negativos.
Inactivar por 30 minutos en baño maría (60°C– 63°C). Una vez inactivado realizar las
siguientes diluciones del suero positivo con TV 1X: 1/150, 1/175, 1/200, 1/225, 1/250.
2. Se prepara en tubos las siguientes diluciones del antígeno Brucella ovis con TV 1X:
1/5, 1/10, 1/20, 1/40, 1/80, 1/160, 1/320 y 1/640.
Tabla 13. Distribución de los sueros controles y del antígeno
Antígeno
Sueros
A C++
1/150
B C++
1/175
C C++
1/200
D C++
1/225
E C++
1/250
F C-
Neg.
1
2
3
4
5
6
7
8
1/5
1/10
1/20
1/40
1/80
1/16
0
1/32
0
1/64
0
9
10
11
12
G
H
Dispensar 25 µl de cada dilución del suero control positivo en el pocillo
correspondiente según la tabla 1 (fila A a E), desde la columna 1 a la 8.
Dispensar 25 µl del suero control negativo desde la fila F1 hasta F8.
Distribuir 25 µl de la dilución de trabajo de complemento en los pocillos que
contiene las diluciones de trabajo de suero control positivo y suero negativo.
Agregar 25 µl de la dilución correspondiente de antígeno según la tabla 1.
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Primera incubación en caliente
Cubrir y agitar las microplacas en agitador de placas durante 2 – 4 minutos.
Incubar las microplacas a 37 ± 2°C durante 30 minutos.
Agregado del sistema hemolítico
Finalizada la primera incubación, dispensar el sistema hemolítico a razón
de 25 µl en todos los pocillos de la placa.
Segunda incubación en caliente
Cubrir y agitar las microplacas en agitador de placas durante 2 – 4 minutos
Incubar las microplacas a 37 ± 2°C durante 30 minutos.
Centrifugación/reposo de la microplaca
Finalizada la incubación, centrifugar las microplacas a 2000 rpm durante 5
minutos o bien dejar en reposo durante una hora antes de su lectura en
heladera.
Lectura de la titulación
El nuevo lote de antígeno debe presentar un título en el cual el suero control positivo
arroja un resultado de ++ en 1:200 y negativo en 1:250, título que corresponde a 1000
UIFC/ml de suero.
El suero negativo debe arrojar resultado negativo (100% de hemólisis).
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3.4.6. ANEXO V
Preparación de la escala visual para la interpretación de los resultados
En un tubo de ensayo se coloca 1 ml de la suspensión de glóbulos rojos al 2% + 9ml
de TV 1X.
En otro tubo de ensayo colocar 1ml de la suspensión de glóbulos rojos al 2% + 7ml de
agua destilada, agitar para provocar la completa hemólisis de los GR. (solución de
hemoglobina), y agregarle 2ml de TV (5x) para mantener la presión osmótica.
Estos dos tubos mantienen la misma relación de GR. intactos en el primer caso y de
glóbulos lisados en el segundo, que el que el 0% de hemólisis y el 100% de hemólisis
en la prueba.
De esta manera mezclándolas en distintas proporciones podremos obtener la imagen
que corresponde a los distintos grados de hemólisis, luego de centrifugar durante 5
minutos a 1000 rpm (Tabla 14).
Tabla 14.
PORCENTAJE DE HEMÓLISIS
REACTIVOS EN µl
0%
10%
20%
30%
40%
50%
60%
70%
80%
90%
100%
Solución de
hemoglobina
0
10
20
30
40
50
60
70
80
90
100
Suspensión de
glóbulos rojos
100
90
80
70
60
50
40
30
20
10
0
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4. Enzimoinmunoensayo Indirecto (I ELISA)
Se realizará siguiendo el protocolo de los kits comerciales validados y aprobados para
el diagnóstico oficial de la brucelosis ovina con el valor de corte establecido por
SENASA.
El enzimoinmunoensayo (ELISA) es un método empleado habitualmente para la
detección y/o cuantificación de sustancias, generalmente proteínas, que se
encuentran en concentraciones muy bajas. El método combina la especificidad de
unión de los anticuerpos con la amplificación de "señal" que brindan las reacciones
catalizadas por enzimas. En la práctica clínica es la técnica inmunológica más
empleada. Se utiliza para cuantificar, entre otras cosas, hormonas, marcadores
tumorales, para determinar la presencia de antígenos microbianos y para la
determinación cualitativa o cuantitativa de anticuerpos totales o frente a algún
antígeno en particular.
ELISA Indirecto. Consta de las siguientes etapas: •
1. Fijación al soporte insoluble de antígenos específicos para los anticuerpos objeto
de estudio (generalmente en los kits comerciales la placa ya está preparada con
el antígeno pegado a la misma)
2. Lavado para eliminar los antígenos fijados deficientemente o no fijados.
3. Adición de los controles y sueros problemas, en la dilución indicada en el
protocolo, de tal forma que sus anticuerpos reaccionarán específicamente con los
antígenos fijados al soporte.
4. Incubación
5. Lavado para eliminar los anticuerpos marcados que no hayan reaccionado. •Es
importante que la placa no se seque, lo que podría incrementar la actividad
inespecífica del ensayo.
6. Adición de anti-anticuerpos conjugados con una enzima, los cuales reaccionan
con los anticuerpos específicos añadidos en el paso anterior y que se encuentran
fijados a los antígenos.
7. Incubación
8. Lavado para eliminar los anti-anticuerpos marcados que no hayan reaccionado. •
9. Adición de un substrato sobre el que sea capaz de actuar la enzima marcadora.
10. Frenado
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11. Lectura colorimétrica del producto final coloreado.
4.1 Equipos:
Heladera con temperatura controlada (5 ±3 ºC)
Freezer con temperatura controlada (-20 ±5 ºC)
Vortex
Centrífuga
Timer
Fotómetro de placas automático con filtros (405 nm, 414 nm, 450nm)
Agitador orbital de placas
Peachímetro (rango de 0 a 14 ± 0,01 pH).
Lavador de placas
4.2 Materiales:
Micropipetas monocanal de volumen variable (0,5 a 10 µl, 5 a 50 µl, 50 a 200
µl y 200 a 1000 µl).
Micropipetas multicanal de volumen variable (5 a 50 µl y 50 a 250µl).
Dispensadores automáticos.
Timer o reloj de laboratorio.
Propipetas.
Selladores de placas de acetato o parafilm.
Cubetas plásticas para pipetas multicanales.
Microtubos o microplacas (para realizar las diluciones previas de los sueros).
Criotubos de polipropileno para el almacenamiento de los sueros.
Gradillas.
Material de vidrio (probetas, pipetas, erlenmeyers, etc. de distintos
volúmenes).
Toallas o papel absorbente.
Modelo de Distribución de los sueros controles y muestras problemas en la placa de 96
pocillos
B
C
D
E
F
G
H
1
C++
C++
C+
C+
CCCc
Cc
2
1
1
2
2
3
3
4
4
3
5
5
4
9
9
5
13
13
6
17
17
7
21
21
8
25
25
9
29
29
10
33
33
11
37
37
12
41
41
44
44
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A continuación se citan algunas precauciones a tener en cuenta para ejecutar la
técnica de Elisa:
Seguir expresamente las instrucciones del kit para la preparación de todos los
reactivos
Mantener los reactivos a temperatura ambiente antes de su utilización.
No mezclar reactivos ni instrucciones de diferentes lotes o kits.
Evitar cualquier contaminación de los reactivos.
No utilizar los kits una vez superada la fecha de caducidad.
Utilizar una punta de pipeta nueva por cada muestra y reactivo a analizar.
Incluir sistemáticamente un control positivo y un control negativo.
Utilizar agua desionizada o destilada para la preparación/dilución de los
reactivos que se empleen en el ensayo.
Corroborar que el lector de placas posee el filtro con el cual se debe leer la
placa y seguir las instrucciones de uso del equipo
Se recomienda trabajar las muestras por duplicado, para verificar la
repetibilidad del operador.
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4.3 Guía de problemas y soluciones
Señal
Posible causa
Solución
Color irregular
1.Error de pipeteo
2.Falta de mezcla de reactivos
3.Falta de lavados
Práctica
Mejorar técnica
Precaución
No hay color
1. Se omitió el substrato
2. Errónea concent. Substrato
3. Substrato con pH erróneo
4. Conjugado muy diluido
5. Se omitió el conjugado
Revisar
Revisar
Controlar pH
Revisar
Revisar
1. Conjugado muy concentrado
2. Falla en el lavado
3 Substrato contaminado
Controlar
Mejorar técnica
Revisar
1. Reacción inespecífica
2. Material de vidrio sucio
3. Agua de mala calidad
4. Poco detergente (Tween 20)
5. Tampones contaminados
Cambiar solución de lavado
Mejorar lavado
Controlar calidad
Revisar
Preparar soluciones nuevas
1. Substrato muy concentrado
2. Conjugado muy concentrado
3. Solución substrato con pH erróneo
4. Concent. Cromógeno errónea
Revisar
Controlar dilución
Controlar
Revisar
1. Substrato muy diluido
2. Conjugado muy diluido
3.Solución substrato con pH erróneo
4.Concentración Cromógeno errónea
5.Concent de Tween errónea
Revisar
Revisar dilución
Revisar
Revisar
Revisar
1. Incubación despareja
2. Resecación por aire
3. Tampón de lavado residual
Utilizar estufa
Mantener la placa cubierta
Eliminarlo
Color parejo en toda la placa
Elevado color de fondo
“background”
Desarrollo de color muy rápido
Desarrollo de color muy lento
Efecto borde
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5. REFERENCIAS
Alton, G.G.; Jones, L.M; Angus, R.D.; Verger, J.M. 1988. Serological methods.
Techniques for the Brucellosis laboratory. Institut National de la Recherche
Agronomique, Paris, France, pp. 157-167.
Blasco J.M. (1990). Brucella ovis. In: Animal Brucellosis, Nielsen K. & Duncan
J.R., eds. CRC Press, Boca Raton, Florida, USA, 351–378.
GALL D., NIELSEN K., VIGLIOCCO A., SMITH P., PEREZ B., ROJAS X. & ROBLES C.
(2003). Evaluation of an indirect enzyme-linked immunoassay for presumptive
serodiagnosis of Brucellaovis in sheep. Small Rumin. Res., 48, 173–179.
IstitutoZooprofilatticoSperimentaledell”Abruzzo e del Molise G. Caporale.
Procedimiento IZS TE B2. 1.6 SOP 004 del Centro Internacional de Referencia
OIE para Teramo. Italia
Nielsen K., Gall D., Kelly W., Vigliocco A, Henning D and Garcia M.
(1996).Immunoassay Development. Aplication to Enzyme Immunoassay for the
diagnosis of Brucellosis. ISBN 0662-24163-0. Agriculture and AgriFoodCanada.
Organización Mundial de Sanidad Animal (OIE). Manual de las Pruebas de
Diagnóstico y de las Vacunas para los Animales Terrestres. 2009. Capítulo
2.7.9.SéptimaEdición. Volumen 2
SENASA, Manual de diagnóstico serológico para Brucelosis Bovina. 2009
VIGLIOCCO A.M., SILVA PAULO P.S., MESTRE J., BRIONES G.C., DRAGHI
G., TOSSI M. & NIELSEN K. (1997). Development and validation of an indirect
enzyme immunoassay for detection of ovine antibody to Brucella ovis. Vet.
Microbiol., 54, 357–368.
Página 46 / 46
�
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Publicaciones SENASA
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Manual de diagnóstico de Brucella ovis
Publisher
An entity responsible for making the resource available
Servicio Nacional de Sanidad y Calidad Agroalimentaria.
Date
A point or period of time associated with an event in the lifecycle of the resource
2015
Contributor
An entity responsible for making contributions to the resource
Dirección Nacional de Sanidad Animal
Language
A language of the resource
Es
Type
The nature or genre of the resource
Monografía
Identifier
An unambiguous reference to the resource within a given context
B.S.0017
Abstract
A summary of the resource.
El presente Manual está dirigido a los Laboratorios veterinarios que realicen el diagnóstico serológico de la Brucelosis ovina. Contiene los requisitos técnicos necesarios para realizar las pruebas con caracter oficial. Las mencionadas técnicas son internacionalmente reconocidas y recomendadas por la OIE y SENASA.
Table Of Contents
A list of subunits of the resource.
1. Introducción
1.1 Etiología
1.2 Epidemiología
1.3 Patogenia
1.4 Manifestaciones clínicas
2. Diagnóstico de Laboratorio
2.1 Medidas Generales
2.2 Aseguramiento de la calidad
2.3 Control de calidad de insumos
2.4 Equipos
2.5 Registro de entrada de muestras
2.6 Características y condiciones de las muestras
2.6.1 Condiciones de recepción de las muestras
2.6.2 Condiciones de rechazo de las muestras
3. Diagnóstico de Brucella Ovis
3.1 Identificación del Agente
3.2 Pruebas serológicas
3.3 Inmunodifusión en gel de agar
3.4 Fijación de complemento
4. ELISA indirecto
4.1 Equipos
4.2 Materiales
4.3 Guía de problemas y soluciones
5. Referencias
Enfermedades de los Ovinos
Laboratorios
-
https://biblioteca.senasa.gob.ar/files/original/34ce43feeb86937bb632314deba34637.pdf
df7160fe8f1c813f539a794f5df43494
PDF Text
Text
SENASA
DIRECCION NACIONAL DE SANIDAD ANIMAL
VIRUS DEL NILO OCCIDENTAL
(VNO)
Abril de 2006
�VIRUS DEL NILO OCCIDENTAL
(VNO)
Este trabajo está destinado a presentar una recopilación
de la información disponible en el mundo sobre la
enfermedad denominada VIRUS DEL NILO
OCCIDENTAL (VNO), que puede afectar a los animales
y a los seres humanos, de reciente hallazgo y
diagnóstico en nuestro país en 2 (dos) equinos nativos
de la República Argentina.
�VIRUS DEL NILO OCCIDENTAL
Sinonimia
-
Enfermedad del Oeste del Nilo (EON)
Enfermedad del Nilo Occidental
Encefalitis del Oeste del Nilo
Fiebre del Nilo Occidental
West Nile Fever (OIE)
West Nile Encephalitis (OIE)
�VIRUS DEL NILO OCCIDENTAL
Definición
Es una enfermedad infecciosa aguda de origen viral,
transmitida por mosquitos, que afecta principalmente a aves y
que puede transmitirse a equinos y a seres humanos
Características
• Flavivirus del Complejo de la Encefalitis Japonesa.
• Enfermedad Transmitida por Mosquitos Vectores.
• Ciclo enzoótico.
• Las aves silvestres son reservorio natural, infectando a
mosquitos que infectan a su vez a los vertebrados.
�VIRUS DEL NILO OCCIDENTAL
Etiología
Familia: Flaviviridae
Género:
Flavivirus
- virus RNA, cadena simple - sentido positivo
- icosaédrico–envuelto (40-60 nm)
- secuencia genómica total de 11.029 nucleótidos:
Genoma viral:
5´ - 96 nucleótidos no codif. – 97 a 10.302 nucleótidos codif.
(Proteínas estructurales: Cap, PrM, M, E; Proteínas no estructurales: NS1,
NS2a / NS2b, NS3, NS4a / NS4b, y NS5)– 631 nucleótidos no codificantes – 3´
�Representación esquemática del VNO
CDC
Centers for Disease Control
and Prevention
�VNO: Micrografía Electrónica
Fotografía cedida por CDC – U.S. Pergamino 2003
�Árbol filogenético del VNO
Modificado de: Lanciotti et al. 1999. Origen del VNO responsable de un brote de
encefalitis en el Noreste de los Estados Unidos [Science 286:2333-337.]
�VIRUS DEL NILO OCCIDENTAL
Especies afectadas
•
•
•
•
Aves
Equinos
Seres humanos
Otros Mamíferos
�Fuentes potenciales de ingreso del
virus a un país/región
Aves domésticas y/o silvestres infectadas.
Mosquitos portadores en medios de
transporte (terrestres, aéreos y/o
acuáticas).
�VIRUS DEL NILO OCCIDENTAL
Ciclo epidemiológico
�VIRUS DEL NILO OCCIDENTAL
Factores predisponentes
El VNO se presenta en forma endémica y
epidémica.
La lluvia intensa, la alta humedad relativa
ambiente,
los
encharcamientos
y
las
temperaturas
elevadas
conforman
nichos
ecológicos que facilitan la reproducción de
mosquitos vectores.
�VNO: Ciclo de Transmisión
Huéspedes
incidentales
Virus
Fotografía cedida por CDC – U.S. Pergamino 2003
�Criterios para calificar como vector
del VNO
Densidad poblacional
suficiente
Competente
De vida larga
Ornitofílico
Foto: Dr. Steve Higgs
�Fotografía cedida por CDC – U.S. Pergamino 2003
Culex pipiens
ciclo de vida
�1999 – 2000 Detección de VNO en EUA
Aspirando mosquitos Culex
mientras hibernan,
Ciudad de New York, enerofebrero 2000
Fotografía cedida por CDC – U.S. Pergamino 2003
�Algunas especies de mosquitos de las
cuales se aisló el virus en los EUA
– Culex pipiens
– Cx. pipiens/restuans
– Cx. restuans/salinarius
– Cx. pipiens/restuans/salinarius
– Aedes vexans
�Detalle sobre la distribución en la República Argentina
de los distintos géneros y especies de mosquitos de importancia en
Medicina Veterinaria y/ o Salud Pública, potenciales vectores del VNO
(Culicidae : Diptera : Insecta). Sobre los trabajos de Sabattini, M.S., Monath, T.P., Mitchell, C.J. y col. 1985,
Schweigmann, N. y Boffi, R., 2002 y Almirón, W.R. y col. 2002.
Provincia de Santa Fe:
Variación porcentual registrada en la estación de primavera:
Culex (Culex)
....... 33,2 %
Mansonia spp. ....... 30,6 %
Variación porcentual registrada en la estación de verano:
Culex (Culex)
....... 52,2 %
Mansonia spp. ....... 44,5 %
Variación porcentual registrada en la estación de otoño:
Culex (Culex)
....... 64 %
Anopheles spp. ....... 20 %
Provincia de Corrientes:
Variación porcentual registrada en la estación de otoño:
Anopheles spp. ....... 28,8 %
Mansonia spp. ....... 29,9 %
Psorophora spp. ...... 25,8 %
Culex (Culex)
...... 7,2 %
Provincia del Chaco:
Variación porcentual registrada en la estación de otoño:
Culex (Culex)
....... 43,4 %
Culex (Melanoconion) ....... 30,6 %
Mansonia spp.
...... 29,8 %
Anopheles spp.
...... 16,8 %
�Detalle sobre la distribución en la República Argentina
de los distintos géneros y especies de mosquitos de importancia en
Medicina Veterinaria y/ o Salud Pública, potenciales vectores del VNO
(cont.)
Provincia de Buenos Aires:
Aedeomyia (Aedeomyia)
Aedeomyia) squamipennisa
Aedes (Stegomyia
(Stegomyia)) aegyptia
Anopheles (Nyssorhynchus)
Nyssorhynchus) albitarsisa
Anopheles (Nyssorhynchus)
Nyssorhynchus) argyritarsis
Anopheles (Nyssorhynchus
(Nyssorhynchus)) triannulatus
Culex (Culex)
Culex) apicinus
Culex (Culex)
Culex) bidens
Culex (Culex)
Culex) brethesi
Culex (Culex)
Culex) chidesteri
Culex (Culex)
Culex) coronator
Culex (Culex)
Culex) dolosus
Culex (Culex)
Culex) hepperi
Culex (Culex)
Culex) lahillei
Culex (Culex)
Culex) maxi
Culex (Culex)
Culex) mollis
Culex (Culex)
Culex) pipiens (C. pipiens pipiens y C. pipiens quinquefasciatus)
quinquefasciatus)
Culex (Culex)
Culex) spinosus
Culex (Melanoconion)
Melanoconion) intrincatus
�Detalle sobre la distribución en la República Argentina
de los distintos géneros y especies de mosquitos de importancia en
Medicina Veterinaria y/ o Salud Pública, potenciales vectores del VNO
(cont.)
Mansonia (Mansonia) indubitans
Mansonia (Mansonia) titillans
Ochlerotatus (Ochlerotatus) albifasciatusa
Ochlerotatus (Ochlerotatus) scapularisa
Psorophora (Grabhamia) confinnis
Psorophora (Grabhamia) varinervis
Psorophora (Janthinosoma) albipesa
Psorophora (Janthinosoma) cyanescens
Psorophora (Janthinosoma) discrucians
Psorophora (Janthinosoma) feroxa
Psorophora (Janthinosoma) varipes
Psorophora (Psorophora) ciliata
Psorophora (Psorophora) holmbergii
Psorophora (Psorophora) pallescensa
Uranotaenia (Uranotaenia) apicalis
Uranotaenia (Uranotaenia) lowii
Uranotaenia (Uranotaenia) natalie
Uranotaenia (Uranotaenia) pulcherrima
Wyeomyia (Menolepis) leucostigma
�Criterios para calificar como
Huéspedes Reservorios
Expuestos
Competentes
Residentes
�VIRUS DEL NILO OCCIDENTAL
Distribución geográfica mundial
�Distribución geográfica de los flavivirus del complejo
de la Encefalitis Japonesa (Situación hasta 1999)
�Epidemias recientes de VNO
en seres humanos
• Rumania
• Rep Checa
• Rep del Congo
• Rusia
• Estados Unidos
• Islas Caimán
• Islas Bahamas
• Canadá
• México
1996 al 1997 (393 casos clínicos con una
mortalidad del 4%)
1997
1998
1999 (500 casos clínicos con mortalidad del 6%)
1999 al 2006
2001
2003
2002 al 2005
2002 al 2004
�Epizootias recientes de VNO
en equinos
Marruecos
Italia
Francia
Estados Unidos
Canadá
Belize
Argentina
1996
(94 casos con mortalidad del 44%)
1998
(14 casos con mortalidad del 43%)
1998 -1999 - 2003
1999 al 2005
2002
2003
2006
�Serología positiva en Equinos
en Centro y Sud América
México
Guadalupe
Belize
El Salvador
Guatemala
Trinidad
Puerto Rico
Colombia
Cuba
2002
2002
2003
2003
2003
2004
2004
2005
2005
�Evolución de la enfermedad en
los Estados Unidos
�Virus del Nilo Occidental en los EUA
(Año 2005 – Aves)
Casos
confirmados
Sin datos
Muestras
remitidas
Datos acumulados 2005 – (última actualización: Feb 14, 2006)
Casos confirmados de infección en aves a nivel nacional: 5345
�Virus del Nilo Occidental en los EUA
(Año 2005 – Mosquitos)
Casos
confirmados
Sin datos
Muestras
remitidas
Datos acumulados 2005 – (última actualización: Feb 14, 2006)
Presencia en pooles de mosquitos a nivel nacional: 11485
�Virus del Nilo Occidental en los EUA
(Año 2005 – Equinos)
Casos
confirmados
Sin datos
Datos acumulados 2005 – (última actualización: Feb 14, 2006)
Casos confirmados de enfermedad en equinos a nivel nacional:1162
�Virus del Nilo Occidental en los EUA
(Año 2005 – Humanos)
Casos
confirmados
Sin datos
Muestras
remitidas
Datos acumulados 2005 – (última actualización: Feb 14, 2006)
Casos confirmados de enfermedad en humanos a nivel nacional: 2951
�Evolución del VNO en seres
humanos en los Estados Unidos
Año
Nº
Enfermos
Nº Muertos
1999
62
7
2000
21
2
2001
66
9
2002
4156
284
2003
9862
264
2004
2539
100
2005
2949
116
Totales
19655
782
�Número de muestras positivas para VNO en
México y Canadá 2001-2003
Mexico
2001
2002
2003
Equinos
-
2
2088
Aves
-
-
112
Humanos
-
1
6
2001
2002
2003
-
336
445
127
555
1633
-
198
1303
Canada
Equinos
Aves
Humanos
Hasta Noviembre 2003 – Fuente: MS Mexico y Canadá
�Posible implicancia de las
migraciones de aves
Modelos probables de diseminación de la
enfermedad atribuible a las aves migratorias
�Gentileza Anibal Parera FVS Argentina
�Probable ruta de diseminación del VNO en
las Américas desde 1999
WN
?
Modelo Rappole et. al 2000
�Patrones de migración de aves
Estornino pinto
Gaviota plateada
Gaviotín
golondrina
from http://www.cdc.gov/ncidod/EID/vol6no4/rappole.htm. Figures adapted
from Bull J. Birds of New York State. Garden City (NY): Doubleday; 1974.
Rappole et. al 2000
�República Argentina
Gentileza Anibal Parera FVS Argentina
�ESPECIES DE AVES SILVESTRES MIGRATORIAS QUE ARRIBAN A LA PAMPA HÚ
HÚMEDA
1)
Procedentes de América del Norte (Canadá y
EUA) con presencia estival (primavera-verano):
ORDEN FALCONIFORMES
a) Familia Accipitridae:
– Aguila Pescadora (Pandion haliaetus)
– Aguilucho langostero (Buteo swainsoni)
b) Familia Falconidae:
– Halcón peregrino (Falco peregrinus)
ORDEN CHARADRIIFORMES
a) Familia Charadriidae:
– Chorlo pampa (Pluvialis dominica)
b) Familia Scolopacidae:
–
–
–
–
–
–
Pitotoy grande (Tringa melanoleuca)
Pitotoy chico (Tringa flavipes)
Pitotoy solitario (Tringa solitaria)
Playerito pectoral (Calidris melanotos)
Playerito unicolor (Calidris bairdii)
Playerito blanco (Calidris alba)
�ESPECIES DE AVES SILVESTRES MIGRATORIAS QUE ARRIBAN A LA PAMPA HÚ
HÚMEDA
(Cont.)
– Playerito rabadilla blanca (Calidris fiscicollis)
– Playerito manchado (Actitis macularia)
– Becasa de mar (Limosa haemastica)
– Playero trinador (Numenius phaeopus)
c) Familia Phalaropodidae:
– Falaropo común (Phalaropus tricolor)
d) Familia Rynchopidae:
– Rayador (Rynchops niger)
e) Familia Sternidae:
– Gaviotín negro (Chlidonias niger)
ORDEN CAPRIMULGIFORMES
Familia Caprimulgidae:
– Añapero boreal (Chordeiles minor)
ORDEN PASSERIFORMES
Familia Hirundinidae:
– Golondrina tijerita (Hirundo rustica)
– Golondrina rabadilla canela (Petrochelidon
pyrrhonota)
– Golondrina zapadora (Riparia riparia)
�ESPECIES DE AVES SILVESTRES MIGRATORIAS QUE ARRIBAN A LA PAMPA HÚ
HÚMEDA
(Cont.)
2) Procedentes de Norte y Centro de Sudamérica (Colombia,
Brasil, Paraguay) con presencia estival (primaveraverano):
ORDEN CUCULIFORMES
Familia Cuculidae:
– Cuclillo canela (Coccyzus melacoryphus)
– Cuclillo chico (Coccyzus cinereus)
ORDEN CAPRIMULGIFORMES
Familia Caprimulgidae:
– Atajacaminos tijera (Hydropsalis brasiliana)
ORDEN PASSERIFORMES
a) Familia Tyrannidae:
–
–
–
–
–
–
–
–
Anambé común (Pachyramphus polychopterus)
Benteveo rayado (Myiodynastes maculatus)
Viudita blanca (Fluvicola pica)
Churrinche (Pyrocephalus rubinus)
Suirirí real (Tyrannus melancholicus)
Tijereta (Tyrannus savana)
Mosqueta estriada (Myiophobus fasciatus)
Fiofío pico corto (Elaenia parvirostris)
�ESPECIES DE AVES SILVESTRES MIGRATORIAS QUE ARRIBAN A LA PAMPA HÚ
HÚMEDA
(Cont.)
b) Familia Hirundinidae:
Hirundinidae:
–
–
–
–
–
Golondrina
Golondrina
Golondrina
Golondrina
Golondrina
ceja blanca (Tachycineta leucorrhoa)
patagónica (Tachycineta leucopyga)
doméstica (Progne chalybea)
negra (Progne modesta)
parda (Phaeoprogne tapera)
c) Familia Vireonidae:
Vireonidae:
– Chiví común (Vireo olivaceus)
3) Procedentes de Patagonia con presencia invernal
(otoñ
(otoño-invierno):
ORDEN CHARADRIIFORMES
a) Familia Charadriidae:
Charadriidae:
– Chorlito pecho canela (Zonibyx modestus)
– Chorlito doble collar (Charadrius falcklandicus)
�ESPECIES DE AVES SILVESTRES MIGRATORIAS QUE ARRIBAN A LA PAMPA HÚ
HÚMEDA
(Cont.)
b) Familia Sternidae:
– Gaviotín sudamericano (Sterna hirundinacea)
ORDEN PASSERIFORMES
a) Familia Furnaridae:
– Remolinera común (Cinclodes fuscus)
– Canastero coludo (Asthenes pyrrholeuca)
b) Familia Phytotomidae:
– Cortarramas (Phytotoma rutila)
c) Familia Tyrannidae:
– Sobrepuesto (Lessonia rufa)
�VNO en la especie equina
�VNO en la especie equina
Período de incubación: 5 a 15 días.
– Experimentalmente: 8 dí
días.
Mortalidad: variable según los países en los
cuales se presentó, aunque se puede
asumir 1 muerto de cada 3 clínicamente
afectados (Datos de la Organización
Mundial de Sanidad Animal OIE).
�VNO en la especie equina
No todos los caballos cursan con enfermedad clínica.
Algunos pueden manifestar signos y la mayoría cursa con cuadros subclínicos
En otros casos se presentan con formas graves (meningoencefalomielitis
o encefalitis) y muerte.
Hipertermia (en el 24% de los casos).
Depresió
Depresión y debilidad
Ataxia (en el 80% de los casos).
Caminar en cí
círculo.
Tremores
Dificultad para mantenerse en pie o incorporarse.
Mono a tetraparesis y tetraplejí
tetraplejía
Fasciculació
Fasciculación y rigidez muscular.
Déficit propioceptivo.
propioceptivo.
Ceguera (en el 16% de los casos).
Caí
Caída o pará
parálisis de los labios.
Rechinar de dientes
�VNO en la especie equina
Cuadro
histopatológico principal:
– Polioencefalomielitis
linfocitaria
típica;
lesiones
bilaterales
en
sustancia gris de cuernos ventral y
lateral de médula toracolumbar (área
más afectada).
�VNO: Incoordinación en equinos
Patas cruzadas
Fotos: Juan Lubroth, USDA
Patas abiertas
�VNO: Pedaleo en decúbito – equinos
Fotografía cedida por CDC – U.S. Pergamino 2003
�Diagnóstico Diferencial en
equinos*
1.
2.
3.
4.
5.
6.
7.
Mielopatías compresivas.
Traumas.
Intoxicaciones.
Meningoencefalitis protozoaria equina (EPM)
Leucoencefalomalacia.
Rabia.
Otras encefalitis virales: Encefalomielitis Equina del
Este y Oeste, Encefalitis Japonesa, Encefalitis
Equina Venezolana, Encefalitis de San Luis.
8. Herpesvirus equino 1.
9. Enfermedad de Borna.
10.Otras.
* Alguna de las enfermedades citadas no presentes en la República Argentina
�VNO en la especie aviar
�Formas de presentación del VNO en
aves
Todas las especies aviares pueden ser afectadas por la enfermedad.
• No todas las aves infectadas cursan con enfermedad clínica, constituyéndose en
la mayoría de los casos como reservorios asintomáticos del virus.
• Las aves domésticas jóvenes resultan ser más susceptibles a la enfermedad
clínica que las adultas.
• En cambio, las aves silvestres pueden ser susceptibles a la enfermedad
clínica a cualquier edad.
�Signos clínicos en aves
Depresió
Depresión
Debilidad
Decú
Decúbito
Ataxia.
Posició
Posición anormal de cabeza y
cuello
Tremores
Dificultad para volar.
Movimientos en cí
círculo
Convulsiones
Muerte
Cuadro histopatoló
histopatológico principal:
principal:
Meningoencefalitis linfocitaria
�Diagnóstico de VNO en animales
1.- Identificación del agente a partir de muestras de
cerebro, LCR, suero sanguíneo, riñón, bazo y corazón:
• Aislamiento en cultivo celular (Vero, BHK)
o en ratón lactante.
• Diagnóstico molecular y clasificación genética:
RT-nested PCR, hibridación in situ-D.N.A. probes,
Secuenciación, Enzimas de restricción.
• Inmunofluorescencia directa.
• Inmunohistoquímica.
• Microscopía electrónica
• Inmunocromatografía (Vec Test).
�Diagnóstico de VNO en animales
(cont.)
2.- Diagnóstico serológico:
– Seroneutralización (PRNTT).
– Inhibición de la Hemoaglutinación.
– ELISA:
IgG.
Captura de IgM.
Blocking test.
�PREVENCION DEL VNO:
USO DE VACUNAS EN EQUINOS EN LOS
EE UU
Innovator® (Fort Dodge): programa vacunal
con 2 dosis, separadas entre 3 a 6 semanas,
con 1 refuerzo anual.
Recombitek® (Merial): programa vacunal
con 2 dosis, separadas entre 3 a 6 semanas,
con 1 refuerzo anual.
Respuesta de anticuerpos: no producen IgM;
sólo anticuerpos neutralizantes después de la
2da. dosis.
�Vacuna contra VNO
para Seres Humanos y Aves
Varios grupos (Reino Unido, Estados Unidos,
China) están llevando a cabo investigaciones
referidas a:
–
–
–
Vacunas a virus inactivado,
inactivado,
Virus Quimé
Quiméricos (FA/ WNV),
Vacunas a DNA
Ensayos clínicos en un futuro cercano.
Su utilidad en la población aún no es clara.
�Impacto de la enfermedad
sobre el intercambio de
animales susceptibles
Esta enfermedad puede ocasionar restricciones
o la incorporación de exigencias sanitarias
específicas por parte de países con distinta
condición sanitaria para autorizar el ingreso de
animales susceptibles a VNO.
�Recomendaciones dadas por las autoridades
sanitarias americanas para proteger contra el VNO a
las personas que trabajan al aire libre
(http://
www.cdc.gov//spanish/
http://www.cdc.gov
spanish/niosh/
niosh/factfact-sheets/
sheets/factfact-sheetsheet-westNile2.
westNile2.html)
html)
Evitar que los trabajadores permanezcan
al aire libre durante el tiempo en el que
los mosquitos son más activos y están
picando, es decir, desde el atardecer hasta
el amanecer.
Poner repelentes de insectos a disposición
de los trabajadores.
Recomendar a los que trabajan al aire
libre que usen camisas de manga larga,
pantalones largos y medias cuando sea
posible.
�Recomendaciones dadas por las autoridades
sanitarias americanas para proteger contra el VNO a
las personas que trabajan al aire libre
(http://
www.cdc.gov//spanish/
http://www.cdc.gov
spanish/niosh/
niosh/factfact-sheets/
sheets/factfact-sheetsheet-westNile2.
westNile2.html)
html)
(cont.)
Eliminar tantos sitios de agua estancada como
sea posible a fin de disminuir las poblaciones de
mosquitos. El agua que dura estancada por más
de cuatro días provee un sitio para que los
mosquitos se reproduzcan.
– Cambiar el agua dos veces por semana en los
bebederos para animales, aves y cualquier otro
recipiente que contenga agua.
– Colocar un aparato de aireación en los
estanques y jardines de agua para mantener el
agua circulando o poner peces que se coman
las larvas y los mosquitos adultos.
�Recomendaciones dadas por las autoridades
sanitarias americanas para proteger contra el VNO a
las personas que trabajan al aire libre
(http://
www.cdc.gov//spanish/
http://www.cdc.gov
spanish/niosh/
niosh/factfact-sheets/
sheets/factfact-sheetsheet-westNile2.
westNile2.html)
html)
(cont.)
– Retirar las cubiertas de auto descartadas del sitio de
trabajo.
– Poner boca abajo, cubrir o retirar equipos como
cobertores, baldes, barriles, carretillas y recipientes
a fin de evitar la acumulación de agua.
– Colocar aberturas de drenaje en los recipientes en
los que se acumule el agua y que no puedan ser
descartados.
– Limpiar las canaletas de desagüe.
– Retirar con frecuencia deshechos como hojas, ramas
y basuras de las zanjas.
– Rellenar o vaciar los surcos y otras áreas que
acumulen agua.
�El SENASA se encuentra coordinando con
otros Organismos, Entidades y Autoridades
Competentes tanto del quehacer Nacional
como Provincial, las acciones tendientes a
la prevención y control del VNO en seres
humanos y animales susceptibles de la
República Argentina, lo que podrá ser
consultado en las respectivas páginas web.
�FIN DE LA PRESENTACIÓN
�
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2006
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Dirección Nacional de Sanidad y Calidad Agroalimentaria
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Es
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Monografía
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B.S.0035
Abstract
A summary of the resource.
Este trabajo está destinado a presentar una recopilación de la información disponible en el mundo sobre la enfermedad denominada VIRUS DEL NILO OCCIDENTAL (VNO), que puede afectar a los animales y a los seres humanos, de reciente hallazgo y diagnóstico en nuestro país en 2 (dos) equinos nativos de la República Argentina.
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https://biblioteca.senasa.gob.ar/files/original/532c91e7da7e8a3960b4455c14b1f51a.pdf
45927513c980086b9a38b9b19603234a
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ARTERITIS VIRAL EQUINA. MARZO 2003
Manual de Procedimientos Arteritis Viral Equina
Prefacio:
El presente manual de procedimientos fue redactado por la Dirección de
Luchas Sanitarias, a cargo del Dr. Marcelo de la Sota y el Programa de
Enfermedades de los Equinos a cargo del Dr. Raúl González, el mismo cuenta
con la revisión de la Comisión Nacional de Enfermedades de los Equinos
Finalidad
El presente manual se dirige principalmente a los Veterinarios Acreditados,
privados, sectores interesados en la producción equina y a las autoridades
provinciales, municipales y nacionales locales encargadas de las acciones
sanitarias contra la AVE; por tanto, se centra en los principios de la
enfermedad, descripción, aplicaciones de las pruebas de laboratorio, en la
evaluación de sus resultados, atención de sospechas, focos y casos de
infección.
Arteritis Viral Equina
Características
La arteritis viral equina(AVE) es una enfermedad vírica general y febril de los
équidos. A pesar de su elevada morbilidad, exhibe una baja mortalidad (inferior
al 5%). El plazo de incubación es de 3-14 días. La OIE determina que el
período de infecciosidad de la arteritis viral equina es de 28 días para las
yeguas y los caballos castrados
Esta enfermedad reviste especial importancia en las yeguadas, puesto que en
ellas pueden abortar hasta el 80% de todas las yeguas gestantes del efectivo.
Sin embargo, predominan generalmente los cursos latentes, con apariciones
esporádicas de la enfermedad en animales aislados.
Presentación
El virus está presumiblemente muy difundido. Se ha informado sobre la
existencia de casos en USA, Europa (salvo Alemania, Checoslovaquia,
Hungría, Rumania y Bulgaria), India y algunos países africanos. Japón y
Australia se consideran libres de esta enfermedad.
En Argentina, sobre fines de 1997 se comienza a realizar la contraprueba
serológica de equinos y material reproductivo importados, y en abril de 1998 se
detecta un semen importado positivo, lo que derivó en la destrucción del mismo
y la intervención oficial de los dos haras de destino involucrados.
En octubre de 1998, ingresan tres padrillos importados certificados negativos
en origen, resultando en las contrapruebas uno de ellos positivo serológico. Se
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interviene oficialmente, el establecimiento - único afectado en todo el país - fue
interdictado y puesto bajo saneamiento oficial.
En este contexto, tres padrillos de este establecimiento fueron confirmados por
prueba biológica como eliminadores y fueron retirados de la actividad
reproductiva.
Como resultado de la investigación epidemiológica se estableció que el posible
ingreso del virus al establecimiento se produjo a través de un equino importado
en el año 1997 que fue incorporado al plantel de sementales. El virus es aislado
en diciembre de 2001 del semen conservado de uno de los padrillos
eliminadores.
La enfermedad solo ha sido detectada en un número reducido de
establecimientos y solo pudo confirmarse en ellos hallazgos serológicos sin
síntomas reproductivos ni respiratorios
Sintomatología
Sus síntomas principales son: apatía, conjuntivitis, flujo ocular y nasal seroso,
edema en el bajo vientre y extremidades, y aborto en las yeguas gestantes.
Estos síntomas se asemejan a los de la rinoneumonitis, si bien aparecen más
marcados en el animal afectado
La AVE cursa generalmente en forma benigna, con poca o ninguna fiebre,
evoluciona espontáneamente sin dejar secuelas y deja inmunidad duradera: el
equino que enfermó una vez ya no vuelve a contagiarse. En razón de los
síntomas leves es común que pase desapercibida en animales a campo e
incluso raramente se diagnostica en equinos bajo cuidados intensivos, los
síntomas desaparecen en menos de 2 semanas.
La enfermedad preocupa pues puede tener consecuencias graves para la
reproducción: si una yegua enferma contagia a sus congéneres preñadas éstas
pueden abortar. Fue justamente por esta grave complicación que la arteritis
viral fue descubierta y definida en USA: ocurrieron “tormentas de abortos” en
haras de trotadores americanos y luego de SPC y en ellos se aisló e identificó
al virus causante, responsable de los abortos.
No siempre la infección de la yegua preñada produce abortos, y cuando se
producen, generalmente ocurren en yeguas que tienen 3 a 10 meses de
preñez. En nuestro país, en los haras en los que se registraron hallazgos
serológicos no se registraron descensos en el porcentaje de potrillos nacidos.
En Europa tampoco acusan tener abortos atribuibles al virus de la AVE;
tampoco en Norte América el virus produce siempre abortos.
Diagnóstico
Atendiendo a las manifestaciones clínicas, la AVE puede diferenciarse bastante
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bien de las afecciones respiratorias de origen vírico que afectan al caballo
(entre otros signos, son patognomónicos los edemas de párpados y
extremidades), pero sólo con dificultad de la forma abortiva de la
rinoneumonitis.
Por ello, el diagnóstico de «arteritis infecciosa» del caballo se considera
únicamente asegurado cuando se evidencia la presencia del virus causal, el
cual es vertido al exterior con las secreciones serosas durante las fases agudas
de la enfermedad.
La arteritis viral se diagnostica con facilidad en el laboratorio con la prueba de
seroneutralización que puede determinar si un animal ha tenido contacto con el
virus. Esta prueba mide la presencia de anticuerpos contra el virus, que son
justamente los que producen la protección contra una nueva infección. Así, si el
caballo se contagió y curó, queda positivo en esa prueba, posiblemente para
toda la vida, y él título de anticuerpos queda alto y constante; lo que significa
que el equino está inmune y no volverá a enfermar.
Si está recién contagiado y se hace una prueba antes del contagio que resulta
negativa, pero 2 o más semanas después se hace positiva, el animal ha
enfermado recientemente; por esto cuando se importan caballos éstos deben
permanecer 3 semanas en el lazareto, para descartar que se hayan contagiado
poco antes del viaje. En países endémicos, si el animal fue vacunado, la
prueba arroja resultado positivo, pero él título es generalmente más bajo y
puede descender con el tiempo si no se lo revacuna.
Un padrillo serológicamente positivo puede ser portador o no. Si lo es, esto
debe saberse antes de que sirva a una sola yegua y la contagie y, a través de
ella, a muchos caballos más: esto se determina fácilmente buscando la
presencia del virus en el semen, por PCR o aislamiento del virus o por medio
de una prueba biológica, o sea, dando servicio a dos yeguas con serología
negativa y repitiendo la prueba serológica 3 o 4 semanas después en esas
yeguas: si siguen siendo negativas, significa que no se infectaron porque el
padrillo no elimina virus en el semen. Los brotes de AVE que se producen en
un haras a partir de uno o más servicios de un padrillo portador y eliminador,
muchas veces desaparecen y se extinguen por si solos en poco tiempo.
Etiología
El virus RNA de la AVE antes se lo clasificaba como Togaviridae, ahora como
Orden Nidovirales, Familia arteriviridae, Género arterivirus. Este virus parece
ser serológicamente uniforme y genéticamente estable. Exhibe sólo escasa
resistencia frente a las influencias ambientales y es sensible a todos los
desinfectantes comerciales ordinarios. Algunas de las cepas de virus que
actúan son más agresivas que otras.
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Reservorios del virus:
El virus causal de la AVE está muy adaptado a los équidos y tiene su reservorio
exclusivamente en las poblaciones hospedadoras infectadas. Por ello, la
principal fuente de contagio es el caballo excretor de virus.
Transmisión:
La transmisión se produce únicamente por contacto directo (luchas por
establecer el dominio del grupo; coito) y aerógeno (infección por gotitas).
Los insectos hematófagos no son capaces de transmitir las altas dosis
necesarias para que se produzca el contagio, por lo que carecen de
significación en el proceso epizoótico de la AVE.
Los brotes de AVE se producen porque la enfermedad se transmite por vía
aérea como otras enfermedades respiratorias, es decir de un animal a otro con
el cual convive y a veces, indirectamente, con los que comparte bebederos,
comederos, embocaduras, camas, caballerizo u otros elementos; la infección
se transmite durante el periodo de incubación y de enfermedad clínica.
De esta manera, una yegua que ha sido servida por un padrillo eliminador
puede contagiar a todos los animales de la manada, incluyendo potrillos y
potrancas, y también puede contagiar a animales de lotes vecinos o a caballos
de trabajo o incluso en training. Esta es la forma en que una yegua puede
contagiar a un padrillo, si, por ejemplo, se echa en una manada con padrillo,
una yegua que ha sido servida poco tiempo antes por un padrillo portador y que
tiene la enfermedad activa en el momento de entrar a la manada. Es decir, si
un padrillo contagia a una yegua, ésta puede contagiar a todos los equinos del
establecimiento, de cualquier edad o sexo, sin que medie acto sexual alguno.
Población hospedadora:
Son susceptibles los équidos de todas las edades y sexos. Tanto la superación
de la enfermedad como las infecciones latentes generan una sólida inmunidad
de varios años de duración, que incluso puede persistir toda la vida. Esta
inmunidad protege frente a una nueva enfermedad, pero no garantiza que los
animales convalecientes estén exentos de virus.
Estado de portador
En los padrillos que enferman luego de la pubertad (es decir, de un año o más
de edad), el virus puede quedarse acantonado y viable en las glándulas
sexuales accesorias, eliminarse con el semen y contagiar así a una yegua
durante el servicio; es decir, el padrillo se convierte en un portador sano y
puede contagiar, pero sólo por el acto sexual y solamente a las yeguas que no
han padecido la enfermedad anteriormente.
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En razón de lo anterior, se la considera una enfermedad venérea, pero no lo es
realmente en todo el sentido etimológico de la palabra ya que la hembra no
contagia al macho por el acto sexual. Nunca se encontró virus persistente en
las yeguas, ni en los machos castrados o los machos enteros que se
contagiaron antes de la madurez sexual.
No todos los machos serológicamente positivos, es decir que se contagiaron y
curaron, son necesariamente eliminadores. Por de pronto, la persistencia del
virus depende de la presencia de testosterona, hormona que produce el
testículo a partir de la pubertad, por lo que los potrillos que enferman antes del
año de edad no se convierten normalmente en portadores.
Entre los machos enteros que enferman después de la pubertad, mas del 40 o
60 % de ellos no quedan como portadores; no se ha demostrado hasta ahora
que un padrillo que no elimina virus enseguida después de la enfermedad lo
elimine un tiempo después, pero no se puede estar absolutamente seguro de
que esto sea así.
Un padrillo portador elimina cantidades muy grandes de virus en cada
eyaculación y contagia al menos al 85% de las yeguas que sirve, salvo que
sean inmunes. Pese a que puede haber ligeras variaciones en la cantidad de
virus que se elimina según la época del año, un padrillo-portador contagia
durante todo el año. Además, el virus de la AVE resiste el congelamiento: el
semen congelado de un padrillo portador contagia tanto como el semen fresco.
Se ha discutido sobre si los padrillos que si eliminan virus inmediatamente
después del contagio pueden llegar a hacerse no infectantes con el tiempo. Si
bien se demostró que algunos padrillos eliminan virus por un período muy
corto, otros lo hacen permanentemente durante toda la vida por lo que hasta
tanto existan más pruebas al respecto todo padrillo positivo debe considerarse
de riesgo.
Yeguas Positivas
Las yeguas positivas, ya sean importadas o provenientes de otro predio,
significa que han enfermado y curado y por lo tanto no se va a volver a
infectar, ni siquiera si la sirve un padrillo portador y no va a contagiar a un
padrillo sano ni a sus compañeras de manada.
Estas son las yeguas que se utilizan en países endémicos para hacer servir
con padrillos portadores sanos. Tampoco debemos tener miedo a su potrillo,
aunque sea hijo de una madre positiva o de un padrillo portador: el contagio “in
útero” es rarísimo.
Si hemos enviado una yegua a servicio a un haras o a un centro de
inseminación en el que luego se detectó un brote, sí debemos tomar
precauciones a su regreso, en realidad son las precauciones que deberíamos
tornar con todos los animales que ingresan o reingresan a un predio, cualquiera
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fuera su origen, efectuando una cuarentena con él o los equinos aislados en un
corral o piquete propio y realizando doble prueba serológica con dos semanas
de intervalo entre ellas para verificar paridad o descenso de títulos entre
ambas.
Las yeguas negativas, que provienen de un haras en el cual sospechamos que
puede haber virus activo o latente son las más peligrosas. A estas debemos
exigirle una cuarentena con dos pruebas separadas por dos semanas, en que
la segunda no tenga un título mayor que la primera.
Cuando en los casos descriptos, el título esta subiendo, quiere decir que la
yegua se contagió recientemente. Entonces hay que esperar otras dos
semanas, repetiendo hasta que se estabilice el título, lo que nos asegura que
ya está curada y que no va a contagiar más. Es decir que ante cualquier
sospecha debemos actuar como se hace con los caballos que se importan: si
son negativos, dos pruebas separadas por 15 días, ambas negativas. Si son
positivos, una segunda prueba, que debe dar un resultado igual o menor que el
primero, lo que nos asegura la curación e inmunidad del animal.
Prevención y lucha
Cuando se producen movimientos de caballos deportivos o reproductores que
van más allá de las fronteras, los efectivos equinos libres de AVE se ven
especialmente amenazados por animales con la infección latente. Por ello, la
finalidad de las medidas de lucha contra la AVE es reducir sobre todo el riesgo
de que se introduzca el virus en la población, así como aislar de manera inmediata y radical cualquier brote de AVE que se produzca.
La República Argentina está en condiciones de sostener el sistema de
declaración obligatoria y monitoreo permanente y de garantizar a sus países
compradores la ausencia de riesgo sanitario para lo cual se cumple con la
aplicación de las medidas previstas en los artículos 3.4.10.2 y 3.4.10.3 del
Capítulo 3.4.10, parte 3, del Código Zoosanitario Internacional (ver más
adelante).
Medidas a adoptar en los brotes de arteritis infecciosa
Cuando aparezcan manifestaciones clínicas que permiten sospechar la
existencia de AVE, se aislará de inmediato el efectivo y se procurará aclarar el
diagnóstico por procedimientos anatomopatológicos, virológicos y serológicos.
Debido a la baja contagiosidad de la AVE, al contrario de lo que sucede en la
influenza A y en la rinoneumonitis, resulta conveniente en todos los casos
efectuar rápidamente el aislamiento de los caballos enfermos y de los animales
que estuvieron en contacto inmediato con ellos.
La limpieza y desinfección a fondo de las cuadras ocupadas por los équidos
enfermos, acompañadas de una desinfección intermedia diaria en la zona de
aislamiento, evitan la difusión del virus en el seno del establecimiento. El grupo
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de animales aislados será cuidado por personal independiente. Reduciendo al
mínimo los esfuerzos corporales del núcleo de caballos enfermos, creando
unas condiciones ambientales óptimas y adoptando medidas generales de
higiene veterinaria, pueden disminuirse tanto la predisposición y exposición de
la fracción no enferma de la población, llegándose a un momento en el que ya
no aparecen más casos.
El secuestro de los efectivos y el aislamiento de los animales convalecientes
sólo pueden levantarse como mínimo 6 semanas después de desaparecer la
fiebre en el último caso clínico.
No obstante lo dicho, dependiendo del número de animales, el manejo, la
cercanía entre lotes, las oportunidades de infección entre grupos de diferentes
edades o sexos y, por sobre todo, del movimiento interno de animales en el
haras, el virus puede ir pasando lentamente entre individuos o grupos de
individuos y quedar activo en el campo durante un tiempo más o menos
prolongado.
Para evitar esto, cuando hubo un brote, lo mejor es, a. realizar una primera
prueba serológica en todos los equinos del predio dentro de un plazo no mayor
a 30 días corridos, b. de acuerdo a lo hallado separar los animales en grupos
de positivos y negativos y c. impedir en este período todo movimiento interno
de equinos, no sólo de los que entran o salen, sino de los grupos entre ellos y
de un potrero a otro. Si después de seis semanas, se realizan nuevos estudios
serológicos en los animales previamente negativos y no ha aparecido un caso
nuevo, es decir ninguno de los negativos se hizo positivo, es posible que el
virus haya desaparecido.
La única manera de asegurarse de que un brote se ha extinguido
definitivamente en un campo, es controlar serológicamente en forma repetida a
los animales y asegurarse de que no están apareciendo casos nuevos. Hay
que controlar a todos los animales, especialmente a todos los machos, nacidos
o criados en el haras, hasta asegurarse de que no hay casos nuevos, y eliminar
constantemente a los machos enteros positivos.
Acciones preventivas
9 Conozca la enfermedad. Sepa qué es la AVE y como se transmite. Se dará
cuenta que puede ser fácilmente controlada si se toman ciertas
precauciones y se actúa con seriedad y honestidad.
9 Manténgase informado: averigüe cuáles son los haras o establecimientos en
los que hay o hubo virus activo y si se ha eliminado el brote o no.
9 Realice controles periódicos entre sus animales.
9 Controle anualmente sus padrillos antes de dar el primer servicio de la
temporada, aunque SENASA sólo lo exige al presentar la declaración de
servicios.
9 No use ninguna partida de semen importado que no haya sido debidamente
controlada por SENASA.
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9 Recuerde que un padrillo positivo contagia a las hembras por vía sexual,
pero la enfermedad se disemina después por vía aérea.
Qué hacer si quiere servir su yegua con un padrillo de otro haras.
Debe asegurarse no sólo de que el padrillo sea negativo sino también de que
ese haras no tuvo nunca un brote de AVE o que, si lo ha tenido, éste a sido
perfectamente controlado y no siguen apareciendo animales positivos.
Si se tienen dudas, y si tiene la infraestructura necesaria, puede adquirirse el
semen del padrillo que interesa y realizar la inseminación artificial en el campo,
pero previamente debe realizarse una prueba biológica con el semen adquirido
dando servicio a dos yeguas con serología negativa y repitiendo la prueba
serológica 4 semanas después en esas yeguas que deberán seguir siendo
negativas.
Que hacer si quiere enviar su yegua a un centro de inseminación o
transferencia.
Estos centros ponen en contacto a muchas yeguas y pueden ser el origen de la
diseminación de la enfermedad. Debe asegurarse de que en ese centro no
utilicen semen de padrillos positivos ni vayan yeguas provenientes de un haras
con virus activo. De todas maneras, al volver del centro se mantendrá aislada y
se le realizarán dos pruebas serológicas separadas por 14 días. Si ambas son
negativas o con títulos iguales o decrecientes se puede juntar la yegua con sus
compañeras. Si la segunda tiene un título más alto que la primera, se dejará la
yegua aislada y se realizarán nuevos controles hasta que el título no suba más.
Qué hacer si le envían yeguas a servir a su haras.
Si la yegua tiene un resultado positivo en un análisis que tenga más de un mes
de realizado no existe riesgo sanitario. Esta yegua ya enfermó y curó y no va a
volver a enfermar ni va a contagiar a otras yeguas ni al padrillo del
establecimiento. Ante la duda, se solicitará un segundo análisis, el que debe
mostrar titulo igual o menor que el primero.
Si la yegua es negativa a una sola prueba, en todos los casos se debe exigir
una segunda prueba separada por 15 días y confirmar que sigue siendo
negativa.
Medidas ante la sospecha de infección (hallazgo de serología)
9 Notificar al veterinario local de la Dirección Nacional de Sanidad Animal
9 Interdicción del predio.
9 Inmovilizar la totalidad de los equinos dentro del predio, aislar a los
padrillos de todos los otros caballos, machos o hembras.
9 Realizar el control serológico del total de los animales.
9 Efectuar la correspondiente investigación epidemiológica.
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Procedimiento y Acciones
Se indican los procedimientos y acciones que deberán llevarse a cabo ante la
detección de un equino positivo serológico a la AVE:
1) INTERDICCIÓN preventiva del establecimiento bajo acta, con estricta
prohibición de todo tipo de ingresos y egresos de equinos.
2) PADRILLOS: La totalidad de los padrillos serán sangrados oficialmente de
inmediato (dos muestras de suero por animal con intervalo mínimo de 14 días)
y los sueros remitidos exclusivamente al Laboratorio de SENASA. Los positivos
serológicos (a una prueba y cualquier título), serán retirados de su actividad
reproductiva y sometidos dentro de los 30 días a una prueba biológica (servicio
a dos yeguas seronegativas con tomas de muestras antes y a los 28 días del
servicio) ó de PCR en semen.
3) RELEVAMIENTO Y ENCUESTA:
a) IDENTIFICACIÓN: Todas las existencias equinas deberán estar identificadas
o identificarse de manera fehaciente, debiendo controlarse periódicamente la
existencia total y las filiaciones (en forma aleatoria) mientras dure la
interdicción.
b) ORIGEN DE LOS INDIVIDUOS: el propietario o responsable a cargo, deberá
proveer información de cada equino residente respecto de:
I. El origen de cada equino (nacido en el establecimiento o en su defecto
procedencia y año de ingreso).
II. Si es producto de servicio natural (aclarar: padrillo propio o de terceros) o
de inseminación artificial (en este caso, si el semen: nacional o
importado).
III. Identificación del padre o dador seminal.
c) MOVIMIENTOS realizados en los últimos 6 (SEIS) meses: Se informará,
los ingresos y egresos registrados en la oficina local si los hubiere y los que
declare el propietario o responsable.
d) ANTECEDENTES SANITARIOS: recabar información sobre cualquier
registro de casos clínicos en los últimos 6 (seis) meses (con particular
atención en antecedentes de cuadros respiratorios o reproductivos). De
constatarse signos/síntomas, se deberá tomar contacto con los laboratorios
habilitados para la adecuada remisión de muestras específicas (tejidos
fetales, hisopados, etc.).
4) FIN DE LA INTERDICCIÓN:
Se basará en los resultados de un doble sangrado de la totalidad de los
equinos en el cual no se registre ningún caso de seroconversión. El
momento para la recolección de los sueros será planificada por el
propietario y deberá ser realizada dentro de un período de 30 días corridos
(con 15 días de diferencia entre extracciones) y ambos análisis efectuarse
en un mismo laboratorio habilitado a elección del propietario. Estas pruebas
serán cargo del propietario. Las extracciones y la remisión de las muestras
serán fiscalizadas oficialmente.
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Obtenidos los resultados, la Oficina local los remitirá a la Dirección de
Luchas Sanitarias quien comunicará el fin de la interdicción si corresponde.
4) EGRESOS OCASIONALES: hasta tanto se cumpla con la condición anterior
y durante el tiempo que dure la interdicción, solo se autorizarán egresos de
equinos lo que se hará bajo las siguientes pautas:
a) Solicitud por escrito a la Oficina Local con treinta días de anticipación
expresando los motivos, la que deberá ser autorizada por la Dirección de
Luchas Sanitarias.
b) Autorizado el egreso, se deberá expedir una Certificación conjunta del
veterinario oficial y del veterinario responsable del establecimiento en
laque conste:
I. Aislamiento riguroso de los equinos. Para esto se asignará un corral/
potrero situado a más de 100 metros para realizar la cuarentena.
II. Que el lote cumplió en forma efectiva con un período mínimo de
aislamiento de 30 días, período dentro del cual fueron extraídas las dos
muestras de suero por equino (con intervalo mínimo de 14 días) para
diagnóstico de Arteritis Viral.
III. Que no han manifestado ningún signo / síntoma de enfermedad infecto
contagiosa, en los últimos 30 días los equinos del lote
IV. Que la curva térmica individual, se mantuvo dentro de parámetros
fisiológicos normales y fue realizada diariamente durante 14 días
previos al despacho
V. Ningún equino de la totalidad del lote presentó incrementos de títulos
mayores a 2 (dos) diluciones en ambas pruebas.
VI. En caso de ser padrillos solo podrán egresar con resultado negativo en
ambas pruebas.
Laboratorios Habilitados Para Arteritis Viral Equina:
Laboratorio SENASA, Virología: Tel 4836-0062/1114, Fax 4836-1995/0065
e-mail: dilab@inea.com.ar. Contacto: Dra. Mónica Ayerbe.
2) INTA – Castelar: Tel 4621-1447, Fax 4621-1743
Contacto: Dra. María Barrandeguy. Area de Virología.
e-mail: mbarrandeguy@cicv.inta.gov.ar
3) FCV de la Universidad de La Plata, Virología: Tel 0221-4236664,
Fax 0221/-4253276. Contacto: Dr. Edgardo Nosetto.
e-mail: nosetto@fcv.medvet.unlp.edu.ar
4) CEVAN – CONICET: Tel 4856-4495, Fax 4856-4495.
e-mail: jltcevan@datamar.com.ar. Contacto: Dra. Marcela Iglesias.
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Legislación aplicable:
RESOLUCIÓN SENASA N° 434/01
BUENOS AIRES, 2 de octubre de 2001
VISTO el expediente Nº 10597/2001 del registro del SERVICIO NACIONAL DE
SANIDAD Y CALIDAD AGROALIMENTARIA, y
CONSIDERANDO:
Que por el mencionado expediente la Dirección Nacional de Sanidad Animal
propicia la continuación y adopción de nuevas acciones de Vigilancia
Epidemiológica y Monitoreo Epidemiológico Permanente, con respecto a la
Arteritis Viral Equina.
Que oportunamente se cumplimentó lo dispuesto por la Resolución Nº 603 del
10 de junio de 1999 del SERVICIO NACIONAL DE SANIDAD Y CALIDAD
AGROALIMENTARIA, efectuada en equinos machos enteros y sólo sobre
algunas razas.
Que está comprobado epidemiologicamente que los padrillos actúan como
portadores asintomáticos y que, en esta condición, son la principal fuente de
diseminación de la enfermedad.
Que los resultados del relevamiento serológico efectuado, determinaron la
inexistencia de reactores en el grupo testeado, pero que aún persiste la
probabilidad de ingreso del virus de la Arteritis Viral Equina al país, como así
también que otros padrillos importados podrían haber estado naturalmente
expuestos.
Que la Comisión Nacional de Sanidad Equina, a través de sus representantes,
ha manifestado preocupación y ha solicitado la continuación de las acciones de
Vigilancia Epidemiológica activa, incluyendo un amplio y detallado diagnóstico
de situación, que complemente lo ya actuado al respecto.
Que la Dirección de Asuntos Jurídicos ha tomado la intervención que le
compete.
Que la Comisión Nacional de Sanidad Equina, creada por Resolución Nº 80 del
19 de enero de 1999 del SERVICIO NACIONAL DE SANIDAD Y CALIDAD
AGROALIMENTARIA, se ha expresado favorablemente sobre el particular.
Que corresponde en consecuencia dictar las normas que permitan continuar el
conjunto de acciones iniciadas que propendan al cumplimento del objetivo
citado en el primer considerando.
Que el suscripto es competente para resolver en esta instancia de conformidad
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con las atribuciones conferidas por el artículo 8º, inciso e) del Decreto Nº 1585
de fecha 19 de diciembre de 1996, modificado por su similar Decreto Nº 394 del
1º de abril de 2001.
Por ello,
EL PRESIDENTE DEL SERVICIO NACIONAL
DE SANIDAD Y CALIDAD AGROALIMENTARIA
RESUELVE:
ARTICULO 1º - Las entidades privadas responsables del registro de las
distintas razas equinas, exigirán a las personas físicas o jurídicas, responsables
o propietarias de padrillos o su material seminal, sea éste de equinos nativos o
semen importado, el diagnóstico de laboratorio que acredite el resultado
negativo a una prueba de seroneutralización a la enfermedad "Arteritis Viral
Equina", como condición previa al registro anual de servicios.
ARTICULO 2º - En los casos en que un padrillo dador del material seminal
resultara positivo a la prueba de seroneutralización y, a efectos de comprobar
que no elimina el virus de la Arteritis Viral Equina por semen, se realizará bajo
supervisión oficial una prueba biológica consistente en el servicio (natural o
artificial) de DOS (2) yeguas con resultado negativo a la prueba de
seroneutralización, en las que se deberá observar igual título serológico en los
resultados de las pruebas efectuadas a los VEINTIOCHO (28) días de servidas
o inseminadas.
ARTICULO 3º - Si el servicio que se registra fuera realizado con semen
importado ingresado al país con anterioridad al 31 de diciembre de 1997 o
proviene de padrillos nativos fallecidos, se efectuará la prueba biológica en los
términos descriptos en el artículo precedente.
ARTICULO 4º - La remisión de muestras de suero o semen a los laboratorios,
se efectuará en el formulario que, como Anexo, forma parte de la presente
resolución. En el formulario y a título de Declaración Jurada, certificarán con su
firma, sello aclaratorio y número de matrícula, tanto el profesional veterinario
que extrajo la muestra, como el laboratorista que certifica el resultado
diagnóstico y, asimismo el propietario o responsable del equino, dando fe de
los datos consignados.
ARTICULO 5º - Los únicos laboratorios habilitados para realizar las pruebas de
seroneutralización serán los expresamente autorizados por la Dirección de
Laboratorios y Control Técnico de este Servicio Nacional, para el diagnóstico
específico de esta enfermedad.
ARTICULO 6º - Los responsables de los laboratorios remitirán a la Dirección
Nacional de Sanidad Animal del SERVICIO NACIONAL DE SANIDAD Y
CALIDAD AGROALIMENTARIA, las copias de las certificaciones emitidas con
resultado negativo en forma mensual, mientras que los diagnósticos positivos
que eventualmente surjan deberán ser notificados en forma fehaciente, a la
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�ARTERITIS VIRAL EQUINA. MARZO 2003
misma dependencia oficial, dentro de las SETENTA Y DOS (72) horas
subsiguientes a su hallazgo.
ARTICULO 7º - Los padrillos que resulten positivos a la prueba de eliminación
de virus por semen, serán retirados de la actividad reproductiva, pudiendo el
propietario optar por el sacrificio o castración y, de tratarse de material seminal
infectante, se procederá a la destrucción de la totalidad de las existencias del
mismo. Estas acciones, de corresponder, serán llevadas a cabo bajo la
supervisión y registro de personal afectado al SERVICIO NACIONAL DE
SANIDAD Y CALIDAD AGROALIMENTARIA.
ARTICULO 8º - El incumplimiento de las obligaciones emergentes de las
normas establecidas en la presente resolución, será pasible de las sanciones
previstas en el artículo 18 del Decreto Nº 1585 del 19 de diciembre de 1996 y
concordantes.
ARTICULO 9º - La presente resolución entrará en vigencia a partir de su
publicación en el Boletín Oficial.
ARTICULO 10. - Comuníquese, publíquese, dése a la Dirección Nacional del
Registro Oficial y archívese.
Bernardo G. Cané
RESOLUCION Nº 434/01
13
�ARTERITIS VIRAL EQUINA. MARZO 2003
Código Zoosanitario Internacional - OIE:
CAPÍTULO 2.5.10.
ARTERITIS VIRAL EQUINA
Artículo 2.5.10.1.
El período de infecciosidad de la arteritis viral equina es de 28 días para las
yeguas y los caballos castrados. Se comprobará la condición sanitaria de los
sementales seropositivos para cerciorarse de que no segregan el virus de la
arteritis viral equina con el semen.
Las normas para las pruebas de diagnóstico y las vacunas están descritas en el
Manual.
Artículo 2.5.10.2.
Las Administraciones Veterinarias de los países importadores deberán exigir:
para los équidos machos no castrados importados temporalmente para la
reproducción o importados definitivamente
la presentación de un certificado veterinario internacional en el que conste que
los animales:
1.
no presentaron ningún signo clínico de arteritis viral equina el día
del embarque ni durante los 28 días anteriores al embarque;
2.
resultaron negativos a dos pruebas de diagnóstico para la
detección de la arteritis viral equina efectuadas durante los 28 días
anteriores al embarque a partir de muestras sanguíneas que se
tomaron con más de 14 días de intervalo, o
3.
resultaron negativos a una prueba de diagnóstico para la detección
de la arteritis viral equina efectuada a partir de una muestra
sanguínea que se tomó entre los 6 y los 12 meses de edad, y
fueron inmediatamente vacunados contra la enfermedad y
revacunados periódicamente, o
4.
resultaron positivos a una prueba de diagnóstico para la detección
de la arteritis viral equina y:
a)
fueron acoplados a dos yeguas que resultaron negativas a dos
pruebas de diagnóstico efectuadas a partir de muestras
sanguíneas; la primera muestra sanguínea se tomó el día de la
monta y la segunda 28 días después,
b)
o su semen, tomado durante los 28 días anteriores al
14
�ARTERITIS VIRAL EQUINA. MARZO 2003
embarque, resultó negativo a una prueba de aislamiento del
virus (actualmente en estudio).
Artículo 2.5.10.3.
Las Administraciones Veterinarias de los países importadores deberán exigir:
para los équidos machos no castrados importados temporalmente para fines
distintos de la reproducción, y para équidos que no sean machos no castrados
la presentación de un certificado veterinario internacional en el que conste que
los animales:
1.
no presentaron ningún signo clínico de arteritis viral equina el día
del embarque ni durante los 28 días anteriores al embarque;
2.
presentaron ausencia de anticuerpos o estabilidad o disminución de
los títulos de anticuerpos en dos pruebas de diagnóstico efectuadas
durante los 28 días anteriores al embarque a partir de muestras
sanguíneas que se tomaron con más de 14 días de intervalo;
3.
resultaron negativos a una prueba de diagnóstico para la detección
de la arteritis viral equina efectuada a partir de una muestra
sanguínea que se tomó entre los 6 y los 12 meses de edad, y
fueron inmediatamente vacunados contra la enfermedad y
revacunados periódicamente.
Artículo 2.5.10.4.
Las Administraciones Veterinarias de los países importadores deberán exigir:
para el semen fresco
la presentación de un certificado veterinario internacional en el que conste que
los sementales:
1.
permanecieron, durante los 30 días anteriores a la toma del semen,
en una explotación en la que ningún équido presentó signos
clínicos de arteritis viral equina durante ese período;
2.
no presentaron ningún signo clínico de arteritis viral equina el día
de la toma del semen;
3.
resultaron negativos a una prueba de diagnóstico para la detección
de la arteritis viral equina efectuada a partir de una muestra
sanguínea que se tomó entre los 6 y los 12 meses de edad, y
fueron inmediatamente vacunados contra la enfermedad y
revacunados periódicamente, o
4.
resultaron negativos a una prueba de diagnóstico para la detección
15
�ARTERITIS VIRAL EQUINA. MARZO 2003
de la arteritis viral equina efectuada durante los 14 días anteriores a
la toma del semen a partir de una muestra sanguínea y no fueron
utilizados para la monta natural entre el momento de la toma de
sangre y el de la toma del semen, o
5.
resultaron positivos a una prueba de diagnóstico para la detección
de la arteritis viral equina, y:
a)
fueron acoplados, durante el año anterior a la toma del semen,
a dos yeguas que resultaron negativas a dos pruebas de
diagnóstico efectuadas a partir de muestras sanguíneas; la
primera muestra sanguínea se tomó el día de la monta y la
segunda 28 días después,
b)
o su semen, tomado durante el año anterior a la toma del
semen destinado a la exportación, resultó negativo a una
prueba de aislamiento del virus (actualmente en estudio).
Artículo 2.5.10.5.
Las Administraciones Veterinarias de los países importadores deberán exigir:
para el semen congelado
la presentación de un certificado veterinario internacional en el que conste que
los sementales:
1.
no presentaron ningún signo clínico de arteritis viral equina el día
de toma del semen;
2.
resultaron negativos a una prueba de diagnóstico para la detección
de la arteritis viral equina efectuada a partir de una muestra
sanguínea que se tomó más de 14 días después de la toma del
semen, o
3.
resultaron negativos a una prueba de diagnóstico para la detección
de la arteritis viral equina efectuada a partir de una muestra
sanguínea que se tomó entre los 6 y los 12 meses de edad, y
fueron inmediatamente vacunados contra la enfermedad y
revacunados
periódicamente,
o
4.
resultaron positivos a una prueba de diagnóstico para la detección
de la arteritis viral equina y:
a)
fueron acoplados, durante el año anterior a la toma del semen
o lo antes posible después de dicha toma, a dos yeguas que
resultaron negativas a dos pruebas de diagnóstico efectuadas
a partir de muestras sanguíneas; la primera muestra
sanguínea se tomó el día de la monta y la segunda 28 días
16
�ARTERITIS VIRAL EQUINA. MARZO 2003
después,
b)
o su semen, tomado durante el año anterior a la toma del
semen destinado a la exportación, o el mismo semen
destinado a la exportación, resultó negativo a una prueba de
aislamiento del virus (actualmente en estudio).
17
�
Dublin Core
The Dublin Core metadata element set is common to all Omeka records, including items, files, and collections. For more information see, http://dublincore.org/documents/dces/.
Title
A name given to the resource
Publicaciones SENASA
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Title
A name given to the resource
Manual de Procedimientos Arteritis Viral Equina
Publisher
An entity responsible for making the resource available
Servicio Nacional de Sanidad y Calidad Agroalimentaria
Date
A point or period of time associated with an event in the lifecycle of the resource
2003
Language
A language of the resource
Es
Type
The nature or genre of the resource
Monografía
Identifier
An unambiguous reference to the resource within a given context
B.S.0036
Abstract
A summary of the resource.
El presente manual se dirige principalmente a los veterinarios acreditados, privados, sectores interesados en la producción equina y a las autoridades provinciales, municipales y nacionales locales encargadas de las acciones sanitarias contra la AVE; por tanto, se centra en los principios de la enfermedad, descripción, aplicaciones de las pruebas de laboratorio, en la evaluación de sus resultados, atención de sospechas, focos y casos de afección.
Enfermedades de los Equinos
-
https://biblioteca.senasa.gob.ar/files/original/70656b7ede7d51131f0603b30a0adf00.pdf
0821478bcb5ba41106b667c26d4b40da
PDF Text
Text
�Servicio Nacional de Sanidad y Calidad Agroalimentaria
Manual de Procedimientos para la
ANEMIA INFECCIOSA EQUINA (AIE)
Dr. Marcelo Daniel de la Sota
Dirección de Luchas Sanitarias
�SENASA
Servicio Nacional de Sanidad y Calidad Agroalimentaria
Av. Paseo Colón 367 C1063ACD
Ciudad de Buenos Aires - República Argentina
tel. (054) (011) 4331-6041 al 49 y lineas rotativas.
website: http://www.senasa.gov.ar
Coordinación General
Dr. Marcelo D. de la Sota (Dirección Nacional de Sanidad Animal)
email.: mdelasot@senasa.gov.ar
Responsables de los Contenidos
Dr. Marcelo D. de la Sota (Dirección de Luchas Sanitarias)
Dr. Raul J. Gonzalez (Programa Enfermedades Equinas)
Edición:
Lic. Cristina del Llano (Coordinación de Gestión Técnica)
Armado y diagramación: Area de Diseño Gráfico.
Buenos Aires, agosto de 2005
4
Dirección de Luchas Sanitarias
�AUTORIDADES
Dr. Jorge Néstor AMAYA
Presidente
Ing. Carlos CASAMIQUELA
Vicepresidente
Dr. Jorge Horacio DILLON
Director Nacional de Sanidad Animal
Dr. Marcelo Daniel de la SOTA
Director de Luchas Sanitarias
Dr. José Luis ANTONELLI
Coordinador General de Campo
Manual de Procedimientos de Anemia Infecciosa Equina
5
�INDICE
FINALIDAD ........................................................................................................................................................... 11
MANUAL DE PROCEDIMIENTOS PARA LA ANEMIA INFECCIOSA EQUINA (AIE) .......................................... 13
1.
Consideraciones Generales ......................................................................................................................... 13
1.1
Importancia económica ....................................................................................................................... 14
2.
Etiología ........................................................................................................................................................ 14
3.
Descripción ................................................................................................................................................... 15
4.
Formas de presentación clinica .................................................................................................................... 15
5.
Transmisión de la enfermedad ...................................................................................................................... 16
6.
7.
8.
9.
5.1
Transmisión natural .............................................................................................................................. 16
5.2
Transmisión por el hombre .................................................................................................................. 17
5.3
Otras vías de transmisión .................................................................................................................... 17
Diagnóstico de Laboratorio ........................................................................................................................... 18
6.1
Periodo de ventana para la detección de la enfermedad por medio del test ...................................... 18
6.2
Precisión de los tests diagnósticos y divergencias más frecuentes. ................................................... 18
Proceso Epizoótico ....................................................................................................................................... 19
7.1
Reservorios del virus ........................................................................................................................... 19
7.2
Población hospedadora ....................................................................................................................... 19
Medidas de Prevención y control .................................................................................................................. 20
8.1
Aplicación de las medidas de control y prevención. ............................................................................ 20
8.2
Medidas protectoras en territorios limpios (Países o regiones de países) .......................................... 20
8.3
Medidas en territorios con la enfermedad enzoótica ........................................................................... 21
8.4
Medidas a adoptar ante brotes o hallazgos de reactores positivos al test .......................................... 21
8.5
Procedimientos en predios rurales ...................................................................................................... 22
8.6
Medidas para los ingresos ................................................................................................................... 22
8.7
Procedimientos en los eventos hípicos ............................................................................................... 22
8.8
Procedimientos en los remates ferias .................................................................................................. 23
8.9
Desinfección ........................................................................................................................................ 23
Diagnóstico y Certificación: Procedimientos ............................................................................................... 23
9.1
Extracción y remisión de la muestra .................................................................................................... 23
9.2
Recepción de las muestras ................................................................................................................. 24
9.3
Tiempo de validez de las certificaciones ............................................................................................. 24
10. Procedimiento para la denuncia ................................................................................................................... 24
11. Eliminación de los reactores ......................................................................................................................... 25
REGLAMENTO SANITARIO EQUINO - Res. SAGP y A N° 617/05 .................................................................... 27
�Prefacio
El presente manual de procedimientos fue redactado por la
Dirección de Luchas Sanitarias, a cargo del Dr. Marcelo de la Sota y el Programa de
Enfermedades de los Equidos a cargo del Dr. Raúl González.
El mismo cuenta con la revisión de la Comisión Nacional de Enfermedades de los
Equinos.
�Finalidad
El presente manual se dirige principalmente a los Veterinarios privados,
sectores interesados en la producción equina y actividades hípicas, y particularmente
a vastos sectores rurales que estando cultural y tradicionalmente
tan cerca del caballo quedan a veces tan lejos de los conocimientos más elementales
para proteger su salud. También va dirigido a las autoridades nacionales,
provinciales y municipales locales igualmente responsables y encargadas de emprender
acciones sanitarias contra la AIE.
En su desarrollo, se pretende reavivar el debate acerca de cual fue el aprendizaje y
cuales fueron los defectos u omisiones en el intento de controlar la AIE desde siempre,
puntualizando aquello que está al alcance de todos y cada uno para controlarla en todo el
país. Seguramente se reiterarán conceptos y se desmitificarán algunas
creencias populares sobre la enfermedad que a lo largo de los años sumaron confusión
y produjeron alarmas exageradas en aquellos que se enfrentaron
o vuelven a enfrentarse con esta enfermedad.
Por tanto, centraremos su contenido en los principios de la enfermedad, descripción,
pruebas de laboratorio, evaluación de sus resultados, medidas preventivas, atención de
sospechas, focos y casos de infección.
11
�Manual de Procedimientos para la
ANEMIA INFECCIOSA EQUINA (AIE)
1. Consideraciones Generales
Esta enfermedad se encuentra incorporada mediante el Decreto Nº 991 de fecha 14 de
marzo de 1969, al grupo de enfermedades a que refiere el artículo 6º del Reglamento General
de Policía Sanitaria. Por lo tanto son de aplicación todas las regulaciones previstas en la Ley
Nº 3959 de Policía Sanitaria de los animales y su decreto reglamentario, lo que incluye la
denuncia obligatoria, la interdicción preventiva ante la presencia de casos y la eliminación de
portadores de acuerdo al articulado de las normas específicas para la Anemia Infecciosa.
Lo referente a la notificación, vigilancia y seguimiento epidemiológico, análisis de riesgo
y emergencias sanitarias, así como los procedimientos que contemplan los aspectos de
protección y lucha contra esta enfermedad y los diferentes niveles de responsabilidad de los
distintos actores en la misma, se encuentran establecidos en las Resoluciones SENASA N°
422/03 y SAGPyA N° 617/05.
Manual de Procedimientos de Anemia Infecciosa Equina
13
�En el país, a pesar de la existencia de normativas oficiales para su control y del esfuerzo
colectivo desarrollado por varios sectores en los últimos 35 años, la AIE ha constituido un
enigma para muchos propietarios y productores, adquiriendo importancia no solo en relación
a pérdidas directas sino también a las limitaciones, necesariamente estrictas, que imponen
las exportaciones y el sostenido tráfico del comercio caballar y las actividades ecuestres.
Las diferencias en la prevalencia e incidencia de esta enfermedad dependen de diversos
factores, como la región geográfica y sus ecosistemas, la densidad de población de équidos y
su dinámica regional, también del nivel socio cultural de sus propietarios y consecuentemente la asistencia sanitaria y profesional de los equinos y por ende del conocimiento o no de la
enfermedad, muy en especial de las formas de transmisión. Pero básicamente, el cumplimiento responsable de las medidas de prevención y control, ya sean estas las impuestas por
la autoridad sanitaria oficial o simplemente las de propia incumbencia y responsabilidad del
propietario son definitorias.
La morbilidad y la mortalidad vienen determinadas preferentemente por la sensibilidad
de la población, es decir, que en los territorios con la enfermedad enzoótica (presente en
forma marcada y permanente) predominan los cursos crónicos y latentes, mientras que en
regiones limpias o de baja prevalencia pueden prevalecer los cursos graves sobretodo en los
primeros brotes de esta enfermedad, tal como aconteció a fines de la década del 60.
1.1 Importancia económica
En general, existe la creencia que solo los grandes brotes de enfermedades de los animales, con registros de alta mortalidad, acompañados de cuadros clínicos claros y manifiestos
son los que originan cuantiosas pérdidas económicas.
La Anemia Infecciosa Equina, en su forma más frecuente de presentación crónica e
inaparente, es un claro ejemplo de enfermedad de presentación «poco visible» para el productor, lo que hace posible que, a través de su diseminación insidiosa, solapada y permanente,
genere pérdidas regionales por millones de dólares anuales sin que cada productor en particular registre tal magnitud.
Esto se expresa mediante el permanente reemplazo y reposición de equinos de trabajo
que propone esta enfermedad, y que es lo que provoca tales mermas productivas. Según un
estudio realizado en Santa Fe a comienzos de los años 90, en el centro y este de la región
ubicada al norte del paralelo 32, el desplazamiento de bovinos provocado por la superpoblación
de equinos de trabajo portadores de esta enfermedad – para el cálculo fue considerado que
por su bajo rendimiento se requieren para cumplir tareas rurales de dos a tres equinos por
uno – era equivalente a 40-50 millones de dólares anuales medidos en kilos de carne bovina.
En esta línea de análisis, si bien no existen antecedentes de ponderación económica similares a lo descripto, debiera tomarse en cuenta que en todo nuestro territorio nacional, el
equino es aún hoy una herramienta insustituible, no solo formando parte de la cadena de
recolección y distribución de una gran variedad de productos pecuarios y agrícolas primarios que de otra forma no llegarían luego a ser bienes contabilizables en el mercado, o al menos lo
harían generando mayores costos - sino también en relevantes tareas tales como el control de
fronteras o las relacionadas con el desarrollo sociocultural de numerosas poblaciones rurales
en las cuales el caballo garantiza la asistencia sanitaria y educativa de sus pobladores.
2. Etiología
El virus RNA de la anemia infecciosa pertenece a la familia Retro viridae, incluyéndose
entre los llamados lentivirus, caracterizados por una alta tasa de mutación, que por estar
genéticamente relacionado con el virus de HIV-SIDA, ha sido motivo de muchas investigaciones en el campo de la medicina humana en los últimos años, en el intento de conocer más en
14
�profundidad aspectos de la estructura molecular y el mecanismo de replicación de estos
virus.
Se conoce que algunas cepas de AIE matan rápidamente, mientras que otras inducen
una enfermedad crónica severa, pero es sabido también que muchas cepas de campo de la
actualidad, inducen muy pobres o ausentes signos clínicos de enfermedad tornando compleja su detección si no se recurre a análisis de laboratorio.
No obstante, es imperioso asumir que todas las cepas de AIE tienen el potencial genético
para enfermar, independientemente que la enfermedad se manifieste clínicamente o no.
3. Descripción
La AIE es una enfermedad infecciosa producida por un virus que es exclusiva de caballos, asnos y mulas, de amplia difusión en todo el mundo, que no tiene cura ni vacuna
preventiva, caracterizada por una variedad de síntomas relacionados a la anemia, que termina invariablemente en la muerte del animal.
La duración del plazo de incubación (tiempo que transcurre entre el ingreso del virus y la
aparición de síntomas) es variable, de 5 a 30 días y en oportunidades hasta varios meses.
Esto depende ante todo de la cantidad y calidad de la dosis infectante, si bien esto no ejerce
ninguna influencia sobre el nivel de gravedad y el posterior curso clínico seguido por la
enfermedad.
El curso dependerá más de la predisposición y respuesta inmunitaria del animal infectado que de factores debilitadores de la resistencia. Una vez infectado, el equino es portador del
virus por el resto de su vida.
4. Formas de presentación clinica
Un equino infectado puede evidenciar una de las cuatro siguientes formas:
a.
Sobreaguda: presentación no frecuente. Es una presentación de infección en la cual el
animal muere súbitamente antes de presentar signos clínicos. Solo es detectable posmortem (mediante necropsia y análisis de laboratorio).
b.
Aguda: Sus síntomas principales son fiebre alta e intermitente, incremento de la frecuencia del pulso, apatía, incoordinación en algunos casos, mucosas de tonalidad entre
roja sucia e ictérica (amarillenta) con hemorragias difusas, edemas subcutáneos, y pérdida de condición corporal pese a conservar el apetito.
En esta forma el nivel de virus en sangre es muy alto por lo que podrá ser transmitido más
fácilmente a otros caballos como se verá más adelante.
c.
Subaguda a crónica: se mantienen los mismos signos clínicos descriptos para la forma
aguda pero de una manera más atenuada, pudiendo ocurrir la muerte del animal luego
de una corta agudización de los signos. El equino infectado entra y sale de esta forma
clínica hacia la forma aguda o crónica de manera cíclica, presentando períodos de normalidad - la forma inaparente - entre episodios.
Este comportamiento cíclico, generalmente dilata la consulta profesional y la imprescindible confirmación del laboratorio; si bien la detección de algún síntoma, como la pérdida de
peso y la apatía debieran provocar siempre la sospecha.
Los equinos que se encuentran en esta etapa tienen generalmente un nivel más moderado de virus circulante pero constituyen igualmente muy buena fuente de virus.
15
�d.
Subclínica o inaparente: solo detectable por medio del test de laboratorio aplicado
rutinariamente, es otra forma de presentación muy frecuente de la enfermedad. En esta
etapa el caballo luce sano y nadie advierte su enfermedad pudiendo mantenerse así gran
parte de su vida. Otros en cambio, regresan a la forma subaguda a crónica a causa de
estrés, excesivo trabajo, a otras enfermedades o a parasitosis, a ciertas medicaciones
como los corticoides o por la reversión del virus a formas más dañinas dentro del propio
organismo del equino.
Como conclusión, la forma crónica y la inaparente, con sus «señales» pobres o ausentes,
constituyen el verdadero desafío para el control de la enfermedad por constituir el único y
verdadero reservorio y fuente de virus para la persistencia de la enfermedad en los rodeos y su
propagación territorial.
5. Transmisión de la enfermedad
La AIE no es una enfermedad contagiosa, sino una enfermedad infecciosa transmisible.
El uso poco preciso de los términos contagiosa o infecciosa, conduce a veces a un exagerado temor a la infección y a la enfermedad y a la justificación de que todo lo que se haga es
en vano.
Al contrario de lo que muchas veces se cree, y a excepción de la vía intrauterina, la
transmisión del virus no se produce por transmisión directa (contagio) de un animal infectado a
otro susceptible o sano. Para que el ingreso del virus a un animal sano se produzca, es indispensable que se vehiculice sangre desde un portador en forma mecánica. Desde esta óptica,
puede afirmarse entonces que si se controlaran las vías más comunes de vehiculización, la
enfermedad es altamente controlable.
Las principales vías de transmisión mecánica a las que referimos son básicamente dos, la
transmisión natural producida a través de algunas especies de insectos hematófagos y la que
provoca la mano del hombre.
5.1 Transmisión natural
Se ha comprobado fehacientemente que los distintos tipos de tábanos y moscas
«chupadoras» de sangre son transmisores mecánicos del virus. Algunos investigadores citan
la probabilidad de que algunas especies de mosquitos lo hagan - en particular los de gran
tamaño - pero en menor grado y siempre de manera mecánica.
Para que esta forma de transmisión sea posible, es preciso que el acto alimentario del
insecto, iniciado sobre un equino portador del virus, quede incompleto por algún motivo (p.e.
defensas del animal) debiendo entonces concluir su comida sobre otro equino sano. Según
pudo comprobarse, el virus va perdiendo su capacidad infectante en la boca de estos insectos
sobreviviendo en ella entre 15 minutos a 4 horas.
Por lo tanto, la probabilidad y el grado de transmisión son altos cuando en una población
de equinos se dan simultáneamente estas tres condiciones:
16
1.
alta carga de tabánidos sobre el lugar (región, época del año, etc.),
2.
distancias estrechas entre los equinos (factor que adquiere mucha importancia en lugares de estabulación o de alta concentración), y
3.
un nivel infectivo suficiente en la sangre de el/los portador/es, que como fuera dicho es
muy alto cuando se presentan síntomas clínicos.
Dirección de Luchas Sanitarias
�5.2 Transmisión por el hombre
Se afirma que el virus puede sobrevivir varios meses a temperatura ambiente en sangre o
suero secos infectados. Esta es la razón para afirmar que involuntariamente la mano del
hombre es en muchos casos la principal forma de diseminación, y para ello bastará la presencia de tan solo un portador de virus para iniciar una diseminación masiva dentro de un
establecimiento.
A nivel rural, entre los elementos de uso común con riesgo cierto de vehiculizar el virus,
se citan los frenos, espolines, mordazas, cinchas, sudaderas, rasquetas y demás elementos
relacionados al equino, cuando sin una buena higiene y desinfección previa, son compartidos
por distintos equinos. Es así como estos enseres tan familiares y conocidos para el hombre de
a caballo, se transforman en «armas» sanitariamente peligrosas.
Son igualmente considerados de alto riesgo, la omisión de cambio de aguja al efectuar
tratamientos, vacunaciones o desparasitaciones colectivas, extracciones de sangre y/o las
esterilizaciones o desinfecciones imperfectas de agujas, jeringas, sondas gástricas y todo tipo
de instrumentos o material punzo cortante utilizado en maniobras quirúrgicas, odontológicas,
terapéuticas (infiltraciones), diagnósticas, de identificación (tatuajes), etc...
También está descripto en algunos trabajos, que los saches o frascos multidosis (vacunas, vitaminas, terapéuticos, etc.), al ser compartidos por más de un caballo están expuestos
a quedar contaminados con el virus, siendo una excelente vía de diseminación.
En definitiva, todo aquello que pueda vehiculizar sangre infectada de un portador enfermo
(aún estando seca, en la cual según algunos autores el virus persiste varios meses) a un receptor sano, debe ser considerado de alto riesgo.
El Servicio Oficial de los Estados Unidos concluye al respecto:
«No existe una base científica que justifique el miedo de adquirir la AIE a partir de reactores
positivos conocidos, cuando el predio o lugar en donde estos equinos se cuarentenan, respeta
200 yardas (180 metros) de distancia respecto del resto de equinos sanos», agregando
«La probabilidad de diseminar y adquirir el virus cuando se mezclan en un predio equinos
no testeados (sin diagnóstico de laboratorio), aún cuando solo exista un infectado entre 10.000,
es significativamente mayor - probablemente más de un millón de veces - que la proveniente
de equinos positivos bien cuarentenados.» En esto reside la importancia de conocer el estado
serológico de toda la población mediante un test periódico.
5.3 Otras vías de transmisión
En niveles menos frecuentes, se describe la transmisión del virus desde la yegua infectada al potro, aún cuando este aspecto no está absolutamente claro si el contagio tiene lugar
por vía intrauterina o post partum a través de la leche materna. También se contempla la
posibilidad de contagio por medio del coito, puesto que se ha conseguido la transmisión
experimental del virus mediante inyección subcutánea de esperma de un semental enfermo
con signos clínicos.
Por ser eliminado el virus con excreciones y secreciones, algunos consideran posible la
transmisión oral al beber agua o pienso infectados, si bien esta circunstancia únicamente
desempeñaría un papel importante si se acompaña de la existencia de microlesiones en la
boca o en el tracto digestivo del receptor susceptible que actuarían como puerta de entrada a
dosis infectantes suficientes.
Manual de Procedimientos de Anemia Infecciosa Equina
17
�6. Diagnóstico de Laboratorio.
El cuadro clínico de la enfermedad es como vimos muy variable pero al menos permite la
sospecha en muchos casos. Por este motivo, ante la presencia de cuadros febriles, incremento de la frecuencia del pulso, apatía, pérdida de condición corporal aún con apetito conservado, resulta imprescindible la práctica del test diagnóstico específico para descartarla y para
esto se han propuesto distintos tests serológicos para la identificación de anticuerpos ya que
la detección de los mismos indican invariablemente que ese animal tomo contacto con el
virus, en consecuencia ha contraído la enfermedad.
La Organización Internacional de Epizootias (OIE) recomienda hasta hoy como método
diagnóstico de elección la prueba de inmunodifusión en gel de agar (ID), desarrollada por
Leroy Coggins en 1972, por ser la única prueba que descubre con máxima seguridad a los
portadores de virus sin manifestaciones clínicas.
Este test solo puede ser realizado por laboratoristas de la Red Oficial de Laboratorios
para lo cual los técnicos son entrenados y evaluados periódicamente en su competencia para
integrar la misma. La lista y ubicación geográfica de estos laboratorios con la nómina de los
profesionales autorizados a extender certificaciones, es actualizada y difundida bimestralmente
por el servicio oficial para conocimiento de los usuarios.
En la actualidad existen otras pruebas (Tests de ELISA) con ventajas y desventajas respecto del Test de Coggins (ID), no obstante sigue siendo éste último el requerido para las
campañas oficiales en los diversos países y para el comercio internacional.
Si el resultado del test de Coggins es claramente positivo en los équidos adultos, el diagnóstico se considera confirmado, independientemente de la ausencia o existencia de signos
clínicos y de cuál sea la gravedad de los mismos, y aun cuando existan indicios presuntivos
de estarse desarrollando además otras patologías no infecciosas.
6.1 Periodo de ventana para la detección de la enfermedad por medio del test
El llamado efecto «ventana» de una enfermedad es el período comprendido entre el momento en que se produce la infección o ingreso del virus al organismo y la probabilidad cierta
de que el test diagnóstico de laboratorio detecte los anticuerpos como para dar un resultado
positivo, confirmando de esta forma la condición de portador. Este período es para la AIE de
1 a 3 o más meses.
En razón de lo dicho, es que para confirmar un diagnóstico negativo, se recomienda que
siempre se ratifique esa condición mediante otra prueba efectuada a los 60 días de la primera, sobretodo cuando se incorporan nuevos equinos a una población controlada. Es decir que
antes de incorporarlos definitivamente al predio, se los mantenga separados del resto de la
población residente hasta conocer el resultado de esta prueba confirmatoria. Durante este
período se pondrá especial cuidado en prevenir las formas potenciales de transmisión vistas
arriba.
Esta particularidad de la enfermedad también explica porque en la reglamentación para
los controles de tránsito y de ingreso y permanencia a concentraciones, se haya adoptado el
plazo de 60 días como el período aceptable dentro del cual todo equino, que se traslada o que
asiste o permanece en lugares de alta concentración, debe estar certificado con resultado
negativo por un laboratorio habilitado por el SENASA. De esta forma se apunta a minimizar
el riesgo y la probabilidad de diseminación a través de los portadores.
6.2 Precisión de los tests diagnósticos y divergencias más frecuentes.
No siempre en el laboratorio pueden obtenerse resultados precisos. Algunas veces ocurren discordancias como resultado de diferencias de test a test, por ejemplo: entre la técnica
de ID y la de ELISA, de un laboratorio a otro, de lectura a lectura usando el mismo método y
18
�realizándolo en el mismo laboratorio, o entre dos muestras de un mismo animal. Esto puede
suceder en presencia de muestras de sangre que están cerca del límite técnico que tienen las
pruebas en si mismas para poder detectar los anticuerpos, a diferencias relacionadas a un
fenómeno biológico o simplemente a diferencias en el desempeño humano.
La razón biológica de divergencia más frecuente es que el equino en cuestión tenga muy
bajos niveles de anticuerpos contra el virus de AIE. El equino puede haber estado recientemente expuesto y recién está comenzando a producir anticuerpos. Otras veces, los portadores inaparentes tienen un nivel consistentemente bajo de anticuerpos contra el virus de AIE,
lo que sugiere un bajo nivel de replicación viral y una baja estimulación.
Afortunadamente, este tipo de reacciones se observan en muy baja proporción, pero en
ambos casos el resultado final es el mismo: el nivel de anticuerpos es tan bajo que la reacción
de la prueba escapa a la detección de algunos de los tests de rutina o es de difícil o débil
lectura.
La presentación de resultados débilmente positivos en el test de Coggins pueden presentarse:
1. En potros sanos que vehiculizan todavía anticuerpos maternos persistentes. Un segundo análisis realizado 2 meses después del destete arrojará resultado claramente negativo.
2. En équidos infectados que están aún en período de incubación. En este caso el segundo análisis efectuado 30-60 días después arrojará resultado claramente positivo.
3. En animales con la infección latente. El segundo análisis da por lo regular el mismo
resultado débilmente positivo.
En el procesamiento del test y en el reporte de resultados, pueden ocurrir errores humanos en múltiples aspectos. Primero, podría haber ocurrido un error técnico en el procesamiento de la muestra. Por ejemplo, en el test de ID, errores en la preparación del agar y
placas y el uso de sacabocados más pequeños que los recomendados, o el lavado de los «wells»
para ELISA, pueden dar resultados incorrectos. Segundo, el técnico puede sentirse incómodo
o poco dispuesto para interpretar y reportar como positiva una muestra con una reacción a la
ID muy débil. Tercero, puede ocurrir una pérdida en la integridad de la muestra por contaminación o mal rotulado.
No obstante lo dicho, las falsas reacciones negativas en el test de AIE son extremadamente raras y además puede afirmarse que el impacto de estos equinos diagnosticados como falsos
negativos es considerado significativamente bajo con respecto a los cientos de miles que nunca
han sido testeados.
7. Proceso Epizoótico
7.1 Reservorios del virus
El virus está muy adaptado a los équidos y tiene como reservorio única y exclusivamente
a las poblaciones equinas infectadas. Independientemente de que la enfermedad se manifieste clínicamente o no, está presente en todo portador del virus - por tanto positivo al test siendo de esta forma una potencial fuente de diseminación por las vías de transmisión vistas.
7.2 Población hospedadora
El hecho de que en los territorios enzoóticos, casos con la forma aguda se presenten con
menor frecuencia que la enfermedad latente o inaparente, no puede atribuirse, por consiguiente, a la falsa creencia de que un gran número de animales superaron la enfermedad.
19
�Todos los solípedos son igualmente susceptibles, independientemente de cuál sea su
especie, raza, edad o sexo. Una vez infectado el animal susceptible, en virtud de la persistencia típica de este lentivirus, el équido, a pesar de generar anticuerpos, se convierte en un
portador de virus por el resto de su vida.
En la infección natural, tanto en la enfermedad clínica como en la latente, los anticuerpos
formados no garantizan ninguna protección inmunitaria, por lo que los animales infectados
pueden enfermar gravemente y morir al cabo de meses o años, tras largos períodos
asintomáticos. Por esto, hasta el presente, no ha sido posible disponer de una vacuna eficaz,
ni de una terapia efectiva.
8. Medidas de Prevención y control
Vistas las características de la enfermedad, todas las medidas preventivas y de lucha y
control que se aplican en los distintos países del mundo, se concentran en:
a)
La detección de los portadores mediante el test diagnóstico de laboratorio.
b)
La eliminación de los mismos, mediante sacrificio o envío a faena.
El objetivo de lo expresado es evitar la difusión territorial del virus y el incremento de
equinos portadores. El sostenimiento de este sistema, permite en algunos casos y regiones
que, en condiciones ecológicas favorables y con la participación responsable y activa de todos
los actores ligados al caballo y al ámbito rural y ecuestre, pueda ser controlado o erradicado
paulatinamente.
Si bien son conceptualmente iguales, las medidas de prevención pueden ser modificadas
según se hable de países o regiones libres de la enfermedad, o de territorios con presencia
enzoótica de la misma, pudiéndose en éstos territorios diferenciar a su vez zonas o regiones
según el nivel de prevalencia de la enfermedad.
8.1 Aplicación de las medidas de control y prevención.
Puede decirse de manera general que respecto a la implementación de estas medidas, las
acciones de control están más relacionadas con la aceptación y aplicación de las reglamentaciones establecidas por la autoridad sanitaria, y las acciones de prevención recaen en manos
de productores y propietarios, siendo por lo tanto de su propia y exclusiva responsabilidad el
disponerlas en defensa del patrimonio propio o de terceros.
En este sentido, para el éxito en el control de la enfermedad debe sumarse al accionar de
las entidades oficiales, la participación imprescindible del usuario mediante el conocimiento
y cumplimiento de las normas, el requerimiento de asesoramiento técnico profesional privado, y la aceptación y aplicación responsable de las medidas y recomendaciones que son de su
exclusiva competencia.
8.2 Medidas protectoras en territorios limpios (Países o regiones de países)
Cada importación o ingreso de solípedos al país o región libre exigirá en origen un certificado oficial en el que se haga constar que no más de 5 días antes de efectuar el embarque o
transporte:
20
1.
Los animales no presentaron signos clínicos de la enfermedad.
2.
Los animales permanecieron como mínimo durante los 3 meses últimos en su establecimiento de origen.
3.
Los animales arrojaron resultado negativo al test de Coggins realizado 30 días antes de
su embarque o egreso.
Dirección de Luchas Sanitarias
�4.
Los animales que ingresan para permanecer corto tiempo en el país o región (exposiciones y concursos hípicos) también cumplirán los tres requisitos precedentes.
5.
Los que vayan a quedarse definitivamente en el país o región limpia se someterán posteriormente a su arribo, a una cuarentena de 30 días como mínimo, debiendo presentar un
segundo test negativo confirmatorio realizado a los 60 días del efectuado en origen para
que se autorice su ingreso definitivo.
8.3 Medidas en territorios con la enfermedad enzoótica
Marco general
Además de la denuncia obligatoria, desde 1979 existe en la República Argentina la obligación oficial de certificar con un test negativo no sólo a todos los équidos que traspasen las
fronteras del país y a los destinados a la producción de sueros, sino también a todo équido
que se traslade o que ingrese y/o permanezca en concentraciones a los que asisten equinos
desde diversos orígenes.
Si bien la legislación no contempla la obligatoriedad de realizar pruebas de control dentro
de los predios en la medida que no se registren egresos desde los mismos, para mantener
predios controlados las recomendaciones técnicas establecidas desde los comienzos de la
campaña de lucha, y de aplicación voluntaria, son los mismos:
1.
Realizar uno o dos test anuales en poblaciones estables de manera sistemática, en especial en zonas, o luego de temporadas de alta carga de insectos.
2.
Establecer cuarentenas internas para los ingresos de nuevos equinos, reconfirmando la
condición de negativos de los ingresantes a los 30-60 días posteriores y recién allí incorporarlos definitivamente al predio.
3.
Garantizar el buen manejo de las posibles fuentes de transmisión descriptas anteriormente (material descartable, intercambio de enseres, desinfección, etc.).
Como fuera dicho, la realización del test solo puede ser efectuada en laboratorios habilitados de la Red Oficial, quienes para su habilitación y mantenimiento en la Red, son previamente entrenados y luego evaluados periódicamente por el servicio oficial.
8.4 Medidas a adoptar ante brotes o hallazgos de reactores positivos al test
Es única responsabilidad del propietario o responsable que ante animales clínicamente
enfermos o inaparentes con resultado positivo al test de Coggins, proceda a: i) separarlos inmediatamente del resto, ii) efectuar la denuncia y iii) eliminarlos, por sacrificio inmediato en
el lugar a los sintomáticos o con marcado a fuego y posterior remisión a faena.
Una vez confirmado el diagnóstico, está contraindicado todo tipo de tratamiento, ya que
vale recordar que el animal positivo, es un animal infectado, y se convierte en portador y
reservorio del virus toda su vida, convirtiéndose en una potencial fuente de diseminación de
la enfermedad sino se evitan las vías mecánicas de transmisión.
Todo equino que estuvo en contacto con un caso infeccioso de una forma tal que se
considera que ha estado considerablemente expuesto y por consiguiente corre el riesgo de
contraer la infección, se debe aislar de los demás caballos y ser sometido a control clínico y
serológico.
Siempre que se presente esta enfermedad, se llevará a cabo una adecuada lucha contra
los insectos y se acentuará la prevención de diseminación descripta para las formas de transmisión por la mano del hombre.
Manual de Procedimientos de Anemia Infecciosa Equina
21
�8.5 Procedimientos en predios rurales
En zonas de baja infección, al ocurrir en los predios hallazgos ocasionales de portadores,
se deben eliminar de la población todos los equinos con test positivo; y de manera inmediata
los que presenten además manifestaciones clínicas; el resto de los equinos del predio que
contactaron con los positivos (sean negativos al test o no testeados), deben ser aislados y
remuestreados a los 60 días para su confirmación diagnóstica. De verificarse nuevos hallazgos en éstos lotes, se repetirá el procedimiento tantas veces como sea necesario hasta asegurarse que toda la población es negativa.
En los territorios con alta presencia de la enfermedad, se irán constituyendo paulatinamente efectivos de equinos seronegativos, los que deben ser mantenidos a la distancia indicada de 180 metros de la población infectada; estos lotes se protegerán del ingreso del virus con
una continuada lucha contra los insectos y un adecuado manejo diferencial de los aperos,
arneses y utensilios.
Mediante la eliminación progresiva de los équidos seropositivos de la población remanente, combinada con el aislamiento y ulterior control de los animales en contacto, se irá reduciendo continuadamente el número de équidos infectados presentes en el territorio, y con
ellos los reservorios del virus. Posteriormente, estos predios se manejarán como fue descripto
para zonas de baja infección.
8.6 Medidas para los ingresos
En forma similar a otras enfermedades infecciosas que afectan a los animales, la responsabilidad de los ingresos de équidos a establecimientos o predios de cualquier índole es exclusivamente de la entidad, del propietario o responsable de los mismos, por lo tanto para prevenir el ingreso de la enfermedad a una población, todo equino que ingrese debiera hacerlo bajo
las siguientes condiciones:
1)
Con diagnóstico y certificado negativo de origen.
2)
Aislamiento del resto de la población estable, un mínimo de 180 metros de distancia (50
metros pueden ser efectivos en épocas o regiones sin tábanos).
3)
Verificación de la negatividad mediante dos pruebas consecutivas, separadas una de otra
por un intervalo de 30 días entre ambas o al menos una prueba confirmatoria a los 60
días de la fecha de realizada la anterior.
4)
Durante la cuarentena, se garantizará el control y el buen manejo de las posibles fuentes
de transmisión mecánica descriptas.
8.7 Procedimientos en los eventos hípicos
La adaptación de las medidas recién descriptas, dada la gran dinámica de movimiento y
estabulación de equinos debe centrarse en:
22
1)
Diagnóstico y certificado negativo de origen.
2)
Verificación de la negatividad. Se podrá disponer al ingreso la utilización de la prueba
rápida de Elisa para los de corta permanencia, y en todos los casos - mayor lapso de
tiempo de permanencia o reingresantes al predio – se confirmará la negatividad por test
de Coggins.
3)
Los que arrojen resultado positivo a ELISA se aislarán de inmediato en un box con protección contra insectos, hasta confirmación por la técnica de inmunodifusión.
4)
Hasta conocer el estado serológico de los ingresantes o reingresantes, se garantizará el
control y el buen manejo de las posibles fuentes de transmisión mecánica.
�8.8 Procedimientos en los remates ferias
Los certificados de AIE, deberán ser presentados al ingreso de los equinos a las autoridades sanitarias para su verificación y siempre con anterioridad a la realización de la subasta.
Las tropas o équidos que arriben al predio ferial y que no se encuentren amparados por
la mencionada certificación, serán considerados de riesgo sanitario, quedando interdictados
en el lugar para posteriormente ser remitidos a faena sanitaria.
Los certificados que no den cumplimiento a las normas establecidas al respecto, quedarán intervenidos y retenidos por la autoridad oficial independientemente del tiempo que reste
para su vencimiento, labrándose las actuaciones correspondientes a efectos de determinar
las responsabilidades del caso.
Estas tropas o équidos que arriben al predio ferial con estas certificaciones intervenidas,
quedarán aislados e interdictados en el predio hasta la realización de una prueba oficial a
cargo del remitente.
Los licenciatarios, propietarios o responsables de los mercados de concentración (Rosario,
Liniers, Córdoba u otros), o de ferias regionales serán responsables de que los equinos que se
encuentren o presten servicio en las instalaciones de los mismos cuenten con la certificación
de Anemia Infecciosa Equina con diagnóstico negativo con una antigüedad no mayor a sesenta
(60) días.
8.9 Desinfección
El virus exhibe una marcada resistencia a las influencias físico-químicas, por lo que sólo
una limpieza y desinfección escrupulosamente efectuada con un desinfectante en concentración suficiente permiten la destrucción del virus.
Para la desinfección química de los instrumentos, primero se debe remover todo resto de
suciedad mediante lavado y cepillado y luego sumergirlos en desinfectantes fenólicos por 10
minutos. Cuando la materia orgánica no es removida puede utilizarse clorhexidina o compuestos fenólicos combinados con un detergente. Para la desinfección personal se indican
alcohol, hipoclorito de sodio o compuestos yodados.
9. Diagnóstico y Certificación: Procedimientos
Es la resultante del conjunto de responsabilidades y tareas compartidas por el responsable, propietario o tenedor del/los equinos que solicita el test, el veterinario acreditado que
extrae la sangre e identifica al equino y el laboratorista de la Red Oficial que realiza y lee la
prueba serológica específica e informa el resultado. Cada uno de los actores mencionados
asume su responsabilidad firmando en los respectivos lugares asignados en el formulario de
certificado de Anemia Infecciosa Equina, Libreta Sanitaria o Pasaporte.
9.1 Extracción y remisión de la muestra
Las muestras de sangre deben ser extraídas por la autoridad oficial o por un profesional
veterinario acreditado oficialmente, siendo su responsabilidad:
a.
Acompañar a las muestras que remite, con el certificado de AIE, Libreta Sanitaria o
Pasaporte aprobados por la autoridad oficial.
b.
Completar apropiadamente o verificar según se trate, los datos de estos documentos, con
especial énfasis en lo referente a la reseña del animal y a la ubicación del equino al
momento de extraer la sangre.
23
�c.
En caso de verificar que la residencia de los equinos difieren de la consignada en las
libretas, acompañará al material remitido de una nota con firma y sello consignando la
ubicación de los equinos al momento de la extracción.
d.
Comunicar al propietario o tenedor del equino sobre los procedimientos y obligaciones a
cumplir según las normativas de control vigentes.
La sangre se volcará en tubos sin anticoagulante, utilizando rigurosas condiciones de
asepsia, y luego las muestras se mantendrán refrigeradas en heladera sin congelar, hasta su
remisión al laboratorio seleccionado.
9.2 Recepción de las muestras
El laboratorista es responsable de:
a.
No dar ingreso a ninguna muestra, si el material remitido no viene acompañado de su
correspondiente certificado de AIE, Libreta Sanitaria o Pasaporte aprobados por la autoridad oficial.
b.
No procesar las muestras si la documentación adjunta correspondiente a cada muestra
no garantiza el eventual seguimiento oficial ante posibles hallazgos de reactores positivos, en particular:
1.
La ubicación de los equinos al momento de la extracción.
2.
Los datos del tenedor de los mismos.
3.
La correcta identificación de cada equino.
4.
La firma y aclaración del veterinario extractor de la muestra y del propietario o tenedor.
5.
Cualquier otra irregularidad que impida la actuación oficial ante una denuncia.
6.
Certificar solo sobre documentos con modelos aprobados oficialmente.
Para facilitar la operatoria, los laboratorios podrán disponer de un formulario de recepción propio donde conste la conformidad del remitente y del laboratorio respecto de la documentación que acompañan a las mismas, número de muestras recepcionadas y su
correlatividad con el Nº de certificado o Libreta que acompaña a cada muestra.
9.3 Tiempo de validez de las certificaciones
La reglamentación vigente establece la obligatoriedad de realizar el test diagnóstico a los
équidos que se encuentren en alguna de las condiciones que siguen:
a.
Todos los équidos del país que se movilizan, cualquiera sea su origen y destino, con
excepción de aquellos con destino final a faena.
b.
Todos los équidos residentes en lugares de concentración tales como: clubes hípicos,
caballerizas, centros de descanso, clubes de campo, countries; hipódromos, cuadreras,
centros de entrenamiento o eventos deportivos para la práctica del pato, polo, trote,
salto, equitación, prueba completa; espectáculos públicos, domas, jineteadas, desfiles
tradicionalistas, marchas; paseos, recreación; o cualquier otra actividad o situación en la
que convivan o se reúnan equinos de diversos orígenes.
La validez de un resultado negativo, es de 60 días contados a partir de la fecha de extracción de la muestra.
10. Procedimiento para la denuncia
Por estar reglamentada la denuncia obligatoria, la misma no es excluyente respecto de
quien la formula ante la autoridad oficial, por lo que todo el que esté en conocimiento de la
existencia de reactores estará igualmente obligado a realizarla.
24
Dirección de Luchas Sanitarias
�No obstante, por ser el hallazgo de un positivo la resultante de responsabilidades compartidas por el tenedor del/los equinos, el veterinario que extrae la sangre y el laboratorista
de la Red, el siguiente es el ordenamiento de procedimientos a seguir:
a.
El laboratorista está obligado a i) comunicar conjuntamente el resultado a la delegación
oficial correspondiente a su zona de ubicación y al veterinario extractor, por cualquier
medio fehaciente de comunicación (con evidencia documentada y comprobable); ii) retener la documentación que acompañó a la/las muestra/as objeto de la denuncia y iii)
hacer entrega o remitir la documentación original al veterinario oficial cuando éste se lo
requiera.
b.
El veterinario actuante notificará de inmediato por cualquier medio fehaciente de comunicación a la delegación oficial regional correspondiente a la localidad en que se encuentra el predio de residencia de los equinos y al tenedor de los equinos en forma conjunta.
c.
A partir del momento de tomar conocimiento del resultado POSITIVO del examen, es
responsabilidad exclusiva del propietario o responsable, el aislamiento e inmovilización
de/del los equino/s dentro del predio, hasta la intervención oficial y su posterior eliminación.
d.
El tenedor podrá optar por realizar una segunda prueba confirmatoria, la que será única
y realizada solo en forma oficial, y sin que hayan transcurrido más de VEINTE (20) días
corridos de intervalo entre la primera y la segunda extracción y manteniendo al equino
en estricto aislamiento.
e.
De presentarse litigios sobre resultados de pruebas realizadas sobre un mismo equino,
solamente se dará por válida y definitiva aquella cuya extracción y diagnóstico sea realizado únicamente por el servicio oficial.
11. Eliminación de los reactores
Los equinos con sintomatología de la enfermedad, confirmados con resultado positivo al
test, deberán ser sacrificados de inmediato en el lugar de residencia.
Los portadores serológicos sin síntomas, se marcarán a fuego con las letras AIE en la
tabla del cuello del lado izquierdo y podrán ser remitidos a faena directa en cuyo caso serán
marcados además con una letra F en la grupa derecha.
Cualquiera de las acciones indicadas deberán ser supervisadas por un funcionario oficial.
Manual de Procedimientos de Anemia Infecciosa Equina
25
�REGLAMENTO SANITARIO EQUINO (Res. SAGPyA N° 617/05)
Apartados del Anexo II relacionados a la A.I.E.
7.12. Anemia infecciosa Equina
7.12.1. Los équidos que se movilicen con cualquier origen y destino, con excepción de aquéllos
destinados a faena, deberán haber sido sometidos al diagnóstico de Anemia Infecciosa
Equina, y transitar acompañados con una certificación de Anemia Infecciosa Equina
negativa vigente.
7.12.2. Para los casos de importación y exportación de équidos el diagnóstico de Anemia Infecciosa Equina será realizado por la Dirección de Laboratorios y Control Técnico del
SENASA o por el organismo oficial o laboratorio de Red que autorice la Dirección Nacional de Sanidad Animal del SENASA.
7.12.3. Todo équido clínicamente enfermo y/o sospechoso de padecer Anemia Infecciosa Equina
deberá ser inmediatamente aislado del resto de los equinos hasta tanto se confirme la
enfermedad por medio del diagnóstico de Anemia Infecciosa Equina. En équidos con
sintomatología clínica sospechosa de Anemia Infecciosa Equina, un diagnóstico
27
�serológico negativo solamente se interpretará como tal, cuando hayan transcurrido
VEINTE (20) días desde la aparición de los primeros síntomas. Vencido este plazo se
deberá realizar un segundo diagnóstico serológico.
7.12.4
La certificación con resultado negativo de Anemia Infecciosa Equina será la resultante
del conjunto de las tareas realizadas por el responsable del equino, el veterinario que
extrae la sangre a analizar y el laboratorista que realiza la prueba serológica y consigna
el resultado, debiendo firmar todos en los respectivos lugares asignados en el formulario de certificado de Anemia Infecciosa Equina o Libreta Sanitaria Equina.
7.12.5
La validez del certificado de Anemia Infecciosa Equina en todos los casos será de SESENTA (60) días corridos a partir de la fecha de extracción de la muestra de sangre.
7.12.6
El diagnóstico positivo en un potrillo al pie de la yegua madre, la cual es también
positiva, será considerado como tal luego que el potrillo sea destetado y se efectúen
DOS (2) pruebas realizadas con un intervalo de SESENTA (60) días corridos entre ellas.
Si el resultado POSITIVO subsiste, el potrillo será considerado infectado con el virus de
la Anemia Infecciosa Equina.
7.12.7
Todo équido confirmado como reactor positivo, será marcado a fuego con las letras AIE,
de DIEZ (10) centímetros de altura y QUINCE (15) centímetros de ancho, en el cuello,
del lado izquierdo.
7.12.8
Los équidos con diagnóstico positivo y con sintomatología de Anemia Infecciosa Equina
deberán ser sacrificados con intervención de la Dirección Nacional de Sanidad Animal
dentro de las CUARENTA Y OCHO (48) horas de haber recibido la comunicación por
parte del veterinario actuante. En todos los casos que el equino evidencie sintomatología
de Anemia Infecciosa Equina, el veterinario actuante lo hará constar en la documentación que, conjuntamente con el material, se envíe al laboratorio.
7.12.9
Los équidos con diagnóstico positivo a Anemia Infecciosa Equina y sin sintomatología
de Anemia Infecciosa Equina (portadores inaparentes), deberán en todos los casos ser
aislados y posteriormente eliminados por sacrificio en el lugar donde se encuentran o
por remisión a faena, en cuyo caso se deberán marcar a fuego previamente con las
letras AIE, de DIEZ (10) centímetros de altura y QUINCE (15) centímetros de ancho, en
el cuello, del lado izquierdo, y ser despachados según el régimen vigente de remisión de
équidos a faena.
7.12.10 El aislamiento de los reactores o cuando se sospeche que la enfermedad que aqueja al
equino es Anemia Infecciosa Equina y hasta tanto no se cuente con el resultado del
diagnóstico de laboratorio, se efectuará cumpliendo con las siguientes pautas:
7.12.10.1. Se lo aislará debiendo encontrarse separado por lo menos TRESCIENTOS
(300) metros de otros équidos, si se encuentra en el campo.
7.12.10.2. El aislamiento de los équidos reactores será permanente, no pudiendo salir
bajo circunstancia alguna de ese lugar hasta su eliminación por sacrificio o
remisión al frigorífico.
7.12.10.3. Se evitará todo intercambio de jeringas, útiles de aseo, enseres de monta,
recipientes de alimentación, termómetros u otros objetos entre equinos enfermos o sospechosos y equinos sanos, salvo una adecuada y esmerada esterilización.
7.12.10.4. Se evitará el acercamiento de insectos al enfermo y a los lugares de alojamiento de los sospechosos.
7.12.11 Ante el hallazgo de UN (1) resultado positivo, el lugar o predio de residencia del reactor
quedará interdictado, procediéndose al sangrado y diagnóstico de la totalidad de las
existencias cuando éstas sean menores al número de DIEZ (10) équidos, y del DIEZ
(10) por ciento de las existencias en forma aleatoria por encima de esta cifra.
28
Dirección de Luchas Sanitarias
�7.12.12 De registrarse UNO (1) o más resultados positivos en los muestreos indicados en el
numeral anterior, el propietario o responsable del predio quedará obligado al saneamiento total de las existencias equinas, manteniéndose la interdicción del predio hasta
su cumplimiento y siendo los costos emergentes del mismo a su cargo.
7.12.13 Ante un resultado positivo el propietario o responsable del équido podrá optar únicamente por un segundo diagnóstico bajo los requisitos que se detallan:
7.12.13.1 El propietario del animal deberá manifestar al veterinario de la Dirección
Nacional de Sanidad Animal del SENASA dentro de las CUARENTA Y OCHO
(48) horas de tomado conocimiento del primer diagnóstico, su decisión de
realizar el segundo diagnóstico.
7.12.13.2 Esta segunda prueba – la extracción de la muestra y el diagnóstico oficial –
tendrá carácter definitivo y será realizada exclusivamente por personal del
SENASA.
7.12.13.3 Entre el primer y segundo diagnóstico no podrán transcurrir más de VEINTE (20) días de intervalo.
7.12.13.4 Aislamiento total del equino dentro del predio en un lugar autorizado por la
Dirección Nacional de Sanidad Animal.
7.12.13.5 El Veterinario Oficial procederá a la extracción de la muestra de sangre, y la
remitirá al laboratorio oficial. Todos los costos emergentes serán a cargo del
propietario.
7.12.13.6 La remisión de la sangre deberá hacerse en la forma indicada en el presente
reglamento e irá, asimismo, acompañada con la ficha de identificación.
7.12.13.7 En caso de repetirse el diagnóstico positivo, el Veterinario Oficial actuante
deberá proceder a la marcación del animal, dentro de un plazo no mayor de
CUARENTA Y OCHO (48) horas.
7.12.14 Los laboratorios que elaboren productos biológicos medicinales de origen equino, tanto
para uso humano como animal, deberán utilizar únicamente equinos libres de Anemia
Infecciosa Equina.
7.13.
Laboratorios de A.I.E - Registro de pruebas efectuadas
7.13.1
El laboratorio llevará el registro de la totalidad de las pruebas diagnósticas de Anemia
Infecciosa que efectúe, incluyendo las repeticiones de pruebas y las que se efectúen sin
requerimiento de certificación (relevamientos), de tal forma que exista correspondencia
entre la cantidad de dosis provistas y declaradas por el Laboratorio proveedor de cada
equipo diagnóstico y el número de dosis utilizadas.
7.13.2
Los laboratorios deberán contar con un libro foliado, rubricado indistintamente por
personal autorizado dependiente de la Dirección Nacional de Sanidad Animal o de la
Dirección de Laboratorio y Control Técnico del SENASA, cuyas medidas mínimas sean
de VEINTIDOS (22) por TREINTA (30) centímetros, y en el cual deberán constar los
siguientes datos:
7.13.2.1
En su primer hoja: nombre del laboratorio, nombre del director técnico, código de habilitación otorgado, domicilio, localidad, partido o departamento y
distrito correspondiente a la oficina local de la Dirección Nacional de Sanidad Animal al cual corresponde.
7.13.2.2
En las hojas subsiguientes se reproducirá el modelo de registro según se
detalla en el Anexo III .
7.13.2.3
En los casos en que se utilicen registros informáticos, las planillas deberán
respetar el modelo mencionado y sus impresiones deberán quedar adheridas firmemente sobre las hojas respectivas del libro foliado.
Manual de Procedimientos de Anemia Infecciosa Equina
29
�7.13.3
7.14
Los laboratorios obligatoriamente remitirán esta información en los términos descriptos
en forma mensual a la Dirección de Luchas Sanitarias.
Manejo de la certificación y del estampillado
7.14.1
La totalidad de los resultados diagnósticos que se vuelquen en los certificados y Libretas Sanitarias oficiales, además de la firma y sello del Director Técnico, llevarán adherida la estampilla oficial con el autoadhesivo provisto en el equipo diagnóstico.
7.14.2
Cuando se utilice el formulario de certificación, sus TRES (3) hojas deberán firmarse en
forma hológrafa, por el profesional acreditado que remite la muestra, por el propietario,
tenedor o responsable del equino y por el Director Técnico del Laboratorio, prescindiendo del uso de carbónicos u otros mecanismos de duplicación.
7.14.3. En caso de requerirse en una misma muestra la repetición de una prueba diagnóstica,
las estampillas correspondientes a las dosis utilizadas deberán quedar adheridas en el
libro foliado en la columna correspondiente a Nº de certificado o libreta.
7.14.4. Se procederá de igual modo al descripto en el numeral anterior cuando se realicen
pruebas que no demanden certificación (relevamientos).
7.15.
Comercialización y utilización del antigeno
Anemia Infecciosa Equina.
7.15.1. Los laboratorios de la Red habilitados para efectuar las pruebas de Anemia Infecciosa
Equina deberán llevar un archivo que contendrá los remitos y facturas de compra de
los equipos diagnósticos.
7.15.2. Las cajas o estuches que contengan al antígeno de Anemia Infecciosa Equina, llevarán
en un superficie una parte fácilmente removible (troquelada, perforada) en la que conste el nombre comercial del producto, número de serie o lote y cantidad de dosis
diagnósticas.
7.15.3. Acompañando a la presentación comercial del producto se incluirán en su interior las
estampillas oficiales, numeradas del UNO (1) al número total de dosis contenidas en el
envase; y en cada una de ellas, el número de serie o lote y la fecha de vencimiento,
conforme lo establecido por la Resolución Nº 118 del 4 de febrero de 1994 del exSERVICIO NACIONAL DE SANIDAD ANIMAL.
7.15.4. Cada titular de Certificado de Uso y Comercialización -importadores o elaboradores- y
cada comercializador inscripto llevará un archivo en el que consten en forma completa
los documentos de compra y venta, o de venta, del antígeno de Anemia Infecciosa
Equina, según corresponda en cada caso.
7.15.4.1. La documentación debe ser conservada hasta DOS (2) años después de realizada cada operación. A los fines de su auditoria oficial debe obrar copia de
cada documento tanto en el archivo del emisor del mismo (documento de
salida o venta) como del receptor (documento de entrada o compra).
7.15.4.2. El documento a archivar será la factura o, en su defecto, el remito que documenta el movimiento del antígeno de Anemia Infecciosa Equina entre partes.
7.15.4.3. La Documentación Comercial del movimiento del antígeno de Anemia Infecciosa Equina será archivada en el domicilio legal de cada operador (lugar
formal de auditoría).
7.15.4.4. Unicamente se podrán efectuar ventas desde los laboratorios elaboradores o
importadores a los Laboratorios Habilitados de Red.
30
�7.15.4.5. Prohíbese la venta a cualquier lugar o persona no habilitada y registrada
oficialmente para efectuar diagnósticos
7.15.4.6. La información que deben conservar los Laboratorios Habilitados de Red
será un archivo, el que contendrá, por un lado, los remitos o facturas de
compra del antígeno de Anemia Infecciosa Equina y, por otro, el libro foliado
con el detalle de la utilización de las dosis diagnósticas de los equipos adquiridos.
7.15.4.7. Los laboratorios elaboradores o importadores deberán informar mensualmente a la Dirección Nacional de Sanidad Animal el número total de equipos
comercializados a sus clientes con el detalle de las facturas o remitos, según
corresponda,.
7.15.4.8. Además de la remisión mensual indicada en el punto precedente, toda la información descripta debe conservarse ordenada cronológicamente y a disposición
del personal del SENASA a los fines de la auditoría oficial del sistema.
7.15.4.9. La Dirección Nacional de Sanidad Animal comunicará mensualmente a los
laboratorios titulares de Certificados de Uso y Comercialización la nómina de
las altas, bajas y suspensiones de laboratorios de la Red, con la identificación
de sus Directores Técnicos, a efectos de la programación de sus ventas.
Ante la detección de cualquier incumplimiento en el funcionamiento del sistema, el
SENASA podrá suspender el Certificado de Uso y Comercialización del producto que
corresponda. La conservación de documentos para auditoría oficial del sistema y el
flujo de información para auditoria interna es responsabilidad del titular del Certificado
de Uso y Comercialización.
31
�32
Pour On
Baño
Cumafos
SANUVET 10
SIPERKINA
91217
93206
FAEVE S.A.
VETANCO S.A.
AGROINSUMOS S.A.
TRINSEC POUR-ON
VETANCID POLVO
WARBICIDE POUR-ON
98262
92186
93128
(*) ANTES DE USAR, LEA LAS INSTRUCCIONES Y CONSULTE SIEMPRE A SU VETERINARIO DE CONFIANZA.
Cipermetrina
Cipermetrina
Pour On
Espolvoreo Ambiental
Pour On
Pour On
Cipermetrina
BURNET SACIFIA
TEHUELCHE POUR-ON
92491
Cipermetrina, BOP.,diclorvós
Pour On
OVER
Pour On
Cipermetrina
OVER
SYNECTO PLUS POUR-ON
Aspersión Animal
Pour On
Pour On
Aspersión Amb y animal
Aspersión Amb y animal
Pour On
Aspersión Animal
Pour On
Aspersión Amb y animal
Tópica
SYNECTO MAX A.R. POUR-ON
Cipermetrina
Tópica
Aspersión Amb y animal
97252
Cipermetrina, Carbaril,BOP
Cipermetrina
Cipermetrina
Asimetrina
Cipermetrina
Cipermetrina
Cipermetrina
Cipermetrina
Carbaril
Carbaril
Triclorfón, Diclorvós
Cipermetrina,Diclorvós
Pour On
90176
OVER
POUR ON BIOTENK
93202
SYNECTO ASPERSION
BIOGENESIS S.A.
PIRETRAL
92432
90175
BIOTENK S.A.
BROUWER S.A.
PIRETRAL POUR-ON
92492
OVER
FAEVE S.A.
OPIGAL 50
87001
DELENTE LABORATORIOS
FAEVE S.A.
MOSCASIN POUR-ON
93183
STOP FLY
IND. QUIMICAS ALMIDAR
LUVUCIT
90248
SUPER SYNECTO POUR-ON
ANUBIS S.R.L.
LER CHAMPU MEDICADO
93335
95341
Deltametrina
LAB.LER S.R.L.
HOECHST ROUSSEL VET S.A.
INSECTICIDA RURAL
82642
93432
Tópica
Pour On
Diclorvós,Malatión
BIOGENESIS S.A.
JOHN MARTIN S.R.L.
GALMETRIN PLUS POMADA
87504
Cipermetrina
Tópica
BROUWER S.A.
DERRAMIN
Tópica
88234
Cialotrina Pirimifós
VON FRANKEN SAIC
Cipermetrina,DDVP
SCHERING PLOUGH S.A.
CURABICHERAS PIRETROIDE
Aspersión Animal
Pour On
Pour On
DKL 5 CURABICHERA LIQUIDO
Diazinón
Cipermetrina
Cipermetrina
Tópica y Ambiental
Aspersión Amb y animal
82799
NOVARTIS ARGENTINA S.A.
CLIK 600 ASPERSION
1805
Diclorvós
Cipermetrina
87313
INSTITUTO SAN JORGE BAGO
PHARMAVET DE CASTAÑO SRL
CIPERSIX
CIPERVET POUR ON
96162
BIOGENESIS S.A.
87595
ALSI QUIMICA SANITARIA
CIOVAL
CIPERKILL
86368
BOX
92376
80246
Tópica
Pour On
Triclorfón
Cipermetrina
ALLIGNANI HNOS S.R.L.
LOPEZ VILLANUEVA Y ASOC.
BICHOLUZ RIO DE JANEIRO
82488
Pour On
PROAGRO S.A.
Cipermetrina
BAYER ARGENTINA SA
ASUNTOL LIQUIDO
BICHERON POUR ON
1544
96016
Pour On
Cipermetrina
BIOGENESIS S.A.
ACIENDEL
Cipermetrina
BIOGENESIS S.A.
ACIENDEL
87595
VIA DE ADMINISTRACION
0080/E
COMPONENTES
EMPRESA
PRODUCTO
CERTIFICADO
PRODUCTOS REPELENTES DE INSECTOS HEMATOFAGOS INDICADOS EN EQUINOS (*)
�REGISTRO DE PRUEBAS DIAGNOSTICAS DE
ANEMIA INFECCIOSA EQUINA EFECTUADAS EN
LABORATORIOS DE RED OFICIAL
Para volcar datos en el libro foliado y remisión mensual de la información a la Dirección de Luchas Sanitarias
AL COMENZAR CADA EQUIPO DE DIAGNOSTICO
Marca
.............................................................
N° de Serie
Estampillas Nros. de
.........................................................
.........................................
Fecha de Compra .............../......................................./..............
a
N° de Dósis
................................
.....................................
Factura/Remito N° .....................................................
DATOS A COMPLETAR
Prueba N°
Fecha de
Ingreso
Remitente
Origen de la
Muestra
Resultado
Certificado/
Libreta N°
..............................................................................................................................................................................................................................
.............................................................................................................................................................................................................................
............................................................................................................................................................................................................................
..............................................................................................................................................................................................................................
.............................................................................................................................................................................................................................
............................................................................................................................................................................................................................
..............................................................................................................................................................................................................................
.............................................................................................................................................................................................................................
............................................................................................................................................................................................................................
..............................................................................................................................................................................................................................
.............................................................................................................................................................................................................................
............................................................................................................................................................................................................................
..............................................................................................................................................................................................................................
.............................................................................................................................................................................................................................
............................................................................................................................................................................................................................
RESPONSABLE
Lugar
................................................................................................
..................................................
Firma y Sello
Fecha
C.244
.............../......................................./..............
..............................................................................
Aclaración
33
�N°
Colegio de Veterinarios de la Provincia de:
000000000
Fecha: ............../................./ ...................
IDENTIFICACION
Nombre del Equino: .................................................................................. Edad: .........
DISEÑO DE MARCA A FUEGO
Identificación Individual: ........................................................................ Sexo:............
Raza o Tipo:..................................................................... Pelo: ..................................
Padre: ..........................................................Madre:..........................................................
PROPIETARIO
Apellido y Nombre:.......................................................................................................... RENSPA N°: .......................................................
Domicilio: Calle: ........................................................................................................... N°:........................
Localidad: ....................................................... Partido o Dto.: .....................................................................
Los datos consignados son verídicos,
corresponden
al equino y se ajustan a la realidad
Prov.:..............................................................
......................................
Firma del Propietario
CERTIFICACION DE LA EXTRACCION DE LA MUESTRA
Fecha de Extracción: ........./....................../..............
La Muestra se Encuentra Identificada con: ...............................
Fecha de Remisión: ........./....................../..............
Equino CON SINTOMAS
Equino SIN SINTOMAS
Lugar de Extracción: Calle: ................................................................................................................................... N°:........................
Localidad: ....................................................... Partido o Dto.: ...................................................... Prov.:..............................................
Responsable de la Extracción: Doctor................................................................................................
MP N°:....................................... Acreditación SENASA N°: .....................................................
Los datos consignados son verídicos, corresponden al equino y se ajustan a la realidad. Los datos de
filiación se encuentran correctamente transcriptos, sin tachaduras ni enmiendas
......................................
Firma y Sello del Profesional
CERTIFICACION DEL DIAGNOSTICO
Laboratorio donde se efectuó el análisis:.............................................................................................................. Red N°:.....................
Diagnóstico
Positivo
Negativo
FECHA DE
RESULTADO
........./....................../..............
Pegar el stiker correspondiente a
la prueba, en este lugar.
.........................................................
Lugar de Expedición
Vencimiento
........./....................../..............
Expedición
........./....................../..............
......................................
Firma Laboratorista
Certifico el resultado del análisis del equino
cuya filiación figura en este documento
MP N°: ..........................
C247
35
�INTERVENCION SENASA
FECHA
MOTIVO
LUGAR
FIRMA
..............................................................................................................................................................................................................................
..............................................................................................................................................................................................................................
..............................................................................................................................................................................................................................
.............................................................................................................................................................................................................................
.............................................................................................................................................................................................................................
.............................................................................................................................................................................................................................
INTERVENCIONES SERVICIO VETERINARIO PRIVADO ACREDITADO
FECHA
MOTIVO
LUGAR
FIRMA
..............................................................................................................................................................................................................................
..............................................................................................................................................................................................................................
..............................................................................................................................................................................................................................
.............................................................................................................................................................................................................................
..............................................................................................................................................................................................................................
.............................................................................................................................................................................................................................
1 - En los formularios estará dibujada la silueta de un équido, con DOS (2) perfiles, derecho e izquierdo.
Entre ambos la cabeza, cuello y pecho, de frente; también estarán los perfiles izquierdo y derecho de los miembros y los mismos vistos de atrás.
2 - La individualización de todo equino que requiera certificación diagnóstica específica de Anemia
Infecciosa Equina, deberá efectuarla el veterinario que extraiga la sangre para exámen, con el
equino a la vista, cumplimentando la documentación identificatoria correspondiente.
3 - Para una correcta identificación el veterinario actuante acreditado deberá consignar la totalidad
de las señas particularas, como ser: remolinos, manchas, cicatrices, pelos blancos, marcas a fuego, pelaje, edad, etcétera, todo ello correctamente ubicado, remitiendo luego al laboratorio los TRES
(3) ejemplares conjuntamente con la muestra de sangre contenida en un tubo identificado con una
faja de seguridad.
4 - Para dar ingreso a las muestras deberá verificarse que los datos que figuran en el certificado que
acompaña la muestra, estén completados en su totalidad, y rubricados por el veterinario que extrae la muestra con sello aclaratorio.
5 - Deberá mantenerse en archivo por un lapso no menor a UN (1) año y en el orden en que fueron
expedidos, los duplicados de los certificados, los que deberán ser presentados al personal del
SENASA, cuando este lo requiera.
6 - Los certificados deberán ser firmados, tanto por el profesional que remite la muestra como por el
Director Técnico del laboratorio en forma ológrafa, prescindiendo del uso de carbónicos u otros
mecanismos de duplicación.
7 - El laboratorio deberá llevar registro de la totalidad de las pruebas diagnósticas Anemia Infecciosa
Equina, sean estas para la extensión de los certificados diagnósticas o de relevamientos a establecimientos que no la requieran.
8 - En caso de que el diagnóstico sea POSITIVO, el laboratorio lo comunicará al veterinario actuante, reservándose para sí el triplicado. El original y el duplicado los remitirá de inmediato a la Oficina Local del SENASA.
8.1 - Los formularios duplicados y triplicados no tendrán valor como certificación.
8.2 - En caso de extravío del formulario, se podrá solicitar una copia, en la que deberá constar tal
carácter.
8.3 - Los certificados deberán ser confeccionados con tinta o cualquier material inalterable y no
presentar raspaduras ni enmiendas.
36
��
Dublin Core
The Dublin Core metadata element set is common to all Omeka records, including items, files, and collections. For more information see, http://dublincore.org/documents/dces/.
Title
A name given to the resource
Publicaciones SENASA
Dublin Core
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Title
A name given to the resource
Manual de Procedimientos para la Anemia Infecciosa Equina (AIE)
Publisher
An entity responsible for making the resource available
Servicio Nacional de Sanidad y Calidad Agroalimentaria
Date
A point or period of time associated with an event in the lifecycle of the resource
2005
Contributor
An entity responsible for making contributions to the resource
Dirección de Luchas Sanitarias
Language
A language of the resource
Es
Type
The nature or genre of the resource
Monografía
Identifier
An unambiguous reference to the resource within a given context
B.S.0037
Abstract
A summary of the resource.
El presente manual se dirige principalmente a los Veterinarios privados, sectores interesados en la producción equina y actividades hípicas, y particularmente a vastos sectores rurales que estando cultural y tradicionalmente tan cerca del caballo quedan a veces tan lejos de los conocimientos más elementales para proteger su salud. También va dirigido a las autoridades nacionales, provinciales y municipales locales igualmente responsables y encargadas de emprender acciones sanitarias contra la AIE.
En su desarrollo, se pretende reavivar el debate acerca de cual fue el aprendizaje y cuales fueron los defectos u omisiones en el intento de controlar la AIE desde siempre, puntualizando aquello que está al alcance de todos y cada uno para controlarla en todo el país. Seguramente se reiterarán conceptos y se desmitificarán algunas creencias populares sobre la enfermedad que a lo largo de los años sumaron confusión y produjeron alarmas exageradas en aquellos que se enfrentaron o vuelven a enfrentarse con esta enfermedad.
Por tanto, centraremos su contenido en los principios de la enfermedad, descripción, pruebas de laboratorio, evaluación de sus resultados, medidas preventivas, atención de sospechas, focos y casos de infección.
Table Of Contents
A list of subunits of the resource.
FINALIDAD
MANUAL DE PROCEDIMIENTOS PARA LA ANEMIA INFECCIOSA EQUINA (AIE)
1. Consideraciones Generales
1.1 Importancia económica
2. Etiología
3. Descripción
4. Formas de presentación clinica
5. Transmisión de la enfermedad
5.1 Transmisión natural
5.2 Transmisión por el hombre
5.3 Otras vías de transmisión
6. Diagnóstico de Laboratorio
6.1 Periodo de ventana para la detección de la enfermedad por medio del test
6.2 Precisión de los tests diagnósticos y divergencias más frecuentes.
7. Proceso Epizoótico
7.1 Reservorios del virus
7.2 Población hospedadora
8. Medidas de Prevención y control
8.1 Aplicación de las medidas de control y prevención.
8.2 Medidas protectoras en territorios limpios (Países o regiones de países)
8.3 Medidas en territorios con la enfermedad enzoótica
8.4 Medidas a adoptar ante brotes o hallazgos de reactores positivos al test
8.5 Procedimientos en predios rurales
8.6 Medidas para los ingresos
8.7 Procedimientos en los eventos hípicos
8.8 Procedimientos en los remates ferias
8.9 Desinfección
9. Diagnóstico y Certificación: Procedimientos
9.1 Extracción y remisión de la muestra
9.2 Recepción de las muestras
9.3 Tiempo de validez de las certificaciones
10. Procedimiento para la denuncia
11. Eliminación de los reactores
REGLAMENTO SANITARIO EQUINO - Res. SAGP y A N° 617/05
Enfermedades de los Equinos
-
https://biblioteca.senasa.gob.ar/files/original/de57dbef6cd95e116eac773161c81dd9.pdf
a8f811827681a398d8911eb173cd3ed4
PDF Text
Text
Dirección de Epidemiología y Análisis de Riesgo
epidemiologia@senasa.gov.ar
Informe Final: Halicephalobus:
Recomendaciones sanitarias
El siguiente informe se ha llevado a cabo tomando en consideración los aportes realizados
por el grupo de expertos, conformado a pedido del SENASA. En el mismo se presenta las
conclusiones que deben ser consideradas ante la ocurrencia de futuras sospechas de ésta
enfermedad, como así las medidas de prevención y mitigación.
El presente se confeccionó a raíz de un evento de un equino muerto con antecedentes de
signología nerviosa en un club de campo de la ciudad de Avellaneda, provincia de Buenos
Aires.
Para la construcción de las siguientes recomendaciones, se citó a la conformación de un
grupo de expertos profesionales, pertenecientes a variadas ramas de la biología, lo cuales
están relacionados con la temática. Ellos son:
Dr. Chavez Eliseo. Zoólogo. (Universidad Nacional de La Plata
Dr. Tanzola Ruben Daniel. Biólogo (Universidad del Sur)
Dra. Radman Nilda. Microbiología (Universidad Nacional de La Plata)
Dra. Salomón, Maria Cristina. Bioquímica (Universidad Nacional de Cuyo)
Dr. Suarez Victor. Veterinario (INTA Salta)
De acuerdo con la bibliografía internacional referida a Halicephalobus gingivalis, nematode
Rhabditoidea, descripto por Stefanski en 1954 en Francia es habitante común de suelos
enriquecidos con materia orgánica vegetal en descomposición y posible de aislar a partir de
materia fecal de equinos. Es patógeno facultativo o accidental de equinos. Cosmopolita y,
zoonótico. Forma tempranamente granulomas evidentes en piel y mucosas, es letal al legar a
nervioso central.
Dado el riesgo que implica, se realizan las siguientes observaciones y recomendaciones para
diagnóstico, manejo y control de la Halicephalobiasis.
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�Dirección de Epidemiología y Análisis de Riesgo
epidemiologia@senasa.gov.ar
1. Recomendaciones operativas
Protocolo de desparasitación y desinfección
Primera desparasitación: dosis única de Fenbendazol 100mg/kg vía oral (sonda
nasogástrica) e Ivermectina 1,2 -1,8 mg/Kg.
Le sigue un período de 48hs de limpieza y desinfección de los boxes (soda caustica 5%
o hipoclorito de sodio 10%), donde previamente debe se debe retirar la cama de cada
equino de forma diaria para ser quemada.
Segunda desparasitación a los 4 días: dosis única de Fenbendazol 100mg/kg e
Ivermectina 1,2 – 1,8 mg/kg.
Le sigue un período de 48hs de limpieza y desinfección de los boxes (soda caustica 5%
o hipoclorito de sodio 10%). Se debe retirar la cama de cada equino de forma diaria
para ser quemada.
Cumplido, los equinos deben ser llevados a la zona limpia, por un período de 72hs.
Durante estas 72hs se deberá realizar una exhaustiva limpieza y desinfección diaria de
los boxes que fueron desalojados (zona sucia) con soda caustica al 5% o hipoclorito de
sodio al 10%.
2. Posible impacto en la sanidad equina.
Considerando el género del parasito y su ciclo de vida, el cual según las revisiones
bibliográficas, describe una etapa ambiental y una segunda, con estadios adultos, dentro del
hospedador definitivo (equino), se resuelve tener presente las siguientes premisas:
La totalidad de las descripciones y hallazgos diagnósticos se llevaron a cabo mediante
las necropsias respectivas de los animales fallecidos y complementándolo con
estudios histopatológicos/parasitológicos.
El mayor porcentaje de la casuística revisada, alude a la ocurrencia del evento en
equinos estabulados. Esto plantea la posibilidad del riesgo de contagio entre los
animales mediando algún tipo de material infeccioso, posiblemente materia fecal,
cama, etc.
Considerar entre los diagnósticos diferenciales las distintas encefalitis equinas de
origen vírico.
No se recomienda la utilización de corticoides en equinos con sospecha o riesgo de
padecer ésta parasitosis. El riesgo se considera según el nexo epidemiológico acorde a
la investigación llevada a cabo. (Están contraindicados, coadyuvan en la diseminación
de la parasitosis por el organismo).
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epidemiologia@senasa.gov.ar
Controlar los animales que estén en riesgo posteriormente a situaciones
de stress y/o inmunodepresoras (traslados, exigencias deportivas, enfermedades
concomitantes, vacunaciones, etc.).
2
Recomendaciones para el diagnóstico, a partir de casos clínicos y posibles contactos
Se considera que el diagnóstico debe realizarse tanto en animales vivos con signología
compatible inespecífica, como en aquellos con sospecha de muerte por éste parásito o
que tengan un nexo epidemiológico que los relacione. En caso de establecer sospecha
de Halicephalobisis, es factible realizar un diagnóstico precoz de la infestación:
3
En animales en pie se debe observar la presencia de nódulos subcutáneos y
submucosos (Realizar biopsias mediante la técnica aspiración (PAF) o ablación parcial y
observación en fresco).
Observar la presencia de tumoraciones superficiales renales por palpación rectal. Se
describen éstas ubicaciones en un gran porcentaje de la casuística.
Realizar observaciones en fresco, con previa concentración del material mediante
centrifugación, de las secreciones nasales, lavados bronquiales y orina, previamente
concentrar el material mediante centrifugación. En todos los casos respetar las
condiciones de bioseguridad adecuadas para trabajar con éste patógeno.
Como técnica coproparasitológica se recomienda la de Baerman, Recuperación de
larvas, realizada con heces refrigeradas.
También se pueden sembrar éstas sobre placas de agar conteniendo una pátina de
Bacilus subtilis o Escherichia coli. Se observarán a ojo desnudo o conicroscopio
estereoscópico, trayectos correspondientes a la migración de los vermes por el agar.
Recomendaciones para el tratamiento de animales con sintomatología compatible; y el
tratamiento preventivo de posibles contactos.
Al reconocer a ésta entidad patógena con cierto poder de contagiosidad, (la cual aún
no se ha aclarado con certeza), se recomienda que ante la presencia de animales con
diagnostico positivos, como a los susceptibles convivientes y sospechosos con nexo
epidemiológico, se lleven adelante las siguientes acciones precautorias:
Ante la presencia de vermes en nódulos subcutáneos o en secreciones o heces,
realizar resección quirúrgica y/o tratamiento general con Ivermectina (1.2 a 1.8
mg/kg) acompañado con Fenbendazol (100mg/Kg) vía nasogástrica, en forma
inmediata a fin de evitar la migración vía hemática de los vermes al SNC. Las mismas
drogas y dosis deben ser repetidas a los 4 días de la primera, para reforzar la
terapéutica. Recordar la dosis toxica de IVM, la cual es de 3 – 6 mg/Kg, presentado
cuadro con sinología nerviosa indeseada.
Los equinos considerados contactos deben ser medicados con Ivermectina y
Fenbendazol a la dosis anteriormente nombradas.
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�Dirección de Epidemiología y Análisis de Riesgo
4
epidemiologia@senasa.gov.ar
Permanecer en estado de alerta ante la aparición de signos compatibles en
los contactos directos e indirectos.
Ante la aparición de un caso, reforzar los controles clínicos y las medidas higiénicosanitarias en el establecimiento.
Realizar las denuncias correspondientes a las autoridades sanitarias pertinentes.
Posibles riesgos para la salud humana y de otras especies.
Atento a la bibliografía consultada, se considera a éste agente infeccioso como un parasito
zoonótico. Se han descripto numerosos casos en personas que tuvieron contacto estrecho
con los animales fallecidos y/o con potenciales fuentes infecciosas del ambiente. En todos
los casos la infección culmina en la muerte del individuo, presentado un cuadro
neurológico central, producto de la migración del parásito en el SNC. Hasta el momento no
se han podido clarificar la via de ingreso, pero se postula la percutánea como una de ellas.
Por tal motivo se considera tener precauciones especiales y se recomiendan los siguientes
ítems:
Los contactos humanos deben concurrir a consulta médica a las áreas del nosocomio
correspondiente, con la finalidad de ser evaluados y consignar controles y tratamiento
acorde.
Comunicar a las autoridades de salud el evento para estar preparados ante cualquier
contingencia.
Minimizar el ingreso de personas al sitio de agonía o de fallecimiento del animal. De la
misma manera se debe reducir el movimiento de personas en el establecimiento.
Todos aquellos elementos que tengan contacto con el animal sospechoso/infectado, o
con potenciales fuentes de infección, deben ser descontaminados adecuadamente o
eliminados, en los que se permita.
Los elementos de limpieza del ambiente donde se encuentra el animal
sospecho/infectado o fuentes potenciales de infección, deben ser de uso exclusivo de
ese sector y no retirarse. Se deben descontaminar todos los días.
La recolección de camas y heces debe ser diaria con su eliminación/destrucción
adecuada. Los encargados de la tarea deben tomar las medidas de bioseguridad
adecuada (guantes, mamelucos, antiparras, etc).
Colocar mallas metálicas en el sector de permanencia del animal
sospechoso/infectado, a fin de evitar la proliferación y diseminación del agente por
medio de los insectos.
Restringir la presencia de mascotas en el área. Tomar medidas para minimizar la
aparición de roedores que puedan difundir el agente patógeno.
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�Dirección de Epidemiología y Análisis de Riesgo
epidemiologia@senasa.gov.ar
5
Recomendaciones para la prevención y/o control de la patología a nivel poblacional.
Al considerar ésta entidad a un nivel poblacional, se debe recordar que el
halicephalobus es un parasito de ciclo mixto, con etapas dentro del animal como en el
ambiente. Esto genera la posibilidad de difundirse en el hábitat y ser capaz de
permanecer vital en el mismo, hasta encontrar al próximo hospedador para continuar
con el ciclo. Por tal motivo se deben minimizar lso riesgos de difusión a otros equinos
y especies susceptibles.
Aislar a los animales infectados (cuarentenas, uso de material de bioseguridad, botas,
guantes, barbijos etc).
Los animales fallecidos sin diagnóstico de certeza, deben ser necropsiados y
estudiados por los servicios especializados complementarios (Bacteriología, virología
micología y parasitología).
Los cadáveres deben ser incinerados, con lo que se consigue la destrucción total del
parasito y su potencial fuente de infección.
Realizar tareas de limpieza y desinfección (soda caustica al 5% o hipoclorito de sodio al
10%) de los boxes y superficies donde permaneció el animal problema.
Toma de muestras sanguíneas (sangre entera y suero), materia fecal y camas
recuperadas de boxes (tener en cuenta que se trata de vermes de vida libre adaptados
al parasitismo). para realizar diagnósticos por biología molecular.
Remitir muestras sospechosas a laboratorios especializados.
En todos los casos debe notificarse la sospecha y confirmación ante las autoridades
correspondientes, (SENASA local, autoridad sanitaria animal y humana acorde a la
región en cuestión)
.
Referencias bibliográficas
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infection in a horse in Ontario, Canada with comments on the validity of H. deletrix and a
review of the genus. Parasite. 1998 Sep;5(3):255-61.
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meningo-encephalitis caused by CNS co-infection with Halicephalobus gingivalis and West Nile
virus. Parasitology International; 2015. 64(5):417-420.
Bhavesh, P., C. Boudreaux, J. A.Tucker, B. Mathison, H. Bishop and M. E. Eberhard. 2013.
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�Dirección de Epidemiología y Análisis de Riesgo
epidemiologia@senasa.gov.ar
Boswinkel M, Neyens IJ, Sloet van Oldruitenborgh-Oosterbaan MM.
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Dunn, D.G. , C.H, Gardiner, K.R Dralle and J.P Thilsted. 1993. Nodular granulomatous posthitis
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Publicaciones SENASA
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Title
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Informe Final: Halicephalobus: Recomendaciones sanitarias.
Publisher
An entity responsible for making the resource available
Servicio Nacional de Sanidad y Calidad Agroalimentaria
Date
A point or period of time associated with an event in the lifecycle of the resource
2013
Contributor
An entity responsible for making contributions to the resource
Dirección de Epidemiología y Análisis de Riesgo.
Language
A language of the resource
Es
Type
The nature or genre of the resource
Monografía
Identifier
An unambiguous reference to the resource within a given context
B.S.0043
Abstract
A summary of the resource.
El siguiente informe se ha llevado a cabo tomando en consideración los aportes realizados por el grupo de expertos, conformado a pedido del SENASA. En el mismo se presenta las conclusiones que deben ser consideradas ante la ocurrencia de futuras sospechas de ésta enfermedad, como así las medidas de prevención y mitigación.
El presente se confeccionó a raíz de un evento de un equino muerto con antecedentes de signología nerviosa en un club de campo de la ciudad de Avellaneda, provincia de Buenos Aires.
-
https://biblioteca.senasa.gob.ar/files/original/710248feb193f60178a853f8077dfb68.pdf
5f815d28254dedc6f56e0df7d8d1eaf0
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Text
LAS PRUEBAS TUBERCULINICAS EN EL GANADO BOVINO
Pedro M Torres
Jefe Programa Control de Tuberculosis.
Servicio Nacional de Sanidad y Calidad Agroalimentaria (SENASA).
Av.Paseo Colon 367-4°piso (C1063ACD) Buenos Aires. tuberculosis@senasa.gov.ar
Introducción
La prueba tuberculínica constituye el instrumento básico para detectar la presencia de
infección tuberculosa, por lo tanto, desempeña un papel fundamental en el programa de
control y erradicación de la tuberculosis bovina.
El empleo de la prueba tuberculínica en el ganado bovino tiene ya una larga historia,
que ha permitido acumular una gran cantidad de conocimientos y una amplia
experiencia, especialmente en los países cuyos programas de control de la tuberculosis
bovina han alcanzado la etapa de la erradicación.
Antes de describir las diferentes pruebas tuberculínicas actualmente utilizadas en
medicina veterinaria para el control de la tuberculosis en las distintas especies que
afecta, es importante realizar la revisión de conceptos básicos que nos permitirán
comprender no solamente la razón de su utilización, sino también su capacidad para el
diagnóstico, lo mismo que sus limitaciones.
El conocimiento de las herramientas disponibles para el control y erradicación del
problema en los animales, nos dará la posibilidad para determinar, no sólo la prueba que
utilizaremos, sino también cómo, donde y cuando la aplicaremos para lograr el mejor
resultado.
La definición de la prueba tuberculínica, es sin duda el primer paso. Esta prueba
consiste en la inoculación de un antígeno, la PPD (derivado proteico purificado) en
forma intradérmica a un animal, con el objeto de poder establecer si el mismo fue
infectado por el agente causante de la enfermedad.
La lenta y localizada respuesta del organismo al antígeno inyectado se debe a un
mecanismo de hipersensibilidad de tipo IV (retardada), la cual se manifiesta durante las
72 horas posteriores a la exposición al antígeno.
Al contrario de lo que ocurre en otras formas de hipersensibilidad, la de tipo IV no
puede ser transferida de un animal a otro mediante la transferencia de suero, sino que es
necesario transferir células T (linfocitos), por lo que la respuesta inmune en tuberculosis
se considera mediada por células.
Las células T que dan lugar a las respuestas de tipo retardado tienen que haber sido
sensibilizadas previamente por exposición al antígeno, y su misión es atraer células de
otros tipos hacia la zona de reacción.
Cuando el Mycobacterium bovis penetra en el organismo del huésped y las células del
sistema inmunitario de éste se ponen en contacto con él, se produce la infección
�tuberculosa, paralelamente aparece la resistencia inmunitaria adquirida junto con la
hipersensibilidad retardada o de tipo tuberculínico (fenómenos paralelos ambos
mediados por células), y se pondrá de manifiesto después de transcurrido el perìodo
prealèrgico de 4 a 5 semanas, pudiendo persistir durante toda la vida del animal.
Cuando el antígeno (PPD) se inocula en forma intradérmica en la piel de un animal
sensibilizado, es decir expuesto al agente en un momento suficientemente anterior a la
prueba, como para que el animal pueda haber desarrollado su respuesta inmunitaria, se
produce una reacción inflamatoria en el lugar de la inoculación. Esta respuesta
inflamatoria tarda varias horas en desarrollarse y alcanzar su máxima expresión,
variando según las especies. En los porcinos y aves, el punto máximo de la reacción en
proceso se produce a las 48 horas, mientras que los bovinos y otros rumiantes a las 72
horas.
La reacción a la tuberculina es una reacción in vivo, sigue siendo una de las respuestas
biológicas más interesantes, más estudiadas, que requiere del desarrollo de habilidades,
y es la única forma práctica masiva que tenemos para demostrar el hecho más
significativo en tuberculosis, que es la infección del ganado con el Mycobacterium
bovis.
Reactivo para la prueba tuberculìnica
El PPD, Derivado Proteico Purificado de tuberculina, es un extracto antigénico derivado
del cultivo de un bacilo tuberculoso en un medio sintético.
Los Derivados Proteicos Purificados de tuberculinas que se producen son tres,
utilizando ya sea Mycobacterium tuberculosis, Mycobacterium bovis y Mycobacterium
avium. De ellas sólo las tuberculinas bovina y aviar tienen aplicación veterinaria.
De acuerdo con los diferentes métodos de elaboración, existían distintos tipos de
tuberculina, incluyendo la tuberculina vieja de Koch (O.T y K.O.T) y la tuberculina de
Medio Sintético concentrado por calor (H.C.S.M). En la actualidad solamente se usa el
PPD por su mayor potencia y especificidad.
El empleo del derivado proteico purificado de tuberculosis, para el diagnóstico de la
tuberculosis en los animales, es preparado de acuerdo con los requerimientos de la
Organización Mundial de la Salud (OMS.,1968) y OMS/OPS (1972), en lo que respecta
a orígenes de los materiales, métodos de producción, precauciones, sustancias agregadas
libres de contaminantes, identidad, seguridad, potencia, especificidad y ausencia de
agentes sensibilizantes.
El bioensayo para la actividad biológica tiene especial importancia y la potencia se
expresa en Unidades Internacionales (U.I).
Por lo tanto la calidad del PPD siempre debe ser controlada, no siendo digna de
confianza ninguna prueba, si se desconoce la potencia de la tuberculina con la que se
efectuó.
Este PPD se inocula a un animal o animales para determinar su situación de exposición
con respecto al agente. De tal manera, cuando es inoculado intradermicamente a
animales no expuestos a Mycobacterias, denominados vírgenes o sanos, no se observa
ninguna respuesta inflamatoria local importante o que puedan clasificarse como
sospechosas o positivas.
�Por lo tanto, faltó en esos animales el estímulo previo que los sensibilizara y generen
una respuesta frente al agente o sus productos.
De la otra manera, si se inoculara a animales infectados o enfermos, es decir ya
anteriormente expuestos y sensibilizados al bacilo tuberculoso, aparecerá la reacción
tuberculínica, siendo la misma un ejemplo destacado de una respuesta inmunológica
específica de hipersensibilidad tardía de tipo IV, mediada por células.
Patogénesis de la hipersensibilidad tardía de la piel
En las primeras horas no se observan modificaciones apreciables en el lugar de
inoculación, pero luego se instala una vasodilatación con aumento de la permeabilidad
vascular, con eritema e inflamación, que tiene como característica especial su dureza.
Microscópicamente la lesión presenta en las primeras cuatro horas una acumulación
celular, transitoria de neutrófilos, pero a las doce horas pasan a ser principalmente
mononucleares (monocitos y celulas T).
La reacción de hipersensibilidad alcanza su máxima intensidad a las 72 horas postinoculación y la lesión tuberculínica suele desaparecer gradualmente en el plazo de 5 a 7
días, dependiendo del grado de intensidad de la reacción.
En reacciones severas puede llegar a observarse necrosis en el sitio de inoculación, pero
no se trata de un fenómeno común.
La reacción tuberculínica es una reacción inmunológica específica mediada por
linfocitos T. Estas células sensibles a los antígenos que se encuentran en la circulación,
entran en contacto con el antígeno inyectado, respondiendo al mismo por movilización
de otros linfocitos y por división, diferenciación y liberación de linfoquinas.
En el sitio de la inyección tuberculínica, se acumula el producto de la multiplicación de
los linfocitos y de nuevas generaciones de células linfocitarias.
Los macrófagos fagocitan el antígeno inyectado y finalmente lo destruyen,
desapareciendo así el estímulo para que continúe la producción de linfoquinas, con lo
cual los tejidos vuelven al estado normal.
Las pruebas tuberculínicas deben ser aplicadas a intervalos no menores de sesenta (60)
días, ya que el sitio alrededor del tejido que se inoculó previamente con la tuberculina
puede estar temporalmente desensibilizado.
De manera tal, la reacción tuberculínica aparece sólo en animales que tienen o han
tenido la infección tuberculosa y puede entonces emplearse para identificar animales
con infección o enfermedad.
Este test ha servido como base para todos los programas de control y erradicación de la
enfermedad en el mundo, a través de la identificación de animales infectados y de su
eliminación y ha permitido alcanzar el objetivo de erradicación en países como U.S.A,
Canadá, Australia, Cuba y algunas áreas de Uruguay, Chile y Paraguay.
�Interpretación de la prueba tuberculínica
Para la correcta interpretación de la prueba y sobre todo para que los resultados sean
comparables, repetibles e igualmente interpretables por distintos profesionales, existen
seis constantes que deben establecerse claramente con los resultados de cada prueba.
Estas constantes son:
1. Potencia de la PPD.
2. Dosificación del antígeno.
3. Sitio de la inoculación.
4. Tiempo de lectura.
5. Medición de las respuestas o reacciones para su interpretación.
6. Instrumental a utilizar.
No es suficiente clasificar a un animal o a un rodeo como reactor positivo, sospechoso o
negativo, ya que la repetición del test por otro profesional que varíe cualquiera de las
constantes, puede producir resultados dispares y ser motivo de situaciones
conflictuantes a veces importantes.
Los criterios de cuantificación de estas variables pueden cambiar en distintos países y
aún dentro de un mismo país, de acuerdo con distintas situaciones epidemiológicas y es
correcto y lógico que eso suceda, pero es sumamente importante que cada diagnóstico,
especialmente aquellos de animales que se mueven hacia otros países, se acompañen de
las aclaraciones que permitan conocer todos los pasos seguidos para el mismo, al igual
que los criterios de evaluación utilizados para el análisis.
La potencia de una tuberculina, es la medida de su actividad biológica en animales
previamente sensibilizados con un organismo específico, valorada de acuerdo con
patrones y un estándar internacional establecido.
De acuerdo a lo establecido por la World Health Organization (WHO), el PPD bovino
deberá contener 1 mg de proteínas por mililitro de antígeno para una potencia de 32,500
U.I/mg/ml. La potencia estimada de tuberculina bovina deberá ser, no inferior al 66% ni
mayor del 150% de la potencia indicada en el prospecto.
El PPD aviar con 0,5 mg de proteína por mililitro de antígeno deberá alcanzar 25,000
U.I/0.5mg/ml. La potencia estimada para las tuberculinas aviares no deberá ser inferior
al 75% ni superior al 133% de la indicada en la etiqueta.
Las tuberculinas PPD deberán conservarse al abrigo de la luz y a una temperatura de
2ºC a 8ºC, descartando el sobrante que quede en el frasco, sino se va a utilizar en el
mismo día.
Por lo tanto, cuando utilizamos antígenos de distintas potencias biológicas no hay duda
que aquel de mayor potencia nos dará la máxima sensibilidad en las pruebas, por lo que
los animales y rodeos testeados con resultados negativos utilizando una PPD de baja
potencia, pueden dar resultados muy diferentes a una nueva prueba en la que se cambie
el antígeno.
Cuando utilizamos el lugar de inoculación más sensible, que es la tabla del cuello, si la
potencia de la PPD es baja, los resultados que se obtengan en la identificación de
�animales infectados, podrían ser iguales o aún menor que los que se podrían registrar
utilizando un área menos sensible, como ser el pliegue ano caudal y una PPD de
adecuada potencia.
Al utilizar el sitio de inoculación menos sensible y una PPD de baja potencia, la
veracidad de los resultados podría alterarse seriamente, sobre todo cuando se desconoce
el verdadero diagnóstico de situación sanitario del rodeo.
Una segunda constante mencionada, la dosificación del antígeno, es otro dato
imprescindible de consignar en un diagnóstico. Manteniendo invariables las cinco
constantes, el volumen de antígeno inoculado no importa el sitio, hará variar la
sensibilidad de la prueba, que puede aumentar en una cierta proporción de acuerdo al
volumen de PPD inyectado.
Existen trabajos que muestran que no hay una diferencia significativa en sensibilidad y
especificidad para el test ano caudal, utilizando 0.2 ml y 0.4 ml de dosis de PPD de 0.1
mg/ml, aunque el tamaño de la reacción de los animales infectados sería mayor con la
dosis de 0.4ml, no observándose la diferencia en los animales no infectados (Francis et
al., 1978).
Otros estudios muestran escasa diferencia entre la sensibilidad del test cervical simple
con 0.1ml de dosis y el test ano caudal con 0.2ml a igual potencia (Kantor et al., 1984).
En este último trabajo tuvo como conclusión , que la prueba ano caudal utilizando 0.2
ml de PPD de 1mg/ml de alta potencia, era más sensible que la prueba cervical
comparativa y tan sensible como la prueba cervical simple utilizando 0.1ml de PPD de
potencia moderada.
Por lo tanto, es claro entonces la necesidad de registrar esta información en el
diagnóstico de situación.
En la actualidad y de acuerdo al manual de normas y procedimientos en vigencia, las
dosis correspondientes a las pruebas tuberculínicas en el ganado bovino y en otras
especies animales, se hará inoculando 0.1ml de tuberculina PPD bovina de 1.0 mg/ml
de concentración (Secretaría de Agricultura, Dirección Nacional de Sanidad Animal,
Argentina., 1999).
La tercera constante en estudio es el sitio de inoculación, siendo posiblemente el dato
más comúnmente registrado, ya que sirve para identificar el tipo de prueba utilizada.
Algunas veces no se hace la distinción entre prueba cervical simple o cervical
comparativa. Sin embargo no faltan ocasiones en que la única información disponible es
de un resultado negativo a la prueba tuberculínica, sin ningún otro dato adicional.
La implementación de una prueba de alta sensibilidad, hace que las posibilidades de que
surjan inconvenientes con una nueva prueba no importa cual, son escasas al igual que
cuando se utiliza una prueba de menor sensibilidad en un rodeo controlado.
Los problemas se presentan generalmente cuando luego de una primera prueba de baja o
mediana sensibilidad en rodeos infectados o no controlados, se pasa a una prueba muy
sensible. Existen otros factores que intervienen en el resultado de un re-test y que luego
�consideraremos, pero es de suma importancia conocer la prueba inicialmente utilizada
para poder evaluar el resultado que se recibe y decidir que se hará posteriormente.
Actualmente no existen prácticamente discrepancias en el tiempo de lectura de la
prueba, que es la cuarta constante y debe realizarse a las 72 horas, más/menos 6 horas,
post- inoculación en el bovino y a las 48 horas en el porcino y las aves.
Existen trabajos que demostraron que las reacciones a PPD bovina en animales
tuberculosos, están bien avanzadas a las 48 horas y alcanzan su máxima expresión a las
72 horas (Lepper et al.,1977) y (Francis et al.,1978).
Por este motivo es importante registrar cualquier alteración en el tiempo de lectura,
cuando situaciones imprevistas dificultan efectuarla en el momento adecuado, en virtud
de que reactores en el umbral de las 72 horas, pueden ser erróneamente clasificados 24
horas mas tarde.
Por lo tanto, sería sumamente importante consignar cualquier tipo de reacción
encontrada al momento de la lectura y no simplemente la categoría de clasificación del
animal.
La quinta constante a considerar es la medición de las respuestas o reacciones postinoculación. En los animales domésticos, cuando a los reaccionantes a la prueba
tuberculínica, pretenden otorgarle una clasificación cuantitativa, criterios como tamaño
de un grano de arroz, de maíz, de un huevo o de una naranja, son totalmente inservibles,
ya que se modificarán con cada observador.
Por supuesto que no existirán dudas respecto a la clasificación de reactores de un animal
con una reacción del tamaño del huevo o una naranja, pero sí aparecerían juntamente
con serios inconvenientes, con las reacciones pequeñas.
La alternativa vigente es el uso del instrumento de medida, que permita cuantificar en
forma correcta y en la misma escala, la reacción localizada a través de la medición del
aumento del grosor de la piel en el sitio de inoculación, por cualquier profesional en
cualquier lugar.
Por lo tanto, en un diagnóstico de estas características, es aconsejable eliminar todo tipo
de subjetividades en la lectura e interpretación de la prueba y para ello el uso del calibre
es el procedimiento adecuado, si se pretende algo más que un diagnóstico cualitativo
(reaccionante o no reaccionante).
Excepto cuando se utilicen calibres automáticos, las medidas del espesor de la piel
previa y posterior inoculación, variarán de observador a observador y es usual que esto
suceda en virtud de la diferente presión que cada profesional de acuerdo con la
aplicación de su fuerza, ejerza sobre la boca del calibre.
No obstante, esto no constituye ningún problema, en virtud de que el diagnóstico surge
de la diferencia de medidas del pliegue de la piel previa y posterior inoculación, y
siempre que el veterinario acreditado que realice ambas lecturas sea el mismo, la
diferencia medida en milímetros será la misma.
�En el manual de normas y procedimientos de la resolución vigente, se describen los
criterios de interpretación, en forma individual para cada una de las pruebas
tuberculínicas, pero es importante recalcar que la simple observación sin proceder a la
palpación, se debe considerar el procedimiento de la técnica de lectura en forma
incorrecta.
En algunos países como por ejemplo Estados Unidos, no se considera actualmente
adecuado el uso del calibre en la prueba ano caudal, mientras que en otros, sí se lo
utiliza para cuantificar y eliminar toda subjetividad de la prueba.
La diferencia se debe a que en USA, con cualquier reacción a la palpación, se considera
al animal como positivo, en tanto en los otros países, lo hacen de acuerdo a una escala
con umbrales en milímetros, en donde se clasifican a los animales reactores en
positivos, sospechosos y negativos, surgiendo ambos criterios de situaciones
epidemiológicas totalmente diferentes.
La sexta constante es el instrumental a utilizar, variable de suma importancia en la
obtención del éxito o el fracaso del saneamiento del rodeo.
Es necesario utilizar jeringas de uso veterinario de 1 a 2 ml de volumen, automáticas o
manuables graduadas en 0.1 mililitros.
Las agujas serán hipodérmicas, calibre 6, con una longitud de la cánula de 5 milìmetros
y bisel corto. En el caso de animales difíciles de inmovilizar, se podrán usar agujas más
cortas.
Los calibres deberán estar graduados al 0.1 milímetro, pudiendo ser metálicos o de
plásticos.
La falta de calidad instrumental, puede llevar aparejado una disminución en la dosis
aplicada, debido a una pérdida de tuberculina, como también una disminución de la tasa
de cobertura o inoculación de los animales en tiempo y forma, teniendo como resultado
una disminución de la eficacia o efectividad en el cumplimiento de los objetivos
propuestos.
En los sistemas productivos intensivos, con especial referencia a los tambos de alta
producción, tales circunstancias pueden tener implicancias directas en la eficiencia o
rentabilidad empleada para llevar a cabo el programa de saneamiento o monitoreo del
rodeo.
Es precisamente el estudio epidemiológico de cada situación en particular, la
variable que inevitablemente tendremos siempre que analizar, cuando antes de iniciar
cualquier diagnóstico de situación por medio de la prueba tuberculínica, nos planteemos
cinco preguntas bàsicas:
1.
2.
3.
4.
5.
Cuál es el objetivo del trabajo?
Qué sabemos de la condición sanitaria del rodeo respecto a la enfermedad?
Cuál de las pruebas tuberculínicas vamos a utilizar?
Qué categorías vamos a testear?
Cómo vamos a evaluar los resultados?
�La definición del objetivo constituye sin duda el punto de partida y es de fundamental
importancia para la programación de las actividades posteriores.
El deseo por parte del productor y veterinario acreditado, de conocer la posible
existencia de la tuberculosis bovina en el rodeo, con el único fin por ejemplo, de definir
el origen y los costos de futuros reemplazos en el manejo de la reposición de hembras, o
tal vez para contar con otro elemento de juicio en el momento de descartar animales
para venta, hace que la organización de las tareas posibles de realizar, será muy
diferente a la que se programe cuando se desea eliminar la enfermedad en el rodeo.
Es posible que la prueba tuberculínica que utilicemos puede ser la misma, pero los
animales a inocular y la evaluación de los resultados obtenidos serán totalmente
diferentes.
Por lo tanto, es una necesidad iniciar las tareas de saneamiento a partir de un
diagnóstico de situación transparente, en el cual el productor pueda reconocer el
problema concreto de la enfermedad en su rodeo y el profesional crear las alternativas
posibles.
Es necesario crear un equipo con las personas que son responsables en las diversas
tareas. Esto se realiza con las prácticas y las relaciones de motivación y comunicación
constante que el veterinario acreditado debe transmitir al personal de campo y el
desempeño de las actividades se refleja en los indicadores que serán analizados,
valorados e interpretados.
Toda la información analizada, debe pasar por los mecanismos de retroalimentación y
estar a disposición permanente de los propietarios del establecimiento.
Es fundamental para el logro de las metas y objetivos propuestos, desarrollar las
actitudes y habilidades del personal a cargo, a través de charlas de actualización en los
diferentes temas de la problemática a resolver.
De tal manera, se podría afirmar, que es muy difícil que exista una planificación
coherente, si no sabemos para qué estamos trabajando y esa es la importancia de este
primer paso, definir que es lo que esperamos obtener con la utilización de éste método
de diagnóstico.
La segunda pregunta, correspondiente al conocimiento de la condición sanitaria del
rodeo respecto a la enfermedad, merece un análisis detallado de la historia del rodeo,
como se fue formando, la situación de la tuberculosis en los rebaños adyacentes, en
áreas vecinas, basándose para ello en resultados tuberculínicos confiables y/o en los
datos disponibles que surjan de la vigilancia epidemiológica en faena, los resultados de
pruebas anteriores y el orígen de los animales que a él ingresen dentro del marco local o
regional, que nos permitirá tener una visión global de la historia natural de la
enfermedad en el rodeo.
Los datos que se obtengan por medio de una detallada anamnesis, en algún grado nos
permitirá evaluar, primero el riesgo de que la tuberculosis esté presente y segundo, la
posibilidad de su ingreso al rodeo a través de las distintas vías de transmisión.
�Esto constituye parte del estudio epidemiológico que antes se mencionó como variable
de análisis, que no se limitará a medir el problema presente y los riesgos de
introducción o reinfección, sino que deberá abarcar aspectos mucho más amplios, bajo
un enfoque sistémico, en la que no podrán dejarse de lado aspectos sociales, culturales y
fundamentalmente económicos del establecimiento en estudio y del área o región en que
se encuentre.
Del correcto análisis de esa situación, depende la adecuada selección de la prueba
tuberculínica a utilizar que se planteó en tercer lugar.
Cuando hablamos de un estricto análisis de diagnóstico de situación, debe quedar claro
que el mismo no se limita a presencia o ausencia de la enfermedad o a su grado de
difusión en el rodeo, sino que contempla otros aspectos, como las posibilidades de
eliminación de los reactores, en el caso de rodeos infectados, en forma tal que su
número y el momento de su segregación afecten en la menor proporción posible el
esquema productivo del establecimiento.
Es sabido que la erradicación de la tuberculosis bovina, es sin duda una acción sanitaria
redituable, pero debe tenerse en consideración todas las alternativas posibles de
aplicación, para que en el proceso se afecten lo menos posible los ingresos del
establecimiento, hasta el punto de no hacer peligrar la continuidad del programa de
saneamiento.
Por lo tanto, juntamente con el diagnóstico de situación inicial y con el resultado de una
prevalencia de infección, debe evaluarse también la capacidad económica y financiera
de cada establecimiento en particular, ajustando las acciones a las posibilidades reales
del propietario.
De acuerdo con el sitio de inoculación, podemos clasificar a las pruebas tuberculínicas
en ano-caudal y cervicales.
Las cervicales a su vez pueden ser de dos tipos: cervical simple y cervical comparativa,
según se utilice un antígeno PPD bovino o dos, PPD bovino y PPD aviar
respectivamente.
La exactitud de una prueba puede medirse y expresarse, en base a su habilidad de
clasificar correctamente animales de acuerdo a su situación sanitaria. Estas medidas son
la sensibilidad (Se) y especificidad (Ep).
Debido a que sobre estas dos propiedades esenciales, se basa la decisión del tipo de
prueba a utilizar en cada una de las distintas situaciones que pueden presentarse, al igual
que los criterios utilizados en la interpretación de los resultados de la lectura postinoculación, es importante dejar claro ambos conceptos.
La sensibilidad es la probabilidad de que una prueba identifique correctamente aquellos
animales infectados y enfermos.
La especificidad es la probabilidad de que una prueba identifique correctamente
aquellos animales no infectados o sanos.
�Para establecer estos dos atributos, se debe aplicar la prueba en muestras de animales
cuya situación respecto a la enfermedad es conocida y los resultados pueden tabularse
en cuadro 2 x 2, del cual pueden calcularse la Se y Ep.
En el caso de la tuberculosis bovina, la prueba utilizada es la prueba tuberculínica que
es un test indirecto, ya que no se utiliza para detectar al agente de la enfermedad, sino
para evidenciar en los animales en estudio una reacción inmunitaria contra el mismo.
Esta reacción que representa la manifestación de la capacidad individual para producir
defensas detectables y mensurables contra el mycobacterium, no diferencia infección ni
enfermedad, sino simplemente mide la exposición del huésped al agente con el
correspondiente desarrollo del proceso inmunitario.
Una prueba tuberculínica es tanto más sensible cuanto mayor es el número de respuestas
positivas entre los animales infectados, y es tanto más específica cuanto menor es el
número de respuestas positivas en animales no infectados o sensibilizados por otras
micobacterias diferentes del bacilo bovino.
No existe actualmente ninguna prueba tuberculínica absolutamente sensible, capaz de
detectar con una sola aplicación el 100% de los animales infectados; siempre habrá un
cierto porcentaje de “falsos negativos”.
Tampoco existe la prueba absolutamente específica; todas las micobacterias poseen
ciertos antígenos comunes y los animales sensibilizados por el M.avium complex (MAC)
Subsp.paratuberculosis,o por una variedad muy grande de otras micobacterias
generalmente saprófitas que se hallan en el medio ambiente, pueden dar también
reacción tuberculínica positiva, son los denominados “falsos reactores positivos”
En las poblaciones de ganado bovino con altos porcentajes de infección, se deben
preferir sistemas de saneamiento que utilicen pruebas tuberculínicas altamente
sensibles, con el propósito de interrumpir lo más rápidamente posible la transmisión de
la infección.
La prueba que detecta la mayor proporción de animales infectados con el menor número
de repeticiones será la adecuada, aunque con ella se corra el riesgo de tener algunas
falsas respuestas positivas.
Es conveniente utilizar la prueba tuberculínica operativa ano-caudal, de rutina, para
determinar la presencia de infección tuberculosa en un rodeo o región, y la prueba
cervical simple, más sensible, para eliminar los reactores de los rebaños infectados.
El criterio de interpretación podrá ser más o menos severo, según las condiciones de
infección del rodeo o de la región en que se aplicará la prueba y el objetivo que se
persigue con la misma.
En un rodeo con antecedentes de tuberculosis, será necesario emplear un criterio más
estricto que en otro donde nunca se haya detectado un reaccionante.
�De acuerdo a lo expresado anteriormente, de la Se de la prueba elegida, dependerá la
mayor o menor proporción de enfermos y/o infectados detectados, mientras que la Ep
determinará la proporción de falsos positivos que formarán parte de la tasa de
prevalencia aparente de la enfermedad, surgiendo la misma, directamente de la práctica
diagnóstica realizada por el profesional.
Los datos que se obtienen de esa práctica rural, están clasificados como positivos y
negativos a la prueba diagnóstica e incluyen tanto verdaderos positivos y verdaderos
negativos como falsos positivos y falsos negativos.
El profesional veterinario a pesar de no poder cuantificarlos, deberá estar prevenido
sobre la posible inclusión de falsos positivos y falsos negativos, en la medida de la
presencia de la enfermedad en el rodeo.
Los resultados en cada caso serán el producto de la Se y Ep del test diagnóstico que se
utilice, que no siempre son exactamente conocidas.
Partiendo que la prevalencia verdadera esta calculada por aquellos animales probados y
realmente infectados por la “prueba de oro”, determinándose normalmente por un
método estándar (aislamiento bacteriológico), se puede inferir que la prevalencia
aparente detectada es diferente a la verdadera.
Esto se debe a la capacidad diagnóstica de cada prueba, expresada como Se y Ep, que al
aplicarse sobre una población animal la discrimina en los cuatro grupos mencionados.
Si fuese la Se y Ep del ciento por ciento cada una, solo existirían dos grupos, sanos y
enfermos, que permitirían solucionar los problemas epidemiológicos y sin conflicto.
En la realidad esos grupos de superposición sí se presentan y su gravitación en el
saneamiento y eliminación de la enfermedad en el rodeo, puede ser tan importante como
detener todo el proceso del mismo, siempre y cuando el profesional acreditado no tenga
en claro los conceptos anteriores que pueden sintetizarse en dos propiedades
importantes de la pruebas, que son el valor predictivo positivo (VP+) y el valor
predictivo negativo (VP-)
El primero también denominado diagnosticabilidad, indica que proporción de los
animales positivos a la prueba están realmente infectados o enfermos. Es la probabilidad
que un animal con resultado positivo a la prueba, sea correcto.
El valor predictivo negativo, indica la proporción de animales realmente sanos del total
de animales que no reaccionaron a la prueba. Es la probabilidad que un animal no esté
infectado si tiene un resultado negativo a la prueba.
Los valores predictivos indican la exactitud de la prueba, por lo tanto, es la proporción
de animales correctamente identificados por la prueba, ambos VP dependen de la
prevalencia de la enfermedad en la población y de la Se y Ep de la prueba utilizada.
Existe una relación cercana entre VP+ y la Ep, así como entre VP- y la Se.
Cuando aumenta la Ep de la prueba, se incrementa el VP+ y por lo tanto la probabilidad
de que un resultado positivo sea verdadero, aumenta.
�Cuando aumenta la Se de la prueba, aumenta el VP- y por lo tanto la probabilidad de
que un resultado negativo sea correcto, aumenta.
La Se permite una mayor confianza en un resultado de prueba negativo. Esto nos
permite inferir, que una prueba tuberculínica negativa de mayor Se como la cervical
simple, seleccionada para una eventual compra de animales, aquellos que fueron
negativos a la prueba no diseminarán la enfermedad.
Es importante tener presente que si la Se y la Ep de la prueba no se modifican o sea se
mantienen constante, su diagnosticabilidad variará directamente con el valor de la
prevalencia de la enfermedad en el rodeo. A mayor prevalencia corresponderá una
diagnosticabilidad del test más elevada y viceversa, cuando la prevalencia de la
enfermedad disminuye, el VP+ del test, se irá reduciendo y aumentará
consecuentemente la eliminación de falsos reactores positivos.
El conocimiento de estos conceptos y su comprensión son fundamentales para el
correcto uso de las distintas pruebas tuberculínicas, que se detallan en el manual de
normas y procedimientos de la legislación vigente, ya que cada una fundamentalmente
de acuerdo con su Se y Ep tendrá un uso adecuado o una contraindicación, de acuerdo
con la situación sanitaria que se esté analizando.
No existe una prueba aconsejable para todos los casos y la opción entre las distintas
pruebas diagnósticas disponibles dependerá del análisis de las variables que se han
mencionado anteriormente.
Que categorías del rodeo vamos a testear, nos indica la siguiente pregunta, la cual
está relacionada con la edad de los bovinos a tuberculinizar.
En la primera prueba ano-caudal, cuando se desconoce si los animales están o no
infectados, es conveniente aplicar la PPD bovina a todos los bovinos mayores de 3
meses de edad en las razas lecheras, ya que la leche es el vehículo ideal como vía de
transmisión del bacilo tuberculoso, observándose en éstas categorías de terneros/as una
mayor frecuencia de la infección por ingestión de leche que por vía aerógena.
Las ubres de vacas positivas a la tuberculina pueden eliminar bacilos en leche sin que
exista mastitis tuberculosa.
La eliminación por leche es trascendente, siendo el vehículo ideal para la transmisión de
los bacilos, ya que éstos se encuentran en emulsión en la grasa y ésta facilita su difusión
por el tracto digestivo, cuando los alimentos son digeridos.
Por lo tanto la medida de prevención es no dar más de doce horas de calostro y retirar
las crías del contacto de su madre, para continuar con la crianza artificial de los
terneros/as, utilizando sustitutos lácteos.
Dicha medida de manejo, contribuye de manera esencial, a que el núcleo genético de las
futuras vaquillonas de reemplazo, en sus tambos, mantengan una sanidad de base
óptima en el inicio de la reposición.
�Es importante destacar que las vaquillonas preñadas, es una categoría sensible de
contraer la infección, especialmente las que provienen con un origen libre de la
infección tuberculosa, por lo tanto, la no separación de los animales por grupo de edad,
es un factor de riesgo que contribuye a la propagación de la enfermedad.
En las razas de carne se puede iniciar el diagnóstico tuberculínico, a partir de los 24
meses de edad, si no existieron ingresos de animales en ese lapso. En cambio si hay en
el establecimiento animales recientemente adquiridos, o se comprueba que el rodeo está
infectado, en la siguiente prueba tuberculínica se deberá examinar a todos los animales a
partir de los 6 meses de edad.
En el rodeo de carne con sistemas de producción extensiva, la propagación es lenta y la
transmisión de la enfermedad de la vaca al ternero desempeña en ella un papel
importante. En este tipo de rodeos, la tuberculosis bovina puede afectar a unos pocos
animales sin que se difunda rápidamente entre los demás.
Solamente cuando las condiciones de crianza se realiza en los sistemas estabulados o
semiestabulados, la propagación de la enfermedad puede incrementarse.
Como vamos a evaluar los resultados, es la pregunta que nos hacemos en la
evaluación epidemiológica inicial de un establecimiento infectado.
El veterinario acreditado que realiza la prueba tuberculínica en un rodeo, tiene que
actuar con criterio epidemiológico, tomando en cuenta la totalidad del rodeo y no
interpretar los resultados en base a los animales considerados aisladamente.
Las pruebas tuberculínicas negativas no son garantía sanitaria suficiente, si se
desconoce el estado sanitario del rodeo del cual provienen los animales, excepto cuando
los mismos proceden de un rodeo certificado oficialmente libre, puede garantizar dicha
condición. Por lo tanto, es un instrumento valioso en el control y erradicación de la
tuberculosis bovina y con ese criterio deben manejarse.
La interpretación de los resultados de las pruebas tuberculínicas, están debidamente
detalladas en la guía de saneamiento de la tuberculosis bovina en un
rodeo(Torres.,2000).
Como expresamos anteriormente en la selección de la prueba tuberculínica, existen
situaciones y factores que pueden impedir a la prueba diagnóstica clasificar
correctamente al animal. De tal manera, deben tenerse siempre presente cuando se
analizan los resultados de una prueba.
Positividad a la reacción tuberculínica no es sinónimo de enfermedad. Un resultado
positivo sólo indica la exposición del animal en estudio al agente en algún momento de
su vida, con un tiempo mínimo de incubación, anterior al estudio como para haber
desarrollado la respuesta inmune.
En el momento de la prueba, el animal entonces puede encontrarse infectado en un
período prodrómico, enfermo o inclusive sin desarrollo de lesiones granulomatosas.
�La experiencia ha mostrado que no existe correlación entre el tamaño de la respuesta
tuberculínica y la extensión de las lesiones que puedan ser encontradas en el examen
post mortem del animal. Por el contrario, las reacciones suelen ser más importantes
cuando la infección es reciente, pasado el período de incubación prealérgico.
Con otro enfoque, algunos resultados positivos, pueden deberse a la existencia de
mecanismos de defensa contra agentes microbianos distintos al M.bovis, pero que tienen
semejanza antigénica con él, generando reacciones cruzadas al PPD bovino.
Entre las especies de micobacterias más importantes que causan dicha sensibilidad
tuberculínica, se pueden encontrar el M.avium Complex (MAC), de los cuales ninguno
de los serotipos reconocidos, es considerado patógeno importante en el bovino y son
capaces de causar lesiones pequeñas no progresivas y circunscriptas particularmente a
los linfonódulos mesentéricos.
El M.avium Subsp. Paratuberculosis es el agente causal de la enfermedad
paratuberculosa en el bovino y puede ser una importante fuente de sensibilidad
heteroespecífica.
Otras micobacterias no patógenas, como las especies que se encuentran en las lesiones
de piel (dermatitis tuberculosa) Ej: Complejo M.fortuitum, M.Kansasii, M.Phlei, pueden
producir sensibilidad tuberculínica.
En las etapas finales del control de la enfermedad en un rodeo o en una región, el
problema de los “falsos reactores positivos” va cobrando mayor importancia. Estos
animales generalmente reaccionan a la tuberculina bovina, dando respuestas pequeñas.
Los agentes sensibilizantes paraespecíficos son más comunes en algunas regiones que
en otras, tal es el ejemplo de los resultados obtenidos en el estudio de las micobacterias
no tuberculosas en los suelos de la Provincia de La Pampa (Oriani.; 2000).
En condiciones de muy baja prevalencia de infección y/o sensibilización, comprobada
por micobacterias diferentes del M.bovis o del M.tuberculosis, es cuando la
especificidad de la prueba adquiere particular relevancia, por lo cual se deben reducir al
mínimo posible los “falsos positivos”.
El origen de la sensibilización de los reactores “sospechosos” a la prueba operativa de
rutina, sólo se puede dilucidar cuando el criterio epidemiológico así lo aconseje,
mediante el empleo de la prueba doble cervical comparativa, utilizando PPD bovino y
PPD aviar.
La función de ésta prueba comparativa, es clarificar si la probabilidad de que la causa de
la sensibilidad tuberculínica en un animal sospechoso, es debida a una infección con
M.bovis.
Sin embargo, el uso de la prueba comparativa, como prueba única en los rodeos o en
regiones altamente infectados es desaconsejable, porque es más compleja, tanto en su
ejecución como en su interpretación, que las pruebas cervical simple o ano caudal y, si
bien tiene una mayor especificidad, su sensibilidad es marcadamente inferior y ello
restringe su aplicación en las áreas infectadas de tuberculosis.
�También debe considerarse que un animal puede dar un resultado negativo, aún cuando
pueda estar realmente infectado, si lo reciente de la infección no ha permitido el
adecuado desarrollo del proceso inmunológico, cuando un fuerte shock de stress
bloquea su sistema de defensa, o cuando en bovinos, como en humanos, la sensibilidad
tuberculínica tiende a disminuir a medida que las lesiones progresan y toda la
sensibilidad puede desaparecer en las etapas avanzadas de la enfermedad, estado que se
denomina anergia tuberculinica.
Otras causas de anergia son la infección muy reciente, como ser el período de
incubación, y motivos fisiológicos, como es la preñez avanzada.
Las enfermedades virales, inmunodeficiencias y esteroides administrados, también
disminuyen la capacidad del animal infectado para su respuesta a la tuberculina.
Por último hay que recordar que la anergia puede resultar el producto de una
desensibilización local y sistémica, debida a una inoculación tuberculínica.
Cuando se detecta la infección tuberculosa en un rodeo, ningún animal dentro de él
podrá ser considerado con certeza como no infectado por el resultado de una sola prueba
tuberculínica. Dado que todos los animales de ese establecimiento han estado expuestos
a un foco de infección, es muy probable que entre ellos existan, casos de infección
reciente, aún en la etapa prealérgica y que sólo se los pueda identificar mediante la
repetición de las pruebas.
Los casos complicados de saneamiento son cuando aparecen los animales tuberculosos
anérgicos, que se hallan en las últimas etapas de la enfermedad, con lesiones abiertas
diseminadoras de bacilos. Una práctica que alienta la aparición de éstos animales, es la
no eliminación a faena de los reactores positivos a la prueba tuberculínica.
Dichos animales dejan de responder a la prueba, pero continúan propagando la
enfermedad. La prueba indicará la aparición de nuevos casos de infección en el rodeo a
una tasa bastante constante, ocasionando una falta en el control de la enfermedad.
REFERENCIA BIBLIOGRAFICA
Francis,J., Seiler,R., Wilkie,W., et al., 1978. The sensitivity and specificity of various
tuberculin tests using bovine PPD and other tuberculins. Veterinary Record 103, 420435.
Kantor, I., 1984. La prueba tuberculinica en el Ganado bovino. OPS/OMS.
Lepper,A., Pearson,C., Corner,L., 1977. Anergy to tuberculin in beef cattle. Australian
Veterinary Journal 53, 214-216.
Organización Mundial de la Salud., 1968. Comité de Expertos de la OMS en Patrones
Biológicos. Serie informe técnico Nº 384, pp.23-42.
�Oriani,S.,Bernardelli,A., Sagardoy,M.,2000. Micobacterias no tuberculosas (MNT) en
suelos de la Provincia De La Pampa (Argentina). Email. veter@teletel.com.ar
Secretaría de Agricultura, Dirección Nacional de Sanidad Animal, Argentina, 1999.
Plan Nacional de Control y Erradicación de la Tuberculosis Bovina. Resolución N°
115/99 SENASA/SAGPyA.
Torres,P., 2000. Pruebas tuberculinicas (inoculación, lectura e interpretación). Preguntas
y respuestas. SAGPyA, SENASA, OPS/OMS.
WHO Expert Comité on Biological Standardization Requirements for Tuberculins.,
1968. Technical Report, Series Nº 384, Geneva.
�
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Publicaciones SENASA
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Title
A name given to the resource
Las pruebas tuberculinas en el ganado bovino
Publisher
An entity responsible for making the resource available
Servicio Nacional de Sanidad y Calidad Agroalimentaria
Date
A point or period of time associated with an event in the lifecycle of the resource
2000
Contributor
An entity responsible for making contributions to the resource
Programa Control de Tuberculosis
Language
A language of the resource
Es
Type
The nature or genre of the resource
Monografía
Identifier
An unambiguous reference to the resource within a given context
B.S.0044
Abstract
A summary of the resource.
La prueba tuberculínica constituye el instrumento básico para detectar la presencia de infección tuberculosa, por lo tanto, desempeña un papel fundamental en el programa de control y erradicación de la tuberculosis bovina.
El empleo de la prueba tuberculínica en el ganado bovino tiene ya una larga historia, que ha permitido acumular una gran cantidad de conocimientos y una amplia
experiencia, especialmente en los países cuyos programas de control de la tuberculosis bovina han alcanzado la etapa de la erradicación.
Tuberculosis
-
https://biblioteca.senasa.gob.ar/files/original/573a2fa6b1f611c148f40ab7fd5b7a83.pdf
852728bb5be57e9eaee4b582a957e524
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CURSO
VETERINARIOS ACREDITADOS
EN SANIDAD y BIENESTAR
AVIAR
MÓDULO 1
SITUACIÓN ACTUAL DE LA PRODUCCIÓN AVÍCOLA
ENFERMEDADES BAJO PROGRAMA
ÍNDICE
�1. VETERINARIO PRIVADOS ACREDITADOS EN SANIDAD Y
BIENESTAR AVIAR
1.1.
Objetivo de la capacitación
2. SITUACIÓN ACTUAL DE LA PRODUCCIÓN AVÍCOLA
2.1. Situación de la producción de carne aviar mundial y en la
República Argentina
2.2. Características de la producción de carne aviar en la
República Argentina
2.3. Situación de la producción de huevo mundial y en la
República Argentina
2.4. Características de la producción de huevo en la
República Argentina
3. ENFERMEDADES BAJO PROGRAMA
3.1.
Influenza aviar
3.2.
Enfermedad de Newcastle (ENC)
3.3.
Salmonelosis
3.4.
Micoplasmosis
3.5.
Otras Enfermedades
1. VETERINARIO PRIVADOS ACREDITADOS EN SANIDAD Y
BIENESTAR AVIAR
2
�Según lo establece la Resolución SENASA N° 1-E/2018, se consideran
como Veterinario privado acreditado a todas aquellas personas que hayan
egresado de universidades reconocidas por el MINISTERIO DE EDUCACIÓN
de la Nación, con título veterinario habilitante, acreditados y autorizados por
este Organismo, para realizar las tareas inherentes a los distintos
Programas Sanitarios que autorice la Dirección Nacional de Sanidad Animal.
1.1. Objetivo de la capacitación
La acreditación de veterinarios privados del sector avícola tiene como objeto
mantener la actualización permanente, en relación a conceptos técnicos,
aspectos sanitarios de las principales enfermedades que afectan a la
producción y la importancia de la notificación de sospechas de enfermedad.
Si bien, cabe destacar que en el sector avícola los profesionales veterinarios
son especialistas y de dedicación exclusiva a la especie, resulta
imprescindible formar y mantener a los profesionales acreditados con un
nivel elevado de conocimiento para que puedan tomar las medidas
correctas e identificar las principales enfermedades aviares que rigen el
mercado mundial, además es fundamental ejercer el cumplimiento de las
medidas de bioseguridad, higiene y manejo así como el cumplimiento de los
muestreos programados por SENASA.
2. SITUACIÓN ACTUAL DE LA PRODUCCIÓN AVÍCOLA
2.1. Situación de la producción de carne aviar mundial y
en la República Argentina
La evolución del sector de carne aviar ha demostrado una dinámica muy
interesante ya que en 1950 se comercializaban las aves vivas, hacia 1960
las aves con garras y cabeza, llegando a la década del 80 donde se
comercializaba la carne de ave eviscerada fresca, con menudos y sin garras
ni cabeza.
3
�En la década del 90 comenzó la comercialización de carne de pollo trozada
fresca y congelada, algo que vemos actualmente, junto con lo descripto en
la década del 80, aparecieron los cortes deshuesados cocidos congelados,
siendo un segmento importante en la comercialización de esta carne.
En la última década la carne de pollo es el producto que presentó el mayor
aumento de demanda en el mercado mundial de carnes. La carne aviar
representa el 45% de toda la carne comercializada mundialmente.
El crecimiento de la demanda por carne de aves continuará liderando el
aumento en el consumo de carnes, debido a su estatus como la fuente más
económica y más accesible de proteínas de origen animal. Sin embargo,
mientras en algunos países la disminución en los costos de alimentación ha
sido un estímulo importante en el aumento de la producción, en otros casos,
las enfermedades, principalmente la influenza aviar, han limitado su
crecimiento.
Los principales países productores son EEUU, China y Brasil, en tanto Brasil
y EEUU, lideran las exportaciones. Por su parte, Japón, Arabia Saudita, UE,
México y Rusia son los principales importadores.
La República Argentina mantiene un espacio en el mercado internacional
ocupando el 8º lugar como productor y 8º como exportador.
La faena nacional de aves en establecimientos habilitados por el SENASA
alcanza cerca de 722 millones de cabezas anuales, y considerando la faena
provincial y municipal se calculan aproximadamente 800 millones de
cabezas. Su distribución porcentual por provincias es: Entre Ríos 50,96 %,
Buenos Aires 34,83%, Córdoba 4,63%, Santa Fe 4,61%, Rio Negro 3,31% y
el resto del país con el 1,66 %.
4
�El consumo ha experimentado un importante incremento desde 2003 (20
kg. per cápita) llegando un consumo per cápita en el año 2019 de 43,33 Kg/
persona/año.
Diversas razones motivaron el aumento del consumo. Por un lado, la
reducción del precio al consumidor y su relación con el precio de la carne
vacuna se combinaron favorablemente otorgándole mayor competitividad.
La significativa disminución del precio fue el resultado de la reducción del
costo industrial -vía incorporación de tecnología-, la fuerte integración de la
cadena y la incidencia que tuvo la apertura del comercio exterior. Por otro
lado, contribuyeron a aumentar el consumo las cualidades dietéticas y
nutricionales de la carne aviar, sumadas al desarrollo de nuevos productos
semi-listos o preparados que respondieron a los cambios en los hábitos de
vida del consumidor.
Durante el 2019, se exportaron a 60 países. De acuerdo con el volumen,
las exportaciones se distribuyeron principalmente entre los siguientes
países: 26% China, 11% Sudáfrica, 7% Chile, 3% Hong Kong, 0.2%
Alemania, el 52% restante corresponde a otros países como Omán,
Angola, Emiratos Árabes, Bélgica, Vietnam, Singapur, Cuba, etc.
2.2. Características de la producción de carne aviar en
la República Argentina
El ciclo avícola productivo de carne (línea pesada) comienza con la
importación de reproductores abuelos de un día de edad de países cuyos
Certificados Veterinario Internacional (CVI) son acordados previamente.
Actualmente en el país hay 4 líneas genéticas de abuelos (ROSS, COBB,
ARBOR ACRES y HUBBART), comercializado por cinco firmas, las cuales
obtienen sus reproductores padres y a su vez le comercializan a más de 70
empresas.
5
�En la Argentina, la producción de pollos parrilleros se realiza, en un 98%,
mediante sistemas de producción integrados. Estos sistemas responden a
un modelo de integración vertical de procesos. El grado de integración es
variable entre empresas según las etapas de producción que controlan
directamente (reproducción de abuelos y padres, incubación, engorde,
fabricación de alimentos, faena de aves, procesado, etc.).
Las empresas avícolas, también denominadas “empresas integradoras”,
realizan la etapa de engorde en granjas propias o contratan el servicio de
productores granjeros. Esta última situación es la más implementada, en la
cual la empresa aporta las aves, el servicio veterinario, el alimento, la faena
y comercialización de los productos y el granjero recibe una remuneración,
por ave faenada, por el aporte de las instalaciones, la mano de obra, la
electricidad y la calefacción.
Un pequeño porcentaje de la producción de pollos parrilleros se lleva a cabo
a través de productores independientes, que realizan las etapas de cría y
engorde y la adquisición de insumos por cuenta propia.
El Centro de Empresas Procesadoras Avícolas (CEPA) agrupa a los
productores argentinos de carne de aves y representa a 32 empresas, de
las cuales 27 son exportadores.
Se proyecta de acá al 2025 un crecimiento de alrededor del 30% en las
exportaciones de pollo a nivel mundial, siendo Asia del Este, la Unión
Europea, Arabia Saudita, México, Sub-Sahara Africana, Norte y Medio Este
Africano los países y regiones que más van a crecer.
El sector enfrenta permanentes cambios en el escenario global, donde
muchos de los países importadores se están reconvirtiendo en productores
de pollo teniendo como eje la seguridad y soberanía alimentaria.
6
�2.3. Situación de la producción de huevo mundial y en la
República Argentina
La producción mundial de huevos también ha mostrado un dinamismo notable en las últimas décadas. Este crecimiento no ha sido homogéneo, ya que
mientras que en la década de los 90 los países desarrollados contribuían
con 52% de la producción global, en 2015 ya los países menos desarrollados
o emergentes aportaban más del 60%, siendo China la principal causa de
este cambio.
Dentro de este escenario, Asia contribuye con 62,1% de la producción global y Europa, con 14,3%, mientras que Centro y Sudamérica aportan el
9,8%.
En Sudamérica la producción ha aumentado exponencialmente, donde Brasil lidera la producción de huevos en la región, con 47,4% del total. Lo sigue
Colombia, con 14,5% de participación, y más atrás se ubican Argentina,
Perú y Chile. Estos cinco países abarcan el 87% de la producción de la región.
El 97% va a consumo interno y el 3% restante se exporta a más de 56
países habilitados.
El consumo ha experimentado un importante y sostenido incremento desde
2002 con 129 a 284 unidades per cápita en 2019, ubicando a la Argentina
como el 5º consumidor de huevos del mundo.
2.4. Características de la producción de huevo en la
República Argentina
El ciclo avícola productivo de huevo (línea liviana), comienza con la
importación de reproductores padres de un día de edad de países cuyos
certificados (CVI) sean acordados previamente, principalmente desde Brasil,
7
�y dependiendo de la situación sanitaria por influenza aviar, desde España y
Alemania.
A diferencia de la producción de pollos, el sistema de producción de huevos
no se halla integrado verticalmente. Los productores de huevos adquieren
los insumos y realizan la venta del producto por cuenta propia. La compra
de las gallinas ponedoras, el alimento, los aspectos sanitarios, el transporte
de insumos, las instalaciones y la mano de obra son gerenciadas por el
productor.
La etapa de recría se realiza en galpones a piso o a jaula y la etapa de
postura es llevada a cabo en su mayoría en galpones con jaulas.
Aproximadamente el 90% de los productores compran la pollita bb y
realizan la etapa de recría y producción en la misma granja. La producción
de huevo se concentra principalmente en las provincias de Buenos Aires
39.3%, Entre Ríos 26.7%, Córdoba 8.3% y Mendoza 7.6%.
Las empresas productoras de huevos son agrupadas en la Cámara
Argentina de Productores Avícolas (CAPIA) que agrupa a más de 400
empresas a lo largo del país. Representa actualmente el 80% del sector y
tiene como principal misión auspiciar el desarrollo y consolidar la industria
avícola.
La avicultura de postura en la Argentina tiene mucho para ofrecer, posee un
potencial enorme, el cual depende exclusivamente de los actores que la
componen para fijar las metas a las que quiera llegar.
3. ENFERMEDADES BAJO PROGRAMA
El Programa de Sanidad Aviar tiene como objetivo disminuir en forma
significativa el impacto negativo de las enfermedades de las aves
8
�domésticas que afectan la producción, comercialización y salud pública del
país.
En base a este criterio, se determinan las denominadas “Enfermedades bajo
programa”. A continuación, se detallarán los componentes más relevantes
de estas enfermedades (etiología, patogenia, epidemiología, cuadro clínico),
la situación país y normativa relacionada, lo cual va a permitir comprender
las actividades llevadas a cabo por el Programa, detalladas en los siguientes
módulos.
3.1. El virus de la influenza aviar pertenece a la familia
Orthomyxoviridae, es un virus RNA segmentado y envuelto. De acuerdo con
sus nucleoproteínas y proteínas matrices, se clasifican en 3 tipos A, B y C. A
su vez, atendiendo a sus 2 antígenos de superficie Hemoaglutinina (H) y
Neuraminidasa (N), se subclasifican en subtipos.
Estos virus exhiben una gran variabilidad antigénica y capacidad de
mutación, así como un amplio espectro de virulencia. Las variaciones de los
antígenos principales H y N son las causas de los cambios en la
epizootiología de la influenza tipo A.
Los virus de la influenza aislados de aves pertenecen sin excepción al tipo
A, y si bien encontramos subtipos de H1 a H18 y N1 a N11 (198
combinaciones posibles), en las aves están presentes del H1 al H16 y N1 al
N9, siendo el resto encontrados recientemente en murciélagos (H17-H18 y
N10- N11). Entre los virus de la influenza de las aves y de los mamíferos
existen relaciones de parentesco antigénico.
La OIE define la influenza aviar de declaración obligatoria como “una
infección de aves de corral, causada por cualquier virus de influenza tipo A
perteneciente al subtipo H5 o H7 o por cualquier virus de influenza aviar
con un índice de patogenicidad intravenosa (IPIV) superior a 1,2 en pollos
9
�de 6 semanas de edad, o que cause una mortalidad del 75% por lo menos,
en pollos de 4 a 8 semanas de edad infectados por vía intravenosa”
Cabe aclarar esta definición, ya que solo son de denuncia obligatoria los
casos en aves de corral (en aves industriales o traspatio, pero NO en
silvestres) y con aislamiento o detección viral (con aislamiento o detección
por RT PCR, NO solo serología positiva). Es decir, que “la denuncia a la OIE,
y consecuente pérdida del estatus del país se da si el caso ocurre en aves
de corral y hay detección/aislamiento viral”.
Históricamente, los problemas más severos de influenza aviar han sido
causados por virus de los subtipos H5 y H7, los que inicialmente pueden
presentarse como de baja patogenicidad y después, por mutación en su
hemoaglutinina, se transforman en virus de alta patogenicidad.
En este siglo, los brotes más importantes de IA han sido producidos por
virus de los subtipos de H5N1, H5N2, H5N3, H5N8, H5N9, H7N1, H7N3,
H7N4 y H7N7. Los virus pertenecientes al subtipo H9, se han presentado en
ocasiones con mediana patogenicidad.
Es una enfermedad altamente contagiosa, que tiene como principales
huéspedes a gallinas, pollos y pavos, aunque es probable que todas las
especies aviares sean susceptibles a la infección.
La importancia epidemiológica de las aves silvestres radica en que las
mismas pueden portar y distribuir el virus sin provocar en ellos
enfermedades. Corresponde dar particular importancia a las aves acuáticas
silvestres y, especialmente a aves del orden anseriforme (patos, gansos y
cisnes), en cuyo tracto digestivo se multiplican estos virus, para ser
expulsados con las heces y difundirse ampliamente en el medio ambiente
acuático. También los patos domésticos pueden estar infectados en forma
inaparente con virus de la influenza, y contagiar a otras especies de aves
domésticas.
10
�Los signos y síntomas son muy variables dependiendo de la patogenicidad
del virus.
El virus de influenza de baja patogenicidad (IABP) causa infecciones
entéricas o respiratorias, produciendo una enfermedad leve o moderada.
Los signos de la enfermedad pueden ser plumaje erizado, reducción de la
producción de huevos, o trastornos leves en el sistema respiratorio y,
generalmente, cursan sin la manifestación de lesiones graves y
características.
El virus de influenza de alta patogenicidad (IAAP) causa infecciones
sistémicas, produciendo enfermedad grave. Al tratarse de una enfermedad
hiperaguda, se suele registrar una alta mortandad con ausencia casi total
de signos o lesiones.
En la República Argentina la influenza aviar es de declaración obligatoria, es
una enfermedad exótica, de la cual no se han detectado casos ni aislado
virus hasta la fecha.
Desde el año 1998, el SENASA ha implementado acciones y actividades
dirigidas a la prevención de la influenza aviar (IA). Una de las primeras
medidas que se adoptaron fue la puesta en marcha de las técnicas
diagnósticas por serología para determinación de anticuerpos contra
influenza tipo A.
Estas medidas obedecieron en un comienzo, más al propósito de ofrecer
garantías sanitarias a los países importadores de productos avícolas
argentinos, que a una preocupación por el posible ingreso de esta
enfermedad, ya que hasta el momento, la influenza aviar era una
enfermedad de presentación esporádica en algunos países del mundo, en su
mayoría del hemisferio norte.
11
�Ante la extraordinaria difusión geográfica, en particular de la cepa A/H5N1
del virus de IA, el SENASA desarrolló e implementó diversas acciones de
prevención contra la enfermedad.
El país cuenta con la Resolución SENASA N° 73/2010, que ha adoptado la
definición de la enfermedad acorde al Capítulo correspondiente de la OIE y
obliga su notificación, vigilancia y eventual control y erradicación.
Anualmente, se implementa un plan de prevención que incluye el control de
las importaciones, la vigilancia epidemiológica, el control de la bioseguridad
de establecimientos avícolas comerciales, la capacitación a agentes del
organismo y la difusión e información a actores de la actividad avícola,
entre otras actividades programadas. Frente a la aparición de sospechas o
casos de estas enfermedades, los agentes del SENASA implementan
actividades relacionadas a la investigación inmediata de la sospecha o
eventual control y erradicación.
3.2. La enfermedad de Newcastle (ENC) es considerada en
todo el mundo como una de las enfermedades más importantes en aves de
corral debido a la alta mortalidad que puede producir y a las repercusiones
económicas que derivan de las restricciones de comercio y embargos en las
zonas y países donde se han producido brotes.
Es una infección vírica aviar, producida por un virus RNA monocatenario de
la familia Paramyxoviridae, subfamilia Paramyxovirinae. De los 9 serotipos
existentes, es el paramixovirus-1 (PMV-1) el denominado Enfermedad de
Newcastle, siendo de declaración obligatoria cuando “su índice de
patogenicidad intracerebral (IPIC) es superior a 0,7 en pollitos (Gallus
gallus) de un día de edad o se ha demostrado (directamente o por
deducción) la presencia de múltiples aminoácidos básicos en el virus, en el
extremo C-terminal de la proteína F2 y un residuo de fenilalanina en la
posición 117, la cual está en el extremo N-terminal de la proteína F1. Por
12
�«múltiples aminoácidos» se entiende la presencia de al menos tres residuos
de arginina o lisina entre las posiciones 113 y 116. La imposibilidad de
demostrar la presencia de este modelo característico de residuos de
aminoácidos exigirá la caracterización del virus aislado mediante una
prueba de determinación del IPIC”. (Organización Mundial de Sanidad
Animal. OIE, 2014).
La Enfermedad de Newcastle (ENC) fue descubierta en Newcastle-uponTyne, Inglaterra en 1926 (Doyle) y hoy es endémica de muchos países.
El virus de la ENC se ha detectado en más de 250 especies de aves, en 27
de los 50 órdenes de aves que existen. Todas las aves parecen ser
susceptibles a la infección, aunque el grado de la enfermedad varía según la
especie y en función de la cepa viral.
Los miembros del orden Phasianiformes (aves gallináceas), en particular los
pollos y gallinas, son altamente susceptibles a la ENC, según los estudios
realizados a nivel experimental y en observaciones a campo.
Los patos y los gansos son considerados potenciales reservorios del virus de
la enfermedad de Newcastle (VEN) y presentan generalmente infecciones
inaparentes, sin embargo son capaces de albergar el virus y actuar como
diseminadores.
Los VEN encontrados comúnmente en aves silvestres, acuáticas silvestres
migratorias y otras aves acuáticas, generalmente son de baja patogenicidad
para los pollos, similares a los virus clasificados como entéricos
asintomáticos o lentogénicos. En general, las aves silvestres muestran
pocos o ningún síntoma, incluso tras ser infectadas con cepas virulentas del
VEN. La importancia que tienen las aves acuáticas es que pueden actuar
como reservorios del VEN y como fuente de infección en aves de corral,
pudiendo originar, eventualmente, brotes de EN en estas especies. Muy
13
�esporádicamente cepas patógenas son encontradas en aves silvestres que
pueden jugar un papel de mayor importancia en la difusión del VEN una vez
que la infección se ha producido en aves de corral.
Las palomas (orden Columbiformes) son muy susceptibles a la ENC y los
virus lentogénicos o mesogénicos del VEN son endémicos en sus
poblaciones. Pueden transmitir el VEN a las aves domésticas.
Las vías más frecuentes de transmisión del VEN son el contacto directo de
aves, o el contacto indirecto con alimentos contaminados, subproductos
contaminados, agua, transporte por personas y otros fómites.
Como se indicó anteriormente, la infección es normalmente transmitida por
contacto directo de aves enfermas y también por aves sin síntomas clínicos
que poseen el virus. Las aves vacunadas que están clínicamente sanas
también pueden excretar el virus después de estar expuestas.
Existen numerosas vías de introducción potencial del VEN en un país o un
área libre de enfermedad, éstas incluyen: el comercio legal de aves
domésticas, el comercio legal de aves exóticas, el comercio legal de
productos avícolas (huevos, carne y derivados), la migración de aves
silvestres, la transmisión mecánica (movimientos de personas y objetos
contaminados), la vía aerógena, a través de vacunas contaminadas, por un
acto bioterrorista y mediante el comercio ilegal de aves y subproductos
avícolas.
En la República Argentina, la Enfermedad de Newcastle fue diagnosticada
por primera vez en el año 1961, estando presente desde ese año hasta
1987 en el que se registró el último foco en pollos parrilleros, del
Departamento Uruguay de la Provincia de Entre Ríos.
Actualmente, la República Argentina es un país libre de enfermedad de
Newcastle.
14
�Como contención se utilizó el sacrificio sanitario, la vacunación en anillo y la
posterior vigilancia epidemiológica. Desde entonces y hasta el presente no
se han registrado nuevos casos de la enfermedad debido,
fundamentalmente, a los estrictos programas de vacunación que se
efectúan en todo el país y a la eficacia de las vacunas utilizadas.
Durante los años 1996 y 1997, se realizó un estudio retrospectivo sobre la
enfermedad de Newcastle en la Argentina, concluyendo el mismo con la
declaración de “país libre de enfermedad de Newcastle” por medio de la
Resolución N° 446/1997 de la ex Secretaría de Agricultura, Ganadería y
Pesca de la Nación, la cual fue comunicada a la Organización Mundial de
Sanidad Animal (OIE) en ese mismo año. La República Argentina ha sido
reconocida oficialmente como país libre de enfermedad de Newcastle
velogénico viscerotrópico por la Unión Europea, Canadá, Chile y los Estados
Unidos.
El SENASA ha establecido estrictas normas de control y de vigilancia
epidemiológica activa y pasiva implementándolas en forma permanente
para la enfermedad en todo el país, tendientes a salvaguardar la situación
epidemiológica alcanzada mediante la Resolución Nº 683 del 31 de Octubre
de 1996 del ex - Servicio Nacional de Sanidad Animal.
La principal herramienta de prevención de la enfermedad es la ejecución
de un estricto programa de vacunación en todo el país.
Cabe aclarar que la vacunación contra enfermedad de Newcastle en aves
domésticas es de carácter voluntario y se realiza como parte de los
programas de vacunación de rutina a cargo de las empresas privadas. Gran
parte de los productores optan por vacunar contra la enfermedad en forma
preventiva. Los planes de vacunación abarcan las aves en producción
industrial o intensiva. Las explotaciones de tipo doméstico (aves de
15
�traspatio) de gallináceas no vacunan, excepto cuando las aves de raza u
ornamentales asisten a ferias y exposiciones rurales.
Sin embargo, cabe aclarar que la Resolución de la ex SAGPyA N° 723/2000,
establece la vacunación obligatoria de las palomas de raza mensajera en
todo el territorio nacional contra la enfermedad de Newcastle, ya que son
una de las especies aviares de mayor susceptibilidad y resultan de alto
riesgo para la diseminación de esta enfermedad, ya que la actividad que
desarrollan involucra un puente de contacto entre aves susceptibles
(silvestres y comerciales).
Actualmente, la cobertura vacunal alcanza el 85 % de la población avícola
comercial del país. Esto se establece por la relación de vacunas
comercializadas por año, en relación a la cantidad de aves existentes
durante ese mismo año y la cantidad de dosis que se administran.
Por lo general, los lotes de pollos de engorde reciben una dosis (o
eventualmente dos dosis) de vacunas vivas y/o inactivadas. Las aves
reproductoras y las gallinas de postura de huevo comercial son vacunadas
durante la cría y recría con un mínimo de 3 a 4 aplicaciones de vacuna a
virus vivo atenuado, seguida generalmente por una vacuna aplicada antes
de la producción. En algunas compañías se utilizan vacunas durante la fase
de producción (a partir de la semana 19 de vida y cada 90 días).
La legislación vigente autoriza para su uso vacunas elaboradas a partir de
cepas lentogénicas exclusivamente, con un índice de patogenicidad
intracerebral (IPIC) inferior a 0.4. El uso de cepas mesogénica y velogénicas
(viscerotrópicas o neurotrópicas) para la elaboración de vacunas se encuentra
prohibido.
La Resolución Senasa N° 130 del 16 de marzo de 2021, establece las
características que deben reunir las vacunas contra la enfermedad de Newcastle
16
�en la cual se autoriza la importación y utilización de vacunas vivas e inactivadas
contra la Enfermedad de Newcastle elaboradas con cepas lentogénicas y/o
recombinantes con fracción Newcastle. Esta norma
abroga a la Resolución
Senasa N° 1086/2019.
Asimismo, se autoriza a los laboratorios nacionales y multinacionales a
elaborar y/o comercializar vacunas a virus vivo e inactivado contra la ENC
utilizando exclusivamente cepas lentogénicas con un Índice de
Patogenicidad Intracerebral (IPIC) igual o menor a CERO COMA SIETE (0,7)
en la elaboración.
Dentro de las vacunas a virus vivo, son usadas principalmente las
elaboradas con cepas lentogénicas tipo B1 (B1 y La Sota). También están
aprobadas, aunque de menor utilización, las cepas: Clon 30, VG/Georgia,
Ulster, C2, Ulster y PHY LMV 42.
Para esta enfermedad, se implementa un monitoreo anualmente
programado que incluye la vigilancia epidemiológica (activa y pasiva)
dirigida especialmente a aves de traspatio no vacunadas.
3.3. La salmonelosis es una de las enfermedades infecciosas más
comunes en el mundo, que afecta tanto a seres humanos como animales. Es
causada por dos especies de Salmonella (S. entérica y S. bongori).
El género Salmonella está incluido dentro de la familia enterobacteriaceae y
son bacilos gran negativos lactosa y urea negativas, móviles o inmóviles. La
especie S. entérica se divide a su vez en 6 subespecies, siendo la
subespecie entérica la más importante. Las cepas de Salmonella a su vez se
clasifican en más de 2.000 serovariedades, según la clasificación KaufmanWhite, basada en la diversidad de los siguientes antígenos: lipopolisacáridos
(LPS) que se corresponden con los antígenos somáticos O y las proteínas
flagelares, correspondientes a los antígenos H.
17
�Algunos serovares son específicos de especie, como S. gallinarum -que a su
vez incluye dos biovares, S. Gallinarum biovar gallinarum y biovar pullorumy es el único serovar inmóvil. El biovar gallinarum (tifosis aviar) afecta a
aves jóvenes, caracterizándose por una diarrea verdosa y, en aves adultas,
la caída significativa de la producción. El biovar pullorum (pullororsis) afecta
a aves jóvenes causando una diarrea blanca, sin embargo las aves adultas
cursan generalmente como portadores asintomáticos.
Otros serovares pueden afectar a distintos huéspedes, recibiendo el nombre
de salmonellas paratíficas o paratifoideas. Los serovares S. Typhimurium, S.
Enteritidis y S. Heidelberg son ejemplos de salmonellas paratíficas, se
caracterizan por poseer la capacidad de afectar a más de una especie.
La infección con serovariedades paratíficas de Salmonella pueden cursar de
manera subclínica, dificultando su detección. La capacidad de Salmonella de
sobrevivir y multiplicarse en macrófagos, evadiendo la respuesta humoral,
les permite persistir en el hospedador, dando lugar a huéspedes
asintomáticos.
Las distintas serovariedades presentan características diferenciales en
cuanto a su capacidad de colonización y virulencia. La presencia de una
serovariedad en el tracto digestivo de las aves estaría excluyendo la
posibilidad de que otra serovariedad relacionada ocupe ese nicho,
estableciéndose de esta manera una competencia entre serovariedades
dentro de cada individuo.
En un estudio llevado a cabo con aislamientos de Salmonella de origen
humano, se demostró que la capacidad de invasión también difiere entre las
serovariedades, siendo S. Enteritidis y S. Heidelberg las que presentaron
mayor capacidad invasiva (Jones et al, 2008).
18
�Durante las últimas décadas y a nivel mundial, ha habido un aumento de
enfermedades zoonóticas transmitidas por alimentos procesados tales
como la Salmonelosis. El control de esta enfermedad es actualmente una
de las mayores preocupaciones de los sectores de sanidad animal y salud
pública.
Las Salmonellas paratíficas (ej. S. entérica var. Enteritidis y var.
Typhimurium) son las principales causas de gastroenteritis bacterianas en
humanos a nivel mundial –especialmente en países desarrollados– y se
asocian frecuentemente al consumo de productos avícolas contaminados.
Su presencia en huevos y carne de aves afecta la seguridad de los
alimentos y constituye una barrera sanitaria que limita la exportación.
La prevención y el control de estos patógenos requiere, por un lado,
comprender sus complejos ciclos de transmisión y, por el otro, implementar
actividades de vigilancia epidemiológica para la identificación de casos. A
fin de garantizar la inocuidad de los alimentos de origen aviar, se debe
controlar la introducción y multiplicación de estos microorganismos a lo
largo de la cadena productiva avícola, es decir “desde la granja a la mesa”,
en todos los procesos que suponen producción, transformación, distribución
y consumo.
Por tal razón, producir alimentos avícolas libres de estos patógenos y en
particular de las serovariedades que producen ETAs en el hombre, es una
prioridad del SENASA, la cual se traduce en menores costos para las
empresas avícolas y en un escenario más favorable para la
comercialización de estos alimentos, máxime teniendo en cuenta que las
barreras sanitarias imperan sobre las arancelarias.
Asimismo, el Código Sanitario para los Animales Terrestres de la
Organización Mundial de Sanidad Animal (OIE) en su capítulo 6.5
recomienda medidas para la prevención, la detección y el control de las
infecciones de aves de corral por Salmonella, complementando a su vez al
19
�Código de Prácticas de Higiene para la Carne y al Código de Prácticas de
Higiene para los Huevos y Ovoproductos del Codex Alimentarius,
considerando que una estrategia de reducción de los organismos patógenos
en las granjas, es la primera etapa del proceso que contribuirá a reducir la
presencia de agentes patógenos transmisibles por los alimentos en el
producto avícola final.
Ante esta situación, entre los años 2009 y 2013, se ha realizado un
muestreo en las granjas avícolas de pollos de engorde y gallinas de postura,
con el objetivo de estimar la prevalencia de Salmonellas no específicas de
especie y con importancia en Salud Pública, posibles contaminantes del
producto avícola en la etapa final de su procesado.
Los resultados obtenidos permitieron dar sustento a la intervención del
SENASA, elaborando la Resolución SENASA N° 86/2016 que puso en marcha
el “Programa de vigilancia y control de la contaminación por Salmonellas sp
en granjas avícolas comerciales”, con el objetivo de obtener una reducción
continua en la prevalencia de Salmonellas paratíficas en las aves y en el
medio ambiente de dichas granjas, con el fin de proteger la salud del
patrimonio avícola nacional y procurar la seguridad alimentaria e inocuidad
de los alimentos de origen aviar.
Cabe aclarar que las Salmonellas bajo programa son S. Enteritidis, S.
Typhimurium y S. Heidelberg.
RESUMEN DE LAS ACTIVIDADES DEL PROGRAMA DE CONTROL DE
SALMONELLA EN GRANJAS COMERCIALES.
20
�El muestreo está a cargo del sector privado, el veterinario acreditado es el
responsable de la toma de muestra y posterior seguimiento.
Las muestras obtenidas deben ser enviadas a los laboratorios que trabajan
en adhesión con el Plan Nacional de Sanidad Avícola (PNSA), para la
realización del diagnóstico bacteriológico (determinación de Salmonella
spp.) Podrán encontrar los mismos en el siguiente link:
https://www.argentina.gob.ar/sites/default/files/2019lista_de_laboratorios_adheridos_al_programa_de_sanidad_aviar.pdf
En aquellos casos en los que se determine la presencia de Salmonella spp.,
se procederá a la tipificación para determinar la serovariedad mediante la
tipificación serológica o por pruebas moleculares (PCR).
Se considera granja positiva cuando se detecte la presencia de Salmonella
ser. Enteritidis, S. ser. Typhimurium y/o S. ser. Heidelberg (distintas de las
cepas vacunales) en el ambiente.
En este caso, el veterinario acreditado del establecimiento, el responsable
técnico del laboratorio, o bien, el Programa de Sanidad Aviar, comunicarán
inmediatamente al veterinario oficial local con jurisdicción en el
establecimiento en cuestión.
21
�En las granjas de Pollo de engorde se procederá a dar de baja la autogestión
del establecimiento, se permitirá la faena del lote (en caso de estar en
granja) y se bloqueará el ingreso de animales, hasta tanto se regularice la
situación.
El veterinario acreditado debe presentar un descargo a la oficina local de
las medidas que implementará para solucionar dicha contaminación.
Una vez presentado el mismo, el veterinario de la Oficina local procederá a
inspeccionar la granja, a fin de corroborar el cumplimiento de las medidas
dispuestas mediante acta de constatación y planilla de inspección y podrá
identificar las medidas que considere insuficientes y/o deficientes.
Una vez cumplimentado se permitirá el ingreso de aves y el alta la
autogestión en caso de considerarlo pertinente.
En las granjas de gallinas de huevos para consumo se procederá a dar de
baja la autogestión del establecimiento y se bloqueará el ingreso de
animales, hasta tanto se regularice la situación.
El veterinario acreditado debe presentar un descargo a la oficina local de
las medidas que implementará para solucionar dicha contaminación.
Una vez presentado el mismo, el veterinario de la Oficina local procederá a
inspeccionar la granja, a fin de corroborar el cumplimiento de las medidas
dispuestas mediante acta de constatación y planilla de inspección e
identificar las medidas que considere insuficientes y/o deficientes.
Las medidas implementadas pueden ser respaldadas con el uso de vacunas
vivas y/o inactivadas contra S. Gallinarum y/o S. Enteritidis u otra
serovariedad oportunamente aprobadas por el SENASA, a fin de alcanzar
una reducción efectiva en la diseminación de Salmonellas y/o inhibición de
su crecimiento en huevos.
22
�Una vez cumplimentado se permitirá el ingreso de aves y el alta la
autogestión en caso de considerarlo pertinente.
Para una mayor comprensión, el Programa de Sanidad Aviar ha elaborado
un Manual de procedimientos, el mismo se encuentra como material
complementario así también en el siguiente link:
https://www.argentina.gob.ar/sites/default/files/
2._manual_de_procedimientos_operativos_vigilancia_y_control_de_salmonell
a_spp._en_granjas_avicolas_comerciales_res._senasa_ndeg_86.2016._version_2018_0.pdf
En aves reproductoras, la vigilancia y control de Salmonellas tíficas
(Salmonella Gallinarum, S. Pullorum), paratíficas (S. Enteritidis S.
Typhimurium y S. Heidelberg) y micoplasmosis (Micoplasma Gallisepticum y
Micoplasma Sinoviae), se llevan a cabo en forma obligatoria desde el año
2002, en el marco del Plan Nacional de Sanidad Avícola, cuya legislación es
la Resolución SENASA Nº 882
Esta vigilancia que también la realiza el sector privado mediante los
laboratorios adheridos, y a su vez es fiscalizado y auditado anualmente por
el Organismo.
3.4. Micoplasmosis cabe mencionar que los agentes causales son
microorganismos que, por su tamaño, se encuentran entre las bacterias y
los virus. El Mycoplasma gallisepticum es responsable de la enfermedad
respiratoria crónica y el Mycoplasma sinoviae de la sinovitis infecciosa.
Esta enfermedad esta enmarcada bajo la Resolución SENASA 882/2002,
bajo un criterio de coparticipación del sector privado y el sector oficial.
Las normas técnicas del plan establecen la cantidad de muestras, la
frecuencia de los muestreos, el tipo de muestras para cada categoría y las
pruebas de laboratorio que se deben emplear para cada determinación. En
23
�forma ordinaria, las empresas remiten las muestras extraídas por el
veterinario acreditado de la empresa a laboratorios adheridos al Plan, los
cuales se encuentran autorizados por SENASA para procesar las muestras
correspondientes al mismo.
La base técnica utilizada para el diseño de este programa es el control de
las micoplasmosis y salmonelosis aviares, en base al remplazo de planteles
contaminados por planteles libres y la aplicación de medidas de
bioseguridad en las cabañas de reproducción y plantas de incubación.
Para una mayor comprensión, el Programa de Sanidad Aviar ha elaborado
un Manual de procedimientos en relación a la normativa 882/2002, el mismo
se encuentra como material complementario así también en el siguiente
link:
https://www.argentina.gob.ar/sites/default/files/
1._manual_de_procedimientos_operativos_programa_de_control_de_micopla
smosis_y_salmonelosis_en_aves_reproductoras_res._senasa_ndeg_882.2002-version_2018.pdf
Con el objetivo de verificar el cumplimiento del Plan Nacional de Sanidad
Avícola (PNSA), el SENASA realiza anualmente auditorias en plantas de
incubación (PI) de huevos fértiles. En las mismas se toman muestras de dos
lotes de los nacimientos del día previsto de visita, en caso de ser plantas de
baja producción se podrá tomar muestra de un solo lote. De cada lote se
recogerán 20 huevos picados no nacidos desechados dentro del cascarón,
los que serán colocados dentro de una bolsa contenedora y enviados al
laboratorio central del SENASA para su diagnóstico.
3.5. Otras Enfermedades: Si bien hay otras enfermedades importantes
en la producción avícola nacional, el SENASA no las incluye dentro de su
programa pero actúa o interviene en casos de epizootias, colaborando con
el sector privado para su control.
24
�La Laringotraquítis Infecciosa (LTI) es una enfermedad endémica y de
presentación esporádica, afectando principalmente a pollos de engorde.
Para su intervención cuando así lo requiera, el SENASA elaboró la
Resolución SENASA N° 333 del 2015 que contiene el plan de contingencia
de dicha enfermedad.
La Bronquitis Infecciosa (BI) también es otra de las principales
enfermedades que se incrementan año tras año y el SENASA participa en su
control.
A nivel sanitario, estas y otras enfermedades aviares tales como la
enfermedad de Gumboro (bursitis infecciosa), cólera aviar, enfermedad de
Marek, viruela aviar, anemia infecciosa, síndrome de caída de la postura,
encefalomielitis aviar, infecciones por adenovirus, Micoplasmosis aviar (M.
gallisepticum y M. synoviae) y Tifosis aviar son enfermedades endémicas y
de aparición esporádica en las aves de producción industrial, controladas
con el uso de vacunas aprobadas por el SENASA pero de aplicación
voluntaria por parte de los empresas productoras.
Es importante destacar que la mejor herramienta para controlar y/o evitar el
ingreso en una explotación avícola de agentes patógenos, es el
cumplimiento de todas las medidas de bioseguridad y la aplicación de las
buenas prácticas de producción y de manufactura.
Asimismo, hay que hacer hincapié en el concepto que, en la patología aviar
moderna, es hablar de “enfermedades multicausales” o multifactoriales:
durante los meses de invierno aumentan los problemas de manejo de
temperatura y ventilación en los galpones de crianza, se incrementa la
concentración de amoníaco y por lo tanto, existe una situación de estrés
ambiental que desencadena en cuadros respiratorios, donde los mismos
virus vacunales pueden desencadenar una enfermedad multicausal.
25
�
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Módulo 1: Situación actual de la producción avícola: Enfermedades bajo programa.
Publisher
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Servicio Nacional de Sanidad y Calidad Agroalimentaria
Date
A point or period of time associated with an event in the lifecycle of the resource
[201?]
Contributor
An entity responsible for making contributions to the resource
Coordinación Técnica de Capacitación y Desarrollo y Carrera del personal
Language
A language of the resource
Es
Type
The nature or genre of the resource
Monografía
Identifier
An unambiguous reference to the resource within a given context
B.S.0105
Abstract
A summary of the resource.
El presente módulo trata sobre la situación actual de la producción avícola, las enfermedades bajo programa.
Table Of Contents
A list of subunits of the resource.
1. VETERINARIO PRIVADOS ACREDITADOS EN SANIDAD Y
BIENESTAR AVIAR
1.1. Objetivo de la capacitación
2. SITUACIÓN ACTUAL DE LA PRODUCCIÓN AVÍCOLA
2.1. Situación de la producción de carne aviar mundial y en la
República Argentina
2.2. Características de la producción de carne aviar en la
República Argentina
2.3. Situación de la producción de huevo mundial y en la
República Argentina
2.4. Características de la producción de huevo en la
República Argentina
3. ENFERMEDADES BAJO PROGRAMA
3.1. Influenza aviar
3.2. Enfermedad de Newcastle (ENC)
3.3. Salmonelosis
3.4. Micoplasmosis
3.5. Otras Enfermedades
-
https://biblioteca.senasa.gob.ar/files/original/28f7c7d0950a409bf5980d7d63d7ad81.pdf
d5187891fb4743e58d77f75f9a3ed5bc
PDF Text
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CURSO
VETERINARIOS ACREDITADOS
EN SANIDAD Y BIENESTAR
AVIAR
MÓDULO 3
▪ ACTUACIÓN ANTE LA SOSPECHA Y CONFIRMACIÓN DE ENFERMEDADES EXÓTICAS
▪
COMPARTIMENTACIÓN
�ÍNDICE
1.
Control y erradicación
1.1.
Sospecha de enfermedades de denuncia obligatoria
1.2.
Implementación del plan de contingencia ante la confirmación
de enfermedades exóticas.
1.3 Sacrificio sanitario
1.3.1.
Gasificación con dióxido de carbono (CO2)
1.3.2 Método de espuma de alta hermeticidad
1.3.3 Dislocación cervical
1.4 Eliminación de cadáveres
1.4.1 Enterramiento
1.4.2
Incineración
1.4.3
Compostaje
1.5 Eliminación de la cama, deyecciones de aves o productos
avícolas
2. Sistema de Compartimentación
2
�1. CONTROL Y ERRADICACIÓN
1.1. Sospecha de enfermedades de denuncia obligatoria
El Sistema de Registro y Notificación de Enfermedades Denunciables de los
Animales es de aplicación obligatoria en todo el territorio de la República
Argentina. El Servicio Nacional de Sanidad y Calidad Agroalimentaria (Senasa), es
la autoridad de aplicación del Sistema. La base normativa de la notificación de
enfermedades está fundada en la Resolución Senasa Nº 153/2021, la cual tiene
por objetivo adecuar a la normativa internacional vigente en cada materia sobre
los
sistemas
de
notificación
de
enfermedades
animales,
de
vigilancia
epidemiológica y seguimiento epidemiológico continuo, análisis de riesgo,
emergencias sanitarias y un dispositivo reglamentario que contemple todos los
aspectos de protección y lucha contra las enfermedades. Esta norma abroga las
Resoluciones N° 234/1996 del entonces Servicio Nacional de Sanidad Animal, la
Resolución Senasa N°422/2003 y la Resolución Senasa N° 540/2010.
La Resolución Senasa 153/2021 agrupa todas aquellas enfermedades de denuncia
obligatorias en tres grupos:
GRUPO I NOTIFICABLES quedan incluidas aquellas enfermedades que deben
notificarse de manera obligatoria cuya sospecha o confirmación debe ser
informada dentro de las 24 hs, quedando comprendidas las enfermedades
transfronterizas de los animales, aquellas enfermedades para las cuales la
República Argentina posee estatus oficial de libre otorgado por la Organización
Mundial de Sanidad Animal (OIE), las enfermedades consideradas exóticas en
Argentina, y las enfermedades prevalentes que requieren intervención inmediata
del Senasa para proteger la salud pública y animal, según lo establecido en el
programa oficial de prevención, control y/o erradicación.
En este grupo se encuentran incluidas: Influenza Aviar, Enfermedad de Newcastle,
Clamidiosis en aves de corral y Laringotraqueitis infecciosa aviar.
GRUPO II y III REPORTABLES en estos dos grupos quedan incluidas aquellas
3
�enfermedades cuya confirmación de casos deben ser reportadas de manera
inmediata (brote epidémico) en menos de 24 hs. o bien deberán realizar un reporte
con una frecuencia que determine el SENASA.
En estos grupos se encuentran incluidas:
GRUPO II: Micoplasmosis aviar (Mycoplasma gallisepticum y M. sinoviae),
Pullorosis (S. pullorum), Salmonelas móviles (S. enteritidis, S. tiphymurium y S.
heidelberg), Tifosis aviar (S. gallinarum).
GRUPO III: Bronquitis infecciosa aviar, Bursitis infecciosa (Enfermedad de
Gumboro).
Esta norma también establece parámetros productivos que permitirán detectar
precozmente posibles manifestaciones asociadas a signos clínicos relacionados con
la enfermedad de Newcastle e Influenza Aviar, los cuales se fundan en las
siguientes observaciones y criterios.
Observaciones clínicas y patológicas en las aves.
1. Reducción de la ingesta de alimento y agua superior al 20%, sin justificar.
2. Reducción de la producción de huevos superior al 5% durante más de dos días,
sin justificar.
3. Un índice de mortalidad semanal superior a un 3%, sin justificar.
4. Todo indicio clínico o lesión post-mortem que sugiera la presencia de
IA /ENC.
Observaciones epidemiológicas.
1. Si las aves han estado en contacto directo o indirecto con una explotación
avícola que, se haya demostrado infectada con el virus de la influenza aviar
/enfermedad de Newcastle
2. Si una explotación de cría o recría ha distribuido aves que se haya demostrado
que estuvieran infectados con el virus de la influenza aviar/ enfermedad de
Newcastle
3. Si existe la posibilidad de que las aves hayan estado expuestos al virus, por
ejemplo, debido a la entrada en la explotación de personas, vehículos, etc.
4
�El Articulo 6 de la mencionada norma establece la Obligatoriedad de
notificar para toda autoridad nacional, provincial o municipal, profesionales
veterinarios, transportistas, entes sanitarios, personas responsables o
encargadas de cualquier explotación ganadera, industrial o doméstica,
universidades, organismos de investigación, zoológicos, parques o reservas
naturales nacionales, provinciales o municipales y laboratorios diagnósticos
estatales o privados, o cualquier persona humana o jurídica, la notificación y
reporte ante el Senasa de la sospecha o confirmación de caso de todas las
enfermedades, síndromes y eventos listados en la presente norma, en todas
las especies de animales domésticos y de la fauna silvestre.
La Resolución Senasa Nº 153/2021 establece los procedimientos de
notificación frente a una sospecha incluyendo la protocolización y registro de
su ocurrencia temporal y geográfica.
El sistema se activa con la denuncia de un productor, veterinario privado,
transportista, etc.
Este puede realizarla en una Oficina Local, preferentemente de la
jurisdicción en donde se encuentra el predio con el o los animales
sospechosos, a través de la App “Notificaciones Senasa” que se encuentra
disponible en Play Store o también se puede realizar enviando un correo a
notificaciones@senasa.gob.ar . La denuncia de una presunción de
enfermedad es registrada en la Oficina Local con una planilla de "Registro de
enfermedad denunciable de los animales", llenando en forma completa los
datos requeridos. Dentro de las DOCE (12) horas de registrada una denuncia,
el Veterinario Local deberá proceder a cumplimentar la Intervención
Sanitaria en el predio denunciado, protocolizando dicha visita de acuerdo al
formato establecido en la Resolución Senasa Nº 153/2021.
Según el art. 4º de la Ley N° 3959, ley fundamental para las políticas
sanitarias de los animales: Todo propietario o persona que de cualquier
manera tenga a su cargo el cuidado o asistencia de animales atacados por
enfermedades contagiosas o sospechosos de tenerlas, está obligado a hacer
5
�inmediatamente la declaración del hecho a la autoridad local que los
reglamentos sanitarios determinen. Asimismo, los veterinarios de la
actividad privada que se encuentran en permanente contacto con el
productor pecuario facilitando la difusión de los diferentes programas
sanitarios, integran el Sistema Nacional de Vigilancia Epidemiológica
(Resolución Nº 234/96) que les establece también la responsabilidad ante el
conocimiento de cualquier evento sanitario.
Esta responsabilidad de productores y profesionales, personal de transporte
u otros, es la inmediata denuncia ante el veterinario local del Senasa, quien
debe actuar inmediatamente según procedimiento ya detallado. Pero
también la responsabilidad de productores, veterinarios y otros, hasta que
actúe el veterinario oficial, es la determinada en los siguientes artículos de
la Ley mencionada:
Art. 5. - Sin perjuicio de esta declaración y aún antes de que las autoridades
hayan intervenido, desde el momento en que el propietario o su encargado
hayan notado los síntomas primeros de la enfermedad contagiosa, deberán
proceder al aislamiento del animal enfermo, separándolo de los sanos en
cuanto sea posible.
Art. 6. - La misma declaración y aislamiento son obligatorios de los animales
muertos o que se supongan muertos de enfermedades contagiosas,
debiendo sus despojos ser enterrados o destruidos en la forma que el Poder
6
�Ejecutivo determine en sus reglamentos.
Art. 7. - En el momento en que la autoridad reciba la denuncia del caso o
tenga conocimiento de la existencia de la enfermedad, procederá a
asegurarse del cumplimiento de las medidas prescriptas en los artículos 5 y
6 proveyendo lo necesario a su ejecución, si no hubiesen sido cumplidas, y
disponiendo, cuando sea posible, la visita y examen de los animales
enfermos y de los muertos, en su caso, por el perito de que pueda disponer,
para verificar la naturaleza de la enfermedad.”
Específicamente para la Influenza Aviar, la Resolución SENASA N° 73/2010
y para la enfermedad de Newcastle la Resolución SENASA N° 683/96,
adoptan la definición de la enfermedad acorde al Capítulo correspondiente
de la OIE y obligan su notificación, vigilancia y eventual control y
erradicación.
Los Planes de Contingencia, respaldados por las resoluciones antes
mencionadas, consideran:
Frente a la aparición de signos clínicos y/o mortandad en aves que puedan
ser atribuibles a influenza aviar de notificación obligatoria o enfermedad de
Newcastle, el Senasa implementará rápidamente acciones tendientes a
confirmar o descartar la presencia de activad viral. Entre estas actividades
se incluyen:
• Interdicción del predio o establecimiento bajo sospecha y de los
establecimientos vecinos, si por razones geográficas o de contacto se
justificara.
• Censado de todas las aves del establecimiento bajo sospecha (vivas,
muertas y enfermas) y aislamiento de las mismas.
7
�• Toma de muestras y envío al laboratorio oficial.
La toma de muestras se realizará por parte de los Veterinarios del Senasa,
teniendo en consideración los siguientes criterios:
- Preferentemente extraer muestras de SUERO E HISOPADOS (traqueal y/o
cloacal) de aves enfermas o aves recientemente muertas (o moribundas y
sacrificadas en forma benéfica), en un número total de 20 (o de la totalidad
si la cantidad de aves es menor a 20).
- De hallar aves recientemente muertas (menos de 6 horas de acuerdo a
las condiciones climáticas) o moribundas (y sacrificadas por el veterinario de
Senasa), podrá enviarse el ave entera en número mínimo de 3 a 5 aves,en
bolsas de polietileno que no pierdan su contenido.
- Se recomienda no realizar necropsias. En caso de realizarla el envío de órganos debe ser en bolsa de polietileno estéril o recipiente estéril: tráquea,
pulmón, bazo, hígado e intestino (tonsilas cecales). Los intestinos se deben
acondicionar en forma separada al resto de los órganos.
- Aves con signos nerviosos: encéfalo o directamente la cabeza del ave.
- En todos los casos, las muestras deberán ser acompañadas del protocolo de
sospecha de enfermedad denunciable y de un informe de la investigación
realizada en terreno, así como de las medidas de control a las que fueron
sometidos los animales afectados durante dicha investigación (cuarentena,
prohibición del movimiento, disposición de cadáveres, etc.).
• Prohibición del ingreso y salida de las aves que se encuentran en el lugar.
8
�• Restricción de movimientos de vehículos, implementos, alimentos,
huevos, subproductos o desechos tales como cama de pollo o guano, aves
muertas, y todo material que en forma potencial sea capaz de transmitir la
enfermedad, de manera de evitar la diseminación de la misma.
• Desinfección de vehículos a la entrada y salida de los mismos.
• Adecuada manipulación y eliminación diaria en el predio de aves muertas.
• Incremento de las medidas de bioseguridad en general y de las medidas
básicas de higiene personal tales como lavado de manos, cambio de ropa y
desinfección del calzado.
• El Senasa mantendrá, integrará y operará el Dispositivo Nacional de
Emergencia de Sanidad Animal establecido por Resolución N° 779 del 26 de
julio de 1999 del SERVICIO NACIONAL DE SANIDAD Y CALIDAD
AGROALIMENTARIA, y expedirá las normas oficiales que establezcan las
medidas de seguridad que deberán aplicarse al caso particular en el que se
diagnostique la presencia de una enfermedad o plaga exótica de los
animales.
Estas medidas se cumplirán hasta que se garantice la ausencia de
enfermedad por métodos clínicos y de diagnóstico de laboratorio.
9
�RESUMEN DE LA ACTUACIÓN ANTE LA SOSPECHA
10
�1.2.
Implementación del plan de contingencia ante la
confirmación de enfermedades exóticas.
Si se confirmara por las pruebas de laboratorio un foco de influenza aviar de
notificación obligatoria o enfermedad de Newcastle patógeno, se
implementarán procedimientos destinados al control y rápida erradicación
de la enfermedad, para lo cual se combinan diferentes estrategias,
dependiendo a su vez de la patogenicidad de la cepa viral, las mismas
incluyen:
• Se activa el SISTEMA NACIONAL DE EMERGENCIAS SANITARIAS (SINAESA)
Res. SENASA N° 779/99, lo que implica la reunión de sus integrantes, la
comunicación interna y externa del alerta a fin de que se extremen las
medidas de vigilancia en todo el país y que se implementen las medidas
sanitarias correspondientes.
• Se realizará una delimitación de tres zonas:
Zona de foco: comprende el establecimiento afectado (puede involucrar
más de uno).
Zona de perifoco: de un radio mínimo de TRES (3) kilómetros, alrededor
de la zona de foco.
Zona de vigilancia: de un radio mínimo de SIETE (7) kilómetros, alrededor
de la zona de perifoco.
11
�A continuación se describen las medidas que se deben aplicar según la
zona:
En la« zona de foco» se aplicarán las siguientes medidas:
•
Continúa la interdicción del predio, establecido durante la sospecha
de la enfermedad.
•
Conformación de un equipo de trabajo encargado de realizar las
tareas de la vigilancia epidemiológica.
•
Sacrificio sanitario in situ de todas la aves del establecimiento
•
Destrucción y enterramiento de cadáveres, huevos, restos de
alimentos, cama usada, guano, etc.
•
Limpieza y desinfección de las instalaciones y sus alrededores,
implementos, vehículos de transporte y de todo material que pueda
estar contaminado utilizando para tal fin técnicas y desinfectantes
autorizados oficialmente.
12
�•
Vacío Sanitario de un período de espera o vacío sanitario de 21
a 30 días por lo menos.
•
Centinelización se instalarán en los galpones o predios lavados y
desinfectados, aves centinelas.
•
Investigación epidemiológica: el Senasa garantizará que se realice la
investigación epidemiológica correspondiente a fin de establecer el
origen de la infección inicial y detectar una posible difusión de la
enfermedad, indagando, el tiempo transcurrido desde el ingreso del
agente etiológico hasta la aparición de los signos, los posibles
contactos establecidos entre las aves afectadas y otras y/o personas,
movimientos registrados en los establecimiento. Información a
recabar con el fin de extremar las medidas de control y prevenir la
difusión de la enfermedad.
•
Vacunación: el Senasa evaluará la necesidad de implementar un plan
de vacunación de las aves de corral u otras, en explotaciones o
locales que se encuentren o no en las zonas afectadas. De adoptarse
como medida de control, la vacunación contra influenza aviar, la
misma se realizará con las vacunas autorizadas por el Senasa y
exclusivamente bajo la supervisión del mismo, utilizando registros de
vacunación y documentación mediante actas.
•
Comunicación a la OIE y a los países de la región: la Dirección
Nacional de Sanidad Animal del Senasa efectuará las comunicaciones
correspondientes dentro de los plazos determinados a la
Organización Mundial de Sanidad Animal, a todos los países y
particularmente a los estados miembros del Mercosur y a la
República de Chile, las novedades registradas en la República
Argentina referentes a la influenza aviar de declaración obligatoria y
a la evolución de las mismas mediante un informe técnico completo
y detallado sobre los hechos registrados y las medidas
implementadas.
En la «zona de perifoco» se aplicarán las siguientes medidas:
13
�•
Localización y censado de todas las explotaciones avícolas,
incluidos los predios de aves de traspatio.
•
Inspección clínica de las aves y vigilancia epidemiológica de todos
los establecimientos/predios de aves de la zona.
•
Desinfección adecuada de todas las entradas y salidas de esos
lugares.
•
Los movimientos de aves (para faena o cría) y huevos (para
consumo o incubación) se realizarán únicamente bajo la
autorización del Senasa, por lo que se establecerá un control de
tránsito dentro de la zona.
•
Se deberá proceder a faena controlada, con la correspondiente
identificación de la carne procedente de las mismas.
•
El transporte de aves de un día o huevos para incubación, se
realizarán de preferencia a establecimientos dentro de la zona de
perifoco o de vigilancia o a un establecimiento con control oficial.
•
El transporte de huevos para consumo, se realizarán
preferiblemente a un establecimiento elaborador de ovoproductos
o deberán ser identificados para su comercialización previa
desinfección de los mismos.
•
En caso de ser necesario se implementará el sacrificio de las aves.
•
Estará prohibida la realización de ferias, exposiciones o mercados
en los cuales se concentren aves domésticas u otras.
•
No habiéndose registrado otras novedades, las medidas en la
«zona de perifoco» se mantendrán durante 21 días como mínimo a
partir del día en que finalizó la desinfección del establecimiento
afectado. Luego de este período la zona de foco pasará a formar
parte de la «zona de vigilancia».
En la «zona de vigilancia» se dispondrán las siguientes medidas:
•
Localización y censado de todas las explotaciones avícolas o
locales en los que se encuentren aves.
14
�•
Inspección clínica y vigilancia epidemiológica en determinados
establecimientos/predios de aves de la zona.
•
Control de los desplazamientos y traslados dentro y fuera de la
zona.
•
En lo referente a las aves que se trasladen a faena, y a los huevos
para incubación, podrán ser trasladados con autorización del
Senasa, con identificación de las carnes y desinfección de los
huevos, previo al traslado.
•
Los huevos para consumo podrán ser transportados a un
establecimiento elaborador de ovoproductos o deberán ser
identificados para su comercialización previa desinfección de los
mismos.
•
Estará prohibida la realización de ferias, exposiciones o mercados
en los cuales se concentren aves domésticas u otras.
•
De no haberse registrado novedades, las medidas adoptadas en la
«zona de vigilancia», se mantendrán durante un período de 30
días como mínimo, a partir de haber se realizado la desinfección
en el establecimiento infectado.
1.3 Sacrificio sanitario
La legislación del Senasa establece que la erradicación de la influenza aviar
de declaración obligatoria debe realizarse mediante el sacrificio sanitario
obligatorio de las aves enfermas o sospechosas y sus contactos, y su
posterior eliminación, con el fin de detener la replicación del virus y evitar la
difusión de la enfermedad.
Dado que no siempre la enfermedad cursa con alta mortalidad, esta medida
deberá aceptarse como imprescindible para controlar la diseminación del
virus en el caso de presentación de un brote de influenza aviar de baja
patogenicidad de declaración obligatoria (H5/H7).
Los criterios principales, para el sacrificio, en términos de bienestar animal,
son que el método sea indoloro, consiga una rápida inconciencia y muerte,
15
�requiera una mínima inmovilización, evite la excitación, sea apropiado para
la especie, sea irreversible y minimice el estrés animal.
El método de sacrificio debe garantizar la seguridad de los operarios, así
como de otras especies animales que se encuentren en la explotación y no
debe tener consecuencias adversas sobre el medio ambiente.
El sacrificio sanitario se realizará lo más rápido posible (24 – 48 hs.) luego
de la confirmación de la enfermedad y dentro de la misma explotación
infectada o lo más cerca posible.
Métodos para el sacrificio de aves
El Senasa determinará para cada caso los procedimientos de sacrificio que
correspondan aplicar, pudiéndose implementar también la matanza por
faena sanitaria, según las condiciones prácticas que se detecten, el número
y especies de animales afectados y la patogenicidad del subtipo viral
encontrado. Por lo tanto no se considera definitiva la lista de los
procedimientos posibles enumerados a continuación.
Son factibles los siguientes métodos químicos y físicos para sacrificio de
aves:
1.
Gasificación con dióxido de carbono (CO2)
2.
Sistema de espuma de alta hermeticidad.
3.
Dislocación cervical.
4.
Electrocución.
5.
Gasificación con nitrógeno o argón.
6.
Gasificación con mezclas de gases.
7.
Agentes inyectables.
8.
Gasificación con monóxido de carbono (CO).
9.
Gasificación con ácido cianhídrico (HCN).
Si bien se permiten varios sistemas, los aconsejados y más convenientes
son la utilización de dióxido de carbono y el sistema de espuma de alta
hermeticidad, considerándolos humanitarios, prácticos y eficientes.
1.3.1
Gasificación con dióxido de carbono (CO2)
16
�Siempre que sea posible se utilizará, preferentemente, el sacrificio de las
aves mediante gasificación con CO2. Este método de eutanasia para aves
es muy rápido y eficaz, fácil de utilizar y con riesgos mínimos para los
operarios.
El CO2 es un gas incoloro, no inflamable, no explosivo y que no genera
efectos adversos al medio ambiente. A concentraciones superiores al 60%
actúa como agente anestésico y produce depresión del sistema nervioso
central con rápida pérdida de la conciencia y muerte.
La bibliografía recomienda situar las aves en una atmósfera de CO2 mayor al
70%, ya que pierden la conciencia muy rápido debido al efecto narcótico del
gas. Sin embargo en condiciones prácticas parece ser suficiente la
exposición a una concentración mínima del 55% al 60% del volumen del
compartimiento. La concentración incidirá en la velocidad de muerte de las
aves.
El CO2 se vende en tubos en estado líquido (-72°C), por lo cual requiere
válvula especial de liberación, con resistencia eléctrica.
El procedimiento consiste en crear en el piso una cámara de fumigación con
láminas de polietileno (6mt x 40mt = 240mt2 = 3200 aves) y, en caso de
aves a jaula, las mismas pueden ser sacrificadas ubicándolas en
contenedores cerrados.
Se debe tener la precaución de mantener su concentración constante por al
menos 3 minutos, luego de 20 minutos de exposición al gas hay que
asegurarse que los animales estén muertos.
17
�1.3.2
Método de espuma de alta hermeticidad.
Es un método eficiente, que hace posible un sacrificio sanitario rápido y
seguro para la erradicación de enfermedades, permite mejorar el bienestar
animal durante el proceso de sacrificio sanitario y disminuye el riesgo
potencial de exposición humana, debido que se requieren de 2 a 3
operarios. El proceso completo de despoblación toma entre dos y tres horas.
Necesita grandes cantidades de agua para su utilización.
18
�Emplea una tecnología que combina el agua y espuma con burbujas de CO2.
La misma es efectiva solo para aves criadas en el piso y ha sido probada
como un método de despoblación para: pollos, codorniz, patos y pavos,
existiendo diferencias en el tiempo de deceso entre especies, siendo de
aproximadamente 3 a 5 minutos en pollos y 10 minutos para patos y pavos.
Las espumas a base de agua utilizadas para la despoblación deben ser de
fácil disponibilidad, biodegradable, compatible con los métodos de
eliminación de canales y de ningún riesgo para la salud humana.
La aplicación debe realizarse de una manera que perturbe a las aves lo
menos posible y evite el amontonamiento o el hacinamiento.
La espuma se aplica al 1%, por lo tanto, si para 10 m2 se necesitan 160 a
180 litros de agua se utilizará de 1.6 a 1.8 litros espuma. Se debe considerar
que para sacrificar pavos se debe utilizar el doble, debido a la altura a la
que debe alcanzar la espuma.
Los concentrados de espuma pueden usarse con agua potable, dura o
salada, pudiendo haber diferencias de rendimiento, siendo el agua potable
la recomendada.
Los sistemas de suministro de espuma deben producir espuma que tenga la
consistencia y densidad apropiadas para ocluir completamente la vía aérea
superior de las aves domésticas; de modo que cuando se sumerge en la
espuma, la oclusión de las vías respiratorias se produce de manera rápida y
abrumadora, de modo que las aves no luchan indebidamente. En este
momento, el tamaño de burbuja deseado de la espuma basada en agua
usada para la despoblación de aves de corral no debe exceder 1,58 cm y
preferiblemente debería ser menor.
En sólo 15 minutos, la máquina elimina 15.000 pollos alojados en un galpón
de 100 metros de largo por 12 de ancho.
El equipo de sacrificio es conducido a la puerta del galpón. Se comienza a
rociar espuma densa con altura ajustable. Cabe aclarar que no mata a las
aves por contacto, no ahoga las aves y no desinfecta las aves. Produce un
bloqueo del aire, por tal motivo la cabeza de las aves debe estar cubierta
19
�hasta la muerte. Para que el sistema funcione, debe haber una cobertura de
15 a 30 cm de espuma sobre las cabezas de las aves.
La espuma a base de agua debe demostrar un tiempo de persistencia de no
menos de 30 minutos (independientemente de las condiciones climáticas o
la exposición solar) para asegurar que todas las aves han sido sacrificadas
correctamente.
En términos de tiempo hasta la muerte y porcentaje total de la población
muerta cuando la espuma a base de agua es utilizado en cualquier tipo o
edad de aves de corral, el sistema de espuma utilizado debe dar como
resultado la muerte del 95% de las aves dentro de los 7 minutos o menos
después de que las aves hayan sido completamente sumergidas en la
espuma.
1.3.3 Dislocación cervical
Para la eutanasia de un número reducido de aves puede realizarse el
sacrificio mediante la dislocación del cuello (utilizando pinzas de Burdizzo,
tijeras o las manos). La pinza de Burdizzo tiene particular utilidad para el
sacrificio de aves de corral con cuello fuerte (patos, gansos, etc.).
La técnica consiste en separar el cráneo y el cerebro de la médula espinal
aplicando una presión a la base posterior del cráneo.
1.4
Eliminación de cadáveres
Existen varios métodos para eliminar las aves muertas, desechos y otros
desperdicios. Preferentemente se debe proceder al enterramiento en el
mismo establecimiento u otro lugar adecuado para este fin, aprobado por el
Senasa. Cuando no es posible o conveniente el enterramiento, la mejor
opción es elaborar compostas o bien la incineración.
Los huevos u otro material orgánico contaminante (guano, cama de galpón,
restos de alimentos, productos, basura, etc.) deberán recogerse con cuidado
a fin de que se elimine junto con las canales.
20
�1.4.1 El enterramiento
Es el procedimiento más adecuado para la eliminación de animales y otros
elementos de riesgo, ya que generalmente es cómodo, económico, rápido y
seguro.
1.4.2 Incineración
La incineración es el método menos recomendable para la eliminación de
una gran cantidad de aves, principalmente por su elevado costo y por el
tiempo que se requiere para hacerlos cenizas.
1.4.3 Compostaje
El compostaje es un proceso de descomposición controlada de la materia
orgánica. La descomposición ocurre en un ambiente aerobio en presencia
de determinadas condiciones de pH, temperatura y humedad, en la cual
microorganismos mesófilos y termófilos elevan la temperatura por un
tiempo determinado permitiendo así la inactivación viral.
1.5 Eliminación de la cama, deyecciones de aves o productos
avícolas
La cama, las deyecciones, los huevos u otros deberán tratarse mediante un
método idóneo para eliminar el virus. Dicho método deberá incluir una de
las siguientes manipulaciones:
•
Se enterrarán con los cadáveres a una profundidad que impida el acceso
a parásitos, aves silvestres u otros animales.
•
Se incinerarán o tratarán con vapor de agua a temperatura de 70 °C o
mayor.
•
Se amontonarán y humidificarán (si resultara necesario para facilitar la
fermentación), se cubrirán para mantener el calor de forma que se
alcance una temperatura de fermentación mínima de 20°C y se
mantendrán cubiertos durante 42 días.
•
En el caso de haber utilizado como método de sacrificio la espuma, la
cama o guano debe enterrarse en forma separada de las aves
sacrificadas.
21
�2.
Sistema de Compartimentación
La eventual presentación de enfermedades tales como la Influenza Aviar y
enfermedad de Newcastle en nuestro país ocasionaría graves consecuencias
sanitarias y económicas incluyendo un elevado número de muertes de aves
por la enfermedad y por sacrifico, generando dificultades en toda la cadena
productiva aviar, y restricciones a las exportaciones de productos avícolas.
El sistema de compartimentación se rige bajo el marco de la normativa
Resolución Senasa N°484/ 2017.
La compartimentación son los procedimientos que utiliza un país para
definir en su territorio, subpoblaciones de animales de estatus sanitario
distintos a efectos del control de enfermedades o de comercio internacional.
Es un procedimiento aceptado y recomendado por la OIE para facilitar el
comercio, para mejorar la sanidad de los animales a través de medidas de
bioseguridad eficaces, facilitando el control de enfermedades ante su
introducción y para reducir la probabilidad y el impacto de los focos de
enfermedades como la influenza aviar y la enfermedad de Newcastle.
Los compartimentos se definen como una subpoblación de animales
definida esencialmente por métodos de gestión y explotación relacionados
con la bioseguridad (Código Sanitario de los Animales Terrestres, Capítulo
4.3). Se componen de explotaciones y unidades productivas que forman
parte de un compartimento, tales como plantas de incubación, planta de
alimento, granjas de reproductoras o cualquier otra infraestructura
asociada.
Las empresas avícolas que deseen inscribirse como “Compartimento libre
de influenza aviar y enfermedad de Newcastle” deben presentar ante la
Dirección Nacional de Sanidad Animal, la siguiente documentación:
22
�a) Solicitud de inscripción: cuyo contenido se aprueba como Anexo I de la
citada Resolución.
b) Manual de Buenas Prácticas de Manejo elaborado conforme con lo
establecido en el Anexo II, de la citada Resolución.
Las empresas avícolas que se encuentren interesadas en obtener la
certificación, deben estar habilitados de conformidad con lo dispuesto en la
Resolución Senasa Nº1699/2019 o inscriptos en los registros del Senasa,
según corresponda de acuerdo a la explotación productiva que realicen, y
deben cumplir con los planes sanitarios requeridos por este servicio
Una vez analizada y aprobada la documentación remitida por la firma, el
Programa de Sanidad Aviar, de la Dirección de Planificación y Estrategia de
Sanidad Animal dependiente de la Dirección Nacional de Sanidad Animal
otorgará el “Certificado de Compartimento libre de Influenza aviar y
enfermedad de Newcastle” .
23
�
Dublin Core
The Dublin Core metadata element set is common to all Omeka records, including items, files, and collections. For more information see, http://dublincore.org/documents/dces/.
Title
A name given to the resource
Publicaciones SENASA
Dublin Core
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Módulo 3: Actuación ante la sospecha y confirmación de enfermedades exóticas.
Publisher
An entity responsible for making the resource available
Servicio Nacional de Sanidad y Calidad Agroalimentaria.
Date
A point or period of time associated with an event in the lifecycle of the resource
[201?]
Contributor
An entity responsible for making contributions to the resource
Coordinación Técnica de Capacitación y Desarrollo y Carrera del personal
Language
A language of the resource
Es
Type
The nature or genre of the resource
Monografía
Identifier
An unambiguous reference to the resource within a given context
B.S.0107
Abstract
A summary of the resource.
El Sistema de Registro y Notificación de Enfermedades Denunciables de los Animales es de aplicación obligatoria en todo el territorio de la República Argentina. El Servicio Nacional de Sanidad y Calidad Agroalimentaria (Senasa), es la autoridad de aplicación del Sistema. La base normativa de la notificación de enfermedades está fundada en la Resolución Senasa Nº 153/2021, la cual tiene por objetivo adecuar a la normativa internacional vigente en cada materia sobre los sistemas de notificación de enfermedades animales, de vigilancia
epidemiológica y seguimiento epidemiológico continuo, análisis de riesgo, emergencias sanitarias y un dispositivo reglamentario que contemple todos los aspectos de protección y lucha contra las enfermedades. Esta norma abroga las Resoluciones N° 234/1996 del entonces Servicio Nacional de Sanidad Animal, la Resolución Senasa N°422/2003 y la Resolución Senasa N° 540/2010.
Table Of Contents
A list of subunits of the resource.
1. Control y erradicación
1.1. Sospecha de enfermedades de denuncia obligatoria
1.2. Implementación del plan de contingencia ante la confirmación
de enfermedades exóticas.
1.3 Sacrificio sanitario
1.3.1. Gasificación con dióxido de carbono (CO2)
1.3.2 Método de espuma de alta hermeticidad
1.3.3 Dislocación cervical
1.4 Eliminación de cadáveres
1.4.1 Enterramiento
1.4.2 Incineración
1.4.3 Compostaje
1.5 Eliminación de la cama, deyecciones de aves o productos
avícolas
2. Sistema de Compartimentación
Bienestar Animal
Veterinarios
-
https://biblioteca.senasa.gob.ar/files/original/24a34852e5386ac8454d836c82db6140.pdf
b52f0a57929d7b58f9aedb34ab6609cc
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MANUAL DEL USUARIO
SISTEMA DE PESCA
�SENASA – Sistema Pesca
Manual Versión 2.1.0
Página 1 de 35
�SENASA – Sistema Pesca
Manual Versión 2.1.0
Tabla de contenido
INTRODUCCIÓN.............................................................................................................................................. 3
1.- Descripción del proceso de carga de Anexos............................................................................. 4
2.- Ingreso al Sistema de Pesca ............................................................................................................ 6
3.- Menú principal........................................................................................................................................ 8
3.1 Carga de Datos ........................................................................................................................................ 8
3.1.1 Anexo I ....................................................................................................................................... 8
3.1.2 Anexo II ................................................................................................................................... 10
3.1.3 Anexo III .................................................................................................................................. 14
3.1.4 Anexo IV .................................................................................................................................. 16
3.1.5 Anexo V .................................................................................................................................... 19
3.1.6 Cierre de Movimientos ........................................................................................................ 21
3.1.7 Certificados Anulados ......................................................................................................... 24
3.1.8 Certificados Complementarios ......................................................................................... 25
3.1.9 Modificación o Eliminación de Anexos .......................................................................... 26
3.2 Carga de Archivos ........................................................................................................................ 27
3.2.1 Mis Archivos Importados ................................................................................................... 27
3.2.2
Cargar Archivo .................................................................................................................... 27
3.2.3
Info para Importación ...................................................................................................... 28
3.3 Impresiones ..................................................................................................................................... 30
3.1.1
Impresión de Anexo .......................................................................................................... 30
3.3.2
Impresión de Estadística Mensual ............................................................................... 30
3.4 Establecimientos ........................................................................................................................... 31
3.5 Ayuda ................................................................................................................................................ 31
APÉNDICE ...................................................................................................................................................... 32
Página 2 de 35
�SENASA – Sistema Pesca
Manual Versión 2.1.0
INTRODUCCIÓN
El Sistema de Pesca se creó para llevar el registro de Ingreso, Egreso y Stock
de productos de la pesca en establecimientos terrestres.
El mencionado Sistema se encuentra a disposición del Servicio de Inspección
Veterinaria destacado en los establecimientos de pesca, a través del usuario
habilitado por SENASA para cada Inspector.
El acceso a la información registrada en el Sistema de Pesca se encuentra online, ya que el Sistema se desarrolló para ser utilizado en cualquier lugar
donde se cuente con acceso a Internet.
El Sistema de Pesca se encuentra en la Intranet del SENASA, como parte de
las aplicaciones provistas por el organismo y con el fin de integrar la
información que el sistema provea con otras áreas o dependencias y sus
respectivas aplicaciones.
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1.- Descripción del proceso de carga de Anexos
Los Anexos pueden agruparse en dos grupos: aquéllos que afectan al stock,
y aquéllos que NO afectan al stock.
Anexos I y II: NO afectan al stock.
Anexos III, IV y V: SI afectan al stock.
El siguiente diagrama explica la operatoria:
Notar que los ingresos a stock son por Anexo V (ingreso de producción, ingreso
de otros establecimientos, devoluciones), cuando se tilda la opción “Enviar
ingreso directamente a stock -Anexo V-‟, como el texto lo indica, se envía cada
entrada por Anexo V directamente al stock, de esta manera el Anexo II
marcará aquellos productos enviados al stock. De no tildar esta opción, el
ingreso no se reflejará en el stock.
Los egresos son por Anexo III, Anexo IV y Anexo V (proceso, egresos
varios – decomisos, robos, etc.-).
De este modo, si se registra un ingreso, de por ejemplo, 100 kg. de filete
de merluza por Anexo II, tildando la opción “Enviar ingreso directamente a
stock – Anexo V”, este registro afectara en el stock.
De no tildar esta opción, luego se debe registrar el ingreso por Anexo V
para actualizar el stock. Siguiendo con el mismo ejemplo esta opción, podría
aplicarse a situaciones donde no siempre la correspondencia es exactamente
igual; puede ocurrir que estos 100 kg. ingresen directamente al stock de
productos terminados sin más, aunque también podría desarrollarse algún
proceso debiéndose registrar una parte un día y otra al día siguiente, etc.
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Ejemplo:
Detallaremos ahora cómo se procede para registrar un proceso interno.
Imaginemos que ingresan desde otra planta 1000 kg de calamar entero
congelado, para depósito para posterior expedición RUBRO XXXIII (Deposito
Frigorífico de Pescado y Mariscos Frescos y Congelados). La secuencia seria;
1. Ingreso por Anexo II como RUBRO XXXIII.
2. En el Anexo II tildar la opción “Enviar ingreso directamente a stock Anexo V-‟ para que se actualice el stock de productos terminados.
A partir de este momento la mercancía es parte del stock. De no realizarse
proceso alguno, es posible registrar la salida por Anexo III o IV, desde el
RUBRO XXXIII. Si fuera necesario registrar un proceso, debemos seguir la
siguiente secuencia:
a. Sale del stock la cantidad de calamar que vamos a procesar, en nuestro
ejemplo 500 kg. Esto se realiza desde la pantalla del Anexo V, con el input
“egreso para procesamiento interno”, RUBRO XXXIII
b. Una vez concluido el proceso, debemos registrar el ingreso desde el
RUBRO XLVI (Procesamiento de Pescado y Mariscos Frescos y
Congelados) por Anexo II. Como tipo de amparo debemos optar por
“remito interno”, y como establecimiento de origen será el propio.
c. En el Anexo II tildar la opción “Enviar ingreso directamente a stock Anexo V-‟.
Para finalizar el tema stock, podemos expresar al stock de un producto
específico con la siguiente fórmula:
Stock = Ingresos – Egresos
Ingresos = Ingresos de producción + Ingresos de otros establecimientos
+ Devoluciones + (ingresos opcionales desde + Anexo I y Anexo II)
Egresos = Anexo III + Anexo IV + Egresos varios
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2.- Ingreso al Sistema de Pesca
La operación sobre el Sistema de Pesca se realiza por medio de un
navegador web común, como por ejemplo Google Chrome, Internet Explorer o
Mozilla Firefox (se recomienda utilizar este último).
El ingreso al Sistema de Pesca se realiza a través del sitio de AFIP,
Sección “Ingreso con clave fiscal‟ (https://auth.afip.gov.ar/contribuyente/).
Es necesario tener clave fiscal para poder ingresar. Para poder adherir al
Sistema de Pesca.
La idea es la siguiente:
_ El apoderado de la firma debe ingresar con clave fiscal a AFIP y adherir al
Sistema de Pesca. En este momento, debe ser capaz de operar sobre el
sistema tal como venía operando cualquier usuario externo que se logueaba
directamente en el Sistema de Pesca (esto es, antes de que se implementara
el acceso desde AFIP).
_ Normalmente, el apoderado (representado) deseará delegar la carga de
datos en una o más personas (representantes). Para ello, debe delegar el
servicio a cada uno tal como se explica en el instructivo „Cómo adherir,
delegar o aceptar un servicio‟.
_ El representante debe aceptar el servicio tal como se explica en el instructivo
ya mencionado.
Es obligatorio que tanto el REPRESENTADO (el que hace la designación)
como el REPRESENTANTE (el que acepta la designación) adhieran al servicio
de Sistema Pesca.
En caso de que alguno de los usuarios no figurase en el Sistema de Pesca,
verificar que la adhesión a dicho servicio se haya realizado correctamente.
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Servicio de administración de firmas:
Además del servicio “Sistema Pesca‟, existe disponible en AFIP otro servicio
relacionado llamado “Sistema de Pesca Adam‟ que permite administrar las
firmas y sus representantes.
Por defecto, cuando el apoderado de la firma o representado delega el
servicio “Sistema de Pesca‟ en algún representante, éste tiene acceso a todos los
establecimientos pesqueros de la firma. Si existiere intención de restringir los
establecimientos operables por un representante específico, el
representado debe adherir a este servicio, de manera similar al servicio anterior.
Sesiones: Si no se realizan operaciones desde el inicio de sesión, el sistema
cancela la sesión automáticamente pasado cierto tiempo. Si temporalmente se
deja de usar el sistema, se recomienda cerrar sesión y volver a ingresar al
Sistema.
Una vez que haya ingresado al Sistema de Pesca, debe indicar el Establecimiento
del cual desea actualizar la información; para ello presione el botón que está a la
derecha del nombre del Establecimiento para acceder al Menú Principal.
Cerrar Sesión: Permite cerrar la sesión y salir del Sistema de Pesca. Se
encuentra en el encabezado de la pantalla, en el sector derecho.
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3.- Menú principal
Elementos que componen el Menú Principal:
En la barra principal del menú podemos ver, a la derecha, los datos de la
cuenta de usuario. Estos son el nombre de usuario y el Establecimiento
para el cual se está operando en esta sesión.
En la izquierda de la barra principal se encuentran los submenúes que se
detallan en las páginas siguientes.
3.1 Carga de Datos
Aquéllas plantas que no tenga un sistema propio deben
ingresar manualmente la información. Acceder al menú Carga
de datos, allí encontrará las opciones para la carga de datos
de los cinco Anexos, Certificados anulados y Certificados
complementarios.
3.1.1 Anexo I
El Anexo I permite registrar la información correspondiente a los ingresos de
materia prima provenientes del barco fresquero de pesca marítima, pesca
continental, fluvial, acuicultura, pesca, captura o recolección de pescadores
artesanales.
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Debe ingresar a la opción Anexo I, Alta, del menú Carga de datos y
completar la información allí solicitada.
(*) Nro. Remito comercial: identificación del remito que acompaña la
mercadería.
(*) Fecha de Ingreso: podrá ingresarse manualmente con el formato
dd/mm/aaaa o bien seleccionar la fecha desde el botón Calendario.
(*) Rubro: seleccionar uno de la lista, de acuerdo a los que correspondan al
establecimiento.
Patente Transporte: identificación del vehículo utilizado como transporte.
Puerto de Desembarco: seleccionar uno de la lista.
(*) Barco: indicar Nombre, Nro. Matrícula o Nro. Registro SENASA.
El Detalle debe tener al menos un elemento. Cada elemento del detalle
está formado por:
o Especie: seleccionar uno de la lista (Abadejo, Bagre, Salmón, etc.).
o Producto: seleccionar uno de la lista (entero. Eviscerado, etc.).
o Cantidad de Cajones: indicar la cantidad de cajones a ingresar.
o Kg. por cajón: indicar la capacidad de cada cajón.
o Peso Neto: se calculará automáticamente de acuerdo a la cantidad de
cajones y kg. por cajón ingresados.
o Lote: texto que identifica el ítem del detalle.
Nota:
Los campos indicados con (*) a la izquierda de la descripción de los campos,
indican que los mismos son obligatorios.
Se pueden agregar todos los renglones de detalle necesarios. Al finalizar,
presionar el botón “Registrar”.
Si desea continuar generando certificados, clickear en el input
“Número de amparo‟.
Si se realizó la carga correctamente, el botón se deshabilita y cambia
su texto por “EXITO‟.
Luego de ingresar el peso neto, el renglón del detalle se agrega a la lista
en la parte inferior de la pantalla. En caso de error, se puede eliminar
presionando el botón “Eliminar” a la derecha del renglón.
En este Anexo, el origen del producto puede ser: Barco, Establecimiento
piscicultor o Río.
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En los casos en que el origen es barco o establecimiento piscicultor, se debe
seleccionar en el listado de barcos el ítem correspondiente. En este listado se
encuentran tanto barcos como establecimientos piscicultores. En la casilla a la
izquierda del listado se pueden ingresar el número de matrícula del barco o el
número de Renspa del establecimiento piscicultor como atajo.
En el caso de pesca de río, se debe seleccionar en el listado de barcos la opción
“PESCA DE RÍO”, cuyo atajo es “rio‟. Al seleccionarla, se habilita el listado de
puertos, que normalmente está deshabilitado, para elegir el puerto de río
correspondiente.
El puerto se ingresa únicamente cuando se trata de pesca de río. En pesca
de mar sólo se ingresa el barco.
IMPORTANTE: En caso de tildar la opción „Enviar ingreso directamente a
stock -Anexo V-‟, como el texto indica, se envía cada entrada en el detalle al
Anexo V. El Anexo I marca aquellos productos enviados al stock.
3.1.2 Anexo II
El Anexo II permite registrar la información correspondiente a los
ingresos de productos provenientes de plantas habilitadas.
Debe ingresar a la opción Anexo II, Alta, del menú Carga de datos y
completar la información allí solicitada.
En esta pantalla se ingresa un certificado junto con su detalle.
(*) Fecha de ingreso: podrá ingresarse manualmente con el formato
dd/mm/aaaa o bien seleccionar la fecha desde el botón Calendario.
(*) Tipo de amparo: seleccionar uno de la lista (CE, Remito, Anexo, etc.).
(*) Número de amparo: se debe ingresar un texto.
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El Tipo y Número de Amparo debe corresponderse con Certificado
Sanitario válido, entregado por SENASA. En caso de no serlo, el Sistema
mostrará un mensaje que indica que el Certificado no es válido y le
impedirá continuar registrando el Anexo hasta que ingrese un Tipo y
Número válido.
Transporte: se debe ingresar un texto.
(*) Tipo de origen: seleccionar una opción de la lista (Planta,
Importación). La opción seleccionada determina el próximo dato a
ingresar. Si el tipo seleccionado es „planta‟, se selecciona de la lista de
plantas. Si el tipo seleccionado es „importación‟, se selecciona un país y
se ingresa el Establecimiento.
(*) Rubro: seleccionar uno de la lista, de acuerdo a los que
correspondan al Establecimiento.
Establecimiento de origen: se debe seleccionar uno de la lista. Si ya se
conoce el número oficial, se puede ingresar a la izquierda de la lista; al
presionar la tecla Enter se selecciona automáticamente en la lista.
País de origen: se selecciona uno de la lista.
Establecimiento extranjero de origen: se ingresa un texto.
El Detalle debe tener al menos un elemento. Cada elemento del
detalle está formado por:
o Especie: se selecciona de una lista. Si ya se conoce el código se puede
seleccionar automáticamente como vimos en el Establecimiento.
o Producto: se selecciona de una lista. . Si ya se conoce el código se puede
seleccionar automáticamente como vimos en el Establecimiento.
o Temperatura: se selecciona de una lista.
o Número de cajones: se ingresa un número entero positivo.
o Kgs. Cajón: se ingresa un número real positivo. Es opcional, sirve para
calcular el peso neto. En caso de ingresarlo, el peso neto se calcula
automáticamente a partir de este campo y el nro. de cajones.
o Peso neto: se ingresa un número real positivo.
o Lote: texto que identifica el ítem del detalle.
Nota:
Los campos indicados con (*) a la izquierda del label, son campos obligatorios.
Se pueden agregar todos los renglones de detalle necesarios. Al
finalizar, presionar el botón “Registrar”.
Si desea continuar generando certificados, clickear en el input “Número
de amparo‟.
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Si se realizó la carga correctamente, el botón se deshabilita y cambia
su texto por “EXITO‟.
Luego de ingresar el peso neto, el renglón del detalle se agrega a la lista
en la parte inferior de la pantalla. En caso de error, se puede eliminar
presionando el botón “Eliminar” a la derecha del renglón.
IMPORTANTE: En caso de tildar la opción “Enviar ingreso directamente a
stock -Anexo V-“, como el texto indica, se envía cada entrada en el detalle al
Anexo V. El Anexo II marcará aquellos productos enviados al stock.
3.1.2.1 Recepción de Anexos
Esta operación permite registrar la información correspondiente a los
ingresos de productos provenientes de plantas habilitadas, que fueron
registrados como anexos de salida desde la planta de origen. Es decir, si
una planta A registra un anexo III de salida, con destino a un
establecimiento B, este último podrá visualizar esta información desde esta
recepción. Si la información es correcta, podrá confirmar y generar
automáticamente un anexo II, previamente ingresando algunos datos, como
la fecha de ingreso de la mercadería. Caso contrario podrá rechazar el
ingreso.
Debe ingresar a la opción Anexo II, Recepción, del menú Carga de datos,
en la misma se visualiza los últimos ingresos de mercadería.
Para ver el detalle de la información del anexo recibido, y posterior aprobación
o rechazo se deber seleccionar en el icono de aprobar / rechazar.
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En la siguiente pantalla se visualiza los datos del anexo recibido. A
continuación debe proceder a completar los datos Fecha de ingreso, Rubro, y
número de cajones.
IMPORTANTE: En caso de tildar la opción “Enviar ingreso directamente a
stock -Anexo V-“, como el texto indica, se envía cada entrada en el detalle al
Anexo V. El Anexo II marcará aquellos productos enviados al stock.
Si el anexo es correcto, se procede con la aprobación, presionando el botón
“Aprobar recepción”, realizado esto genera un anexo II, visualizando en
pantalla el siguiente mensaje:
Caso contrario, si la decisión es rechazar la operación, se deber presionar el
botón “Rechazar recepción”, luego de confirmar la operación se ingresa el
motivo del rechazo.
Realizado esto se visualiza el siguiente mensaje:
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3.1.3 Anexo III
El Anexo III permite registrar la información correspondiente a los
egresos de materia prima o productos en proceso
Antes de comenzar a realizar regularmente la carga de datos, se debe cargar
el stock inicial de productos, por única vez. Este stock inicial debe cargarse
como un ingreso de producción para cada uno de los productos en stock.
Debe ingresar a la opción Anexo III, Alta, del menú Carga de datos.
En esta pantalla se ingresa un certificado junto con su detalle.
(*) Fecha de ingreso: podrá ingresarse manualmente con el formato
dd/mm/aaaa o bien seleccionar la fecha desde el botón Calendario.
(*) Tipo de amparo: seleccionar uno de la lista (CE, Remito, Anexo, etc.).
(*) Número de amparo: se debe ingresar un texto.
El Tipo y Número de Amparo debe corresponderse con Certificado Sanitario
válido, entregado por SENASA. En caso de no serlo, el Sistema mostrará un
mensaje que indica que el Certificado no es válido y le impedirá continuar
registrando el Anexo hasta que ingrese un Tipo y Número válido.
Transporte: se debe ingresar un texto que identifique al transporte.
(*) Tipo Destino: seleccionar una opción de la lista (Planta, Exterior,
Consumo Interno).
(*) Rubro: seleccionar uno de la lista, de acuerdo a los que correspondan al
Establecimiento.
Establecimiento Destino: seleccionar uno de la lista.
País destino: seleccionar uno de la lista.
Provincia destino: seleccionar uno de la lista.
Localidad destino: seleccionar uno de la lista.
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El Detalle debe tener al menos un elemento. Cada elemento del detalle está
formado por:
o Especie: se selecciona de una lista. Si ya se conoce el código se puede
seleccionar automáticamente como vimos en el Establecimiento.
o Producto: se selecciona de una lista. . Si ya se conoce el código se puede
seleccionar automáticamente como vimos en el Establecimiento.
o Temperatura: se selecciona de una lista.
o Número de cajones: se ingresa un número entero positivo.
o
Peso neto: se ingresa un número real positivo.
o Lote: texto que identifica el ítem del detalle.
Nota:
Los campos indicados con (*) a la izquierda del label, son campos obligatorios.
Se pueden agregar todos los renglones de detalle necesarios. Al
finalizar, presionar el botón “Registrar’.
Si desea continuar generando certificados, clickear en el input “Número de
amparo‟.
Si se realizó la carga correctamente, el botón se deshabilita y cambia
su texto por “EXITO‟.
Luego de ingresar el peso neto, el renglón del detalle se agrega a la lista
en la parte inferior de la pantalla. En caso de error, se puede eliminar
presionando el botón “Eliminar” a la derecha del renglón.
3.1.3.1 Consulta Envíos
Se tiene la opción de visualizar el estado de los egresos realizados con
anexo III que tienen destino a otro establecimiento, teniendo la información
si el anexo enviado fue aprobado o rechazado desde la planta destino.
Debe ingresar a la opción Anexo III, Consulta Envíos, del menú Carga de
datos.
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En el caso de rechazado, es posible visualizar el motivo del mismo,
seleccionando el icono
. Se visualiza la siguiente
pantalla que muestra el historial de los estados de envío.
3.1.4 Anexo IV
El Anexo IV permite registrar la información correspondiente a los egresos
de productos pesqueros elaborados.
Antes de comenzar a realizar regularmente la carga de datos, se debe cargar
el stock inicial de productos, por única vez. Este stock inicial debe cargarse
como un ingreso de producción para cada uno de los productos en stock.
Debe ingresar a la opción Anexo IV, Alta, del menú Carga de datos.
(*) Fecha de egreso: podrá ingresarse manualmente con el formato
dd/mm/aaaa o bien seleccionar la fecha desde el botón Calendario.
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(*) Tipo de amparo: seleccionar uno de la lista (CE, Remito, Anexo, etc.).
(*) Número de amparo: se debe ingresar un texto.
El Tipo y Número de Amparo debe corresponderse con Certificado
Sanitario válido, entregado por SENASA. En caso de no serlo, el Sistema
mostrará un mensaje que indica que el Certificado no es válido y le
impedirá continuar registrando el Anexo hasta que ingrese un Tipo y
Número válido.
Transporte: se debe ingresar un texto que identifique al transporte.
(*) Tipo Destino: seleccionar una opción de la lista (Planta, Exterior,
Consumo Interno).
(*) Rubro: seleccionar uno de la lista, de acuerdo a los que
correspondan al Establecimiento.
El Detalle debe tener al menos un elemento. Cada elemento del detalle
está formado por:
o
Especie: se selecciona de una lista. Si ya se conoce el código se
puede seleccionar automáticamente como vimos en el Establecimiento.
o Producto: se selecciona de una lista. . Si ya se conoce el código se puede
seleccionar automáticamente como vimos en el Establecimiento.
o Temperatura: se selecciona de una lista.
o Número de cajones: se ingresa un número entero positivo.
o Peso neto en Kgs: se ingresa un número real positivo.
o Lote: Texto que identifica el ítem del detalle.
Nota:
Los campos indicados con (*) a la izquierda de la descripción del campo, los
mismo son campos obligatorios.
Se pueden agregar todos los renglones de detalle necesarios. Al
finalizar, presionar el botón “Registrar”.
Si desea continuar generando certificados, clickear en el input “Número de
amparo‟.
Si se realizó la carga correctamente, el botón se deshabilita y cambia
su texto por “EXITO‟.
Luego de ingresar el peso neto, el renglón del detalle se agrega a la lista
en la parte inferior de la pantalla. En caso de error, se puede eliminar
presionando el botón “Eliminar” a la derecha del renglón
.
3.1.4.1 Consulta Envíos
Se tiene la opción de visualizar el estado de los egresos realizados con
anexo IV que tienen destino a otro establecimiento, teniendo la información
si el anexo enviado fue aprobado o rechazado desde la planta destino.
Debe ingresar a la opción Anexo III, Consulta Envíos, del menú Carga de
datos.
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En el caso de rechazado, es posible visualizar el motivo del mismo,
seleccionando el icono
. Se visualiza la siguiente
pantalla que muestra el historial de los estados de envío.
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3.1.5 Anexo V
El Anexo V permite registrar la información correspondiente a las existencias
de productos terminados.
Antes de comenzar a realizar regularmente la carga de datos, se debe cargar
el stock inicial de productos, por única vez. Este stock inicial debe cargarse
como un ingreso de producción para cada uno de los productos en stock.
Debe ingresar a la opción Anexo V, Alta, del menú Carga de datos.
(*) Especie: se selecciona de una lista. Si ya se conoce el código se
puede seleccionar automáticamente como vimos en el establecimiento.
(*) Producto: se selecciona de una lista. . Si ya se conoce el código se
puede seleccionar automáticamente como vimos en el establecimiento.
(*) Temperatura: se selecciona de una lista.
(*) Rubro: seleccionar uno de la lista, de acuerdo a los que corresponda
al establecimiento.
(*) Fecha de movimiento: podrá ingresarse manualmente con el formato
dd/mm/aaaa o bien seleccionar la fecha desde el botón Calendario
Ingreso de otro Establecimiento (en Kgs.): indicar cantidad.
Ingreso de producción – elab. propia - (en Kgs.): indicar cantidad.
Egreso para reproceso interno (en Kgs.): indicar cantidad.
Egresos Varios (en Kgs.): se selecciona de una lista.
Ingreso devoluciones (en Kgs.): indicar cantidad.
De los últimos cinco campos, tres de ingresos y dos de egresos, se debe
ingresar al menos uno, excepto para el movimiento nulo (ver a continuación).
En el caso de registrar Egresos Varios, se debe seleccionar un motivo.
Al finalizar, presionar el botón “Registrar”.
Si se realizó la carga correctamente, el botón se deshabilita y
cambia su texto por “EXITO‟.
Para rehabilitarlo y seguir cargando, se debe clickear en cualquiera de los cinco
inputs de ingreso/egreso.
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3.1.5.1
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Movimiento Nulo
Dado que el Anexo V es un resumen de los movimientos de stock en un
período específico, y es posible que haya en stock productos que no tienen
ningún movimiento en dicho período, estos productos sin movimientos no
aparecen en el Anexo V. Para evitar esto, se permite el ingreso del movimiento
nulo de un producto específico, cuya semántica es dejar explícita la ausencia
de movimientos de un producto en un período. Luego de ingresarlo, el
producto (y su stock actual) aparecerán en el resumen de Anexo V, y ese
movimiento no modifica la cantidad de kgs. en stock.
Operativamente, sólo se debe seleccionar el producto, dejar todo en cero, y
registrar.
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3.1.5.2 Establecimiento suspendido
En los anexos II, III y IV existe la posibilidad de ingresar movimientos
utilizando un listado de establecimientos suspendidos accesible luego de
clickear el link „Suspendido‟. El usuario se hace cargo declarando que el
establecimiento se encontraba activo en el momento del movimiento.
3.1.6 Cierre de Movimientos
El cierre de movimientos se define como una operación obligatoria para
declarar y confirmar que se ha terminado de cargar todos los datos de un
determinado año, mes y establecimiento.
Para realizar un cierre de movimientos, debe ingresar a la opción
Cierre de movimientos, Alta, del menú Carga de datos.
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(*) Año: ingresar el año que corresponde.
(*) Mes: seleccionar el mes que corresponde.
Observaciones: se puede ingresar algún comentario respecto al cierre
realizado.
Al finalizar, presionar el botón “Cerrar Movimientos‟.
Se visualizará una ventana, en donde se debe confirmar la operación.
Si la operación se realizó correctamente, el sistema informará el siguiente
mensaje:
El cierre fue generado correctamente.
Nota:
El cierre de movimientos es una operación obligatoria mensual.
Sólo se permite registrar un cierre por mes.
Una vez registrado un cierre para un mes, no podrá registrar operaciones
de ingreso y egresos de productos, salvo que el agente supervisor
rechace el cierre generado.
Para consultar el historial de los cierres registrados debe ingresar en el Menú
Carga de Archivos, opción Cierre de movimientos, Consultar.
Puede ingresar los parámetros de búsqueda (año, mes y tipo de estado).
Al presionar el botón “Consultar‟, el sistema visualizará un listado
con los cierres registrados para el establecimiento elegido.
Si presiona “Cancelar‟, el Sistema regresa a la pantalla anterior.
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Una vez realizada la consulta, puede seleccionar un cierre y ver los detalles del
mismo, haciendo click en el icono dentro de la columna “Acciones”.
El sistema visualizará el detalle del cierre del mes seleccionado,
como se muestra en el siguiente ejemplo:
Estados del cierre:
Los estados por las cuales puede pasar un cierre de movimientos, se
describen a continuación:
Generado: La planta genera el cierre de información mensual.
Aprobado: El supervisor aprueba el cierre mensual. Cuando el cierre se
aprueba no es posible realizar altas, bajas y modificaciones de anexos y
movimientos para el mes aprobado.
Rechazado: El supervisor rechaza el cierre mensual. En ese caso, la planta
puede realizar altas, modificaciones y eliminaciones sobre la información del
mes rechazado.
Regenerado: Cuando el supervisor rechaza un cierre, la planta puede realizar
modificaciones sobre la información mensual. Una vez finalizadas las
modificaciones, la planta debe volver a “Regenerar” el cierre.
Nota: Cuando un cierre mensual es rechazado por el agente supervisor,
en este caso, el sistema habilita el botón “Regenerar”.
Esta acción permite volver a registrar el cierre mensual luego de realizar
modificaciones en el ingreso y egreso de productos para el mes y
establecimiento en cuestión. Al “regenerarse” el cierre, se espera que el
agente supervisor apruebe o rechaze dicho cierre.
La siguiente imagen representa el detalle de un cierre de mes que
fue rechazado.
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Nota: Si la planta no genera el cierre mensual, no podrá cargar información
del mes siguiente. Una vez generado el cierre (o regenerado), se libera la
carga de nueva información.
3.1.7 Certificados Anulados
Para registrar certificados anulados debe ingresar en la opción Certificados
anulados, Alta, del menú Carga de datos.
(*) Fecha: podrá ingresarse manualmente con el formato dd/mm/aaaa
o bien seleccionar la fecha desde el botón Calendario.
(*) Tipo de amparo: seleccionar uno de la lista (CE, Remito, Anexo, etc.).
(*) Número de amparo: se debe ingresar un texto.
Al finalizar, presionar el botón “Registrar‟.
Si se realizó la carga correctamente, el botón se deshabilita y cambia su
texto por “EXITO‟.
Para rehabilitarlo y seguir cargando, se debe clickear el input “Número de
amparo”.
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3.1.8 Certificados Complementarios
Para registrar certificados complementarios debe ingresar en la opción
Certificados complementarios, Alta, del menú Carga de datos.
(*) Fecha de ingreso: podrá ingresarse manualmente con el formato
dd/mm/aaaa o bien seleccionar la fecha desde el botón Calendario.
(*) Tipo de amparo: seleccionar uno de la lista (CE, Remito, Anexo, etc.).
(*) Número de amparo: se debe ingresar un texto.
(*) Tipo de Amparo a complementar: seleccionar uno de la lista
(CE, Remito, Anexo, etc.).
(*) Nro. de Amparo a complementar: se debe ingresar un texto.
Observaciones: se debe ingresar un texto, en caso de ser necesario.
Al finalizar, presionar el botón “Registrar‟.
Si se realizó la carga correctamente, el botón se deshabilita y
cambia su texto por “EXITO‟.
Para rehabilitarlo y seguir cargando, se debe clickear el input “Número
de amparo”.
Nota: Sólo se pueden complementar remitos ingresados por Anexo IV. Se
provee un autocompletado del Nro. de amparo a complementar teniendo en
cuenta los remitos ingresados por Anexo IV dentro de los últimos 45 días.
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3.1.9 Modificación o Eliminación de Anexos
Para modificar o eliminar Anexos el mecanismo es similar para todos los
anexos.
Debe seleccionar en el menú Carga de datos, el Anexo a consultar o
eliminar y clickear en la opción Modificar.
Ingresar el rango de fechas a consultar, y luego presionar el botón ”Consultar‟.
El Sistema muestra un listado de Certificados ingresados en las fechas
especificadas.
En caso que desee modificar, presionar el primer botón que se
encuentra a la derecha del certificado a modificar. El sistema
muestra una pantalla similar a la de carga de datos para
modificar los datos que desee. Al finalizar, presionar el botón
“Modificar‟.
En caso que desee eliminar un certificado, debe presionar el
botón rojo que se encuentra a la derecha del certificado desea.
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3.2 Carga de Archivos
Para aquéllas plantas que tenga sistema propio y no desean
ingresar manualmente la información ingresar en el Menú
“Carga de archivos”. Encontrará las siguientes opciones:
Mis Archivos importados: muestra los archivos importados en un
rango de fechas.
Cargar Archivo: ingresa al Sistema de Pesca la información registrada
en el sistema en planta.
Info para importación: describe los requerimientos para la importación
de archivos.
3.2.1 Mis Archivos Importados
Para consultar los archivos importados debe ingresar en el Menú Carga de
Archivos, opción Mis archivos importados, luego indicar el rango de fechas
que contiene los archivos a consultar, las mismas podrán ingresarse
manualmente con el formato dd/mm/aaaa o bien seleccionado la fecha
desde el botón Calendario.
Al presionar el botón “Consultar‟, el sistema muestra un listado de
los archivos importados en las fechas de lo contrario los cambios se
perderán.
Si presiona “Cancelar‟, el Sistema regresa a la pantalla anterior.
3.2.2
Cargar Archivo
En la opción Cargar archivo del menú Carga de archivos, debe seleccionar
el Anexo para el cual se quiere realizar la importación, a continuación, debe
indicar la ubicación física del archivo en la computadora a través del botón
“Examinar‟.
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Manual Versión 2.1.0
Al presionar el botón “Consultar‟, el sistema muestra un listado de
los archivos importados en las fechas de lo contrario los cambios se
pierden.
Si presiona “Cancelar‟, el Sistema regresa a la pantalla anterior.
3.2.3
Info para Importación
En la opción Info para importación del menú Carga de archivos se
encuentran los formatos de los archivos y las tablas de referencia necesarias
para exportar/importar archivos:
Para realizar la exportación/importación de archivos la persona responsable de
sistemas de la planta (o el proveedor de software) debe recibir los dos archivos
de la pantalla Info para importación, que describen el formato de los
archivos y las tablas de referencia necesarias.
Con esta información, el responsable en sistemas debe programar un módulo
de exportación de datos en el sistema que la planta usa actualmente (en
general, sistemas desktop).
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Manual Versión 2.1.0
Una vez programado el módulo de exportación, el sistema de la planta permite
obtener archivos con el formato propuesto por SENASA. Estos archivos pueden
ser guardados en la PC del usuario de planta.
El usuario de planta, luego de hacer la exportación de los archivos desde el
sistema de la planta y guardarlos en su PC, debe ir a Carga de archivos en el
sistema de SENASA, y registrar el archivo seleccionado.
Opcionalmente, puede corroborar que la importación se haya realizado de
manera correcta, en la pantalla Mis Archivos Importados, o más
detalladamente imprimiendo el/los anexos involucrados.
Nota:
Un archivo se procesa de manera transaccional, es decir, sólo se procesa
exitosamente si no existe ningún error en ninguna línea. Si existiera algún
error, el archivo se descarta completamente. El Sistema de Pesca informa, en
caso de error, en qué línea se produjo y cuál es la naturaleza de dicho error.
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3.3 Impresiones
3.1.1
Impresión de Anexo
Para la impresión de los Anexos debe seleccionarse la
opción Anexos del menú Impresiones.
A continuación debe indicar el anexo que se desea imprimir,
el rubro y el rango de fechas en que se ingresaron los
datos.
Al presionar el botón “Imprimir Anexo‟, el sistema genera un
archivo con formato .pdf. (Ver modelo de impresión de un Anexo en el
Apéndice).
Si presiona “Volver‟, el Sistema regresa a la pantalla anterior.
3.3.2
Impresión de Estadística Mensual
Para la impresión de la estadística mensual debe
seleccionar la opción Estadística Mensual del menú
Impresiones.
A continuación debe indicar la planilla (Estadística mensual de fábricas de
pescado o Parte mensual de certificaciones emitidas), el rubro, el mes y el
año en que se ingresaron los datos.
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Al presionar el botón “Imprimir planilla‟, el sistema genera
un archivo con formato .pdf. (Ver modelo de impresión de una
Estadística Mensual en el Apéndice).
Si presiona „Volver‟, el Sistema regresa a la pantalla anterior.
3.4 Establecimientos
Rubros
En la opción Establecimientos -> Rubros del menú principal se permite ver
los rubros pesqueros declarados por el establecimiento ante SENASA.
3.5 Ayuda
En la opción Ayuda del menú, se encuentra la explicación de cómo utilizar el
Sistema de Pesca, a tales efectos el sistema le ofrece un archivo en formato
.pdf, en versión comprimida, el que podrá almacenar en su PC y
consultarlo cada vez que lo necesite.
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APÉNDICE
Modelo de Impresión de Anexos
Ejemplo de Impresión de Anexo II.
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Modelo de Impresión de Estadística Mensual
Se distinguen cuatro áreas de datos:
Entrada de materia prima: Anexo I + Anexo II (los ingresos con
remito interno por reproceso desde el establecimiento propio NO se
consideran).
Elaboración de productos: Ingreso de producción por Anexo V.
Ingreso de otros establecimientos: Ingreso de otros
establecimientos por Anexo V.
Salida de productos elaborados: Anexo III + Anexo IV.
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Modelo de Impresión de Parte Mensual de Certificaciones emitidas
El parte es resultado de:
Anexo III + Anexo IV + Certificados anulados + Certificados complementarios
Nota: Si bien se discrimina por rubro al realizar la impresión, tanto los
certificados anulados como los complementarios aparecen para todos los
rubros, dado que los certificados no tienen rubro asociado.
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�
Dublin Core
The Dublin Core metadata element set is common to all Omeka records, including items, files, and collections. For more information see, http://dublincore.org/documents/dces/.
Title
A name given to the resource
Publicaciones SENASA
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Title
A name given to the resource
Manual del usuario: Sistema de Pesca
Publisher
An entity responsible for making the resource available
Servicio Nacional de Sanidad y Calidad Agroalimentaria
Date
A point or period of time associated with an event in the lifecycle of the resource
[2020]
Relation
A related resource
<a href="https://digesto.senasa.gob.ar/items/show/541">Resolucion 26/2019</a>
Language
A language of the resource
Es
Type
The nature or genre of the resource
Monografía
Identifier
An unambiguous reference to the resource within a given context
B.S. 0146
Abstract
A summary of the resource.
El Sistema de Pesca se creó para llevar el registro de Ingreso, Egreso y Stock
de productos de la pesca en establecimientos terrestres.
Table Of Contents
A list of subunits of the resource.
<div>Tabla de contenido INTRODUCCIÓN</div>
<div>1.- Descripción del proceso de carga de Anexos</div>
<div>2.- Ingreso al Sistema de Pesca</div>
<div>3.- Menú principal</div>
<div>3.1 Carga de Datos</div>
<div>3.1.1 Anexo I</div>
<div>3.1.2 Anexo II</div>
<div>3.1.3 Anexo III</div>
<div>3.1.4 Anexo IV</div>
<div>3.1.5 Anexo V</div>
<div>3.1.6 Cierre de Movimientos</div>
<div>3.1.7 Certificados Anulados</div>
<div>3.1.8 Certificados Complementarios </div>
<div>3.1.9 Modificación o Eliminación de Anexos</div>
<div>3.2 Carga de Archivos </div>
<div>3.2.1 Mis Archivos Importados <br />3.2.2 Cargar Archivo</div>
<div>3.2.3 Info para Importación</div>
<div>3.3 Impresiones</div>
<div>3.1.1 Impresión de Anexo</div>
<div>3.3.2 Impresión de Estadística Mensual</div>
<div>3.4 Establecimientos</div>
<div>3.5 Ayuda </div>
<div>APÉNDICE</div>
ESTABLECIMIENTO
INSPECCION VETERINARIA
Pesca
-
https://biblioteca.senasa.gob.ar/files/original/dfc29cdb2194cf087e89a3ca816fd47d.pdf
0d7b18dcde18fdc0a1ff662bc5a0b142
PDF Text
Text
La lectura del presente material es necesaria para la
REACREDITACIÓN de Vacunadores.
ESTATUS SANITARIO EN ARGENTINA Y LA REGION
SITUACIÓN ACTUAL DE LA FIEBRE AFTOSA EN LA REPÚBLICA
ARGENTINA
-
ORGANIZACIÓN MUNDIAL DE SANIDAD ANIMAL (OIE):
Con respecto a la Fiebre Aftosa, la OIE reconoce las siguientes zonas libres
que en conjunto ocupan todo el territorio nacional:
2 zonas libres con vacunación:
-
Centro – Norte
-
Cordón fronterizo
3 zonas libres sin vacunación:
-
Patagonia (conformada por Patagonia Norte B y Patagonia
Sur),
-
Patagonia Norte A
-
Valles de Calingasta (Provincia de San Juan)
Este estatus sanitario es reconfirmado anualmente por nuestro país.
Mapa N°1. Zonas Libres de Fiebre Aftosa reconocidas por OIE
�Ubicación:
Centro – Norte: Límites políticos de las Provincias de Santiago del Estero,
Santa Fe, Córdoba, San Luis, La Pampa, Buenos Aires (excepto el partido de
Patagones), Entre Ríos, La Rioja, San Juan (excepto los Valles de
Calingasta), Mendoza, Jujuy, Tucumán y Catamarca. También el territorio
de las provincias de Misiones, Corrientes, Salta, Formosa y Chaco
(exceptuando, en todas estas provincias la franja que conforma el Cordón
fronterizo).
Cordón fronterizo: Ocupa una franja de alrededor de 25 km de ancho a lo
largo de la frontera. Por cuestiones operativas se divide en Frontera Norte A
(abarca parte de las provincias de Salta y
Formosa) y Frontera Norte B
(parte de las provincias de Chaco, Corrientes y Misiones).
Mapa N° 2: Zonas libres con
vacunación
CENTRO NORTE
CORDÓN FRONTERIZO
Patagonia: Comprende a Patagonia Sur y Patagonia Norte B.
�MapaN° 3: Zona libre sin vacunación
PATAGONIA
Patagonia Norte A: Comprende parte de las Provincias de Rio Negro,
Neuquén y Buenos Aires (Partido de Patagones):
-
Provincia de RIO NEGRO: Área delimitada: al norte por el Río
Colorado, límite político con la Provincia de LA PAMPA; al oeste por el
límite político con la Provincia del NEUQUEN; al este por el límite
político con la Provincia de BUENOS AIRES y al sur por el Río Negro.
El límite sur de esta región está dado por la margen sur del Río Negro
a excepción del Valle Azul situado en la margen sur de dicho río, en el
Departamento El Cuy, los establecimientos linderos sobre la margen
sur de ese río en el Departamento Avellaneda, al este de la Ruta
Provincial Nº 250 desde Pomona hasta El Solito, al este de la Ruta
Provincial Nº 2 desde El Solito hasta San Antonio Oeste, y la zona sur
de los Departamentos Conesa y Adolfo Alsina.
-
Provincia de BUENOS AIRES: Solo el Partido de Patagones, ubicado al
sur del río Colorado, está reconocido por OIE como libre de aftosa
�SIN vacunación, el resto de la provincia de Buenos Aires se encuentra
reconocida por OIE como libre de aftosa CON vacunación.
-
Provincia del NEUQUEN: Área delimitada desde Picún-Leufú (Ruta
Nacional Nº 237) hasta Cutral-Có (Ruta Nacional Nº 22), desde
Cutral-Có hasta Añelo por Ruta Provincial Nº 17, el cruce de las Rutas
Provinciales Nros. 7 y 8 - Puente Dique Ballester, Puente CentenarioCinco Saltos, Puente Neuquén (Ruta Nacional Nº 22), Puente Las
Perlas sobre el Río Limay.
Mapa N° 4: Zona libre sin vacunación
PATAGONIA NORTE A
Valles de Calingasta: Es una pequeña zona de altos valles andinos de
pastoreo que se encuentra en la provincia de San Juan. Estos valles solo
son accesibles para el pastoreo desde Chile, dado que el limite político entre
este país y Argentina no está dado por las altas cumbres, sino por la
divisoria de aguas, lo que hace que desde el lado argentino entre los valles
y el resto de la provincia de San Juan se interponga una barrera montañosa
de más de 4.000 ms de altura, lo que la hace inaccesible para el ganado de
Argentina
�Mapa N° 5: Zona libre sin vacunación
VALLES DE CALINGASTA
-
REGIONALIZACIÓN SEGÚN UNION EUROPEA (UE):
Mapa N°. Regionalización según UE
Condiciones para exportar carne a UE según la zona de procedencia:
�
Regiones AR-1 y AR-3:Carne fresca incluida la carne picada de bovino
doméstico (comprende las especies de los géneros Bison y Bubalus y
sus cruzas) y de ciervos no domésticos de criadero, con garantíasde
maduración, medición de pH y deshuesado de la carne fresca,
excepto los despojos.
Regiones AR-2 y AR-4:Carne fresca incluida la carne picada de bovino
doméstico (comprende las especies de los géneros Bison y Bubalus y
sus cruzas), de ciervos no domésticos de criadero y en estado
silvestre, de ovinos y caprinos domésticos.
SITUACIÓN ACTUAL DE FIEBRE AFTOSA EN SUDAMÉRICA
Mapa N°7. Estatus oficial de FA en Sudamérica - OIE
�ULTIMOS FOCOS EN ARGENTINA, CONO SUR Y SUDAMERICA
-
ARGENTINA: Hace más de 12 años que no se presentan casos.
Los primeros días del mes de febrero de 2006, el veterinario privado
que atiende el Establecimiento Agropecuario “San Juan” (Foco Nº 1)
ubicado a 25 Km. de la frontera con el Paraguay, en el Departamento
de San Luis del Palmar de la Provincia de Corrientes, denuncia ante el
Veterinario Local del SENASA haber visto bovinos con lesiones
vesiculares en dicho predio. El Veterinario Oficial constata la
existencia de 70 bovinos con signología clínica sin registro de
mortandad.
Mapa N°8. Foco Corrientes 2006
Se tomaron de inmediato las siguientes medidas: inspección clínica de los
animales, inmovilización de la hacienda, toma y remisión de muestras al
�laboratorio, delimitación de las eventuales áreas focal-perifocal-vigilancia y
la convocatoria del Equipo Regional de Emergencia.
El Laboratorio Oficial del SENASA realizó el diagnóstico primario por medio
de los ensayos ELISA SI y Fijación de Complemento 50 % (tejido epitelial) y
EITB (serología) confirmando virus de la fiebre aftosa tipo “O” el día 8 de
febrero, completándose, posteriormente los estudios de caracterización
virológica, inmunológica y molecular del virus aislado. A partir de la
confirmación
se
realizó
la
comunicación
oficial
a
los
Organismos
Internacionales (OIE - CVP – PANAFTOSA), entidades agropecuarias,
industria agroalimentaria, países vecinos y con relación comercial.
Se declaró la EMERGENCIA SANITARIA (Resolución SENASA Nº 35/06) y se
dispuso el sacrificio sanitario de los animales enfermos y contactos
(Resolución SENASA Nº 36/06).
El 21 de febrero (Foco Nº 2) se detecta un bovino con lesiones cicatrizales,
en la boca y en las patas, compatibles con fiebre aftosa en un predio lindero
al lote afectado dentro del área focal del Foco Nº 1. Se trató de un único
bovino sin marca que indicara propiedad. El dueño delestablecimiento no
reconoció su propiedad y no había registro de su existencia en el acta de
vacunación e inspección del área perifocal de fecha 11 de febrero de 2006.
Las lesiones cicatrizales no permitieron tomar muestras epiteliales, pero sí
se tomaron muestras de LEF- Probang del bovino afectado (y de tres de sus
contactos) de ninguna de las cuales se recuperó virus. El suero fue reactivo
a las pruebas para Proteínas No estructurales (PNE) ELISA 3 ABC/EITB.
Ningún animal del predio presentó signos clínicos de enfermedad y en el
muestreo
serológico
del
establecimiento
no
se
detectaron
animales
reactores a PNE.
Se procedió al sacrificio sanitario del animal afectado y sus contactos
directos (Resolución SENASA Nº 91/06).
�Se considera erradicada la enfermedad el 1º de marzo de 2006, día en que
finalizó el sacrificio sanitario de los animales involucrados.
La OIE restituye la condición de Zona libre que practica la vacunación en la
75 ª Sesión General de Mayo de 2007.
Cuadro N°1. Resumen del foco de San Luis de Palmar 2006
Número
San Luis del Palmar
Corrientes - Foco 1
de
animales en
la unidad de
producción
Número
de
animales
infectados en la
unidad
de
Animales
Sacrificados
producción
Bovinos
4.098
70
4.098
Ovinos
100
0
100
Caprinos
235
0
237
Suinos
5
0
5
San Luis del Palmar
1.400
Corrientes
-
Foco 2
(bovinos)
1 (bovino)
415
(bovinos)
CONO SUR:Hace más de 6 años que no se presentan casos en el
Cono sur.
Los últimos 2 focos se presentaron en San Pedro, Paraguay, uno en
septiembre del 2011 y el otro en enero de 2012. Ambos se
presentaron en bovinos y fue debido al serotipo O.
Mapa N° 9. Foco Paraguay 2011 - 2012
�-
SUDAMERICA: El último foco se presentó en octubre del 2018 en
Colombia. Por este motivo OIE le suspendió el estatus de libre de FA
a este país.
Anteriormente, en junio y julio del 2017, se habían presentado los
primerosfocos en Colombia. Todos fueron por serotipo O y se
reportaron casos en bovinos y porcinos (esta especie en el foco de
octubre 2018)
Pueden consultar el informe técnico que realizo PANAFTOSA del brote
del
2017:
https://www.paho.org/panaftosa/index.php?option=com_docman&vi
ew=download&slug=notatecnica-fiebreaftosa-colombia-2017503&Itemid=518
Mapa N° 10. Foco Colombia_Junio 2017
�Mapa N° 11. Ubicación focos de fiebre aftosa tipo O – Municipios de
Sogamoso, San Diego y Maicao - Colombia_Octubre2018
Figura N°1. Linea de tiempo de confirmación de focos –
Colombia 2018
�
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Title
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Módulo II: Estatus sanitario en la Argentina y la Región - Fiebre Aftosa
Publisher
An entity responsible for making the resource available
Servicio Nacional de Sanidad y Calidad Agroalimentaria
Date
A point or period of time associated with an event in the lifecycle of the resource
[2020]
Language
A language of the resource
Es
Identifier
An unambiguous reference to the resource within a given context
B.S.0098
Abstract
A summary of the resource.
Módulo diseñado para el curso Reacreditación de veterinarios privados. El presente módulo (Nº 2) informa sobre la situación actual de la fiebre aftosa en Argentina y en Sudamérica, de acuerdo a la OIE. También señala la regionalización según la Unión Europea, para exportación de carne a ese destino. Inlcluye una breve descripción de los últimos focos en Argentina y en la Región del Cono Sur.
Type
The nature or genre of the resource
Literatura Gris
Fiebre Aftosa