440 10 4490 https://biblioteca.senasa.gob.ar/files/original/410cc5d170e3ee1411650f8e2d9eb4f6.pdf 0a0b134e6f495c06d7da8d6b0106f29f PDF Text Text DIRECCIÓN NACIONAL DE SANIDAD ANIMAL DIRECCIÓN DE PLANIFICACIÓN Y ESTRATEGIA DE SANIDAD ANIMAL COORDINACION GENERAL DE EPIDEMIOLOGIA /PROGRAMA NACIONAL DE SANIDAD AVIAR PROGRAMA DE VIGILANCIA EPIDEMIOLÓGICA ACTIVA Y PASIVA DE INFLUENZA AVIAR Y ENFERMEDAD DE NEWCASTLE EN AVES DE CORRAL Y AVES SILVESTRES EN LA REPUBLICA ARGENTINA Programa de Vigilancia Influenza Aviar y Enfermedad de Newcastle 2021 1 �DIRECCIÓN NACIONAL DE SANIDAD ANIMAL DIRECCIÓN DE PLANIFICACIÓN Y ESTRATEGIA DE SANIDAD ANIMAL COORDINACION GENERAL DE EPIDEMIOLOGIA /PROGRAMA NACIONAL DE SANIDAD AVIAR CONTENIDO 1. INTRODUCCIÓN .................................................................................................................................... 3 2. OBJETIVOS DEL SISTEMA DE VIGILANCIA EPIDEMIOLOGICA EN AVES. ................................................ 3 3. SISTEMA DE REGISRO DE EXPLOTACIONES .......................................................................................... 4 4. POBLACION OBJETIVO .......................................................................................................................... 5 5. ESTRATEGIAS DE VIGILANCIA EPIDEMIOLÓGICA.................................................................................. 5 5.1 VIGILANCIA PASIVA ............................................................................................................................ 5 5.2 VIGILANCIA ACTIVA ............................................................................................................................ 6 5.2.1 EN PREDIOS DE AVES DE TRASPATIO .............................................................................................. 6 5.2.2 EN PREDIOS DE AVES DE GALLINAS PONEDORAS ........................................................................... 8 5.2.3 EN NÚCLEOS DE REPRODUCCIÓN ................................................................................................. 10 5.2.4 MUESTREOS COMPLEMENTARIOS ................................................................................................ 10 5.2.5 MUESTREOS OPORTUNÍSTICOS EN AVES SILVESTRES ................................................................... 10 6. DIAGNÓSTICO DE IA Y ENC A PARTIR DE LAS MUESTRAS OBTENIDAS EN LA VIGILANCIA EPIDEMILÓGICA ...................................................................................................................................... 11 6.1 DIAGNOSTICO DE INFLUENZA AVIAR ............................................................................................... 11 6.2 DIAGNOSTICO DE LA ENFERMEDAD DE NEWCASTLE ....................................................................... 12 FLUJOGRAMA DIAGNOSTICO DE INFLUENZA AVIAR .............................................................................. 13 FLUJOGRAMA DIAGNOSTICO DE ENFERMEDAD DE NEWCASTLE .......................................................... 14 Programa de Vigilancia Influenza Aviar y Enfermedad de Newcastle 2021 2 �DIRECCIÓN NACIONAL DE SANIDAD ANIMAL DIRECCIÓN DE PLANIFICACIÓN Y ESTRATEGIA DE SANIDAD ANIMAL COORDINACION GENERAL DE EPIDEMIOLOGIA /PROGRAMA NACIONAL DE SANIDAD AVIAR 1. INTRODUCCIÓN La República Argentina es considerada libre de Influenza Aviar (IA) y de la Enfermedad de Newcastle (ENC), dos enfermedades de alto impacto en la producción y el comercio internacional de productos avícolas. La influenza aviar es una enfermedad que nunca estuvo presente en nuestro territorio, mientras que la enfermedad de Newcastle fue diagnosticada por primera vez en 1961 y estuvo presente hasta 1987, año en el que se registró el último foco en pollos parrilleros. Diez años después del último foco, Argentina se autodeclaró libre ante la Organización Mundial de Sanidad Animal (OIE), según lo establece la Resolución Senasa N° 446/1997. Para preservar este estatus sanitario, el Programa Nacional de Sanidad Aviar del Senasa y la Coordinación General de Epidemiología, implementan actividades enfocadas a la prevención y la detección temprana de estas enfermedades. Entre dichas acciones las de vigilancia activa resultan de suma importancia dado que permiten demostrar la ausencia de los agentes causales de ambas enfermedades. Considerando las posibles vías de ingreso, especialmente para IA, la vigilancia pasiva en aves silvestres y producciones de traspatio, además de las comerciales, también constituye una actividad crucial para la detección temprana, a la vez que robustece la información técnica por la cual se demuestra la ausencia en el territorio nacional. El presente documento fue elaborado en forma conjunta por las distintas áreas de la Dirección Nacional de Sanidad Animal, con la colaboración de la Dirección General de Laboratorios y Control Técnico del Senasa. El mismo tiene como objetivo establecer los criterios técnicos y procedimientos empleados en el marco del sistema de vigilancia epidemiológica para la influenza aviar de notificación obligatoria y la enfermedad de Newcastle. 2. OBJETIVOS DEL SISTEMA DE VIGILANCIA EPIDEMIOLOGICA EN AVES. OBJETIVO GENERAL Demostrar la ausencia de infección y circulación del virus de influenza aviar de notificación obligatoria (VIA) y de las cepas virulentas o patógenas del Virus de la enfermedad de Newcastle (VEN) en las aves de corral y silvestres en todo el territorio nacional. OBJETIVOS ESPECÍFICOS  Demostrar la ausencia de infección por VIA y VEN en aves de corral consideradas de mayor riesgo por su sistema de cría. Programa de Vigilancia Influenza Aviar y Enfermedad de Newcastle 2021 3 �DIRECCIÓN NACIONAL DE SANIDAD ANIMAL DIRECCIÓN DE PLANIFICACIÓN Y ESTRATEGIA DE SANIDAD ANIMAL COORDINACION GENERAL DE EPIDEMIOLOGIA /PROGRAMA NACIONAL DE SANIDAD AVIAR    Detectar infecciones de Influenza aviar de baja patogenicidad de los subtipos H5 y H7, y de alta patogenicidad en aves gallináceas, patos, gansos y aves de caza anátidas criadas en explotaciones dentro de territorio nacional. Detectar precozmente la circulación de los VIA y VEN en casos de observación de signos clínicos compatibles o aumentos de mortalidad o alteraciones en los parámetros productivos en aves de corral y silvestres. Detectar la circulación de virus de influenza aviar en aves silvestres de vida libre y en cautiverio. 3. SISTEMA DE REGISRO DE EXPLOTACIONES La República Argentina cuenta con un Registro Nacional Sanitario de Productores Agropecuarios (RENSPA), establecido por la Resolución Senasa Nº 423/2014 del SERVICIO NACIONAL DE SANIDAD Y CALIDAD AGROALIMENTARIA. Dicho marco regulatorio establece que todos los productores agropecuarios tienen la obligación de gestionar el RENSPA de cada una de sus explotaciones productivas independientemente de la cantidad de animales que la conforman. Debido a la necesidad de contar con este registro para evitar restricciones de movimientos de animales asociadas a la producción y al comercio, prácticamente todas las granjas comerciales de alta escala productiva están incorporadas a este registro nacional. Por la misma razón, las explotaciones de traspatio, pertenecientes a pequeños productores que de manera informal comercializan su producción o solo las conservan para auto consumo, están subregistradas. A raíz de ello, desde el Senasa, junto con las organizaciones de pequeños productores y otras instancias nacionales y provinciales abocadas a asistir a los productores de la agricultura familiar, se llevan a cabo acciones tendientes a incrementar el registro de aves de traspatio. Entre dichas acciones el relevamiento de aves y otros animales a través de los vacunadores que ejecutan las campañas de inmunización contra Fiebre Aftosa y brucelosis bovina, resulta de enorme valor contributivo. Cada año, en dos oportunidades, los vacunadores de los Entes Sanitarios que llevan a cabo la vacunación de bovinos y bubalinos informan o actualizan el stock de otras especies animales de interés pecuario registrando en el acta de vacunación las existencias de cada establecimiento visitado en la zona libre de aftosa sin vacunación ante la declaración bajo juramento del responsable o propietario de los animales. En las zonas libres de aftosa sin vacunación, la actualización del stock de todas las especies de la totalidad de los predios se realiza por el productor a través de la actualización anual con formato de declaración jurada en las Oficinas de Senasa. Durante el año 2020, a través de los relevamientos anteriormente citados, se declararon existencias de aves en establecimientos que no poseían declarada la actividad avícola, hecho que contribuye a subsanar el sub registro identificado. Programa de Vigilancia Influenza Aviar y Enfermedad de Newcastle 2021 4 �DIRECCIÓN NACIONAL DE SANIDAD ANIMAL DIRECCIÓN DE PLANIFICACIÓN Y ESTRATEGIA DE SANIDAD ANIMAL COORDINACION GENERAL DE EPIDEMIOLOGIA /PROGRAMA NACIONAL DE SANIDAD AVIAR 4. POBLACION OBJETIVO A efectos de este Programa, se consideran los siguientes tipos de explotaciones aviares: Aves- Recría y Producción de Huevos, Aves-Producción de Huevos, AvesTraspatio, Aves-Reproductoras (abuelas y padres). No obstante, aunque no están incluidas dentro del programa también podrán ser muestreadas en circunstancias excepcionales el siguiente tipo de producción: Aves-Producción carne: cuando la mortandad al final del ciclo sea mayor o igual 10% se bloqueará la salida de los animales a faena. El Veterinario Acreditado en Sanidad deberá presentar un informe técnico que indique las causas de lo acontecido. De presentarse desconformidad con lo demostrado se deberá fiscalizar el establecimiento y tomar muestras para su posterior diagnóstico de IA/ENC Dentro de la población de aves silvestres se consideran: a) Aves silvestres de vida libre. Si bien los anseriformes se consideran las aves más susceptibles y de mayor importancia desde el punto de vista epidemiológico, también pueden incluirse en la vigilancia aquellas aves que tienen contactos con anseriformes y/o aves de los siguientes géneros: galliformes, charadriformes, phoenicopteriformes, ciconiformes, pelecaniformes, procelariformes, aves rapaces y ratites. b) Aves silvestres en cautiverio que pueden tener contacto con aves silvestres de vida libre (zoológicos o patos de producción extensiva). c) Aves silvestres que provienen de la vida libre, por ejemplo, incautaciones de contrabando. Estas aves se pueden analizar cuando se incautan o antes de su liberación. Las aves que no deberían incluirse en la vigilancia de IA-ENC en aves silvestres son:     Aves de criadero. Aves criadas en cautiverio que deben ser liberadas. Aves silvestres confinadas que no tienen contacto con aves silvestres. 5. ESTRATEGIAS DE VIGILANCIA EPIDEMIOLÓGICA El Programa de Vigilancia cuenta con un Sistema de Vigilancia que incluye un componente pasivo y activo, descriptos a continuación: 5.1 VIGILANCIA PASIVA La variabilidad de los signos clínicos ante casos de la enfermedad de Newcastle o de influenza aviar de alta y baja patogenicidad, implica la imposibilidad de contar con orientaciones categóricas en caso de sospecha. Una mortalidad elevada y repentina en aves de corral o silvestres, ya sea con o sin sintomatología clínica, deberá ser investigada por el Senasa local y, si amerita, por el laboratorio oficial a partir de muestras recolectadas para la ocasión. Programa de Vigilancia Influenza Aviar y Enfermedad de Newcastle 2021 5 �DIRECCIÓN NACIONAL DE SANIDAD ANIMAL DIRECCIÓN DE PLANIFICACIÓN Y ESTRATEGIA DE SANIDAD ANIMAL COORDINACION GENERAL DE EPIDEMIOLOGIA /PROGRAMA NACIONAL DE SANIDAD AVIAR Un diagnóstico presuntivo de enfermedad clínica en poblaciones supuestamente infectadas, deberá confirmarse siempre mediante pruebas diagnósticas virológicas en el laboratorio Central de Senasa. La decisión de considerar como sospechosa a una explotación de influenza aviar/ enfermedad de Newcastle se basará en las siguientes observaciones y criterios: a) Observaciones clínicas y patológicas en las aves de cría: 1. La reducción de la ingesta de alimento y agua superior al 20%, sin justificar. 2. La reducción de la producción de huevos superior al 5% durante más de dos días, sin justificar. 3. Un índice de mortalidad semanal superior a un 3%, sin justificar. 4. Un índice de mortalidad de fin de ciclo en pollos de engorde mayor o igual al 10%, sin justificar o justificación insuficiente. 5. Todo indicio clínico o lesión post-mortem que sugiera la presencia de IA /ENC b) Observaciones epidemiológicas: 1. Si las aves han estado en contacto directo o indirecto con una explotación avícola que, se haya demostrado infectada con el virus de la influenza aviar /enfermedad de Newcastle 2. Si una explotación de cría o recría ha distribuido aves que, según se haya demostrado posteriormente, estuvieran infectados con el virus de la influenza aviar. 3. Si existe la posibilidad de que las aves hayan estado expuestos al virus, por ejemplo, debido a la entrada en la explotación de personas, vehículos, etc. Para el caso de aves silvestres cualquier detección de aves muertas o con sintomatología nerviosa, decaimiento o signos respiratorios deberá ser notificada al SENASA. El Veterinario de Senasa local deberá comunicar la sospecha de una enfermedad de notificación obligatoria a la Coordinación General de Control Territorial, dependiente de la Dirección de Ejecución Sanitaria y Control de Gestión. Ver el Instructivo Sistema de Notificaciones comunicado por ME-2021-04595771-APN-DESYCG#SENASA. En referencia al procedimiento de actuación, se debe seguir el “Manual de Notificación de y atención de sospechas en aves de corral y silvestres” 5.2 VIGILANCIA ACTIVA 5.2.1 EN PREDIOS DE AVES DE TRASPATIO La vigilancia en explotaciones de traspatio está basada en riesgo, según el modelo de riesgo de la Influenza aviar y enfermedad de Newcastle, tal como se describe en el sistema AVE de información Geográfica para Asistencia en la Vigilancia Epidemiológica. (http://www.fao.org/3/i0943s/i0943s00.htm) Programa de Vigilancia Influenza Aviar y Enfermedad de Newcastle 2021 6 �DIRECCIÓN NACIONAL DE SANIDAD ANIMAL DIRECCIÓN DE PLANIFICACIÓN Y ESTRATEGIA DE SANIDAD ANIMAL COORDINACION GENERAL DE EPIDEMIOLOGIA /PROGRAMA NACIONAL DE SANIDAD AVIAR Los factores de riesgo que se consideran asociados a estas enfermedades lo constituye su ubicación cercana a:  Frontera Oeste  Frontera Norte  Frontera Marítima  Frontera Este  Aeropuertos  Principales Rutas  Zona de migración de aves: contempla humedales, ríos y cuerpos de agua, más sitios RAMSAR* y lugares identificados como de asiento de aves migratorias.  Aves de Traspatio: información proporcionada por el Sistema Integrado de Gestión y Sanidad Animal (SIGSA) y análisis de densidad poblacional.  Distribución de aves comerciales: datos obtenidos del SIGSA. Se utilizó el método de comparación de a pares, donde la importancia relativa de cada factor de riesgo fue ponderada comparando con el resto de los factores de riesgo. Habiendo analizado las muestras de los últimos seis años, se propuso seleccionar las oficinas que realizarán vigilancia de traspatio en base a la actualización del modelo mencionado. A continuación se presenta el mapa de riesgo (Mapa 1) y las oficinas que poseen una zona significativa de su territorio con un riesgo superior a mediano (Mapa 2). * Argentina tiene actualmente 23 sitios designados como Humedales de Importancia Internacional (sitios RAMSAR). Programa de Vigilancia Influenza Aviar y Enfermedad de Newcastle 2021 7 �DIRECCIÓN NACIONAL DE SANIDAD ANIMAL DIRECCIÓN DE PLANIFICACIÓN Y ESTRATEGIA DE SANIDAD ANIMAL COORDINACION GENERAL DE EPIDEMIOLOGIA /PROGRAMA NACIONAL DE SANIDAD AVIAR Supuestos: partiendo de una población desconocida (o tendiente a infinito) se presentan los siguientes supuestos:      Nivel de confianza: 95% Mínima prevalencia esperada de predios positivos: 1% Mínima prevalencia esperada de aves positivas intrapredio: 20% Cantidad promedio de aves por predio: 20 Número de aves a muestrear por establecimiento: 10 De acuerdo a estos supuestos se deberán muestrear 306 establecimientos. El diseño asegurará una confianza del 95% de detectar uno o más predios de traspatio infectados en las zonas seleccionadas como de mayor riesgo, si la prevalencia de la IA o NC en la población de aves de traspatio de esas zonas, es de por lo menos el 1% y la prevalencia de las aves infectadas es por lo menos el 20%. Se adicionó un 15% más de establecimientos, con el fin de que se cumpla con el mínimo calculado, obteniendo un número de 351 predios a muestrear durante el año 2021. Se tomará muestras de sueros e hisopados cloacales o traqueales u orofaringeos de la totalidad de las aves, si el número de aves es menor de 10 ó de 10 aves si el número de aves es mayor o igual a 10. 5.2.2 EN PREDIOS DE AVES DE GALLINAS PONEDORAS El objetivo del muestreo es demostrar la ausencia de infección y circulación del Virus de Influenza Aviar de notificación obligatoria (VIA) en las gallinas ponedoras de explotación comercial. Este estudio está dirigido a los establecimientos de explotación comercial, de todo el territorio nacional, y dentro de las diferentes explotaciones comerciales a la subpoblación de gallinas de postura (incluyendo las aves recría), consideradas la de mayor riego debido a la presencia de aves de diferentes edades dentro de la granja y a su largo ciclo productivo y por lo tanto a la mayor probabilidad de que en una granja pueda existir una cepa de virus de baja patogenicidad sin manifestación clínica de enfermedad. La cantidad registrada de esta subpoblación es de 1004 granjas. Como primer paso para la selección de los establecimientos a muestrear, se identificaron criterios de inclusión basados en factores de riesgo asociados al posible contacto con el virus. La selección de las mismas se realizó de acuerdo a la epidemiología de la enfermedad y referencias bibliográficas:  Proximidad a posibles asentamientos de aves silvestres y migratorias: - Humedales: Establecimientos que se encuentren cercanos a humedales de importancia en la zona por la densidad de aves silvestres o por las especies de aves existentes (patos, gansos y cisnes). Se tomó como referencia un área de 10 km. (3 puntos) Se incluyeron cuerpos de agua permanente (lagos, lagunas, embalses) e hidrografía permanente (ríos). (2 puntos) Programa de Vigilancia Influenza Aviar y Enfermedad de Newcastle 2021 8 �DIRECCIÓN NACIONAL DE SANIDAD ANIMAL DIRECCIÓN DE PLANIFICACIÓN Y ESTRATEGIA DE SANIDAD ANIMAL COORDINACION GENERAL DE EPIDEMIOLOGIA /PROGRAMA NACIONAL DE SANIDAD AVIAR  Categoría de bioseguridad: Se tuvieron en cuenta aquellos establecimientos que estuvieran registrados en el Sistema Integrado de Gestión de Sanidad Animal (SIGSA) en una categoría de bioseguridad baja: C, D y sin clasificar. (2 puntos)  Cercanía con establecimientos avícolas de traspatio: Establecimientos ubicados dentro de un radio de 5 kms. de distancia a establecimientos de traspatio registrados en el SIGSA. (3 puntos)  Linderos a establecimientos con aves no registrados: Establecimientos ubicados dentro de un radio de 5 kms. de distancia con establecimientos identificados a través de las actas de vacunación de aftosa que tienen aves y las actualizaciones de stock anuales de la zona sin vacunación. (3 puntos)  Zona de fronteras: Establecimientos que se encuentren dentro de aproximadamente 100 km de la frontera norte, en las cuales puede existir grupos de aves más expuestos al riesgo por encontrarse en zonas limítrofes con un importante tráfico vecinal fronterizo de aves vivas o productos avícolas. Incluye a las regionales Salta-Jujuy; Chaco-Formosa y Corrientes-Misiones. (1 punto)  Establecimientos que se encuentren a una distancia igual o menor a 100 km de la frontera oeste, focalizándolos en los pasos fronterizos que comuniquen con el país vecino. (1 punto)  Zonas con elevada densidad de granjas: se incluyeron aquellos establecimientos que se encuentren a ubicados en zonas de alta densidad de producción avícola. Establecimientos ubicados en un departamento/partido con densidad de granjas mayor a 0,1 granjas por km2. (1 punto)  Establecimientos con distintos tipos de producción (o diferentes aves): Establecimientos que registren en el SIGSA más de un tipo de especie avícola en un mismo establecimiento. (1 punto) Selección de los predios a muestrear Más del 50% de los predios tiene valores por debajo de 5. Se considera que los predios con 6 puntos o más se clasifican como de riesgo y conforman la población en estudio (el 43% de las granjas de ponedoras). En total son 431 granjas. En una segunda etapa se definió el tamaño de la muestra considerando los siguientes parámetros y supuestos. Supuestos: Analizando 20 muestras de suero e hisopados por predio, con una prevalencia animal esperada de 15%, contemplando una sensibilidad de la técnica diagnóstica del 95,4%, se alcanza una sensibilidad a nivel predio del 94%. Parámetros de la prueba diagnóstica utilizada (ELISA multiespecie) de acuerdo a información proporcionada por la Coordinación de Virología del DILAB del SENASA:   Sensibilidad 95,4 % Especificidad 99.7% Programa de Vigilancia Influenza Aviar y Enfermedad de Newcastle 2021 9 �DIRECCIÓN NACIONAL DE SANIDAD ANIMAL DIRECCIÓN DE PLANIFICACIÓN Y ESTRATEGIA DE SANIDAD ANIMAL COORDINACION GENERAL DE EPIDEMIOLOGIA /PROGRAMA NACIONAL DE SANIDAD AVIAR Con una prevalencia esperada del 1% de predios y una sensibilidad a nivel predio del 94%, se deben muestrear 203 predios para obtener una confianza del 95% (4.060 muestras). 5.2.3 EN NÚCLEOS DE REPRODUCCIÓN Las aves reproductoras son monitoreadas en el marco del muestreo para el Plan Nacional de Sanidad Avícola (PNSA), que contiene el “Programa de control de las Micoplasmosis y Salmonelosis de las aves y prevención y vigilancia de enfermedades exóticas y de alto riesgo en planteles de reproducción”, como parte de la Resolución SENASA N°882 del 5 de diciembre de 2002. Los veterinarios oficiales deben enviar al laboratorio del Senasa, una vez por año, 20 (veinte) muestras de suero correspondientes a cada núcleo/lote de aves reproductoras. Las granjas de aves reproductoras padres o abuelas se encuentran organizadas en “núcleos”, cada granja puede disponer de uno o varios núcleos. Cada núcleo dispone en general de 2 a 5 galpones. Se considera como unidad epidemiológica al núcleo ya que las aves dentro del mismo tienen la misma edad, el mismo origen, reciben el mismo manejo y tratamiento sanitario y están bajo el control de la misma persona (por lo general exclusiva para cada núcleo). 5.2.4 MUESTREOS COMPLEMENTARIOS Durante la Vigilancia Epidemiológica 2020 se encontraron en diferentes explotaciones sueros positivos a Influenza Aviar diferente a H5 y H7, o títulos altos para la Enfermedad de Newcastle. Por lo cual resulta necesario que los mismos continúen en vigilancia. La cantidad de aves a muestrear dependerá del establecimiento. Se procederá a tomar sueros e hisopados cloacales u orofaríngeos o traqueales. Si el establecimiento corresponde a aves-traspatio se tomarán sueros e hisopados cloacales u orofaríngeos o traqueales de la totalidad de las aves, si el número de aves es menor de 10 ó de 10 aves si el número de aves es mayor o igual a 10. Si el establecimiento corresponde a gallinas de postura, se deberá tomar muestras de suero e hisopados cloacales u orofaríngeos o traqueales de 20 aves por predio. 5.2.5 MUESTREOS OPORTUNÍSTICOS EN AVES SILVESTRES Dado que algunas aves silvestres pueden actuar como reservorio para el virus de influenza aviar y no desarrollan sintomatología, se completa la vigilancia pasiva con toma de muestras de aves aparentemente sanas. Esta componente consiste en identificar oportunidades de muestreo asociado a otras instituciones, como por ejemplo trabajos de investigación de universidades o jornadas de caza. Se busca la manera de participar ya sea en la obtención de las muestras o en el envío de Programa de Vigilancia Influenza Aviar y Enfermedad de Newcastle 2021 10 �DIRECCIÓN NACIONAL DE SANIDAD ANIMAL DIRECCIÓN DE PLANIFICACIÓN Y ESTRATEGIA DE SANIDAD ANIMAL COORDINACION GENERAL DE EPIDEMIOLOGIA /PROGRAMA NACIONAL DE SANIDAD AVIAR las mismas al laboratorio para que sean analizadas de manera gratuita. Esto redunda en un beneficio para las partes involucradas y nutre al sistema de vigilancia del SENASA. En el caso de aves silvestres se programan actividades de muestreos en zoológicos, donde se muestrean aves de vida libre que descienden en cuerpos de agua dentro de estas instituciones. También se toman muestras de aves incautadas previo a su incorporación a las colecciones o a su liberación al medio, ya sea en zoológicos, centros de rescate o cuando las autoridades de fauna provinciales solicitan la colaboración del SENASA. Además, se busca establecer acuerdos con investigadores que realizan capturas de aves silvestres y con cazadores de patos para obtener muestras. La prioridad de los muestreos oportunísticos depende de la especie de ave, el origen de la misma, la época del año y la zona del país. Siempre se buscará establecer acuerdos que permitan realizar muestreos oportunísticos en especies, épocas del año y zonas en las que se considere más probable la circulación del virus de influenza aviar. Este componente se realiza de manera conjunta con el INTA. En todos los casos la vigilancia en aves silvestre está basada en vigilancia virológica 6. DIAGNÓSTICO DE IA Y ENC A PARTIR DE LAS MUESTRAS OBTENIDAS EN LA VIGILANCIA EPIDEMILÓGICA El análisis de las muestras de aves de corral, se realizará únicamente en el Laboratorio Central de Senasa, ubicado en Talcahuano 1660, Martínez, provincia de Buenos Aires. 6.1 DIAGNOSTICO DE INFLUENZA AVIAR Una vez ingresadas las muestras a la mesa de entradas del laboratorio, los sueros deberán ser enviados al Departamento de Enfermedades de las Aves para la realización del diagnóstico serológico para la IA por las técnicas de ELISA multiespecie y/o IDAG, y en caso de serología positiva para influenza tipo A, deberá realizarse ELISA para H5 y H7. Se deberá confirmar los positivos a H5 y H7 o continuar la investigación epidemiológica hasta determinar el subtipo, mediante la técnica de HI. Si las muestras resultaron serológicamente positivas, se remitirán los hisopados al Departamento de Biología Molecular para análisis virológico mediante RT-PCR en tiempo real del gen M, subtipos H5 y H7 y secuenciación para la determinación de la patogenicidad. De obtenerse un resultado positivo para gen M, se transferirá una alícuota de la muestra al Departamento de Aves para realizar el aislamiento viral y determinar la patogenicidad in vivo (IPIV) y por secuenciación. (Ver Flujograma pág. 13) Todo resultado positivo se investigará mediante la realización de una encuesta epidemiológica según las pautas indicadas en el Capítulo 3 del Manual de Procedimientos de Contingencia de la Influenza Aviar. Programa de Vigilancia Influenza Aviar y Enfermedad de Newcastle 2021 11 �DIRECCIÓN NACIONAL DE SANIDAD ANIMAL DIRECCIÓN DE PLANIFICACIÓN Y ESTRATEGIA DE SANIDAD ANIMAL COORDINACION GENERAL DE EPIDEMIOLOGIA /PROGRAMA NACIONAL DE SANIDAD AVIAR 6.2 DIAGNOSTICO DE LA ENFERMEDAD DE NEWCASTLE Los sueros provenientes de aves de traspatio serán procesados por el Departamento de Enfermedades de las Aves para el diagnóstico serológico por la técnica de ELISA o HI para ENC según la especie. En caso de resultados serológicos positivos a ELISA que arrojen un título promedio superior a 5.000 o un resultado de HI mayor o igual a 1/16 realizado con 4 unidades hemoaglutinantes (UHA), los hisopados deberán ser enviados al Departamento de Biología Molecular para el diagnóstico por la técnica de RT-PCR en tiempo real para gen M, F y secuenciación de F0 para la determinación de la patogenicidad. De obtenerse un resultado positivo para gen M, se transferirá una alícuota de la muestra al Departamento de Enfermedades de las Aves para realizar el aislamiento viral y determinar la patogenicidad in vivo (IPIC) y por secuenciación. (Ver Flujograma pág. 14) Programa de Vigilancia Influenza Aviar y Enfermedad de Newcastle 2021 12 �DIRECCIÓN NACIONAL DE SANIDAD ANIMAL DIRECCIÓN DE PLANIFICACIÓN Y ESTRATEGIA DE SANIDAD ANIMAL COORDINACION GENERAL DE EPIDEMIOLOGIA /PROGRAMA NACIONAL DE SANIDAD AVIAR FLUJOGRAMA DIAGNOSTICO DE INFLUENZA AVIAR Referencias: HI: inhibición de la hemoaglutinación rRT- PCR: Reacción en cadena de polimerasa en tiempo real HA0: sitio de clivaje de la hemoaglutinina IPIV: índice de patogenicidad intravenosa HA: hemoaglutinación IAAP: Influenza aviar de alta patogenicidad IABP: Influenza Aviar de baja patogenicidad Programa de Vigilancia Influenza Aviar y Enfermedad de Newcastle 2021 13 �DIRECCIÓN NACIONAL DE SANIDAD ANIMAL DIRECCIÓN DE PLANIFICACIÓN Y ESTRATEGIA DE SANIDAD ANIMAL COORDINACION GENERAL DE EPIDEMIOLOGIA /PROGRAMA NACIONAL DE SANIDAD AVIAR FLUJOGRAMA DIAGNOSTICO DE ENFERMEDAD DE NEWCASTLE Referencias: HI: inhibición de la hemoaglutinación UHA: unidades hemoaglutinantes rRT- PCR: Reacción en cadena de polimerasa en tiempo real IPIV: Índice de patogenicidad intravenosa F0: sitio de clivaje de la proteína F Programa de Vigilancia Influenza Aviar y Enfermedad de Newcastle 2021 14 � Dublin Core The Dublin Core metadata element set is common to all Omeka records, including items, files, and collections. For more information see, http://dublincore.org/documents/dces/. Title A name given to the resource Publicaciones SENASA Dublin Core The Dublin Core metadata element set is common to all Omeka records, including items, files, and collections. For more information see, http://dublincore.org/documents/dces/. Title A name given to the resource Programa de Vigilancia Epidemiologica Activa y Pasiva de Influenza Aviar y Enfermedad de Newcastle en Aves de Corral y aves Silvestres en la República Argentina Publisher An entity responsible for making the resource available Servicio Nacional de Sanidad y Calidad Agroalimentaria Date A point or period of time associated with an event in the lifecycle of the resource 2021 Contributor An entity responsible for making contributions to the resource Dirección Nacional de Sanidad Animal Dirección de Planificación y Estrategia de Sanidad Animal Coordinación General de Epidemiología Programa Nacional de Sanidad Aviar Language A language of the resource Es Type The nature or genre of the resource Monografía Identifier An unambiguous reference to the resource within a given context B.S.0079 Abstract A summary of the resource. El presente documento fue elaborado en forma conjunta por las distintas áreas de la Dirección Nacional de Sanidad Animal, con la colaboración de la Dirección General de Laboratorios y Control Técnico del Senasa. El mismo tiene como objetivo establecer los criterios técnicos y procedimientos empleados en el marco del sistema de vigilancia epidemiológica para la influenza aviar de notificación obligatoria y la enfermedad de Newcastle. Table Of Contents A list of subunits of the resource. 1. INTRODUCCIÓN 2. OBJETIVOS DEL SISTEMA DE VIGILANCIA EPIDEMIOLOGICA EN AVES 3. SISTEMA DE REGISRO DE EXPLOTACIONES 4. POBLACION OBJETIVO 5. ESTRATEGIAS DE VIGILANCIA EPIDEMIOLÓGICA 5.1 VIGILANCIA PASIVA 5.2 VIGILANCIA ACTIVA 5.2.1 EN PREDIOS DE AVES DE TRASPATIO 5.2.2 EN PREDIOS DE AVES DE GALLINAS PONEDORAS 5.2.3 EN NÚCLEOS DE REPRODUCCIÓN 5.2.4 MUESTREOS COMPLEMENTARIOS 5.2.5 MUESTREOS OPORTUNÍSTICOS EN AVES SILVESTRES 6. DIAGNÓSTICO DE IA Y ENC A PARTIR DE LAS MUESTRAS OBTENIDAS EN LA VIGILANCIA EPIDEMILÓGICA 6.1 DIAGNOSTICO DE INFLUENZA AVIAR 6.2 DIAGNOSTICO DE LA ENFERMEDAD DE NEWCASTLE FLUJOGRAMA DIAGNOSTICO DE INFLUENZA AVIAR FLUJOGRAMA DIAGNOSTICO DE ENFERMEDAD DE NEWCASTLE Enfermedad de Newcastle Enfermedades de las Aves Influenza Aviar https://biblioteca.senasa.gob.ar/files/original/173404fe297d9f7e0db9c1ee14997455.pdf d9abce90fdb1d49a18aa5afed5b6dc55 PDF Text Text AUTODECLARACION DE ZONA LIBRE DE NECROSIS HEMATOPOYÉTICA INFECCIOSA, NECROSIS HEMATOPOYETICA EPIZOOTICA, ANEMIA INFECCIOSA DEL SALMON, NECROSIS PANCREATICA INFECCIOSA, SEPTICEMIA HEMORRAGICA VIRAL, ENFERMEDAD BACTERIANA RENAL Y PISCIRICKETTSIOSIS EN LA CUENCA ALTA DE RIO LIMAY QUE INCLUYE AL EMBALSE DE ALICURA, EN LA REPUBLICA ARGENTINA. 1. INTRODUCCIÓN El Objetivo del presente informe es presentar las evidencias de la ausencia de infección de Necrosis Hematopoyética Epizoótica (EHNV), Necrosis Hematopoyética Infecciosa(IHNV), Septicemia Hemorrágica Viral (VHS), Necrosis Pancreática Infecciosa (IPN), Anemia Infecciosa del Salmón (ISA), Enfermedad Bacteriana Renal (BKD) y Piscirickettsiosis en base al Capítulo 1.4 del Código Sanitario para los Animales Acuáticos 2009 y el Capítulo 1.1.4 del Manual de Pruebas de Diagnóstico para los animales acuáticos 2006 de la ORGANIZACIÓN MUNDIAL DE SANIDAD ANIMAL (OIE), en la Zona Cuenca Alta de Rio Limay que incluye al Embalse de Alicura hasta la presa hidroeléctrica en la República Argentina. La zona libre, se ubica en la Región Patagónica de nuestro país, abarcando parte de las provincias de Neuquén y Río Negro. La misma está delimitada por el Lago Nahuel Huapi y sus afluentes que dan origen al Río Limay hasta la presa del Embalse Alicura, lo que dio lugar a la formación del lago del mismo nombre. La elección de este Embalse en la zonificación se debe a la importancia productiva que representa, con una producción que actualmente alcanza aproximadamente las 1200 tn de truchas arco iris, y un potencial futuro de producción cercano a 4000 tn, estimadas en forma conservadora. La producción total de salmónidos en todo el país es de 1600 tn/2009, representando el 58% de la producción total de su acuicultura. El sustento en que se basa la declaración de esta zona como “Zona Libre de Necrosis Hematopoyética Epizoótica, Necrosis Hematopoyética Infecciosa, Septicemia Hemorrágica Viral, Necrosis Pancreática Infecciosa, Anemia Infecciosa del Salmón, Enfermedad Bacteriana Renal y Piscirickettsiosis”, son las acciones citadas a continuación. Por medio de la Ley N° 3959 de Policía Sanitaria de los Animales, reglamentada por el Decreto de fecha 8 de noviembre de 1906, se declara la obligatoriedad de notificación ante la sospecha de presencia de enfermedades animales. La misma contempla a las enfermedades Necrosis Hematopoyética Epizoótica, Necrosis Hematopoyética Infecciosa, Septicemia Hemorrágica Viral, como de notificación obligatoria para la República Argentina. Las enfermedades Necrosis Pancreática Infecciosa, Anemia Infecciosa del Salmón, Enfermedad Bacteriana Renal y Piscirickettsiosis se encuentran en trámite de incorporación. Página 1 �2. SERVICIO VETERINARIO El Servicio Veterinario de Argentina es el Servicio Nacional de Sanidad y Calidad Agroalimentaria, SENASA. Se trata de un organismo autárquico que depende del actual Ministerio de Agricultura, Ganadería y Pesca de la Nación. Dicho Servicio se mantiene actualizado sobre los nuevos estándares, guías y recomendaciones internacionales en los temas de su incumbencia y armoniza su política y normativa de acuerdo a ellas, e inclusive en algunos de los temas participa como país miembro en discusiones para las actualizaciones (Código y Manual de OIE, Codex Alimentario y otros). La capacidad o competencia técnica de su personal como la capacidad financiera de recursos a su disposición (otorgados por medio de los instrumentos legales correspondientes: leyes, decretos y resoluciones) permiten un correcto funcionamiento del Servicio para mantener un sistema de vigilancia eficaz y la certificación de calidad en los alimentos, como así también, la posibilidad de enfrentar situaciones sanitarias de emergencia. Las políticas sanitarias están orientadas a la interacción con el sector privado para el cumplimiento de actividades que lleven al objetivo común de mejorar o mantener los estándares sanitarios actuales. Capacidad técnica El servicio posee: • Capacidad constante para incorporar los últimos avances científicos reflejados en la actualización de las normas y medidas dictadas por los organismos internacionales como OIE, Codex Alimentarius y el acuerdo de medidas SPS de la Organización Mundial de Comercio. • Capacidad diagnóstica propia y disponibilidad para acceder, en caso de necesidad por emergencias sanitarias, a redes internacionales de laboratorios de referencia. • Promueve la acreditación y auditoría de sus laboratorios para certificar la calidad de los diagnósticos, la toma de muestras y los procedimientos de envío. ▪ Capacidad para detectar y enfrentar eficientemente una emergencia sanitaria. A través del análisis de riesgo y la vigilancia epidemiológica, monitorea el estado sanitario en las poblaciones de riesgo de las enfermedades de importancia para la salud humana o de alto impacto económico. Evalúa el status sanitario de los países limítrofes o con los que tiene intercambio comercial, especialmente en lo que se refiere al Comité Veterinario Permanente (CVP) del Cono Sur, y de acuerdos bilaterales con los países que mantiene relaciones comerciales. A través de la Resolución 848/1998 se crea el Documento de Transito Animal (DTA), quién reemplaza al Permiso Sanitario para el Tránsito de Animales. Todo animal que transite por el territorio argentino debe estar acompañado de su correspondiente DTA y documentado en el Sistema de Gestión Sanitaria. En el año 2008 el SENASA desarrolló el Sistema Integrado de Gestión de Sanidad Animal (SIGSA), establecido por la Resolución N° 356/2008, el cual reemplaza al Sistema de Gestión Sanitaria (SGS). Es un sistema informático en red con el fin de administrar el Registro de Establecimientos con existencia de animales bajo Programas Sanitarios, el registro de eventos sanitarios, el registro de los movimientos de animales entre establecimientos, y el tránsito de mercancías en general, mediante la emisión del Documento de Tránsito Electrónico (DT-e). Actualmente conviven ambos sistemas (SGS-SIGSA), encontrándose en un período de transición. Página 2 �2.1. DESCENTRALIZACIÓN La descentralización administrativa por medio de la regionalización forma parte de la estrategia del cambio actual institucional del Senasa enfocada al fortalecimiento de las políticas nacionales en materia de sanidad animal y vegetal e inocuidad agroalimentaria. La Regionalización plantea la descentralización de las decisiones operativas. Es un avance hacia la delegación de acciones operativas del SENASA a nivel local. Permite al organismo contar con un ámbito adecuado para una más amplia y permanente articulación con los actores locales públicos y privados, mejorar la atención a los productores y ciudadanos, coordinar las acciones de campo y realizar el seguimiento de procesos y evaluación de impactos. Este organismo sanitario tiene en función 14 centros regionales cuyo accionar abarca la totalidad del territorio nacional. En este nuevo contexto, el nivel central con responsabilidad nacional se encargará de cumplir las funciones de normar, orientar, capacitar y auditar. Por tanto, la regionalización apunta a crear, de manera gradual y sustentada en el consenso de los actores institucionales, un Senasa centralizado para las cuestiones normativas y de control y federal en cuanto a su estructura de gestión. La Resolución 225/2006 del Senasa y sus modificatorias redefine la jurisdicción de las cinco regiones (Noreste, Noroeste, Nuevo Cuyo, Pampeana y Patagonia) integradas por un total de catorce (14) centros regionales. La Región NEA está integrada por los Centros Regionales de Misiones-Corrientes, Entre Ríos y Chaco-Formosa. La Región NOA tiene dos centros regionales, NOA-Norte (Salta, Jujuy) y NOA-Sur (Tucumán, Catamarca, Santiago del Estero). La Región Nuevo Cuyo también está dividida en dos centros regionales, Cuyo (La Rioja, San Juan, Mendoza) y La Pampa-San Luis. La Región Pampeana por su parte está integrada por cuatro centros regionales: Metropolitana, Buenos Aires Norte, Buenos Aires Sur, Santa Fe y Córdoba. Finalmente, la Región Patagonia incluye la regional Patagonia Norte (Río Negro, Neuquén) y Patagonia Sur (Chubut, Santa Cruz, Tierra del Fuego). Página 3 �La estructura funcional de las Regionales comprende: • Unidad Regional Operativa (URO) a nivel central, con una Coordinación de Desarrollo Regional y Apoyo Operativo y una Coordinación de Seguimiento y Evaluación Regional • Coordinación General Regional • Coordinación Temática Regional (una por cada área temática: Sanidad Animal, Protección vegetal, Fiscalización Agroalimentaria, Administración, Capacitación y Laboratorio) 2.2. ORGANIZACIÓN El SENASA es responsable de la implementación de las políticas con relación a la sanidad y calidad animal y vegetal, supervisando el cumplimiento de las regulaciones vigentes en relación a esos temas. Al mismo tiempo, es responsable por el tráfico nacional y el control de los animales que se importan y exportan, como así también de los productos animales y vegetales y sus derivados, los agroproductos, productos farmacológicos y veterinarios, agroquímicos y fertilizantes. El personal del SENASA está integrado por 5.000 funcionarios distribuidos entre todas sus áreas. Página 4 �REGIONALIZACION Centro Regional MisionesCorrientes Centro Regional Entre Ríos Centro Regional ChacoFormosa Centro Regional NOA-Norte Centro Regional NOA-Sur Centro Regional Cuyo Centro Regional La PampaSan Luis Centro Regional Santa Fe Centro Regional Córdoba Centro Regional Patagónia Centro Regional Metropolitano Norte Centro Regional Buenos Aires Centro Regional Patagónia Norte Sur Centro Regional Buenos Aires Sur Las áreas principales dedicadas a la Sanidad Animal son: • DIRECCION NACIONAL DE SANIDAD ANIMAL (DNSA) • DIRECCION NACIONAL DE FISCALIZACION AGROALIMENTARIA (DNFA) • DIRECCION DE LABORATORIOS Y CONTROL TÉCNICO (DILACOT) Página 5 �DIRECCION NACIONAL DE SANIDAD ANIMAL (DNSA) Responsabilidad primaria: Desarrollar las acciones de prevención, control y erradicación de las enfermedades de los animales, asegurando el cumplimiento de las normas legales vigentes. Objetivos generales: • Formula, propone y evalúa programas de lucha contra las enfermedades infecciosas y parasitarias de los animales y las zoonosis • Programa, ejecuta y audita planes sanitarios de lucha • Coordina las acciones epidemiológicas en enfermedades endémicas y exóticas o emergentes en el país. • Planifica y ejecuta acciones de vigilancia para determinar prevalencias o ausencias de las principales enfermedades que afectan a los animales • Fiscaliza el movimiento de animales, en los aspectos higiénico sanitarios, y otorga las certificaciones correspondientes. Su estructura funcional comprende las siguientes áreas: • DIRECCIÓN DE EPIDEMIOLOGÍA • DIRECCIÓN DE CUARENTENA ANIMAL • DIRECCIÓN DE LUCHAS SANITARIAS • COORDINACIÓN GENERAL DE CAMPO • COORDINACIONES TEMÁTICAS REGIONALES DE SANIDAD ANIMAL • SUPERVISIONES REGIONALES • OFICINAS LOCALES Dirección de Cuarentena Animal tiene como instancia asesora la Comisión Técnica Asesora de Cuarentena. Asimismo, la Dirección de Epidemiología cuenta con un órgano asesor, la Comisión Técnica Asesora de Epidemiología, formada por representantes del Instituto Nacional de Tecnología Agroalimentaria (INTA), Centro de Virología Animal (CEVAN), de distintas Facultades y del SENASA, creada por Resolución SENASA N° 369/2001. DIRECCIÓN DE EPIDEMIOLOGÍA Acciones: • Análisis epidemiológico de la situación sanitaria, control de casos y focos de enfermedad. • Coordinación de las acciones necesarias para el mantenimiento del sistema nacional de vigilancia epidemiológica. • Supervisión de la fiscalización del movimiento de animales en sus aspectos higiénico sanitarios. • Planificación de encuestas, muestreos diagnósticos y monitoreo serológico. • Análisis bioestadísticos • Contingencias sanitarias DIRECCION DE CUARENTENA ANIMAL • Intervenir o proponer planes, programas y normas sanitarias de prevención de enfermedades exóticas. • Formular, proponer y evaluar las acciones para la erradicación de enfermedades exóticas. • Desarrollar la investigación permanente sobre enfermedades exóticas e inexistentes en el país y difundir la legislación que regula su control sanitario y proponer las modificaciones vigentes en la materia. Página 6 �• Elaborar o intervenir en las propuestas de normas sanitarias de prevención del ingreso de enfermedades exóticas y/o de alto riesgo. • Coordinar la evaluación permanente de factores de riesgo de introducción o propagación de enfermedades notificables. • Intervenir en la modificación de los protocolos y convenios sanitarios internacionales respecto de los requisitos y certificaciones acordadas. • Proponer las pautas sanitarias tendientes a minimizar el riesgo de introducción de enfermedades exóticas y/o de alto riesgo en la importación de animales, material de reproducción, productos y subproductos de origen animal capaces de vehiculizar y/o favorecer la propagación de las citadas enfermedades. • Elaborar y mantener actualizada una base de datos con la información sobre la situación zoosanitaria mundial. • Organizar y mantener actualizados los Registros de competencia de la Dirección DIRECCIÓN DE LUCHAS SANITARIAS Acciones: •Planificación y diseño de campañas de prevención, de lucha y erradicación de enfermedades animales •Desarrollo de la investigación permanente sobre las enfermedades endémicas y propuesta de las modificaciones a la normativa vigente •Coordinación y asistencia técnica del proceso de implantación, control y auditoría de los diferentes programas de lucha COORDINACIÓN GENERAL DE CAMPO Acciones: •Coordinación y gestión del cumplimiento de las acciones de prevención, control y erradicación de enfermedades de los animales bajo programas de lucha •Control del cumplimiento de las acciones sanitarias, en aplicación de la ley de Policía Sanitaria y las normas legales en la materia •Fiscalización de los movimientos de animales, habilitación de instalaciones y certificaciones. COORDINADORES GENERALES REGIONALES Responsabilidades: •Coordinar, planificar y dirigir la ejecución de las acciones contempladas en los planes, programas y actividades de las diferentes Direcciones del SENASA a fin de asegurar el cumplimiento de la normativa aplicable en materia de sanidad animal y vegetal e inocuidad y calidad agroalimentaria. •Ejercer las acciones específicas de fiscalización y toda otra función delegada por la Dirección Nacional de Fiscalización Agroalimentaria en el ámbito de su jurisdicción. •Elaborar el presupuesto anual en forma conjunta con los coordinadores regionales temáticos y las Direcciones Nacionales, verificando su ejecución. •Intervenir en el área de su jurisdicción, en las relaciones institucionales y, ejercer la representación del SENASA ante organismos públicos y privados. •Entender en la administración y desarrollo de los recursos humanos disponibles, así como elevar las necesidades de personal, en concordancia con los coordinadores regionales temáticos. •Disponer las acciones técnico-administrativas correctivas que pudieran corresponder. •Proponer a la autoridad central las necesidades de capacitación del personal. •Mantener actualizados los registros técnicos y administrativos requeridos por las Direcciones del Organismo. Página 7 �•Mantener actualizado el registro de los bienes patrimoniales existentes en su jurisdicción. •Promover la difusión de las actividades en materia sanitaria y calidad agroalimentaria. COORDINADORES REGIONALES TEMATICOS Responsabilidades: •Planificar y Coordinar la ejecución de las acciones correspondientes a su área dentro de la jurisdicción, garantizando su implementación y seguimiento. •Entender en la elaboración y ejecución del presupuesto anual acorde a las necesidades de recursos operativos del área a su cargo y la proyección de los ingresos. •Controlar en el ámbito jurisdiccional la correcta aplicación de las normas legales vigentes que rigen en su área temática, interviniendo en la tramitación de las actuaciones originadas por infracciones a las mismas. •Entender en la planificación, coordinación y ejecución de tareas preventivas y de atención de emergencias sanitarias. •Calificar el personal a su cargo. •Elaborar y proponer a la autoridad regional las necesidades anuales de capacitación del personal. •Coordinar las tareas de gestión administrativa, los recursos humanos y bienes patrimoniales del área temática a su cargo. •Elevar en forma periódica o a requerimiento del Responsable del Centro Regional las novedades relacionadas a las actividades de su área. •Asistir al Responsable del Centro Regional, en las comisiones regionales y/o provinciales que ya estén conformadas o que se conformen en el futuro. SUPERVISORES REGIONALES Responsabilidades: • Supervisión de las acciones de prevención, control y erradicación de enfermedades en su jurisdicción y las acciones de vigilancia epidemiológicas • Supervisión y fiscalización del cumplimiento de las normas legales vigentes y la organización y funcionamiento de las oficinas locales. • Ejecución y evaluación del desempeño del personal de campo afectado a las mismas • Representación oficial del SENASA en su zona. VETERINARIOS LOCALES Responsabilidades: • Ejecución de las acciones de prevención, control y erradicación de los programas de lucha de su jurisdicción • Atención de las notificaciones, sospechas y focos de enfermedades y tareas de vigilancia epidemiológica y monitoreo permanente • Ejecución de acciones de policía sanitaria y cumplimiento de la normativa vigente • Control y fiscalización de los movimientos y transporte de ganado y emisión de las certificaciones correspondientes • Actualización de los registros documentales de productores, establecimientos, existencias ganaderas, movimientos, controles sanitarios y administrativos de su jurisdicción. Las Delegaciones son oficinas ubicadas en pequeñas localidades, dependientes de las Oficinas Locales y su función es facilitar ciertos trámites al productor. La implementación de las acciones en las jurisdicciones correspondientes se efectúa a través de los Veterinarios Locales, ubicados en 353 Oficinas Locales distribuidas estratégicamente en todo el Territorio Nacional, dependientes de 30 Supervisiones Página 8 �Regionales. Las Supervisiones Regionales dependen de las Coordinaciones Regionales Temáticas de cada Regional. DIRECCION NACIONAL DE FISCALIZACION AGROALIMENTARIA (DNFA). Interviene en el control, a nivel federal, del cumplimiento de las regulaciones higiénicosanitarias de los frigoríficos, plantas elaboradoras y/o depósitos de productos y subproductos de origen animal y vegetal, ya sean comestibles o de uso industrial. Asimismo, tiene a su cargo la aprobación de plantas faenadoras y/o procesadoras de productos y subproductos derivados de los animales domésticos. Los Servicios de Inspección Veterinaria son responsables de implementar dichos controles en plantas nacionales de faena aprobadas para exportación y consumo interno. Dentro de su estructura se encuentra la DIRECCIÓN DE TRÁFICO INTERNACIONAL con la COORDINACIÓN DE FRONTERAS Y TRÁFICO FEDERAL. DIRECCION DE LABORATORIOS Y CONTROL TECNICO (DILACOT) Es el Laboratorio Nacional de Referencia en la inocuidad de alimentos y la sanidad animal y vegetal; consta de dos Coordinaciones Generales: Laboratorio Animal y Laboratorio Vegetal; además cuenta con Laboratorios Regionales y una Red de Laboratorios Nacionales habilitados por el SENASA y distribuidos en todo el país. Como tal: • Establece los métodos y protocolos de análisis utilizados por él y por los laboratorios de la Red Nacional de Laboratorios del SENASA. • Interviene en la resolución de controversias. • Confirma los resultados positivos emitidos por los laboratorios de la Red Nacional. • Produce e interviene en ensayos interlaboratorios. • Ejerce el control periódico de la Red de Laboratorios. • Asiste a las otras direcciones del SENASA en la evaluación de los resultados analíticos. • Interviene en la actualización de la legislación de su incumbencia y participa en Foros Internacionales (Codex Alimentarius, MERCOSUR, OIE, etc.). El Laboratorio Animal de SENASA, ubicado en la localidad de Martínez, provincia de Buenos Aires, es el único autorizado a efectuar diagnósticos en la vigilancia de las enfermedades de los peces en estudio. 2.3. LEGISLACIÓN • Ley Nº 3959 de Policía Sanitaria de los Animales, reglamentada por el Decreto de fecha 8 de noviembre de 1906. Por medio de la cual se declara la obligatoriedad de notificación ante la sospecha de presencia de enfermedades animales. La actualización de incorporación de enfermedades se encuentra en trámite avanzado bajo el exp. N° 492332/2009. • Resolución SENASA N° 1354/1994 Requisitos de importación: Operatoria para autorizar la importación de animales vivos o su material reproductivo. • Predios de Cuarentena de Importación para Salmónidos: Proyecto de Resolución en trámite. Exp. N° 404167/2009. Página 9 �• Resolución SAGPyA N° 417/1997 crea el Registro Nacional Sanitario de Productores Agropecuarios (RENSPA) y sus modificatorias. • Resolución SENASA Nº 848/1998 Documento de Transito (DTA) aprueba el Documento de Tránsito Animal el cual sustituirá el Permiso Sanitario para Tránsito de Animales (PSTA), creado por la Resolución N° 473 del 12 de julio de 1995. • Resolución SENASA N° 299/1999 Indica los procedimientos de control en los pasos de frontera, terrestres, aéreos, marítimos, etc. que deben aplicarse a través del tránsito de personas, equipajes y vehículos. Su objetivo está dirigido expresamente a la prevención. • Resolución SENASA Nº 779/1999 Emergencias Sanitarias (SINAESA). Aprueba el Sistema Nacional de • Requisitos para Importación (m1062) de 2000 Circular de la Dirección de Cuarentena Animal de SENASA. Requisitos Zoosanitarios para amparar las operaciones de importación y tránsito de peces vivos y/o su material reproductivo a la República Argentina. • Requisitos Sanitarios de Importación de Material Acuícola Vivo: Proyecto de Resolución en trámite (reemplazará m1062).Exp. N° 282509/2007 • Resolución SENASA N° 21/2001 que crea el Programa de Enfermedades de los Animales Acuáticos en Argentina donde se determinan las patologías ictícolas presentes en el territorio nacional, se elaboran normas y se planifica y diseña la vigilancia activa de las enfermedades. • Resolución SENASA Nº 501/01 Establece los procedimientos operativos para el control en los puestos de frontera habilitados para el ingreso al país de animales, productos, subproductos, etc. de competencia del Servicio en el ámbito animal. • Resolución SENASA N° 895/2002 Plan Nacional de Prevención del Ingreso de Plagas y Enfermedades a través de residuos orgánicos. • Resolución SENASA N° 422/2003 que establece en el SENASA la adecuación a la normativa internacional vigente en cada materia sobre los sistemas de: notificación de enfermedades animales, de vigilancia epidemiológica y seguimiento epidemiológico continuo, análisis de riesgo, emergencias sanitarias y un dispositivo reglamentario que contemple todos los aspectos de protección y lucha contra las epizootias. • Resolución SAGPyA N° 1314/2004 Establece Normas que regulan la producción de Organismos Acuáticos Vivos en los emprendimientos/ establecimientos que se dediquen a la actividad de acuicultura, dentro del Territorio de la REPUBLICA ARGENTINA. • Colectiva de la Coordinación General de Campo N° 58/2007: Inscripción al RENSPA y movimiento con DTA para establecimientos acuícolas. • MEMORANDO Dirección de Luchas Sanitarias N° 12/2009: Comunica a los Centros Regionales la Acreditación de los Inspectores Sanitarios Acuícolas. Página 10 �• Colectiva de la Coordinación General de Campo N° 54/2009: Toma de muestras y envío al laboratorio. En la misma se describe el procedimiento ante la solicitud de muestreo previo a traslados u otros eventos que lo requieran. En los siguientes sitios web se puede encontrar la legislación citada anteriormente http://infoleg.mecon.gov.ar/infolegInternet/mostrarBusquedaNormas.do Página 11 �3. DESCRIPCIÓN DEL PAÍS Y DE LA ZONA 3.1. FRONTERAS ARGENTINAS Caracterización geográfica de las fronteras argentinas. La frontera terrestre argentina se puede dividir de la siguiente manera: Frontera con CHILE (Oeste y Sur). Frontera con BOLIVIA (Norte). Frontera con PARAGUAY (Norte). Frontera con BRASIL (Noreste y Este). Frontera con URUGUAY (Este). El único país que limita con la zona bajo estudio es la República de Chile, la cual se encuentra al OESTE, con un total de kilómetros de frontera (seca) de 4.591 Km. La Cordillera de los Andes acompaña todo el límite como frontera natural. 3.2. DESCRIPCIÓN GEOGRÁFICA DEL PAÍS La Argentina tiene una superficie total de 2.780.400 km2, comprende un territorio muy variado que incluye altas montañas, desiertos, vastas llanuras y bosques palustres. Las escarpadas montañas de los Andes se extienden a lo largo de la frontera occidental del país. Una meseta árida y azotada por vientos, la Patagonia, se extiende hacia el sur. La Pampa, una llanura herbosa y fértil cubre mitad del territorio. El extremo sur de la Argentina se encuentra a sólo 970 km de distancia de la Antártida en el Polo sur, mientras que el extremo norte tiene un clima subtropical. La frontera occidental del país sigue el relieve de los Andes, comenzando a partir de los Andes de la Patagonia en el sur, y continuando hacia la cordillera andina en la frontera norte con Bolivia. En el sur la altitud no sobrepasa los 3 600 m, mientras que en el norte esta supera los 6 400 m. Al este de los Andes, el terreno es generalmente plano o suavemente ondulado, y desciende gradualmente desde una elevación de 600 m, hasta el nivel del mar. La región del Chaco se sitúa entre el río Paraná al este, y las montañas más bajas de los Andes, al oeste. La región, cubierta sobre todo de matorrales, es seca durante la mayor parte del año, pero a menudo es objeto de fuertes lluvias durante el verano. La región denominada Mesopotamia se sitúa entre los ríos Paraná y Uruguay. Esta región tiene un clima cálido y húmedo, y posee tierra agrícola productiva en casi toda su extensión. La Pampa es una llanura sin árboles y alberga las regiones agrícolas más productivas del país. Esta llanura cubre un quinto del territorio nacional. En Patagonia, situada al sur de la Pampa, el terreno es una estepa árida y desolada, azotada por los vientos. Aunque ocupa más de un cuarto del territorio nacional, los suelos pobres y las escasas precipitaciones hacen de la Patagonia una tierra poco apropiada para la agricultura. Sus llanuras se usan sobre todo como pastos para el ganado ovino. La isla de Tierra del Fuego se sitúa en el extremo sur de América y el estrecho de Magallanes la separa de la tierra firme. Argentina y Chile comparten este territorio. La Argentina tiene un clima templado en casi todo el territorio, a excepción de una reducida área subtropical situada en el nordeste, el noroeste. (Fuente: FAO 2009) El Sector Cordillerano Austral, tiene una altura promedio de 2.500 metros sobre el nivel del mar, con profusión de lagos, que tienen gran importancia en la regulación de Página 12 �las cuencas hídricas. La altura va disminuyendo progresivamente desde la cordillera hasta la costa atlántica, constituyendo una extensa meseta semidesértica en la parte central. La zona de montaña (parte suroccidental) es húmeda o subhúmeda. En la Patagonia Andina las precipitaciones superan los 2.000 mm por año, disminuyendo hacia la zona atlántica, donde el promedio anual es de sólo 200 mm. Las grandes variaciones climáticas a lo largo del territorio nacional limitan la producción de salmónidos a las regiones frías del país así como también la distribución de los ejemplares silvestres introducidos a las diferentes cuencas hidrográficas. Página 13 �3.3. DESCRIPCIÓN DE LA ZONA LIBRE La zona bajo estudio se encuentra en la región patagónica de nuestro país. Abarca parte de las provincias de Neuquén y Río Negro. Entre las provincias nombradas anteriormente existen dos cuencas hidrográficas importantes: la cuenca del Río Neuquén y la cuenca del Río Limay, que con la anterior forman parte de la cuenca del Río Negro que desagua en el Océano Atlántico. Las cuencas de los ríos Limay y Neuquén suman una superficie de aproximadamente 70.000 km2 (Hidronor, 1978) Página 14 �El lago Nahuel Huapi, de origen glacial fue formado por el endicamiento de una morena frontal (Cordini, 1939) y se ubica a los 764 msnm, presentando una superficie de 529 km2. El área total que abarca su cuenca, es de 2951 km2. Se trata de un cuerpo de agua que posee una cubeta central, con siete áreas bien definidas, denominadas “brazos”, cada uno de ellos, con características propias. Tales brazos ubicados transversalmente (y también de origen glacial), se ocasionaron debido al desplazamiento de diferentes morenas, a partir de la Cordillera de los Andes, siendo los principales el del Campanario, de la Tristeza, Blest y Huemul. El agua del lago es de carácter OLIGOTROFICO (Luchini, L., 2004). La profundidad máxima del lago ha sido registrada a los 438 m y la media se considera de 157 m. El perímetro es de 357 km, presentando una forma muy irregular y su volumen alcanza los 83.053 hm3, con un recambio de agua total que se produce cada 11,6 años. Debido a su historia geológica, sus aguas son de bajo contenido mineral, con una conductividad media de 31,5 micro S/cm, respondiendo sus mayores iones a una relación bicarbonatada – cálcica. Su pH promedio es de 7,5, con un mínimo de 6,9 y un máximo, excepcional, de 8,1. En esta área, las precipitaciones anuales se presentan con un marcado gradiente de Oeste a Este, alcanzando más de 2000 mm en el sector plenamente cordillerano y hasta unos 700 mm en el sector oriental hacia la meseta patagónica, en el denominado “ecotono bosque-estepa”. Las temperaturas anuales del agua, oscilan entre los 8º C en invierno y hasta los 15º C en verano. Desde el punto de vista de su limnología, se lo considera como un lago monomíctico cálido (su temperatura no desciende por debajo de los 4º C). Muestra circulación invernal y presenta estratificación térmica directa en verano; ubicándose la termoclina entre los 40-55 m de profundidad (Pedrozo et al., 1997). En todas las áreas monitoreas sobre base Página 15 �anual, el Oxígeno Disuelto (OD) presentó concentraciones cercanas a la saturación en superficie y valores algo menores en profundidad (AIC-DPA, 2001-2002). De este lago nace el río Limay que marca el límite entre ambas provincias (Neuquén y Río Negro). Al represarse el río en varios tramos, quedaron constituidos una serie de embalses con determinadas características según sus tiempos de maduración, prácticas de manejo y uso. Los grandes embalses se denominan ALICURA (único dentro de la zona libre), PIEDRA del AGUILA, PICHI PICUN LEUFU y EZEQUIEL RAMOS MEXÍA. La finalidad fundamental de estos embalses es la producción de energía hidroeléctrica y como secundaria, la de regulación de los caudales para posibilitar el uso de tierras sujetas a la acción de los picos de crecientes de los ríos. Actualmente, diferentes empresas explotan las represas, siendo la cuenca del Limay sometida a la vigilancia medioambiental por la Autoridad Interjurisdiccional de Cuenca (AIC). La construcción de los embalses actuales fue llevada a cabo por la empresa Hidronor S.A., de carácter mixto, que fuera posteriormente privatizada. El primero en construirse fue el Chocón (1974) y el último, el de Pichi Picún Leufú (1999). Al ser la piscicultura en jaulas suspendidas, dentro de nuestro país de incipiente data, solamente el embalse de Alicura (con 18 años de haber sido construido) es el único de la serie que registra, actualmente, instalaciones de cultivos de muy diferente porte (desde 6 y hasta 700 TM de producción por productor) que producen en conjunto, un volumen aproximado de 1000 a 1200 tn en peces vivos, de la especie Oncorhynchus mykiss o trucha arco-iris. (Luchini, L., 2004). Página 16 �El río LIMAY próximo a su nacimiento en el paraje Rincón Chico, recibe desde el oeste al arroyo Newbery, el arroyo Chacabuco y por la margen derecha el arroyo La Fragua. En la zona denominada “el Anfiteatro” lo alcanza el arroyo del Corral. El río describe luego una curva hacia el este hasta la zona conocida como “Bajada de Mena”, sitio al que arriba el arroyo Carbón por margen izquierda y el arroyo Chacay por la derecha. El río Limay continua hasta el lugar llamado Confluencia, donde desemboca el río TRAFUL, el cual nace de los aportes que origina el río Pichileufú en la cordillera y que escurre hasta el lago Traful. A la salida del lago, el río Traful recibe los aportes de los ríos Mineros, Cuyin Manzano, Arroyo Blanco y Córdoba. (Alvarez, M., 2004) EMBALSE ALICURA El Embalse de Alicura es el primero de los cuatro localizados sobre el río Limay y el único incluido dentro de la zona libre, fue inaugurado en 1985. Su coronamiento se localiza en plena meseta patagónica (meseta de Alicurá), mientras que la zona correspondiente a la llamada “cola de embalse”, se encuentra situada en pleno ecotono, entre la estepa y el bosque andino-patagónico, donde desemboca el río Traful (Confluencia) proveniente del lago homónimo. El clima de la zona donde se encuentra el mayor porcentaje del espejo de agua, es de carácter semiárido. Las precipitaciones medias anuales alcanzan a 500 mm. Las temperaturas en enero muestran un promedio de 18° C, mientras que en julio oscilan cercanas a los 4°C (Alvarez, 2004) Dista 100 km. de la ciudad de San Carlos de Bariloche aproximadamente a los 40°35′S 70°45′O, y está ubicado a 705 msnm. Por sus características limnológicas es considerado un lago Oligotrófico u oligomesotrófico (Dir. Rec. Hídricos, 1995; Alonso, 2003; Diaz, et al 2007). La ubicación y características generales del embalse son las siguientes: Parámetro Valor Latitud 40°40’S Longitud Altitud Área km2 Volumen Km3 Z media (m) Cota max (msnm) Variación max nivel (m) Area ep % Tw año r (año-1) Lo (km) Z max (m) 71°00 ’W 705 msnm 65 3.27 48.3 705 13 17.6 0.36 2.8 183 115 Z media: profundidad media, Tw: Tiempo de residencia, r: Tasa de renovación, Z max: profundidad máxima (Fte: AIC, Alvarez 2004) Página 17 �MAPA DE LA ZONA LIBRE (en azul oscuro se muestra delimitada la parte de la cuenca que se declara libre y en gris se marca el límite terrestre) La zona libre se encuentra comprendida por la Cuenca Alta del Río Limay y el Embalse Alicura, actuando como barrera física la represa de Alicura. Página 18 �3.4. POBLACIÓN SILVESTRE DE LA REGIÓN PATAGÓNICA La comunidad de peces en la Patagonia continental se caracteriza por tener una muy baja riqueza específica autóctona, que incluye especies de distintos orígenes tales como el neotropical, circumpolar y un grupo importante de endemismo (Arratia et al 1983). Las especies autóctonas presentes en la región se encuentran representadas por siete Ordenes, diez Familias y un total de veintiún especies. A principio del año 1900 hubo una fuerte política de introducción de salmónidos provenientes de Estados Unidos de Norteamérica e Inglaterra impulsada por el gobierno nacional, en zonas consideradas con valor para la pesca deportiva. La trucha arco-iris (Oncorhynchus mykiss), introducida, ha sido la que se ambientó y diseminó con mayor éxito en gran parte de los ambientes acuáticos del territorio argentino, Ha contribuido en un alto porcentaje al turismo relacionado a la pesca deportiva, especialmente en los lagos cordilleranos patagónicos, junto a otras especies como la Salmo trutta o “trucha marrón”, la Salvelinus fontinalis o “trucha de arroyo” y el salmón Salmo salar. A diferencia del norte patagónico, en el sur de la provincia de Santa Cruz y en Tierra del Fuego, la especie que mejor se adaptó fue la trucha marrón que en parte es residente y en parte, migrante al mar. (Luchini, L., 2004) Dentro de las cuencas descriptas anteriormente, además de las especies exóticas enumeradas, existen especies autóctonas, como las percas: la criolla Percichthys trucha y P.vinciguerrai, la perca bocona (P.colhuapiensis); puyen pequeño (Galaxias maculatus), el pejerrey patagónico (Odonthesthis hatcheri), el bagre otuno y el bagre del torrente (Diplomystes viedmensis y Hatcheria macraei, respectivamente). Página 19 �4. ACTIVIDAD ACUÍCOLA EN LA ZONA 4.1. DESCRIPCIÓN DE LA ACTIVIDAD ACUÍCOLA DE LA ZONA La acuicultura comercial de orden semi-industrial, es de muy reciente inicio en Argentina, tanto en aguas continentales templado-frías, como en aguas cálidotempladas y marinas. La rama de la “piscicultura de aguas frías” (específicamente referida al cultivo de trucha arco-iris) que es la más antigua, posee su mayor expresión en la amplia región nordpatagónica. A nivel artesanal, los cultivos se iniciaron aproximadamente, entre las décadas del ´70 al ´80 y a partir de la apertura de los embalses situados en dicha región (circa 1992) se incrementó la producción con el advenimiento de producciones generadas en jaulas flotantes, ya que estos cuerpos de agua presentan características ambientales ideales para un desarrollo intensivo, pudiendo aumentarse el volumen de los cultivos en peces Salmónidos y de hecho, su factibilidad de exportación con producto de excelente calidad.(Luchini, L., 2004) A partir de 1990, se instalaron en el Embalse de Alicurá las primeras jaulas flotantes para el cultivo intensivo de la trucha arco-iris, debido a las características favorables del ambiente para esta actividad (del Valle, 1996). Actualmente, la producción de trucha arco iris por cultivo, abarca once concesiones otorgadas, ocho de las cuales se encuentran en producción, con un volumen total estimado de 1000 ton a 1200 ton anuales promedio (Dirección de Acuicultura, 2009). Estos emprendimientos se encuentran localizados sobre la margen izquierda del embalse (margen de Neuquén), dado el acceso directo por la ruta nacional N° 237, por lo que responden a las normativas para acuicultura a la provincia del Neuquén. En el Embalse se realiza la fase de pre-engorde y engorde final de los animales en los 8 establecimientos de cultivo. La capacidad de producción sólo de este embalse, fue estimada en forma conservadora en alrededor de 3500 a 5000 tn/año (Wicki y Luchini, 1996). Actualmente, se encuentra en revisión. Las hatcheries que proveen alevines a estos establecimientos de engorde se encuentran distribuidas en su mayoría en la región nordpatagónica. Estas hatcheries iniciaron su producción de alevinos a partir de reproductores capturados en la zona bajo estudio. Por su parte, las ovas importadas se mantienen bajo cuarentena en establecimientos de ubicación extrazonal, a más de 1000km de distancia (ver importación y cuarentena). 4.2. REGISTROS DE ESTABLECIMIENTOS ACUÍCOLAS 4.2.1. RENSPA A través de la Resolución SENASA N° 417/97 se crea el Registro Nacional Sanitario de Productores Agropecuarios (RENSPA) en el ámbito de la Dirección Nacional de Sanidad Animal de SENASA, el cual es obligatorio para todos los productores pecuarios del país. Este registro incorpora datos del productor, características de la producción y ubicación geográfica del establecimiento, entre otros. De esta manera el servicio ubica al establecimiento y a los responsables de la sanidad de los mismos y fortalece a través de los datos, el control sanitario y epidemiológico así como los métodos de prevención y vigilancia diseñados por los programas sanitarios. En la zona existen 8 establecimientos de engorde y 3 hatcheries que abastecen alevinos los cuales se encuentran inscriptos a este registro, en las oficinas locales de Página 20 �SENASA de la jurisdicción correspondiente. Además existen 8 hatcheries extrazona que abastecen alvinos a los establecimientos de engorde dentro de la zona libre, los cuales también se encuentran inscriptos en este registro. 4.2.2. RENACUA La Resolución N° 1314 del 2004 de la ex Secretaria de Agricultura, Ganadería, Pesca y Alimentos crea el único Registro Nacional de Emprendimientos de Acuicultura en el ámbito de la Dirección de Acuicultura del actual Ministerio de Agricultura, Ganadería y Pesca. El mismo es de carácter obligatorio y en la resolución se establecen las normas que regulan la producción de organismos acuáticos vivos en los establecimientos/emprendimientos de acuicultura. Los 19 establecimientos descriptos anteriormente también se encuentran inscriptos en este registro. En el país el 70% de los productores de salmónidos se encuentran ubicados en la región patagónica. Mapa satelital con los 8 establecimientos de engorde georeferenciados. Página 21 �4.3. CONTROL DE DESPLAZAMIENTOS Para poder movilizar animales vivos desde una hatchery a establecimientos de engorde, éstos deben estar acompañados de los siguientes documentos: • El Documento de Tránsito de Animales (DTA) que es extendido por las oficinas del SENASA, se encuentra reglamentado por la Resolución SENASA Nº 848/98. • La Guía de Traslado extendida por la autoridad competente de cada provincia, previa presentación del DTA. • Certificado de lavado y desinfección del transporte expedido en los lavaderos habilitados por el SENASA El entorno de controles se complementa con un registro de camiones habilitados para el transporte de animales de acuerdo a lo establecido en la Resolución SENASA Nº 97/99, y una forma de identificación que se efectúa por lote en la hatchery de procedencia. Además de esos requisitos, todo movimiento de animales hacia la zona libre debe ir acompañado de un Certificado sanitario, otorgado por la oficina local de origen de SENASA, en relación a las enfermedades de notificación obligatoria. Por este motivo se muestrean animales de los establecimientos y se les realiza análisis por PCR en el laboratorio oficial de SENASA. Como acción de policía sanitaria se realizan controles e inspecciones en puntos estratégicos • Control de la documentación. • Control de la identificación, categoría, especie, etc. Los controles y fiscalización los efectúa también el SENASA, por aplicación de la Resolución SENASA Nº 178/2001 de control de tránsito. Cualquier animal que transite sin el DTA correspondiente, es sometido a sacrificio sanitario en forma inmediata, de acuerdo a las reglamentaciones vigentes. Arribados los animales a su lugar de destino el productor debe denunciar el ingreso con el DTA correspondiente en la oficina local de destino dentro de las 48hs. 4.4. INDUSTRIA En el país existen 284 plantas frigoríficas para procesamiento de pescado proveniente de la pesca continental y marítima, los cuales pueden ser utilizados para procesamientos de pescado provenientes de la acuicultura. Las mismas cuentan con una habilitación otorgada por la Coordinación Temática de Fiscalización Agroalimentaria correspondiente, siguiendo las indicaciones de la Decreto N° 4238/1968 Capítulos 23 y 31. Además deben contar con habilitación provincial y municipal. A través de la Resolución SENASA N° 685/2005 de la Dirección Nacional de Fiscalización Agroalimentaria, se establecen auditorias sobre estas plantas. Página 22 �Gráfico de porcentaje de frigoríficos de productos de la pesca por provincia (República Argentina) Actualmente solo cinco plantas frigoríficas procesan los animales provenientes de la zona monitoreada, estas son: • Ahumados Patagónicos: Habilitación N° 4370 • Manila: Habilitación N° 4413 • Establecimiento Los Lagos: Habilitación N° 4618 • Río Manso: Habilitación N° 2878 • Harengus S.A.: Habilitación N° 2265 Las primeras cuatro plantas faenadoras se encuentran en la provincia de Río Negro y la última en la provincia de Chubut. En la siguiente tabla se detalla la cantidad de kilos de pescado enviados a faena a los establecimientos enumerados anteriormente durante los años 2007, 2008 y 2009 desde los establecimientos de la zona libre. Año 2007 - Ingresos de Materia Prima Rubro XLVI A E. Of. Establecimiento 4370 Ahumados Patagónicos 2878 Rio Manso SA Total Ene Feb Mar 1.470.715 136.457 121.455 146.215 1.065.903 88.731 82.865 97.223 404.812 47.726 38.590 48.992 Abr May 86.590 127.382 65.053 86.131 21.537 41.251 Jun Jul Ago Sep Oct Nov Dic 99.028 118.224 122.722 116.328 153.766 141.205 101.344 71.685 91.267 97.385 91.192 116.309 107.058 71.004 27.343 26.957 25.337 25.136 37.457 34.147 30.340 Año 2008 - Ingresos de Materia Prima Rubro XLVI A E. Of. Establecimiento 4370 Ahumados Patagónicos 2878 Rio Manso SA Total Ene Feb Mar Abr 1.164.775 112.404 129.677 114.303 111.648 896.169 68.133 104.239 92.873 84.624 268.606 44.271 25.438 21.430 27.024 May 97.179 80.859 16.320 Jun 82.173 65.416 16.757 Jul 66.234 57.978 8.256 Ago 58.566 41.659 16.907 Sep Oct Nov 96.644 109.120 107.995 72.468 85.024 86.049 24.176 24.096 21.946 Dic 78.832 56.847 21.985 Total Ene Feb Mar Abr May Jun 1.223.114 131.468 118.222 145.788 119.371 121.216 105.649 787.828 104.424 78.967 102.479 103.080 90.561 83.127 209.533 6.519 30.655 22.522 119.380 27.044 39.255 43.309 9.772 106.373 Jul 76.674 60.183 16.491 Ago 95.975 80.046 15.929 Sep 76.076 38.945 19.531 Oct 72.169 10.474 29.849 Nov 70.891 19.545 31.601 Dic 89.615 15.997 36.436 17.600 31.846 19.745 37.182 Año 2009 - Ingresos de Materia Prima Rubro XLVI A E. Of. 4370 4618 2878 4413 Establecimiento Ahumados Patagónicos Los Lagos SA Rio Manso SA Manila SA Ref: E. Of: Establecimiento Oficial (Fuente: Centro Regional Patagonia Norte, Coordinación Temática de Fiscalización Agroalimentaria, Supervisión Bariloche) Página 23 �Estas plantas son supervisadas por veterinarios de SENASA pertenecientes a la Coordinación Temática de Fiscalización Agroalimentaria de la Regional Patagonia Norte y Sur, los cuales participaron en los cursos de capacitación de patologías de salmónidos, y son quienes inspeccionan los animales al ingreso de la planta, por lo que son una fuente importante de notificación en la vigilancia epidemiológica de las enfermedades de declaración obligatoria. Página 24 �5. CAPACITACIÓN Programas de Capacitación e Información a la Comunidad La capacitación es uno de los ejes estratégicos del SENASA. Una Comisión Asesora de Capacitación integrada por referentes de cada una de la direcciones del organismo, por consejeros gremiales y por la Coordinación Técnica de Capacitación del SENASA elaboró el Plan Institucional de Capacitación que se desarrolla en el centro de capacitación del SENASA. Además, en el año 2006, SENASA y el INTA crearon el Centro Buenos Aires para la Capacitación de los Servicios Veterinarios (CEBASEV), el cual fue recientemente reconocido como centro colaborador de la OIE para la capacitación de los Servicios Veterinarios de habla hispana. El plan de Capacitación se desarrolla permanentemente a través, de cursos, charlas y talleres, que mantienen actualizado el conocimiento, dan entrenamiento y sensibilizan a los agentes de SENASA vinculados a la actividad. En línea directa con la Presidencia del SENASA la Unidad de Información y Comunicación Institucional realiza las actividades de prensa, relaciones públicas e institucionales, publicidad, comunicaciones internas, administración de los contenidos de la página web y centro de documentación. Esta Coordinación gestiona una política de comunicación y difusión por distintos medios acerca de las actividades de los programas de control, prevención y erradicación de las enfermedades animales. Su accionar incluye el asesoramiento y apoyo a los Veterinarios Locales para que a ese nivel se logre una comunicación homogénea y efectiva con los productores agropecuarios y público en general. Especialmente en acuicultura, se han realizado distintos cursos de entrenamiento para profesionales y de capacitación para productores por parte de la Dirección de Luchas Sanitarias, Dirección de Laboratorio y Control Técnico del SENASA junto a la Dirección de Acuicultura del Ministerio-MINAGRI: • • • • • Curso de Histopatología y PCR: Total 5 días, del 17 al 21 de septiembre del 2006 en la Dirección de Laboratorio y Control Técnico de SENASA. Asistieron al mismo 12 profesionales del SENASA, 2 del INIDEP (Instituto Nacional de Investigación y Desarrollo Pesquero), 2 de la Provincia de Neuquén y 1 de la Provincia de Río Negro. Curso práctico histopatología, dictado por profesionales de la Dirección de Acuicultura y del INIDEP. Total 4 días del 6 al 9 de Febrero del 2007 en el INIDEP Mar del Plata. Asistieron al mismo 3 profesionales del área de patología de la DILACOT- SENASA y 1 del CEAN de Neuquén. Capacitación continua en PCR por profesionales de la Dirección de Acuicultura, a los profesionales del DILACOT. Asistió en tres oportunidades para su capacitación una profesional del INIDEP para las siete enfermedades; y un técnico del CEAN asistió a una pasantía de una semana en el DILACOT para entrenamiento en Diagnóstico Molecular de ISA, SRS e IPN Capacitación continua en histopatología a los profesionales del Departamento de Patología de la DILACOT y un técnico del CEAN quién asistió en dos oportunidades por profesionales de la Dirección de Acuicultura. Seminario sobre Aspectos Sanitarios en producción de salmónidos en el año 2007 en el Centro Regional Universitario Bariloche organizado en forma conjunta con el Consejo Federal de Inversiones (CFI). Participaron un total de Página 25 �• • • 70 personas. Se trataron temas que abarcaron la ejecución del Plan Sanitario, aspectos clínicos de las enfermedades bajo estudio, técnicas de histopatología, biología molecular y manejo sanitario de los cultivos; además de los aspectos legales brindadas por las provincias. Curso para Inspectores Sanitarios Acuícolas, ofrecido en Diciembre del 2008, organizado en forma conjunta con el CFI en el Centro Regional Universitario Bariloche. Participaron un total de 46 personas que incluyo a productores, profesionales y técnicos en acuicultura, agentes del SENASA y agentes provinciales. A través de una evaluación, se acreditaron un total de 30 técnicos autorizados como inspectores honorarios. Curso de Vigilancia Epidemiológica: organizado por el CEBASEV. Total de días 5, del 24 al 28 de Noviembre de 2008 en la Dirección de Laboratorios del SENASA. Participó y aprobó el curso un agente del Programa de Enfermedades de los Animales Acuáticos. Taller de Discusión sobre Buenas Prácticas en producción de Trucha Arco Iris, 19 de Abril de 2010, Centro Regional Universitario Bariloche. Participaron 60 personas. Se elaboró una Guía de Buenas Prácticas en producción de Trucha Arco Iris a través de la contratación de un consultor externo por el Programa de Apoyo y Fortalecimiento Institucional de Senasa-UE (PAFIS). En el Taller se presentó esta Guía a los productores, técnicos, agentes provinciales y agentes de Senasa. Se entrego material de consulta durante los eventos, como manual de Aspectos Sanitarios del Cultivo de Salmónidos (Bariloche, 2007) Manual para la recolección de Muestras y procedimientos para Laboratorio en el diagnóstico de Enfermedades de peces (Bariloche, 2008) y Manual para Inspectores Sanitarios Acuícolas (Bariloche, 2008) y la Guía de Buenas Prácticas en producción de Trucha Arco Iris (Bariloche, 2010). En los siguientes sitios web se puede encontrar parte de la información sobre las actividades: www.senasa.gov.ar en el área de capacitación y en www.minagri.gob.ar en la página de Acuicultura. Página 26 �6. SISTEMA DE VIGILANCIA 6.1. ANTECEDENTES SANITARIOS El estado sanitario de los peces silvestres y los de cultivo del embalse de Alicurá, a partir del momento de la instalación de los primeros criaderos in situ y hasta el momento del inicio del relevamiento sanitario por parte de organismos nacionales, se conocía gracias a los informes referidos a los estudios de investigación llevados a cabo por el Laboratorio de Ictiopatología de la misma Universidad Nacional del Comahue (Centro Regional Universitario Bariloche - CRUB) o bien, por el Laboratorio de Patología del Centro de Ecología Aplicada del Neuquén - CEAN; durante los cuales no se registraron episodios sanitarios en peces Salmónidos provenientes de los establecimientos, en su mayoría a través de visitas periódicas de inspección efectuadas o bien, estudiados a partir de solicitudes de los mismos acuicultores asentados en dicho embalse. El CEAN, que depende de la Autoridad de Aplicación de la provincia del Neuquén, es el encargado de vigilar y regular a su vez la producción de acuicultura de los embalses en Neuquén, mediante la Ley Provincial de Acuicultura (Nº 1996) y sus disposiciones reglamentarias. Además de realizar visitas de inspección trimestrales a los establecimientos, el CEAN efectuó numerosos análisis referidos a las condiciones sanitarias (microbiológicos y virales) de los stocks de peces bajo cultivo. En las primeras investigaciones realizadas por este Centro en 1990, fueron detectadas solo la “enfermedad bacteriana de las branquias”, ataques por hongos y trastornos nutricionales; estas últimas debidas a la ausencia inicial de alimento adecuado a nivel comercial. A partir de 1991, la provincia normó sobre la introducción de huevos, que debían obligatoriamente provenir de padres certificados como exentos de VHS, IHN, IPN, BKD y del myxozoo Myxobolus cerebralis. En 1995, el personal del CEAN, efectuó una serie de inspecciones sobre trucha arco-iris (silvestre y de cultivo) y salmón del Atlántico, así como trucha marrón y de arroyo, de origen silvestre, empleando células CHSE-214 para detección de virus IHN, IPN y virus de herpes en Salmónidos, siendo los resultados NEGATIVOS en el sur de la provincia del Neuquén y el noroeste de la provincia de Río Negro, zona que abarcó en sus investigaciones preliminares. Las pruebas virales se efectuaron sobre peces juveniles y adultos y sobre partidas de huevos que debían ser liberados en la región. Las inspecciones abarcaron cultivos en tierra y en jaulas, todos ellos abastecidos por agua de diferentes ríos de la zona o del embalse de Alicurá. (Luchini, L., 2004). 6.2. IMPORTACIÓN Y CUARENTENA La normativa que rige para las importaciones de animales vivos y material reproductivo es la Resolución ex –Senasa N° 1354/94. Las importaciones de ovas de salmónidos se realizan principalmente desde los Estados Unidos. Previo a la aprobación de la importación se realiza un estudio de la hatchery interesada en realizar la exportación de esas ovas a nuestro país. A través de la normativa vigente el país de origen debe certificar al establecimiento como “libre” para aquellas enfermedades estudiadas en nuestro país y son motivo del presente informe; asimismo, entre otras medidas, se solicita la desinfección de las ovas por algún método recomendado a nivel internacional. Página 27 �En la siguiente tabla se detalla cantidad de ovas importadas por año desde 2005 a 2009 y origen: AÑO CANTIDAD DE OVAS ORIGEN 2005 215.000 Irlanda/ U.S.A 2006 260.000 U.S.A 2007 2.450.000 U.S.A 2008 800.000 U.S.A 2009 735.000 Dinamarca Actualmente, una vez que llegan las ovas a nuestro país, se realiza una inspección física y su correspondencia con la certificación de origen. Si supera favorablemente esa instancia, el personal oficial sella el contenedor de la mercancía e informa al veterinario oficial con jurisdicción en la zona a la que será destinada la mercancía y emite el Permiso de desembarque y el Permiso de Tránsito Restringido para el traslado de la misma, hasta el establecimiento de cuarentena. Actualmente los establecimientos de cuarentena se encuentran ubicados extrazona a más de 1000km de distancia de la zona bajo estudio. Una vez en el predio de cuarentena se realiza un muestreo sobre las ovas para ser analizadas por PCR en el laboratorio central de SENASA (ensayo no estandarizado internacionalmente) y previo a la liberación de la cuarentena se analizan los alevinos, ambos análisis para ratificar la ausencia de infección de las patologías estudiadas. Se muestrearon todos los lotes de importación, los cuales se analizan por las técnicas de Histopatología y PCR para las 7 (siete) enfermedades estudiadas en nuestro país. Aquellos que no superen satisfactoriamente las pruebas sanitarias a que fueran sometidos durante el período cuarentenario, no serán autorizados a movilizarse a cualquier destino dentro del País. En estos casos, se cita al interesado para la firma de las actas correspondientes, otorgándosele en la misma un plazo perentorio, que no podrá ser mayor de ocho (8) días corridos, para proceder a la reexportación del o de los animales. Vencido dicho plazo, y sin necesidad de nuevo aviso, el SENASA podrá proceder al sacrificio sanitario. Cabe señalar que hasta el momento no se han detectado ninguna de las enfermedades mencionadas en los lotes importados. 6.3. SISTEMA DE VIGILANCIA El sistema de vigilancia que se implementa en relación a las enfermedades de los animales acuáticos se basa tanto en actividades de vigilancia pasiva como activa. Dentro de la vigilancia pasiva, se incluye la denuncia de casos compatibles con enfermedades de notificación obligatoria por parte de productores, profesionales o toda persona relacionada con la tenencia o cuidado de animales en cautiverio o así como la ciudadanía en general en los casos de animales silvestres. Página 28 �En el caso de la vigilancia activa, las acciones más relevantes consisten en los muestreos llevados a cabo para la demostración de la ausencia de las enfermedades de denuncia obligatoria en la zona en estudio. Otras fuentes de información incluyen: inspecciones a los establecimientos productores e importadores, inspecciones en plantas de faena, estudios de investigación llevados a cabo por otras instituciones, etc. 6.4. SISTEMA DE NOTIFICACIÓN DE ENFERMEDADES La obligatoriedad de la notificación de enfermedades de importancia para los animales, exóticas y endémicas incluidas las zoonosis, está enmarcada en la Ley 3959 de Policía Sanitaria, y actualizada periódicamente por el Servicio Oficial. A través de la Resolución SENASA Nº 422/2003, se establece la adecuación a la normativa internacional vigente sobre los sistemas de notificación de enfermedades animales, de vigilancia epidemiológica y seguimiento epidemiológico continuo, así como análisis de riesgo; a la vez que actualiza la lista de enfermedades de notificación obligatoria de los animales terrestres y acuáticos. La norma establece que cada propietario o persona encargada de cuidar o asistir animales que tengan síntomas de alguna de las enfermedades listadas, tiene la obligación de comunicarlo al Servicio Oficial. Éste a su vez, tomará las medidas sanitarias que correspondan y efectuará las comunicaciones pertinentes. El veterinario oficial interviniente confecciona un protocolo de enfermedad denunciable en el que detalla todos los aspectos relacionados con la explotación afectada y los animales presentes en la misma. A su vez, en caso de ser necesario, toma muestras para diagnóstico y las envía al laboratorio de referencia nacional, de acuerdo a la especie y enfermedad que se trate. Si se confirma el caso, el protocolo elaborado luego de la intervención es enviado desde las oficinas locales al nivel Central (Dirección Nacional de Sanidad Animal), quien es el encargado de hacer las comunicaciones nacionales e internacionales que correspondan de acuerdo a la enfermedad detectada. En el caso de acuicultura, como fuente primaria de información y notificación de enfermedades se encuentran los productores, profesionales ligados a la actividad, Inspectores Sanitarios Acuícolas, Laboratorios, Plantas Frigoríficas, etc. 6.5. PAPEL DE LOS PRODUCTORES Y DE OTROS GRUPOS IMPORTANTES EN LA VIGILANCIA. 6.5.1. Asociación de productores Existe conformada con inscripción en trámite, una Asociación de Productores de Salmónidos (PROSALMON), sin fines de lucro, creada en el año 2005. Los fines de la misma son: a) Promover, fomentar, mejorar y desarrollar todo lo relacionado con la investigación, estudio y aplicación práctica de la acuicultura; Página 29 �b) Para cumplir el fin precedente, asociar a los profesionales que estén interesados en el objeto de la asociación y a quienes desarrollen actividades que los relacionen con esta disciplina ; c) Realizar actividades de orden científico y extensión universitaria tendientes al objeto mencionado en el inciso "a" del presente estatuto; d) Reunir y destinar fondos a dichos propósitos; e) Establecer relaciones e intercambio cultural y científico con otras entidades afines nacionales y extranjeras; f) Mantener relaciones con las autoridades científicas y técnicas nacionales, provinciales, municipales y universitarias. g) Gestionar el apoyo de las autoridades Nacionales, Provinciales, Municipales o Universitarias para la consecución de los fines; h) Reunir, adquirir y obtener instrumentos destinados a sus fines específicos; i) Contratar y emplear personal profesional, técnico o administrativo. Tanto los productores como los técnicos acuícolas han participado de los cursos dictados por SENASA y fueron capacitados para la detección de las principales patologías de los salmónidos, por lo que se encuentran preparados para realizar denuncias ante eventos sanitarios, toma de muestras y aparición de signos clínicos de algunas de las enfermedades de notificación obligatoria. Otros organismos tales como Guardapesca y Asociación de Pescadores Deportivos han sido comunicados para la eventual notificación de signos clínicos relacionados con las enfermedades estudiadas, colaborando de esta manera con la vigilancia Epidemiológica. 6.5.2. Organismos Nacionales y Provinciales intervinientes en el sistema de vigilancia A nivel nacional la Dirección de Acuicultura del Ministerio de Agricultura, Ganadería y Pesca, trabaja en conjunto con el SENASA desde al año 2006 a través de un Acuerdo de Cooperación Técnica donde en una primer acta se definieron pautas de trabajo conjunto, estableciendo en una primera etapa el diseño y ejecución del Relevamiento Sanitario de Salmónidos en el Embalse Alicura. Dicho relevamiento tuvo como objetivo lograr la caracterización sanitaria del Embalse, en relación a las principales enfermedades ictícolas de mayor impacto económico y productivo. La Dirección de Acuicultura tiene entre sus funciones el seguimiento del RENACUA, que es el Registro Nacional de Acuicultura, en el cual deben inscribirse todos los productores a nivel Nacional. El mismo es de carácter obligatorio y a través de la Resolución 1314/2004, se indica cuales son los requisitos para su inscripción. A nivel provincial, Neuquén y Río Negro participan activamente en la normatización y control de la actividad. A través de sus instituciones provinciales, el Centro de Ecología Aplicada de Neuquén (CEAN) y la Autoridad Interjurisdiccional de Cuencas (AIC) y la Dirección de Pesca de la Provincia de Río Negro, llevan a cabo controles sobre calidad del agua y aspectos sanitarios de los peces de cultivo, entre otros. Las provincias otorgan las concesiones para cultivo en el embalse a los emprendimientos acuícolas y realiza controles sobre calidad del agua, capacidad de carga y control bacteriano y parasitario de los peces bajo cultivo. Página 30 �Las normativas de las provincias de la zona regulan tanto la actividad de producción de ovas y alevines (hatchery) como el engorde. Las leyes provinciales que regulan la actividad son las siguientes: • • • • • • Ley Nº 1.996 de Acuicultura, Decreto Reglamentario Nº 1.548/93 y Disposiciones Reglamentarias. Provincia del Neuquén. Ley Nº 1.875 (T. O. Ley Nº 2.267) de Medio Ambiente y Decreto Reglamentario Nº 2.267/99. Provincia del Neuquén. Ley Nº 899 Código de Aguas y Decreto Reglamentario 790/99. Provincia del Neuquén. Ley Nº 2829 de Acuicultura, Decreto 751 y Resolución 671. Provincia de Río Negro. Ley Nº 3266 de Procedimiento de Evaluación de Impacto Ambiental. Provincia de Río Negro. Ley Nº 2391. Régimen de Control de Calidad y Protección de los Recursos Hídricos Provinciales. Provincia de Río Negro. Las instituciones provinciales junto con el SENASA y la Dirección de Acuicultura de la Nación, han desarrollado las actividades de muestreo de peces y fueron capacitados para el acondicionamiento de muestras para envío al laboratorio del Senasa. 6.5.3. Inspectores Sanitarios Acuícolas Para complementar los alcances en los controles de la administración veterinaria en la República Argentina y debido a las características particulares de la actividad, fue necesario dar participación en las tareas de inspección sanitaria de las pisciculturas, a técnicos e idóneos especializados y con experiencia en producción piscícola. La figura técnica denominada Inspector Sanitario Acuícola (ISAc) fue creada a partir de la necesidad de incrementar las actividades para intensificar los controles sanitarios de los establecimientos de producción ictíca y la vigilancia epidemiológica. La acreditación otorgada por Senasa, es un aval del Organismo ante la idoneidad técnica del Inspector determinada mediante sucesivos encuentros teóricos y prácticos. Los Inspectores Sanitarios Acuícolas están autorizados a realizar las siguientes tareas: a) Inspección Sanitaria General de los establecimientos de producción. b) Asesoramiento sanitario y de buenas prácticas al productor respetando las Normas Técnicas establecidas. c) Actualización y suscripción de los registros sanitarios de los establecimientos. d) Recolección y acondicionamiento de muestras con validez oficial en los establecimientos de cría de salmónidos registrados. e) Concurrir inmediatamente a cualquier establecimiento dentro de la zona ante el conocimiento de novedades sanitarias y colaboración con la autoridad sanitaria nacional en la inspección oficial de establecimientos ante denuncias o sospecha de enfermedades y en otras actividades surgidas de las necesidades del momento. Actualmente hay acreditados 30 (treinta) Inspectores Sanitarios Acuícolas Página 31 �6.6. VIGILANCIA ACTIVA 6.6.1. Relevamiento sanitario de Salmónidos En base a las recomendaciones de la Sección 2. 1. Capítulo I. 1. de Enfermedades de los peces y cumpliendo con el Capitulo 1.1.4 del Manual de Pruebas de Diagnóstico de Animales Acuáticos 2006 y el Capítulo 1.4, Artículo 1.4.6 punto 3 del Código Sanitario para los Animales Acuáticos 2009, se diseño la vigilancia sobre los salmónidos de la zona bajo estudio. La Resolución SENASA N° 21/2001 crea el Programa de Enfermedades de los Animales Acuáticos en el ámbito de la Dirección de Luchas Sanitarias de la Dirección Nacional de Sanidad Animal, estableciendo acciones sanitarias para todos los animales acuáticos y en cuya etapa inicial se establecieron acciones para determinar la existencia o no de enfermedades ícticas de importancia en la acuicultura de salmónidos. Para dar cumplimiento a este objetivo se llevo a cabo un relevamiento sanitario de salmónidos en la zona descripta anteriormente, para la determinación del estatus sanitario del mismo, respecto de enfermedades que afectan a estas especies. Ante el desconocimiento de la situación sanitaria de la zona, se diseño un sistema de monitoreo continuo durante dos años (Noviembre 2006 a Diciembre 2008), realizando muestreos cada tres meses abarcando las cuatro estaciones del año. Actualmente se mantiene una vigilancia activa con un muestreo anual. A los fines de calcular el tamaño de la muestra se tomaron en cuenta los siguientes supuestos: Asegurar con un 95% de confianza que es posible detectar al menos un individuo positivo si la prevalencia esperada es igual o inferior al 2% para cada una de las enfermedades. Se muestrearon 150 animales por campaña entre animales silvestres y de cultivo. (Manual de diagnóstico para los animales acuáticos 2006) La zona bajo vigilancia fue descripta anteriormente. Dentro de la zona se seleccionó el embalse Alicura y sus principales afluentes, los ríos Limay y Traful para la toma de muestras de los peces. Debido a la cercanía de los establecimientos y al hecho de que comparten un mismo cuerpo de agua, se tomó la población como homogénea dividiendo en partes iguales las muestras de animales de cultivo y animales silvestres. Se muestrearon los ocho establecimientos que se encuentran actualmente en producción dentro del embalse Alicura y se establecieron 5 (cinco) puntos de muestreo para animales silvestres. Para esto se definieron 3 (tres) puntos dentro del embalse cabecera(Las Coloradas), medio (Malal Huaca) y Cola del Embalse y 2 (dos) por fuera del mismo, uno sobre el río Limay y otro sobre el río Traful. Página 32 �Ref: los puntos en rojo corresponden a los establecimientos de cultivo y los puntos verdes corresponden a los puntos de muestreo sivestres Esta elección se debió a la importancia productiva que presenta el embalse, con una producción que actualmente alcanza aproximadamente las 1200 tn de truchas arco iris, por lo que la densidad de peces en este embalse es mayor que en el resto de la zona bajo estudio. Así mismo los ríos Limay y Traful se toman como representativos de la población de peces silvestres susceptibles de los ambientes acuáticos, ya que existen migraciones de estos animales río abajo, por lo que los eventos sanitarios que sucedan en los lagos y sus afluentes, deberían ser detectados en estos puntos. La captura de los ejemplares silvestres fue realizada por personal de la autoridad de aplicación de las provincias de Río Negro y Neuquén, y de la Autoridad Interjurisdiccional de Cuencas, utilizando como artes de pesca la modalidad de spining, trolling y flycast, en algunos casos, por lo cual el número de animales silvestres muestreado por campaña varía del indicado según el diseño. En cuanto a los animales de cultivo, la captura fue realizada por personal de SENASA, dejando constancia de la misma en los establecimientos con actas de toma de muestras. Para complementar la vigilancia epidemiológica de la zona se incluyeron en el muestreo a las hatcheries (intra y extrazona) proveedoras de alevinos al embalse de alicurá para su engorde final. Página 33 �6.6.1.1. TOMA DE MUESTRAS Y ENVÍO AL LABORATORIO 6.6.1.1.1. Anatomopatología: procedimientos y toma de muestras • • • • • Al momento de la toma de la muestra los peces se encuentran vivos y se los sacrifica con dosis anestésicas letales de Benzocaína en polvo, diluida en sol. sobresaturada con Acetona o Alcohol 96º. Una vez muerto el animal se procede al pesaje y toma de medidas de LT (largo total) y LS (largo estándar). Se realiza una inspección externa del animal y se registra en el protocolo de toma de muestra. Luego se procede a la necropsia del mismo, posicionando al pez en decúbito dorsal y practicando una incisión desde delante del ano hasta delante de la aleta pectoral siguiendo la línea media del abdomen, y otro corte en forma semicircular hacia lateral y dorsal del pez que una los mismos puntos de la incisión anterior; exponiendo, de este modo, todos los órganos abdominales del animal y permitiendo la visualización e inspección de los mismos in situ. En el caso de ser alevinos se muestrearan enteros, pudiéndose realizar un corte pequeño en zona abdominal para favorecer la penetración del fijador. En forma rutinaria se colectan muestras de lo siguientes órganos: Bazo, Hígado, Pronefros, Metanefros, Corazón. También se muestrean otros órganos o tejido en caso de visualizarse alguna alteración macroscópica. 6.6.1.1.2. Procedimiento de toma de muestras para Histopatología Para el diagnóstico histopatológico se utilizan órganos conservados en formol al 20% bufferado. Los recipientes utilizados pueden ser plásticos o de vidrio y son de boca ancha y cierre hermético (para evitar derrames), con tapa a rosca o a presión pero para esto se coloca cinta adhesiva entorno a la unión tapa recipiente. Una vez muestreados todos los peces, todos los frascos son colocados en cajas de telgopor cerradas y rotuladas adecuadamente para su envío al laboratorio central del Dilab. En el caso de trozos muy pequeños (biopsias) se utilizan tubos de ensayo con tapón de goma. Las muestras procedentes de un mismo animal o necropsia se contienen en un mismo frasco. Excepto que requieran una individualización especial. 6.6.1.1.3. Procedimiento de toma de muestra para PCR En el mismo momento de la toma de muestras para histopatología, se procede a tomar muestras para PCR, de: Bazo, Hígado, Pronefros, Corazón, tomando las medidas de asepsia y esterilidad (limpieza con alcohol y flameado de instrumental) necesarias para minimizar las contaminaciones. Los trozos de órganos son colocados en crioviales (1 por cada órgano) debidamente rotulados y luego colocados en varillas metálicas (1 por animal), para finalmente ser colocados en termos con Nitrógeno Liquido, los que son transportados hasta el laboratorio de análisis en el DILAB. Una vez en el laboratorio las muestras son almacenadas en un Freezer de –70ºC hasta el momento de realizar el análisis de PCR. Página 34 �6.6.1.2. DIAGNÓSTICO El diagnóstico de Laboratorio de las enfermedades de Salmónidos estudiadas se realiza en el país en el Laboratorio Central de SENASA –Laboratorio Nacional de Referencia (LNR); sito en la Localidad de Martínez, Provincia de Bs.As, único Laboratorio autorizado actualmente. El laboratorio cuenta con instalaciones adecuadas para el diagnóstico de enfermedades por las técnicas de Histopatología y PCR convencional y PCR Real Time. El LNR está acreditado en su gestión bajo la Norma ISO 17025 (el alcance de esta norma no cubre los ensayos para la realización del presente estudio). Se cuenta con un Laboratorio de Bioseguridad Nivel 3 Agricultura (NBS3A), que cumple con los requisitos de Bioseguridad de la O.I.E, el mismo puede ser utilizado ante la eventual detección de alguna enfermedad exótica. 6.6.1.2.1. Tipo de pruebas realizadas Para determinación del estatus sanitario de la zona se seleccionaron métodos de diagnostico aplicados en serie: Histopatología (como prueba tamiz) y PCR, Inmunohistoquímica y Secuenciación (como confirmatorios). Durante los 2 primeros años (nov. 2006 a Dic. 2008) se realizó el análisis histopatológico de todas las muestras y se analizaron por PCR aquellos ejemplares que presentaban lesiones macroscópicas y/o microscópicas compatibles con una enfermedad infecciosa. De no hallarse alteraciones, se seleccionaron 10 ejemplares de cultivo y 10 ejemplares silvestres al azar en cada muestreo, para PCR. Para el muestreo 2009 Histopatología y PCR se aplicaron en paralelo para todas las muestras. Inmunohistoquímica y Secuenciación (como confirmatorios). 6.6.1.2.1.1. Métodos de análisis histopatológico • Las muestras fijadas en Formol Bufferado al 20 % durante 3 a 5 días como mínimo, son separadas del fijador, cortadas en trozos de 0,5 a 1,5 cm, colocadas en canastillas plásticas (casettes) identificados con el numero de muestra y pez. • Los casettes con las muestras de tejidos son colocados en una maquina procesadora automática de tejidos, programable, la que 24 horas después entrega las muestras deshidratadas e incluidas en parafina. • Se confeccionan los tacos, utilizando los mismos casettes ya identificados. • Los tacos con las muestras de tejidos se cortan en micrótomo rotatorio a 1 micra de espesor (los alevinos se procesan enteros y se cortan a 2,5 micras) • Los cortes son fijados a los portaobjetos y luego coloreados por la técnica de rutina de Hematoxilina y Eosina, montados con bálsamo sintético. • Todos los cortes son examinados al microscopio de luz transmitida y las lecturas registradas en las planillas de trabajo confeccionadas ad-hoc con la identificación del n° de muestra, n° de pez, lugar de origen del pez, tejidos examinados, etc, de tal forma que se mantenga la trazabilidad de los análisis y poder correlacionar estos con los análisis por Biología Molecular. Página 35 �• Todos los resultados son registrados en el sistema informático de mesa de entrada de muestras e informados a la DNSA-Programa de Enfermedades de los Animales Acuáticos. 6.6.1.2.1.2. Diagnóstico molecular por PCR Extracción de Ácidos Nucleícos ADN y ARN de tejidos de órganos blanco: Extracción de ADN: Para la extracción de ADN genómico total de los tejidos a analizar en las determinaciones de BKD, SRS, y EHNV: se procedió de acuerdo al protocolo de purificación, usando el kit DNeasy Blood & Tissue Kit (Qiagen), el kit Wizard SV Genomic DNA purification system (Promega), o el kit Purelink Genomic DNA purification Kit (Invitrogen), según las recomendaciones del manual de diagnóstico de organismos acuáticos de la OIE 2006 y el NWFHS USA laboratory procedures manual 3.1 edition, Marzo 2006. Extracción de ARN: Para la extracción de ARN en las determinaciones de IPN, ISA, IHN, VHS, se procedió de acuerdo al protocolo de purificación de ARN total de tejidos animales usando el kit RNeasy Mini Kit (Qiagen), o SV Total RNA Isolation System (Promega). Según las recomendaciones del manual de diagnóstico de organismos acuáticos de la OIE 2006. En cada muestreo 2006-2008 se procedió de la siguiente manera para la extracción de ácidos nucleícos: Se procesaron, 40 extracciones de ADN de 2 órganos, bazo y pronefros, procedentes de 20 especimenes previamente estudiados por el tamizaje histopatologico + 10 % de Ctls Negativos (2 extracciones de bazo y 2 de pronefros de animales libres de patógenos certificados). 60 extracciones de ARN de 3 órganos, bazo, pronefros, y corazón, procedentes de 20 especimenes previamente estudiados por el tamizaje histopatológico + 10 % de Ctls Negativos (2 extracciones de bazo y 2 de pronefros de animales libres de patógenos certificados). Durante la campaña de vigilancia sanitaria realizada en el 2009 se extrajeron los ácidos nucleícos de los tejidos de los órganos blanco en pooles de tres individuos muestreados. Procesando en paralelo al análisis histopatologico los órganos blanco de los 171 individuos muestrados. Se procesaron, 57 extracciones de ADN (pooles de 3 pronefros, 171 individuos totales) + 10 % de Ctls Negativos (pronefros de animales libres de patógenos certificados). 114 extracciones de ARN (pooles de 3 pronefros, pooles de 3 corazónes, 171 individuos totales) + 10% Ctls Negativos (órganos de pronefros y corazón de animales libres de patógenos certificados). Controles de extracción e inhibición: Las extracciones de ADN total y ARN total de los órganos blanco (target), son controladas para determinar la integridad del acido nucleíco purificado, verificar si es amplificable y poder detectar posibles inhibiciones que pudiesen alterar las reacciones diagnosticas posteriores. En los dos primeros años de monitoreo, cada extracción de ADN y ARN procedentes de órganos blanco de 20 individuos previamente estudiados por el tamizaje histopatologico fue controlada. Página 36 �Durante la campaña de vigilancia sanitaria realizada en el 2009 se controlaron todas las extracciones de los tejidos de los órganos blanco (pronefros y corazón) en pooles, provenientes de tres individuos muestreados. En el caso de las extracciones de ADN total, estas fueron verificadas a través un control genómico de amplificación del gen constitutivo conservado de Salmo salar 5S rADN que contiene repeticiones en tándem. Primers 5S-1 forward 5’ TAC-GCC-CGATCT-CGT-CCG-ATC 3’ y reverse 5S-2 5’ CAG-GCT-GGT-ATG-GCC-GTA-AGC 3’, (14) dichos primers generan según la especie diferentes fragmentos de amplificación. En el caso de Oncorhyncus mykiss los fragmentos son de 294 bp y 350 bp, en el caso de Salmo salar 256bp y 525bp. La presencia de dichas bandas en el resultado, es indicativo que las muestras son aptas para ser procesadas por las PCR diagnósticas. Las muestras que no presenten este patrón son descartadas y se procede a una nueva purificación, para eliminar cualquier inhibición. Cada muestra de RNA total extraída fue verificada mediante una reacción de RT-PCR con primers conservados del ARN mensajero del gen β Actina de Salmo salar. A saber: β Actina forward 5′-CAG CCC TCC TTC CTC GGT AT-3 y β Actina reverse 5′GAT GTC CAC GTC ACA CTT CAT GAT-3 cuyo amplicón es de 80 bp.(2) La presencia de dicha banda en el resultado es indicativo que las muestras son aptas para ser procesadas por las RT-PCR diagnósticas; las muestras que no presenten este patrón son descartadas y se procede a una nueva purificación, para eliminar cualquier inhibición. En cada muestreo 2006-2008 se controlaron las extracciones de ADN: 40 extracciones de ADN total provenientes de 20 bazos, 20 pronefros. 20 individuos totales. A través de 40 determinaciones de PCR Ctl genómicos 5S rADN (Protocolo Go Taq polimerasa, Promega). Extracciones de de ARN: 60 extracciones de ARN total, provenientes de 20 bazos, 20 pronefros, 20 corazones. 20 individuos totales. A través de 60 determinaciones de RT-PCR de ARNm de β Actina, (Se utilizó el esquema general del protocolo del kit Access one step RT-PCR System, Promega Corp). En el 2009 se controlaron las extracciones de ADN de la siguiente manera: 57 extracciones de pronefros en pooles de 3. (171 individuos totales). Mediante 57 reacciones de PCR 5S rADN, como controles de amplificacion de ADN genómico total. (Protocolo Go Taq polimerasa, Promega). ARN: 114 extracciones de ARN total provenientes de 57 pronefros y 57 corazones en pooles de 3. (171 individuos totales). Mediante 114 determinaciones de RT-PCR de ARNm de β Actina, (Se utilizó el esquema general del protocolo del kit Access one step RT-PCR System, Promega Corp). Todas las extracciones de ADN y ARN que se controlaron y resultaron aptas, fueron analizadas mediante las técnicas de PCR diagnósticas de las enfermedades estudiadas. Técnicas moleculares aplicadas (Nested PCR, PCR, RT-PCR): En la aplicación de los métodos moleculares se siguieron las recomendaciones sugeridas por los protocolos establecidos por la OIE con las siguientes modificaciones. Nested PCR o PCR anidada en la detección de SRS Piscirickettsia salmonis y BKD Renibacterium salmoninarum (Protocolo Go Taq polimerasa, Promega). Página 37 �PCR en la detección del Virus de la Necrosis Hematopoyetica Epizootica (EHNV) (Protocolo Go Taq polimerasa, Promega). Reacción de RT-PCR en un paso para la detección de IPNV, IHNV, ISAV, VHSV (Se utilizó el esquema general del protocolo del kit Access one step RT-PCR System, Promega Corp). Criterios de aceptación e interpretación de resultados de PCR: Análisis de los resultados: Los productos de amplificación de cada determinación de PCR, RT-PCR se analizaron en geles de agarosa 2%, teñidos con bromuro de etidio. Posteriormente el gel es transiluminado con luz ultravioleta para visualizar las bandas de amplificación específicas. Aceptación e interpretación de resultados de PCR: No se deben observar bandas específicas en los controles negativos de SPF ni en el blanco de reacción. Por otra parte deben detectarse las bandas específicas correspondientes a los controles positivos de la reacción. Si se cumplen todas estas condiciones se considera que el ensayo se ha efectuado correctamente. La detección de una banda correspondiente al producto de la amplificación del agente etiológico estudiado, cumpliendo con los criterios anteriormente mencionados, son confirmatorios de la presencia de las secuencias especificas del mismo y se considera el resultado como POSITIVO. La falta de detección de estas bandas específicas en un ensayo efectuado correctamente es considerada como NEGATIVO. En caso de detección positiva se confirma por repetición de la misma muestra y nueva extracción de la muestra de tejido original en conservación. Además se analiza el caso con primers, o iniciadores confirmatorios accesorios. En los casos de SRS y EHN se confirma asimismo por análisis de restricción REA (Restriction endonuclease analysis). En todos los casos de detección se confirma identidad por secuenciación molecular y análisis de las secuencias obtenidas a través de métodos bioinformáticos (alineación de secuencias, BLAST). CONTROLES UTILIZADOS: Controles positivos: Los controles positivos para las determinaciones de PCR de las enfermedades que se encuentran bajo estudio, fueron solicitados por DILAB SENASA a los centros de referencia internacionales OIE, publicados en el manual de diagnóstico de organismos acuáticos OIE 2006 (anexo I). En el caso de las patología IPN que no figura en el capitulo 1.2.3. del código acuático OIE, los controles se obtuvieron del laboratorio CEFAS (Centre for Environment, Fisheries & Aquaculture Science, UK,) del Dr. Dixon y de un laboratorio local productor de vacunas. Con respecto a SRS que representa el mismo caso; los controles fueron provistos por el mismo laboratorio local. Todos los controles obtenidos fueron conservados a -80°C. Controles negativos: Los controles negativos se obtuvieron de peces SPF (specific pathogens free) libres de patógenos certificados, (anexo I) de las especies Salmo salar y Oncorhynchus kisutch, utilizando la misma metodología anteriormente descripta para la toma de muestras de Página 38 �los individuos a estudiar. Los órganos de los peces SPF extraídos se conservaron a 80º C. Selección de Iniciadores o Primers diagnósticos: Los primers o iniciadores utilizados en todas las enfermedades a monitorear salvo para el IPN, se seleccionaron de las secuencias publicadas en el manual de diagnóstico de organismos acuáticos de la OIE 2006. Los iniciadores para IPN se seleccionaron según Williams, K. Et al y Blake, S.L. et al.(3 & 15). Enfermedades producidas por bacterias: Bacterial Kidney disease (BKD) enfermedad bacteriana del riñón: Agente etiológico: (Renibacterium salmoninarum). Dos pares de primers se utilizan en un protocolo de reacción de PCR anidada o nested PCR, los mismos amplifican la secuencia publicada de la proteína p57 de R. salmoninarum (4 & 5). Primer round forward 75-93 5'-AGCTTC-GCA-AGG-TGA-AGGG-3'; P3 y reverse 438-458 5'-GCA-ACA-GGT-TTA-TTT-GCC-GGG-3; M21. Segundo round de amplificación: forward 95-119 5'-ATT-CTT-CCA-CTT-CAA-CAG-TACAAG-G3', P4 y reverse 394-415 5'-CAT-TAT-CGT-TACACC-CGA-AAC-C-3'; M38. El producto de amplificación con los primers del segundo round es de 320 bp (pares de base). SRS (Salmon Rickettsial Syndrome/Septicaemia), Piscirickettsiosis, o Síndrome/Septicemia, rickettsial del salmón: Agente etiológico: (Piscirickettsia salmonis). Se utiliza una reacción de nested pcr para detectar el ADN genómico de P. salmonis, (12) por medio de la amplificación del gen conservado 16S rADN de Eubacterias, durante el primer round, y los primers específicos de P. salmonis en el segundo round. Primer round; EubA (1518R) 5'-AAG-GAG-GTG-ATC-CAN-CCR-CA-3' y EubB (27F) 5'-AGA-GTT-TGA-TCM-TGG-CTC-AG-3'. Los específicos de P. salmonis 2do round tienen la siguientes secuencias: PS2S (223F) y PS2AS (690R): 5'-CTA-GGAGATGAG-CCC-GCG-TTG-3' y 5'-GCTAC-CCTGAA-ATT-CCA-CTT-3', respectivamente que generan un producto de amplificación de 476 bp (pares de base). Para confirmar la detección, los productos de amplificación del primer round se pueden analizar por restricción (REA) con EcoRI y Pst1 para identificar la cepa de P.salmonis. Primers confirmatorios complementarios: Recomendados por Marshall S., Heath S., Henriquez V. & Orrego C.(11) Enfermedades producidas por virus: Epizootic haematopoietic necrosis (EHN) Necrosis hematopoyetica epizoótica: Agente etiológico: (EHNV) (Fam: Iridoviridae gen: Ranavirus ADN doble cadena). La detección del Virus (EHNV) se realizó mediante el uso de la técnica de PCR directa. Se utilizaron dos juegos de primers específicos para la proteína mayor del cápside (MCP) de EHNV: MCP1 M151 forward 5’-AAC-CCG-GCT-TTC-GGG-CAGCA-3’, y M152 reverse 5’-CGG-GGC-GGG-GTT-GAT-GAG-AT-3’ y un segundo juego de primers MCP2 M153 forward 5’-ATG-ACC-GTC-GCC-CTC-ATC-AC-3’ y M154 reverse 5’-CCA-TCG-AGC-CGT-TCA-TGA-TG-3’. Los productos de amplificación son 321 bp y 625 bp respectivamente. Estos productos de amplificación se pueden seguir analizando por REA (restriction endonuclease analysis) con diferentes enzimas de restricción (PflM I, Hinc II, Acc I, Fnu4H I.) para diferenciar los subtipos de EHNV (10). Página 39 �Infectious haematopoietic necrosis (IHN) Necrosis hematopoyética infecciosa: Agente etiológico: (IHNV) (Fam: Rhabdoviridae gen: Novirhabdovirus ARN simple cadena). En la detección del virus (IHNV) se utilizó la técnica de RT-PCR (transcripción reversa -PCR) en un paso (one step) en un primer round y una PCR convencional con primers internos para el segundo round. Ambos primers son específicos de la nucleoproteína de IHNV y conservados para la mayoría de los aislamientos del virus (16). El par de primers del primer round son: forward 5'-TCAAGG-GGG-GAG-TCC-TCG-A-3' y reverse 5'-CAC-CGT-ACT-TTG-CTG-CTA-C-3'; que generan un producto de amplificación de 786 bp. Los primers del segundo round de amplificación son: forward 5'-TTC-GCA-GAT-CCC-AAC-AAC-AA-3'; y reverse 5'-GCGCAC-AGT-GCC-TTG-GCT-3'; cuyo producto de amplificación es de 323 bp. Durante el 2009 se incorporan al diagnóstico por RT-PCR los nuevos primers sugeridos en la nueva edición del manual de diagnóstico de organismos acuáticos de la OIE 2009 recomendados Dr J.R. Winton dirigidos a la región mid de la glicoproteína de IHNV que comprende todos los subtipos conocidos. Los primers confirmatorios complementarios son IHN3 & IHN4 según: Williams, K., Blake, A., Sweeney, A. (15). Viral haemorrhagic septicaemia (VHS) Septicemia hemorrágica viral: Agente etiológico: (VHSV) (Fam: Rhabdoviridae gen: Novirhabdovirus ARN simple cadena). Para identificar específicamente el Virus (VHSV) se utilizó la técnica de RTPCR (Transcripción reversa - PCR) en un paso. Utilizando un juego de primers conservados para la nucleoproteina de VHSV (16) forward 5'-GGG-GAC-CCC-AGACTG-T-3' y reverse 5'-TCT-CTG-TCA-CCT-TGA-TCC-3' el amplicón producto es de 811 bp. Primers confirmatorios complementarios: VHS3 & VHS4 según Williams, K., Blake, A., Sweeney, A.(15). Infectious pancreatic necrosis (IPN) Necrosis pancreática infecciosa: Agente etiológico: (IPNV) (Fam: Birnaviridae gen: Aquabirnavirus ARN doble cadena frag.). Los primers WB1 y WB2 específicos de birnavirus acuáticos (15) se utilizaron para la detección del virus IPNV a través de la técnica de RT-PCR one step. Los primers WB1, forward 5’CCG-CAA-CTT-ACT-TGA-GAT-CCA-TTA-TGC3’ y reverse WB2 5’ CGT-CTG-GTT-CAG-ATT-CCA-CCT-GTA-GTG3’reconocen un fragmento de cADN de 206 bp de gen VP2 que se mantienen conservados entre los 9 serotipos del grupo A. Primers confirmatorios complementarios: PrD1 & PrD2 según Blake, S.L., Schill, W.B., Mcallister, P.E., Lee, M-K, Singer, J.T. y Nicholson, B.L.(3). Infectious salmon anaemia (ISA) Anemia infecciosa del salmón: Agente etiológico: (ISAV) (Fam: Orthomyxoviridae gen: Isavirus ARN simple cadena frag.). En el caso de la detección del Virus (ISAV) varios sets de primers son recomendados por la OIE; en este diagnóstico se seleccionó el juego de primers ILA1 forward 5’-GGC-TAT-CTA-CCA-TGA-ACG-AAT-C3’ & ILA 2 5’- GCC-AAG-TGT-AAGTAG-CAC-TCC-3’que amplifican una región del segmento 8 del virus generando un amplicón de 155 bp (13) y como primers confirmatorios un set de primers diseñados por el laboratorio de referencia de OIE Seg 6U forward 5’GGA-ATC-TAC-AAG-GTCTGC-ATT-G-3’& Seg 6L reverse 5’CTT-CAA-AGG-TGT-CTG-ACA-CGT-A-3’que amplifican una región del segmento 6, cuyo producto de amplificación es de 130 bp. Primers confirmatorios complementarios: FA-3 & RA-3 según Devold M., Krossoy B., Aspehaug V. & Nylund A. (7). Página 40 �6.6.1.3. RESULTADOS El relevamiento sanitario de Salmónidos comenzó en el mes de Octubre de 2006 y finalizó en Octubre de 2008. Se muestrearon los ocho establecimientos que se encuentran actualmente en producción dentro del Embalse Alicura y se establecieron 5 (cinco) puntos de muestreo para animales silvestres. Para esto se definieron 3 (tres) puntos dentro del embalse cabecera(Las Coloradas), medio (Malal Huaca) y Cola del Embalse y 2 (dos) por fuera del mismo, uno sobre el río Limay y otro sobre el río Traful. RESUMEN DE MUESTRAS POR AÑO CAMPAÑA Estación Oct-06 Mar-07 Jun-07 Sep-07 MUESTRAS TOTAL verano otoño Invierno primavera MUESTRAS MUESTRAS CULTIVO SILVESTRES 173 151 153 153 82 86 87 83 91 65 66 70 75 83 80 84 75 68 79 75 630 AÑO I Dic-07 Mar-08 Jul-08 Oct-08 verano otoño invierno primavera 150 151 159 159 AÑO II 619 Se analizaron un total de 1249 individuos durante los dos años de muestreos. En el primer año se realizaron 4 campañas analizándose un total de 630 ejemplares correspondiendo 338 a establecimientos de cultivo y 292 a las obtenidas por captura de animales silvestres y durante el segundo año se realizaron otras 4 campañas analizándose un total de 619 ejemplares, correspondiendo 322 a las obtenidas en los establecimientos de cultivo y 297 a captura de animales silvestres. En cada muestreo se capturaron como mínimo 150 animales. Detalle de cantidad de animales muestreados por especie en cada campaña: Muestreo Fecha N° Total Muestrado 1° 2° 3° 4° 5° 6° 7° 8° Totales Oct-06 Mar-07 Jun-07 Sep-07 Dic-07 Mar-08 Jul-08 Oct-08 - 173 151 153 153 150 151 159 159 1249 Tai* Pisciculturas Tai* Silvestres 82 86 87 83 75 83 80 84 660 85 56 53 66 71 61 69 71 532 Marrón * Silvestres 6 9 12 4 4 5 10 4 54 Ss* Silvestres 1 2 3 Referencias: *Tai: Trucha arco iris (Oncorhyncus mykiss) *Marrón: Trucha marrón (Salmo trutta) *Ss: Salmon encerrado (Salmo salar var. sebago). Página 41 �Sobre el muestreo se indica que: 1. De cada muestreo se realizó el análisis histopatológico de TODAS las muestras y se analizaron por PCR aquellos ejemplares que presentaban lesiones macro o microscópicas compatibles con enfermedad infecciosa, de no hallarse alteraciones específicas, se seleccionan 10 ejemplares de cultivo y 10 ejemplares silvestres al azar. 2. El análisis histopatológico de los dos primeros muestreos se efectuaron en el INIDEP, el resto en la DILAB. 3. A partir del tercer muestreo se incorporó al diagnóstico la determinación de ISAV muestreándose además el corazón de cada individuo. 6.6.1.3.1. Resultados del Laboratorio: I- Análisis anatomopatológicos sobre muestras de 2006-2008 Sobre los 1249 individuos analizados por examen macroscópico y microscópico (histopatología) se observaron las siguientes lesiones expresadas en la siguiente tabla: Tabla de lesiones anatomopatológicas observadas Tipo de lesión observada cantidad Tasa % Reacción fibrosa de mesotelio 1 0,08 Necrosis focal hepática 17 1,36 Infiltrado inflamatorio periductal 5 0,12 Degeneración grasa de hepatocitos 5 0,12 Engrosamiento capsula hepática 2 0,16 Fibrosis hepática peri focal 11 0,88 Nódulos regenerativos de parénquima hepático 3 0,24 Focos de linfohematopoyesis con megaloblastía 1 0,08 Hiperplasia capsulara esplénica 37 2,96 Congestión esplénica 5 0,12 Fibrosis esplénica 23 4,24 Hemorragias focales esplénicas 6 0,48 Pliegue de la capsula esplénica 1 0,08 Hiperplasia capsular de pronefros 2 0,16 Infiltrado inflamatorio en grasa peri renal 1 0,08 Congestión y hemorragias focales en pronefros 6 0,48 Formaciones basófilas esféricas pequeñas en 1 0,08 pronefros Proliferación eosinófila peri vascular y células 4 0,32 con estructuras basófilos en pronefros Aumento de melanomacrófagos en pronefros 1 0,08 Material hialino en capsula de Bowman en 1 0,08 metanefros Quistes parasitarios (Eimeria) en metanefros 1 0,08 Mixosporidium en glomérulo renal en metanefro 1 0,08 Infiltrado de eosinófilos en túbulos del metanefro 4 0,32 Aumento de melanomacrófagos en metanefros 1 0,08 Página 42 Observaciones �Depósitos de calcio en vías túbulos y lesión granulomatosa proliferativa en el intersticio del metanefro 1 0,08 Granuloma focal intersticial en matanefro Deposito de calcio en túbulos renales de metanefro Edema pericárdico Exudado pericárdico con infiltración linfoidea Miocarditis focal con infiltración linfoidea crónica Congestión de vasos coronarios Pericarditis Hemorragia pericárdica Necrosis focal de miocardio Infiltración linfoidea difusa Parásitos en miocardio 1 1 0,08 0,08 2 1 5 1 6 4 1 5 1 0,16 0,08 0,12 0,08 0,48 0,32 0,08 Branquias con hiperplasia de laminillas primarias y secundarias con metaplasia escamosa y mucinosa sectorial. Hiperplasia distal de laminillas primarias y secundarias, en branquias, Parásitos macroscópicos en Bazo e Hígado 1 0,08 3 0,24 2 0,16 Fibrosis focal en músculo esquelético Enteritis necrótica en intestino delgado Piel con lesiones fúngicas 1 1 1 0,08 0,08 0,08 0,08 Sospecha de BKD, que resultó Negativo a PCR Diphylobotrium ssp Caso 172504 Diphylobotrium ssp Saproliniasis Conclusión: En 1249 peces analizados por anatomopatología no se observaron lesiones específicas o compatibles con ninguna de las enfermedades denunciables para la OIE. Solamente se observó un caso con lesiones microscópicas sospechosas de BKD, la cual se descartó por los análisis mediante las técnicas moleculares descritas. II- Resultados de análisis por Técnicas moleculares sobre muestras de 20062008 A continuación se presentan las tablas que resumen las cantidades de muestras procesadas por análisis moleculares y sus correspondientes resultados, discriminados por enfermedad, agente etiológico investigado, órganos procesados y resultados obtenidos: Página 43 �Tabla N° 1 Pruebas Diagnosticas de PCR sobre Bacterias y Virus ADN Enfermedad SRS Agente Etiologico BKD R. Salmoninarum P.Salmonis Organos ext.ADN EHN N°TOTAL EHNV Determinaciones RESULTADOS Bazo Pronefros Bazo Pronefros Bazo Pronefros por muestreo 1° 20 20 22 22 3° 20 20 4° 20 20 5° 20 20 6° 20 20 7° 20 20 8° 20 20 20 22 20 20 20 20 20 20 20 22 20 20 20 20 20 20 20 22 20 20 20 20 20 20 20 22 20 20 20 20 20 20 120 132 120 120 120 120 120 120 Negativo 2° 162 162 162 162 162 162 972 Negativo Muestreo Negativo Negativo Negativo Negativo Negativo Negativo Negativo N°TOTAL Determinaciones por enfermedad y organos blanco Tabla N° 2 Pruebas Diagnosticas RT-PCR sobre Virus ARN Enfermedad IHN VHS IPN ISA Agente Etiologico IHNV VHSV IPNV ISAV Organos ext.ARN N°TOTAL Determinaciones RESULTADOS Bazo Pronefros Bazo Pronefros Bazo Pronefros Bazo Pronefros Corazon por muestreo 20 22 20 20 20 20 20 20 20 22 20 20 20 20 20 20 20 22 20 20 20 20 20 20 20 22 20 20 20 20 20 20 20 22 20 20 20 20 20 20 20 22 20 20 20 20 20 20 20 22 20 20 20 20 20 20 20 22 20 20 20 20 20 20 Negativo 20 20 20 20 20 20 160 176 180 180 180 180 180 180 162 162 162 162 162 162 162 162 120 1416 Negativo Muestreo 1° 2° 3° 4° 5° 6° 7° 8° Negativo Negativo Negativo Negativo Negativo Negativo Negativo N°TOTAL Determinaciones por enfermedad y organos blanco Sobre lo expresado en las tablas se indica lo siguiente: 1. Se analizaron 7 enfermedades de declaración obligatoria e importancia epidemiológica según las recomendaciones de manual OIE, para SRS, BKD, EHN, IPN, IHN, VHS, e ISA* Para cada diagnóstico se trabajo con tejido de los siguientes órganos; bazo, pronefros y además corazón (para los casos de ISAV) como material a procesar. 2. *Se evaluaron los dos primeros muestreos para ISAV sobre contra muestras de bazo y pronefros conservadas a - 80°C. Página 44 �Tabla N° 3 Prueba de control Controles de Extraccion de ADN y ARN sobre organos blanco PCR 5S rADN 5S Salmo salar RT- PCR ARNm gen β Actina Salmo salar Organos Corazon N°TOTAL Bazo Pronefros Bazo Pronefros 20 22 20 20 20 20 20 20 20 22 20 20 20 20 20 20 20 22 20 20 20 20 20 20 20 22 20 20 20 20 20 20 20 20 20 20 20 20 80 88 100 100 100 100 100 100 162 162 162 162 120 768 Muestreo Controles por muestreo 1° 2° 3° 4° 5° 6° 7° 8° N°TOTAL Controles ADN, ARN por organo Se indica que: • En cada muestreo se controlaron: 60 determinaciones por RT-PCR mARN β Actina de Salmo salar como controles de extracción, de ARN total e inhibición, de bazo, pronefros, y corazón. Además de 40 determinaciones como controles genómicos de ADN total de 5S rADN, bazo y pronefros. Resumen de los resultados por PCR durante 2006-2008: Campaña de Muestreo 1° 2° 3° 4° 5° 6° 7° 8° TOTA L N° de individuos analizados por muestreo por PCR, RT-PCR N° total de determinaciones diagnosticas sobre los órganos blanco por individuo PCR, y RT-PCR N° de Controles por órganos blanco por individuo PCR, y RT-PCR (ADN=2organos, ARN3=órganos) 20 22 20 20 20 20 20 20 162 280 308 300 300 300 300 300 300 2388 80 88 100 100 100 100 100 100 768 TOTAL de determinaciones RESULTADOS 360 396 400 400 400 400 400 400 3156 Negativo Negativo Negativo Negativo Negativo Negativo Negativo Negativo - A través de las metodologías de amplificación molecular aplicadas, NO se han detectado las secuencias especificas de los agentes etiológicos responsables de las patologías estudiadas. Página 45 �6.7. MANTENIMIENTO DEL ESTATUS Habiendo cumplimentado las directrices del Capítulo 1.1.4 del Manual de Pruebas de Diagnóstico para los Animales Acuáticos 2006 para la demostración de ausencia de infección, y siguiendo las recomendaciones del punto 3 del mismo capítulo, durante el año 2009 se realizó un nuevo muestreo para mantenimiento del estatus. El mismo se llevó a cabo en el mes de noviembre donde se muestrearon los 8 establecimientos de engorde presentes dentro del embalse y se muestrearon los 5 puntos de captura de animales silvestres, establecidos en los muestreos de los años anteriores. El muestreo se diseño con un 95% de nivel de confianza y un 2% de prevalencia para una población mayor a 100.000 animales, determinando un tamaño muestreal de 170 individuos entre animales silvestres y de cultivo. En esta ocasión se estableció una nueva estrategia de screening diagnostico de las enfermedades de declaración obligatoria, e importancia epidemiológica, mediante las técnicas de biología molecular, con el objeto de abarcar a través de los diagnósticos de PCR y RT PCR todos los individuos muestreados durante la campaña de mantenimiento de la vigilancia. Se aplico la metodología de pooles de muestras; examinando los tejidos de los órganos blanco en pooles de tres, agrupándolos en una sola muestra a testear y en paralelo el análisis histopatologico a cinco órganos de cada uno de los 1249 individuos muestreados. Según la enfermedad a analizar, el tejido del órgano a procesar fue; pronefros (BKD, SRS, EHN, IHN, VHS, IPN) y corazón, pronefros (ISA). Ante la eventual detección de algún patógeno, agente etiológico, de las patologías estudiadas, se procede a abrir el pool y verificar individualmente las muestras, para identificar el o los individuos afectados. Una vez identificado el caso se continuará aplicando los mismos criterios de aceptación de resultados utilizados hasta ahora, para emitir un resultado confirmado. RESULTADOS Vigilancia 2009: A- MUESTRAS COLECTADAS: AÑO III 2009 Total muestras 171 cultivo 87 Silvestres 84 I- Resultados de anatomopatología aplicadas durante la vigilancia 2009 • • Todos los peces que componían la muestra de la vigilancia se procesaron en paralelo por los análisis anatomopatológicos procesando los órganos blanco provenientes de los 171 individuos. Resultados: No se observaron lesiones compatibles o específicas de las enfermedades infecciosas denunciables para la OIE Página 46 �II- Resultados Técnicas moleculares aplicadas durante la vigilancia 2009 Tabla N° 1 Pruebas Diagnosticas de PCR sobre Bacterias y Virus ADN Enfermedad SRS Agente Etiologico P.Salmonis Pronefros Organos ext.ADN Muestreo 2009 Pooles de a 3 BKD R. Salmoninarum EHN N°TOTAL EHNV Determinaciones RESULTADOS Pronefros Pronefros 57 57 171 Negativo 57 Tabla N° 2 Pruebas Diagnosticas RT-PCR sobre Virus ARN Enfermedad Agente Etiologico Organos ext.ARN IHN IHNV Pronefros Muestreo 2009 Pooles de a 3 57 Corazon VHS VHSV Pronefros 57 57 Corazon IPN IPNV Pronefros Corazon 57 57 57 ISA ISAV Pronefros Corazon 57 57 N°TOTAL Determinaciones RESULTADOS por muestreo 456 Negativo 456 Negativo N°TOTAL Determinaciones por 114 114 114 114 enfermedad y organos blanco Sobre los resultados obtenidos se indica que: • Durante la campaña de vigilancia sanitaria realizada en el 2009 se realizaron las pruebas diagnosticas de PCR, RT-PCR sobre las muestras de órganos blanco en pooles de a tres. Tabla N°3 Prueba de control Organos Muestreo 2009 Controles de Extraccion de ADN y ARN sobre organos blanco PCR 5S rADN Salmo salar RT- PCR ARNm gen β Actina Salmo salar Pronefros Pooles de a 3 57 N°TOTAL Controles ADN, ARN por organo 57 Pronefros Corazon 57 57 114 N°TOTAL Controles por muestreo 171 Sobre los resultados obtenidos se indica que: • Se controlaron las extracciones de ADN de pronefros en pooles de a 3 mediante 57 reacciones de PCR 5S rADN, como controles de amplificación de ADN genómico total. 171 individuos totales. 114 extracciones de ARN total provenientes de 57 pronefros y 57 corazones en pooles de a 3 mediante 114 determinaciones de RT-PCR de ARNm de β Actina. Página 47 �A través de las metodologías de amplificación molecular aplicadas, NO se han detectado las secuencias especificas de los agentes etiológicos responsables de las patologías estudiadas. 6.8. OTRAS ACTIVIDADES DE VIGILANCIA Control Sanitario previo a movimiento de alevinos Se realizaron análisis en todas las hatcheries que abastecen alevinos a los establecimientos de engorde del embalse durante el período 2006-2009, estén estas dentro o fuera de la zona bajo vigilancia. De cada establecimiento se tomaron 50 muestras de alevinos, de las cuales 25 se procesaron por histopatología y otras 25 de procesaron por las técnicas moleculares antes descritas. Se analizaron por cada establecimiento 25 ejemplares, (Alevinos enteros u ovas) en pooles de 5 a través de la técnica de PCR, empleando los mismos protocolos aplicados en el estudio epidemiológico de vigilancia sanitaria. Durante el desarrollo del plan sanitario además de aplicar las técnicas de diagnóstico molecular por PCR sobre tejidos de órganos y sobre alevinos enteros se trabajo en la puesta a punto de la extracción de ácidos nucleicos de ovas embrionadas y su posterior procesamiento por PCR y RT PCR con el objetivo de poder aplicar un control más sobre las importaciones de ovas en cuarentena. (Técnica aun no estandarizada internacionalmente) A través de las metodologías de amplificación molecular aplicadas, NO se han detectado las secuencias especificas de los agentes etiológicos responsables de las patologías estudiadas. En los análisis histopatológicos NO se observaron lesiones compatibles con enfermedades infecciosas, tras el examen de todos los órganos de cada uno de los alevinos estudiados. Página 48 �7. CONCLUSIONES La información incluida en el presente informe permite concluir que: 1. Las presentes conclusiones son específicas para la zona comprendida por la Cuenca Alta del Río Limay y el Embalse Alicurá, actuando como barrera física la represa de Alicurá, que es el lugar en donde se desarrollaron los estudios correspondientes al presente informe. 2. El diseño de los estudios epidemiológicos para las enfermedades virales y bacterianas correspondientes al presente documento, permiten asegurar con un 95% de confianza que es posible detectar al menos un individuo reactor (diagnóstico positivo) si la prevalencia esperada fuera igual o superior al 2% para cada una de las enfermedades en cuestión. 3. Los análisis de laboratorio determinaron la inexistencia de lesiones anatomo patológicas compatibles o especificas de las enfermedades infecciosas estudiadas. Tampoco se detectaron las secuencias especificas de los agentes etiológicos responsables de las mismas. 4. No se ha detectado la presencia de enfermedad clínica para Necrosis Hematopoyética Epizoótica (EHNV), Necrosis Hematopoyética Infecciosa(IHNV), Septicemia Hemorrágica Viral (VHS), Necrosis Pancreática Infecciosa (IPN), Anemia Infecciosa del Salmón (ISA), Enfermedad Bacteriana Renal (BKD) y Piscirickettsiosis (SRS) en la población de salmónidos silvestres y de cultivo en la zona de la Cuenca Alta de Rio Limay que incluye al Lago Nahuel Huapi, Lago Traful, ríos Limay y Traful y el embalse de Alicurá hasta la presa hidroeléctrica del mismo nombre. 5. Los resultados negativos obtenidos en todas las pruebas de diagnóstico, han demostrado la ausencia de infección y de actividad viral o bacteriana para las enfermedades EHNV, IHNV, VHS, IPN, ISA, BKD y SRS, de acuerdo con los supuestos enunciados para el diseño de los estudios epidemiológicos correspondientes al presente informe expresados en la conclusión Nº2. 6. El Servicio veterinario posee la capacidad o competencia técnica de su personal como la capacidad financiera de recursos a su disposición (otorgados por medio de los instrumentos legales correspondientes: leyes, decretos y resoluciones) que permiten un correcto funcionamiento del Servicio para mantener un sistema de vigilancia eficaz, y la posibilidad de enfrentar situaciones sanitarias de emergencia. 7. Se ha realizado capacitación permanente desde comienzos del presente plan de trabajo tanto a los agentes del servicio nacional de laboratorio y campo, como a productores, técnicos y profesionales involucrados. 8. Se cuenta con un Laboratorio Nacional de Referencia, el cual presenta instalaciones adecuadas para el diagnóstico de las enfermedades de salmónidos estudiadas por las técnicas de Histopatología y PCR convencional y PCR Real Time. 9. La Legislación vigente ampara las acciones de vigilancia y prevención de las 7 enfermedades estudiadas. Página 49 �10. Todos los establecimientos que se encuentran en la zona libre, así como también las hatcheries extrazona que abastecen alevinos a los establecimientos de engorde de la zona, se encuentran inscriptos en los Registros RENSPA y RENACUA, por lo que se hallan identificados y georeferenciados. 11. El movimiento de los animales se encuentra registrado en el sistema veterinario oficial a través del correspondiente Documento de Transito animal (DTA). 12. Las importaciones de ovas se encuentran controladas bajo un sistema de cuarentena y diagnósticos previos a la liberación de los procesos cuarentenarios de importación y el correspondiente traslado al establecimiento de destino final. 13. Las acciones de vigilancia activa y el diseño de muestreo se determinó en base a las recomendaciones de la Sección 2. 1. Capítulo I. 1. B de Enfermedades de los peces del Manual de Diagnóstico para los Animales Acuáticos 2006 y el Código Sanitario 2009 de la OIE. 14. El diseño llevado a cabo se considera suficientes para considerar a la Zona bajo vigilancia epidemiológica, antes definida, como Libre de las Enfermedades ya indicadas. 8. Glosario LOTE: grupo de la misma especie que comparte un mismo suministro de agua y que se origina de una misma descendencia o población reproductora. (Manual OIE, 2006) ZONA: desde el manantial de un río hasta una barrera que impide la introducción de una enfermedad. HATCHERY: Establecimiento de acuicultura donde se realiza la reproducción y cría de juveniles. Página 50 �9. Referencias Bibliográficas 1. Alvarez, M. A, 2005. Relevamiento de Lagos, Lagunas y Embalses de la Región Patagónica y su uso potencial en acuicultura. Dirección de Acuicultura, SAGPyA, 121 pp 2. Anna Wargelius. Per Gunnar Fjelldal. Tom Hansen. Heat shock during early somitogenesis induces caudal vertebral column defects in Atlantic salmon (Salmo salar) Dev Genes Evol (2005) 215: 350–357 3. Blake, S.L., Schill, W.B., Mcallister, P.E., Lee, M-K, Singer, J.T. y Nicholson, B.L. (1995). Detection and identification of Aquatic birnaviruses by PCR assay. Journal of Clinical Microbiology 33: 835-839. 4. Chase D.M. & Pascho R.J. (1998). Development of a nested polymerase chain reaction for amplification of a sequence of the p57 gene of Renibacterium salmoninarum that provides a highly sensitive method for detection of the bacterium in salmonid kidney. Dis. Aquat. Org., 34, 223-229. 5. Chien M.S., Gilbert T.L., Huang C., Landolt M.L., O'Hara P.J. & Winton J. (1992). Molecular cloning and sequence analysis of the gene coding for the 57 kDa major soluble antigen of the salmonid fish pathogen Renibacterium salmoninarum. FEMS Microbiol. Lett., 96, 259-266. 6. Código Sanitario para la Animales Acuáticos de OIE, 2009. 7. Devold M., Krossoy B., Aspehaug V. & Nylund A. (2000). Use of RT-PCR for diagnosis of infectious salmon anaemia virus (ISAV) in carrier sea trout Salmo trutta after experimental infection. Dis. Aquat. Org., 40, 9-18. 8. FAO 2009: http://www.fao.org/forestry/country/18310/es/arg/ 9. Luchini, L., 2004. Calidad Sanitaria en relación al cultivo de Salmónidos: Lago Nahuel Huapi, Embalses de Alicurá y Piedra del Águila. Dirección de Acuicultura, SAGPyA, pp 108. 10. Marsh I.B., Whittington R.J., O'Rourke B., Hyatt A.D. & Chisholm O. (2002). Rapid differentiation of Australian, European and American ranaviruses based on variation in major capsid protein gene sequence. Molec. Cell. Probes, 16, 137-151. 11. Marshall S., Heath S., Henriquez V. & Orrego C. (1998). Minimally invasive detection of Piscirickettsia salmonis in cultivated salmonids via the PCR. Applied and Environmental Microbiology 64, 3066–3069. 12. Mauel M. J., Giovannoni S.J. & Fryer J.L. (1996). Development of polymerase chain reaction assays for detection, identification, and differentiation of Piscirickettsia salmonis. Dis. Aquat. Org., 26, 189-195. 13. Mjaaland S., Rimstad E. & Cunningham C.O. (2002). Molecular diagnosis of infectious salmon anaemia. In: Molecular Diagnosis of Salmonid Diseases, Cunningham C.O., ed. Kluwer Academic Publishers, Dordrecht, The Netherlands, 1-2 Página 51 �14. Pendas, A.M., Moran, P.& Garcia Vazquez, E. (1994) Chromosomal location and nucleotide sequence of two tanden reapeats of the Atlantic salmon 5S rDNA. Cytogentics and Cell Genetics 67, 31- 36. 15. Williams, K., Blake, A., Sweeney, A. (1999). Multiplex reverse transcriptase PCR assay for simultaneous detection of three fish viruses. Journal of Clinical Microbiology 37: 4139-4141. 16. Winton J.R. & Einer-Jensen K. (2002). Molecular diagnosis of infectious hematopoietic necrosis and viral hemorrhagic septicemia. In: Molecular Diagnosis of Salmonid Diseases. Cunningham C.O., ed. Kluwer, Dordrecht, The Netherlands. pp. 49-79 17. Tabashi Hibiya An Atlas of Fish Histology Normal and Pathologycal Features1982- Edit. Kodansha-ISBN 0-98574- 174-1. 18. Métodos Histotecnológicos AFIP-USA-1995- ISBN 1-881041-21-2 19. Manual of Histologic Staining Methods of the Armed Forces Institute of Pathology- Third Edition-196820. Manual of Diagnostic Test for Aquatic Animals –OIE-2006- Fith Edition ISBN 92-9044-682-x.21. James R. Winton. Fish Health Management 22. Handbook of Trout and Salmon Diseases, 3th Edition-1997.23. Sloss- Kemp- Zajal, Veterinary Clinical Parasitology –Iowa State University Press / Ames-6th Edition-1994.24. Procedimientos Normalizados de Trabajo –PNTA- Edición 2- Instituto de Acuicultura, Universidad de Santiago de Compostela, España.- ANEXO I Laboratorios de Referencia de OIE: Controles Positivos para las pruebas de PCR, RT-PCR: Controles Positivos BKD R. salmoninarum: DNA purificado de cultivo BKD reconstituido en Tris 10 mM pH 8 provistos por: Dr J. Winton Western Fisheries Research Center, 6505 N.E. 65th Street, Seattle, Washington 98115, UNITED STATES OF AMERICA Tel.: (1.206) 526.65.87, Fax: (1.206) 526.66.54, E-mail: jim_winton@usgs.gov Controles Positivos SRS P. Salmonis: Página 52 �Cultivo P. Salmonis inactivado con Trizol (Invitrogen) Provistos por: Dr. Esteban Turic Biogénesis Bagó S.A. Argentina. Ruta Panamericana Km 38,2, Garín - Prov. de Bs.As. ARGENTINA Tel/Fax: (03327) 448333 Email: info@biogenesisbago.com Controles Positivos EHNV: DNA EHNV purificado liofilizado provistos por: Dr R. Whittington Faculty of Veterinary Science, University of Sydney, 425 Werombi Road, Private Bag 3, Camden NSW 2570, AUSTRALIA Tel.: (61.2) 93.51.16.11., Fax: (61.2) 93.51.16.18 E-mail: richardw@camden.usyd.edu.au Controles Positivos IHNV: Cultivo inactivado en buffer AVL Qiamp Viral RNA kit (Qiagen) provistos por: Dr J. Winton Western Fisheries Research Center, 6505 N.E. 65th Street, Seattle, Washington 98115, UNITED STATES OF AMERICA Tel.: (1.206) 526.65.87, Fax: (1.206) 526.66.54, E-mail: jim_winton@usgs.gov Controles Positivos cultivo VHSV: Cultivo inactivado RNAlater (Qiagen) provistos por: Dr N.J. Olesen Danish Institute for Food and Veterinary Research, Hangovej 2, DK-8200 Aarhus N, DENMARK Tel.: (45) 89.37.24.31, Fax: (45) 89.37.24.70 E-mail: njo@dfvf.dk Controles Positivos Cultivo IPNV: Cultivo inactivado (incubación a 60°C y congelación seca, heat 60ºC freeze dried) provistos por: Dr P. Dixon The Centre for Environment, Fisheries & Aquaculture Science (CEFAS), Barrack Road, Weymouth, Dorset DT4 8UB, UNITED KINGDOM Tel.: (44.1305) 20.66.42, Fax: (44.1305) 20.66.01 E-mail: peter.dixon@cefas.co.uk Página 53 �Controles Positivos IPNV: Cultivo inactivado con Trizol (Invitrogen) Provistos por: Dr. Esteban Turic Biogénesis Bagó S.A. Argentina. Ruta Panamericana Km 38,2, Garín - Prov. de Bs.As. ARGENTINA TEL/FAX: (03327) 448333 Email: info@biogenesisbago.com Controles Positivos Cultivo ISAV: Cultivo inactivado Buffer AVL Qiamp Viral RNA (Qiagen) y tejido de pronefros infectado en RNAlater (Qiagen) provistos por: Dr B. Dannevig National Veterinary Institute, Ullevålsveien 68, P.O. Box 8156 Dep., 0033 Oslo, NORWAY Tel.: (47.23) 21.64.04, Fax: (47.23) 21.63.01 E-mail: birgit.dannevig@vetinst.no Controles Positivos ISAV: Controles clonados cDNA ISAV purificado y RNA ISAV precipitado en etanol provistos por: Dr F. Kibenge Atlantic Veterinary College, Department of Pathology and Microbiology, Faculty of Veterinary Medicine, University of Prince Edward Island 550 University Avenue, Charlottetown, Prince Edward Island, C1A 4P3 CANADA Tel: (1.902) 566.09.67 Fax: (1.902) 566.08.51 Email: kibenge@upei.ca Controles Negativos para las pruebas de PCR, RT-PCR: Los controles negativos se obtuvieron de peces SPF (specific pathogens free) certificados, libres de patógenos de las especies Salmo salar y Oncorhynchus kisutch, utilizando la misma metodología anteriormente descripta para la toma de muestras de los individuos a estudiar. Los órganos de los peces SPF extraídos se conservaron a -80º C, Los peces fueron provistos en el 2006 por: Dr. Esteban Turic Biogénesis Bagó S.A. Argentina. Ruta Panamericana Km 38,2, Garín - Prov. de Bs.As. ARGENTINA TEL/FAX: (03327) 448333 Email: info@biogenesisbago.com Laboratorio productor de vacunas de IPN y SRS. Página 54 � Dublin Core The Dublin Core metadata element set is common to all Omeka records, including items, files, and collections. For more information see, http://dublincore.org/documents/dces/. Title A name given to the resource Publicaciones SENASA Dublin Core The Dublin Core metadata element set is common to all Omeka records, including items, files, and collections. For more information see, http://dublincore.org/documents/dces/. Title A name given to the resource Autodeclaración de zona Libre de Necrosis Hematopoyética Infecciosa, Necrosis Hematopoyética Epizootica, Anemia Infecciosa del Salmón, Necrosis Pancreatica Infecciosa, Septicemia Hemorragica Viral, Enfermedad Bacterial Renal y Pisciricketsiosis en la cuenca alta del Rio Limay que incluye al Embalse de Alicura, en la República Argentina. Publisher An entity responsible for making the resource available Servicio Nacional de Sanidad y Calidad Agroalimentaria Date A point or period of time associated with an event in the lifecycle of the resource 2010 Language A language of the resource Es Type The nature or genre of the resource Monografía Identifier An unambiguous reference to the resource within a given context B.S.0080 Abstract A summary of the resource. El objetivo del presente informe es presentar las evidencias de la ausencia de infección de Necrosis Hematopoyética Epizoótica (EHNV), Necrosis Hematopoyética Infecciosa(IHNV), Septicemia Hemorrágica Viral (VHS), Necrosis Pancreática Infecciosa (IPN), Anemia Infecciosa del Salmón (ISA), Enfermedad Bacteriana Renal (BKD) y Piscirickettsiosis en base al Cap ítulo 1.4 del Código Sanitario para los Animales Acuáticos 2009 y el Capítulo 1.1.4 del Manual de Pruebas de Diagnóstico para los animales acuáticos 2006 de la Organización Mundial de Sanidad Animal (OIE), en la Zona Cuenca Alta de Rio Limay que incluye al Embalse de Alicura hasta la presa hidroeléctrica en la República Argentina. Enfermedades de los Peces https://biblioteca.senasa.gob.ar/files/original/8708aef40208f74111a727212e8105fc.pdf 45dd731fc15dee5c8b8b3187e63c7ea2 PDF Text Text Programa de Control de Enfermedades de las Abejas apicultura@senasa.gov.ar Año 2010 RECOMENDACIONES PARA EL CONTROL DE VARROOSIS El contenido técnico del presente texto fue revisado y consensuado en el ámbito de la CONASA (Comisión Nacional de Sanidad Apícola) La Varroosis es una parasitosis que afecta a las abejas adultas y a sus crías causando serias pérdidas en la producción apícola del país. Es causada por un ácaro denominado Varroa destructor. Es un parásito externo que cumple un ciclo de vida complejo, fijándose a las abejas y succionando su hemolinfa. Para reproducirse ingresa a las celdas, atacando a la cría y afectando su desarrollo. El objetivo de las siguientes recomendaciones es brindar a los apicultores una herramienta técnica, necesaria para disminuir los niveles de infestación de esta parasitosis, evitar la mortandad de colonias y los riesgos de que permanezcan en la miel residuos de los productos acaricidas utilizados, por encima de los niveles permitidos. Existen variadas alternativas de control de esta parasitosis, pero todas ellas relacionadas con la dinámica reproductiva del ácaro, con las características climatológicas del lugar, la disponibilidad de productos acaricidas, el tipo de abejas que constituyen a las colonias afectadas. Por lo tanto, resulta necesario diseñar estrategias de control adaptadas a cada región en particular. Aplicando una estrategia de control efectiva logrará: Š Disminuir los niveles de infestación de su apiario Š Reducir mortandad de colonias Š Aumentar su producción y Š Evitar el riesgo que permanezcan residuos por encima de los niveles permitidos ESTRATEGIA DE CONTROL Toda estrategia de control debe incluir: A. MONITOREOS PERIODICOS B. DISEÑO DE LA CURVA POBLACIONAL Y PLAN DE CURA C. CORRECTA ELECCION DE PRODUCTOS ACARICIDAS A. MONITOREOS PERIODICOS La importancia de realizar monitoreos La carga de ácaros presente en las colmenas nos indica la gravedad de la parasitosis. A su vez, a través de la carga parasitaria podremos evaluar el éxito de los tratamientos aplicados y decidir en qué momento y con qué productos nos conviene curar. �Programa de Control de Enfermedades de las Abejas apicultura@senasa.gov.ar Año 2010 Para ello, se recomienda realizar la “Prueba del Frasco”, considerada sencilla y de bajo costo. Mediante esta prueba podremos determinar el porcentaje de infestación de ácaros sobre abejas adultas. ¿Cuándo realizar la “Prueba del Frasco”? Se deben realizar monitoreos antes, durante y después de la aplicación del tratamiento. También en momentos clave del ciclo productivo para tomar decisiones en cuanto a la necesidad de aplicar otros tratamientos, por ejemplo antes de ingresar al período invernal o al salir del mismo y comenzar una nueva temporada. La muestra de un apiario resulta representativa cuando se toman muestras individuales del 10% de las colmenas o al menos 6 muestras por apiario. CANTIDAD DE COLMENAS COLMENAS A MUESTREAR Mas de 60 10% Menos de 60 6 ¿Cómo realizar la “Prueba del Frasco”? 1. Elementos necesarios: • Frasco de boca ancha • Agua y alcohol en partes iguales (se agrega antes o después de la recolección de abejas) • Sistema de colador doble 2. Toma de muestras: Las muestras son individuales de por lo menos el 10% de las colmenas que conforman el apiario o de 6 colmenas cuando lo conforman menos de 60. La �Programa de Control de Enfermedades de las Abejas apicultura@senasa.gov.ar Año 2010 Prueba del Frasco estima el porcentaje de infestación en estado forético (infestación sobre abejas adultas). Se realiza a partir de la recolección de aproximadamente 300 abejas nodrizas. La muestra se obtiene tomando el cuadro con una mano, el frasco con la otra y deslizándolo suavemente de arriba hacia abajo para que caigan las abejas. Se debe recolectar de ambas caras de 3 cuadros diferentes de la cámara de cría. En lo posible, elegir cuadros separados entre sí y con predominancia de cría abierta. 3. Agitar: Se agitará el recipiente (abejas + alcohol/agua) durante un mínimo de 5 minutos para favorecer el desprendimiento de los ácaros. Luego lavar la muestra con abundante agua para evitar que los parásitos queden adheridos a las abejas. 4. Filtrar: el contenido mediante tamiz doble (uno retiene abejas, el otro, con criba más pequeña, retiene a los ácaros). 5. Conteo: ácaros y abejas por separado. 6. Calcular el % de infestación: dividiendo ácaros sobre abejas y multiplicando por 100. Ácaros Abejas X 100 = PORCENTAJE DE INFESTACIÓN El resultado del monitoreo luego de la correcta acción de un tratamiento acaricida, no debería superar el 1%. Si fuera superior, se debe tener en cuenta el momento del año, la cantidad de cuadros con cría y a partir de ello evaluar la posibilidad de aplicar un nuevo tratamiento. La lectura de los resultados siempre debe vincularse a la presencia de cría en las colonias y la posibilidad de que esa cantidad de crías aumente o disminuya; y con ella la población total de ácaros. Si, por ejemplo, en el mes de octubre en cualquier zona del país se obtiene un resultado del 2% implica un alerta porque el nido de cría está en plena expansión y las posibilidades de que la población de ácaros se incremente es muy grande. Si, en cambio, se obtiene el mismo resultado en el mes de junio, cuando la cantidad de cría disponible es muy poca y por lo tanto es remota la posibilidad de que los ácaros se reproduzcan, el resultado del 2% no es tan alarmante. Es imprescindible realizar los conteos de ácaros previamente, durante y después del tratamiento; y hacer una correcta interpretación de los resultados. Se sugiere requerir asesoramiento técnico para la toma de decisiones. �Programa de Control de Enfermedades de las Abejas apicultura@senasa.gov.ar Año 2010 B. DISEÑO DE LA CURVA POBLACIONAL Y PLAN DE CURA Curvas poblacionales La CURVA POBLACIONAL, expresa los cambios que sufren las poblaciones de abejas durante el año, que a su vez, serán similares a los que sucedan en la población de ácaros. Al aumentar o disminuir la cantidad de crías de abejas aumentará o disminuirá de igual forma la reproducción del ácaro. Esta dinámica puede expresarse en la CURVA POBLACIONAL y nos permitirá, a través de su análisis, saber o suponer la evolución de la parasitosis y el momento indicado para realizar los tratamientos correspondientes. Es por ello que antes de diseñar y aplicar una estrategia se recomienda conocer la curva de dinámica poblacional de ácaros y abejas de la zona. CURVA POBLACIÓN MODELO 60000 ABEJAS 50000 40000 30000 20000 10000 ABEJAS Jun May Abr Mar Feb Ene Dic Nov Oct Sep Ago Jul 0 MESES Curva población modelo. Esta curva representa una región del sudeste de la provincia de Buenos Aires. A partir de este ejemplo, en cada zona se podrá trazar su propia curva según clima y floración. Basándonos en la curva de la zona, la entrada principal de néctar y el periodo de carencia del producto elegido, podremos decidir los momentos adecuados y los tipos de tratamientos a aplicar. Además, partiendo de curvas poblacionales conocidas, podremos adelantarlas o prolongarlas ya sea por incentivo de colonias o por trashumancia, y tomar nuevas decisiones sobre los tratamientos a aplicar. Tratamientos Los tratamientos deben programarse de acuerdo a: Š Las curvas de población en sus apiarios Š La carga parasitaria (Prueba del Frasco) y Š La fecha de inicio del flujo principal de néctar (relacionarla con el Período de Carencia del producto elegido) �Programa de Control de Enfermedades de las Abejas apicultura@senasa.gov.ar Año 2010 NUNCA DEBE OMITIRSE LA CURA POS-COSECHA Tener en cuenta que la poscosecha es el momento crítico para la colonia pues el prolongado tiempo transcurrido desde la última aplicación de un producto acaricida y la constante disponibilidad de celdas de crías permitirá la multiplicación incesante de varroas. En este momento nacen las abejas con las cuales invernará la colonia y debemos asegurarnos de que no desarrollen parasitadas y se reduzca así su vida media. Si se deja pasar mucho tiempo luego de la cosecha, se irá reduciendo el número de abejas que conforman la colonia y creciendo la proporción con respecto al número de ácaros, las abejas de la invernada vivirán menos y, si la colonia logra sobrevivir, llegará a la invernada muy debilitada, con pocas posibilidades de superarla. Por todo eso, el tratamiento luego de la cosecha es crucial para mantener sanas y vivas las colonias. ¿Cuándo es necesario aplicar otro tratamiento? Para decidir sobre la aplicación o no otro tratamiento anual se debe evaluar la carga parasitaria regularmente, incluso en momentos en los cuáles no se prevé aplicar un tratamiento. Por ejemplo, si curó en poscosecha, es imprescindible evaluar la carga parasitaria en primavera temprana, pues es posible que la infestación en fase forética supere el 1% y sea necesario otro tratamiento antes de que se expanda el nido de cría. Tratamientos coordinados Para lograr y mantener con éxito el control de la parasitosis en su apiario deberá evitar la reinfestación a través de los apiarios cercanos. Para ello, se recomienda organizar monitoreos continuos y la aplicación de tratamientos en forma coordinada con los apicultores vecinos y así eliminar, en forma masiva, la mayor cantidad de ácaros de la región. Esta recomendación esta basada en la enorme incidencia que tiene la reinfestación en zonas con alta densidad de colmenas. C. CORRECTA ELECCIÓN DE PRODUCTOS ACARICIDAS Cómo elegir y utilizar los productos acaricidas Š Elija productos acaricidas que estén aprobados para su uso en abejas por el SENASA Š Tenga en cuenta que todo medicamento que coloque en la colmena, puede dejar residuos en los productos apícolas (miel, polen, propóleos) que luego serán destinados a consumo humano. Š Aplicando la dosis correcta evita el desarrollo de resistencia por parte del ácaro y la aparición de residuos en los productos �Programa de Control de Enfermedades de las Abejas apicultura@senasa.gov.ar Año 2010 ¿Cuáles son las características de los productos aprobados? Š Están compuestos por un principio activo y excipientes Š Son formulaciones conocidas y estables Š Conocemos la dosis que se aplica en cada tratamiento. Š Sabemos cómo se comporta el principio activo en la colmena y la concentración de residuos que puede permanecer en los productos obtenidos. Š El rótulo aclara la información necesaria para la forma correcta de aplicación y el período de carencia (PC). ¿Cuáles son las características de los productos ilegales? Los productos que no se encuentran aprobados por SENASA para uso en apicultura son productos ilegales (mal llamados “artesanales”). Š No poseen dosis conocidas ni soporte adecuado Š No tienen ningún control de calidad durante su elaboración Š Carecen de controles farmacológicos que permitan determinar su periodo de carencia Š Pueden provocar mortandad por intoxicación de abejas adultas o crías Š Por no presentar dosis adecuadas contribuyen al desarrollo de resistencia por parte de los ácaros. Rotación de principios activos ¿por qué debemos rotar los principios activos? La rotación de los principios activos evita la aparición de ácaros resistentes a los medicamentos. Por ello se deben elegir productos formulados con diferentes familias de drogas entre una cura y otra, para no repetir principios activos. Aunque los acaricidas orgánicos poseen baja probabilidad de producir resistencia, tampoco se aconseja utilizar siempre el mismo acaricida orgánico. Lo ideal es rotar las moléculas de síntesis con la incorporación de algún producto elaborado con una molécula orgánica. De esta manera se buscará volver a utilizar la primera molécula de síntesis recién tres años después de haber sido utilizada. Si por ejemplo, en el tratamiento pos cosecha utilizamos cumafós, en la primavera utilizaremos un orgánico como el ácido fórmico, oxálico o timol, y el próximo tratamiento pos cosecha lo haremos con un piretroide o con amitraz. Período de carencia o Período de Retirada : Se refiere al tiempo que transcurre desde la finalización del tratamiento hasta el inicio del próximo flujo de néctar. Respetando el periodo de carencia, la dosis y modo de aplicación indicados en los marbetes de los productos veterinarios se evitará la permanencia de residuos por encima de las concentraciones aceptadas. �Programa de Control de Enfermedades de las Abejas apicultura@senasa.gov.ar Año 2010 Se recomienda consultar regularmente el listado de productos acaricidas aprobados por el SENASA para su uso en apicultura. El listado puede ser extraído de: www.senasa.gov.ar o solicitado a la Coordinación de Productos Farmacológicos, Veterinarios y Alimentos para Animales. LA ELECCIÓN DE PRODUCTOS APROBADOS PARA SU USO EN ABEJAS, CONTRIBUYE A MANTENER LAS COLONIAS SANAS Y EQUILIBRADAS, REDUCIENDO LA MORTANDAD INVERNAL, ASEGURANDO MAYOR PRODUCCIÓN Y GARANTIZANDO LA INOCUIDAD DE LOS PRODUCTOS OBTENIDOS. CONTACTESE CON UN TECNICO ESPECIALIZADO QUE LE AYUDE A ELEGIR LA MEJOR OPCION PARA CONTROLAR LA VARROASIS EN SUS COLMENAS. � Dublin Core The Dublin Core metadata element set is common to all Omeka records, including items, files, and collections. For more information see, http://dublincore.org/documents/dces/. Title A name given to the resource Publicaciones SENASA Dublin Core The Dublin Core metadata element set is common to all Omeka records, including items, files, and collections. For more information see, http://dublincore.org/documents/dces/. Title A name given to the resource Recomendaciones para el control de Varroosis Publisher An entity responsible for making the resource available Servicio Nacional de Sanidad y Calidad Agroalimentaria Date A point or period of time associated with an event in the lifecycle of the resource 2010 Contributor An entity responsible for making contributions to the resource Programa de Control de Enfermedades Language A language of the resource Es Type The nature or genre of the resource Monografía Identifier An unambiguous reference to the resource within a given context B.S.0081 Abstract A summary of the resource. El objetivo de las siguientes recomendaciones es brindar a los apicultores una herramienta técnica, necesaria para disminuir los niveles de infestación de esta parasitosis, evitar la mortandad de colonias y los riesgos de que permanezcan en la miel residuos de los productos acaricidas utilizados, por encima de los niveles permitidos. ENFERMEDADES DE LAS ABEJAS https://biblioteca.senasa.gob.ar/files/original/b339401a46a31c05a98e88a4c8b748a6.pdf 1523dce9436c553a88471cf0b00e6e6d PDF Text Text MANUAL ILUSTRADO EN TUBERCULOSIS PARA EL PERSONAL DE LA INSPECCIÓN VETERINARIA EN FRIGORÍFICOS Y MATADEROS BOVINOS ��Dr. Torres, Pedro M. – Jefe del Programa de Tuberculosis – DPS – DNSA – Senasa Dr. Kistermann, Juan Carlos – Programa de Tuberculosis – DPS – DNSA – Senasa Dr. Bernasconi, Gustavo – Programa de Tuberculosis – DPS – DNSA – Senasa Dra. Josefina Lacunza – Programa de Tuberculosis – DPS – DNSA – Senasa Dr. Hasenbalg, Adolfo – Supervisor área de Inocuidad y Calidad Agroalimentaria Centro Regional Metropolitano – Senasa Dr. Navarro, Rubén – Supervisor área Sur de Inocuidad y Calidad Agroalimentaria Centro Regional Santa Fe – Senasa Dr. Sosa, Edgardo – Jefe de Servicio de Inspección Veterinaria Frigorífico JBS ARGENTINA SA (N° Oficial: 13) Dr. Biedermann, David – Inspector Veterinario Frigorífico JBS ARGENTINA SA (N° Oficial: 13) Dra. Canal, Ana María – Profesora Asociada de Patología Veterinaria – Facultad de Ciencias Veterinarias – Universidad Nacional del Litoral ��INDICE Introducción.................................................................................................. 5 Reglamento vigente (4238)........................................................................... 6 Guía para la inspección en faena de bovinos................................................. 8 Puntos.......................................................................................................... 9 Fotos Cabeza.................................................................................................................10 Vísceras...............................................................................................................11 Res......................................................................................................................16 Instructivo para remisión y recolección de muestras en faena.........................23 Fotos. Lesiones compatibles con TB Cabeza.................................................................................................................26 Vísceras...............................................................................................................28 Fotos. Diagnósticos diferenciales Actinobacilosis....................................................................................................40 Leucosis..............................................................................................................41 Intestino delgado con paratuberculosis y nódulos parasitarios........................42 Abscesos.............................................................................................................43 Fasciola hepática................................................................................................44 Hidatidosis..........................................................................................................46 Adenocarcinoma.................................................................................................48 Planillas Planilla de necropsia..........................................................................................49-50 Remisión de muestras........................................................................................51 ��Manual ilustrado en Tuberculosis INTRODUCCIÓN La Tuberculosis bovina (TB) es una enfermedad infecciosa, crónica, zoonótica, producida por el Mycobacterium bovis. Dicha micobacteria conjuntamente con M. tuberculosis, M. africanum, M. microtis, cepa BCG, M.pinnipedii y M. tuberculosis subsp. caprae, pertenecen a lo que se denomina el Complex Mycobacterium tuberculosis. A pesar de que el huésped primario es el bovino, otras especies de interés económico como los cerdos son infectados con M. bovis. Este bacilo causa en el ganado una enfermedad similar a la TBC humana, conduciendo a una baja producción de leche y carne. El control y erradicación de la TB se basa en la prueba tuberculínica, seguida del sacrificio de los animales reactores y acompañada por la vigilancia epidemiológica (VE) en mataderos y frigoríficos, donde la inspección veterinaria dirigida a detectar animales con lesiones ha alcanzado excelente organización y calidad en los países desarrollados. El objetivo prioritario de la inspección veterinaria es establecer una barrera de protección para el consumidor, preservando la calidad higiénico-sanitaria del producto final. La experiencia de muchos países ha demostrado que las posibilidades que presentan los frigoríficos y mataderos como elemento fundamental de la VE exceden este primer objetivo de calidad higiénico sanitaria. El Servicio Nacional de Sanidad y Calidad Agroalimentaria (Senasa), a través del Programa de Tuberculosis Bovina dependiente de la Dirección de Programación Sanitaria (DPS) establece el Plan Nacional de Control y Erradicación de la Tuberculosis Bovina en el año 1999 y actualizada en 2012 (Resolución Senasa N° 128/2012), el cual contempla la vigilancia epidemiológica en faena. Esta contribuye a estimar la prevalencia de la enfermedad, mediante la observación macroscópica de los animales faenados en los frigoríficos y mataderos con inspección federal, provincial y municipal, por los inspectores veterinarios de los mismos y registrar en planillas y/o soporte magnético. La importancia del registro de las tropas faenadas de aquellos animales que no han presentado lesiones macroscópicas, radica en que dicho dato representa en su medida a aquellos establecimientos en donde no está presente la enfermedad. En las primeras etapas de un programa de control, en regiones donde se estima una alta prevalencia, el diagnóstico de situación puede apreciarse por los animales con lesiones tuberculosas macroscópicas diagnosticadas durante el examen post mortem, en la faena. Este dato se puede extrapolar a la población ganadera de la región considerando, además, que una proporción del ganado estará infectado con lesiones microscópicas no detectables a la inspección veterinaria. Esta estimación adolece de algunos sesgos, dependiendo de la edad y categoría de animales faenados, que pueden no representar a la población ganadera de la región, según el destino de la faena (ya sea para consumo interno o exportación), del número de animales infectados (reactores positivos) de la zona y de la confiabilidad y la capacitación de los profesionales y técnicos en el reconocimiento de lesiones tuberculosas. Dado entonces que muchos granulomas son idénticos en apariencia, es imperativo que los mismos sean remitidos al laboratorio. 5 �REGLAMENTACIóN BROMATOLóGICA NACIONAL VIGENTE PARA LA INSPECCIóN DE HACIENDA EN MATADEROS Y FRIGORíFICOS (DECRETO Nº 4238/68) Decreto 4238/68 Capítulo XI 11. Examen post-mortem Tuberculosis 11. 5. 62 La res en que se compruebe tuberculosis, queda excluida para la exportación. Decomiso total 11. 5. 63 (Decreto PEN N° 1714 del 12/07/83). Se procederá al decomiso total de la res, cabeza y sus vísceras: a) Cuando concomitantemente con lesiones tuberculosas haya presentado fiebre inmediatamente antes de su sacrificio. b) Cuando la tuberculosis sea concomitante con un estado caquéctico. c) Cuando se comprueben alteraciones de origen tuberculoso en músculos o tejidos intramusculares o huesos, articulaciones o ganglios linfáticos intramusculares como resultado del pasaje del bacilo a través de los músculos, huesos o articulaciones. d) Cuando presente lesiones tuberculosas miliares simultáneas en dos parénquimas o en un parénquima y una de las serosas esplácnicas o extendidas a las dos serosas esplácnicas o una tumefacción de los ganglios linfáticos cualquiera fuera la localización de las lesiones miliares. e) Cuando presente lesiones tuberculosas caseosas comprobadas a la vez sobre órganos de las grandes cavidades esplácnicas con alteraciones de sus serosas. f) Cuando haya generalización, debiendo considerarse como tal: 1) Cuando además de las lesiones tuberculosas localizadas en el aparato respiratorio o digestivo, incluyendo sus ganglios, se comprueba en uno de los siguientes órganos: bazo, riñones, útero, ubre, ovarios, testículos, cápsula adrenal, cerebro y médula espinal o sus membranas. 2) Cuando presente numerosos tubérculos uniformemente distribuidos en los dos pulmones 3) Cuando presente lesiones tuberculosas que indiquen colapso reciente de las defensas orgánicas, como ser tuberculosis acinosa generalizada de los pulmones, bronconeumonía de aspecto sarcomatoso, tuberculosis caseosa masiva de un órgano, tuberculosis exudativa de pleura, peritoneo, pericardio o meninges, tuberculosis hipertrofiante caseosa. 4) Cuando los ganglios linfáticos presenten procesos semicaseosos, congestivos, edematosos con focos hemorrágicos en las zonas marginales o alteraciones hipertróficas como consecuencia de una infección tuberculosa aguda generalizada. Comisos parciales 11. 5. 64 Cuando la res presente lesiones tuberculosas de un órgano de una sola cavidad esplácnica con alteración de la serosa correspondiente como consecuencia de un proceso originado por infección por antigüedad, se destinará el cuarto diafragma a conserva, extirpando la lesión. Lesiones fibrosas o calcificadas 11. 5. 65 Cuando se observen lesiones fibrosas o calcificadas en los órganos de las dos grandes cavidades esplácnicas con alteraciones poco extendidas de las serosas correspondientes, siempre que se compruebe que no hay evidencia de una invasión reciente de bacilos por el sistema sanguíneo o linfático, la res será destinada a conserva. Cabeza 11. 5. 66 Las cabezas con lesiones tuberculosas serán decomisadas a digestor, con excepción de aquellas que per6 �Manual ilustrado en Tuberculosis tenezcan a reses que por no presentar lesiones tuberculosas se han librado al consumo y siempre que no presente más de dos (2) ganglios linfáticos afectados. Comiso con destino a digestor 11. 5. 67 Se comisará con destino a digestor, todo órgano afectado de tuberculosis o cuando solamente lo esté el ganglio linfático correspondiente. Normas de aplicación 11. 5. 68 Excluido el proceso anátomo-patológico indicado en el inciso 4) del apartado 11.5.63, se procederá de la manera siguiente: a) Cuando las lesiones son leves, localizadas o encapsuladas, puede extraerse el ganglio linfático, sin practicarse comisos. b) Cuando están afectados los ganglios linfáticos cervicales, estén o no afectados los de la cabeza, solamente se extirparán los mismos. c) Cuando los ganglios linfáticos subdorsales estén afectados y no se hallen otras cesiones, se extirparán los ganglios sin dar lugar a comiso. d) Cuando se halle afectado el ganglio linfático preescapular, el cuarto será destinado a conserva. e) Cuando se halle afectado el ganglio linfático prepectoral, el cuarto se destinará a conserva. f) Cuando se halle afectado el ganglio linfático preesternal, el cuarto se destinará a conserva. g) Cuando se hallen afectados los ganglios linfáticos supraesternales, el cuarto se destinará a conserva. h) Cuando en un mismo cuarto se hallen afectados dos (2) ganglios linfáticos de los nombrados en los incisos anteriores, según el tipo de lesión, se destinará a conserva o digestor. i) Cuando se halle afectado el ganglio linfático subescapular o axilar, el cuarto se destinará a digestor y el resto de la res a conserva. j) Cuando se halle afectado el ganglio linfático precrural, el cuarto se destinará a conserva. k) Cuando se halle afectado el ganglio ilíaco, ya sea el interno o el externo, el cuarto se destinará a conserva. l) Cuando se halle afectado el ganglio isquiático, el cuarto será destinado a conserva. m) Cuando se hallen afectados los ganglios linfáticos sublumbares, el cuarto será destinado a conserva. n) Cuando se halle afectado el ganglio renal, sin lesión concomitante en riñón u otras alteraciones que hagan sospechar una generalización tuberculosa, se adoptará el mismo criterio que para las lesiones en los ganglios linfáticos sublumbares. ñ) Cuando se halle afectado el ganglio linfático inguinal o retromamario, según el sexo y si no hubiera concomitantemente lesiones testiculares o mastitis caseosa masiva o metritis caseosa tuberculosa, se extirparán los ganglios linfáticos afectados, sin efectuar comiso. o) Cuando en el mismo cuarto se hallen afectados dos (2) ganglios linfáticos de los nombrados en los incisos anteriores, según el tipo de lesión, se destinará a conserva o digestor. p) Cuando se halle afectado el ganglio linfático poplíteo, el cuarto se destinará a digestor y el resto de la res a conserva. q) Cuando se presenten dos (2) o más ganglios linfáticos afectados, correspondientes a diferentes cuartos, sin generalización, toda la res será destinada a conserva. r) Cuando en el bazo del cerdo se compruebe un solo nódulo sin otras lesiones tuberculosas en el resto de la res, se comisará el órgano y la res se destinará a conserva. s) En el cerdo, para establecer la existencia de tuberculosis aguda, el pulmón se revisará mediante un corte profundo, longitudinal, partiendo de la cara dorsal. t) En los lechones que tengan afectados solamente uno o dos (2) ganglios de la cabeza, sin otra lesión tuberculosa, se extirparán los ganglios, sin efectuar comiso. Material contaminado 11. 5. 69 Toda res u órgano en contacto con el piso, cuchillos u otros útiles de trabajo infectados por material tuberculoso, será decomisado y destinado a digestor. 7 �GUIA PARA LA INSPECCIÓN EN FAENA DE BOVINOS Metodología de examen La inspección de la res, cabeza, vísceras y respectivos ganglios linfáticos es un procedimiento de carácter obligatorio. Dicha inspección se realiza mediante visualización,y palpación y corte de ganglios viscerales y parietales. En “negrita” corresponden a ganglios de inspección obligatoria, el resto son de reinspección. 8 �Manual ilustrado en Tuberculosis PUNTOS DE CONTROL LINFOGLÁNDULAS Cabeza: 1) Retrofaríngeos lateral y medial 2) Mandibulares 3) Parotideo Vísceras: 1) 2) 3) 4) 5) Traqueobronquial izquierdo y derecho Mediastínico craneal, medio y caudal Mesentéricos craneal y caudal Hepáticos Renal Res: Por medial: Pre-pectoral Ilíaco externo Isquiático Superficial (Retromamario) Lg. de inspección obligatoria Poplíteo Cervical anterior, medio y posterior 1° supraesternal (Gg. del inspector) Supraesternales Lumbares interno Lg. de reinspección Por lateral: Pre-escapular Pre-crural Axilar Poplíteo interno Lg. de inspección obligatoria Lg. de reinspección 9 �CABEZA Ganglio mandibular Ganglio parotídeo 10 �Manual ilustrado en Tuberculosis Ganglios retrofaríngeos VÍSCERAS Exploración pulmón 11 �Ganglio traqueobronquial Aproximación de la imagen anterior 12 �Manual ilustrado en Tuberculosis Ganglio mediastínico anterior Ganglios mediastínicos 13 �Ganglios mesentéricos Ganglios mesentéricos foliados 14 �Manual ilustrado en Tuberculosis Ganglios hepáticos Ganglios hepáticos foliados 15 �RES Abordaje de ganglio pre-escapular Ganglio pre-escapular foliado 16 �Manual ilustrado en Tuberculosis Abordaje ganglio isquiático ganglio isquiático 17 �Aproximación imagen anterior Abordaje ganglio poplíteo 18 �Manual ilustrado en Tuberculosis Ganglio pre-crural foliado Aproximación de la imagen anterior 19 �Ganglio prepectoral Ganglio prepectoral foliado 20 �Manual ilustrado en Tuberculosis Abordaje ganglio ilíaco interno Aproximación de la imagen anterior 21 �Ganglios ilíacos 22 �Manual ilustrado en Tuberculosis INSTRUCTIVO PARA LA RECOLECCIÓN Y REMISIÓN DE MUESTRAS EN FAENA, COMPATIBLES CON TUBERCULOSIS Y/O SOSPECHOSAS El sistema de vigilancia epidemiológica (VE) en faena, es un método alternativo de seguimiento o monitoreo y a la actual implementación en terreno de la tradicional prueba tuberculínica, con líneas de acciones que se traducen en tareas de carácter prácticas, sencillas, accesibles técnicamente y con un bajo costo en su instrumentación. Por lo tanto, se debe incorporar a la VE la información proveniente de los frigoríficos, como una herramienta útil de análisis epidemiológico de la enfermedad, en las distintas regiones del país. Un sistema completo de vigilancia epidemiológica debe abarcar a la totalidad de los animales que se destinen al sacrificio y/o faena normal de cada establecimiento en control, especialmente en los programas regionales en donde las zonas o regiones presentan una tasa de infección baja y por lo tanto, el índice de animales con lesiones compatibles con TBB es bajo y algunos animales afectados pueden no ser detectados en la inspección si la misma no se realiza con la calidad técnica requerida. La eficacia de la inspección sanitaria en faena comienza con la identificación individual de los animales y de aquellos rodeos de donde proceden los animales que se detectan con lesiones compatibles con TBB, permitiendo el rastreo retrospectivo hasta los establecimientos de origen y zonas en contacto, donde se puede efectuar el saneamiento de los mismos. La inspección post mortem de las tropas, en el marco de las actividades de notificación de la enfermedad y su registro, constituye un aporte sustancial de información sobre la presencia o ausencia de la enfermedad y su distribución geográfica entre otras cosas. El examen post mortem es el núcleo de todos los esfuerzos para la obtención de carne higiénica, revistiendo una importancia fundamental, donde el inspector veterinario se auxiliará con ayudantes entrenados en dicha tarea. El Servicio de inspección veterinaria realiza el exámen sistemático de todos los órganos y carnes, con el objeto de detectar lesiones compatibles con TBB. A tal efecto, se sigue una determinada técnica, que es de rigor en todos los casos y que consiste en: a) Observación visual b) Palpación c) Corte de órganos y linfoglándulas, viscerales y parietales d) Exámenes complementarios Puntos críticos de la inspección de faena Se pueden identificar puntos críticos para el examen de TBB de la inspección veterinaria en faena, como ser: n Examen de la cabeza. Se retira de la res y se efectúa el corte foliado de las linfoglándulas retrofaríngeos, submaxilares, parotídeos y tonsilas. n Examen de la cavidad toráxica y pulmones. Se verifica que las vísceras sean depositadas en la mesa de inspección, de forma tal que se pueda mantener la correlación entre éstas, la cabeza y la res. Luego de ejecutar una prolija palpación de todos los órganos, se efectúa el corte foliado de las linfoglándulas bronquiales y mediastínicos anterior y posterior. n Examen de la cavidad abdominal. Se realiza el corte foliado de las linfoglándulas mesentéricos y gastroesplénico, con el fin de detectar lesiones compatibles con la enfermedad y poder saber con ello la vía de transmisión digestiva en la TBB. Asimismo, sobre cada órgano (hígado, bazo, etc.) se efectúan cortes precisos y sistemáticos, con el fin de verificar la existencia de procesos patológicos específico de TBB. Se continúa con el corte foliado de las linfoglándulas hepáticos. 23 �n Examen de carcasa. En el palco de inspección el inspector veterinario realiza una revisión de las medias reses, cabeza y vísceras y está a la expectativa de las novedades que sus auxiliares le comuniquen, como resultados de sus controles. Los inspectores examinan si hay adherencias en las cavidades esplácnicas. Asimismo, realizan incisiones foliadas de las linfoglándulas preescapular, prefemoral, inguinales (mamarios) e ilíacos. En definitiva, la metodología del control en faena forma parte integrante de la política de seguridad alimentaria y de ninguna manera se debe pensar que la misma comienza en el frigorífico, siendo no menos importante la producción primaria, o sea, el establecimiento de origen en donde se implementa el sistema productivo ya sea de carne, leche y/o engorde. Se deberán acordar entre los distintos niveles el envío y la recepción de la información, siendo el más destacado la remisión de la notificación inmediata al productor y veterinario acreditado de la tropa de origen, cuando se detectan en la faena de bovinos, lesiones compatibles con TBB. Las muestras de origen animal que se remiten al laboratorio son ganglios y/o trozos de órganos (pulmón, hígado, bazo, intestinos, etc.). La toma de muestras siempre está a cargo de un profesional veterinario actuante, y las mismas se remitirán para su diagnóstico bacteriológico y diagnóstico histopatológico. Para el diagnóstico bacteriológico: Si el lapso de tiempo entre la toma de muestra y la llegada al laboratorio es corto (hasta 24hs), el material se coloca en un recipiente de vidrio o plástico de boca ancha, con tapa rosca o a presión. Si la cantidad de muestras es numerosa, se pueden colocar las mismas en bolsas de polietileno, convenientemente cerradas, las que se remitirán en una conservadora con refrigerantes. Si el lapso hasta la llegada de la muestra al laboratorio fuera mayor (de 1 a 10 días), se deberán colocar en un recipiente al que se agregará una solución saturada de borato de sodio (3%), previamente hervida y enfriada, en cantidad suficiente para alcanzar 2/3 de la altura del frasco. De esta forma se puede remitir sin refrigerante. Cuando este lapso fuese de uno a varios meses, se congelará la misma (a -20°C) como método de conservación. Refrigerada o a -20 °C 24 �Manual ilustrado en Tuberculosis Para el diagnóstico histopatológico. La/s muestra/s deberán ser enviadas en formaldehído al diez por ciento (10%) en un volumen diez (10) veces mayor que la muestra. Todo material debe ser adecuadamente rotulado (con etiqueta) que indique el número de RENSPA, número de tropa, material remitido (órgano, pool de ganglios, etc.), fecha de recolección y forma de conservación. 25 �Lesiones compatibles con Tuberculosis Bovina. Cabeza Ganglio retrofaríngeo Aproximación imagen anterior 26 �Manual ilustrado en Tuberculosis Ganglio parotídeo Aproximación de la imagen anterior 27 �VÍSCERAS Pulmón Pulmón 28 �Manual ilustrado en Tuberculosis Ganglios bronquiales Ganglio mediastínico 29 �Aproximación de imagen anterior 30 �Manual ilustrado en Tuberculosis Caverna abierta a bronquio y tráquea 31 �Hígado Tuberculosis perlada en serosa, con grandes granulomas en cápsula de Glisson 32 �Manual ilustrado en Tuberculosis Ganglios mesentéricos 33 �Corazón y pericardio Tuberculosis perlada en parrilla costal 34 �Manual ilustrado en Tuberculosis Aproximación imagen anterior Adherencias en tuberculosis perlada 35 �Ganglios ilíacos internos Generalizada 36 �Manual ilustrado en Tuberculosis Cerebro y pulmón de ternero de 3 meses 37 �Riñon ternero de 3 meses 38 �Manual ilustrado en Tuberculosis Diagnósticos diferenciales Abscesos Neoplasias Retículo Pericarditis traumática Leucosis bovina Hidatidosis Neumonías parasitarias Actinobacilosis Ganglio retrofaríngeo y submandibular. Actinobacilosis 39 �Actinobacilosis pulmón Actinobacilosis 40 �Manual ilustrado en Tuberculosis Serosa engrosada y ganglio. Leucosis Ganglio. Leucosis 41 �Intestino con Paratuberculosis Nódulos parasitarios en intestino delgado 42 �Manual ilustrado en Tuberculosis Abscesos en músculos Hígado con abscesos 43 �Fasciola hepática Fasciola hepática 44 �Manual ilustrado en Tuberculosis Fasciola hepática Fasciola hepática 45 �Quiste hidatídico pulmón Quiste hidatídico bazo 46 �Manual ilustrado en Tuberculosis Quiste hidatídidco en bazo abierto 47 �Ganglio.Metástasis adenocarcinoma 48 �49 �50 �51 ��MANUAL ILUSTRADO EN TUBERCULOSIS PARA EL PERSONAL DE LA INSPECCIÓN VETERINARIA EN FRIGORÍFICOS Y MATADEROS BOVINOS � Dublin Core The Dublin Core metadata element set is common to all Omeka records, including items, files, and collections. For more information see, http://dublincore.org/documents/dces/. Title A name given to the resource Publicaciones SENASA Dublin Core The Dublin Core metadata element set is common to all Omeka records, including items, files, and collections. For more information see, http://dublincore.org/documents/dces/. Title A name given to the resource Manual Ilustrado en Tuberculosis para el personal de la Inspeccion Veterinaria en Frigorificos y Mataderos Bovinos Publisher An entity responsible for making the resource available Servicio Nacional de Sanidad y Calidad Agroalimentaria Contributor An entity responsible for making contributions to the resource Programa de Tuberculosis DPS DNSA Language A language of the resource Es Type The nature or genre of the resource Monografía Identifier An unambiguous reference to the resource within a given context B.S.0082 Abstract A summary of the resource. La Tuberculosis bovina (TB) es una enfermedad infecciosa, crónica, zoonótica, producida por el Mycobacterium bovis. Dicha micobacteria conjuntamente con M. tuberculosis, M. africanum, M. microtis, cepa BCG, M.pinnipedii y M. tuberculosis subsp. caprae, pertenecen a lo que se denomina el Complex Mycobacterium tuberculosis. A pesar de que el huésped primario es el bovino, otras especies de interés económico como los cerdos son infectados con M. bovis. Este bacilo causa en el ganado una enfermedad similar a la TBC humana, conduciendo a una baja producción de leche y carne. El control y erradicación de la TB se basa en la prueba tuberculínica, seguida del sacrificio de los animales reactores y acompañada por la vigilancia epidemiológica (VE) en mataderos y frigoríficos, donde la inspección veterinaria dirigida a detectar animales con lesiones ha alcanzado excelente organización y calidad en los países desarrollados. Table Of Contents A list of subunits of the resource. Introducción Reglamento vigente (4238) Guía para la inspección en faena de bovinos Puntos Fotos Cabeza Vísceras Res Instructivo para remisión y recolección de muestras en faena Fotos. Lesiones compatibles con TB Cabeza Vísceras Fotos. Diagnósticos diferenciales Actinobacilosis Leucosis Intestino delgado con paratuberculosis y nódulos parasitarios Abscesos Fasciola hepática Hidatidosis Adenocarcinoma Planillas Planilla de necropsia Remisión de muestras Bibliographic Citation A bibliographic reference for the resource. Recommended practice is to include sufficient bibliographic detail to identify the resource as unambiguously as possible. Armado de cita bibliografica, de utilidad para la persona Tuberculosis https://biblioteca.senasa.gob.ar/files/original/39a4c5c1b8e112aac0d328c47b3e98ce.pdf 49c86bdb166680a25633d0ee34e488d6 PDF Text Text SERVICIO NACIONAL DE SANIDAD ANIMAL Y CALIDAD AGROALIMENTARIA MANUAL SIGSA CAMBIO DE CATEGORIA SISTEMA INTEGRADO DE GESTION DE SANIDAD ANIMAL CAMBIOS DE CATEGORIA Dirección de Control de Gestión y Programas Especiales Mayo 2018 El siguiente documento tiene como finalidad brindarle al usuario una herramienta de capacitación que le facilite el trabajo con el Sistema Integrado de Gestión de Sanidad Animal (SIGSA) �INTRODUCCIÓN OBJETIVOS DEL SISTEMA El objetivo de esta funcionalidad es brindar a los usuarios del sistema la opción de cambiar las categorías de los animales según corresponda. PRESENTACIÓN Y ACCESO AL SISTEMA Para acceder al Sistema de Información de Sanidad Animal del SENASA se debe ingresar utilizando el navegador Mozilla Firefox. �NOVEDADES En el menú Existencias, ultimo ítem encuentra [NOVEDADES], este tipo de novedad permite ajustar la existencia de un Renspa de acuerdo a diferentes parámetros. La carga de las novedades se realiza desde el menú antes mencionado, y seleccionando [NUEVA NOVEDAD]. En el caso de ingresar una novedad a una unidad productiva se debe colocar el número de RENSPA de la misma, luego presionando la tecla [ENTER] aparecen los datos del titular, luego se selecciona el motivo de la novedad (Cambio de categoría) y la fecha en que se debe registrar el mismo. La fecha de registro es la del momento de carga y no se puede modificar. El sistema muestra el stock disponible por categoría. El cambio de categoría se puede realizar a una categoría mayor, se selecciona desde el menú desplegable "Nueva categoría" y la cantidad a modificar. Para finalizar presionar el botón "GUARDAR". �NOVEDAD FINALIZADA Una vez finalizada la novedad se puede imprimir la constancia correspondiente. IMPORTANTE El ejemplo se basa en la especie Bovinos, pero el mismo criterio es para el resto de las especies. Para ingresar a cada una hay que seleccionar la vista desde el botón color verde ubicado a la derecha de la pantalla. �SOPORTE TÉCNICO-MESA DE AYUDA DEL SIGSACONTACTO Para cualquier duda o consulta pueden comunicarse con la mesa de ayuda de SIGSA. Horario de atención telefónica de lunes a viernes de 8 a 16 hs Teléfonos: (011) 4121-5374/5634 Guardias de fin de semana para urgencias de 8 a 20 hs Teléfono Celular ((011)-15-4041-3614). � Dublin Core The Dublin Core metadata element set is common to all Omeka records, including items, files, and collections. For more information see, http://dublincore.org/documents/dces/. Title A name given to the resource Publicaciones SENASA Dublin Core The Dublin Core metadata element set is common to all Omeka records, including items, files, and collections. For more information see, http://dublincore.org/documents/dces/. Title A name given to the resource Manual Sigsa. Cambio de Categoria. Sistema Integrado de Gestion de Sanidad Animal. Cambio de Categoria. Publisher An entity responsible for making the resource available Servicio Nacional de Sanidad y Calidad Agroalimentaria Date A point or period of time associated with an event in the lifecycle of the resource 2018 Contributor An entity responsible for making contributions to the resource Dirección de Control de Gestión y Programas Especiales Language A language of the resource Es Type The nature or genre of the resource Monografía Identifier An unambiguous reference to the resource within a given context B.S.0083 Abstract A summary of the resource. El siguiente documento tiene como finalidad brindarle al usuario una herramienta de capacitación que le facilite el trabajo con el Sistema Integrado de Gestión de Sanidad Animal (SIGSA). El objetivo de esta funcionalidad es brindar a los usuarios del sistema la opción de cambiar las categorías de los animales según corresponda. SISTEMAS INFORMATICOS https://biblioteca.senasa.gob.ar/files/original/e9267bc9eab63dd97a6c87ddc46a3a63.pdf 36938b47e0a7d024c2a92f38c01e7c01 PDF Text Text Servicio Nacional de Sanidad y Calidad Agroalimentaria Enfermedades de las abejas M a n u a l de P r o c e d i m i e n t o s Dr. Marcelo de la Sota Dirección de Luchas Sanitarias Dr. Mariano Bacci Programa de Control de Enfermedades de las Abejas Dirección Nacional de Sanidad Animal Buenos Aires, 2005 Versión actualizada 2020 �SENASA Servicio Nacional de Sanidad y Calidad Agroalimentaria Av. Paseo Colón 367 C1063ACD Ciudad de Buenos Aires - República Argentina. Tel. (054) (011) 4331-6041 y números rotativos. website: http://www.senasa.gov.ar email: apicultura@senasa.gov.ar Coordinación General: Dr. Marcelo Daniel de la Sota (Dirección Nacional de Sanidad Animal) email: mdelasot@senasa.gov.ar Responsables de los contenidos: Dr. Marcelo D. de la Sota (Dirección de Luchas Sanitarias) Dr. Mariano Bacci (Programa de Control de Enfermedades de las Abejas) email: mbacci@senasa.gov.ar Revisión de contenido: Dirección de Epidemiología y Coordinación General de Campo. Edición: Lic. Cristina del Llano (Coordinación de Gestión Técnica) Armado y diagramación: Area de Diseño Gráfico. Buenos Aires, junio de 2005. 2 Servicio Nacional de Sanidad y Calidad Agroalimentaria - SENASA �Autoridades Dr. Jorge Nástor Amaya Presidente Ing. Carlos Casamiquela Vicepresidente Dr. Jorge Horacio Dillon Director Nacional de Sanidad Animal Dr. Gastón Funes Director de Epidemiología Dr. Marcelo Daniel de la Sota Director de Luchas Sanitarias Dr. Josá Luis Antonelli Coordinador General de Campo Dr. Mariano Bacci Programa de Control de Enfermedades de las Abejas Manual de Procedimientos / Enfermedades de las abejas 3 �4 Servicio Nacional de Sanidad y Calidad Agroalimentaria - SENASA �Indice 1. LOQUE AMERICANA ................................................................................................... 11 1.1 Características......................................................................................................... 11 1.2 Presentación ............................................................................................................11 1.3 Patogenia ................................................................................................................11 1.4 Diagnóstico ..............................................................................................................12 1.5 Cuadro clínico ......................................................................................................... 12 1.6 Etiología ..................................................................................................................12 1.7 Proceso epizoótico ....................................................................................................13 1.8 Reservorios de gérmenes ......................................................................................... 13 1.9 Transmisión .............................................................................................................13 1.10 Población hospedadora ............................................................................................. 13 1.11 Prevención y lucha................................................................................................... 13 1.12 Tratamiento .............................................................................................................13 1.12.1 Recuperación del Material Vivo .......................................................................13 a. Trasiego Directo ................................................................................14 b. Trasiego Doble ..................................................................................14 1.12.2 Recuperación del Material Inerte.................................................................... 14 a. Calor - Fuego Directo ........................................................................ 14 b. Calor - Inmersión.............................................................................. 14 c. Calor y Presión ................................................................................. 14 d. Químicos .......................................................................................... 15 e. Irradiación ........................................................................................15 1.12.3 Eliminación del material inerte....................................................................... 15 1.12.4. Tratamiento medicamentoso ........................................................................ 15 1.13. Procedimientos ante la denuncia.................................................................................15 1.14. Procedimiento de atención de focos ........................................................................... 16 1.15. Toma y remisión de muestras ................................................................................... 16 2. LOQUE EUROPEA ....................................................................................................... 17 2.1 Características......................................................................................................... 17 2.2 Presentación ............................................................................................................17 2.3 Diagnóstico ..............................................................................................................17 2.4 Etiología ..................................................................................................................17 2.5 Reservorios de gérmenes ......................................................................................... 17 2.6 Población hospedadora ............................................................................................. 17 2.7 Prevención y lucha....................................................................................................18 2.8 Procedimientos ante denuncias, sospechas o focos ...................................................... 18 3. VARRAOSIS ....................................................................................................... 18 3.1 Características......................................................................................................... 18 3.2 Presentación ............................................................................................................19 3.3 Daños Indirectos ......................................................................................................19 3.4 Etiología ..................................................................................................................19 3.5 Ciclo Biológico ..........................................................................................................20 3.6 Cuadro clínico ......................................................................................................... 20 3.7 Diagnóstico ..............................................................................................................20 Manual de Procedimientos / Enfermedades de las abejas 5 �3.7.1 Prueba del frasco ......................................................................................... 20 3.7.2 Conteo de ácaros caídos mediante piso .......................................................... 21 3.7.3 Conteo de larvas sobre un panal de cría ......................................................... 21 3.7.4 Método químico ........................................................................................... 21 3.8 Difusión .................................................................................................................. 22 3.9 Reservorios de parásitos ........................................................................................... 22 3.10 Transmisión ............................................................................................................ 22 3.11 Población hospedadora ............................................................................................. 22 3.12 Prevención y lucha ................................................................................................... 22 3.13 Tratamiento ............................................................................................................ 22 3.13.1 Control químico............................................................................................ 23 3.13.2 Formas de acción de los acaricidas ................................................................. 23 3.13.3 Formas de administración ............................................................................. 23 3.14 Control de la Varroasis ............................................................................................. 24 3.14.1 Pautas para el Control de la Varroasis ............................................................ 24 3.14.2 Plan estratégico ........................................................................................... 24 3.14.2.a Rotación de los Principios Activos ................................................... 25 3.14.2.b Evitar los Residuos ....................................................................... 25 3.14.2.c Evaluación del Nivel de Infestación ................................................. 26 3.14.2.d Tratamiento Zonal Coordinado ....................................................... 26 3.15 Plan de Curas .......................................................................................................... 26 3.16 Procedimientos ante la denuncia ................................................................................ 28 3.17 Procedimientos ante sospechas ................................................................................. 29 4. NOSEMOSIS ..................................................................................................... 29 4.1. Características ......................................................................................................... 29 4.2. Daños directos......................................................................................................... 29 4.3. Daños Indirectos...................................................................................................... 29 4.4. Etiología ................................................................................................................. 30 4.5. Población susceptible................................................................................................ 30 4.6. Patogenia ................................................................................................................ 30 4.7. Transmisión ............................................................................................................ 31 4.8. Diagnóstico ............................................................................................................. 31 4.9. Tratamiento y Control .............................................................................................. 32 4.10. Prevención .............................................................................................................. 32 4.11. Procedimiento ante la sospecha ................................................................................. 33 5. ASCOPHAEROSIS ............................................................................................ 33 5.1. Características ......................................................................................................... 33 5.2. Presentación ............................................................................................................ 33 5.3. Etiología ................................................................................................................. 33 5.4. Patogenia ................................................................................................................ 34 5.5. Factores predisponentes ........................................................................................... 34 5.6. Cuadro clínico .......................................................................................................... 34 5.7. Diagnóstico ............................................................................................................. 35 5.8. Tratamiento y prevención ......................................................................................... 35 6. APIARIOS ABANDONADOS .............................................................................. 36 6 Servicio Nacional de Sanidad y Calidad Agroalimentaria - SENASA �7. ENFERMEDADES EXOTICAS...................................................................................... 36 7.1 Introducción.............................................................................................................36 7.2 Procedimiento ante la sospecha o presencia ............................................................... 37 7.3 Infestación por Tropilaelaps clareae ............................................................................37 7.3.1 Características generales y distribución .......................................................... 37 7.3.2 Agente etiológico ......................................................................................... 37 7.3.3 Ciclo biológico ..............................................................................................38 7.3.4 Equilibrio Huésped-Parásito........................................................................... 38 7.3.5 Signos clínicos ..............................................................................................38 7.3.6 Transmisión .................................................................................................38 7.3.7. Diagnóstico ................................................................................................. 7.3.7.a Diagnóstico clínico......................................................................... 7.3.7.b Diagnóstico químico ...................................................................... 7.3.7.c Diagnóstico diferencial ................................................................... 7.4 38 38 39 39 7.3.8 Toma de muestras ........................................................................................39 7.3.9 Tratamiento .................................................................................................39 7.3.9.a Manejo sanitario ........................................................................... 39 7.3.9.b Control químico ........................................................................... 39 Aethina Tumida Murray (Pequeño escarabajo de las colmenas).......................................39 7.4.1 Características generales y distribución .......................................................... 39 7.4.2 Ciclo biológico ..............................................................................................39 7.4.3 Diagnóstico ................................................................................................. 40 7.4.4 Daños......................................................................................................... 40 7.4.5 Toma de muestras ........................................................................................40 7.4.6 Transmisión .................................................................................................40 7.4.7 Control ....................................................................................................... 40 7.4.8 Medidas preventivas .....................................................................................40 INFORMACION ADICIONAL ................................................................................... 40 Manual de Procedimientos / Enfermedades de las abejas 7 �8 Servicio Nacional de Sanidad y Calidad Agroalimentaria - SENASA �Prefacio El presente Manual fue redactado por el responsable del Programa de Control de Enfermedades de las Abejas, Dr. Mariano Bacci, de la Dirección de Luchas Sanitarias, a cargo del Dr. Marcelo de la Sota, con la colaboración de la Comisión Nacional de Sanidad Apícola (CONASA). Cuenta con la revisión de la Dirección de Epidemiología y la Coordinación General de Campo, todas dependencias de la Dirección Nacional de Sanidad Animal del Servicio Nacional de Sanidad y Calidad Agroalimentaria (SENASA). El presente documento se dirige principalmente a los agentes sanitarios acreditados (Inspector Asesor Sanitario Apícola), veterinarios de las Oficinas Locales de la Dirección Nacional de Sanidad Animal, profesionales privados, sectores interesados y a las autoridades provinciales, municipales y nacionales locales; por tanto, se centra en aspectos operativos del Programa Nacional de Control de Enfermedades de las Abejas. Manual de Procedimientos / Enfermedades de las abejas 9 �10 Servicio Nacional de Sanidad y Calidad Agroalimentaria - SENASA �Manu al d e Pr oc e d imie ntos Enfermedades de las Abejas Policía Sanitaria Las enfermedades de las abejas que se describen se encuentran incorporadas al grupo de enfermedades a las que se refiere el Artículo 4º y el 6º del Reglamento General de Policía Sanitaria, aprobado por Decreto de fecha 8 de noviembre de 1906, reglamentario de la Ley Nº 3959 de Policía Sanitaria de los Animales por Resolución de la Secretaría de Agricultura, Ganadería, Pesca y Alimentación Nº 103 del 14 de octubre de 1998 que incluye a las enfermedades de las abejas denominadas Varroasis, Loque Europea y Nosemosis y la Nº 383 del 16 de agosto de 1990 que incorpora a la Loque Americana. Al mismo tiempo por Resolución SENASA Nº 422/2003 se incluyen la totalidad de las enfermedades apícolas consideradas por la Organización Mundial de la Sanidad Animal (OIE), por lo tanto son de aplicación para las mismas las regulaciones previstas en la Ley Nº 3959 y su Decreto reglamentario, entre las que se incluye la denuncia obligatoria, interdicción preventiva ante la presencia de casos, etc. 1. Loque Americana 1.1 Características La loque americana es una enfermedad de las crías de las abejas cuyo agente causal es el Paenibacillus larvae. Los síntomas principales son la coloración pardusca creciente y el aspecto pegajoso de las larvas situadas en el interior de las celdas, mostrando estas últimas los opérculos hundidos y porosos, de aspecto grasoso o conteniendo restos resecos de larvas: «escamas». La enfermedad no supone amenaza para la salud humana. 1.2 Presentación Fue detectada por primera vez en el país en el año 1989. Son muy pocos los países en el mundo reconocidos libres de esta enfermedad ante la OIE. 1.3 Patogenia Las esporas ingresan en la colmena por medio de abejas pecoreadoras que las traen en sus buches melarios, abejas pilladoras de colmenas infectadas, herramientas del apicultor, por la introducción de panales con cría infectados, alimentación con miel contaminada y cualquier intercambio de material proveniente de colmenas enfermas. Una vez dentro de la colmena, las esporas son llevadas a la cría por medio de las abejas nodrizas que las depositan junto con el alimento en las celdillas. Las larvas ingieren estas esporas que adoptan sus formas vegetativas, dadas las condiciones adecuadas que tiene el intestino, como pH y tenor de oxígeno. Cuando la larva deja de ser tal y alcanza su estado de prepupa, las bacterias que aún no fueron eliminadas por las heces, migran introduciéndose, gracias a sus flagelos, en las células endoteliales del intestino, llegan a la hemolinfa y se reproducen hasta provocar la muerte en este estado o en uno posterior (pupa). Manual de Procedimientos / Enfermedades de las abejas 11 �Si bien no se ha comprobado con exactitud la cantidad de esporas necesarias para provocar la enfermedad en una colonia, algunos autores consideran que para una larva de 48 hs de vida, son necesarias miles de esporas, mientras que para una larva de 24 hs, alcanza con solo diez o menos esporas. Hay publicaciones que indican que debe considerarse como dosis infectante a una concentración de 50.000 esporas por litro de miel. 1.4 Diagnóstico Se sospechará de la existencia de loque americana cuando se aprecien alteraciones en las larvas y aparezcan masas filamentosas y costras oscuras o negruzcas en el piso de las celdas de cría. El diagnóstico puede confirmarse en laboratorio. La técnica más utilizada en el país es la técnica de microscopía mediante cultivo bacteriológico. Existen medios de cultivo semi-específicos para el desarrollo de esporas de P. larvae. También se utilizan para el diagnóstico algunas tinciones tradicionales como Gram, Giemsa, Raquette, azul de metileno. Pueden utilizarse antisueros específicos de conejo para la precipitación o aglutinación, bacteriófagos específicos y el test de IF y la técnica molecular del PCR. 1.5 Cuadro clínico Los panales de cría de las colmenas afectadas presentan características particulares de la enfermedad. La cría es salteada y los opérculos se ven hundidos y roídos (por acción de las abejas limpiadoras que intentan sacar las crías ya muertas), en otras celdas se pueden observar las prepupas que han perdido su posición natural, se ven estiradas y sin brillo, el color va pasando del blanco brillante original a un amarillo pálido para convertirse más adelante en un material viscoso, pegajoso y amorfo, de color marrón. Los opérculos pierden su color café característico para tornarse castaño oscuros, casi negros. Transcurridos unos 10 ó 15 días desde la muerte de la larva, aparece la característica patognomónica de la enfermedad, un material viscoso que al introducir un palito dentro de la celda que lo contiene y luego al retirarlo, se estira hasta una longitud que supera los 2,5 cm, de ahí el nombre que se le ha dado a este material: “chicle”. Más adelante este “chicle” se seca y se fija fuertemente al fondo de la celda. En este momento se lo denomina “escama”. Cuando las abejas intentan limpiar las celdas, no hacen más que reiniciar el ciclo de la enfermedad, llevando estas esporas de una celda a otra. Otra característica de las colmenas infectadas es el olor nauseabundo que despiden. 1.6 Etiología El agente causal es una bacteria denominada Paenibacillus larvae, bacilo Gram+ esporulado. Sus formas vegetativas miden entre 2,3 a 5 micrómetros de largo por 0,5 a 0,6 micrómetros de ancho, móviles mediante flagelos perítricos. Sus esporas son ovaladas, miden 1,3- 1,5 por 0,6 –0,7 micrómetros y pueden visualizarse al microscopio sus movimientos brownianos, mediante la técnica de gota pendiente (Hanging drop) modificada, característica que diferencia a las esporas de esta especie de otros bacilos esporulados que afectan a las abejas. Sólo las esporas son infecciosas. Pese a la alta virulencia que de ordinario muestran para las larvas de abejas y a la gran infecciosidad, no siempre enferma la totalidad de la colonia. Mientras que la forma vegetativa es relativamente sensible a la desecación y a la luz solar, los esporos pueden sobrevivir en panales con crías putrefactas y restos de larvas durante décadas (se han desarrollado esporos al cabo de 67 años); también en la miel perduran durante años. 12 Servicio Nacional de Sanidad y Calidad Agroalimentaria - SENASA �1.7 Proceso epizoótico La colmena cuenta con ciertas defensas, por lo que, para que se produzca la afección de las larvas por la loque americana, existen circunstancias distintas dependientes de la vitalidad de la población afectada, del inóculo (cantidad de esporas) y de ciertas condiciones externas. 1.8 Reservorios de gérmenes Son las colmenas y panales con la enfermedad latente o clínicamente manifiesta (chicles, escamas, larvas muertas). Emplazamientos abandonados y olvidados pueden ser causa de repetidos brotes de la enfermedad. También pueden serlo la miel y otros productos apícolas. 1.9 Transmisión Los reservorios de esporas son las principales fuentes de contagio. Su importancia varía de acuerdo con la fase de la enfermedad, el tipo de manejo con las abejas y las particularidades locales y regionales. El germen ingresa en forma de esporas por vía digestiva a las larvas susceptibles, traídas por las abejas nodrizas. Al limpiar las celdas, las abejas transmiten esporas a nuevas crías. También pueden transmitirse por miel almacenada y con el polen conservado con miel contaminada; la difusión se produce también entre colmenas y emplazamientos por el intercambio frecuente de abejas (deriva, abejas desorientadas en su vuelo, abejas pilladoras, etc.). Los enjambres deben tratarse siempre como material sospechoso por lo que se tomarán los recaudos correspondientes antes de incorporarlos al colmenar. También el propio apicultor disemina la enfermedad al trabajar con colmenas, panales y utensilios contaminados, cuando pretende aumentar la población con crías infectadas, al fusionar núcleos de abejas enfermas, al transportarlas y al hacerse cargo de enjambres desconocidos, etc. 1.10 Población hospedadora Son susceptibles las larvas de abejas, sobre todo las de 24 hs. La dosis infectante de esporas de P. larvae varía de acuerdo con la constitución de la colonia y la edad de la larva hospedadora. Se producen infecciones en larvas de 24 horas de vida con 10-25 esporos (30-50%). Mientras que larvas de 48 hs. necesitan miles de esporas para enfermar. Las abejas cuentan con varios mecanismos de defensa (seudorresistencia). La acción de criba ejercida por los embudos de válvula para los esporos y sus formas germinales eliminan gran cantidad de esporos de la miel; también se elimina material infeccioso cuando las larvas jóvenes infectadas son destruidas por las abejas, así como los residuos de larvas, antes de la multiplicación del germen (comportamiento de limpieza). 1.11 Prevención y lucha Para evitar el ingreso de esporas son necesarios el control escrupuloso y continuado del estado de salud de las abejas y sus crías. En el Código Zoosanitario de la OIE se fija el plazo de incubación en 15 días. La erradicación de la enfermedad resulta prácticamente imposible por razones económicas y organiza tivas y debido a su frecuente presentación encubierta (enjambres perdidos y naturales). Las medidas se concentran en proteger las zonas libres de loque, en identificar cuanto antes la enfermedad y en el correcto saneamiento del material infectado. 1.12 Tratamiento 1.12.1 Recuperación del Material Vivo Una vez que evaluamos la conveniencia de recuperar el material vivo, debemos decidir mediante qué método lo haremos. Manual de Procedimientos / Enfermedades de las abejas 13 �Existen dos métodos para este procedimiento: Trasiego Directo o Cepillado y Trasiego Doble o Paqueteado. Elegiremos uno u otro de acuerdo a la época del año, posibilidad de recurrencia, disponibilidad de recursos y practicidad del método. También debe evaluarse la posibilidad de aplicar el mejor tratamiento de acuerdo a los materiales disponibles por el apicultor que estamos asesorando. Se debe entonces proceder de la mejor manera posible pero dejando bien claro cuál es el procedimiento más efectivo. a. Trasiego Directo Lo primero que debe hacerse es encontrar a la reina y mantenerla enjaulada fuera de la colonia. Luego debemos cepillar o sacudir las abejas de la colmena enferma dentro de una nueva alza previamente esterilizada o bien, de primer uso. Antes de iniciar la sacudida podemos rociar con agua a las abejas para facilitar el procedimiento y evitar que vuelen demasiado. Una vez sacudidas todas las abejas, incorporamos panales nuevos con sus láminas de cera estampada, un alimentador con jarabe, liberamos la reina, administramos o no, el tratamiento medicamentoso y protegemos con un «poncho» (pedazo de nylon que se coloca encima de los marcos y que sirve para recubrir la colmena y protegerla del frío). No es conveniente volver a abrir la colmena hasta los cinco o siete días posteriores. b. Trasiego Doble También se lo llama paqueteado. El método consiste en trasegar todas las abejas de la colmena a un portapaquete (caja pequeña con una abertura superior por donde se introducen las abejas). Si la cantidad de abejas trasegadas no alcanzan a pesar entre 1,2 kg a 1,5 kg, se debe reforzar con abejas de otras colonias. Previo al encierro de las abejas se debe encontrar a la reina y enjaularla. Este paquete se deja bien cerrado en un lugar oscuro y ventilado durante 48 hs, luego se abre y se introduce en una colmena nueva con panales nuevos con sus láminas de cera estampada y se deja abierto para que las abejas liberen a la reina y se vayan liberando también ellas por sí solas. También se aplica el tratamiento medicamentoso y se cubre con un «poncho». Este último método si bien es más trabajoso, más caro y es necesario más material y tiempo disponible, es el más efectivo en cuanto a la recurrencia de la enfermedad. Se ha comprobado que realizando un trasiego directo hay recurrencia del 20% mientras que por medio del paqueteado, se reduce al 3%. 1.12.2 Recuperación del Material Inerte Hay varios métodos para este procedimiento. Pueden clasificarse de la siguiente manera. a. Calor - Fuego Directo Pueden flamearse alzas, pisos y techos por medio de un soplete. El material debe quedar con aspecto corchoso en un espesor de aprox. 0,5 cm. b. Calor - Inmersión Puede introducirse el material de madera en bateas con cera microcristalina ó parafina de grado alimentario a una temperatura de 130-160ºC. Se deja actuar inmerso durante al menos 10 minutos. Este es uno de los métodos de mayor eficacia en la eliminación de esporos, siendo relativamente práctico y barato. c. Calor y Presión Para este método pueden utilizarse autoclaves espaciosos. Se esteriliza a una temperatura a 121ºC y con una presión de 2 atmósferas, durante 30 minutos. 14 Servicio Nacional de Sanidad y Calidad Agroalimentaria - SENASA �d. Químicos No son muchos los productos químicos capaces de destruir a las esporas de Paenibacillus larvae. Sin embargo la soda cáustica al 10% sumergido durante 10 minutos lo logra en el material de madera. También el óxido de etileno, aunque su uso en muy engorroso, peligroso y caro por lo que no se lo recomienda. El Hipoclorito de Sodio al 1%, durante 15 minutos, resulta efectivo sobre superficies no porosas. e. Irradiación Es el método más efectivo, además permite la esterilización de los panales, inclusive aquellos con larvas muertas por la enfermedad en sus estadios de chicle o escama. Consiste en exponer al material a una fuente de Cobalto 60, durante un cierto tiempo y una determinada dosis, de manera que los rayos gamma produzcan la esterilización del medio y la inhibición de la actividad bacteriana. 1.12.3 Eliminación del material inerte Hay casos en los que no es conveniente conservar el material. Hay que proceder de la siguiente manera: debemos realizar un pozo de una circunferencia y profundidad considerables de acuerdo al material que vamos a quemar. Con una esponja o un trapo embebido en nafta o algún otro combustible, eliminaremos las abejas, se quemarán todos los panales de la colmena afectada, tomando las precauciones necesarias para no derramar la miel, luego se echarán al fuego los techos, entretapas, alzas y pisos. Una vez incinerados, se tapa el pozo para evitar el pillaje de los restos de cera y miel que pudieran quedar. Se debe realizar el procedimiento cuando la mayor cantidad posible de abejas está dentro de la colmena. 1.12.4. Tratamiento medicamentoso A partir del año 2017 no se dispone de productos veterinarios autorizados para uso en apicultura para el tratamiento de las enfermedades bacterianas de las abejas. Los antibióticos que estuvieron aprobados para uso en apicultura, no tienen la capacidad de destruir a los esporos del Paenibacillus larvae y dejan latente el potencial infeccioso de las colonias. Sólo destruyen su forma vegetativa. De ahí la importancia del tratamiento integral del material vivo e inerte sin el uso de antibióticos. El riesgo que implica el uso de antibióticos a las colmenas se evidencia en residuos de las drogas utilizadas en la cera, miel, polen y propóleos, afectando potencialmente la salud de los consumidores, y el perjuicio que acarrea a nuestro país la comercialización de dichos productos. 1.13. Procedimientos ante la denuncia Las medidas se concentran en proteger las zonas libres de loque, en identificar cuanto antes la enfermedad y en el correcto saneamiento del material infectado. Al recibir una denuncia se debe intervenir de inmediato el establecimiento que aloja al colmenar. Manual de Procedimientos / Enfermedades de las abejas 15 �Este queda bajo vigilancia oficial y se procede a realizar la inspección correspondiente. En caso de ser necesario, se convoca a un Inspector Sanitario Apícola acreditado por SENASA como apoyo técnico del veterinario oficial. El colmenar afectado no podrá movilizarse hasta tanto finalicen las correspondientes acciones de saneamiento y transcurra el tiempo necesario para asegurarse de la no recurrencia de la enfermedad. Se llenará el Acta de Constatación detallando lo acontecido durante la inspección. Se deben tomar muestras de material sospechoso, en este caso, se tomará un trozo de panal de 5 cm x 20 cm, o bien un panal entero y se remitirá al Laboratorio Central de SENASA o al laboratorio que el Programa de Control de Enfermedades de las Abejas haya autorizado a ingresar a la red de Vigilancia Apícola, junto con la planilla de envío de muestras correspondiente. (Ver 1.15) Se debe aislar preventivamente el colmenar, evitando el tránsito de personas, precintando las colmenas e informando a los apicultores para que no salga ningún material del asentamiento. Una vez confirmado el diagnóstico, se establecerá en torno al emplazamiento infectado un círculo de aislamiento de 1,5 km de radio, en el cual deben examinarse todas las colmenas y existencias de panales. Para disminuir el riesgo de difusión de la enfermedad, se utilizará en las actuaciones ropas protectoras y utensilios propios exclusivamente del establecimiento investigado o se asegurará su posterior esterilizado. El propio apicultor colaborará en el control de sus panales, quien también evitará arrojar descuidadamente material infectado. Se cerciorará de que se cumplen en forma adecuada las medidas de desinfección y tratará de evitar todas aquellas circunstancias que contribuyan a extender la enfer medad, como por ejemplo, evitar pillaje, no retirar del lugar material infectado que no fue destruido, dejar abiertas las colmenas vacías y no consentir las deficiencias higiénicas. 1.14. Procedimiento de atención de focos Si la zona está reconocida libre de la enfermedad, se destruirá todo el material afectado incluyendo abejas y material inerte (Ver Punto 1.12.3) Si la enfermedad está presente en la región se evaluará qué acciones seguir en función del alcance de la patología dentro del colmenar (cantidad de colmenas afectadas sobre el total de colmenas) y la gravedad de la misma en las colonias afectadas. Otro de los parámetros a considerar es la disponibilidad de material inerte de recambio con el que se cuenta en el lugar. A partir de entonces se podrá tomar la decisión de recuperar el material vivo e inerte y de aplicar tratamiento medicamentoso o no. (Ver Punto 1.12) Se considera que el brote de enfermedad ha desaparecido cuando en los controles de resultados efectuados al cabo de 6-8 semanas y en la primavera u otoño siguiente en la región problema, ninguna colmena exhibe manifestaciones de la enfermedad. 1.15. Toma y remisión de muestras Como se mencionó anteriormente, en todos los casos de sospecha se deberán tomar muestras y remitirlas al laboratorio central de SENASA o al laboratorio que el Programa de Control de Enfermedades de las Abejas haya autorizado a ingresar a la red de Vigilancia Apícola. Se enviará un trozo de panal sospechoso de 5 cm x 20 cm, envuelto en papel absorbente y luego en una caja de cartón, o bien el panal entero para permitir al laboratorista tener una visión completa de las características del panal. Se evitará utilizar plásticos, polietileno y nylon para contener la muestra, pues estos materiales condensan la humedad y favorecen a la proliferación de colonias de hongos que puedan alterar la muestra. 16 Servicio Nacional de Sanidad y Calidad Agroalimentaria - SENASA �Junto a la muestra se debe enviar el formulario correspondiente al envío de muestras, firmado por el veterinario de SENASA y/o el Inspector Sanitario Apícola que recolectó la muestra, y todos los datos solicitados en cuanto a la región y una breve reseña de los síntomas observados en las colmenas. Hasta tener el resultado laboratorial, todo el material sospechoso y el acompañante permanecerán en el establecimiento. 2. Loque Europea 2.1 Características También se la llama Loque benigna. Es una enfermedad bacteriana de las larvas de abejas, muy dependiente de las condiciones ambientales y el desarrollo del nido de cría. En el suelo de las celdas las larvas afectadas mueren, luego se forman costras castañas, al principio esponjosas, para luego desecarse y adoptar textura viscosa-escamosa, poco adheridas, que van cambiando de color, del blanco brillante normal hasta castaño amarillento y pardo negruzco. Cuando la infección es leve y las poblaciones tienen buena vitalidad, pueden soportar la enfermedad hasta su autocuración. Es excepcional la pérdida de estas poblaciones. La enfermedad no supone ninguna amenaza para la salud del hombre. 2.2 Presentación La loque europea (o benigna) está ampliamente difundida en casi todo el mundo. En el país ha dismi nuido la frecuencia de su aparición, pero en cualquier punto del territorio puede presentarse. 2.3 Diagnóstico Surgirá la sospecha de esta enfermedad cuando se observen panales con cría salteada, larvas redondas o estiradas muertas, por lo general antes del operculado de las celdas. El diagnóstico se corrobora en laboratorio identificando el germen causal en los residuos de las larvas afectadas. Para la diferenciación con otras enfermedades de las larvas, pueden utilizarse también antisueros específicos, bacteriófagos y el test de IF. 2.4 Etiología El agente causal de la loque europea, Melissococcus pluton White, a diferencia de la bacteria responsable de la Loque americana, no tiene la capacidad de esporular. Secundariamente intervienen otros agentes bacterianos, entre otros, el Paenibacilus alvei y Enterococcus fecalis. 2.5 Reservorios de gérmenes Gracias a la imposibilidad del Melissococcus pluton White para esporular, el material infeccioso no perdura en el material apícola inerte. Los panales de cría con larvas afectadas representan el principal reservorio. Las abejas adultas de las colmenas afectadas actúan como transmisoras de la enfermedad. 2.6 Población hospedadora Son receptoras las crías de abeja, que por lo general mueren arrolladas en las celdas antes de ser operculadas. Factores de estrés, como por ejemplo manejo y cuidados deficientes, la falta de polen o la acción de sustancias nocivas, desequilibrios entre nodrizas y adultas, traslados de colmenas, etc. pueden provocar brotes de la enfermedad. Manual de Procedimientos / Enfermedades de las abejas 17 �2.7 Prevención y lucha Las medidas a adoptar se asemejan en objetivos y realización a las citadas al tratar loque americana. Las medidas para la protección de territorios limpios, así como las requeridas en caso de brotes de loque europea, se corresponden en líneas generales con las de la loque americana, si bien la benignidad de la loque europea permite limitar el aislamiento a sólo el establecimiento afectado. De acuerdo con la información proporcionada por la OIE referente al tiempo de incubación, las poblaciones sospechosas deben someterse a cuarentenas superiores a 15 días. Mediante medidas de manejo apícola puede estimularse el comportamiento de limpieza de las abejas y la selección de líneas genéticas sobre la base de esta característica. Por lo demás, basta corrientemente con eliminar los panales afectados, y en los casos más graves, con practicar el método del trasiego o paqueteado. Si bien los antibióticos son eficaces contra el agente de la loque europea, se recomienda establecer medidas preventivas de manejo más que la utilización de los mismos. Las medidas en territorios con la enfermedad enzoótica coinciden en buena medida con las de la loque americana, aun cuando no es preciso por lo común crear ningún círculo de aislamiento en torno al establecimiento afectado, con lo que los movimientos de abejas con la vecindad resultan menos limitados. 2.8 Procedimientos ante denuncias, sospechas o focos Debido a que se trata de una enfermedad de escasa importancia en pérdidas económicas, difícilmente es capaz de provocar la muerte de la colonia, que la bacteria que la causa no es capaz de esporular y por lo tanto no representa mayores riesgos de dispersión, no se trata de una enfermedad cuya denuncia merezca atención inmediata. Las medidas para la protección de territorios limpios, así como las requeridas en caso de brotes de loque europea, se corresponden en líneas generales con las de la loque americana, si bien la benignidad de la loque europea permite limitar el aislamiento a sólo el establecimiento afectado. 3. Varroosis 3.1 Características Se trata de una enfermedad parasitaria provocada por un ácaro llamado Varroa destructor. En países con apicultura desarrollada como es el caso de la Argentina, se considera que es la enfermedad más grave junto a loque americana. Los ácaros se alimentan de la hemolinfa de las abejas, se fijan a los esternitos de las abejas adultas, perforan la cutícula y las debilitan afectando su comportamiento y provocando desorientación en el vuelo. También afecta a las crías. Además puede transmitir o crear las condiciones adecuadas para la aparición de otras enfermedades bacterianas, fúngicas o virales. En colonias de abejas asiáticas la cantidad de ácaros adultos varía de 0 a 700 individuos y se genera un equilibrio donde coexisten el hospedador y el parásito. Además, las varroas no llega a provocar un gran daño debido a que las abejas toleran y logran limpiar las varroas de la cría y de ellas mismas. El ciclo reproductivo se lleva a cabo en las celdas de zángano. En cambio, la interacción entre varroa y Apis mellifera no se encuentra en equilibrio. En este tipo de abejas, tiene la capacidad de reproducirse tanto en celdas de zánganos como de obreras, la reproducción es mucho mayor y puede causar la muerte de la colonia. 18 Servicio Nacional de Sanidad y Calidad Agroalimentaria - SENASA �3.2 Presentación La descripción de Varroa sobre Apis cerana data de 1904. Recién en 1963 se detecta a este parásito sobre abejas de la especie A. mellifera. A partir de este momento, por causa del intercambio comercial entre países de un continente y otro, llega a distribuirse por todo el mundo. En la Argentina se la detecta por primera vez en el año 1976 en colmenas de Laguna Blanca, en la provincia de Formosa. En el transcurso de los dos años posteriores, la varroosis se diseminó por todo el país. La intensidad de la dispersión de esta enfermedad hace que hoy sea considerada como enfermedad endémica en nuestro país. 3.3 Daños Indirectos Además de correr el riesgo de contaminación de los productos de la colmena a raíz de los tratamientos para el control del ácaro, es posible que las varroas transmitan debido a su mecanismo de succión, enfermedades de tipo viral, aunque de cierta manera también interviene en enfermedades micóticas y bacterianas. También existe evidencia de que el ácaro es capaz de transportar esporas fúngicas del agente causal de la cría yesificada, Ascophaera apis en su superficie y así diseminarlas por la colmena. Sin embargo, esta circunstancia desde el punto de vista epidemiológico, no es significativa, pues los cuerpos fructíferos se encuentran presenten todo el tiempo en la colmena esperando la aparición de factores predisponentes para desarrollar la enfermedad. Es aquí donde se cree que varroa juega un papel importante ya que produce el debilitamiento de la colmena y el consecuente desequilibrio que favorece la aparición de momias micóticas. En cuanto a las enfermedades bacterianas, se destaca la capacidad del ácaro para transportar esporas de Paenibacillus larvae. Aunque no interviene en la patogenia de la enfermedad. Debido a la forma de alimentación del ácaro, perforando la cutícula de las abejas y succionando su hemolinfa, se lo considera un agente ideal para la inoculación de partículas virales. Otro de los daños indirectos que pueden mencionarse es la acción de los pesticidas sobre colonias infestadas por varroosis. La varroa, al alimentarse del adulto, disminuye la concentración de proteínas y ácidos grasos en hemolinfa, hecho que hace aumentar la susceptibilidad de las abejas a las dosis de pesticidas que en otras circunstancias serían inocuas, y que provoque en presencia de una alta tasa de infestación, la muerte de la colonia. 3.4 Etiología Varroa destructor es un ácaro que presenta dimorfismo sexual. Esto quiere decir que la hembra y el macho se diferencian en forma y tamaño. Las hembras adultas tienen la forma de un escudo oval, el cuerpo deprimido dorsoventralmente, son de color pardo rojizo y de un tamaño que varía aproximadamente entre 1,2 mm de largo por 1,5 mm de ancho. Su cuerpo está recubierto de vellos delgados que cumplen la función de palpación y les permiten fijarse a las abejas adultas durante el vuelo. Tienen cuatro pares de patas gruesas y cortas cuyos tarsos finalizan con unas ventosas que les permite fijarse a superficies planas. Su aparato bucal está adaptado para picar y chupar. El período de vida de una varroa puede ser de algunos días o de varios meses, dependiendo de la temperatura, la humedad y de la actividad reproductiva. Los machos son más pequeños, miden de 0,4 a 0,8 mm y presentan un color blanquecino grisáceo o amarillento. Pueden encontrarse solamente en las celdas de las crías. Los machos tienen sus quelíceros adaptados para la transferencia de esperma, por lo que no pueden alimentarse. Manual de Procedimientos / Enfermedades de las abejas 19 �3.5 Ciclo Biológico Cuando una hembra fecundada se desprende de una abeja, se dirige inmediatamente a una celda próxima a opercular (aparentemente el ácaro detecta algunos componentes de la hormona del operculado que segregan las larvas -9 días en la obrera y 10 días en los zánganos-). Este momento coincide con el 5º estadío del desarrollo larval (L5). La hembra fértil inicia el ciclo al entrar en la celda. Puede entrar una sola o con otras hembras. Una vez que alcanza el interior de la celda, se aloja en el alimento de la larva y se mantiene inmóvil hasta que ésta lo consuma. Luego, succiona la hemolinfa de la pupa y comienza la postura de un primer huevo. Cuando esto sucede ya han transcurrido entre 60 a 70 horas desde su ingreso a la celda. Este primer huevo dará origen a un ácaro macho; 30 hs. más tarde pondrá otro huevo que dará origen a un varroa hembra, a partir de este momento continuará su postura cada 30 hs. con huevos que originarán varroas hembra. Una vez que el macho alcanza la madurez sexual, fecunda a sus hermanas aún sexualmente inmaduras quienes conservan el esperma en su espermateca. Luego de la cópula, el macho muere al igual que las hembras inmaduras una vez que nace la abeja adulta. El ciclo de huevo a adulto es en la hembra de 8 a 9 días mientras que en el macho es de 6 a 7 días. Una hembra de varroa fecundada puede poner hasta 5 huevos en las celdas de obreras y hasta 7 en las de zánganos. La cantidad de ovoposiciones dependerá del tiempo que necesita la larva de la abeja para completar su ciclo y llegar a adulta. Es por ello que la cantidad de huevos varia de acuerdo a la especie de abeja y al tipo de individuo (zángano, obrera, reina). 3.6 Cuadro clínico Cuando los niveles de infestación son bajos, no hay manifestación evidente de la enfermedad. Cuando hay alto grado de parasitismo pueden verse abejas con alas y patas deformadas y el abdomen reducido. En los marcos del nido de cría pueden verse los opérculos roídos y cría salteada. Si una colmena entra a la invernada con niveles de infestación superiores al 5%, es muy probable que esa colonia muera, pues en otoño, se produce una mayor intensidad del parasitismo al achicarse la colonia. Muchas colonias en esta situación suelen fugarse de la colmena en pleno invierno dejando un puñado de abejas y las reservas. Los daños que ocasionan pueden clasificarse como directos e indirectos. Entre los primeros, si no se produce el enjambre o directamente la muerte de la colonia, se puede mencionar una reducción del peso de las abejas y reducción del tiempo de vida. Tienen más posibilidades de desorientarse al regresar a la colmena, se reduce las proteínas y los cuerpos grasos de la hemolinfa, por lo que aumenta la susceptibilidad de ciertos tóxicos. Si estuvieron parasitadas durante su desarrollo en la celda, además de nacer con deformidades y de menor tamaño, la glándula hipofaringea puede sufrir hipoplasia. En los casos de alto parasitismo, la abeja no logra nacer y permanece muerta en la celda. Dentro de los daños indirectos, puede mencionarse la posibilidad de contaminación de la miel y otros productos de las colmenas por medio de los acaricidas de síntesis. Además, como ya fuemencionado, puede transmitir enfermedades de tipo viral. 3.7 Diagnóstico Hoy es prácticamente imposible encontrar colmenas en las regiones de mayor producción que no tengan varroas parasitando las colonias. Es por ello que los métodos de diagnóstico se orientan a determinar de manera cuantitativa la presencia del parásito, estimando los porcentajes de infestación. 3.7.1 Prueba del frasco Es el método más utilizado para determinar el porcentaje de infestación de los apiarios. Se debe tener en cuenta que el ácaro presenta al igual que muchos ectoparásitos la característica 20 Servicio Nacional de Sanidad y Calidad Agroalimentaria - SENASA �de agregación. Esto quiere decir que tendremos áreas dentro de la colmena con gran cantidad de ácaros y otras áreas libres de estos. Por lo que un grupo de abejas adultas tendrá un alto nivel de parasitismo y otro grupo niveles de infestación ínfimos. Esto puede corregirse tomando, en el momento de la recolección de la muestra, unas 300 abejas de ambas caras de tres panales diferentes de cada colmena. De esta manera nos aseguramos una muestra representativa. Se deben muestrear 6 colmenas cuando el apiario tiene hasta 50 colmenas o el 10% de las colmenas del apiario cuando éste tiene más de 50 colmenas. Una vez tomada la muestra mediante un frasco de boca ancha, se le introduce agua y un poco de detergente o alcohol al 70% para lograr el desprendimiento de los parásitos. Después de agitar el recipiente durante al menos cinco minutos, filtramos el contenido y contamos los ácaros y las abejas. La proporción de ácaros sobre la cantidad de abejas examinadas, nos da multiplicando por 100, el porcentaje de infestación. Ej. 12 ácaros y 300 abejas: 12/300 x 100= 4% de infestación. Es importante tener en cuenta que este tipo de diagnóstico sólo tendrá en cuenta el parasitismo en fase forética, es decir que no se estimará el nivel de infestación de la cría. Cuando se realiza entrada la temporada y el nido de cría está desarrollado, se estima que el 70% de los ácaros están dentro de la celda, por lo que el resultado arrojado se referirá solo al 30% de los ácaros que tiene esa colonia. Métodos similares pueden describirse con la utilización de éter. Otro se describe con la utilización de azúcar, logrando el desprendimiento de los ácaros al agitar el recipiente y a su conteo. La ventaja de estos métodos es que no es necesario matar a las abejas. 3.7.2 Conteo de ácaros caídos mediante piso Es un método utilizado para detectar la enfermedad y estimar el nivel de parasitismo de la colmena. Además, es el método que utilizaremos para determinar la eficacia que presenta el producto acaricida que estamos usando. El piso trampa para varroa, consiste en un piso móvil de madera cubierto por una malla metálica que permite el paso de los ácaros caídos, pero no el de las abejas para limpiarlo. En lugar de este piso comercializado por algunas firmas proveedoras de insumos, pueden utilizarse una cartulina o una bandeja de plástico o chapa, siempre provistas de malla que impida la limpieza por parte de las abejas. En cualquiera de los casos debe untarse alguna sustancia adhesiva como vaselina o aceite vegetal hidrogenado para que queden adheridos los ácaros caídos y después recolectarlos para el conteo (si se utiliza para pruebas de eficacia no debe colocarse sustancia adhesiva). Al retirar el piso y al contar los ácaros muertos en forma natural obtenemos una aproximación del parasitismo de esa colonia. 3.7.3 Conteo de larvas sobre un panal de cría Este método consiste en tomar un panal de cría operculada de la colmena en estudio. Luego, se desoperculan unas 100 a 150 celdas de cría, y se cuenta el número de ácaros presentes en las celdas. Se debe trazar una línea diagonal y desopercular las larvas sobre esa línea. Otra opción sería una guarda griega o un zigzag. Luego se hace la relación entre la cantidad de ácaros y el número de larvas inspeccionadas. De esta manera se obtiene un resultado sobre la cantidad de ácaros en cría. 3.7.4 Método químico Este método consiste en colocar en una colmena con piso trampa, tres principios activos farmacológicamente diferentes a la vez, y a las 24 hs. recolectar los ácaros caídos. Se supone que con ese Manual de Procedimientos / Enfermedades de las abejas 21 �choque químico se elimina el 100% de los varroa, dato que puede extenderse para estimar la población de las colonias vecinas. 3.8 Difusión La difusión de la varroosis se ve facilitada dentro de los apiarios por medio de los zánganos; por abejas perdidas, hecho que ocurre agravado por una disminución en el sentido de la orientación en caso de sufrir la parasitosis, y por pillaje. Entre aparios, además de transmitirse por los mismos mecanismos que dentro de un mismo apiario, se puede introducir la parasitosis con la incorporación de material biológico infestado (reinas, paquetes, enjambres y núcleos nuevos). La trashumancia contribuye también a la difusión de esta enfermedad, agravando las parasitosis en aquellos lugares en los que se concentran muchas colmenas en una determinada época del año. 3.9 Reservorios de parásitos Los enjambres silvestres y los apiarios abandonados son posiblemente, los más importantes núcleos de enfermedad. 3.10 Transmisión Las principales fuentes de contagio son las poblaciones enfermas, los panales de larvas infestados y abandonados, y los enjambres producidos a partir de ellos. La transmisión se produce a través de las abejas adultas sobre todo por los zánganos, por abejas adultas desorientadas y pilladoras. La diseminación biológica estará sujeta a la densidad de la población de abejas, la capacidad de vuelo de las mismas, características del entorno, distribución de los emplazamientos y el grado de infestación. La propagación se ve aumentada varias veces con la práctica de la trashumancia. 3.11 Población hospedadora Es receptora la totalidad de la población. Presentan mayor susceptibilidad las larvas de zánganos por razones físicas y biológicas. En las celdillas de obreras, la segunda mitad de la puesta a partir del 4º huevo ya no proporciona ninguna hembra de Varroa con posibilidades de vida, por lo que resulta una tasa de descendencia de 2,6 (cría de zánganos) y 1,3 (cría de obreras) ácaros hijos fértiles por ciclo de reproducción. Los 16 días de duración del período de incubación de las celdillas de abeja reina constituyen un tiempo demasiado corto para el completo desarrollo del Varroa. 3.12 Prevención y lucha La varroosis de las abejas es una enfermedad endémica en Argentina. En la actualidad es imposible erradicarla considerando la existencia inevitable de enjambres naturales. El sacrificio general de las poblaciones infectadas no proporciona ningún éxito en el saneamiento, ya que por lo regular, cuando se descubren los ácaros, ya están infestados otros emplazamientos. La estrategia se centra en combinar medidas en la explotación apícola con tratamientos acaricidas para reducir la población de parásitos, frenar su difusión, y con ello atenuar las pérdidas económicas. A tal efecto resultan imprescindibles el escrupuloso control del estado de salud de las abejas y la decidida y disciplinada colaboración de los apicultores trabajando conjuntamente a nivel regional. 3.13 Tratamiento Al incrementarse considerablemente durante los últimos diez años la prevalencia parasitaria, y a la progresiva disminución de la susceptibilidad de los ácaros a ciertos agentes químicos, las preguntas que se plantea el apicultor con el paso del tiempo es cuándo y con qué tratar. Nadie tiene hoy la «receta» precisa. 22 Servicio Nacional de Sanidad y Calidad Agroalimentaria - SENASA �Lo ideal para el control de la varroosis, sería contar con herramientas de tipo biológico. De esta manera evitaríamos los riesgos de contaminación de los productos de la colmena con agentes químicos y los riesgos de sus efectos tóxicos sobre las abejas y sus crías. Desafortunadamente, por las características del ciclo biológico de la varroa, no hay posibilidades de intervenir en su etapa reproductiva mediante, por ejemplo, la TIE: Técnica de Insecto Estéril o machos estériles, que evita la descendencia de las plagas en otras actividades productivas. Dentro de este tipo de control solo contamos, por el momento, para mantener baja la población de ácaros, sobre todo en pequeñas explotaciones debido a lo engorroso del método, la utilización de panales zanganeros. Hay estudios que confirman la eliminación de más del 60% de varroas mediante la incorporación y posterior eliminación una vez operculados, de dos panales zanganeros. Sin embargo se debe prestar especial atención a las colmenas en las que se aplica este método sin dejar más de quince días los panales zanganeros dentro de la cámara, pues nacería un número muy elevado de ácaros comprometiendo la viabilidad de la colonia. Por eso se recomienda utilizarlo sólo en explotaciones a pequeña escala y en apiarios de fácil acceso. Otro de los métodos que se está estudiando para evitar el uso de agentes químicos para el control de la varroosis, es el de seleccionar líneas genéticas con alto comportamiento higiénico, tolerantes a la varroosis. Este fenómeno consiste en implementar un sistema de selección y mejoramiento genético identificando y eligiendo para la reproducción de material vivo, las colonias que presentan una menor susceptibilidad a la enfermedad, dada por la capacidad de eliminar las varroas adultas y de detectar y remover las crías afectadas por el parásito. Sin embargo, es probable que todo este mecanismo de selección, lleve mucho tiempo hasta que pueda extenderse a las distintas regiones geográficas y que sean aplicables como única herramienta para el control del ácaro. Por el momento nos vemos obligados a la utilización de productos químicos, de síntesis u orgánicos. 3.13.1 Control químico Podemos definir como un producto «ideal» a aquel que no altera el funcionamiento interno de la colonia, que es práctica su aplicación, el que presenta mayor eficacia con la menor cantidad de aplicaciones, que no signifique un riesgo de contaminación de la miel y la cera, que no sea perjudicial para la salud humana y que sea de bajo costo. Existen varios métodos para el control de la varroosis mediante diferentes productos con distintas formas de acción y elaborados con diferentes principios activos. 3.13.2 Formas de acción de los acaricidas Sistémicos: Ingeridos por las abejas. Por medio de la hemolinfa, produce la muerte de los ácaros que se encuentran sobre las abejas adultas. El inconveniente en la utilización de los productos que actúan de esta manera, es que hay que repetir las aplicaciones por lo que tiende a ser menos práctico que los de contacto. De contacto: También eliminan solo las varroas de las adultas, pero quedan dentro de la colmena por más tiempo y permanecen activos durante todo el ciclo reproductivo de las varroas. Es por eso que con una sola aplicación de alguno de estos productos, basta. 3.13.3 Formas de administración Humos o gases: Son volteadores de ácaros que parasitan abejas adultas. Se aplican por medio de gasificadores de propano o con el ahumador. Por evaporación: Así actúan las sustancias orgánicas. Esto está íntimamente relacionado con la Manual de Procedimientos / Enfermedades de las abejas 23 �temperatura ambiente y las características de los soportes y dosificadores. Solución: Hay ciertos productos que se aplican puros en recipientes dentro de la colmena y gracias a la bioventilación producida por las abejas, se difunde. También puede mencionarse dentro de este grupo a los que se aplican en el jarabe para su acción sistémica. Tiras de liberación lenta: son tiras por lo general plásticas, que por el contacto con las abejas liberan lentamente las partículas del activo. 3.14 Control de la Varroosis El ácaro V. destructor causa anualmente serias pérdidas en la producción apícola del país. En muchos casos ocasiona la muerte de las colonias, pero en otros genera serias pérdidas de producción, debido a un debilitamiento general de las colmenas. Esto se hace más acentuado en áreas con escasez de polen donde el déficit proteico ocasionado suele causar la muerte de las colmenas; o en zonas donde los inviernos son poco rigurosos y la cría permanece durante todo el periodo facilitando una reproducción ininterrumpida del ácaro mientras disminuye paulatinamente la población de abejas. Por estos motivos, entrar a la invernada con alto número de abejas, buena cantidad de reservas y sobre todo un bajo número de ácaros es imprescindible para lograr un buen desarrollo de las colmenas durante la primavera. Existen muchas opciones de control en el mundo, pero es necesario diseñar estrategias de control en cada región o en cada país ya que tanto el ácaro como las características climatológicas, íntimamente vinculadas a su reproducción, son propias de cada lugar. Sin embargo, existe un consenso mundial sobre la necesidad de incorporar al plan de tratamientos contra el ácaro una aplicación de acaricidas hacia fin de la cosecha, llamado tratamiento de verano (Imdorf, et al. 1996; Elzen, et al, 2001). Este tratamiento permite disminuir la carga de Varroa a fines de verano e ingresar al otoño, momento de gran reproducción, con un reducido número de ácaros. Basadas en esta información, se detallan a continuación una serie de recomendaciones para implementar un plan de control estratégico tendiente a disminuir las poblaciones de Varroa en las colmenas y los riesgos de que permanezcan en la miel residuos de los productos utilizados. 3.14.1 Pautas para el Control de la Varroasis Usar los productos acaricidas autorizados por SENASA para ser utilizados en apicultura. Deben ser de origen conocido, contar con especificaciones de uso, vencimiento y formula completa. Determinar los porcentajes de infestación antes y después de la aplicación del tratamiento. Emplear la dosificación correcta. Alternar los distintos métodos de control utilizados, de manera de eliminar en el siguiente tratamiento a los ácaros que resistieron la acción del producto utilizado anteriormente. Respetar los tiempos de carencia de los productos acaricidas Realizar curas sistemáticas entre los apicultores de la región, utilizando productos que garanticen la disminución de los niveles de infestación y los mínimos riesgos de contaminación de los productos de las colmenas. 3.14.2 Plan estratégico. Manejo Integral La magnitud del alcance de la enfermedad dependerá principalmente de las condiciones ecológicas de cada región y de la movilización de colmenas, que por lo general, adelantan la reproducción del ácaro. Por eso se recomendarán dos o tres curas, según los casos. Las siguientes recomendaciones se basan en cuatro pilares fundamentales necesarios para asegurar el éxito de las estrategias de control: 24 Servicio Nacional de Sanidad y Calidad Agroalimentaria - SENASA �a. La rotación de acaricidas. b. El aumento en la utilización de acaricidas orgánicos. c. La evaluación del grado de infestación antes y después de aplicado el tratamiento. d. Tratamientos zonales coordinados. 3.14.2.a Rotación de los Principios Activos Es indispensable para evitar que los ácaros varroa desarrollen el fenómeno de resistencia a los acaricidas utilizados actualmente, la rotación obligatoria de los productos. La quimiorresistencia es un fenómeno en el que una parte de la población de individuos toleran las dosis que para el resto de la población de la misma especie son letales. Es una relación entre el producto y el parásito donde parte de la población de ácaros sobreviven a las dosis de aplicación recomendadas por el fabricante del producto. Los ácaros varroa al igual que otros insectos, han demostrado una alta capacidad para hacer frente a los plaguicidas debido a sus poblaciones numerosas y al corto intervalo entre generaciones. Esto eleva la posibilidad de que existan individuos más resistentes que el resto y favorece su multiplicación. Se debe recordar que la resistencia se transmite genéticamente entre una generación y otra. Se predispone a este fenómeno con el mal uso de los productos, las sub y sobredosificación, utilización de los productos durante un tiempo más prolongado a lo recomendado, y por la utilización ininterrumpida del mismo producto entre una cura y otra. Entonces para evitar el desarrollo de resistencia y con la finalidad de eliminar los ácaros varroa que pudieran haber resistido a la cura anterior, se cambiará de principio activo para el nuevo tratamiento. Por eso se debe exigir al proveedor que especifique además de la dosis a emplear, formas de uso y fecha de vencimiento del producto; el nombre del principio activo con el que fue formulado. Recuerde que todos los productos veterinarios están elaborados con excipientes, vehículos y un principio activo (ej. Amitraz, fluvalinato, flumetrina, Ac. oxálico, Ac. fórmico, etc.). A modo de ejemplo: Si Ud. curó en el otoño con Amitraz, en primavera lo debe hacer con ácido oxálico o fórmico. Si para la cura de verano utilizó un piretroide (ej. fluvalinato), no debe usar para la cura de otoño ningún piretroide (fluvalinato o flumetrina). Utilizando otro principio activo de características farmacológicas distintas, se asegura eliminar la población que pudiera haber resistido a la acción del producto anterior. Para detectar fenómenos de este tipo, resulta imprescindible que el apicultor comience a evaluar de un modo más certero la verdadera eficacia de los productos que utiliza. Para ello, es importante conocer los métodos de determinación del porcentaje de infestación para aplicarlos luego del tratamiento. En caso de determinar resistencia se debería dejar de usar el activo por al menos dos temporadas de modo de eliminar la población de ácaros resistentes. Aunque los acaricidas orgánicos por definición no producen resistencia, no es aconsejable utilizar siempre el mismo acaricida orgánico, a fin de evitar mecanismos comportamentales de Varroa, que disminuyan la eficacia de los mismos. 3.14.2.b Evitar los Residuos Para evitar los residuos en mieles es indispensable conocer el momento de aplicación de cada una de las drogas a utilizar. Se debe prestar mucho cuidado y trabajar con conciencia para evitar que queden residuos químicos en los productos de la colmena. La presencia de estas sustancias no sólo ponen en Manual de Procedimientos / Enfermedades de las abejas 25 �riesgo la continuidad del comercio de nuestra miel, sino que también constituyen un riesgo para las abejas y la salud humana. Los productos de la colmena pueden contaminarse en menor o mayor grado de acuerdo a la naturaleza química de la sustancia con la que estamos trabajando y la afinidad del mismo con la miel o la cera. Sin embargo que determinado producto tenga mayor afinidad por la cera, no significa que no pueda concentrarse en la miel, de hecho se han detectado mieles contaminadas con ellos y en menor escala en polen y propóleos. Por eso se debe suspender la aplicación de los productos de síntesis al menos 8 semanas antes de la colocación de las alzas melarias (tiempo de carencia), y aplicarlo solo en la cámara de cría. En caso de optar por el uso de coumaphos, debe considerarse administrarla básicamente en otoño o fines de verano, luego de la última cosecha teniendo en cuenta que en nuestro país está demostrada la existencia de varroas con altos niveles de resistencia a este principio activo. En primavera es aconsejable utilizar acaricidas orgánicos (oxálico, fórmico, timol) para evitar el riesgo de dejar residuos. Tenga en cuenta que los acaricidas deben dejar de aplicarse al menos ocho semanas antes de la mielada (período de carencia). Utilice las dosis recomendadas y respete las indicaciones de uso. En general para disminuir las visitas a los apiarios se varían las formas de aplicación generando problemas colaterales como residuos o mayor nocividad para las abejas, disminuyendo a la vez la eficacia. 3.14.2.c Evaluación del Nivel de Infestación En general una vez realizados los tratamientos, muchos apicultores esperan hasta las próximas revisaciones para ver el estado de las colmenas. Por ser la varroosis una de las principales causas de pérdidas de colmenas, es básico verificar el éxito del tratamiento aplicado, ya que por cambios en el clima, alto nivel de infestación, apiarios cercanos sin tratar, enjambres, principios activos sin la eficacia suficiente o mal administrados, podemos mantener una alta carga de ácaros en el apiario tratado. Para realizar los diagnósticos pre y pos tratamiento podemos utilizar el método descripto en el punto Diagnóstico de Varroosis (1.b) 3.14.2.d Tratamiento Zonal Coordinado Como cuarto pilar se considera a la coordinación zonal entre apicultores para la realización de tratamientos simultáneos en todos los apiarios y con el mismo principio activo. De esta manera se evita la reinfestación a través de los apiarios cercanos y se elimina en forma masiva la mayor cantidad posible de ácaros. Regiones bajo un plan sanitario pueden realizar esta acción conjunta. Tenga en cuenta que si usted cambia de principio activo por no haber obtenido buena eficacia quizás a causa de la resistencia, y su vecino no lo hace, la medida será inútil pues los ácaros resistentes del vecino llegarán a sus colmenas en un momento u otro a través de zánganos, abejas pilladoras, enjambres, etc. 3.15 Plan de Curas El plan consiste en la aplicación ya sea de uno, dos o tres tratamientos durante el primer año y una evaluación del éxito a fin de temporada y la elaboración del plan para el segundo año. La cantidad de tratamientos variará según el ciclo biológico de las abejas y por ende de los ácaros, coincidente con las características climáticas de cada zona. También se tendrá en cuenta el eventual adelanto de las temporadas apícolas por trashumancia o incentivo. 26 Servicio Nacional de Sanidad y Calidad Agroalimentaria - SENASA �A. En las zonas con inviernos rigurosos, en donde la primavera comienza tarde y no hay desarrollo de cría durante el invierno, será suficiente aplicar dos tratamientos. 1. Primaveral tardío – cuando empiece a desarrollarse la cría pero no se ha extendido totalmente. Este tratamiento afectará principalmente a los ácaros en estado forético. Es aconsejable realizarlo con algún acaricida orgánico o de baja residualidad. 2. Principios de otoño – cuando se termina la cosecha y empieza a disminuir el nido de cría. En estas zonas se trata aproximadamente cada seis meses. B. En las zonas con inviernos menos rigurosos, o en el caso de la transhumancia, es aconsejable hacer tres tratamientos. Los tratamientos indispensables para el primer año se realizarán en las siguientes fechas: 1. Principios de primavera: consistirá en un tratamiento de las colmenas cuando el nido de cría empieza a expandirse. Atacará básicamente a los ácaros en estado forético. 2. Un tratamiento de verano, al finalizar la última vuelta de cosecha, con acaricidas que puedan actuar sobre los ácaros en estado forético y a la salida de su periodo reproductivo. 3. Un tratamiento de otoño, aplicado cuando el nido de cría se haya reducido en forma importante y los ácaros se hallen en su totalidad en estado forético (sobre las abejas). En estos casos es importante desarrollar a la vez técnicas de manejo que disminuyan el número total de ácaros, como ser, la formación de núcleos con mayor cantidad de cría operculada y realizar un tratamiento luego de quince días de formados ya que antes que comience la postura de la nueva reina siempre existirá un periodo en donde todas las varroas estén sobre las abejas. Listado de principios activos con efectos acaricidas: Primavera - Salida del invierno (apertura del bolo invernal - activación del nido de cría): Oxálico Fórmico Timol Amitraz. Verano (después de la última vuelta de la cosecha): Fórmico Amitraz Coumaphos Fluvalinato Flumetrina. Otoño (antes de entrar a la invernada): Timol Oxálico Amitraz Coumaphos Fluvalinato Flumetrina. Listado de productos aprobados para su uso en apicultura: No todos los principios activos acaricidas mencionados están disponibles en el mercado a través de productos veterinarios aprobados por SENASA para su uso en apicultura. Por lo tanto, el Plan de Curas deberá diseñarse teniendo en cuenta, entre otras cosas, que los productos elegidos se encuentren aprobados por la autoridad competente para su uso en apicultura, lo cual deberá chequear a través del Manual de Procedimientos / Enfermedades de las abejas 27 �listado actualizado difundido por el Organismo. El registro de productos veterinarios es dinámico y sufre, eventualmente, bajas y altas de productos. Por lo tanto, previo a la adquisición de productos acaricidas se deberá consultar y verificar que los productos elegidos estén aprobados. Respetando el período de carencia y utilizando exclusivamente medicamentos autorizados se asegura la calidad y se garantiza que no se favorecerá al desarrollo de resistencia ni quedarán residuos en los productos de la colmena. Por otro lado, durante toda la temporada los apicultores podrán utilizar mecanismos para la disminución de la carga del ácaro, pero que es sabido no controlan las poblaciones. Los mecanismos permitidos son: Pisos trampa para Varroa. Utilización de panales zanganeros. Importante El uso de cualquiera de estos mecanismos, no elimina ninguno de los tratamientos indispensables para el control de Varroa. A raíz de la gran cantidad de información circulante que carece de rigor científico en torno al uso de la vaselina y a la gran mortandad causada en colmenas solo tratadas con vaselina, nos vemos en la obligación de advertir que la vaselina no es un acaricida y que su eficacia real no supera los límites de daño económico. 3.16 Procedimientos ante la denuncia El apicultor vigilará de forma continuada, por su propia iniciativa y por estar obligado legalmente, el estado sanitario de sus abejas aplicando los métodos de diagnóstico descriptos. Figura 1. Curva estimada de desarrollo de población de abejas en colmenas y momentos de aplicación de acaricidas. 1i, 2i y 3i: los tratamientos indispensables para el caso B. Tener en cuenta que esta curva corresponde a una zona de clima templado por lo que debe adaptarse de acuerdo al desarrollo poblacional de otras regiones. Ya que la trashumancia es uno de los factores difusores de la parasitosis, requisitos previos para proteger los territorios limpios son la colaboración del Servicio Veterinario oficial en el exacto cumplimiento de los programas de desplazamientos de colmenas y del oportuno mantenimiento de éstas por el apicultor afectado, así como la observación de las pertinentes disposiciones legales. Al recibir material vivo, se someterá a un diagnóstico de la enfermedad y al inmediato tratamiento en caso de que fuera necesario. 28 Servicio Nacional de Sanidad y Calidad Agroalimentaria - SENASA �3.17 Procedimientos ante sospechas En caso de sospecha, se pondrán en práctica las medidas generales habituales para la prevención de epizootias (aislamiento del asentamiento, toma de muestras y envío al laboratorio autorizado, denuncia obligatoria). Comprobado el diagnóstico, se creará en torno al emplazamiento afectado una zona de aislamiento de 1,5 km de radio, en la que no se permitirá el tránsito de material vivo, debiendo someterse todas las colmenas y asentamientos en ella ubicados a subsiguientes investigaciones y tratamientos acaricidas correspondientes. Las poblaciones de emplazamientos infestados no pueden movilizarse del lugar hasta tanto transcurran 48 horas de la aplicación de un producto acaricida oficialmente autorizado para uso en apicultura y siguiendo las instrucciones de empleo del mismo. Quedará constancia escrita del tratamiento seguido. Si es necesaria la recepción de colmenas desde otro establecimiento, todas las poblaciones del asentamiento afectado habrán sido sometidas antes, fehacientemente, al tratamiento medicamentoso. Los tratamientos deben combinarse con otros procedimientos que hacen a la estrategia de control de la enfermedad. (Ver punto Estrategias de Control de Varroosis) 4. Nosemosis 4.1. Características Es una enfermedad parasitaria intestinal, invasiva y contagiosa que afecta a las abejas adultas (obre ras, zánganos y reina). Es provocada por un hongo llamado Nosema apis y, más recientemente, Nosema ceranae. Su distribución es cosmopolita, aunque se la considera importante en países templados ya que está muy asociada a factores climáticos como la temperatura, humedad y precipitaciones. Provoca grandes daños económicos al reducir significativamente la capacidad de producción. 4.2. Daños directos Debido a las fuertes lesiones en el intestino medio, las abejas aparecen con el abdomen abultado, débiles, presentan inicialmente cierta excitabilidad, después letargo, pierden la capacidad de vuelo, se imposibilita el aguijoneo, sufren una notable parálisis y finalmente se mueren. Desde el punto de vista fisiológico, se pierde la incorporación de nutrientes, la concentración de lípidos y proteínas en hemolinfa y la vida media de las abejas afectadas se reduce de un 20 a 40%. Esto provoca una marcada disminución en la población de abejas adultas en la colonia. No afecta directamente a la cría. 4.3. Daños Indirectos Las consecuencias de la parasitación por Nosema, son de suma gravedad. Al estar lesionado el aparato digestivo, las abejas no pueden digerir adecuadamente los alimentos por lo que el consumo de las reservas aumenta entre un 20 y 30%. Esto lleva a una disminución en la producción de miel. Al no poder digerir los nutrientes necesarios para el correcto funcionamiento del sistema glandular, se pierde la actividad de las glándulas hipofaríngeas que terminan atrofiándose y dejan de ser funciona les, por lo tanto, la cría tampoco recibe la alimentación correcta en cantidad y calidad. Las abejas jóvenes mueren rápidamente, no pueden reemplazar a las pecoreadoras y se desencadena un desequilibrio en la población, la colonia se debilita y nunca llega a desarrollar. Debido al daño producido en el tracto digestivo, no se aprovechan convenientemente los alimento s ingeridos por la abeja, provocando una debilitación progresiva y generalizada de la colonia, que se manifiesta en la disminución de su vitalidad, disminución de la vida media de las abejas, de los movi mientos y la respuesta a los estímulos de los individuos afectados. Las reinas enfermas, además de estos síntomas, presentan una disminución en su actividad de postura. Manual de Procedimientos / Enfermedades de las abejas 29 �La tolerancia a otras enfermedades es menor cuando las colonias están afectadas por Nosemosis, ya que algunos virus que ingresan al organismo de la abeja por vía digestiva encuentran el medio óptimo para su desarrollo en aquellas abejas cuyo intestino se encuentra alterado por acción del parásito (virus X, Y y Filamentoso). 4.4. Etiología Nosema apis y ceranae son organismos unicelulares, hongos microsporidios, caracterizados por un largo filamento polar arrollado (hasta 400 micras de largo). Son parásitos intracelular obligados. Presentan formas esporulares de resistencia llamadas esporos que miden entre 3,5 micras de ancho por 6 de largo (existen ligeras diferencias de tamaño según sea de apis o ceranae). Estos esporos son ovalados y refringentes al visualizarlos al microscopio óptico. Constituyen la forma infectante de la nosemosis. Los esporos de Nosema apis y ceranae viven como parásito en las células del epitelio del intestino medio y poseen una membrana gruesa conformada por tres capas que los hacen sumamente resistentes. En el agua congelada pueden permanecer resistentes durante años; en la miel tres meses; en el suelo y a la sombra, dos meses; y en la abeja en estadío de putrefacción, entre 10 y 20 días. Se destruyen por calentamiento a 59 ºC durante diez minutos en la miel y en el agua a 65 ºC durante un minuto. 4.5. Población susceptible La enfermedad afecta a abejas adultas, tanto a obreras, zánganos y reinas. Es muy importante la temperatura en la evolución del parasitismo de Nosema. Si ésta se mantiene entre 30 y 35 ºC, una sola espora es capaz de infectar todo el ventrículo. Aunque la dosis infectiva media es de aproximadamente 30 o 90 esporas por abeja. Cuando la infección alcanza su nivel máximo, el organismo de una sola abeja puede albergar entre 30 a 50 millones de esporas. 4.6. Patogenia Las esporas son ingeridas por las abejas desde el alimento o el agua contaminada, llegan al buche melario y a partir de aquí, después de atravesar el proventrículo, se dirigen al intestino medio después de unos diez minutos de haber sido ingeridos, donde favorecidas por los jugos intestinales, germinan. La germinación ejerce una presión interna en el esporo por la cual se produce la evaginación del filamento polar y gracias a éste, penetran a las células de la pared ventricular. A través del filamento, que es hueco, se libera el contenido del esporo e invaden la célula. Allí se multiplican y desarrollan con mucha rapidez utilizando los componentes de la célula parasitada. La infección se inicia en la parte posterior del ventrículo y de allí se disemina a la parte anterior. Una vez dentro de la célula, el parásito aumenta su tamaño, inicia la división celular y pasa por todos los estadíos (meronte, merozoíto, esporonte, esporozoíto) hasta finalizar con una enorme cantidad de nuevos esporos. Bajo condiciones óptimas, el desarrollo se completa entre 48 y 60 horas. Las células endoteliales afectadas por distintas fases del desarrollo del parásito se desprenden del revestimiento intestinal y caen a la luz del intestino liberando nuevos esporos y estadíos evolutivos de Nosema. Una parte de estos nuevos esporos infestan las células endoteliales vecinas sanas o regeneradas (autoinfección) y otra parte se elimina por medio de las heces al medio ambiente, reiniciando el ciclo en otras abejas. Como se mencionó anteriormente, la temperatura óptima para el desarrollo de las esporas es de 30 a 35 ºC. Si la temperatura se mantiene por encima de los 30 ºC, en dos semanas se infecta la totalidad del intestino medio de la abeja, provocando un gran daño celular. Se provoca la pérdida del tono 30 Servicio Nacional de Sanidad y Calidad Agroalimentaria - SENASA �muscular del órgano lo que provoca la desaparición de sus estrías dejándolo fláccido. También afecta la coloración normal del ventrículo, tornando el color normal marrón verde amarillento a un color blanco lechoso. 4.7. Transmisión La transmisión tiene lugar de abeja a abeja durante los períodos de confinamiento en invierno, como resultado de la contaminación de los panales y los pisos por las deyecciones de las abejas. Sin embargo los esporos requieren temperaturas mayores a las del invierno para su potencial desarrollo por lo que recién a la salida del período invernal comienza su reproducción, afectando a un gran número de abejas. La transmisión dentro del apiario se produce principalmente por la deriva de abejas parasitadas, el pillaje de miel de colmenas enfermas, los alimentadores que se usan durante un largo período también pueden ser una fuente de transmisión del parásito. Todas las circunstancias que lleven al encierro y hacinamiento de la colonia, son factores que predisponen a la aparición de la enfermedad. 4.8. Diagnóstico No hay signos específicos de la enfermedad, sin embargo pueden visualizarse a campo algunos signos en las colonias afectadas. Algunos de ellos son comunes a las manifestaciones producidas por algunas enfermedades virales como ser el temblor, el abdomen abultado, la incapacidad de vuelo, etc. Otros también pueden ser compartidos con otras enfermedades de tipo disentérico como las deyecciones aguachentas en los techos y en las planchas de vuelo. Una manifestación al nivel de los panales de cría es la ausencia o deficiencia de jalea real en las celdas larvales. La observación a campo de los ventrículos, buscando las alteraciones en su tonalidad y color, nos puede dar una pauta de la presencia de Nosemosis, pero muchas veces se encuentran ventrículos aparentemente normales no porque no estén afectados por Nosema, sino porque la invasión de sus células recién comienza. Cualquiera de estos signos pueden encontrarse en las colmenas pero cuando la enfermedad alcanzó niveles extremos, por lo tanto, no podemos esperar a encontrarlos. Se debe tomar muestras y recurrir al diagnóstico de laboratorio. 4.8.1. Diagnóstico de laboratorio - Determinación del nivel de infestación. En todos los casos, las muestras deben ser abejas adultas, tomadas de la piquera. Se toman muestras individuales, es decir, una muestra por colmena y de al menos el 10 % de las colmenas que conforman el colmenar. Se envían en formol 4% o refrigeradas, dependiendo de los requerimientos del laboratorio. Comúnmente se utilizan dos métodos para determinar el nivel de infestación por Nosema. En ambos métodos se macera el material en estudio, se lo procesa y observa en el microscopio óptico para realizar el conteo de esporos. Ambas técnicas son válidas siempre que se relacionen los resultados obtenidos con el comportamiento de la parasitosis en la región, época del año, observaciones a campo, etc. a) Método de Cantwell (1970) modificado por Fries (1984) Se necesitan 100 abejas mayores de 10 días de edad, tomadas de la piquera, conservadas en formol 4%, el cual debe cubrir la totalidad de las abejas. Utilizando formol, la muestra se conserva por meses sin alterar el análisis posterior. Según la cantidad promedio de esporos, por abeja, el resultado se expresa en nivel de infestación: débil, mediano o fuerte. Manual de Procedimientos / Enfermedades de las abejas 31 �Clasificación según resultado del conteo Nº de esporas por abeja Nivel de infestación Entre 0 y 500.000 DEBIL Entre 500.000 y 1.000.000 MEDIANO Más de 1.000.000 FUERTE b) Método de Cornejo-Rossi Son suficientes 35 abejas, mayores de 10 días de edad, tomadas de la piquera, conservadas en frío, con orificios en la tapa del frasco. Según la cantidad de esporos por mm 3, el resultado se expresa en niveles de infestación de 1 a 5. Clasificación según Cornejo-Rossi Nivel de infestación Nº de esporas por mm3 Nivel 1 10.000 a 100.000 Nivel 2 100.000 a 600.000 Nivel 3 600.000 a 800.000 Nivel 4 800.000 a 1.000.000 Nivel 5 Superior a 1.000.000 4.9. Tratamiento y Control Debido a la extensión de ciertas prácticas de manejo para la profilaxis de otras enfermedades como la loque americana, mediante la eliminación del material inerte de las esporas de esta bacteria, se eliminan también los de Nosema. La decisión de aplicar un tratamiento dependerá del nivel de infestación arrojado por cualquiera de las dos técnicas de laboratorio. El resultado del recuento debe relacionarse con las condiciones de producción, estado general de las colmenas y medio ambiente, como los aspectos de manejo, estrés nutricional, ciclos de floración, etc. Generalmente, aplicar las prácticas preventivas (Punto 4.10) resulta suficiente para evitar la aparición de la enfermedad, no obstante, ante altos niveles de infestación todas las colonias del colmenar deberán recibir tratamiento medicamentoso. Para el tratamiento se debe administrar algún producto veterinario aprobado por SENASA, elaborado con el principio activo fumagilina, antibiótico que hasta el momento resultó ser el que presenta mayor eficacia. 4.10. Prevención Es posible prevenir la aparición de la enfermedad o lograr mantener niveles de infección de Nosema por debajo de los límites que llegan a afectar el correcto desarrollo de las colonias y la disminución en la producción de miel debido el aumento del consumo de las reservas. Entre las medidas preventivas se recomienda: Renovar material anualmente: esterilizar el material al inicio de cada temporada, reemplazar los panales de cría frecuentemente, eliminando los panales negros, etc. Controlar la temperatura y la humedad: evitar la sombra en forma permanente, evitar formar núcleos al final de temporada, evitar la inundación y condensación de agua dentro de las colmenas, etc. Manejo nutricional: asegurar la disponibilidad de polen a fin de lograr la acumulación de reservas proteicas para el invierno, asegurar una distribución racional de los jarabes azucarados durante el invierno. Ingreso a la invernada: procurar salir del otoño con un excelente estado sanitario y, en lo posible, con reinas nuevas. 32 Servicio Nacional de Sanidad y Calidad Agroalimentaria - SENASA �Determinar periódicamente el nivel de infestación: muestrear el 10% de las colmenas del apiario, de manera individual, en otoño y en primavera, evaluando en cada caso, la aplicación o no de tratamiento medicamentoso. 4.11. Procedimiento ante la sospecha En caso de sospecha o denuncias, se pondrán en práctica las medidas generales habituales para la prevención de epizootias (aislamiento del asentamiento, toma de muestras y envío al laboratorio autorizado, denuncia obligatoria). La investigación consistirá en recolectar muestras de abejas adultas (tomadas de la piquera) y enviarlas al laboratorio para el diagnóstico cuantitativo. De acuerdo a los resultados y otros factores ambientales, se determinará la necesidad de aplicar un tratamiento. Comprobado el diagnóstico, se creará en torno al emplazamiento afectado una zona de aislamiento de 1,5 km de radio, en la que no se permitirá el tránsito de abejas, debiendo someterse todas las colmenas y asentamientos en ella ubicados a subsiguientes investigaciones y tratamientos correspondientes. 5. Ascophaerosis 5.1. Características Es una enfermedad micótica provocada por un hongo de la especie Ascophaera que afecta a las larvas de las abejas entre los 3 y 4 días de edad. Fundamentalmente a las crías de zánganos, en segundo término a las de obreras y ocasionalmente a las que darán origen a las reinas. También se la llama Cría Encalada, Cría de Tiza, Cría Calcárea o Chalkbrood. Los hongos por sí solos no causan daño y difícilmente maten a la colonia afectada. La cría yesificada se manifiesta por la presencia de factores predisponentes como la humedad, bajas temperaturas, mala ventilación y escasez de reservas proteicas. Las colonias débiles y pequeñas son las más susceptibles pues en ellas aparecen todos estos factores. Existen otros factores de tipo yatrogénico (provocados por el apicultor) como el uso indiscriminado de antibióticos que afecta la flora banal de las abejas provocando un desequilibrio que aprovecha el hongo para infectar, y la falta de renovación de panales, entre otros. 5.2. Presentación Está presente en prácticamente todos los países en los que se practica la apicultura, exceptuando algunos de Centro América en los que aún no se ha descripto. En Argentina se la detectó por primera vez en el año 1980. Si bien esta enfermedad, no se la considera importante, últimamente ha aumentado la incidencia, convirtiéndose en un problema de cierta relevancia económica. 5.3. Etiología El hongo Ascophaera fue descubierto a comienzos del siglo pasado aunque recién fue descripto en 1921 bajo otros nombres. Recién en el año 1955 Spiltoir y Olive reclasificaron al hongo dándole el nombre de Ascophaera. Este hongo pertenece a la clase de los aschomicetos, que se reproduce heterotálicamente cuando los micelios entran en contacto entre sí, originando los esporos que son la forma infectante de la enfermedad. Los micelios son de color blanco mientras que los esporos lo son oscuros. Se han descripto hasta el momento unas ocho especies de hongos que pueden aparecer en la colmena. Muchas de ellas son saprófitas que viven a expensas del alimento larval o bien de las deyecciones, y Manual de Procedimientos / Enfermedades de las abejas 33 �otras aparecen como patógenas como es el caso de Ascophaera y los Aspergillus (fumigatus, niger, flavus) agentes causales de la Stone Brood o Cría de Piedra. Se han descripto hasta hoy, dos variedades del hongo Ascophaera con poder patógeno sobre Apis mellifera: Ascophaera major (Skou, 1972) cuyos esporos miden de 3 a 4 micras de diámetro; y el Ascophaera apis (Spiltoir y Olive, 1955), de esporas más pequeños, entre 1 y 2 micras de diámetro. Ambas especies son capaces de producir los síntomas de la enfermedad, aunque la más común es la variedad apis. Estas variedades de Ascophaera no pueden reproducirse entre sí. 5.4. Patogenia El agente ingresa a la colmena acarreado por las abejas pecoreadoras. También se ha comprobado que los ácaros varroa serían portadores de esporos fúngicos. Sin embargo, la sola presencia del hongo en las colmenas no significa que se desarrollará la enfermedad. Para que la Cría Yesificada se manifieste, hace falta que se presenten los factores predisponentes antes mencionados, principalmente humedad y temperatura que favorezca el crecimiento del hongo (entre 20 y 30ºC). Las larvas de mayor susceptibilidad son las de 3 y 4 días de edad, principalmente las de zánganos, no por una cuestión biológica, sino simplemente porque se encuentran en la periferia de los marcos donde la temperatura por lo general es menor. Las larvas ingieren los esporos inoculados por las nodrizas junto con el alimento larval. Al ser ingeridos, una vez en el intestino medio, específicamente en el extremo posterior, germinan y se inicia el crecimiento del micelio. El micelio atraviesa la pared intestinal y buscando el oxígeno necesario para su desarrollo, rompe el extremo posterior de la larva dejando por lo general inafectada la cabeza. Cuando esto sucede se forman los cuerpos fructíferos en la superficie exterior de la larva muerta. Las Ascophaeras no se multiplican en abejas adultas. Las larvas mueren por ascophaerosis, por lo general, 6 o 7 días después de infectadas, cuando las celdas ya fueron operculadas. Los cadáveres aparecen al principio con un aspecto esponjoso y tume factas, adquiriendo la forma hexagonal de la celda. Más tarde se encogen y endurecen, tomando la consistencia y el aspecto de un pedazo de yeso o tiza. Una vez que las larvas mueren y endurecen, los esporos se agrupan en ascos y a su vez se encierran en quistes que tienen un diámetro entre 50 y 140 micras. Los esporos son muy resistentes en el medio ambiente, pueden sobrevivir hasta 15 años. 5.5. Factores predisponentes Humedad y temperatura: Exceso de humedad, bajas temperaturas, cambios bruscos de temperatura, mala ventilación, etc. Escasez de reservas proteicas. Colonias débiles y pequeñas: desequilibrio entre crías y nodrizas. Situaciones de estrés dentro de la colmena: falta de miel, carencia de polen, cese en la entrada de néctar, etc. Uso indiscriminado de antibióticos: provoca un desequilibrio afecta la flora banal de las abejas provocando que aprovecha el hongo para infectar. Manejo: falta de renovación de panales de cría. 5.6. Cuadro clínico Como ya se ha mencionado, lo más probable es que la enfermedad se presente en aquellas colmenas débiles o pequeñas. Sin embargo si las condiciones ambientales son óptimas para el desarrollo del 34 Servicio Nacional de Sanidad y Calidad Agroalimentaria - SENASA �hongo, puede afectar, aunque con menor gravedad, cualquier tipo de colmena. Es una enfermedad estacional. La época en que empiezan a visualizarse los signos es al principio de la temporada, cuando se inicia la postura y el número de abejas aún no es suficiente para atender las crías, regular la temperatura y ventilar todo exceso de humedad. Antes de abrir las colmenas, podemos detectar la enfermedad por la presencia de momias en las piqueras, consecuencia del comportamiento de limpieza de algunas colonias. En los marcos de crías se ven larvas muertas momificadas, operculadas o no. Algunas momias presentan un color blanquecino correspondiente a los micelios, mientras que otras tienen un color oscuro que indica la presencia del hongo en su estado infectante, el de esporo. En las colonias gravemente afectadas, encontramos muchas celdas con restos larvales duros y sueltos. Al agitar estos marcos reproducimos un ruido característico. 5.7. Diagnóstico El diagnóstico clínico a campo es suficiente para determinar la presencia de la enfermedad. Sin embargo hay posibilidades de realizar en laboratorio un frotis húmedo para visualizar los quistes y los esporos. También puede confirmarse el diagnóstico por medio de cultivos del material patógeno en laboratorio especializado, en los que desarrollarán abundantes cuerpos fructíferos. 5.8. Tratamiento y prevención No existe un tratamiento específico para el control de esta enfermedad. Por lo general se produce la curación espontánea de la colmena cuando la colonia logra eliminar las momias y se equilibran los principales factores que desencadenaron la enfermedad. Dada la poca importancia relativa de la Cría Yesificada, no se han realizado muchos ensayos que permitan determinar la eficacia de los productos químicos para tratarla. Por otro lado muchos intentos han fracasado por la susceptibilidad de la abeja a los productos y la inestabilidad de los mismos. Hay muchos productos antifúngicos pero que a la vez inhiben la formación de quitina en la abeja por lo que no se recomiendan. Durante los últimos años se han ensayado fumigaciones con algunos desinfectantes como el óxido de etileno en diferentes concen- traciones (2% durante 24 hs.; 3% durante 6 hs. y 7% durante 1 hora), amonios cuaternarios, formal- dehído al 4%, Timol al 0,7%, ácido acético glacial al 80% e inclusive simples soluciones jabonosas. Más importante que los tratamientos con productos químicos es adoptar medidas de manejo que orienten a reducir los factores de riesgo y la carga patógena, como al mantenimiento de la salud general de la colonia. Dentro de las principales pautas de manejo, tanto para tratar como para prevenir la enfermedad, se pueden mencionar las siguientes: Quemar los panales afectados y retirar las momias de los pisos que actúan como reservorio de los esporos fúngicos. Eliminar de la cámara de cría los panales viejos. No intercambiar panales entre colmenas enfermas y sanas. Rociar jarabe estimulante sobre los marcos de cría afectados para favorecer la limpieza de las momias dentro de las celdas. Regular el espacio de la colmena para evitar la condensación de humedad y lograr la temperatura óptima. Suministrar suplementos proteicos si las reservas de polen son insuficientes. Manual de Procedimientos / Trámites en apicultura 35 �Evitar el enfriamiento de la cría: No colocar marcos de cría operculada en colmenas débiles o levemente afectadas, no retirar abejas adultas de colonias enfermas y débiles, ni darles crías extra para desarrollar, evitar revisar colmenas y núcleos en días fríos. Orientar la piquera de manera de evitar los vientos fríos. Cambiar las reinas de colmenas afectadas por reinas nuevas. La selección de material vivo por aptitud de limpieza, al igual que en la prevención de otras enfermedades apícolas, hace a las colonias más tolerantes a la cría yesificada. 6. Apiarios abandonados La denuncia de apiarios abandonados será motivo de alerta sanitario pues resultan un potencial riesgo de difusión de enfermedades. Deben ser inspeccionados por la autoridad veterinaria o por quien ésta designe y acompañe. Tener en cuenta que debe confirmarse la veracidad sobre el abandono de las colmenas antes de decidir el destino de las mismas. En caso de encontrar colmenas enfermas se procederá a su destrucción o saneamiento. Las colmenas sanas podrán ser donadas de acuerdo al criterio del veterinario oficial, posibilidades y recursos disponibles. 7. Enfermedades Exoticas 7.1 Introducción Una enfermedad exótica es una enfermedad que nunca fue detectada en una región o país determinado. De la cual no fueron observados sus signos clínicos ni su agente etiológico. Las plagas parasitarias descriptas en esta sección son consideradas exóticas en nuestro país. Su condición de “exóticas”, sumado a la poca información sobre su comportamiento, hace que se desconozca la magnitud de los daños que ocasionaría la aparición de alguna de ellas en nuestro país. En caso que esto ocurriese, solamente una rápida y efectiva reacción de la comunidad junto a la autoridad sanitaria podrían minimizar las gravísimas consecuencias. A través de la Resolución 422/03, las enfermedades exóticas de todas las especies animales se encuentran incorporadas al grupo de enfermedades referidas en el artículo 4º del Reglamento General de Policía Sanitaria, aprobado por Decreto de fecha 8 de noviembre de 1906, reglamentario de la Ley Nº 3959. El mismo, dice: “Todo propietario o persona que, de cualquier manera, tenga a su cargo el cuidado o asistencia de animales atacados por enfermedades contagiosas o sospechosos de tenerlas, está obligado a hacer inmediatamente la declaración del hecho a la autoridad local que los reglamentos sanitarios determinen”. En este caso, la autoridad sanitaria será la Oficina Local SENASA, el Programa de Control de Enfermedades, autoridades municipales o provinciales. El hecho de no denunciar o no notificar a la autoridad sanitaria este evento (sospecha o presencia) no significa que la enfermedad o plaga desaparezca o no exista. Por el contrario, impide la realización de las acciones sanitarias necesarias para evitar la difusión del foco. Las consecuencias sanitarias no sólo se manifestarán en el colmenar detectado inicialmente, sino en colmenares de los alrededores, inclusive hasta en todo el territorio nacional. Como se mencionó anteriormente, el ingreso a nuestro país de alguna de ellas podría ocasionar graves consecuencias sanitarias y pérdidas económicas incalculables. Además, esta nueva condición perjudicaría fuertemente la comercialización de nuestros productos apícolas en el exterior. 36 Servicio Nacional de Sanidad y Calidad Agroalimentaria - SENASA �7.2 Procedimiento ante la sospecha o presencia En caso de sospechar o detectar la presencia de alguna de estas plagas parasitarias se procederá de acuerdo a la legislación vigente sobre la notificación de enfermedades denunciables (Ley Nº 3959 del año 1906 y la Res. SENASA 422/02): Notificación: se realizará de forma inmediata a la Oficina Local del SENASA, al Programa de Control de Enfermedades de las Abejas de SENASA Central, a las autoridades sanitarias provinciales o municipales. Inspección oficial del apiario: se realizará una investigación epidemiológica exhaustiva para identificar a todos los apiarios expuestos al riesgo. Interdicción e inmovilización: Se efectuará el aislamiento, vigilancia, identificación de las colmenas enfermas, saneamiento. Asimismo, no se permitirá la salida ni entrada de ningún material apícola vivo ni materiales inertes en la zona o región declarada como infectada. Comunicación del evento a las otras regiones Toma de muestras: En todos los casos se tomarán muestras, se acondicionarán y enviarán al Laboratorio Central de SENASA Inspección e inmovilización de apiarios vecinos: No se permitirá el movimiento, salida o entrada de material vivo ni material inerte dentro de un radio de 3 km a partir del foco primario. Se inspeccionarán todos los apiarios dentro de ese radio. Confirmación del diagnóstico Saneamiento: en caso de confirmarse el diagnóstico, se procederá a la destrucción in situ del material infectado. Según el artículo 24º de la Ley, el productor tendrá derecho a exigir una indemnización en dinero, igual al valor de los animales o materiales perdidos. También se deberá destruir o desinfectar toda construcción u objetos que hayan estado en contacto con las colmenas enfermas o que sirvan como vehículo de contagio. Levantamiento de la interdicción: sucederá en tiempo variable, lo decidirá el Servicio Veterinario según la enfermedad, período de incubación, permanencia en el ambiente, cantidad de colmenas afectadas, resultado de las inspecciones, etc. 7.3 Infestación por Tropilaelaps clareae 7.3.1 Características generales y distribución Tropilaelaps clareae es un ectoparásito que afecta a la cría de las abejas. Son ácaros que dependen de la cría de las abejas para alimentarse y reproducirse. No son capaces de alimentarse de las abejas adultas debido a que sus quelíceros son primitivos y no están desarrollados para ello. Por ese motivo, en áreas del mundo donde hay corte de postura, los ácaros no pueden sobrevivir, ya que no resisten más de 7 días sin la presencia de cría. Por lo tanto, la mayor incidencia de esta parasitosis se presenta en países con climas cálidos que mantienen todo el año, o gran parte del año, cría en las colmenas. Se encuentra ampliamente distribuido en el sudeste asiático, donde parasita a su huésped original, Apis dorsata. Fue descripta por primera vez en Apis mellifera en Filipinas (Delfinado y Baker) en el año 1961 y ha sido encontrada también en Afganistán, China y otros países asiáticos. Hasta el momento, no fue notificada su presencia en Occidente. 7.3.2 Agente etiológico Son ácaros de color entre castaño y castaño oscuro y se encuentran cubiertos de pelos. Poseen una parte dorsal dura, donde se insertan los pelos, y una zona ventral compleja, que es blanda y que Manual de Procedimientos / Enfermedades de las abejas 37 �contiene los aparatos bucal, respiratorio, excretor y reproductor. La hembra adulta mide 1 mm de largo por 0,5 mm de ancho. Se hincha considerablemente cuando se alimenta. Normalmente mide 0,3 mm y llega a aumentar hasta 1 mm. Los machos son tan grandes como las hembras aunque más blandos en su parte superior. 7.3.3 Ciclo biológico El ciclo reproductivo es similar al del ácaro Varroa destructor. Desde el estadio de huevo a adulto transcurren seis días. La hembra Tropilaelaps, luego de una breve etapa forética, ingresa a la celda a punto de ser operculada. El primer huevo es puesto aproximadamente a las 48 hs. después de producirse el cierre de la celda. Las hembras colocan entre 1 a 4 huevos por celda. Cuando la abeja emerge, los ácaros hembras fecundadas salen junto con ella, pero ante la imposibilidad de alimentarse de la abeja adulta, ingresan inmediatamente a una nueva celdilla, continuando así su reproducción. No existe marcada preferencia por las celdas de la cría de los zánganos, como ocurre con el ácaro Varroa destructor. El hecho de no poder fijarse a la abeja, sumado a la dependencia de la cría hace que la etapa forética sea muy breve (Promedio: 1,6 días) 7.3.4 Equilibrio Huésped-Parásito Como se mencionó anteriormente, Apis dorsata es el huésped original. En general, debido al equilibrio huésped-parásito, las infestaciones en este biotipo suelen ser leves. La abeja es capaz de destruir al ácaro por sus propios medios, siendo frecuente encontrarlos muertos en el piso de la colmena. En cambio, el daño que podría ocasionar en una colonia de A. Mellifera es severo. En abejas adultas podrían verse consecuencias en infestaciones menores a las que necesita la varroasis para manifestarlas. Por este motivo, en regiones donde conviven ambas enfermedades predominaría la infestación con Tropilaelaps. 7.3.5 Signos clínicos Machos y hembras adultos pueden observarse fuera de las celdas de cría, moviéndose libremente sobre los cuadros y piso de la colmena. Son fácilmente desprendidos y observados si se sacude el material. Signos tempranos de la infestación suelen pasar desapercibidos, pero el crecimiento de la población de ácaros alcanza rápidamente niveles que provocan una alta mortandad de colmenas. Cuando la infestación es grave, las larvas se encuentran morfológicamente alteradas. Las pupas infectadas pueden presentar manchas oscuras, principalmente en las extremidades. La cría presenta una distribución salteada y las adultas nacen con signos similares a los provocados por Varroa destructor: abdomen acortado, alas y patas deformes, etc. 7.3.6 Transmisión La transmisión se produce a través de: pillaje, deriva, intercambio de material vivo, movimiento de abejas y crías, etc. El ácaro también puede actuar como vector para la transmisión de agentes virales. 7.3.7. Diagnóstico 7.3.7.a Diagnóstico clínico Al tratarse de una enfermedad exótica, resulta de suma importancia reconocer la enfermedad lo antes posible. El diagnóstico clínico consiste en la observación detallada de los cuadros de cría, los marcos, el piso, piso-trampa, interior de las celdas (desopercular), en busca de la presencia del parásito adulto. Por otro lado, en infestaciones graves, además de observar el ácaro se evidenciarán los signos clínicos antes descriptos. 38 Servicio Nacional de Sanidad y Calidad Agroalimentaria - SENASA �7.3.7.b Diagnóstico químico Es similar al efectuado para la detección de Varroa destructor. Luego de la aplicación de un producto químico adecuado se recolectan los parásitos que caen en una bandeja con vaselina previamente colocada en el piso. 7.3.7.c Diagnóstico diferencial En todos los casos se debe realizar el diagnóstico diferencial con Varroa destructor, con el cual existen evidentes diferencias morfológicas. 7.3.8 Toma de muestras Para la confirmación del diagnóstico de Tropilaelaps clareae se enviará un trozo de panal qu e contenga la cría con el parásito sospechoso en un frasco de boca ancha con formol al 4% para su identificación taxonómica. En caso de recolectar ácaros se conservarán en agua y alcohol al 50% o formol 4%. 7.3.9 Tratamiento 7.3.9.a Manejo sanitario El control de este parásito apuntará a la necesidad que tiene el ácaro de alimentarse de la cría. Una vez desaparecida ésta, los ácaros morirán en un tiempo variable. Las colmenas infestadas se tratarán mediante la remoción de la cría: Se colocan los cuadros con cría en un nuclero y luego de que emerjan las abejas, se dejan transcurrir seis días más para devolverlas a la colonia. Otra alternativa es enjaular las reinas durante 21 días. Se recomienda realizar esta maniobra al final de la entrada de néctar de manera de minimizar las pérdidas. 7.3.9.b Control químico Los químicos que controlan Varroa destructor son adecuados para Tropilaelaps spp, aunque los tratamientos mediante fumigación no son aconsejables porque sólo afectan al ácaro en fase forética, no siendo muy efectivos en el caso de Tropilaelaps. Aparentemente el ácido fórmico resulta ser el principio activo más efectivo para el control químico debido a su capacidad para penetrar a través de los opérculos. 7.4 Aethina Tumida Murray (Pequeño escarabajo de las colmenas) 7.4.1 Características generales y distribución Aethina tumida es un coleóptero, también llamado “Pequeño escarabajo de las colmenas”. Es originario de las regiones tropicales y sub-tropicales de Africa. Fuera de Africa fue detectado en los Estados Unidos (Georgia y Florida - año 1998), en Egipto (2000), en Australia (Sidney - 2002) y Canadá (2003). Una parte fundamental de su ciclo reproductivo transcurre dentro de las colmenas de las abejas provocando la destrucción total de la misma. Son escarabajos voladores de color negro que miden entre 5 y 7 mm de largo y de 3 a 4,5 mm de ancho. 7.4.2 Ciclo biológico El ciclo biológico tiene una duración que varía entre 31 a 81 días. El escarabajo adulto ingresa volando a las colmenas, atraído por la miel y la cría. Allí encuentra el lugar y el alimento necesario para iniciar su ciclo reproductivo. Colocan uno o varios huevos (similares a los de las abejas) en las celdas de los panales. Eclosionan larvas alargadas y de color blanquecino que llegan a medir hasta 10 mm de largo. Las larvas cavan galerías en los panales mientras consumen miel, cría y polen. Luego de 10 a 16 días, el desarrollo de la larva finaliza, pasando al estadio de pupa. Esta abandona la colmena, dejándose caer y enterrándose en la tierra. Durante 3 a 4 semanas, enterrada aproxi- Manual de Procedimientos / Enfermedades de las abejas 39 �madamente entre 10 y 20 cm de la superficie, la pupa sufrirá su metamorfosis dando como resultado a un adulto. Al desenterrarse, el escarabajo adulto es de color amarillento, luego se convierte en rojizo, marrón claro, luego marrón oscuro hasta llegar a negro. Estos adultos copularán, y las hembras fecundadas reiniciarán el ciclo ingresando a nuevas colmenas. 7.4.3 Diagnóstico Durante la revisación de la colmena pueden observarse una gran cantidad de escarabajos moviéndose a gran velocidad por los panales, en el piso de las colmenas, en las zonas más oscuras o entre los cabezales de los marcos. El diagnóstico consiste en la observación del escarabajo adulto, sus huevos, sus larvas y/o los daños que ocasiona en la colmena. 7.4.4 Daños Cuando las larvas comienzan a cavar galerías y destruir los cuadros, derraman la miel que, al mezclarse con sus deyecciones, fermenta y despide un olor similar a naranjas en descomposición que resulta repelente para las abejas. La colonia atacada, finalmente, abandona la colmena. 7.4.5 Toma de muestras A los fines de realizar la identificación taxonómica se deberá enviar al laboratorio el/los ejemplares sospechosos en un recipiente que contenga: alcohol y agua 50% o formol al 4%. 7.4.6 Transmisión El escarabajo puede trasladarse a través de su vuelo, por trashumancia, intercambio de material vivo o inerte, comercialización de frutas (kiwi, bananas, melón) y verduras, a través del comercio de plantas con tierra. 7.4.7 Control En los países que poseen esta plaga, el cumafós parece ser hasta el momento, el único principio activo capaz de destruir a los escarabajos. Sin embargo es conveniente atenerse a medidas profilácticas. 7.4.8 Medidas preventivas Mantener la limpieza alrededor de las colmenas: desmalezado, higiene general del apiario. No apilar alzas con miel con aberturas que permitan la entrada del escarabajo (sin abejas guardianas se facilita la introducción) Evitar falsas piqueras Seleccionar líneas genéticas con alto comportamiento higiénico Remover la tierra cercana a las colmenas con el fin de interrumpir el ciclo del escarabajo. Información Adicional Puede obtenerse información actualizada (listado de productos, novedades, legislación aplicable, etc. ) de las páginas web de SENASA y SAGPyA (www.senasa.gov.ar y www.alimentosargentinos.gov.ar respectivamente). O bien con los responsables del Programa de control de Enfermedades de las Abejas al siguiente correo electrónico: apicultura@senasa.gov.ar 40 Servicio Nacional de Sanidad y Calidad Agroalimentaria - SENASA �Manual de Procedimientos / Enfermedades de las abejas 41 �ANEXO III INSCRIPCION EN EL REGISTRO DE ESTABLECIMIENTOS HABILITADOS PARA LA PRODUCCION Y COMERCIALIZACION DE MATERIAL APICOLA VIVO RENAPA N° Fecha: ............../................./ ................... PROPIETARIO Nombre y Apellido o Razón Social: .................................................................................................................................. DNI/CUIL/CUIT: ....................................................... Domicilio: ........................................................................................................................................................................ Pdo./Dpto.: ..................................................................Cod.Postal: ................... Provincia: .............................................. Tel/Fax N° ............................................................................... E-Mail: ............................................................................ ESTABLECIMIENTO Razón Social: ................................................................................................. CUIT: ....................................................... Ubicación: ........................................................................................................................................................................ Pdo./Dpto.: ..................................................................Cod.Postal: ................... Provincia: .............................................. Tel/Fax N° ............................................................................... E-Mail: ............................................................................ Cantidad de Apiarios Afectados a la Producción de Material Vivo: ..................................... TIPO DE PRODFCCION Reinas Celdas Reales Núcleos Paquetes Otros: ................................ ESTIMACION DE LA PRODFCCION ANFAL Reinas Celdas Reales Paquetes Otros: ................................ Observaciones: ............................................................................................................................................................................. ............................................................................................................................................................................................................ ............................................................................................................................................................................................................ CORRESPONSABLE SANITARIO Inspector Sanitario Apícola: ............................................................................................................................................. DNI N° ...................................................................... Acreditación SENASA N° .......................................... .............................................................................. Firma del Interesado C.218 Aclaración: ................................................................ �ANEXO V INSPECCION SANITARIA ESTABLECIMIENTO APICOLA DE PRODFCCION Y COMERCIALIZACION DE MATERIAL VIVO INSPECCION N° Lugar y Fecha: ................................................................. ESTABLECIMIENTO Nombre o Razón Social: .................................................................................................................................................... Apiario N°: .............................................................. Cantidad de Colmenas ............................................. Habilitación N° ........................... Propietario:.................................................................................................................... DIAGNOSTICO CLINICO A CAMPO Loque Americana Cria Yesificada Loque Europea Varroasis Nosemosis Otras: ............................. Cantidad de Colmenas Afectadas (aclarar enfermedad y totalidad de colmenas inspeccionadas): ........................................ ........................................................................................................................................................................................... ........................................................................................................................................................................................... ENVIO DE MFESTRAS A LABORATORIO ........................................................................................................................................................................................... ........................................................................................................................................................................................... Observaciones: ............................................................................................................................................................................. ................................................................................................................................................................................................ ............ ............................................................................................................................................................................................................ ............................................................................................................................................................................................................ ............................................................................................................................................................................................................ INSPECTOR ACTFANTE OFICINA LOCAL DE SENASA .............................................................................. Firma C.219 Aclaración: .................................................................................... Firma y Sello del Responsable ................................................................ Acreditación SENASA N° ......................................... �ANEXO VI ENVIO DE MUESTRAS ESTABLECIMIENTO APICOLA DE PRODFCCION YCOMERCIALIZACIONDE MATERIAL VIVO RENAPA N° Lugar y Fecha: ........................................................................ ESTABLECIMIENTO Nombre o Razón Social: .................................................................................................................................................... Propietario:........................................................................................................................................................................ Dirección: ........................................................................................................................................................................ Tel/Fax N° ............................................................................... E-Mail: ............................................................................ MFESTRAS Números: .......................................................................................................................................................................... ............................................................................................................................................................................................................ ............................................................................................................................................................................................................ DIAGNOSTICO LABORATORIAL ENFERMEDAD: ............................................................................................................................................................................... RESULTADO: Positivo Negativo Métodos de Diagnóstico Empleados: ............................................................................................................................................... ............................................................................................................................................................................................................... FECHA DE EMISION ................./......................................../.......................... Observaciones: ............................................................................................................................................................................. ............................................................................................................................................................................................................ ......................................................................................................................................................... ................................................... ............................................................................................................................................................................................................ ............................................................................................................................................................................................................ INSPECTOR SANITARIO .............................................................................. TECNICO ACTFANTE DILAB .............................................................................. Firma Firma Aclaración: ................................................................ Aclaración: ................................................................ DNI N° ............................................. C217 DNI N° ............................................. Remitir Resultaao a la Oficina Local Corresponaiente a la Jurisaicción ael Establecimiento DQCUMENTQ VALIDQ PQR 30 DIAS A PARTIR DE LA FECHA DE TQMA DE MUESTRA �ANEXO V NOTIFICACION DE INGRESO DE MATERIAL APICOLA VIVO AL ESTABLECIMIENTO RENAPA N° Lugar y Fecha: ............................................................... ESTABLECIMIENTO Nombre o Razón Social: .................................................................................................................................. Habilitación N°: ................................................................................................................................................................ Propietario o Responsable: ................................................................................................................................................ MATERIAL VIVO INGRESADO Indique cantidad, tipo y subespecie: ................................................................................................................................... ........................................................................................................................................................................................... ............................................................................................................................................................................................ .......................................................................................................................................................................................... Fecha de Ingreso: ............../................../.............. Origen del Material: ............................................................................. Importación Mercado Interno País de Origen: ............................................. Establecimiento Productor: .......................................................................... Localidad: .......................................................................................................... Provincia: .............................................. Nombre del Propietario o Responsable: .............................................................................................................................. EN CASO DE CORRESPONDER A MATERIAL IMPORTADO, SOLO INDIQFE EL PAIS DE ORIGEN Y EL NOMBRE DEL ESTABLECIMIENTO PRODFCTOR Observaciones: ............................................................................................................................................................................. ............................................................................................................................................................................................................ ............................................................................................................................................................................................................ .............................................................................. Firma del Propietario o Responsable Aclaración: ................................................................ C.220 �Inspección correspondiente a OTOÑO/PRIMAVERA del Año CANTIDAD DE Apicultores Asesorados Colmenas Inspeccionadas Apiarios Inspeccionados COLMENAS ENFERMAS Loque Americana Cantidad Total Varroasis Otras: .......................................................................................................................................................................................................................................................... ............. TOMA Y ENVIO DE MUESTRAS Muestras Emitidas Loque Americana Varroasis ..................................................................................................................... Lugar y Fecha Nosema Otras ............................................................................... Firma y Sello Inspector �� Dublin Core The Dublin Core metadata element set is common to all Omeka records, including items, files, and collections. For more information see, http://dublincore.org/documents/dces/. Title A name given to the resource Publicaciones SENASA Dublin Core The Dublin Core metadata element set is common to all Omeka records, including items, files, and collections. For more information see, http://dublincore.org/documents/dces/. Title A name given to the resource Enfermedades de las abejas. Manual de Procedimientos Publisher An entity responsible for making the resource available Servicio Nacional de Sanidad y Calidad Agroalimentaria Date A point or period of time associated with an event in the lifecycle of the resource 2020 Contributor An entity responsible for making contributions to the resource Dirección de Luchas Sanitarias Programas de Control de Enfermedades de las Abejas Language A language of the resource Es Type The nature or genre of the resource Monografía Identifier An unambiguous reference to the resource within a given context B.S.0084 Abstract A summary of the resource. El presente documento se dirige principalmente a los agentes sanitarios acreditados (Inspector Asesor Sanitario Apícola), veterinarios de las Oficinas Locales de la Dirección Nacional de Sanidad Animal, profesionales privados, sectores interesados y a las autoridades provinciales, municipales y nacionales locales; por tanto, se centra en aspectos operativos del Programa Nacional de Control de Enfermedades de las Abejas. Table Of Contents A list of subunits of the resource. <div style="text-align: left;">1. LOQUE AMERICANA</div> <div style="text-align: left;">1.1 Características</div> <div style="text-align: left;">1.2 Presentación</div> <div style="text-align: left;">1.3 Patogenia</div> <div style="text-align: left;">1.4 Diagnóstico</div> <div style="text-align: left;">1.5 Cuadro clínico</div> <div style="text-align: left;">1.6 Etiología</div> <div style="text-align: left;">1.7 Proceso epizoótico</div> <div style="text-align: left;">1.8 Reservorios de gérmenes</div> <div style="text-align: left;">1.9 Transmisión</div> <div style="text-align: left;">1.10 Población hospedadora&nbsp;</div> <div style="text-align: left;">1.11 Prevención y lucha</div> <div style="text-align: left;">1.12 Tratamiento</div> <div style="text-align: left;">1.12.1 Recuperación del Material Vivo</div> <div style="text-align: left;">a. Trasiego Directo</div> <div style="text-align: left;">b. Trasiego Doble</div> <div style="text-align: left;">1.12.2 Recuperación del Material Inerte</div> <div style="text-align: left;">a. Calor - Fuego Directo</div> <div style="text-align: left;">b. Calor - Inmersión</div> <div style="text-align: left;">c. Calor y Presión</div> <div style="text-align: left;">d. Químicos</div> <div style="text-align: left;">e. Irradiación 1.12.3 Eliminación del material inerte</div> <div style="text-align: left;">1.12.4. Tratamiento medicamentoso</div> <div style="text-align: left;">1.13. Procedimientos ante la denuncia</div> <div style="text-align: left;">1.14. Procedimiento de atención de focos</div> <div style="text-align: left;">1.15. Toma y remisión de muestras</div> <div style="text-align: left;">2. LOQUE EUROPEA</div> <div style="text-align: left;">2.1 Características 2.2 Presentación</div> <div style="text-align: left;">2.3 Diagnóstico</div> <div style="text-align: left;">2.4 Etiología</div> <div style="text-align: left;">2.5 Reservorios de gérmenes</div> <div style="text-align: left;">2.6 Población hospedadora</div> <div style="text-align: left;">2.7 Prevención y lucha</div> <div style="text-align: left;">2.8 Procedimientos ante denuncias, sospechas o focos 3. VARRAOSIS</div> <div style="text-align: left;">3.1 Características</div> <div style="text-align: left;">3.2 Presentación</div> <div style="text-align: left;">3.3 Daños Indirectos</div> <div style="text-align: left;">3.4 Etiología</div> <div style="text-align: left;">3.5 Ciclo Biológico</div> <div style="text-align: left;">3.6 Cuadro clínico</div> <div style="text-align: left;">3.7 Diagnóstico</div> <div style="text-align: left;">3.7.1 Prueba del frasco</div> <div style="text-align: left;">3.7.2 Conteo de ácaros caídos mediante piso</div> <div style="text-align: left;">3.7.3 Conteo de larvas sobre un panal de cría</div> <div style="text-align: left;">3.7.4 Método químico</div> <div style="text-align: left;">3.8 Difusión</div> <div style="text-align: left;">3.9 Reservorios de parásitos</div> <div style="text-align: left;">3.10 Transmisión</div> <div style="text-align: left;">3.11 Población hospedadora</div> <div style="text-align: left;">3.12 Prevención y lucha</div> <div style="text-align: left;">3.13 Tratamiento</div> <div style="text-align: left;">3.13.1 Control químico</div> <div style="text-align: left;">3.13.2 Formas de acción de los acaricidas</div> <div style="text-align: left;">3.13.3 Formas de administración</div> <div style="text-align: left;">3.14 Control de la Varroasis</div> <div style="text-align: left;">3.14.1 Pautas para el Control de la Varroasis</div> <div style="text-align: left;">3.14.2 Plan estratégico</div> <div style="text-align: left;">3.14.2.a Rotación de los Principios Activos</div> <div style="text-align: left;">3.14.2.b Evitar los Residuos</div> <div style="text-align: left;">3.14.2.c Evaluación del Nivel de Infestación</div> <div style="text-align: left;">3.14.2.d Tratamiento Zonal Coordinado</div> <div style="text-align: left;">3.15 Plan de Curas</div> <div style="text-align: left;">3.16 Procedimientos ante la denuncia</div> <div style="text-align: left;">3.17 Procedimientos ante sospechas</div> <div style="text-align: left;">4. NOSEMOSIS</div> <div style="text-align: left;">4.1. Características</div> <div style="text-align: left;">4.2. Daños directos</div> <div style="text-align: left;">4.3. Daños Indirectos</div> <div style="text-align: left;">4.4. Etiología</div> <div style="text-align: left;">4.5. Población susceptible</div> <div style="text-align: left;">4.6. Patogenia</div> <div style="text-align: left;">4.7. Transmisión</div> <div style="text-align: left;">4.8. Diagnóstico</div> <div style="text-align: left;">4.9. Tratamiento y Control</div> <div style="text-align: left;">4.10. Prevención<br />4.11. Procedimiento ante la sospecha</div> <div style="text-align: left;">5. ASCOPHAEROSIS</div> <div style="text-align: left;">5.1. Características</div> <div style="text-align: left;">5.2. Presentación</div> <div style="text-align: left;">5.3. Etiología <br />5.4. Patogenia</div> <div style="text-align: left;">5.5. Factores predisponentes</div> <div style="text-align: left;">5.6. Cuadro clínico</div> <div style="text-align: left;">5.7. Diagnóstico <br />5.8. Tratamiento y prevención<br />6. APIARIOS ABANDONADOS</div> <div style="text-align: left;">7. ENFERMEDADES EXOTICAS</div> <div style="text-align: left;">7.1 Introducción</div> <div style="text-align: left;">7.2 Procedimiento ante la sospecha o presencia</div> <div style="text-align: left;">7.3 Infestación por Tropilaelaps clareae</div> <div style="text-align: left;">7.3.1 Características generales y distribución</div> <div style="text-align: left;">7.3.2 Agente etiológico</div> <div style="text-align: left;">7.3.3 Ciclo biológico</div> <div style="text-align: left;">7.3.4 Equilibrio Huésped-Parásito</div> <div style="text-align: left;">7.3.5 Signos clínicos</div> <div style="text-align: left;">7.3.6 Transmisión</div> <div style="text-align: left;">7.3.7. Diagnóstico</div> <div style="text-align: left;">7.3.7.a Diagnóstico clínico</div> <div style="text-align: left;">7.3.7.b Diagnóstico químico</div> <div style="text-align: left;">7.3.7.c Diagnóstico diferencial</div> <div style="text-align: left;">7.3.8 Toma de muestras</div> <div style="text-align: left;">7.3.9 Tratamiento</div> <div style="text-align: left;">7.3.9.a Manejo sanitario</div> <div style="text-align: left;">7.3.9.b Control químico</div> <div style="text-align: left;">7.4 Aethina Tumida Murray (Pequeño escarabajo de las colmenas)</div> <div style="text-align: left;">7.4.1 Características generales y distribución</div> <div style="text-align: left;">7.4.2 Ciclo biológico</div> <div style="text-align: left;">7.4.3 Diagnóstico</div> <div style="text-align: left;">7.4.4 Daños</div> <div style="text-align: left;">7.4.5 Toma de muestras</div> <div style="text-align: left;">7.4.6 Transmisión</div> <div style="text-align: left;">7.4.7 Control</div> <div style="text-align: left;">7.4.8 Medidas preventivas</div> <div style="text-align: left;">INFORMACION ADICIONAL</div> ENFERMEDADES DE LAS ABEJAS https://biblioteca.senasa.gob.ar/files/original/d820fecc2fce1fb8b74557aefbf0b311.pdf a9cd386281cbf1ed4caf2b87f13729dc PDF Text Text Dirección Nacional de Sanidad Animal Plan de contingencia para el Síndrome Respiratorio y Reproductivo Porcino (PRRS) Documento de trabajo: Proyecto - Versión final 28/09/2018 República Argentina 1 �Tabla de contenidos PREFACIO....................................................................................................................................... 5 CAPITULO 1: GENERALIDADES ..................................................................................................... 7 1. Acrónimos y abreviaturas...................................................................................................... 8 2. Alcance y objetivos ................................................................................................................ 9 3. Marco regulatorio y sus procedimientos asociados ............................................................. 9 4. Definiciones ......................................................................................................................... 11 5. 4.1. Definiciones generales ................................................................................................ 11 4.2. Definiciones relativas a los tipos de explotaciones porcinas presentes en Argentina 14 Descripción de la enfermedad ............................................................................................ 16 5.1. Definición .................................................................................................................... 16 5.2. Etiología ....................................................................................................................... 16 5.3. Características epidemiológicas .................................................................................. 16 5.4. Vías de trasmisión ....................................................................................................... 16 5.5. Patogenia..................................................................................................................... 17 5.6. Período de incubación................................................................................................. 18 5.7. Signos clínicos.............................................................................................................. 18 5.8. Infección prolongada................................................................................................... 19 5.9. Aspectos inmunológicos.............................................................................................. 19 5.10. Estabilidad del virus del PRRS.................................................................................. 20 5.10.1. Consideraciones sobre la desinfección ............................................................... 21 5.10.2. Consideraciones para el lavado y desinfección del transporte ........................... 21 5.11. Animales vivos ......................................................................................................... 22 5.11.1. Particularidades en las poblaciones de porcinos domésticos ............................. 22 5.11.2. Aspectos de la ocurrencia del PRRS relacionados con las poblaciones de cerdos silvestres 23 5.12. Productos de origen animal y subproductos .......................................................... 23 5.13. Diagnóstico .............................................................................................................. 24 5.14. Diagnóstico diferencial ............................................................................................ 24 CAPITULO 2: FASE DE PREVENCION ........................................................................................... 26 6. Fase de prevención ............................................................................................................. 27 6.1. Evaluación de riesgos .................................................................................................. 27 6.2. Vigilancia Activa: ......................................................................................................... 27 6.3. Vigilancia Pasiva, atención de sospechas, sensibilización ........................................... 27 2 �6.4. Bioseguridad en granjas y Buenas Prácticas de Producción ....................................... 28 6.5. Controles de importaciones ........................................................................................ 29 6.6. Control fronterizo ........................................................................................................ 29 6.7. Diagnóstico de laboratorio .......................................................................................... 29 6.7.1. Diagnóstico en Argentina .................................................................................... 29 6.7.2. Laboratorios de referencia de OIE y otros laboratorios internacionales de referencia. ........................................................................................................................... 29 6.8. Estrategias de Educación Sanitaria y Comunicación de riesgo ................................... 30 CAPITULO 3: FASE DE DETECCION TEMPRANA .......................................................................... 32 7. Fase de detección temprana ............................................................................................... 33 7.1. Notificación de casos compatibles .............................................................................. 33 7.2. Investigación oficial de eventos sanitarios.................................................................. 34 CAPITULO 4: FASE DE RESPUESTA RAPIDA ................................................................................ 35 8. Definiciones relativas a la Fase de respuesta ...................................................................... 36 8.1. Establecimiento sospechoso de estar infectado con el virus de PRRS: ...................... 36 8.2. Establecimiento infectado con el virus de PRRS: ........................................................ 36 8.3. Establecimiento con nexo epidemiológico con un establecimiento sospechoso o infectado con el virus de PRRS ................................................................................................ 37 9. Medidas sanitarias .............................................................................................................. 37 9.1. Medidas a implementar en un Establecimiento sospechoso de estar infectado con el virus de PRRS ........................................................................................................................... 37 9.2. Medidas a implementar en Establecimientos con nexo epidemiológico con un establecimiento sospechoso de estar infectado con el virus de PRRS ................................... 39 9.3. Respuesta ante la confirmación de un Establecimiento infectado con el virus de PRRS: 40 9.3.1. Definición de zonas epidemiológicas .................................................................. 40 9.3.2. Medidas a implementar en el FOCO o la ZONA FOCAL ...................................... 41 9.3.3. Implementación de la ZONA PERIFOCAL............................................................. 42 9.3.4. Implementación de laZONA DE VIGILANCIA ....................................................... 44 9.4. Medidas de bioseguridad a ser observadas y recomendadas dentro de las explotaciones afectadas .......................................................................................................... 45 9.5. Criterios para la adopción de las medidas sanitarias para la erradicación de la enfermedad ............................................................................................................................. 45 9.5.1. Estrategias a aplicar en establecimientos a baja escala, medianos, ciclo completo (monositios) y engordes ..................................................................................... 46 9.5.2. Estrategias a aplicar en establecimientos multisitio ........................................... 47 3 �9.5.3. Sacrificio sanitario. Aspectos a tener en cuenta. ................................................ 47 9.6. Pautas en materia de comunicación durante la fase de respuesta: la prensa y la opinión pública durante los brotes ......................................................................................... 48 CAPITULO 5: FASE DE RECUPERACION....................................................................................... 51 10. Fase de recuperación ...................................................................................................... 52 10.1. Recuperación de estatus: estándares internacionales ........................................... 52 10.2. Comunicación de riesgo .......................................................................................... 52 10.3. Compensación / indemnizaciones ante una emergencia sanitaria......................... 53 CAPITULO 6: ESTRUCTURA ORGANIZATIVA DE LA RESPUESTA ................................................ 54 11. Procedimientos organizacionales y operativos para emergencias ................................. 55 11.1. Estructura organizacional del SINAESA (Resolución SENASA Nº 779/99 y normas modificatorias) ........................................................................................................................ 55 11.2. Responsabilidades en el marco de la cadena de mandos ....................................... 56 CAPITULO 7: PLAN DE PREPARACION ........................................................................................ 58 12. Actualización del marco legislativo y reglamentario....................................................... 59 13. Plan de acción. Preparación a la gestión de emergencias .............................................. 59 13.1. plan Implementación operativa de la preparación de las cuatro fases indicadas en el 59 13.2. Sensibilización en los miembros de la cadena de mandos ..................................... 59 13.3. Campaña de concientización pública: Estrategias de comunicación ...................... 60 13.4. Sacrificio, destrucción y descontaminación (limpieza y desinfección) ................... 60 14. Entrenamiento, testeo y revisión del plan de contingencia ........................................... 61 14.1. Ejercicios de simulación .......................................................................................... 61 14.2. Entrenamiento ........................................................................................................ 61 15. Actualización / adecuación del plan de contingencia de acuerdo a las recomendaciones recabadas del testeo de procesos (gaps y lecciones aprendidas) .............................................. 62 ANEXOS ....................................................................................................................................... 63  ANEXO I- Pruebas de laboratorio disponibles en el Laboratorio Oficial de SENASA y algoritmos de aproximación diagnóstica ....................................................................... 64  ANEXO II - Equipamiento para la gestión de una emergencia sanitaria........................ 67 4 �PREFACIO El Síndrome Respiratorio Reproductivo Porcino (PRRS) es una enfermedad viral que afecta a los cerdos domésticos y silvestres. A partir de su primer aislamiento, en el año 1991, se ha diagnosticado mundialmente y actualmente se encuentra presente en la mayoría de los países con una producción significativa de cerdos. Es considerada una de las principales enfermedades que generan importantes pérdidas productivas y económicas en el sector porcino por lo que representa una preocupación para el sistema sanitario. La enfermedad es considerada exótica en la República Argentina, ya que nunca fue detectada la presencia del agente causal, ni reportada la existencia de animales enfermos en el territorio del país. El Senasa coordina sistemas de vigilancia epidemiológica activa y pasiva cuyos objetivos son la detección precoz y la confirmación de la ausencia de infección. La vigilancia activa se basa en la recolección de muestras con diferentes diseños realizados a fin de asegurar la detección de la enfermedad y de la infección en caso de estar presentes en la producción porcina. La vigilancia pasiva se centra en un sistema de alerta temprana que incluye la notificación inmediata de cualquier signo clínico compatible con la enfermedad, atención de sospechas, actividades de capacitación y sensibilización destinadas a los diferentes actores del sector. Al mismo tiempo, la situación epidemiológica de los países del cono sur está cambiando en los últimos años a partir de los reportes realizados por el Servicio Veterinario de Chile en los años 2003 y 2012. Más recientemente, los hallazgos acontecidos en la República Oriental del Uruguay durante 2017 con sus correspondientes notificaciones enviadas a la Organización Mundial de Sanidad Animal (OIE). Respecto al resto de los países de la región, la enfermedad se encuentra presente en Bolivia, y no ha sido reportada en Paraguay y Brasil. El presente documento se elaboró con el propósito de establecer las acciones que permitan contener un eventual ingreso de PRRS al territorio nacional. En el mismo se encuentran identificados y establecidos los escenarios y las acciones técnicas y administrativas, así como los roles y responsabilidades de los distintos actores para el caso de una eventual detección de la enfermedad y sus procedimientos para la respuesta rápida contingente. Asimismo, el presente plan de trabajo complementa los procedimientos generales relacionados con la respuesta rápida ante eventuales emergencias en sanidad animal ya aprobados en la normativa vigente. Sin embargo el contenido de este documento, además de ser específico para PRRS, estará sujeto a su actualización acorde a la evolución de los conocimientos científicos y técnicos sobre la enfermedad, como así también aspectos relevantes de la normativa relacionada. El presente manual ha sido revisado, convalidado y aprobado por la representación de las siguientes organizaciones:  Servicio Nacional de Sanidad y Calidad Agroalimentaria (SENASA)  Dirección de Laboratorio y Control Técnico del Senasa (DILAB – SENASA) 5 � Secretaría de Gobierno de Agroindustria - AREA PORCINOS  Grupo de Intercambio Tecnológico de Explotaciones Porcinas (GITEP)  Unión de la Industria Cárnica de Argentina (UNICA)  Asociación Argentina Productores Porcinos (AAPP)  Comisión Provincial de Sanidad Animal de la Provincia de Córdoba (COPROSA)  Instituto Nacional de Tecnología Agropecuaria (INTA)  Facultad de Ciencias Veterinarias – Universidad Nacional de la Plata (FCV – UNLP)  Federación Veterinaria Argentina (FEVA)  Universidad Nacional de Rosario (UNR)  Porcino Magro (PORMAG)  Cámara de Productores Porcinos de Entre Ríos (CAPPER)  Cámara de Productores Porcinos de Córdoba (CAPPCOR)  Asociación de Productores Porcinos de la Provincia de Santa Fe (APPORSAFE)  Asociación de Productores Porcinos de la Provincia de Buenos Aires (APROPORBA) (Nota: Tener en cuenta que la lista podrá ser ajustada en función de altas y bajas de las instituciones participantes). 6 �CAPITULO 1: GENERALIDADES 7 �1. Acrónimos y abreviaturas SENASA: Servicio Nacional de Sanidad y Calidad Agroalimentaria DILAB: Dirección de Laboratorios y Control Técnico DNSA: Dirección Nacional de Sanidad Animal OIE: Organización Mundial de Sanidad Animal PRRS: Siglas en inglés del Síndrome Respiratorio y Reproductivo Porcino SINAESA: Sistema Nacional de Emergencias Sanitarias ZV: Zona de Vigilancia ZP: Zona Perifocal PCR: Reacción en cadena de la polimerasa IFI: Inmunofluorescencia indirecta ELISA: Ensayo de inmuno-absorción mediado por enzimas CONALEP: Comisión Nacional de Lucha contra las Enfermedades de los Porcinos 8 �2. Alcance y objetivos El presente Plan establece los lineamientos de los procedimientos a ser implementados ante la detección del Síndrome Reproductivo y Respiratorio Porcino (PRRS, por sus siglas en inglés), siendo su alcance todo el territorio de la República Argentina y de aplicación a todos los individuos de las especies susceptibles en los cuales se sospeche o se confirme la infección y/o la enfermedad según corresponda. En el marco de la Comisión Nacional de Lucha contra las Enfermedades de los Porcinos (CONALEP), que sesiona por Resolución Nº 369/2003, se recomendó la necesidad de establecer un grupo de trabajo para la adecuación de un plan de contingencia para PRRS basado en la normativa, procedimientos y reglamentos del Senasa relacionados con el Sistema Nacional de Emergencias Sanitarias, con los siguientes objetivos:   Establecer medidas y acciones generales tendientes a mantener a la República Argentina libre de PRRS ante la eventual ocurrencia de al menos un caso de la enfermedad en el territorio nacional. Extremar las medidas de contención destinadas a evitar la introducción y dispersión del virus PRRS en poblaciones susceptibles del territorio de la República Argentina, en el marco de un sistema de detección precoz y respuesta temprana ante eventos biológicos compatibles con sospecha o foco de PRRS en poblaciones susceptibles En todo caso, existe consenso que el sistema establecido debe disponer de un plan de trabajo para la preparación para la respuesta ante posibles emergencias en, al menos, los siguientes escenarios:       Explotación porcina cualquiera sea su finalidad y tamaño. Centros de Extracción y Procesamiento de Semen (CEPS). Remates ferias, exposiciones u otros eventos con concentración de animales. Mataderos, plantas procesadoras y elaboradores de productos porcinos Operadores de transporte de animales vivos y transportistas Zoológicos, parques nacionales y reservas naturales, cotos de caza y similares que tengan individuos o poblaciones silvestres, jabalíes o porcinos asilvestrados. 3. Marco regulatorio y sus procedimientos asociados Las normas y procedimientos vigentes, aplicables en el contexto de la gestión de emergencias en sanidad animal en caso de ocurrencia de PRRS, y que complementan y definen las acciones del presente plan de contingencia, son las siguientes:  Ley de Policía Sanitaria N° 3959 y sus decretos reglamentarios  Decreto Nº 1585/96: establece la estructura organizativa del Servicio Nacional de Sanidad y Calidad Agroalimentaria (SENASA), respaldatoria de sus misiones, funciones y responsabilidades, su funcionamiento regulatorio, operativo y de control incluyendo sus mandatos sancionatorios. 9 � Resolución SENASA N° 422/2003: establece las listas de enfermedades de notificación obligatoria.  Resolución SENASA N° 540/2010 establece los procedimientos de notificación de enfermedades animales  Resolución SENASA N° 779/1999: aprueba el SISTEMA NACIONAL DE EMERGENCIAS SANITARIAS. Deberán observarse también las demás normas complementarias relacionadas al sistema sanitario general aplicables a la producción porcina. Tales son los casos de aquellas dirigidas a:  el registro de productores y de animales  los movimientos de animales  prevención, control y erradicación de enfermedades bajo programas oficiales  procedimientos de importación o exportación  condiciones de tenencia y bioseguridad en explotaciones 10 �4. Definiciones 4.1. Definiciones generales Análisis del riesgo: designa el proceso que comprende la identificación del peligro, la evaluación del riesgo, la gestión del riesgo y la información sobre el riesgo. Animal susceptible: A los fines de este Plan de contingencia se considerará como susceptible todo cerdo doméstico, silvestre cautivo, silvestre o asilvestrado (Sus scrofa). Bioseguridad: designa un conjunto de medidas físicas y de gestión diseñadas para reducir el riesgo de introducción, radicación y propagación de las enfermedades, infecciones o infestaciones animales hacia, desde y dentro de una población animal. Brote: designa la presencia de uno o más casos en una unidad epidemiológica. Carnes frescas: designa las carnes que no han sido sometidas a ningún tratamiento que modifique de modo irreversible sus características organolépticas y físico-químicas. Esto incluye las carnes refrigeradas o congeladas, las carnes picadas y las carnes preparadas por procedimientos mecánicos. Comercio internacional: designa la importación, la exportación y el tránsito de mercancías. Compartimento libre: designa un compartimento en el que la ausencia del agente patógeno de origen animal que provoca la enfermedad considerada ha sido demostrada por el respeto de todas las condiciones prescritas por el Código Terrestre para el reconocimiento de compartimentos libres de enfermedad. Compartimento: designa una subpoblación animal mantenida en una o varias explotaciones bajo un mismo sistema de gestión de la bioseguridad y con un estatus sanitario particular respecto de una enfermedad determinada o enfermedades determinadas contra la o las que se han aplicado las medidas de vigilancia, control y bioseguridad requeridas para el comercio internacional. Comunicación del riesgo: designa la transmisión y el intercambio interactivos de información y opiniones a lo largo del proceso de análisis del riesgo acerca del riesgo en sí, los factores de riesgo y la percepción del riesgo entre las personas encargadas de evaluar el riesgo, las encargadas de la gestión del riesgo, las encargadas de informar sobre el riesgo, el público en general y las demás partes interesadas. Control veterinario oficial: designa las operaciones por las que los Servicios Veterinarios sabiendo dónde residen los animales y tras tomar las medidas pertinentes para identificar a su propietario o a la persona encargada de cuidarlos, pueden aplicar las medidas apropiadas de sanidad animal cuando es necesario. Esto no excluye otras responsabilidades de los Servicios Veterinarios como, por ejemplo, la inocuidad de los alimentos. Desinfección: designa la aplicación, después de una limpieza completa, de procedimientos destinados a destruir los agentes infecciosos o parasitarios responsables de enfermedades 11 �animales, incluidas las zoonosis; se aplica a los locales, vehículos y objetos diversos que puedan haber sido directa o indirectamente contaminados. Enfermedad: designa la manifestación clínica o patológica de una infección o infestación. Erradicación: designa la eliminación de un agente patógeno en un país o una zona. Evaluación del riesgo: designa la evaluación de la probabilidad y las consecuencias biológicas y económicas de la entrada, radicación y propagación de un peligro. Explotación: designa un local o lugar de mantenimiento de animales. Faena controlada: designa a la operación que consiste en el envío programado de animales a faena en mataderos autorizados, efectuada bajo la autoridad y supervisión del Senasa. El destino y posible transformación de los productos resultantes serán los determinados por Senasa según cada caso. Identificación de los animales: designa las operaciones de identificación y registro de los animales, sea individualmente, con un identificador del animal en particular, sea colectivamente, por la unidad epidemiológica o el grupo a que pertenecen, con un identificador del grupo en particular. Infección: designa la introducción y el desarrollo o la multiplicación de un agente patógeno en el cuerpo de una persona o de un animal. Manual de contingencia: Dícese del documento específico o de los apartados correspondientes del Plan de contingencia, que reúne los procedimientos destinados a evitar la difusión de la infección y/o enfermedad clínica, y que es aplicable en las fases de respuesta y recuperación de dicho plan, donde el componente de preparación en cada una de las fases mencionadas haya tenido un efectivo cumplimiento para lograr los objetivos establecidos. Período de incubación: designa el período más largo que transcurre entre la introducción del agente patógeno en el animal y la aparición de los primeros signos clínicos de la enfermedad. Plan de contingencia: Dícese del plan de trabajo establecido por el Senasa en acuerdo y compromiso con todos los actores del sistema sanitario que participan en la cadena de valor porcina, y que comprende a todas las etapas en la gestión de emergencias incluyendo las fases de prevención y alerta temprana, detección temprana, respuesta y recuperación donde el componente de preparación sea una constante común a cada una de las fases mencionadas. Productos cárnicos: designa las carnes que se han sometido a un tratamiento que modifica de modo irreversible sus características organolépticas y fisicoquímicas. Sacrificio sanitario: designa la operación diseñada para eliminar un brote, efectuada bajo la autoridad y supervisión de Senasa de manera inmediata o programada, que consiste en llevar a cabo las siguientes actividades en la/s explotación/es afectada/s: 12 �a. la matanza de los animales afectados o que se sospecha han sido afectados del rebaño y, si es preciso, los de otros rebaños que hayan estado expuestos a la infección por contacto directo con estos animales, o contacto indirecto con el agente patógeno causal; los animales deberán sacrificarse de acuerdo con el Capítulo 7.6. “Matanza de animales con fines profilácticos” del Código Terrestre. b. la eliminación de los animales muertos o de los productos de origen animal, según el caso, por transformación, incineración o enterramiento o por cualquier otro método descrito en el Capítulo 4.12. “Eliminación de animales muertos” del Código Terrestre; c. la limpieza y desinfección de las explotaciones a través de los procedimientos definidos en el Capítulo 4.13. del Código Terrestre. Sistema de detección precoz: designa un sistema que permite detectar e identificar a tiempo la introducción o emergencia de enfermedades o infecciones en un país, una zona o un compartimento. El sistema de detección precoz debe estar bajo el control de los Servicios Veterinarios y reunir las siguientes características: a. cobertura representativa de poblaciones animales específicas por los servicios de terreno; b. capacidad para efectuar investigaciones sobre las enfermedades y notificarlas de manera eficaz; c. acceso a laboratorios capaces de diagnosticar y diferenciar las enfermedades consideradas; d. programa de formación de veterinarios, profesionales del agro, propietarios u operarios cuidadores y demás personas encargadas del cuidado de animales para la detección y declaración de incidentes zoosanitarios; e. obligación legal de los veterinarios del sector privado de informar a la autoridad veterinaria; f. cadena de mando a nivel nacional. Unidad epidemiológica: designa un grupo de animales o explotaciones porcinas con determinada relación epidemiológica y aproximadamente la misma probabilidad de exposición a un agente patógeno, sea porque comparten el mismo espacio (un corral, por ejemplo), sea porque pertenecen a la misma explotación o bien conforman un sistema integrado de producción multisitio. Se trata generalmente de un rebaño o de una manada, aunque también pueden constituir una unidad epidemiológica grupos de animales, como aquellos que pertenecen a los habitantes de un pueblo o aquellos que comparten instalaciones zootécnicas. La relación epidemiológica puede variar de una enfermedad a otra, e incluso de una cepa de agente patógeno a otra. Vacunación: designa la inmunización efectiva de animales susceptibles mediante la administración, según las instrucciones del fabricante y, si procede, conforme a lo dispuesto por el Manual Terrestre, de una vacuna que contiene antígenos apropiados contra la enfermedad que se desea controlar. Vector: designa un insecto o portador vivo que transporta un agente infeccioso de un individuo infectado a un individuo susceptible, a sus alimentos o al entorno inmediato. El organismo puede pasar por un ciclo de desarrollo dentro del vector o no. 13 �Veterinario Acreditado: Se considerarán a todos aquellos Médicos Veterinarios Privados inscriptos en el Registro habilitado para el Plan Nacional de Enfermedades de los Porcinos y que hubieran cumplido con los requisitos solicitados. 4.2. Definiciones relativas a los tipos de explotaciones porcinas presentes en Argentina 1. GRUPO GENETICA: son explotaciones porcinas que se dedican a la cría y comercialización de animales de reproducción y material reproductivo exclusivamente o no: a. CENTRO DE EXTRACCIÓN Y PROCESAMIENTO DE SEMEN PORCINO (CEPS): es la explotación porcina dedicada a la extracción, manipulación y procesamiento de semen porcino y luego a la venta, cesión o permuta de ese material reproductivo. b. CABAÑA: es la explotación porcina dedicada exclusivamente a la cría y comercialización de reproductores de alto valor genético, razas puras de pedigrí registradas o no como tal en la Sociedad Rural Argentina. c. NÚCLEO: es la explotación porcina dedicada a la cría y comercialización de reproductores hembras de líneas genéticas puras y machos puros y/o híbridos y/o sintéticos inscriptos en el registro correspondiente. d. MULTIPLICADOR: es la explotación porcina dedicada a la cría y comercialización de reproductores que provienen de líneas de bisabuelas o abuelas híbridas. 2. GRUPO PRODUCCION: son las explotaciones porcinas que se dedican a la cría y comercialización de animales con destino exclusivo a engorde y/o faena: a. CRIADERO COMERCIAL CICLO COMPLETO: explotación dedicada a la cría de cerdos y engorde exclusivamente de su propia producción. b. CRIADERO COMERCIAL INTEGRADO: explotaciones porcinas integradas entre sí societariamente o por contrato en parte o en la totalidad de la cadena de producción desde el nacimiento a la terminación de los cerdos. A su vez, se dividen de acuerdo a la etapa de producción a la que se dedican en: c. SITIO I o CRIA: explotación dedicada a la producción de cerdos que, una vez destetados, son destinados a la recría en otra explotación que se encuentra integrada al mismo, societariamente o por contrato. d. SITIO II o RECRIA: explotación dedicada a la recría de cerdos provenientes de otra explotación de cría integrada a la misma, societariamente o por contrato y que serán destinados a la terminación en otra explotación de terminación o SITIO III también integrado societariamente o por contrato. e. SITIO I y II o CRIA-RECRIA: explotación dedicada a la producción de cerdos recriados destinados a la terminación en otra explotación de terminación o SITIO III que se encuentra integrada a la misma, societariamente o por contrato. 14 �f. SITIO III o TERMINACION: explotación dedicada a la terminación de los animales provenientes de una explotación de RECRIA o CRIA-RECRIA que se encuentra integrada a la misma, societariamente o por contrato. g. DESTETE-VENTA: explotación con cerdos destetados provenientes de una explotación de CRIA o SITIO I integrada societariamente o por contrato que se dedican a su recría hasta su terminación. h. ACOPIO Y/O ENGORDE DE MULTIPLES ORIGENES: explotaciones con cerdos provenientes de diferentes explotaciones porcinas (no integrados) y que se dedica al acopio, inverne y/o engorde de porcinos con destino exclusivo a faena. i. PRODUCCION A BAJA ESCALA: explotación cuya tenencia de porcinos se efectúa para consumo propio o con fines académicos o de investigación y que comercializa ocasionalmente (destino a faena en frigorífico o engorde en otro establecimiento). j. TRASPATIO: establecimientos que posea/n uno o más cerdos para consumo propio o con fines académicos o de investigación y que no comercializan los animales. k. CRIADERO DE JABALIES: establecimiento que posee jabalíes y se dedica a la cría y engorde de su propia producción. 15 �5. Descripción de la enfermedad 5.1. Definición El Síndrome respiratorio y reproductivo porcino es una enfermedad viral que afecta cerdos domésticos y silvestres. Es una de las enfermedades de mayor importancia económica mundial en la mayoría de los países de producción de porcinos, en gran parte de los cuales permanece endémica. No afecta a las personas ni la calidad o aspecto de los productos porcinos. En la República Argentina, el síndrome reproductivo y respiratorio porcino es una enfermedad exótica, de declaración obligatoria por Resolución SENASA Nº 422 del año 2003, lo cual está en acuerdo con lo establecido en el Artículo 15.3.3. del Código terrestre de la OIE. 5.2. Etiología El agente etiológico del PRRS es un virus ARN del orden Nidovirales, familia Arteriviridae, género Arterivirus. Existen dos tipos principales que son antigénicamente y genéticamente distinguibles, el tipo 1 (antes denominado como “europeo”) y el tipo 2 (antes conocido como “cepa norteamericana” o “cepa americana”). Históricamente, el Tipo 1 se ha restringido a Europa, y el Tipo 2, a Norteamérica y Asia; aunque actualmente, ambos tipos se encuentran distribuidos en todo el mundo. 5.3. Características epidemiológicas El virus del PRRS es altamente infeccioso. Después de la infección, el virus se vuelve rápidamente sistémico. La dosis infectiva intranasal experimental es muy baja, un pequeño número de partículas virales son suficientes para iniciar la infección. El virus se propaga más fácilmente por contacto directo. La transmisión puede ser por inhalación, ingestión, semen porcino, agujas o posiblemente heridas por mordedura. La evidencia epidemiológica sugiere que el virus se puede propagar de forma experimental mediante aerosoles a una distancia de hasta 150 metros (Lager et al 2002, Dee et al 2003) 5.4. Vías de trasmisión La vía de ingreso del virus del PRRS más frecuente hacia y entre establecimientos es a través de la introducción de animales infectados o a través del uso de semen contaminado. Investigaciones a campo estimaron que en el 56 % de las infecciones entre granjas se identificó como principal fuente de infección el ingreso de animales infectados (Le Potier y col., 1997). La rápida diseminación del virus dentro de las granjas se debe principalmente al movimiento de animales infectados dentro del establecimiento. La transmisión horizontal por contacto 16 �directo entre animales inoculados con virus y animales susceptibles fue demostrada experimentalmente. Los animales vivos son la principal fuente de diseminación del virus. La rápida propagación del virus dentro de los establecimientos se debe principalmente al tipo de manejo y el contacto estrecho entre cerdos infectados y cerdos susceptibles. El semen es considerado la segunda vía de transmisión de la enfermedad. El virus del PRRS puede ser eliminado a través del semen de padrillos infectados, incluso en ausencia de viremia y en presencia de anticuerpos neutralizantes, por ello se estima que el virus continuaría replicándose en uno o más tejidos del tracto reproductivo. La posibilidad de infección a través del consumo de carne contaminada con el virus del PRRS está demostrada experimentalmente (van der Linden y col. 2003; Magar y Larochelle, 2004). Está documentada la transmisión de aerosoles del virus de manera experimental desde distancias de 150 metros (Torremorell y col. 1997, Wills y col. 1997; Lager y Mengeling 2000, Otake y col. 2002), y se sabe que la transmisión por vía aérea es factible hasta una distancia de 2 km. Si bien la transmisión por aerosol es posible, esto sucede principalmente en poblaciones de alta densidad. Además, las condiciones ambientales resultan fundamentales para que la propagación aerógena se produzca, como ser velocidad del viento, temperatura y exposición a la luz ultravioleta. Otros estudios lograron demostrar que las personas y los fómites, como trajes y botas, podían transmitir el virus y que esto podía ser controlado mediante el uso de protocolos adecuados de bioseguridad (Otake y col., 2002). También se ha demostrado que los vehículos son una fuente de transmisión (Dee y col., 2004). Se ha demostrado experimentalmente que podría ocurrir la transmisión mecánica del virus de PRRS desde cerdos virémicos a cerdos susceptibles a través de los mosquitos (Otake et al 2002), agujas y moscas (Otake et al 2003). La propagación mecánica es teóricamente posible, pero poco probable, dada la naturaleza del virus. Después de la infección, los cerdos eliminan el virus por períodos prolongados a través de la saliva (42 días), semen (43-92 días) y secreciones mamarias. Respecto a la eliminación por heces, los resultados son más variados. Mientras que Wills y col., (1997) informaron que no encontraron virus infeccioso en las heces hasta 42 días después de la infección, otros autores como Yoon y col., (1993) informaron una gran eliminación por materia fecal a los 35 días. 5.5. Patogenia El virus ingresa por vía oronasal y genital. Luego de penetrar los epitelios nasal y tonsilar alcanza los macrófagos pulmonares y, dependiendo de la vía de ingreso, puede alcanzar también el endometrio uterino. Se disemina por los tejidos linfoides regionales y posteriormente se distribuye a nivel sistémico por la vía sanguínea y vía linfoide, generando 17 �una marcada leucopenia. Si bien el virus de PRRS se encuentra en diferentes órganos y tejidos, los macrófagos, principalmente los alveolares, son las principales células en las cuales se realiza la replicación viral. El virus causa la enfermedad mediante la infección de los macrófagos, comprometiendo la respuesta inmune celular y provocando daño en las superficies mucosas. 5.6. Período de incubación A los fines del presente documento, el período de incubación del síndrome reproductivo y respiratorio porcino es de 14 días (basado en Código Terrestre OIE). 5.7. Signos clínicos Los signos clínicos varían según estado inmunológico de los animales, categorías afectadas, factores ambientales, cepa del virus, presencia de otros virus en la granja, entre otros. Se puede presentar un cuadro reproductivo y/o respiratorio (White, 1991) incluso hasta de manera subclínica sin signos manifiestos. Los signos reproductivos incluyen nacimientos prematuros, abortos, momias, lechones que nacen débiles y aumento de la mortalidad. Las cerdas pueden presentar signos clínicos leves o severos. Suele observarse, anorexia, somnolencia y fiebre. Ocasionalmente muestran cianosis en orejas, vulva y cola. Las cerdas infectadas en el segundo tercio de la gestación, generalmente presentan abortos, momias e infertilidad generalizada; que pueden durar de 2 a 3 meses, afectando algunos parámetros como porcentaje de fecundación, número de lechones vivos al nacimiento y mortalidad antes del destete. Los signos respiratorios se presentan en neonatos y, especialmente, en post-destete con grave disnea. Se evidencia En los lechones, se observan algunas características como capa del pelo áspera, baja tasa de crecimiento, dificultad respiratoria, conjuntivitis, edema periorbital y temblores de los músculos; en ocasiones, cuando están parados, se observan como estatuas o extienden las piernas e incluso muestran parálisis posterior, antes del inicio de la debilidad y de la falta total de coordinación muscular. El sangrado del ombligo puede también ser una característica y puede haber sangrado severo después del corte de cola. En los padrillos, se observa anorexia, somnolencia, fiebre, así como baja libido; mala calidad seminal, expresada en volumen, motilidad y concentración espermática por debajo de los estándares y en aumento de anormalidades de los espermatozoides. Resumen de los signos clínicos:   Marcado decaimiento, falta/disminución de apetito, fiebre Mortalidad inusual en lechones (especialmente en pre-destete), sin causa fehaciente demostrada, y/o con dificultad respiratoria, y/o conjuntivitis, y/o debilidad 18 �  Fallas reproductivas en cerdas como: altas tasas de infertilidad, partos prematuros, momificación fetal, abortos, nacidos muertos y nacimiento de lechones débiles que a menudo mueren al poco tiempo de nacer con trastornos respiratorios e infecciones secundarias. Severos trastornos respiratorios, con o sin presencia de cianosis (orejas, vulva, cola pueden tornarse de color azul) Si bien la manifestación clínica de esta enfermedad puede ser variada y no diferenciable a priori con otros cuadros respiratorios y/o reproductivos se destacan algunos hallazgos como los más característicos como los abortos tardíos y partos prematuros. 5.8. Infección prolongada El virus del PRRS produce una infección prolongada en cerdos. Los animales infectados, una vez concluida la viremia, pueden permanecer como portadores por un periodo de tiempo limitado, aún sin signos clínicos, pero siendo una fuente de contagio del virus durante ese periodo. Según diferentes estudios este estado de infección prolongada puede extenderse hasta 86 días o incluso 150 días pos-infección. Incluso, se ha reportado la detección de virus infectante hasta 165 días post-inoculación, particularmente de tonsilas y tejido linfoide. Esta es, quizás, la característica epidemiológica más significativa de la infección. La persistencia no depende de la edad de exposición (in útero, jóvenes o adultos). Los mecanismos por los cuales el virus es capaz de preservarse frente a una respuesta inmune activa no han sido identificados (Zimmerman et al., 2012). 5.9. Aspectos inmunológicos La inmunidad innata y pasiva Las cerdas seropositivas transmiten anticuerpos a su descendencia a través del calostro. La inmunidad pasiva parece disminuir y da paso a la infección poco después del destete, pero la edad a la que los cerdos seroconvierten es variable y en algunas granjas los cerdos de hasta 12 semanas siguen siendo seronegativos. La inmunidad activa La gran variación en los signos clínicos generalmente es causada por variaciones en la virulencia de las diferentes cepas del virus, en lugar del estado inmunitario de la población de cerdos. Los cerdos infectados con el virus de PRRS muestran una respuesta inmune, que se detecta fácilmente por la presencia de anticuerpos en el suero, en 7-14 días después de la infección. Los títulos de anticuerpos detectados con ELISA alcanzan los máximos niveles después de 30-50 días y después de 4-6 meses descienden a niveles bajos o no detectables. Los animales que se recuperan son inmunes y estarán protegidos de otra infección con el 19 �mismo serotipo. La protección cruzada disminuye a medida que las diferencias entre serotipos aumentan. Sin embargo, incluso en una granja infectado, donde algunas cerdas de mayor edad, previamente infectadas pueden ser seronegativos, cerdos seropositivos están presentes en otros grupos de diferente edad. En una granja infectada la proporción de cerdos que dan una prueba de ELISA positivo es alta. En granjas donde los animales susceptibles e infectados se mezclan, una gran proporción (80100%) de cerdos se infectan y son seropositivos. La respuesta inmune que se desarrolla después de la infección con el virus del PRRS protege al cerdo recuperado clínicamente de la posterior exposición homóloga, pero no previene del establecimiento de una infección persistente (Benfield et al 1999a). Vacunación Las vacunas a virus vivo atenuado y a virus muerto están disponibles para el control de PRRS en aquellos países donde la enfermedad es endémica. Las vacunas inactivadas dan escasa inmunidad, y las atenuadas provocan una infección que no previene contra la enfermedad, sino que disminuye el volumen y tiempo de excreción reduciendo la manifestación clínica. Por tal motivo, en el contexto de la Argentina, no está indicado el uso de vacuna para controlar o prevenir la enfermedad. Se han identificado diferencias genéticas y antigénicas entre cepas vacunales y de campo, aunque hoy en día existe tecnología de diagnóstico para distinguirlas. Sin embargo, la transmisión de cepas virales de las vacunas a virus vivo modificado se ha informado desde cerdas vacunadas a las cerdas no vacunadas y de granjas vacunadas a granjas no vacunadas, con el desarrollo de fallas reproductivas inducidas por el virus de la vacuna (Botner et al 1997). Es importante resaltar que las vacunas no previenen la infección. Se han reportado casos en que las vacunas atenuadas han revertido a formas virulentas. En Argentina no existen vacunas aprobadas actualmente para su uso en razón de no estar reportada la infección en el territorio nacional. 5.10. Estabilidad del virus del PRRS El virus de PRRS es más estable entre pH 5,5 y pH 6,5. La infectividad del virus se reduce en más de un 90 % a un pH inferior a 5 o superior a 7. En medio de cultivo es a pH 7,5. La vida media de la cepa Europea del virus de PRRS es de 140 horas a 4°C, 20 horas a 21°C, 3 horas a 37°C y 6 minutos a 56°C (Bloemraad et al 1994). El virus puede sobrevivir en el agua durante 11 días, pero es poco probable que sobreviva en el ambiente por largos períodos de tiempo, ya que no puede resistir el secado y se inactiva rápidamente en ausencia de humedad (Benfield et al 1999a). Se han llevado a cabo estudios para determinar la vida media de la infectividad de PRRSv en deyecciones. Se ha determinado que su vida media en materia fecal se modifica cuando se somete a tratamientos térmicos a 4, 20, 60 y 80°C de acuerdo a la siguiente Tabla (Linhares y Morrison, 2014): 20 �Tabla 1. Mediana de la vida media infecciosa de PRRSv a diferentes temperaturas en deyecciones. Temperatura 4,0 ºC 22,0 ºC 43,5 ºC 63,0 ºC 80,0 ºC T ½ en purín 112,6 horas (103,2, 123,8) 14,6 horas (12,6, 17,2) 1,6 horas (1,5, 1,7) 2,9 minutos (2,1, 4,4) 0,36 minutos (0,30, 0,45) Estos resultados pueden utilizarse como base para desarrollar estrategias para inactivar el virus del PRRS presente en deyecciones contaminadas usando tratamientos térmicos. Se ha demostrado que este patógeno sobrevive durante largos periodos de tiempo a temperaturas frías (Benfield et al., 1992; Bloemraad et al., 1994; Zimmerman et al., 2010), lo que permite su transmisión mediante vías indirectas incluyendo los camiones de transporte (fómites). 5.10.1. Consideraciones sobre la desinfección Utilizar productos veterinarios aprobados, clasificados como antisépticos y desinfectantes. Está demostrado que el virus del PRRS es sensible a algunos agentes antivirales como las mezclas balanceadas y estabilizadas de componentes peroxigénicos, surfactantes, ácidos orgánicos, y un sistema de amortiguador inorgánico de comprobada eficacia. El Virkon®, es un desinfectante de amplio uso para la desinfección contra gran parte de los patógenos animales más importantes, ha demostrado también acción desinfectante contra el virus del PRRS. El virus del PRRS también es inestable en bajas concentraciones de detergentes y se inactiva rápidamente por disolventes tales como cloroformo y éter. 5.10.2. Consideraciones para el lavado y desinfección del transporte Entre todas las vías de transmisión de PRRSv, el transporte es considerado como el segundo en importancia (Torremorell et al., 2004). Linhares y Morrison (2014) describieron que, para prevenir la infección por el virus del PRRS durante el transporte, se han intentado diversas estrategias para inactivar con éxito el virus de las superficies de los camiones. Estos protocolos se basan en la limpieza y lavado a presión del camión antes de una de las siguientes acciones complementarias: 1. Secado completo del camión durante 8 horas (Dee et al., 2004a; Dee et al., 2004c; Dee et al., 2005a; Dee et al., 2005b); 2. Desinfección del camión con glutaraldehído al 7% y cloruro de amonio cuaternario al 26% (Dee et al., 2004a; Dee et al., 2004c) Dee et al., 2005a); 21 �3. Descontaminación y secado con calor (TADD, por las siglas en inglés de Thermoassisted drying and decontamination), que consiste en elevar la temperatura del camión hasta los 71ºC durante 30 minutos seguido por 2 horas de inactividad (Dee et al., 2005b; Dee et al., 2007). Todos estos procedimientos parecen ser eficientes en la inactivación del virus de PRRS presente en los camiones, pero tienen inconvenientes importantes:    la construcción de estaciones eficientes para la desinfección de camiones requiere una inversión importante. Una estación de lavado cuesta entre 100.000 y 150.000 US$ por plaza de lavado. Los costes variables se han calculado en una cifra tan elevada como los 450 US$ por lavado (Loula y Schwartz, comunicación personal, 2011). se han descrito incumplimientos en las normas de bioseguridad (Racicot and Wogalter, 1995; Racicot et al., 2011) que pueden afectar a la calidad del lavado y la desinfección y a la supervivencia de los patógenos. existe un riesgo de contaminación cruzada con el agente de PRRS y otros patógenos durante el lavado simultáneo de varios camiones. Recientemente se ha publicado que alrededor del 50% de los vehículos utilizados para transportar cerdos en EEUU no se lavan entre un viaje y otro (Schneider et al., 2011). BigrasPoulin et al. siguieron casi 400.000 movimientos de cerdos de la industria porcina danesa y calcularon que un camión se utiliza para más de un transporte de cerdos sin ser desinfectado casi el 80% de las veces. En algunos casos, un camión en particular se utilizó más de 10 veces antes de ser desinfectado. De aquí se desprende la importancia de la aplicación estricta de protocolos de desinfección de los transportes de porcinos, como medida para reducir el riesgo de diseminación del virus a través de los vehículos de transporte. Puede conseguirse una disminución del virus PRRS de 106 DICT50/ml a menos de 10-1 DICT50/ml en camiones de transporte con un tratamiento térmico de 50ºC durante 7 horas, 40ºC durante 26 horas o 30ºC durante 96 horas (Linhares y Morrison, 2014). 5.11. Animales vivos 5.11.1. Particularidades domésticos en las poblaciones de porcinos Tiene un período de incubación de tres días a varias semanas, sumadas con etapas de latencia en casos endémicos, que varía según la edad de los animales, la dosis infectante y la inmunidad. La infección puede ser prolongada. El virus se elimina por un período prolongado en la saliva (42 días), orina (14 días) y el semen (43 días). Usando PCR, el ARN viral se ha detectado 92 días después de la exposición (Christopher-Hennings et al 1995). Los cerdos han transmitido la enfermedad a los cerdos centinela susceptibles mezclados 22 semanas después de ser infectados originalmente. Se ha recuperado virus de la zona orofaríngea 157 días después de la infección experimental. El ARN viral se ha demostrado 210 días después del nacimiento en suero de cerdos infectados in útero (Benfield et al 1999b). 22 �Sin embargo, también se describe que el título viral por el virus del PRRS en suero decrece rápidamente y la mayoría de los cerdos ya no están virémicos a los 28 días post inoculación, aunque el RNA viral haya sido detectado en suero por RT-PCR por más de 251 días post inoculación (Wills et al., 2003). La duración de la viremia puede ser un poco mayor en cerdos infectados congénitamente y se demuestra también por aislamiento viral 48 días después del nacimiento y por RT-PCR hasta más de 228 días (Rowland et al., 2003). 5.11.2. Aspectos de la ocurrencia del PRRS relacionados con las poblaciones de cerdos silvestres Si bien tanto los cerdos domésticos como los silvestres son susceptibles, no se ha comprobado aún si actúan como reservorio, ni que cumplen un papel importante en la epidemiología de la enfermedad. Aún se desconocen muchos aspectos de la epidemiología del virus del PRRS en su ciclo de vida silvestre, como los factores individuales (sexo, edad, condición inmunológica, etc.), poblacionales (estructura de la población, densidad, agregación, etc.) y ambientales (hábitat, condiciones climáticas, etc.) que condicionan el contagio entre jabalíes infectados y jabalíes susceptibles. Una de las conclusiones a las que se llegó en un estudio llevado a cabo en Alemania es que existe una relación débil entre el jabalí y la infección doméstica por el virus del PRRS. A su vez se evidenció que no se detecta asociación entre la prevalencia de jabalíes positivos y la cercanía a poblaciones de cerdos domésticos, por lo cual se puede concluir que la presencia del PRRS en jabalíes se debe más a eventos esporádicos que a un evento sistemático. En España, y también en la mayor parte del continente europeo, los resultados sobre el virus del PRRS en poblaciones de jabalíes señalan que desde un punto de vista probabilístico éste actuaría más como un hospedador accidental del virus y que el porcino doméstico sería el principal reservorio. Sin embargo, la direccionalidad de la transmisibilidad del virus es aún incierta y el aparente incremento de los niveles de seroprevalencia, aún bajos (<5%) en algunas poblaciones de jabalíes con gran densidad podría ocasionar eventos de transmisión de silvestres a domésticos. En otro estudio, los resultados obtenidos evidenciaban que cuando el virus del PRRS entraba en la población de jabalíes, su posterior difusión era bastante limitada, probablemente debido a que el virus no se transmite fácilmente dentro de una población de baja o media densidad. En cuanto al comportamiento de la enfermedad en animales silvestres, aunque las infecciones por el virus del PRRS en el medio silvestre se han reportado en jabalíes, los signos clínicos son aún desconocidos. 5.12. Productos de origen animal y subproductos El virus de PRRS se ha aislado de músculo y tejido linfoide. El virus sobrevive la congelación en el cultivo celular durante un período prolongado y se ha aislado después de un mes a partir de 23 �músculo congelado a -20°C, aunque los niveles de virus disminuyen con el enfriamiento, endurecimiento y congelación. El virus de PRRS se puede recuperar de los tejidos musculares 0-24 horas después del sacrificio pero no de músculo conservado a 4°C durante 48 horas. El virus, sin embargo, sobrevive en la médula ósea durante varias semanas cuando se almacena a 4°C (Bloemraad et al 1994). 5.13. Diagnóstico El virus de PRRS puede ser aislado de cerdos infectados a partir de muestras de suero, muestras de sangre entera, diversos órganos, como pulmones, tonsilas, ganglios linfáticos y bazo. Para el aislamiento del virus se utilizan, principalmente, macrófagos alveolares porcinos y células porcinas Marc 145. Los efectos citopáticos son evidentes en 1 a 4 días. Se requiere realizar dos pasajes de 7 días. El virus se identifica y caracteriza mediante inmunotinción con antisueros específicos o anticuerpos monoclonales. También se han desarrollado técnicas adicionales, como la técnica inmunohistoquímica y la hibridación in situ sobre tejidos y la reacción en cadena de la polimerasa con transcripción inversa (RT-PCR). En la actualidad, el RT-PCR es la técnica comúnmente utilizada para el seguimiento de granjas infectadas. Para el diagnóstico serológico se dispone de gran variedad de pruebas que permiten detectar anticuerpos específicos en suero, en líquidos bucales o en jugo de carne como la técnica de la inmunoperoxidasa en monocapa la prueba de la inmunofluorescencia y ELISA. Los anticuerpos específicos IgG, detectados por IFI, aparecen entre los 5 a 9 días; y los anticuerpos detectados por el ELISA, entre los 9 a 13 días post infección. En ambas pruebas alcanzan su pico a los 30 a 50 días y se tornan no detectables a los 4 a 6 meses con la técnica de IFI y a los 10 meses con la técnica de ELISA. En la actualidad, para el diagnóstico serológico, lo más habitual es utilizar la prueba de ELISA de tipo ELISA indirecto, ELISA de bloqueo y ELISA doble, ya sea comercial o casero. Algunos ELISA comerciales permiten detectar anticuerpos a través de muestras de líquidos bucales (saliva). 5.14. Diagnóstico diferencial Las siguientes enfermedades deben ser consideradas en el diagnóstico diferencial de PRRS:     Cualquier causa de retraso del crecimiento, Diarreas pre-destete, Mortalidad elevada, y Cualquier causa de aborto, momificación, mortinatos o lechones débiles, incluidos: o Leptospirosis o Parvovirus porcino o Enterovirus porcino o Encefalomielitis hemaglutinante 24 �o o o Enfermedad de Aujeszky Peste porcina clásica Brucelosis porcina La forma respiratoria de la enfermedad debe ser diferenciada de:           Influenza porcina Neumonía enzoótica Neumonía proliferativa y necrotizante Haemophilus parasuis Virus de la encefalomielitis hemoaglutinante Coronavirus respiratorio porcino Neumonía y miocarditis sincitial Virus Nipah Circo-virosis Enfermedad de Aujeszky 25 �CAPITULO 2: FASE DE PREVENCION 26 �6. Fase de prevención El Senasa ha elaborado un Plan de Prevención de alcance nacional y su objetivo general es prevenir el ingreso al país, la exposición, diseminación y establecimiento del virus del síndrome respiratorio reproductivo porcino (PRRS) en la República Argentina. El Plan de prevención consta de los siguientes componentes: Evaluación de Riesgos, Vigilancia Activa, Vigilancia Pasiva, Atención de sospechas/Sensibilización, Atención de Focos, Bioseguridad y Buenas Prácticas de Producción, Controles de importaciones, Control fronterizo, Diagnóstico y Difusión/Capacitación. En cada uno de los mencionados componentes expresa los objetivos específicos y detalla las actividades a llevar a cabo para su cumplimiento. 6.1. Evaluación de riesgos El SENASA mantiene una evaluación permanente de riesgo de ocurrencia de la enfermedad. El objetivo de esta evaluación de riesgos es identificar, definir y caracterizar poblaciones, zonas y factores que representen un riesgo para la introducción, presencia y diseminación del PRRS en la República Argentina. Esto incluye el seguimiento del estado de situación respecto a PRRS de los países de la región y resto del mundo y, teniendo en cuenta que el análisis de riesgo es un proceso dinámico, se debe mantener actualizado el estudio elaborado para productos, animales y material reproductivo. Por último, se establecen estrategias adecuadas para la comunicación del riesgo. 6.2. Vigilancia Activa: El SENASA mantiene un programa de vigilancia activa para el PRRS. El objetivo de la vigilancia activa es demostrar la ausencia de circulación viral en los cerdos domésticos de la República Argentina a través del diseño y ejecución de muestreos que involucran poblaciones y zonas identificadas con mayor riesgo. El diseño de la vigilancia activa toma en cuenta a las poblaciones consideradas de riesgo según la evaluación previa como: granjas importadoras y/o comercializadoras de reproductores y material genético, predios de traspatio, cerdas de descarte, predios invernadores, entre otros. A su vez, la vigilancia activa incluye zonas de mayor riesgo como los cordones fronterizos de Salta-Bolivia y Entre Ríos-Uruguay. Este tipo de actividades admite la participación e intervención del sector privado, por ejemplo a través la participación de veterinarios acreditados en la toma de muestras, la provisión de muestras de los Laboratorios de Red o el uso de muestras recolectadas para otro fin. 6.3. Vigilancia sensibilización Pasiva, atención de sospechas, Se cuenta con un sistema eficiente de detección temprana, notificación y atención oficial de sospechas, que incluye a todos los actores del ámbito veterinario nacional. 27 �El síndrome PRRS es una enfermedad de denuncia obligatoria en la República Argentina y todo caso en el que se sospeche de la posible ocurrencia del PRRS serán sujetos a una investigación oficial a fin de confirmar o descartar la presencia de la enfermedad. Las bases del sistema de notificación, atención y registro de enfermedades denunciables se encuentran establecidas por el Senasa en la normativa vigente. Este componente también tiene en cuenta las zonas de riesgo previamente definidas en las cuales las actividades son reforzadas. La sensibilización del sector porcino y público en general; y la capacitación a profesionales oficiales, profesionales privados y productores son componentes fundamentales para contar con un sistema de alerta temprana eficiente. Los sistemas de vigilancia epidemiológica se consolidan a partir de una adecuada combinación de dos componentes: la vigilancia pasiva y la vigilancia activa. Estos dos elementos son claves para que la enfermedad pueda ser detectada por métodos de muestreo basados en parámetros científicos (vigilancia activa) o a partir del conocimiento, identificación y comunicación inmediata de los signos característicos de la enfermedad a la autoridad veterinaria, por parte de las personas que son responsables de la tenencia de animales con fines productivos, de subsistencia u otros posibles (vigilancia pasiva). Estos dos componentes funcionando en condiciones óptimas son los que transformarán al sistema de vigilancia lo suficientemente sensible, como para identificar tempranamente signos sospechosos de la enfermedad y permitir de esta manera desencadenar las acciones confirmatorias y de respuesta, destinadas a combatir un incidente sanitario contingente. No obstante, en la valoración del diseño de ambos componentes (vigilancia activa y pasiva), la vigilancia pasiva toma una relevancia crítica para la detección inmediata de un evento en la fase de alerta temprana. La vigilancia pasiva requiere de un fuerte involucramiento de los productores, tenedores de porcinos, veterinarios y profesionales de la actividad propia del sector porcino quienes, en capacidad de identificar signos compatibles u otras anormalidades que hagan sospechar de la enfermedad, serán actores clave para proceder con una rápida respuesta. 6.4. Bioseguridad en granjas y Buenas Prácticas de Producción Las condiciones de bioseguridad y buenas prácticas juegan un rol fundamental en la prevención de ingreso de PRRS a las granjas y en la posterior diseminación entre las mismas, ante una potencial incursión de la enfermedad en el país. Este componente también requiere de actividades de difusión y capacitación dirigidas a productores y veterinarios, quienes finalmente serán los que aplicarán las mejoras en bioseguridad y otras medidas de prevención de ingreso a PRRS a sus granjas. 28 �6.5. Controles de importaciones Como se mencionó más arriba, dentro de la evaluación de riesgos, la importación de animales y productos es uno de los puntos críticos de control para prevenir el ingreso de la enfermedad al país, y requiere que los requisitos o exigencias que se establecen para la importación y para los controles post-ingreso se mantengan actualizados y adecuados, en línea con la información científica disponible. 6.6. Control fronterizo El SENASA, en colaboración con otras fuerzas y agencias presentes en las fronteras, implementa medidas oficiales de control en puestos de control fronterizo sobre el ingreso de animales, productos y pasajeros, a fin de garantizar que se respetan las condiciones sanitarias estipuladas para prevenir el ingreso de la enfermedad por estas vías. Esto implica gestionar y garantizar la cantidad adecuada de inspectores capacitados/sensibilizados y, por otro lado, concientizar a personas y productores sobre las prohibiciones y riesgo de ingreso de cerdos, material genético y productos sin la autorización de Senasa. 6.7. Diagnóstico de laboratorio El Plan de prevención debe garantizar la disponibilidad de pruebas diagnósticas actualizadas, validadas y con los insumos suficientes necesarios para responder a la demanda de la vigilancia activa y pasiva de esta enfermedad. La estimación de las necesidades se realiza anualmente de acuerdo al diseño de la vigilancia y se garantiza la disponibilidad de insumos para la atención de sospechas y focos. 6.7.1. Diagnóstico en Argentina Las pruebas de laboratorio para el diagnóstico de PRRS se realizan exclusivamente en el Laboratorio Oficial del SENASA - Argentina, único laboratorio autorizado. En el Anexo I se detallan las pruebas de laboratorio disponibles en al Laboratorio Oficial del SENASA, así como los algoritmos de aproximación diagnóstica definidos tanto para la vigilancia de rutina, como para la investigación en un establecimiento sospechoso. 6.7.2. Laboratorios de referencia de OIE y otros laboratorios internacionales de referencia. El Laboratorio Oficial del SENASA tendrá actualizada la lista de los Laboratorios de Referencia de la OIE así como también otros laboratorios internacionales de referencia para PRRS, en caso que la remisión de muestras para el diagnóstico confirmatorio sea requerida. 29 �De cada Laboratorio se debe disponer información actualizada sobre:      detalles de contacto técnicas disponibles logística para el envío de muestras protocolos de bioseguridad y las reglamentaciones para el envío internacional de material biológico plazos de remisión y obtención de informe final 6.8. Estrategias de Educación Sanitaria y Comunicación de riesgo El personal del Senasa asegurará un plan de trabajo para llevar a cabo la profundización de conceptos relacionados a la gestión de emergencias en sanidad animal, observando la inclusión de al menos los siguientes aspectos: • • • • • • Promover a través del personal profesional la divulgación de los signos que facilitarán la identificación de sospechas de la enfermedad en los veterinarios y profesionales de la actividad privada e instituciones de investigación, cuerpos colegiados y consejos profesionales, productores y tenedores de porcinos y asociaciones y entidades relevantes del sector, entre otros. El aporte de las Universidades en la oportunidad de incluir estos temas entre los contenidos mínimos de los programas educativos de las facultades de veterinaria para la formación de los veterinarios son absolutamente relevantes al mismo propósito. Las acreditaciones en enfermedades de los porcinos debe continuar siendo uno de los ejes de actualización de la profesión veterinaria en el conocimiento y profundización del conocimiento de esta enfermedad. Dar a conocer y divulgar de una manera eficaz en el público de los sectores indicados en los puntos anteriores, que el PRRS es una enfermedad de notificación obligatoria y de comunicación inmediata en la República Argentina y que por lo tanto, todo tipo de presentación clínica sospechosa de signos o síndromes compatibles deben ser comunicados de manera inmediata a la autoridad veterinaria ejercida por el Servicio Nacional de Sanidad y Calidad Agroalimentaria. Establecer una estrategia comunicacional con profesionales entrenados en comunicación de riesgo, a fin de asegurar que la información proporcionada al público blanco o la comunidad general sea adecuado en contenidos, a fin de no desalentar las denuncias y facilitar el entendimiento de los roles y responsabilidades compartidas en los sistemas sanitarios contextualizadas en las cadenas productivas agroalimentarias. Divulgar las acciones y puntos críticos del presente plan de contingencia, que requieran la participación colaborativa de los distintos actores del sistema sanitario y productivo a fin de actuar adecuadamente en la fase de respuesta en caso de ser necesario. 30 �• • Se promoverán talleres y reuniones para garantizar una comunicación efectiva y eficaz, para asegurar la implementación sustentable de las acciones previstas en los puntos anteriores. Se promoverán todas las actividades y ejercicios de entrenamiento necesarios para para asegurar la implementación sustentable de las acciones previstas en los puntos anteriores. Programas de educación y concientización de productores En virtud de mejorar la vigilancia pasiva contemplada en el punto 6, se debe evaluar la posibilidad de implementar programas especiales de educación y concientización para productores y tenedores de porcinos. El objetivo es asegurar la plena conciencia del conocimiento de los signos de presentación de la enfermedad, así como de las consecuencias sanitarias individuales en cada explotación y en el contexto del bien común. Se podrán considerar algunas de las siguientes actividades que constituyen referencias para diseñar proyectos específicos con profesionales de la educación y comunicación: • • • Piezas de comunicación destinada a productores y tenedores de porcinos para ser canalizadas a través de distintos formatos tales como trípticos, afiches, hojas informativas, videos, charlas, conferencias, reuniones sobre terreno, etc. Piezas de comunicación destinada a familiares de productores y tenedores de porcinos, para ser canalizadas a través de las escuelas. Piezas de comunicación diseñadas para profesionales del sector que interactúen con productores y tenedores de porcinos, tales como veterinarios, transportistas, consignatarios, etc. 31 �CAPITULO 3: FASE DE DETECCION TEMPRANA 32 �7. Fase de detección temprana Deberá entenderse el personal sanitario como el personal profesional del SENASA que estará en capacidad de determinar la relevancia de síndromes o signos clínicos o cuadros que puedan resultar compatibles con el síndrome reproductivo y respiratorio porcino y, mediante un programa de entrenamiento continuo, deberá estar en capacidad de:         Proceder a dar respuesta a toda comunicación de presentaciones clínicas y denuncias de sospechas efectuadas por toda persona responsable de poblaciones porcinas susceptibles (productores, tenedores de porcinos, transportistas, veterinarios, laboratoristas, etc.). Analizar el tipo de presentación clínica y los posibles cuadros confundibles al momento de atender la denuncia de una sospecha de PRRS, observando las reglamentaciones vigentes y la aplicación de los protocolos correspondientes. Mantener actualizado el equipamiento y los materiales necesarios para la atención de denuncias y toma y remisión de muestras, así como los elementos destinados a asegurar las correctas prácticas de bioseguridad durante la aplicación de los procedimientos. Proceder a la toma de muestras de los tejidos y órganos que sean requeridos a los efectos de diagnósticos confirmatorios y diferenciales. Proceder adecuadamente en el acondicionamiento de las muestras obtenidas para su envío al laboratorio de diagnóstico. Observar y aplicar las prácticas adecuadas de bioseguridad para que, en caso de tratarse de una infección, se minimice al máximo posible el riesgo de diseminación con la consecuente exposición a otras poblaciones susceptibles. Tener precisiones sobre los detalles de contacto del laboratorio oficial del SENASA, lugar en donde se desarrollarán los diagnósticos confirmatorios de PRRS y, en caso de necesidad, tomar comunicación con los mismos a los fines que correspondan (coordinar envíos, etc.). Se promoverán todas las actividades y ejercicios de entrenamiento necesarios para para asegurar la implementación sustentable de las acciones previstas en los puntos anteriores. 7.1. Notificación de casos compatibles De acuerdo a la normativa vigente todos los actores del sistema veterinario argentino, incluyendo a los sectores públicos y privados, así como a todos los integrantes de la cadena de producción porcina, están obligados a notificar al SENASA y de manera inmediata cualquier cuadro de enfermedad compatible con el PRRS (Res 422/2003). Ante la recepción de una notificación de un caso compatible con el PRRS, el Veterinario Local del Senasa deberá asistir al predio donde se reporten los hechos dentro de las 12 horas, a los efectos de realizar la investigación correspondiente para determinar la naturaleza del evento, y en caso de ser necesario, iniciar las acciones para contener la dispersión de una presunta enfermedad. 33 �7.2. Investigación oficial de eventos sanitarios La investigación de un evento puede iniciarse ante la notificación de la presencia de uno o más animales con sintomatología compatible, ante datos de laboratorio sugestivos o también de oficio ante la existencia de información que indicara la ocurrencia real o posible de un evento de estas características. Estos casos se definen como Evento sanitario bajo investigación oficial. La atención, investigación y registro de los mismos se realiza de acuerdo con la normativa vigente. La investigación oficial consistirá en una evaluación epidemiológica que podrá comprender la inspección clínica de animales enfermos y sanos, toma de muestras para diagnóstico, relevamiento de datos y revisión de registros administrativos y productivos e inspección del establecimiento. Estas medidas podrán realizarse en el predio referido inicialmente y en otros predios relacionados que se consideren relevantes para la investigación del caso. La inspección y toma de muestras deberá ser realizada por un agente oficial del SENASA, su traslado o remisión será bajo supervisión oficial y su procesamiento en el laboratorio del SENASA. Las pautas relativas a las técnicas de diagnóstico a utilizar, así como su interpretación, se detallan en el Anexo I. Luego de la evaluación inicial de un Evento sanitario bajo investigación oficial, el Veterinario oficial procederá según las siguientes alternativas: 1. En aquellos casos en los que la información recabada permita descartar de facto la posible ocurrencia del caso investigado, esto permitirá que el Veterinario Local cierre la investigación. 2. En aquellos casos en los que la información recabada no permita ni confirmar ni descartar la ocurrencia del caso investigado deberá procederse a una investigación diagnóstica oficial y podrán aplicarse las medidas precautorias que se consideren relevantes. 3. Ante la evidencia clínica y/o epidemiológica de ocurrencia posible de PRRS: en aquellos casos en los que la información recabada sobre el caso confirme la ocurrencia posible de PRRS deberá procederse a tomar las medidas para evitar la dispersión de la misma. En función de las conclusiones obtenidas de la investigación oficial y de los resultados de laboratorio obtenidos en la misma se procederá de acuerdo a lo indicado en la FASE DE RESPUESTA RAPIDA (punto siguiente). 34 �CAPITULO 4: FASE DE RESPUESTA RAPIDA 35 �8. Definiciones relativas a la Fase de respuesta La identificación de casos sospechosos o confirmados de PRRS surgirá como resultado de las acciones de vigilancia pasiva o activa descriptas previamente en las fases de prevención y detección temprana. A partir de la información clínica, epidemiológica y de diagnóstico recabadas a través de las diferentes estrategias, se podrá arribar a las siguientes instancias: 8.1. Establecimiento sospechoso de estar infectado con el virus de PRRS: Designa a un establecimiento que manifiesta alguno de los siguientes criterios: a) Se ha obtenido reacción serológica positiva en: - dos o más animales de un mismo establecimiento con la técnica de ELISA, o - uno o más animales de un mismo establecimiento con la técnica de IFI; b) Se ha detectado el antígeno o el ácido ribonucleico específico del virus del PRRS en una muestra de uno o más cerdos domésticos o silvestres cautivos que no están epidemiológicamente relacionados con una sospecha o caso confirmado de PRRS o que no se encuentra motivo para sospechar asociación o contactos previos con el virus del PRRS, y no presentan signos clínicos compatibles con el PRRS; o que pueda ser consecuencia del uso de una vacuna. c) Manifestación de signos clínicos compatibles con PRRS; d) evidencia de tener nexo epidemiológico por haber estado en contacto con casos sospechosos o confirmados, aún sin manifestar signos clínicos compatibles con PRRS; e) hallazgo de lesiones macroscópicas o microscópicas compatibles con PRRS y/o diagnósticos presuntivos oficiales o no oficiales sobre los cuales no se obtuvo una conclusión diagnóstica de otras enfermedades infecciosas. 8.2. Establecimiento infectado con el virus de PRRS: Un establecimiento infectado por el virus de PRRS se define por: a) el aislamiento del virus del PRRS, excluyendo las cepas vacunales, en una muestra de un cerdo doméstico o silvestre cautivo; o b) la detección del antígeno o del ácido ribonucleico específico del virus del PRRS en una muestra de un cerdo doméstico o silvestre cautivo que esté epidemiológicamente relacionado con una sospecha o caso confirmado de PRRS o que haya dado motivo para sospechar asociación o contactos previos con el virus del PRRS, con o sin signos clínicos compatibles con el PRRS, a menos que se demuestre que la detección sea consecuencia del uso de una vacuna; o 36 �c) la identificación de anticuerpos específicos del virus del PRRS en muestras de un cerdo doméstico o silvestre cautivo de una piara que haya manifestado signos clínicos compatibles con el PRRS, o que esté epidemiológicamente relacionado con una sospecha o un caso confirmado de PRRS o que haya dado motivo para sospechar asociación o contacto previos con el virus del PRRS, a menos que se demuestre que dichos anticuerpos específicos son consecuencia del uso de una vacuna. 8.3. Establecimiento con nexo epidemiológico con un establecimiento sospechoso o infectado con el virus de PRRS Define a un establecimiento que ha estado o está relacionado a través del movimiento de personas, animales, productos de origen animal o vehículos, empresas proveedoras de alimentos, asesores, o cualquier otro factor posible vehiculizador del virus, con un establecimiento sospechoso o infectado con el virus de PRRS. 9. Medidas sanitarias 9.1. Medidas a implementar en un Establecimiento sospechoso de estar infectado con el virus de PRRS Una vez que el establecimiento es considerado Sospechoso de estar infectado con el virus de PRRS, el veterinario deberá comunicar a la DNSA de Senasa Central respetando la cadena de mando y deberá tomar las siguientes medidas sanitarias en forma inmediata: 1. Interdicción/Cuarentena – comunicación al propietario. Comunicar fehacientemente al titular o responsable de los animales sobre la prohibición o restricción de ingreso y egreso de personas, animales y vehículos hasta que se descarte la sospecha, arbitrando que: a. Se aíslen los animales afectados. b. No ingrese ni egrese del establecimiento ningún animal susceptible, y en caso de tratarse de un establecimiento constituido por diferentes unidades productivas, que todos los animales de las distintas unidades se encuentren aislados de los sospechosos de estar enfermos. 2. Bioseguridad. Todas las acciones desarrolladas en el establecimiento se cumplan contemplando normas de bioseguridad que eviten la diseminación de agentes patógenos. Extremar medidas de limpieza y desinfección de instalaciones en general, entradas y salidas de personas y vehículos y sensibilizar al productor sobre la necesidad de respetar de manera estricta los protocolos y las medidas de bioseguridad establecidas. 3. Investigación epidemiológica: a. Verificar y registrar el censo de existencias por categorías. 37 �b. Inspección clínica. Verificar y asentar síntomas y lesiones por categorías/grupos etarios. Cuantificar y asentar la cantidad de animales muertos, enfermos, sanos teniendo en cuenta también tiempo trascurrido desde el inicio del evento dentro y entre las categorías/grupos etarios. c. Relevar ingresos y egresos de animales de los últimos 90 (días) previos al inicio de los signos clínicos, en caso de desconocer inicio de signos clínicos, considerar los últimos 6 (seis) meses desde la notificación. d. Investigar probables fuentes de contagio: ingresos de animales, semen, importación de reproductores porcinos o semen porcino desde otros países, vectores mecánicos del virus (vehículos, personas, maquinarias, vacunadores, profesionales, etc.), ubicación de la explotación, contigüidad con vecinos, cercanía a concentraciones de animales (invernadores, acopiadores, predios feriales). e. Identificar explotaciones linderas con porcinos. f. Identificar explotaciones con nexo epidemiológico: por haber registrado ingreso y/o egresos de especies susceptibles desde o hacia el establecimiento sospechoso, y/o vectores mecánicos, en los últimos 90 días del inicio estimado de la enfermedad, y/o explotaciones con las cuales comparte veterinario privado/asesor/proveedores, u otro factor que se considere posible fuente de contagio. 4. Toma y remisión de muestras: Consiste en la toma de muestras de sueros y órganos para realizar pruebas serológicas y virológicas que permitan descartar o confirmar la circulación viral en la explotación. Se deben tomar: - Muestras de SUERO de 60 (sesenta) animales (si hay menos, de todos), incluyendo animales con signos clínicos y preferentemente jóvenes (30-110 días). - Muestras de TONSILAS: se recolectan a través de biopsia de 3 a 5 cerdos. En caso que corresponda, seleccionar preferentemente a los cerdos con reacción serológica positiva que hayan motivado la sospecha o en su defecto a 5 (cinco) cerdos que estén alojados en el mismo lugar donde estuvieron los positivos. - Muestras de la NECROPSIA de 3 a 5 animales enfermos (sacrificados o recién muertos). Las muestras a remitir son: sangre entera, suero, tonsilas, pulmón, ganglios linfáticos, bazo, placenta y fetos abortados. Las MUESTRAS DE SUERO se recolectan de acuerdo al diseño del muestreo que asegura una confianza del 95% para detectar uno o más animales infectados si la prevalencia de porcinos infectados en el predio es de, al menos, 5%. El número de animales a muestrear por establecimiento depende del número de cerdos presentes en el predio, y se calcula según la siguiente tabla: NÚMERO DE MUESTRAS A TOMAR Total de porcinos en el Lechones 6 a 12 meses de edad predio Reproductores Total Menos de 30 Todos Todos Todos Todos 30 – 49 10 10 15 (si hay menos, todos) 35 38 �50 – 100 10 10 25 (si hay menos, todos) 45 Más de 100 10 20 29 (si hay menos, todos) 59 En los casos en que no se encontraran suficientes animales de una categoría para cumplir con lo indicado en la tabla se completará en primer lugar con reproductores y en caso de no ser suficientes con animales de 6 a 12 meses de edad. En caso de establecimientos mixtos o en confinamiento total que posean más de un galpón o corrales, cada uno de ellos será considerado como una unidad epidemiológica y se tomarán 60 muestras de suero de cada uno de ellos. 5. Protocolización. Utilizar los Protocolos de Enfermedad Denunciable de la Res. Senasa Nº 540/2010. El Senasa autorizará el levantamiento de las medidas descritas ante la evaluación de la información epidemiológica disponible y la obtención de resultados negativos a las pruebas diagnósticas de laboratorio, que concluyan en la ausencia de circulación viral. 9.2. Medidas a implementar en Establecimientos con nexo epidemiológico con un establecimiento sospechoso de estar infectado con el virus de PRRS El SENASA podrá indicar el inicio de la investigación en establecimientos relacionados epidemiológicamente con una sospecha, aunque esta no se encuentre aún confirmada de acuerdo a la información disponible. En los establecimientos identificados como “nexos epidemiológicos” se deben llevar a cabo las siguientes acciones: 1. Inspección clínica. Realizar inspección clínica y confirmar o descartar signos clínicos compatibles con PRRS. 2. Interdicción. Proceder a la interdicción y prohibición de los movimientos de animales, personas y vehículos hasta que se haya descartado oficialmente la sospecha de presencia del virus de PRRS en los mismos. 3. Toma de muestras. De acuerdo a la información epidemiológica disponible, el SENASA podrá indicar la toma de muestras para descartar o confirmar la presencia de infección. 4. Bioseguridad. Sensibilizar sobre la necesidad de respetar de manera estricta los protocolos y las medidas de bioseguridad establecidas en las explotaciones con porcinos. 5. Excepciones. No obstante, de ser necesario y bajo condiciones establecidas por SENASA se podrá autorizar el transporte de animales de especies susceptibles y no susceptibles, bajo supervisión oficial, directamente a una planta de faena determinada por el SENASA lo más cercana posible al establecimiento en cuestión para su faena controlada. 39 �6. En caso de confirmarse la infección en la explotación con la cual resultó ser “nexo” y en caso de no haberse tomado muestras con anterioridad, deberá considerarse la realización de pruebas diagnósticas de laboratorio teniendo en cuenta el periodo de ventana y fecha de último contacto con el foco. 7. El Senasa autorizará el levantamiento de las medidas descritas ante la evaluación de la información epidemiológica disponible y la obtención de resultados negativos a las pruebas de diagnóstico de laboratorio que concluyan que no hay infección por el virus de PRRS en la explotación. 8. En caso de resultar positivo el nexo epidemiológico será considerado FOCO y será tratado como tal. 9.3. Respuesta ante la confirmación de un Establecimiento infectado con el virus de PRRS: 9.3.1. Definición de zonas epidemiológicas 1. Foco: Unidad epidemiológica que contiene un establecimiento que fue identificado como Infectado con el virus de PRRS. 2. Zona focal: área determinada por Senasa en la cual se localizan dos o más focos y que por su proximidad o relación epidemiológica corresponde su tratamiento en conjunto. 3. Zona perifocal (ZP): un área de un radio o superficie determinados, en general de un mínimo de 3 kilómetros, que se establece alrededor de un foco o zona focal donde se aplican medidas sanitarias y restricciones de movimientos de animales, productos y subproductos, a fin de evitar la propagación del virus de PRRS por fuera de la zona. El radio o área será definido por Senasa, según las siguientes consideraciones: a. la distribución de los animales susceptibles, los patrones de tráfico a los mercados, áreas de servicio y mataderos, y las áreas que constituyen barreras naturales para el movimiento. b. Cuando la explotación infectada se encuentra en un lugar aislado, el límite podrá ser el cerco perimetral. 4. Zona de vigilancia (ZV): un área de un radio o superficie determinados de, al menos DIEZ (10) kilómetros, que se establece alrededor de la Zona perifocal, separándola del resto del país, donde se aplican medidas sanitarias y restricciones de movimientos de animales, productos y subproductos, a fin de evitar la propagación del virus de PRRS al resto del territorio. El radio o área de la ZV será definido por Senasa, según las siguientes consideraciones: a. la distribución de los animales susceptibles, los patrones de tráfico a los mercados, áreas de servicio y mataderos, y las áreas que constituyen barreras naturales para el movimiento. 40 �b. El límite no necesariamente debe ser circular o en paralelo al Foco y, en lo posible debe incorporar, al menos, un matadero a ser utilizado en la gestión de la emergencia. 9.3.2. Medidas a implementar en el FOCO o la ZONA FOCAL Una vez confirmada la presencia de PRRS en un establecimiento se mantendrán todas las medidas aplicadas durante la atención de la sospecha y se accionarán los EQUIPOS REGIONALES DE EMERGENCIA, según normativa vigente. Adicionalmente, el Senasa procederá a arbitrar los medios para asegurar las siguientes medidas: 1. Mantener las medidas establecidas en la sospecha, incluyendo el control estricto de los movimientos de animales, personas y vehículos desde y hacia el/los foco/s. 2. Extremar las medidas de limpieza y desinfección: de instalaciones en general, entradas y salidas de personas y vehículos. 3. Protocolizar el foco y registro del rastreo epidemiológico. El personal actuante en el foco deberá completar el Protocolo de Enfermedad Denunciable según Resolución Senasa Nº 540/2010 (o sus modificatorias) y registrar las acciones de rastreo epidemiológico llevadas a cabo. 4. Despoblamiento. Decomisar y sacrificar in situ a todos los animales de especies susceptibles, enfermos o sospechosos de estar infectados y sus contactos en el establecimiento y otras unidades productivas dentro del mismo predio. 5. Antes y durante el sacrificio sanitario de los animales se podrán tomar muestras para ampliar la investigación epidemiológica. 6. Los cadáveres de los animales de especies susceptibles que hayan muerto o que se hayan sacrificado en el establecimiento serán eliminados de manera inmediata y bajo supervisión oficial mediante: transformación, enterramiento, incineración in situ o en un lugar autorizado por el Senasa o mediante cualquier otro método descrito en el Capítulo 4.12. “Eliminación de animales muertos” del Código Terrestre, de forma que no haya ningún riesgo de propagación del virus de PRRS. 7. Durante y luego del sacrificio se deberán implementar las medidas de limpieza y desinfección de las explotaciones a través de los procedimientos definidos en el Capítulo 4.13. del Código Terrestre. 8. Todos los productos, subproductos, elementos y sustancias capaces de vehiculizar el virus se mantendrán aislados hasta su destrucción o desinfección supervisada por Senasa. 9. El Senasa podrá determinar medidas adicionales acorde a la evaluación de la situación epidemiológica que se presente. 10. Profundizar la investigación epidemiológica iniciada en la sospecha, a fin de determinar en tanto sea posible el probable origen de la infección y las potenciales vías de diseminación a otras explotaciones. 11. De acuerdo a la evaluación epidemiológica, en caso de corresponder y en circunstancias excepcionales bajo la autorización y supervisión de SENASA, el despoblamiento indicado en el punto 4. se podrá realizar a través de faena controlada, previa estabilización del sitio usando el concepto de cierre completo del mismo. 41 �a. La faena se realiza en establecimientos frigoríficos habilitados por Senasa y bajo condiciones que eviten el riesgo de propagación del virus de PRRS durante el transporte y la matanza, respetando las pautas de bienestar animal. b. El veterinario local actuante del SENASA, coordinará el envío de los animales a al matadero indicado en el punto anterior con el responsable sanitario de dicho establecimiento faenador a fin de que se tomen las previsiones de bioseguridad correspondientes. 12. Establecer zona perifocal y zona de vigilancia a partir del/de los foco/s o zona focal e implementar las medidas establecidos en el presente plan. 13. El levantamiento de las medidas sobre el establecimiento por parte de Senasa se realizará luego de 30 días de ausencia total de animales susceptibles y de finalizadas las acciones de limpieza y desinfección de las instalaciones. 9.3.3. Implementación de la ZONA PERIFOCAL Al momento de la declaración del foco/s o zona focal se debe definir, a partir del mismo, una zona perifocal y una zona de vigilancia, donde se aplicarán las medidas sanitarias y restricciones de movimientos de animales, productos y subproductos según los criterios establecidos en el presente plan. La Zona perifocal (ZP) es un área de un radio o superficie a partir del foco o zona focal, en general, de un mínimo de 3 kilómetros. El radio o área será definido por Senasa, considerando la distribución de los animales susceptibles en la zona, los patrones de movimientos y comercialización, áreas de servicio y mataderos, barreras naturales, entre otros. Cuando la explotación infectada se encuentra en un lugar aislado, el límite podrá ser el cerco perimetral. En la ZONA PERIFOCAL se aplicarán las siguientes medidas: 1. Relevar y actualizar las existencias de explotaciones con porcinos, mataderos, ferias ubicados dentro de la zona a través de los registros existentes. 2. Establecer las comunicaciones e indicaciones para reforzar la vigilancia en todas las explotaciones dirigido a veterinarios oficiales, privados y productores. 3. Suspender cualquier concentración (feria, mercados, exposiciones, etc.) de ganado porcino dentro de la ZP. 4. Prohibir los ingresos y egresos de cerdos desde y hacia explotaciones ubicadas dentro de la ZP. 5. Prohibir los ingresos y egresos de cerdos desde y hacia la ZP. Excepcionalmente, se permitirá el ingreso de cerdos a la ZP con destino directo y exclusivo a faena en matadero. 6. Tránsito interno: Los camiones, vehículos y maquinarias dedicadas al transporte de cerdos, ganado o productos (por ejemplo: pienso, estiércol, etc.) y que se utilicen dentro de dicha zona perifocal, no podrán salir de las granjas o del matadero sin haber sido limpiados y desinfectados. 7. Egreso de la ZP: Todo camión o vehículo que haya sido utilizado para el transporte de cerdos en la ZP deberá contar con un certificado de lavado y desinfección expedido por la autoridad competente para el egreso de la ZP. 42 �8. En caso de no contar con lavadero habilitado dentro de la ZP se arbitrarán los medios para asegurar la limpieza por métodos móviles (mochilas, etc.) para dar cumplimiento a la medida correspondiente antes de salir de la ZP. 9. Sobre las explotaciones ubicadas dentro de la Zona Perifocal: a. El Equipo de Emergencia realizará la visita de las explotaciones con porcinos en un plazo máximo de siete (7) días. b. Durante las visitas se realizarán las siguientes acciones: actualización de existencias, inspección clínica, entrevista al productor/responsable de cerdos para relevar eventos sanitarios, ocurrencia de signos clínicos, mortandades, etc. También, se debe informar y sensibilizar al productor sobre la ocurrencia del foco y sus riesgos, las medidas de prevención, medidas de bioseguridad, restricción de ingresos y egresos impuesta en la ZP y sobre la obligación de comunicar a Senasa cualquier novedad sanitaria de manera inmediata. c. El Senasa podrá autorizar el movimiento de otras especies animales distintas al porcino previa aplicación de protocolos de bioseguridad establecidos por Senasa. 10. Toda novedad sanitaria (cerdos muertos, enfermos o abortos) dentro de la ZP deberá ser informada de manera inmediata al Senasa, quien efectuará las investigaciones necesarias para descartar la presencia de PRRS. 11. Excepcionalmente, se podrá conceder autorización para sacar cerdos de las explotaciones de la ZP para ser transportados directamente a un matadero designado por la Dirección Nacional de Sanidad Animal, preferentemente situado dentro de la zona o, en su defecto, dentro de la zona de vigilancia. En todos los casos, previo al despacho de los animales se debe efectuar una inspección de todos los cerdos de la explotación, en general, y de los cerdos que vayan a transportarse al matadero, en particular. Un número proporcional de estos últimos deberán ser evaluados en su temperatura corporal, marcados en forma indeleble y ser transportados en vehículos precintados por la Dirección Nacional de Sanidad Animal. 12. En caso de no disponer de un matadero dentro de la ZP ni de la ZV, y que por cuestiones productivas y de bienestar animal la faena no pudiese posponerse, el Senasa establecerá las condiciones para autorizar el envío a faena por fuera de esas zonas. 13. La aplicación de las medidas dentro de la ZP se mantendrán al menos hasta que: a. Trascurran 30 (treinta) días desde la finalización de las operaciones de limpieza y desinfección en el foco o zona focal. Y, b. Que no haya habido novedades sanitarias (nuevos focos) en la ZP ni ZV. Y, c. Que se haya realizado un muestreo representativo de establecimientos de la ZP que incluya inspección clínica y un muestreo oficial que permita descartar la diseminación de la infección con el virus de PRRS, siendo el muestreo realizado, al menos, 30 (treinta) días después de finalizadas la limpieza y desinfección del foco. 43 �9.3.4. Implementación de la ZONA DE VIGILANCIA La zona de vigilancia (ZV) es un área de un radio o superficie que se establece alrededor de la Zona Perifocal de DIEZ (10) kilómetros. Esta zona separa la ZP del resto del país, y también se aplican medidas sanitarias y restricciones para animales, productos y subproductos. En caso de resultar necesario, el Senasa podrá considerar la extensión del radio o área de la ZV teniendo en cuenta la distribución de los animales susceptibles, los patrones de movimientos de animales y comercialización, áreas de servicio y mataderos, la presencia de barreras naturales, entre otros. El límite no necesariamente debe ser circular o en paralelo al Foco o al radio de la ZP y, en lo posible debe incorporar, al menos, un matadero para ser utilizado en la gestión de la emergencia, en caso de ser necesario. En la ZONA DE VIGILANCIA se aplicarán las siguientes medidas: 1. Relevar y actualizar las existencias de explotaciones con porcinos, mataderos, ferias ubicados dentro de la zona de vigilancia (ZV) a través de los registros existentes. 2. Realizar la comunicación efectiva a veterinarios oficiales, privados y a todos los responsables de las explotaciones ubicadas dentro de la Zona de Vigilancia informando sobre la situación de emergencia sanitaria, las medidas de prevención, medidas de bioseguridad y sobre la obligación de comunicar a Senasa cualquier novedad sanitaria de manera inmediata. 3. Suspender cualquier concentración (feria, mercados, exposiciones, etc.) de ganado porcino dentro de la ZV. 4. Prohibir los ingresos y egresos de cerdos desde y hacia explotaciones ubicadas dentro de la ZV hasta tanto el Senasa evalúe la situación epidemiológica en foco y perifoco. 5. Prohibir los ingresos y egresos de cerdos desde y hacia la ZV. Excepcionalmente, se permitirá el ingreso de cerdos a la ZV con destino directo y exclusivo a faena en matadero. 6. Tránsito interno: Los camiones, vehículos y maquinarias dedicadas al transporte de cerdos, ganado o productos que puedan estar contaminados (por ejemplo: pienso, estiércol, etc.) y que se utilicen dentro de dicha zona de vigilancia, no podrán salir del matadero sin haber sido limpiados y desinfectados de acuerdo a los procedimientos establecidos por la autoridad competente. 7. Egreso de la ZV: Todo camión o vehículo que haya sido utilizado para el transporte de cerdos en la ZV deberá contar con un certificado de lavado y desinfección expedido por la autoridad competente para el egreso de la ZV. 8. En caso de no contar con lavadero habilitado dentro de la ZV se establecerán métodos adecuados (mochila, etc.) para dar cumplimiento a la medida correspondiente. 9. En caso que se considere necesaria la visita a establecimientos de la ZV, el Senasa procederá a realizar actualización de existencias, inspección clínica, entrevista al productor/responsable de cerdos para relevar eventos sanitarios, ocurrencia de signos clínicos, mortandades, etc. También, se debe informar y sensibilizar al productor sobre la ocurrencia del foco y sus riesgos, las medidas de prevención, medidas de bioseguridad, restricción de ingresos y egresos impuestas y sobre la obligación de comunicar a Senasa cualquier novedad sanitaria de manera inmediata. 44 �10. Toda novedad sanitaria (cerdos muertos, enfermos o abortos) dentro de la ZV deberá ser informada de manera inmediata al Senasa, quien efectuará las investigaciones necesarias para descartar la presencia de PRRS. 11. La aplicación de las medidas dentro de la ZV se mantendrán al menos hasta que: a. Trascurran 30 (treinta) días desde la finalización de las operaciones de limpieza y desinfección en el foco o zona focal. Y, b. Que no haya habido novedades sanitarias (nuevos focos) en la ZP ni ZV. Y, c. Que se haya realizado un muestreo representativo de establecimientos de la ZV que incluya inspección clínica y un muestreo oficial que permita descartar la diseminación de la infección con el virus de PRRS, siendo el muestreo realizado, al menos, 30 (treinta) días después de finalizadas la limpieza y desinfección del foco. 9.4. Medidas de bioseguridad a ser observadas recomendadas dentro de las explotaciones afectadas y Cuando corresponda de acuerdo a lo indicado en el apartado 10.1, deberán observarse, recomendarse y/o mantenerse las siguientes medidas de bioseguridad: 1. Restricción de movimientos de los cerdos dentro del establecimiento. Procurar mantenerlos en recintos cercados. Evitar mover los animales entre corrales, salas, galpones o edificios. 2. Los propietarios de ganado porcino y el personal que trabaja con cerdos deberán evitar el contacto con poblaciones de cerdos ajenas. Reducir el número de visitantes al mínimo. 3. Mejorar el vallado del perímetro de la explotación para prevenir el contacto de los cerdos domésticos con los cerdos silvestres y viceversa. 4. Los cadáveres deberán mantenerse en lugares donde no tomen contacto con otros animales y, en caso indicado, se deben eliminar de manera adecuada de acuerdo al presente plan. 5. Limpieza y desinfección de los vehículos de transporte de cerdos después de la descarga, antes de abandonar el establecimiento. El equipo y los locales deberán limpiarse y desinfectarse periódicamente. 6. Deberá evitarse el intercambio de equipos de trabajo entre explotaciones. 7. Utilizar ropa de trabajo exclusiva del establecimiento. Implementar cambio de ropa a visitantes y entre sitios. 9.5. Criterios para la adopción de las medidas sanitarias para la erradicación de la enfermedad Las medidas sanitarias para la erradicación del virus de PRRS de una explotación se basarán en los lineamientos establecidos en el presente Plan y en las condiciones que el Senasa establezca según la situación epidemiológica observada, tipo y tamaño de la explotación, ubicación, densidad porcina de la zona afectada, recursos disponibles, entre otros. 45 �Ante las características de la enfermedad y el lapso de tiempo que puede transcurrir desde la aparición real de la enfermedad, su notificación, la atención y la confirmación por laboratorio no se descarta la probabilidad que haya ocurrido la diseminación de la enfermedad por fuera del foco hacia otros establecimientos. Es por ello que, ante la confirmación del foco, se requiere estudiar el alcance de la diseminación en la región y sus nexos, las consecuencias y la sustentabilidad de las medidas a tomar para decidir la aplicación de medidas de control en detrimento de las medidas de erradicación. La erradicación se basa en la eliminación de la fuente de infección, o sea, los animales infectados. Según las características de la explotación afectada y según otros aspectos de la situación epidemiológica descritos más arriba, la eliminación total de los animales o despoblamiento podrá ser inmediata o programada (bajo ciertas condiciones) y realizarse in situ o en mataderos (bajo ciertas condiciones). El tipo de despoblamiento dependerá de la estructura poblacional de la granja, del tamaño y sistema productivo (confinamiento, ciclo completo, multisitios, etc.) ya que se debe tener en cuenta el impacto económico, ambiental y operativo que conlleva el sacrificio de animales durante un foco. Mientras que en ciclos completos (monositios) el programa de erradicación consiste en el despoblamiento total seguido del repoblamiento con cerdas libres de enfermedad, en multisitios podría resultar efectivo implementar la previa estabilización del sitio I y el despoblamiento total o parcial de la recría y terminación. Experiencias de erradicación en otros países expresan que el éxito del programa se atribuye a la estandarización y estricto cumplimiento de los protocolos establecidos, la restricción de los movimientos animales y la colaboración entre el sector oficial y el sector productivo. Si bien el presente Plan de Contingencia establece lineamientos o criterios para la erradicación, el Senasa analizará la situación epidemiológica y factores para determinar el tipo de estrategia a utilizar en cada caso. 9.5.1. Estrategias a aplicar en establecimientos a baja escala, medianos, ciclo completo (monositios) y engordes El despoblamiento total indicado en focos y zona focal a través del sacrificio sanitario es la estrategia de elección para erradicar la enfermedad en establecimientos de traspatio, a baja escala, granjas de ciclo completo (monositio) y engordes. Como se mencionó anteriormente, existen dos tipos de “sacrificio sanitario” según su alcance y condiciones para su implementación: 1. Sacrificio sanitario inmediato: se trata de la eliminación de todos los cerdos de la explotación de manera inmediata, in situ. Es de aplicación para explotaciones de baja escala, habitualmente en las etapas tempranas de un brote epidémico que se encuentra limitado, cuando la granja además de ser pequeña se encuentra aislada, o constituye el primer caso en una zona de alta densidad de granjas. 2. Sacrificio sanitario programado: se trata de la eliminación en forma programada y progresiva, en algunos casos se realiza in situ y en otros, a través del envío a un matadero autorizado. Es de aplicación en una explotación con tamaño poblacional 46 �mediano a grande, monositios, en engordes, o cuando los focos se detectan en varias explotaciones medianas o grandes en la misma zona, o cuando el sacrificio total inmediato no puede llevarse a cabo. 9.5.2. Estrategias a aplicar en establecimientos multisitio En granjas multisitio, previo al despoblamiento total por sacrificio sanitario descrito en el punto anterior, el Senasa podrá evaluar y, eventualmente, autorizar la aplicación del método de estabilización del sitio de reproducción mediante el cierre completo de las instalaciones involucradas si las condiciones de bioseguridad y manejo garantizan el éxito de la práctica. A manera de resumen, el método consiste en “cerrar” el sitio 1 o de reproducción al ingreso normal de cachorras de reposición por, al menos, 6 (seis) meses. El objetivo es que la totalidad de las hembras se infecten de manera que una vez finalizada la circulación viral, estas hembras comiencen a dar origen a lechones no excretores de virus. La investigación para demostrar ausencia de circulación viral se basara en el análisis de muestras de lechones al destete por la técnica de PCR. Si durante los muestreos se detecta la presencia de animales reaccionantes se debe recomenzar todo el proceso. 9.5.3. Sacrificio sanitario. Aspectos a tener en cuenta. El veterinario oficial actuante con apoyo de los Equipos Regionales de Emergencia, deberán considerar los siguientes aspectos: Aspectos del sacrificio en FOCO: 1. En granjas donde los cerdos presentan signos clínicos deben ser sacrificados y eliminados en la misma explotación con un método adecuado que evite la diseminación del virus (métodos descritos en el presente plan). 2. En el caso de recurrir al enterramiento y/o incineración el Equipo de Sacrificio del Equipo de Emergencia deberá estudiar la factibilidad, tipo de terreno, normas locales de gestión ambiental, etc. También se podrá contemplar otro lugar que exija el menor movimiento posible de animales y productos de riesgo por fuera de la explotación. 3. En caso de la faena controlada, el Equipo Regional de Emergencia deberá evaluar las condiciones en las que se enviarán y faenarán los cerdos: i. Que el matadero se encuentre ubicado en la misma zona perifocal o vigilancia. Considerar rutas de acceso y granjas linderas al matadero. ii. Que el matadero se encuentre habilitado por Senasa, en su defecto, se arbitren los medios para que todo el proceso de faena sea supervisado por un veterinario oficial. iii. Que se informe previamente al veterinario inspector de la intención de enviar cerdos al mismo. iv. Programar la faena en el último turno del día. 47 �v. A su llegada al matadero, los cerdos serán mantenidos y sacrificados en lugares separados de los ocupados por otros cerdos. vi. Se aplicarán medidas extraordinarias de limpieza y desinfección de las instalaciones antes y después de la faena. vii. Los vehículos y el material que se hayan utilizado para el transporte de cerdos serán limpiados y desinfectados inmediatamente luego de su uso. viii. Se debe considerar luego del sacrificio en matadero realizar: a. Destrucción total de vísceras y b. Remoción de todos los ganglios linfáticos visibles y c. termoprocesado, ó d. destrucción total de todas las canales, ó e. carne fresca fraccionada en cortes individuales, envasada al vacío y refrigerada a una temperatura no inferior a +4°C (cuatro grados centígrados) durante al menos 7 (siete) días, ó f. carne fresca fraccionada en cortes individuales y almacenada a -20C° (menos veinte grados centígrados) durante al menos 60 (sesenta) días. ix. Ningún producto de la faena podrá ser destinado a exportación. Aspectos de la faena controlada en la ZONA PERIFOCAL y ZONA DE VIGILANCIA: El Senasa podrá autorizar el envío de animales con destino a faena bajo la modalidad de faena controlada de los animales de las ZP y ZV, la cual se debe realizarse preferentemente en mataderos situados dentro de las mismas zonas, y bajo supervisión de la Dirección Nacional de Sanidad Animal. Los cerdos que vayan a transportarse al matadero deben ser objeto de un examen clínico, toma de la temperatura corporal a un número representativo de animales, que hayan sido marcados y que sean transportados en vehículos precintados por el veterinario oficial. Se informará al Veterinario Oficial del matadero de la intención de enviar cerdos al mismo. A su llegada al matadero, los cerdos serán mantenidos y sacrificados en lugares separados de los ocupados por otros cerdos. Durante la inspección ante y post mortem llevada a cabo en el matadero designado, el Veterinario Oficial deberá tener en cuenta los posibles síntomas que puedan revelar la presencia de infección por el virus del PRRS. Los camiones y demás vehículos y material que se hayan utilizado para el transporte de los cerdos deberán ser limpiados y desinfectados después de cada transporte. 9.6. Pautas en materia de comunicación durante la fase de respuesta: la prensa y la opinión pública durante los brotes Un aspecto importante del control de las enfermedades es la comunicación con las partes interesadas a todos los niveles, desde los productores hasta el público general. Es aconsejable ponerse de acuerdo y designar uno o más voceros oficiales para ofrecer entrevistas y circunscribir las comunicaciones a los medios designados y cualificados a la información oficial. Las siguientes recomendaciones se basan en las normas de comunicación en caso de brotes 48 �epidémicos de la OMS y en el Manual de buenas prácticas para la gestión de emergencias en sanidad animal de la Organización de las Naciones Unidas para la Agricultura y la Alimentación (FAO). Los principios básicos de comunicación cuando se produce un brote Consigna Procedimiento 1 La CONFIANZA es el objetivo Cada comunicación refuerza o socava la confianza. 2 La TRANSPARENCIA herramienta es Comunique a las partes interesadas toda la la información posible, de forma proactiva y voluntaria. 3 Anuncios TEMPRANOS 4 ESCUCHE al público y responda 5 PLANIFIQUE sus comunicaciones de acuerdo a las exigencias que requiera el brote Los anuncios tempranos, aun cuando contengan información incompleta, sirven para evitar los rumores y afianzar el liderazgo; proporcione actualizaciones frecuentes. Muestre en los mensajes que se atienden las preocupaciones del público, incluso si esas preocupaciones parecen poco razonables Pautas para una comunicación eficaz: Sea el primero. Sea honesto. Ármese de razón. Sea creíble. Sea consecuente. Genere confianza y credibilidad, expresando:     empatía y compasión; competencia y experiencia; honradez y franqueza, y compromiso y dedicación. Principales recomendaciones:      Diga toda la verdad. Sea claro y preciso. No tranquilice en exceso. Admita la incertidumbre. Exprese deseos (“Me gustaría tener respuestas”). Explique lo que se está haciendo para obtener respuestas. Recomendaciones para las entrevistas con la prensa:    Antes de la entrevista, escriba los principales mensajes. Repítalos durante la entrevista. Prepárese para contestar al menos las preguntas descriptas a continuación (ya sea ante la prensa o ante el público en general): o ¿Estamos seguros mi familia y yo? 49 �      o ¿Qué puedo hacer para proteger a mi familia y protegerme a mí mismo? o ¿Qué va a pasar con mis animales? o ¿Qué consecuencias económicas me va a ocasionar esto? o ¿Mis animales se van a enfermar también? o ¿Los animales de mi granja corren algún riesgo? o ¿Cómo puedo proteger a los animales de mi granja? o ¿Me van a matar los animales? o ¿Quién es el responsable aquí? o ¿Qué podemos esperar? o ¿Por qué ha pasado esto? o ¿Estaba usted sobre aviso? o ¿Por qué no se previno lo sucedido? o ¿Qué más puede fallar? o ¿Cuándo empezó usted a trabajar en esto? o ¿Qué significa esta información? Diga claramente qué es lo que no sabe y lo que está haciendo para saberlo. Comparta sus dudas con el público. Recuerde: los brotes están en continua evolución y son impredecibles - deje siempre espacio para lo inesperado. Nunca tranquilice en exceso o induzca a error. Acepte el miedo de la gente. 50 �CAPITULO 5: RECUPERACION FASE DE 51 �10. Fase de recuperación 10.1. Recuperación de estatus: estándares internacionales De acuerdo al Artículo 15.3.4 del Código Terrestre de la OIE, en caso de brote de síndrome reproductivo y respiratorio porcino en un país, una zona o un compartimento anteriormente libres de la enfermedad, podrá restituirse el estatus libre tres meses después de la eliminación o el sacrificio del último caso si: a. se ha implementado el sacrificio sanitario o el sacrificio de todos los animales susceptibles en los rebaños infectados y se ha realizado la correspondiente desinfección de las explotaciones; b. se ha ejercido una vigilancia acorde con lo contemplado en los Artículos 15.3.13. a 15.3.16. del Código Terrestre de la OIE con resultados negativos. Cuando no se recurra al sacrificio sanitario o al despoblamiento por medio del sacrificio, se aplica el Artículo 15.3.3. del Código Terrestre de la OIE. El mencionado artículo establece que para que un país, zona o compartimento sea considerado libre de PRRS debe cumplir las siguientes condiciones: 1) PRRS debe ser una enfermedad de notificación obligatoria; 2) Se debe contar con un sistema de alerta temprana; 3) Se debe llevar a cabo una vigilancia en acuerdo a los Artículos 15.3.13. a 15.3.16. durante los últimos 12 meses; 4) No se han registrado la ocurrencia de infección con el virus de PRRS en cerdos domésticos ni silvestres durante los últimos 12 meses; 5) No se ha aplicado vacunación contra PRRS durante los últimos 12 meses en caso de vacunas inactivadas, y por los últimos 24 meses, en caso de utilizar vacunas vivas modificadas; 7) Cerdos y productos de los cerdos han sido importados en acuerdo a los Artículos 15.3.5. a 15.3.12. 10.2. Comunicación de riesgo Los aspectos relacionados a la comunicación del riesgo en esta etapa de recuperación, tendrán intima asociación con los siguientes criterios:  Divulgar las medidas aplicadas en el presente plan de contingencia, observando y haciendo observar las pautas establecidas por los organismos sanitarios internacionales para asegurar una situación epidemiológica favorable a la recuperación del estatus de libre de enfermedad. 52 � Divulgar las medidas tendientes a asegurar que los sistemas y las prácticas de bioseguridad sean siempre adecuadamente implementadas y cumplimentadas principalmente en los sistemas de producción porcina.  Sostener más que nunca la práctica de la comunicación inmediata de eventos de interés sanitario potencialmente asociados a cuadros de ocurrencia o recurrencia de PRRS.  Efectuar campañas de comunicación por medios masivos de comunicación locales, a fin de mantener la concientización y sensibilización de productores y profesionales del sector, así como también en la población general. 10.3. Compensación / indemnizaciones ante una emergencia sanitaria Las acciones contempladas en el presente plan de contingencia serán motivo de las condiciones indemnizatorias y de compensación previstas en el marco de la Ley 3959/1900 (Artículos 24, 25, 26, 27 y 28) y de sus normas modificatorias y/o complementarias. Con el objeto de recuperar el estatus sanitario del país, los recursos económicos para proceder en forma inmediata con el sacrificio de los animales enfermos y sus contactos ante la ocurrencia de un brote del síndrome respiratorio y reproductivo porcino, corresponden a los que establezcan las áreas del Estado Nacional en coordinación con SENASA a instancias del cumplimiento de las leyes y normativas en vigencia, y serán dispuestos en base a una declaración de emergencia sanitaria. El SENASA indemnizará a valor de mercado, en un plazo máximo de treinta días de dictado el acto resolutivo, a los productores que se vean afectados por las medidas adoptadas en el marco de la normativa vigente, y el valor de los animales, podrá ser estimado por un representante idóneo que el Senasa designe, a cuyo efecto podrá seleccionar entre los agentes del mismo Organismo, los productores del lugar o sus representantes, o requerir tasadores de los Bancos Oficiales de la zona y por el propietario o un representante de éste. Aquellos administrados que no hubiesen cumplido con las prescripciones de la normativa sanitaria vigente, perderán todo derecho a ser indemnizados. 53 �CAPITULO 6: ESTRUCTURA ORGANIZATIVA DE LA RESPUESTA CADENA DE MANDOS 54 �11. Procedimientos emergencias organizacionales y operativos para 11.1. Estructura organizacional del SINAESA (Resolución SENASA Nº 779/99 y normas modificatorias) El Sistema Nacional de Emergencias Sanitarias (SINAESA) está encuadrado en los alcances de la Resolución 779/99 o sus normas modificatorias y complementarias. En este contexto existen dos niveles principales donde el Sistema dispone de mecanismos y niveles de decisión político-técnicos y técnico-operativos para completar el proceso de toma de decisiones e implementación de medidas durante la gestión de las emergencias por enfermedades animales:   Nivel Central Nivel Regional y Local A continuación se describe la estructura organizativa establecida en la mencionada normativa: 55 �11.2. Responsabilidades en el marco de la cadena de mandos La estructura funcional describe de manera consecuente las responsabilidades en el despliegue de roles de terreno que definen la cadena de mandos. NIVEL CENTRAL En el Nivel Central se define político-estratégicamente el escenario de la emergencia, la metodología para su control, el financiamiento, la asignación de responsabilidades y la movilización del personal y recursos involucrados en el operativo de erradicación, para lo cual se constituye el Comité Central de Emergencias Sanitarias. El Sistema Nacional de Emergencias Sanitarias, se compone de un Comité Central, presidido por el Presidente del SENASA e integrado por el Director Nacional de Sanidad Animal y sus Direcciones de línea, el Director Nacional de Inocuidad Agroalimentaria, el Director de Laboratorios y Control Técnico, el Director Nacional de Coordinación Técnica, Legal y Administrativa y aquellos otros que se considere necesario convocar ante la Emergencia. NIVEL REGIONAL El SINAESA se basa también en la organización regional de los recursos humanos y materiales existentes en el Senasa. La unidad funcional del Sistema, es el Equipo Regional de Emergencias Sanitarias, vinculado con el nivel central por medio de la Coordinación de Emergencias Sanitarias, de la Dirección de Epidemiología y Análisis de Riesgo de la Dirección Nacional de Sanidad Animal. Este Equipo estará formado por profesionales, paratécnicos y administrativos del SENASA especializados en la atención de emergencias sanitarias, preseleccionados por su perfil tanto técnico como psicofísico. Recibirán capacitación periódica, estando disponibles permanentemente para presentarse en forma inmediata en el lugar que se los convoque. Cada uno de ellos tendrá un suplente ante alguna imposibilidad para el cumplimiento de su función. Cada uno de los Equipos Regionales de Emergencias Sanitarias, desarrollará sus acciones en el ámbito jurisdiccional de las respectivas Direcciones Regionales del SENASA, lo que no invalida que ante la situación emergencial, acudan equipos de distintas regiones a colaborar. Todos contarán con los materiales ubicados en los depósitos estratégicos de cada Dirección. Los Equipos Regionales de Emergencias Sanitarias, tendrán en su composición, UN (1) Coordinador General del Operativo Emergencial y CUATRO (4) Componentes:     Prensa Difusión y Educación Sanitaria, Jurídico, Administrativo Técnico de Terreno. En todos los casos la Unidad Sanitaria Local de la jurisdicción, afectada con su respectivo personal, formará parte del componente Técnico de Terreno, brindando la apoyatura básica necesaria. A su vez, el resto del personal de la zona involucrada en la emergencia como el de 56 �las zonas vecinas, estará disponible para colaborar, una vez declarado el estado de Emergencia Nacional y a requerimiento del Coordinador General del Operativo de Emergencia. 57 �CAPITULO 7: PREPARACION PLAN DE 58 �12. Actualización del marco legislativo y reglamentario La vigencia del presente Plan de contingencia, estará enmarcada en una norma específica establecida por el Servicio Nacional de Sanidad y Calidad Agroalimentaria que será incorporada a los reglamentos específicos con alcance en los mandatos y responsabilidades del SENASA. Los capítulos del presente plan podrán ser actualizados en virtud de las previsiones regulatorias previstas por la legislación vigente. La versión oficial del plan de contingencia en vigencia, será aquel que esté publicado en el sitio oficial del Servicio Nacional de Sanidad y Calidad Agroalimentaria y al cual este servicio le dará la divulgación necesaria para asegurar el pleno conocimiento de las acciones a ser tomadas a sus efectos. 13. Plan de acción. Preparación a la gestión de emergencias 13.1. Implementación operativa de la preparación de las cuatro fases indicadas en el plan Se debe abordar un plan de trabajo para la correcta implementación de las acciones previstas en el presente plan de contingencia. El diseño para el plan de trabajo debe contemplar un diseño para la preparación a las distintas fases de alerta e intervenciones de terreno a saber: • Prevención • Detección temprana • Respuesta rápida • Recuperación del estatus sanitario 13.2. Sensibilización en los miembros de la cadena de mandos Los procesos involucrados al momento de la aplicación del plan de contingencia, deben ser motivo de una adecuada sensibilización, de manera que los distintos actores que forman parte del sistema de gestión de emergencias tengan plena conciencia de cada uno de los componentes y procesos aquí descriptos así como también de los roles y responsabilidades en el marco de la cadena de mandos. Sin embargo, se debe tener presente que también resulta incluir en el diseño de la sensibilización a las autoridades, no exclusivamente las del Senasa, sino también aquellas autoridades nacionales, provinciales y locales (incluyendo autoridades Ministeriales nacionales municipales o departamentales) para proceder orgánica y coordinadamente en circunstancias en las que debe prevalecer el trabajo colaborativo. Áreas técnicas y departamentos y servicios públicos y privados deberán estar en plena conciencia y un adecuado conocimiento de los procedimientos aquí descriptos, circunstancia que requiere acudir a las organizaciones relevantes para acordar y establecer los instrumentos administrativos y operativos, así como también los acuerdos necesarios 59 �para garantizar una adecuada interacción al momento de su efectiva implementación, preparación y eventual aplicación ante una situación de emergencia. 13.3. Campaña de concientización pública: Estrategias de comunicación Así como las autoridades involucradas deben ser plenamente conscientes de las necesidades que implican la implementación de las acciones previstas en el plan de contingencia y de la colaboración requerida en el momento de gestionar una emergencia por enfermedades animales, la población general y las partes interesadas pertenecientes a los distintos sectores que puedan verse involucrados requieren también de una participación activa y colaborativa. Es por ello que los programas de preparación para la gestión de emergencias deben incorporar un componente de comunicación muy exigente con pautas claras de comunicación de riesgo, de manera de llevar al conocimiento de este segmento de la población la información adecuada para una respuesta adecuada. Información relevante a las formas de presentación de la enfermedad, qué signos clínicos tiene, a que especies y categorías afecta haciendo énfasis que no afecta a la salud pública pero como problema de salud animal requiere una especial atención por su alto impacto en la producción, entre otros aspectos deberán ser incluidos en el perfil de trabajo. Adicionalmente se deberá enfatizar la condición de enfermedad de notificación inmediata y la importancia que tiene estar alerta ante la más mínima sospecha y comunicarla a la oficina de Senasa; eso hará más sensible el sistema de vigilancia epidemiológica (vigilancia pasiva). Asimismo se enfatiza sobre la necesidad de incorporar estas acciones en el plan de trabajo para la preparación, dando lugar al rol que debe jugar la comunidad en determinadas circunstancias. 13.4. Sacrificio, destrucción y descontaminación (limpieza y desinfección) La erradicación de un patógeno animal implica niveles de complejidad de mayor o menor magnitud dependiendo de la naturaleza de dicho agente. Para el caso de una contingencia por ingreso del virus del PRRS al territorio de un país detectado tempranamente, comprende la aplicación de prácticas de sacrificio sanitario o faena sanitaria según los casos. No obstante, ello requiere de una adecuada planificación de las acciones que éstas implican, así como también de una planificación y ensayo de los procedimientos de bioseguridad, limpieza y desinfección y cuidado de las instalaciones para evitar eventuales reinfecciones. Estos son puntos críticos que deben ser incluidos de una manera muy cuidadosa y dedicada en todos los programas de preparación para la gestión de emergencias en sanidad animal y el personal deberá ensayar el espectro de preguntas y cuestionamientos 60 �de la sociedad de acuerdo a las consideraciones generales presentadas en el apartado correspondiente (título). 14. Entrenamiento, testeo y revisión del plan de contingencia 14.1. Ejercicios de simulación Los ejercicios de simulación permiten ensayar los procesos de respuesta e implementación de acciones de terreno. Una serie de ejercicios planificados en base a las prioridades establecidas en el marco de trabajo para la preparación de las distintas fases de respuesta, ofrecerán elementos y conclusiones para un plan de mejora continua en términos de respuesta. El Senasa procederá a diseñar las distintas actividades destinadas al cumplimiento de los objetivos y propósitos de las distintas fases, poniendo especial énfasis en la respuesta, sin perder de vista los demás aspectos, principalmente aquellos relacionados con la comunicación y los diseños de políticas de divulgación y concientización para mantener sensible el sistema de notificación inmediata. Dependiendo de los objetivos que se establezcan para los ejercicios de simulación a desarrollar en el marco del presente plan de contingencia, se podrá convocar la participación de profesionales y representantes de los sectores de la actividad privada y agencias públicas relevantes del orden nacional, provincial y municipal que resulten necesarios para el adecuado desarrollo de los mismos. Las actividades a desarrollar se centrarán en ejercicios de simulación de terreno y de gabinete para el entrenamiento de los equipos de emergencia con el soporte y colaboración del grupo especial de apoyo en gestión de emergencias en sanidad animal. 14.2. Entrenamiento Para el entrenamiento de los equipos regionales de emergencia, se procederá con un plan de trabajo consensuado con cada uno de los centros regionales del Senasa en base al nivel de preparación que será monitoreado de manera permanente, priorizando aquellos lugares del país en donde los distintos componentes del presente plan de contingencia, resulten ser críticos a la hora de la implementación. Los equipos regionales de emergencias, participarán del monitoreo permanente de los niveles de preparación de sus propias regiones, aunque también podrán bajo solicitudes especiales y correspondientes autorizaciones, participar de entrenamientos en otros centros regionales según sea necesario. 61 �15. Actualización / adecuación del plan de contingencia de acuerdo a las recomendaciones recabadas del testeo de procesos (gaps y lecciones aprendidas) Uno de los elementos de mayor importancia en la evaluación y testeo de procesos es la identificación de brechas y acciones a implementar para la mejora continua, como asimismo las lecciones aprendidas sean en situaciones simuladas o a partir de situaciones de emergencia real ante casos de enfermedades animales. En virtud de las conclusiones resultantes de los ejercicios de simulación, como así también de los procesos específicos de entrenamiento y monitoreo de los niveles de preparación a la respuesta ante situaciones de emergencias en sanidad animal, los actores involucrados en la gestión de emergencias podrán proponer adaptaciones, ajustes y modificaciones al presente plan de contingencia para consideración de la Dirección Nacional de Sanidad Animal a fin de que refleje la factibilidad real de su adecuada implementación. De la misma manera los actores involucrados en la gestión de emergencias así como las partes interesadas, observarán y extremarán los esfuerzos para promover los ajustes operativos que sean necesarios para la adecuada implementación del presente plan de contingencia. 62 �ANEXOS 63 �ANEXO I- Pruebas de laboratorio disponibles en el Laboratorio Oficial de SENASA y algoritmos de aproximación diagnóstica Las pruebas utilizadas para identificar anticuerpos específicos son la técnica de Elisa indirecto, como prueba tamiz, e Inmunofluorescencia Indirecta (IFI), como prueba confirmatoria. Para la identificación del agente se dispone de la técnica de RT-PCR en tiempo real. A continuación se describen los algoritmos de aproximación diagnóstica aplicables para las diferentes actividades de vigilancia que facilitan la toma de decisiones ante los resultados obtenidos. Algoritmo de aproximación diagnóstica para la vigilancia activa basada en la detección de anticuerpos específicos contra el virus de PRRS: Vigilancia serológica de PRRS SUEROS ELISA 1 (uno) positivo/dudoso en el establecimiento 2 (dos) ó más positivos/ dudosos en el mismo establecimiento IFI cepas americanas - + Todos negativos IFI cepas europeas + Establecimiento sospechoso 1 (uno) ó más positivos/ dudosos en el mismo establecimiento Como técnica TAMIZ se utiliza el kit comercial ELISA IDEXX PRRS Ab que detecta la presencia de anticuerpos específicos contra el virus de PRRS. Ante un resultado con reacción positiva a la prueba de ELISA, se le realiza como prueba CONFIRMATORIA, la prueba de inmunofluorescencia indirecta (IFI). Ambas pruebas diagnósticas determinan la presencia de anticuerpos contra las "cepas tipo 1 (europeas)" y "cepas tipo 2 (americanas)". 64 �La utilización de la técnica de PCR como prueba confirmatoria quedará sujeta a las condiciones de las muestras y la posibilidad de obtener nuevas muestras en tiempo y forma a través del Muestreo Complementario mencionado el algoritmo de aproximación diagnóstica. Las condiciones de conservación de las muestras que se utilizan para PCR son importantes y determinantes para el resultado de la prueba. La conservación de las muestras debe ser la adecuada para preservar la integridad el RNA viral, en caso de que esté presente en la muestra. El hecho que un mismo suero sea utilizado en distintas áreas de trabajo, y sometido a sucesivas congelaciones y descongelaciones corre riesgo la integridad del material de interés diagnóstico con los consecuentes resultados o interpretaciones erráticas. A fin de asegurar condiciones de conservación óptima para llevar a cabo esta técnica, se debería prever, apartar previamente y conservar una alícuota del suero problema a -70°C al momento de ingreso al laboratorio. En caso de resultar positivo a ELISA y a IFI, se podrá recurrir utiliza esa alícuota almacenada para el análisis por RT-PCR. Algoritmo de aproximación diagnóstica para la identificación del agente: Las pruebas para confirmar o descartar la presencia de/del infección/agente se utilizan en el estudio de sospechas clínicas y ante resultados serológicos positivos. En el caso de una sospecha de PRRS, la toma de muestras incluye: - Muestras de SUERO de 60 animales (si hay menos, de todos), incluyendo animales con signos clínicos y preferentemente de animales jóvenes (30-110 días). En caso de establecimientos mixtos o en confinamiento total que posean más de un galpón, cada uno de ellos será considerado como una unidad epidemiológica y se tomarán 60 muestras de suero de cada uno de ellos. - Muestras de TONSILAS: se recolectan a través de biopsia de 3 a 5 cerdos. En caso que corresponda, seleccionar preferentemente a los cerdos con reacción serológica positiva que hayan motivado la sospecha o en su defecto a 5 (cinco) cerdos que estén alojados en el mismo lugar donde estuvieron los positivos. - Muestras de la NECROPSIA de 3 a 5 animales enfermos (sacrificados o recién muertos). Las muestras a remitir son sangre entera, suero, tonsilas, pulmón, ganglios linfáticos, bazo, placenta y fetos abortados. La siguiente tabla describe las muestras, método de conservación, prueba a ser sometida y agentes a diagnosticar en el marco de la sospecha de enfermedad en porcinos: Muestras SUERO Conservación CONGELADO Prueba ELISA-IFI PCR Agentes PRRSV CSFV Brucella spp. Leptospira spp. SIV Diferenciales Aujeszky Brucelosis Leptospirosis Peste Porcina Clásica Influenza 65 �SANGRE ENTERA EDTA PCR PRRSV Peste Porcina CSFV Clásica TONSILAS (*) PCR PRRSV Peste Porcina REFRIGERADO CSFV Clásica CONGELADO ADV Aujeszky PULMON (*) PCR PRRSV Peste Porcina GANGLIOS LINFATICOS REFRIGERADO CSFV Clásica BAZO CONGELADO ADV Aujeszky SIV Influenza FETO: líquido fetal, (*) PCR PRRSV Aujeszky pulmón, timo, hígado. REFRIGERADO ADV Brucelosis PLACENTA CONGELADO CSFV Leptospirosis Brucella Parvovirosis spp. Porcina Leptospira spp. PRV (*) Las muestras para RT-PCR se conserven refrigeradas si van a ser remitidas e ingresadas a Dilacot dentro de las 24hs. Si se supera ese lapso de tiempo, las muestras deben congelarse a 70°C. Investigación en un establecimiento sospechoso TONSILAS, PULMON, SANGRE, SUEROS, otros SUEROS ELISA INDIRECTO 1 (uno) ó más positivos o dudosos en el mismo establecimiento IFI cepas americanas - + + Lesiones compatibles - Todos negativos IFI cepas europeas + PCR Patología - Secuenciación PCR - + + Atención de FOCO 66 �ANEXO II - Equipamiento para la gestión de una emergencia sanitaria a) Equipamiento de los Equipos de Emergencia Regionales: Cada Equipo de Emergencia Regional contará con el siguiente equipamiento básico para la actuación ante una emergencia sanitaria               Indumentaria. Medios de movilidad. Medios de comunicación adecuados. Medios de ubicación satelital. Medios informáticos autónomos. Elementos de contención y sujeción. Elementos de identificación. Instrumental para realizar necropsias. Instrumental para la toma de muestras. Medios específicos para la remisión de muestras. Elementos bioseguros para la remisión de muestras. Instrumental de inoculación. Elementos de sacrificio. Elementos de limpieza y desinfección. b) Equipamiento de emergencia de las Oficinas Locales: Cada Oficina Local de SENASA dispondrá de su propio equipamiento para emergencia consistente en:          Indumentaria. Medios de movilidad. Elementos de identificación. Instrumental para realizar necropsias. Instrumental para la toma de muestras. Medios específicos para la remisión de muestras. Elementos bioseguros para la remisión de muestras. Instrumental de inoculación. Elementos de desinfección. 67 � Dublin Core The Dublin Core metadata element set is common to all Omeka records, including items, files, and collections. For more information see, http://dublincore.org/documents/dces/. Title A name given to the resource Publicaciones SENASA Dublin Core The Dublin Core metadata element set is common to all Omeka records, including items, files, and collections. For more information see, http://dublincore.org/documents/dces/. Title A name given to the resource Plan de contingencia para el Síndrome Respiratorio y Reproductivo Porcino Publisher An entity responsible for making the resource available Servicio Nacional de Sanidad y Calidad Agroalimentaria Date A point or period of time associated with an event in the lifecycle of the resource 2018 Contributor An entity responsible for making contributions to the resource Dirección Nacional de Sanidad Animal Language A language of the resource Es Type The nature or genre of the resource Monografía Identifier An unambiguous reference to the resource within a given context B.S.0085 Abstract A summary of the resource. El Síndrome Respiratorio Reproductivo Porcino (PRRS) es una enfermedad viral que afecta a los cerdos domésticos y silvestres. Es considerada una de las principales enfermedades que generan importantes pérdidas productivas y económicas en el sector porcino por lo que representa una preocupación para el sistema sanitario. El presente documento se elaboró con el propósito de establecer las acciones que permitan contener un eventual ingreso de PRRS al territorio nacional. En el mismo se encuentran identificados y establecidos los escenarios y las acciones técnicas y administrativas, así como los roles y responsabilidades de los distintos actores para el caso de una eventual detección de la enfermedad y sus procedimientos para la respuesta rápida contingente. El presente Plan establece los lineamientos de los procedimientos a ser implementados ante la detección del Síndrome Reproductivo y Respiratorio Porcino (PRRS, por sus siglas en inglés), siendo su alcance todo el territorio de la República Argentina y de aplicación a todos los individuos de las especies susceptibles en los cuales se sospeche o se confirme la infección y/o la enfermedad según corresponda. Table Of Contents A list of subunits of the resource. PREFACIO CAPITULO 1: GENERALIDADES 1. Acrónimos y abreviaturas 2. Alcance y objetivos 3. Marco regulatorio y sus procedimientos asociados 4. Definiciones 4.1. Definiciones generales 4.2. Definiciones relativas a los tipos de explotaciones porcinas presentes en Argentina 5. Descripción de la enfermedad 5.1. Definición 5.2. Etiología 5.3. Características epidemiológicas 5.4. Vías de trasmisión 5.5. Patogenia 5.6. Período de incubación 5.7. Signos clínicos 5.8. Infección prolongada 5.9. Aspectos inmunológicos 5.10. Estabilidad del virus del PRRS 5.10.1. Consideraciones sobre la desinfección 5.10.2. Consideraciones para el lavado y desinfección del transporte 5.11. Animales vivos 5.11.1. Particularidades en las poblaciones de porcinos domésticos 5.11.2. Aspectos de la ocurrencia del PRRS relacionados con las poblaciones de cerdos silvestres 5.12. Productos de origen animal y subproductos 5.13. Diagnóstico 5.14. Diagnóstico diferencial CAPITULO 2: FASE DE PREVENCION 6. Fase de prevención 6.1. Evaluación de riesgos 6.2. Vigilancia Activa 6.3. Vigilancia Pasiva, atención de sospechas, sensibilización 6.4. Bioseguridad en granjas y Buenas Prácticas de Producción 6.5. Controles de importaciones 6.6. Control fronterizo 6.7. Diagnóstico de laboratorio 6.7.1. Diagnóstico en Argentina 6.7.2. Laboratorios de referencia de OIE y otros laboratorios internacionales de referencia 6.8. Estrategias de Educación Sanitaria y Comunicación de riesgo CAPITULO 3: FASE DE DETECCION TEMPRANA 7. Fase de detección temprana 7.1. Notificación de casos compatibles 7.2. Investigación oficial de eventos sanitarios CAPITULO 4: FASE DE RESPUESTA RAPIDA 8. Definiciones relativas a la Fase de respuesta 8.1. Establecimiento sospechoso de estar infectado con el virus de PRRS 8.2. Establecimiento infectado con el virus de PRRS 8.3. Establecimiento con nexo epidemiológico con un establecimiento sospechoso o infectado con el virus de PRRS 9. Medidas sanitarias 9.1. Medidas a implementar en un Establecimiento sospechoso de estar infectado con el virus de PRRS 9.2. Medidas a implementar en Establecimientos con nexo epidemiológico con un establecimiento sospechoso de estar infectado con el virus de PRRS 9.3. Respuesta ante la confirmación de un Establecimiento infectado con el virus de PRRS 9.3.1. Definición de zonas epidemiológicas 9.3.2. Medidas a implementar en el FOCO o la ZONA FOCAL 9.3.3. Implementación de la ZONA PERIFOCAL 9.3.4. Implementación de laZONA DE VIGILANCIA 9.4. Medidas de bioseguridad a ser observadas y recomendadas dentro de las explotaciones afectadas 9.5. Criterios para la adopción de las medidas sanitarias para la erradicación de la enfermedad 9.5.1. Estrategias a aplicar en establecimientos a baja escala, medianos, ciclo completo (monositios) y engordes 9.5.2. Estrategias a aplicar en establecimientos multisitio 9.5.3. Sacrificio sanitario. Aspectos a tener en cuenta 9.6. Pautas en materia de comunicación durante la fase de respuesta: la prensa y la opinión pública durante los brotes CAPITULO 5: FASE DE RECUPERACION 10. Fase de recuperación 10.1. Recuperación de estatus: estándares internacionales 10.2. Comunicación de riesgo 10.3. Compensación / indemnizaciones ante una emergencia sanitaria CAPITULO 6: ESTRUCTURA ORGANIZATIVA DE LA RESPUESTA 11. Procedimientos organizacionales y operativos para emergencias 11.1. Estructura organizacional del SINAESA (Resolución SENASA Nº 779/99 y normas modificatorias) 11.2. Responsabilidades en el marco de la cadena de mandos CAPITULO 7: PLAN DE PREPARACION 12. Actualización del marco legislativo y reglamentario 13. Plan de acción. Preparación a la gestión de emergencias 13.1. Implementación operativa de la preparación de las cuatro fases indicadas en el plan 13.2. Sensibilización en los miembros de la cadena de mandos 13.3. Campaña de concientización pública: Estrategias de comunicación 13.4. Sacrificio, destrucción y descontaminación (limpieza y desinfección) 14. Entrenamiento, testeo y revisión del plan de contingencia 14.1. Ejercicios de simulación 14.2. Entrenamiento 15. Actualización / adecuación del plan de contingencia de acuerdo a las recomendaciones recabadas del testeo de procesos (gaps y lecciones aprendidas) ANEXOS ANEXO I- Pruebas de laboratorio disponibles en el Laboratorio Oficial de SENASA y algoritmos de aproximación diagnóstica ANEXO II - Equipamiento para la gestión de una emergencia sanitaria Enfermedades de los Porcinos https://biblioteca.senasa.gob.ar/files/original/ebd2bb3c83daf4efb4b52d89263b546d.pdf cd646655746ba272f94e7b4458bd6000 PDF Text Text GUIA para el SANEAMIENTO de la ENFERMEDAD DE AUJESZKY en un establecimiento porcino Aspectos a tener en cuenta para su planificación Programa de enfermedades de los Porcinos. SENASA. Colaboraron: UNR – UNRC – INTA - UNLP Noviembre 2016. 1 �Contenido I. ¿Qué es la enfermedad de Aujeszky? .................................................... 3 II. ¿Qué provoca el virus en los animales? ................................................. 3 III. ¿Qué causa la presencia del virus en el establecimiento? ........................ 4 IV. ¿Cuál es la estrategia de control a nivel nacional? .................................. 4 V. ¿Cómo podemos saber si nuestro establecimiento se encuentra INFECTADO? .......................................................................................... 5 VI. ¿Cómo se determina la PREVALENCIA INTRA-PREDIO? ........................... 5 VII.¿Cómo podemos saber si la infección está “activa” o no? ........................ 6 VIII. ¿Cuál es la mejor estrategia de control y erradicación de la enfermedad? .......................................................................................... 7 IX. ¿Cuáles son los factores a tener en cuenta para diseñar mi Plan? ............. 8 X. ¿Cómo se puede erradicar el virus del establecimiento? .......................... 9 XI. Medidas de BIOSEGURIDAD y prácticas de manejo ...............................14 XII. REGISTROS .................................................................................16 XIV. Modelos de Planillas de registro de vacunación. ...............................18 XIII. Cuadro resumen orientativo para la elección de la estrategia. ............17 2 �I. ¿Qué es la enfermedad de Aujeszky? La enfermedad de Aujeszky es causada por el Herpes virus suino tipo 1 (SuHV- 1) de la familia Herpesviridae. Afecta a muchas especies de mamíferos, domésticos y silvestres, como perros, gatos, bovinos, ovinos, nutrias, siendo en todos ellos de resolución mortal. El cerdo, doméstico y silvestre, es considerado su huésped natural y es el único capaz de sobrevivir a la infección por este virus. II. ¿Qué provoca el virus en los animales? El virus provoca cuadros clínicos que varían de acuerdo a la cepa y carga viral, la edad y el estado inmunitario del cerdo afectado, entre otros factores. En lechones se presenta con signos neurológicos y alta mortalidad, en cerdas en reproducción con fallas reproductivas (abortos, repetición de celos) y en animales adultos con afecciones respiratorias. Mientras que en los animales más jóvenes se presenta de manera aguda y generalmente letal, en los animales adultos puede pasar desapercibida o manifestarse con abortos y, una vez superada la fase clínica de la enfermedad, permanecer en estado de latencia. Ciertos estímulos como el estrés, los cambios de temperatura o el uso de inmunosupresores pueden producir una reactivación del virus latente con la subsiguiente aparición de signos clínicos y diseminación de virus al ambiente. El animal infectado que sobrevive, permanece como portador y diseminador del virus toda su vida. 3 �III. ¿Qué causa la presencia del virus en el establecimiento? La presencia del virus en un establecimiento porcino provoca grandes pérdidas económicas, aunque en ciertos casos suelen pasar desapercibidas o subvaloradas debido a la falta de signos clínicos evidentes o cuantificables. La producción se ve afectada directamente por las fallas reproductivas, muerte de lechones y disminución de la ganancia de peso. De manera indirecta causa restricciones a los movimientos de animales y al comercio impuestas por la normativa sanitaria nacional e internacional. Además, los costos de producción aumentan por la reposición de reproductores eliminados, vacunas y tratamientos para otras enfermedades asociadas. IV. ¿Cuál es la estrategia de control a nivel nacional? El Programa Nacional de Control y Erradicación de la enfermedad de Aujeszky fue aprobado por la Resolución exSAGPyA N° 474/2009. El Programa describe tres grandes etapas: En la PRIMERA ETAPA se realizó el diagnóstico de situación, estimando la prevalencia nacional y por regiones e iniciando la clasificación de establecimientos de acuerdo a su estatus sanitario. En la SEGUNDA ETAPA se lleva a cabo la regionalización del país de acuerdo a la presencia y distribución de los predios infectados. Al finalizar la segunda etapa, todos los predios con porcinos del país deberán estar clasificados dentro de alguna de las 4 categorías posibles (LIBRE, NEGATIVO, INFECTADO o EN SANEAMIENTO). Las herramientas que se aplican en cada zona como estrategia de control incluyen: (1) Clasificar los establecimientos dentro de alguna de las 4 categorías posibles (LIBRE, NEGATIVO, INFECTADO, EN SANEAMIENTO), (2) Promover planes de saneamiento obligatorio/voluntarios, con/sin vacunación, de acuerdo a la zona, (3) Regular los movimientos de animales dentro y desde otra zona con diferente situación sanitaria. 4 �V. ¿Cómo podemos saber si nuestro establecimiento se encuentra INFECTADO? En algunos casos pueden evidenciarse signos clínicos (mortandad de lechones, fallas reproductivas, etc.), aunque estos signos no pueden diferenciarse de otras enfermedades. Por lo tanto, la presencia de la infección debe ser confirmada a través del diagnóstico en laboratorio. La técnica utilizada es ELISA que detecta la presencia de anticuerpos en muestras de suero. Las muestras de suero deben ser recolectadas y acondicionadas por el veterinario acreditado del establecimiento. Las mismas deben ser enviadas para su análisis a cualquiera de los laboratorios incluidos en la Red de Laboratorios acreditados por Senasa (Listado disponible en www.senasa.gob.ar) o al Laboratorio Central del Senasa. De acuerdo a la normativa, un predio es considerado INFECTADO cuando al menos un porcino resultó positivo al diagnóstico del virus de la enfermedad de Aujeszky (VEA). De todos modos, ante la posibilidad del hallazgo de un único reactor serológico, y ante ausencia de antecedentes de la enfermedad, cuando surgen 2 sueros positivos, se recomienda confirmar la presencia de infección. Para estimar la prevalencia intrapredio, conocer o confirmar la situación sanitaria, o circulación del virus es conveniente realizar estudios serológicos ampliatorios antes de elaborar la estrategia. VI. ¿Cómo se determina la PREVALENCIA INTRA-PREDIO? Conocer la prevalencia intrapredio, o sea, la proporción de animales infectados es un dato fundamental y definirá el diseño de la estrategia de control y erradicación del establecimiento. Lo ideal es tomar muestras de todos los reproductores, en caso de no muestrear la totalidad, se sugiere un muestreo estadístico para estimar la prevalencia. 5 �VII. ¿Cómo podemos saber si la infección está “activa” o no? Para diseñar la estrategia de control, es importante saber si la infección se encuentra “activa o inestable” (circulación viral) o “estable” (ausencia de circulación viral o circulación baja). La presencia de cerdos en recríaengorde infectados indica que existe circulación viral y, además, debido al periodo relativamente breve en el que este grupo permanece en el predio, se presume que la circulación ha ocurrido recientemente (en los meses previos). Por el contrario, los reproductores pueden permanecer varios años en la piara por lo que la evaluación de los mismos es de escasa utilidad para este fin. Entonces, para evaluar el estatus de la circulación viral se puede realizar el estudio serológico de una muestra de 30 cerdos en recría- engorde de ≥ 16 semanas de edad. La ausencia de animales positivos en la muestra es indicativa de ausencia de circulación viral en ese grupo etario. Además, generalmente, es también indicativo de baja o nula circulación entre los reproductores. Por el contrario, la presencia de cerdos positivos demuestra circulación reciente entre los animales de ese grupo y muy probablemente también entre los reproductores. MUESTREO sugerido para estimar prevalencia intra-predio y para saber si hay o no circulación viral en engorde. En el caso que no se muestreen todos los reproductores del establecimiento, se debe estimar la prevalencia y circulación en engorde a través de un muestreo. La siguiente tabla describe la cantidad sugerida de muestras a tomar para estimar prevalencia y verificar circulación viral. La cantidad de muestras a tomar dependerá de la cantidad de reproductores en el establecimiento. Los padrillos deben muestrearse TODOS, y los positivos deben eliminarse de manera inmediata. 6 �Tabla. Cantidad de animales a muestrear para estimar prevalencia intra-predio y determinar existencia de circulación viral. Cantidad de animales a muestrear (*) Cantidad total de REPRODUCTORES en el predio Hembras reproductoras (mayores a 6 meses) ENGORDE (entre 4 a 6 meses) 40 35 30 30 50 60 100 150 >200 Todas 40 45 65 85 100 Los PADRILLOS se analizan TODOS. (*) Valores obtenidos con los siguientes supuestos: esperada=0.15/Error absoluto=0.05/Nivel de confianza=0.95) 30 30 30 30 30 30 Prevalencia En el caso de hembras reproductoras, las muestras deben incluir hembras de diferentes estratos etarios: DIEZ (10) cachorras que hayan recibido su primer servicio (sin haber llegado a parto), CUARENTA (40) cerdas de diferente número de parto. En el caso de porcinos menores a SEIS (6) meses las muestras deben incluir VEINTE (20) cerdos de cada uno de los siguientes grupos etarios: 10, 14, 18, 22 y 26 semanas de edad. VIII. ¿Cuál es la mejor estrategia de control y erradicación de la enfermedad? No existe un único plan o estrategia de saneamiento. La estrategia para el saneamiento debe ser elaborada en conjunto entre el Veterinario Acreditado y el productor. Ellos son quienes están en mejores condiciones para evaluar la situación sanitaria, productiva, las probabilidades de éxito y el impacto económico y productivo del plan de saneamiento propuesto. El mismo deberá ser diseñado de acuerdo a las características de cada criadero, ya que dependerá de varios factores, entre los cuales se destacan la PREVALENCIA 7 �INTRA-PREDIO, TIPO y FINALIDAD DE LA PRODUCCION y los RECURSOS ECONÓMICOS DISPONIBLES. Independientemente de las situaciones particulares que podrían requerir de la participación directa del Senasa, tales como obligatoriedad, determinadas acciones en diversas zonas, etc. las herramientas técnicas son las generales y las conocidas por el profesional veterinario actuante y son las que deben ser aplicadas de acuerdo a las características del establecimiento. IX. ¿Cuáles son los factores a tener en cuenta para diseñar mi Plan? En la elaboración de la estrategia para el saneamiento deben tenerse en cuenta diferentes factores que pueden afectar las probabilidades de éxito y el impacto del mismo. Entre ellos se podrían mencionar: Factores del establecimiento:  Cantidad de reproductores  Sistema de producción (cría, ciclo completo, engorde)  Prevalencia de animales infectados (prevalencia intrapredio)  Estado de la infección (si existe circulación activa o no)  Instalaciones disponibles  Flujo continuo o en bandas  Capacitación y compromiso del personal  Medidas de bioseguridad aplicadas  Recursos económicos Factores de la región, cuyo radio puede variar de acuerdo a:  Cantidad de establecimientos con porcinos.  Densidad de establecimientos con porcinos.  Prevalencia de establecimientos infectados.  Número de porcinos.  Densidad de porcinos. 8 �X. ¿Cómo se puede erradicar el virus del establecimiento? Existen diferentes alternativas para la eliminación del virus de los predios infectados. A continuación se mencionan algunos de los planes para el saneamiento más utilizados: 1. Detección y eliminación de positivos a. Eliminación inmediata con o sin vacunación. b. Eliminación programada con vacunación. 2. Vacunación sistemática 3. Despoblamiento-repoblamiento 4. Segregación de progenie A continuación se describirán cada una de las estrategias y algunas de las situaciones en las cuales se recomienda su elección: 1. Detección y eliminación de positivos. ¿Cuándo se recomienda? Es recomendado cuando: - la prevalencia intrapredio es reproductoras menor al 10%) BAJA (prevalencia de cerdas - la circulación viral NULA o BAJA (animales de engorde negativos o baja prevalencia) - no hay presencia de signos clínicos Por el contrario, no resulta aconsejable aplicarlo en predios donde haya signos clínicos o circulación viral en cerdos de recría-engorde. Cuanto menor sea el número de reproductores, la prevalencia y la circulación viral y mayor la frecuencia de detección y eliminación de positivos, mayores serán las probabilidades de éxito del plan. ¿Cómo se debe realizar? Existen dos alternativas de eliminación: “inmediata” y “programada”: 9 �a. Detección y eliminación INMEDIATA de positivos (con o sin vacunación): - esta - opción está recomendada reproductores es menor del 10% y, cuando la prevalencia en los no hay circulación viral entre cerdos de recría–engorde. ¿Cómo se realiza? Se toman muestras de sangre de todos los reproductores y se descartan en forma inmediata los animales cuyas muestras resultaron positivas. Este procedimiento se repite cada 30 días. Si luego de tres análisis consecutivos se continúa encontrando animales positivos la estrategia de saneamiento debería ser reconsiderada, ya que hay evidencias de circulación viral. En algunas situaciones el procedimiento descripto puede ser complementado con la vacunación regular de los reproductores. La vacuna reduce la probabilidad que un reproductor infectado pueda eliminar virus y contagiar a otros durante el periodo comprendido entre su detección y su eliminación. Cuanto más breve sea este periodo menor será el riesgo de que un animal positivo sea fuente de virus, y contagie a nuevos animales. b. Detección y vacunación): eliminación programada de positivos (con - esta alternativa es similar a la anterior, incluso cuando la prevalencia alcanza hasta el 25%. - Permite la eliminación de los reproductores positivos respetando el momento de su ciclo productivo. Esta estrategia minimiza el impacto del flujo de animales y los costos asociados con el plan. La desventaja es que los animales positivos permanecen en el predio por un mayor tiempo después de la detección pudiendo aumentar el riesgo de actuar como fuente de virus. La probabilidad de que uno de estos reproductores vacunados e infectados transmita la infección es baja. Sin embargo, el riesgo de que por lo menos uno de esos animales actué como fuente de virus se incrementa en la medida que sea mayor la prevalencia, el 10 �número de reproductores y el tiempo entre la detección y la eliminación de positivos. ¿Cómo se realiza? Deben tomarse muestras de sangre de todos los reproductores (madres y padrillos) para su correspondiente análisis. Los padrillos que resulten positivos deben ser eliminados inmediatamente. Todas las hembras (reproductoras y cachorras de reposición) que permanezcan en la piara deben ser vacunadas inmediatamente y revacunadas regularmente. Las madres positivas suelen descartarse luego del destete (o a veces, después de un segundo destete). El reemplazo de cerdas infectadas por cachorras de reposición vacunadas y libres de infección puede durar hasta tres ciclos reproductivos, pero es deseable que sea haga lo más rápidamente posible. Esta alternativa, es más factible de ser implementada en granjas con prevalencia baja-media y de tamaño pequeño o mediano. 2. Vacunación sistemática. Se refiere a la aplicación de un esquema de vacunación durante un periodo de tiempo seguida de detección y eliminación de positivos. Esta alternativa podría ser apta para granjas que presentan animales con signos clínicos, circulación viral, prevalencias medias o altas y/o elevado número de reproductoras. La vacunación regular de las reproductoras (en algunos casos también de los cerdos en recría-engorde) durante un tiempo, en general de 6 a 18 meses, tiene como objetivo suprimir la circulación viral en los cerdos en recría-engorde y reducir la transmisión y prevalencia entre los reproductores hasta niveles compatibles para que la detección y eliminación de seropositivos (inmediata o programada) pueda ser exitosa. Dependiendo del estatus de los cerdos de recría-engorde, la prevalencia y el número de reproductores será el tiempo que deba mediar entre la implementación de la vacunación regular y el inicio de la detección y eliminación de los seropositivos. ¿Cómo se realiza? Se implementa un esquema de vacunación durante 6 a 18 11 �meses. Luego de trascurrido ese tiempo, se analiza y elimina los positivos remanentes. 3. Despoblamiento – Repoblamiento - Se recomienda cuando la prevalencia en el establecimiento es superior al 75% y hay tendencia de aumento de la misma o hay sintomatología clínica. También en predios con genética de mala calidad o ante la presencia de otras enfermedades. ¿Cómo se realiza? La opción más sencilla es el despoblamiento progresivo a medida que los lechones alcanzan el peso de mercado. Sin embargo, debería se realizado en el menor tiempo posible para que sea rentable. Otra opción es vender los cerdos en recría y las madres después del destete donde se realiza la terminación y remisión al frigorífico. Una vez finalizad el despoblamiento se debe realizar una correcta higiene y desinfección. La presencia de materia orgánica disminuye la efectividad de los desinfectantes. Para la desinfección se recomienda el hipoclorito de sodio, amonio cuaternario, fenol al 5%, hipoclorito de calcio o clorhexidina. Los equipos para la alimentación de los cerdos y todo material que no puede desinfectarse deben ser incinerados. También es importante la desratización y evitar que ingresen otros animales al predio, principalmente caninos, felinos y rumiantes. Las instalaciones deben permanecer vacías durante 30 días después de la desinfección y la limpieza. La repoblación debe realizarse desde predios libres de la enfermedad. Una vez ingresados los animales, a los 30 días se debe repetir la serología. 4. Segregación de progenie - Esta alternativa no es comúnmente utilizada, requiere disponer instalaciones y recursos para llevarla a cabo, ya que presenta cierta complejidad para su éxito. 12 �- Se puede aplicar en predios donde no se evidencian signos clínicos (deben pasar por lo menos 6 meses desde la última detección de un brote). En granjas de cría y/o terminación se puede utilizar independientemente de la prevalencia Permite conservar la genética de la granja. ¿Cómo se realiza? El procedimiento consiste en vacunar a las madres, realizar destete temprano (2-3 semanas), y seleccionar por lo menos 1.5 veces más hembras de las que se necesiten para reposición y aislarlas inmediatamente en otro predio. Reforzar medidas de bioseguridad: uso de ropa exclusiva, desinfección de vehículos, etc. para evitar que animales aislados se contagien. Se deben realizar muestreos serológicos al grupo de hembras aisladas a los 4- 5 meses de edad elegidas al azar. Si una resulta positiva, se realiza serología a todo el grupo. Si menos del 10% es positivo, se eliminan todas las positivas y se repite la serología del 100% del grupo a los 30 días. Si en cambio, más del 10% resulta positivo, el grupo entero debe ser remitido a faena y se comienza de nuevo el proceso de segregación (se repone con cerdas seronegativas y se crían en otra área). Las hembras seronegativas que son segregadas deben ser vacunadas y criadas en un predio diferente. Los padrillos positivos son eliminados inmediatamente. El stock de reproductores debe ser vacunado 2-4 semanas antes del parto para proporcionar la máxima transferencia de anticuerpos calostrales a los lechones. El plantel original infectado se vende y las instalaciones deben ser limpiadas y desinfectadas, tal como se realiza en un despoblamiento. Animales nuevos se reintroducen luego de trascurridos 30 días de la desinfección. Luego, los animales reintroducidos deben ser monitoreados serológicamente cada 3 meses. 13 �XI. Medidas de BIOSEGURIDAD y prácticas de manejo El virus de la enfermedad de Aujeszky puede ser transmitido por vía directa e indirecta. Por vía directa a través de aerosoles y el contacto oro-nasal, semen, leche materna, mucosa vaginal y vía transplacentaria. La transmisión indirecta puede darse a través de personas, vehículos, elementos, otros animales vehiculizadores del virus. El cerdo infectado es considerado la vía más común de ingreso del virus a una explotación libre de enfermedad. También, debido a las variadas vías de transmisión, la infección puede deberse a fallas o incumplimiento de la implementación de otras medidas de bioseguridad que previenen el ingreso del virus: falta de limpieza de camiones, la falta de cambio de ropa y botas, equipos compartidos, entre otros. Una vez que se inician actividades para el saneamiento o cuando la enfermedad fue erradicada, se debe evitar la reintroducción del virus a la granja. Para ello, al inicio del plan resulta necesario evaluar y, en caso de corresponder, mejorar las prácticas de manejo y las medidas de bioseguridad llevadas a cabo en el establecimiento. Mejorar las prácticas de manejo y las medidas de bioseguridad en el establecimiento es esencial para el éxito de los programas de prevención, control y erradicación de enfermedades animales. A continuación se enumeran las medidas de bioseguridad mínimas a aplicar en los establecimientos infectados en saneamiento.  Se deben mantener los cercos perimetrales y accesos siempre cerrados para evitar el ingreso de personas sin autorización, de otros cerdos, u otros animales domésticos o silvestres.  Los cerdos y semen que ingresen a la granja deben provenir de establecimientos certificados como LIBRES DE LA ENFERMEDAD DE AUJESZKY Y BRUCELOSIS PORCINA. 14 � Restringir el acceso de personas ajenas a la granja y el contacto con sus cerdos.  Utilizar ropa y botas de uso exclusivo para su granja.  Colocar pediluvio con desinfectante a la entrada de cada galpón o acceso a los corrales y/o implementar cambio de botas de uso exclusivo.  No intercambiar animales ni semen de origen desconocido.  Establecer y respetar el período de cuarentena y aislamiento, así como las determinaciones diagnósticas que aseguren la introducción de animales libres de enfermedad. Cuarentena separada físicamente de la zona de producción (que la reposición recién se incorpore a la piara general cuando tenga resultados de serología y/o una vez q haya vacunado).  No intercambiar equipos, maquinarias y elementos con otras granjas con porcinos. Si se intercambian, desinfectarlas.  No visitar otros establecimientos porcinos.  Mantener actualizado un libro de registros de ingresos de visitas y vehículos.  Limpiar y desinfectar los camiones. Que el lugar de carga y descarga se encuentre alejado del área donde aloja a los animales.  Implementar un plan para control de plagas e insectos.  Los lugares donde elimina y trata los efluentes y cadáveres debe estar alejado y cercado de manera que los cerdos y otros animales no accedan a él. 15 �XII. REGISTROS Las siguientes herramientas son útiles para organizar la producción y realizar un correcto seguimiento del plan de saneamiento.  IDENTIFICACIÓN ANIMAL. Se recomienda que todos los reproductores machos y hembras estén identificados individualmente. Es imprescindible para los planes donde se requiere identificar a los animales analizados y los positivos.  IDENTIFICACIÓN DE POSITIVOS. Todos los reproductores machos y hembras que arrojen resultado positivo a la enfermedad deben estar identificados adecuadamente, para ser eliminados de acuerdo al plan.  REGISTRO de REPRODUCTORES. Es recomendable mantener un REGISTRO DE REPRODUCTORES (manual o electrónico) en el cual pueda registrarse la vacunación, registro de positivos y su eliminación.  REGISTRO DE LA VACUNACION. En Anexos se presentan Modelos de Planillas para registrar vacunaciones por semestre. Se requiere archivar las estampillas de las vacunas utilizadas.  PROTOCOLOS DE LABORATORIO. Armar una carpeta con todos los resultados serológicos que se realicen. 16 �XIII. Cuadro resumen orientativo para la elección de la estrategia. DESCRIPCION GENERAL PREVALENCIA INTRAPREDIO CIRCULACION VIRAL (infección activa) SIGNOS CLINICOS Granjas estables BAJA (< 10%) NO NO Granjas estables BAJA-MEDIA (Hasta 25%) NO NO MEDIA- ALTA (mayor a 25%) SI SI CUALQUIER VALOR INDISTINTO Granjas confinadas que no aplican despoblamiento Invernadores – ingresos de múltiples orígenes No estables Presencia de otras enfermedades Mala genética No hay signos. No hay circulación viral Genética de calidad Instalaciones apropiadas ESTRATEGIA ELIMINACION INMEDIATA DE POSITIVOS – CON O SIN VACUNACION ELIMINACION PROGRAMADA DE POSITIVOS – CON VACUNACION VACUNACION SISTEMATICA VACUNACION INDISTINTO SISTEMATICA (de todos los ingresos) ALTA (mayor a 75%) INDISTINTO SI DESPOBLAMIENTO REPOBLAMIENTO CUALQUIER VALOR NO NO SEGREGACIÓN DE PROGENIE Las estrategias descritas son las sugeridas por el Senasa y son netamente orientativas. La elección dependerá de las características y factores presentes en cada establecimiento. Cualquier duda consulte a: porcinos@senasa.gob.ar 17 �Serie Marca firma y sello veterinario acreditado Vacunados Vacunados firma y sello veterinario acreditado Marca MARZO Vacunados firma y sello veterinario acreditado Serie 1. Registrar mensualmente las vacunaciones realizadas, detallando por categoría. 2. Adherir al dorso estampillas de las vacunas utilizadas. Observaciones: CERDAS PADRILLOS LECHONES CACHORROS CACHORRAS CAPONES MEI TOTALES Serie FEBRERO Marca ENERO ABRIL Serie Vacunados firma y sello veterinario acreditado Marca Veterinario Acreditado: MAYO Serie Vacunados firma y sello veterinario acreditado AÑO: JUNIO firma y sello veterinario acreditado Vacunados PROPIETARIO: ESTABLECIMIENTO: RENSPA: Marca ANEXO IV Marca PROGRAMA NACIONAL DE CONTROL Y ERRADICACION DEL AUJESZKY PLANILLA REGISTRO DE VACUNACIONES Serie XIV. Modelos de Planillas de registro de vacunación. 18 �19 Serie Marca firma y sello veterinario acreditado Vacunados Serie Marca Vacunados firma y sello veterinario acreditado Vacunados firma y sello veterinario acreditado Marca 1. Registrar mensualmente las vacunaciones realizadas, detallando por categoría. 2. Adherir al dorso estampillas de las vacunas utilizadas. Observaciones: CERDAS PADRILLOS LECHONES CACHORROS CACHORRAS CAPONES MEI TOTALES Serie OCTUBRE Vacunados firma y sello veterinario acreditado Marca SETIEMBRE Serie AGOSTO NOVIEMBRE firma y sello veterinario acreditado Vacunados JULIO Marca Veterinario Acreditado: AÑO: DICIEMBRE firma y sello veterinario acreditado Vacunados PROPIETARIO: ESTABLECIMIENTO: RENSPA: Serie ANEXO IV Marca PROGRAMA NACIONAL DE CONTROL Y ERRADICACION DEL AUJESZKY PLANILLA REGISTRO DE VACUNACIONES Serie � Dublin Core The Dublin Core metadata element set is common to all Omeka records, including items, files, and collections. For more information see, http://dublincore.org/documents/dces/. Title A name given to the resource Publicaciones SENASA Dublin Core The Dublin Core metadata element set is common to all Omeka records, including items, files, and collections. For more information see, http://dublincore.org/documents/dces/. Title A name given to the resource Guia para el Saneamiento de la Enfermedad de Aujeszky en un establecimiento porcino. Aspectos a tener en cuenta para su planificación Publisher An entity responsible for making the resource available Servicio Nacional de Sanidad y Calidad Agroalimentaria Date A point or period of time associated with an event in the lifecycle of the resource 2016 Contributor An entity responsible for making contributions to the resource Dirección Nacional de Sanidad Animal Programa de Enfermedades de los Porcinos. Language A language of the resource Es Type The nature or genre of the resource Monografía Identifier An unambiguous reference to the resource within a given context B.S.0086 Abstract A summary of the resource. La enfermedad de Aujeszky es causada por el Herpes virus suino tipo 1 (SuHV-1) de la familia Herpesviridae. Afecta a muchas especies de mamíferos, domésticos y silvestres, como perros, gatos, bovinos, ovinos, nutrias, siendo en todos ellos de resolución mortal. El cerdo, doméstico y silvestre, es considerado su huésped natural y es el único capaz de sobrevivir a la infección por este virus. Table Of Contents A list of subunits of the resource. I. ¿Qué es la enfermedad de Aujeszky II. ¿Qué provoca el virus en los animales? III. ¿Qué causa la presencia del virus en el establecimiento? IV. ¿Cuál es la estrategia de control a nivel nacional? V. ¿Cómo podemos saber si nuestro establecimiento se encuentra INFECTADO? VI. ¿Cómo se determina la PREVALENCIA INTRA-PREDIO? VII.¿Cómo podemos saber si la infección está “activa” o no? VIII. ¿Cuál es la mejor estrategia de control y erradicación de la enfermedad? IX. ¿Cuáles son los factores a tener en cuenta para diseñar mi Plan? X. ¿Cómo se puede erradicar el virus del establecimiento? XI. Medidas de BIOSEGURIDAD y prácticas de manejo XII. REGISTROS XIII. Cuadro resumen orientativo para la elección de la estrategia XIV. Modelos de Planillas de registro de vacunación. Enfermedades de los Porcinos https://biblioteca.senasa.gob.ar/files/original/b9e760682e8b8a36c94ccc47d8ea7177.pdf 4a6328c50b23f3a0a3c97eac0ed74400 PDF Text Text INFORME DEL MUESTREO PARA DETERMINACIÓN DE PREVALENCIAS DE BRUCELOSIS BOVINA EN LA ZONA DE MAYOR PRODUCCIÓN BOVINA EN LA REPUBLICA ARGENTINA AÑO 2014 Dirección de Programación Sanitaria Dirección de Epidemiologia y Análisis de Riesgo Dirección Nacional de Sanidad Animal �Introducción La brucelosis es una enfermedad contagiosa zoonótica con importancia para la salud pública y la economía agropecuaria en la mayoría de los países en desarrollo. La permanencia de esta enfermedad limita las posibilidades del sector pecuario y la comercialización internacional, influyendo negativamente en la rentabilidad de las explotaciones, en la calidad de los productos, en el consumo y en la salud pública. La brucelosis es una enfermedad de animales sexualmente maduros. Los animales jóvenes son muy poco susceptibles y es muy raro observarla por debajo de los seis meses de edad. Si bien estos animales pueden infectarse por el calostro y por la leche, la infección se acantona en los ganglios y se elimina espontáneamente, en la mayoría de los casos. En el ganado bovino la brucelosis suele estar causada por Brucella abortus. En algunos países, particularmente en el sur de Europa y en el oeste de Asia, donde el ganado se asocia con ovejas o cabras, la infección puede ser también debida a B. melitensis. En ocasiones, B. suis puede causar una infección de las mamas en el ganado bovino, aunque no se ha descrito que origine abortos. Normalmente la enfermedad es asintomática en hembras no gestantes. Después de la infección por B. abortus o por B. melitensis, las hembras adultas en gestación desarrollan una placentitis que conduce al aborto entre el quinto y el noveno mes de gestación. Aunque este signo puede no producirse en cierto porcentaje de los animales. Aun en ausencia de aborto se produce en el parto gran excreción de microorganismos a través de la placenta, los líquidos fetales y las descargas vaginales. Las mamas y los ganglios linfáticos asociados también pueden infectarse y los microorganismos pueden aparecer en la leche. Las gestaciones posteriores llegan por lo general a término, pero la infección uterina y la mamaria se repiten, con un número reducido de microorganismos en los productos del parto y en la leche. En las infecciones agudas, el microorganismo está presente en la mayoría de los ganglios linfáticos. Los machos adultos pueden desarrollar orquitis, y la brucelosis puede causar esterilidad en ambos sexos. La forma principal de contagio es por vía digestiva, esta se produce cuando los animales lamen fetos abortados, terneros recién nacidos y/o los genitales de otros animales. También es importante la ingestión de alimentos y bebidas contaminadas con secreciones �vaginales y leche de hembras enfermas. La vía genital puede ser importante solo si se realiza inseminación artificial con semen infectado, de lo contrario, la brucelosis bovina no es una enfermedad venérea. El semen de un toro infectado puede contener grandes cantidades de brucelas pero sin embargo no contagia a la vaca, debido a que la acidez de la vagina contribuye a destruirlas. En el ser humano causa una dolencia llamada a menudo fiebre ondulante o fiebre de Malta, pues fue descripta por primera vez en Malta en el decenio de 1850. El ser humano presenta síntomas tales como fiebre intermitente o irregular, cefalea, debilidad, sudor abundante, escalofríos, artritis, pérdida de peso y dolor general. También puede producirse la infección de órganos como el hígado o el bazo. El impacto productivo y zoonótico de la brucelosis hace que sea considerada de suma importancia para la implementación de planes de control y erradicación. La mayoría de los países desarrollan acciones tendientes a disminuir los problemas que esta enfermedad provoca. Los países han fijado sus propias estrategias respecto a la lucha contra la brucelosis a través de programas con metas establecidas y realizando acciones planificadas, sostenidas en el tiempo y en base a los recursos disponibles. Pero las líneas de acción han respetado las normas sanitarias básicas establecidas, es decir, el modo general por el cual se alcanzan los objetivos y metas determinadas. La estrategia de los procedimientos biológico-sanitario de los programas de lucha contra la Brucelosis Bovina se basan principalmente en:  Estudios de la prevalencia. (Diagnostico de Situación)  Vacunación (Disminución de la susceptibilidad)  Eliminación de animales enfermos (Reducción de la oferta brucélica)  Pesquisa sanitaria (detección de animales reaccionantes y los rodeos de donde provienen)  Cuarentena de los rodeos infectados en la etapa erradicativa (se evita el contagio de rodeos sanos) El Cuarto Informe de Expertos en Brucelosis Ginebra 1964 Comité Mixto FAO/OPS aconseja que la lucha contra la Brucelosis bovina y su erradicación puede emprenderse �teniendo en cuenta el nivel de prevalencia de los rebaños y animales para definir las estrategias. El primer paso para definir la estrategia de elección debe estar basado en función de los niveles de enfermedad, el conocimiento de los niveles de prevalencia de brucelosis es el indicador de importancia para sentar las bases de las estrategias elegidas como también para evaluar los avances en los planes, verificar el estado sanitario del país e identificar zonas afectadas. En la República Argentina durante los últimos años se han efectuado diferentes trabajos de investigación con el objeto de arribar a esta determinación. La Dirección Nacional de Sanidad Animal, entre los años 2004 / 2005, realizó una encuesta por muestreo en conjunto con fiebre aftosa habiéndose muestreado en esa oportunidad 18.000 animales, lo que permitió ajustar los procedimientos utilizados. Este estudio demostró una prevalencia animal de 2,15 % a nivel país y una prevalencia de establecimientos del 12,4 %. Existen otros trabajos realizados por las Direcciones de Ganadería o Entes Sanitarios que actúan en los planes de fiebre aftosa que también han efectuado diversas encuestas que abarcan uno o más partidos o departamentos enteros de cada provincia y en algunos casos la provincia en su totalidad, en los cuales se observan bajas prevalencias en general. Un muestreo realizado en 2010, financiado por el Ministerio del Campo de la provincia de San Luis y el Senasa, cuyo objetivo fue estimar la prevalencia y la distribución espacial de la brucelosis bovina en vacas de cría adultas de las provincias de La Pampa y San Luis arrojó valores de prevalencia del 2.3 % de los animales y el 26 % de los predios positivos en La Pampa y 1.4 % de los animales y el 15.5 % de los predios positivos en San Luis. Dado que se han realizado numerosas acciones para controlar la enfermedad, como las campañas de vacunación en simultáneo con fiebre aftosa, el control de movimientos y el saneamiento de rodeos, es necesario evaluar el impacto que estas acciones han tenido sobre la prevalencia de brucelosis bovina en la República Argentina. Es esperable que dada la continuidad del plan, las prevalencias tanto animal como predial hayan descendido sensiblemente en los últimos años. Basado en el interés de adecuar las acciones del Programa de Control y Erradicación de la Brucelosis Bovina (Resolución Senasa Nº 150/2002) y suponiendo que existe una baja �tasa de animales positivos a la enfermedad, se plantea “si las condiciones pudieran ser adecuadas para iniciar una etapa erradicativa”. Dado que el trabajo de saneamiento debe ser realizado sobre los establecimientos positivos es importante conocer qué proporción de establecimientos son los que se encuentran infectados. Objetivo El objetivo del presente trabajo es estimar la prevalencia animal y de predios infectados de brucelosis bovina en establecimientos de cría y mixtos en la zona de mayor producción bovina de la República Argentina. Materiales y métodos Marco del muestreo La población objetivo del muestreo son los establecimientos de cría, ya que los tambos y cabañas han realizado acciones de control de brucelosis bovina más específicas que permitieron certificar el 60 % de los tambos del país como libres de la enfermedad. Se identificó a los establecimientos de cría en base a la relación novillo/vaca de las existencias de cada campo. Se asumió que los establecimientos de cría corresponden a aquellos con una relación novillo/vaca inferior a 0,8. El 91,22 % del total de establecimientos con bovinos se encuentran en las provincias de Buenos Aires, Chaco, Córdoba, Corrientes, Entre Ríos, Formosa, La Pampa, Salta, San Luis, Santa Fe y Santiago del Estero. En el Mapa 1 se ven con colores cálidos (rojo, naranja y amarillo) las zonas con mayor concentración de bovinos y en colores fríos (rosa, violeta y azul) las zonas con menor concentración de bovinos, incluyendo todos los establecimientos con al menos un bovino, sin importar su tipo productivo. Las zonas sin color tienen una concentración muy baja de bovinos, por lo que no serán tenidas en cuenta para este muestreo. En el Mapa 2 se ve la concentración de vacas en predios de cría. Las zonas más oscuras es donde hay mayor concentración de vacas en rodeos de cría. Las zonas más claras �tienen menor concentración de vacas en rodeos de cría y las zonas en blanco es donde la concentración de vacas en rodos de cría es demasiado baja como para ser contempladas en el muestreo. Mapa 1 Mapa 2 El muestreo se realizó en la zona del país con mayor concentración de establecimientos de cría. Diseño del muestreo Para calcular el número y tipo de animales por predio a muestrear se realizó un diseño en dos etapas. En la primera etapa se determinó el número de animales por establecimiento que deben muestrearse para detectar la presencia del evento en el establecimiento. Se asumieron los siguientes parámetros:  Nivel de confianza: 95 %  Máxima probabilidad aceptada de cometer error de Tipo II: 0,05  Mínima prevalencia esperada de animales positivos: 7,5 %  Cantidad promedio de animales: 300  Método diagnóstico: Tamiz BPA - Confirmatoria SAT �Sensibilidad Especificidad Prueba diagnóstica 1 95,4% 97,7% Prueba diagnóstica 2 88,4% 91,5% Combinación En serie Con estos parámetros, es necesario muestrear 42 animales por rodeo. A los efectos de disminuir la probabilidad de clasificación errónea de predios negativos y positivos, siendo la categoría a muestrear hembras de más de 24 meses (vacas). En la segunda etapa se determinó el número de predios a muestrear por provincia. Se asumieron los siguientes parámetros:  Prevalencia estimada: 10 %  Error relativo aceptado: 20 %  Nivel de confianza: 95 %  Tamaño de la población: 90.000 establecimientos de cría en todo el país Es necesario muestrear 857 establecimientos, lo que resulta en un total de muestras a obtener (predios x animales por predio) de 35.994 sueros bovinos. Los predios se seleccionaron al azar y el sorteo se realizó en dos etapas. Para calcular el número de muestras a tomar por provincia se efectuó un sorteo proporcional a la cantidad de establecimientos de cría por provincia incluida en el marco muestral (Tabla 3). Luego se distribuyeron la cantidad de muestras de cada provincia de manera uniforme según el tamaño del establecimiento (Tabla 4). Por último cada veterinario seleccionó al azar las vacas a muestrear en cada predio. �Tabla 1 BUENOS AIRES Proporción de establecimientos de cría y mixtos (%) 32 CHACO 9 73 CORDOBA 9 75 CORRIENTES 8 72 ENTRE RIOS 13 110 FORMOSA 5 44 LA PAMPA 5 42 SALTA 3 23 SAN LUIS 3 29 SANTA FE 10 85 SANTIAGO DEL ESTERO 4 31 Total 100 857 Provincia Establecimientos a Muestrear 272 Tabla 2 Provincia BUENOS AIRES CHACO CORDOBA CORRIENTES ENTRE RIOS FORMOSA LA PAMPA SALTA SAN LUIS SANTA FE SANTIAGO DEL ESTERO Total De 1 a 40 vacas 91 24 25 24 37 15 14 8 10 28 De 40 a 100 vacas 91 24 25 24 37 15 14 8 10 28 Más de 100 vacas 91 24 25 24 37 15 14 8 10 28 Establecimientos a Muestrear 273 72 75 72 111 45 42 24 30 84 10 10 10 30 286 286 286 858 Interpretación de los resultados Todas las muestras obtenidas fueron analizadas en el laboratorio de SENASA y procesadas en una primera instancia con una prueba tamiz utilizando la técnica de BPA (Buffered Plate Antigen, por sus siglas en ingles), los negativos a esta prueba se consideran negativos y los sueros positivos a BPA fueron analizados por la técnica confirmatoria SAT �(Sero Aglutinación en Tubo), los negativos a esta prueba se consideran negativos y los positivos son interpretados como positivos. Como se muestra en la Figura 1. Figura 1 Cascada Diagnostica Resultados Prevalencias En total, de los 30.508 animales muestreados, 246 resultaron positivos. La prevalencia animal es de 0.0081 (IC 95%= 0.0056; 0.0105) con una tasa de homogeneidad de 0.1306. De los 810 predios muestreados, 100 resultaron positivos. La prevalencia de establecimientos es de 0.1235 (IC95%=0.1009; 0.146). Tabla 3. Prevalencias Animales muestreados Animales positivos Prevalencia Animal % 30.508 246 0.81% IC% Predios muestreados Predios positivos Prevalencia interpredial % IC% 0.56 % 1.05 % 810 100 12.35 % 10% 14% Todos los establecimientos muestreados se han georreferenciado en el Mapa 3 identificando los negativos en negro y los positivos en rojo. �Mapa 3. Establecimientos Muestreados Frecuencia de los positivos El número de animales positivos por predio vario entre 1 y 16, con una media de 2.86 animales positivos por predio y un modo de 1 animal positivo por predio. En 24 establecimientos (24 %) se detectaron más positivos que los que indica la media. Grafico 1 �Mapa 4. Establecimientos con positivos mayor a la media Prevalencias por Provincia Se ha realizado una discriminación por provincias para estimación de prevalencias específicas, pero deben observarse como una aproximación ya que en algunas, los establecimientos muestreados son insuficientes para hacer el cálculo correspondiente, ya que el diseño de este muestreo fue realizado para una zona y no en particular para de cada una de las provincias. En la tabla 7 se detallan los resultados por provincia y en el Mapa 5 y 6 la prevalencia animal e interpredial de las mismas. Tabla 4. Prevalencias por Provincia Provincia Buenos Aires Chaco Córdoba Corrientes Entre Ríos Formosa La Pampa Salta San Luis Santa Fe Santiago del Estero Total Animales Muestreados Animales Positivos Prevalencia Animal % Establecimientos Muestreados Establecimientos Positivos Prevalencia predial % 10265 105 1.02 263 39 14.83 2510 2651 2697 3617 1290 1709 719 1188 2993 16 29 12 18 17 4 3 2 37 0.6 1.09 0.4 0.5 1.32 0.23 0.42 0.17 1.24 69 70 71 105 37 42 23 30 78 8 9 8 13 5 3 3 2 7 11.59 12.86 11.28 12.38 13.55 7.14 13.04 6.67 8.97 869 3 0.35 22 3 13.64 30.508 246 0.81 810 100 12.35 �Mapa 5. Mapa de prevalencia animal por provincia. Mapa 6. Mapa de prevalencia inter predio por provincia. Los resultados de prevalencia obtenidos (Prev. Animal 0.81 % y Prev. de Predios 12.35 %) son en base a las zonas consideradas para el estudio y deben interpretarse como valores referidos para las misma. Las prevalencias para provincias específicas no fueron objeto de este estudio y fueron calculadas solo con fines orientativos. �Análisis Espacial En este estudio se realizó un análisis espacial a fin de identificar agrupamientos, es decir, áreas geográficas con mayor frecuencia de casos que la esperada si la distribución fuese aleatoria. Se utilizó la técnica de rastreo espacial (spatial scan statistic en inglés) implementada en el programa SatScan (SatScan User Guide, 2010), y para identificar agrupamientos de predios positivos se utilizó el modelo de Bernoulli. Si bien se detectaron 3 posibles clústeres, al observar el p-valor superior a 0.05 los mismos no fueron considerados como significativos. Los resultados obtenidos indicaron que no existe un agrupamiento espacial de los casos, es decir que no pudo identificarse ningún clúster de agrupamiento, lo cual hace suponer que en este muestreo los establecimientos positivos a brucelosis se encuentran distribuidos en forma homogénea dentro de la zona en estudio. Puede observarse en el Mapa 7 la distribución espacial de los predios positivos. Mapa 7. Establecimientos positivos �Análisis de movimientos Al no encontrar un agrupamiento espacial se determinó la influencia de los movimientos de animales en la zona estudiada. Para esto se analizó el volumen de los movimientos tanto de salida (out-degree) como de entrada (in-degree) durante el periodo comprendido entre los años 2012 y 2013 de los establecimientos muestreados (Mapas 8 y 9) Mapa 8. Salidas Mapa 9. Entradas �Es reconocido que los predios positivos son fuente de animales infectados, es por esto que el ingreso y egreso de animales son la principal causa de la diseminación de la enfermedad y los animales el vehículo de ingreso a los establecimientos negativos. En los Mapas 10 y 11 puede observarse la amplia red de movimientos tanto de entrada como de salida que se registra durante los años 2012 y 2013 en los establecimientos muestreados. Mapa 10. Movimientos geo referenciados del ingreso de bovinos durante el periodo 2012 - 2013 a los predios muestreados Mapa 11. Movimientos geo referenciados del egreso de bovinos durante el periodo 2012 - 2013 de los predios muestreados. Para visualizar más claramente se exponen a continuación en el Mapa 12 solo los establecimientos positivos. Este mapa nos permite observar la probable difusión de la enfermedad, dado el riesgo que implica el movimiento de animales desde estos predios evidenciando la necesidad de identificar los mismos para restringir sus movimientos evitando la diseminación de la enfermedad. �Mapa 12. Movimientos de salida desde los establecimientos muestreados con resultados positivos. Puede observarse que estos movimientos no sólo son intraprovinciales sino también entre provincias lo que hace significativo el efecto del traslado de los animales y la amplia distribución que podrían alcanzar los animales positivos. El análisis de los movimientos de ingresos (in-degree) y egresos (out-degree) se realizó usando el programa Microsoft Access 2007 (Microsoft, Redmond, USA) sobre datos de SIGSA durante el 2012 y 2013. Los predios incluidos en el muestreo y los predios positivos se representaron en mapas realizados con el programa ArcGIS versión 10.2 (ESRI). Los ingresos y egresos de bovinos a los predios muestreados se graficaron mediante el programa ArcGIS versión 10.2 (ESRI). �Análisis de Encuestas Acompañando el muestreo se realizó conjuntamente una encuesta destinada a identificar posibles factores de riesgo que pudieran asociarse a la presencia o ausencia de la enfermedad en los rodeos. En primer lugar se realizó un análisis general del grado de respuesta de las encuestas. Si bien se tomaron muestras de 811 establecimientos, se recibieron 794 encuestas. Y solo se pudieron analizar 770, que representan el 95 % de los establecimientos muestreados, debido a que 24 encuestas presentaban inconsistencias al asociarlas con los establecimientos muestreados y fueron descartadas. Se detalla en la Tabla 8 y Grafico 2 a continuación el grado de respuesta para cada ítem de la encuesta: Grafico 2. Grado de respuesta por pregunta Dado que el objetivo principal del muestreo es estimar la prevalencia de predios positivos a brucelosis bovina en establecimientos de cría, los resultados de las encuestas se analizaron respecto al estado sanitario del predio determinado por el muestreo (variable respuesta), buscando identificar factores de riesgo que pudiesen estar asociados a la presencia de la enfermedad. �Ninguna de las variables estudiadas pudo ser identificada como un factor de riesgo que justifique la presencia de la enfermedad. Para el caso de los diferentes tipos de reposición dado que se evaluaron las opciones reposición interna, compra de animales de otros establecimientos o ambas y no se detectó ninguna diferencia significativa, se realizó el análisis comparando únicamente la reposición interna con la compra de animales. En este caso tampoco se detectó ninguna diferencia significativa entre los grupos. Sin embargo en el 20 % (88/456) de las encuestas el productor declara realizar únicamente reposición interna y luego responde que realiza diagnóstico a los animales que compra. Si se eliminan estos registros tampoco se detectan diferencias estadísticas entre los grupos, ni tampoco si consideramos a quienes respondieron que realizan análisis en la compra como que realizan reposición externa. El hecho de no realizar un diagnóstico previo a la compra tampoco demostró ser un factor de riesgo. El 63 % (424/675) de los establecimientos encuestados no realizaban análisis previo a la compra de animales. Y de los establecimientos que si realizan diagnósticos previo a la compra el 10 % (24/251) tienen la enfermedad. Para profundizar el análisis se definen 3 nuevos grupos, en base a lo respondido en las encuestas: establecimientos que realizan reposición interna, establecimientos que compran animales y realizan un diagnóstico en la compra, y establecimientos que compran animales sin realizar diagnóstico. Entre estos grupos tampoco se detectan diferencias significativas. Con respecto a las acciones que se realizan cuando un animal se detecta como positivo, no se detectó diferencia significativa entre las opciones de segregación, envío a faena o conservación del animal en el predio. Discusión y Conclusión En el muestreo realizado en el año 2004 se observaron valores de prevalencia animal de 2.15 % y de prevalencia de predios del 12.4 %. Si bien el diseño y las cantidades de muestras de aquel estudio fueron diferentes a este trabajo realizado en 2014 se toma como referencia ya que abarcó una zona similar En aquel estudio la cantidad de muestras por predio no fue la más indicada para detectar predios infectados, dado que el diseño de selección de establecimientos y �capacidades operativas correspondían a un diseño realizado para fiebre aftosa y esto podría haber resultado en una subestimación de la prevalencia de predios. Tabla 5. Muestreo 2004 Animales Animales Prev Establecimientos Establecimientos Muestreados Positivos Animal % Muestreados Positivos 18.471 397 2.15 1.847 Prev Estab % 229 12.4 En el estudio 2014 se puede observar que la prevalencia animal obtenida es de 0.81 %, lo que indica una disminución de la prevalencia en 10 años estadísticamente significativa (p<0.05). Estos valores son coincidentes con una situación epidemiológica donde la vacunación sistemática y continua de las terneras a lo largo de los años puede haber actuado como factor relacionado a la disminución de la prevalencia de la enfermedad. Esto hablaría de una eficacia en las campañas de vacunación y su efectividad para el control constante que produce sobre la enfermedad. También se puede asumir que si bien no ha existido una presión de saneamiento sobre los establecimientos infectados estos han eliminado a los animales positivos. En el muestreo 2014 si bien la prevalencia animal es baja, la prevalencia de predios se mantiene en los mismos valores que en 2004. Esto significa que la misma proporción de establecimientos aún mantienen al menos un animal positivo dentro del establecimiento, que se transforma en la fuente de infección tanto de los animales del mismo rodeo como de otros establecimientos. Es importante considerar que el número de animales positivos por predio vario entre 1 y 16, con una media de 2.86 animales positivos por predio y un modo de 1 animal positivo por predio, lo cual refuerza la hipótesis de que sigue habiendo la misma proporción de establecimiento afectados pero con pocos animales positivos dentro del rodeo. Que la prevalencia predial se haya mantenido constante respecto al muestreo del 2004 (habiendo mencionado arriba la consideración sobre aquel estudio) podría significar que no ha existido un saneamiento del todo efectivo en los establecimientos. Esto sería un indicador que los establecimientos no realizan saneamiento o lo realizan pero existen otros que se mantienen infectados y reintroducen la enfermedad en los establecimientos negativos. Esta idea se confirma al analizar los movimientos de egreso que se producen de los predios positivos. Si bien existe en el país un control de movimiento de animales, este estudio demostraría que este control debería realizarse de manera más estricta para poder evitar el �reingreso de animales positivos en establecimientos libres. El hecho de no encontrar agrupamientos de establecimientos positivos no permite identificar factores de riesgo asociados a cuestiones climáticas o geográficas. La distribución aleatoria de los predios afectados podría estar nuevamente relacionada al movimiento de animales positivos sin control sanitario previo. La encuesta tampoco permitió definir factores de riesgo. Sin embargo es importante notar que en algunos casos las respuestas no eran coherentes, por ejemplo algunos productores declararon realizar únicamente reposición interna y luego respondieron que realizaban diagnóstico a los animales que compraban. Esto pudo afectar los resultados del análisis. Los resultados comparados de los muestreos de 2004 y 2014 podrían conducir a la conclusión que la vacunación ha mantenido bajo control la brucelosis bovina, pero por sí sola es una herramienta insuficiente para erradicar la enfermedad. Es por esto que los niveles de prevalencia difícilmente puedan disminuir aún más sin modificar otras actividades de control de la brucelosis bovina. A fin de establecer nuevas acciones tendientes a mejorar el plan actual se plantea la necesidad de trabajar en tres líneas de acción principales:  Detectar los establecimientos positivos, la enfermedad se encuentra en los mismos por lo que cualquier actividad de saneamiento que se requiera realizar debe ineludiblemente y en primera instancia desarrollar un sistema de vigilancia para encontrarlos.  Restringir los movimientos de los establecimientos positivos, los predios positivos se transforman en la fuente de infección de otros establecimientos y establecer un control de movimientos efectivo sobre estos resulta fundamental para evitar la propagación de la brucelosis  Establecer el saneamiento de los establecimientos positivos, es evidente que la erradicación de la enfermedad se logrará al sanear estos establecimientos mediante la eliminación de los animales reaccionantes que se encuentran en el rodeo. Es importante determinar que dada la situación actual de prevalencia es posible iniciar una etapa erradicativa que debe establecerse por etapas y por el desarrollo de �actividades que acompañen este proceso. Si bien los niveles de prevalencia no son los únicos factores a evaluar para definir este objetivo, hay que considerar estos niveles de prevalencia como una oportunidad para alcanzar el objetivo final que han perseguido los planes de lucha contra la Brucelosis Bovina, su erradicación. � Dublin Core The Dublin Core metadata element set is common to all Omeka records, including items, files, and collections. For more information see, http://dublincore.org/documents/dces/. Title A name given to the resource Publicaciones SENASA Dublin Core The Dublin Core metadata element set is common to all Omeka records, including items, files, and collections. For more information see, http://dublincore.org/documents/dces/. Title A name given to the resource Informe del muestreo para determinación de prevalencias de brucelosis bovina en la zona de mayor producción bovina en la República Argentina año 2014 Publisher An entity responsible for making the resource available Servicio Nacional de Sanidad y Calidad Agroalimentaria Date A point or period of time associated with an event in the lifecycle of the resource 2014 Contributor An entity responsible for making contributions to the resource Dirección de Programación Sanitarias Dirección de Epidemiologia y Análisis de Riesgo Dirección Nacional de Sanidad Animal Language A language of the resource Es Type The nature or genre of the resource Monografía Identifier An unambiguous reference to the resource within a given context B.S.0087 Abstract A summary of the resource. La brucelosis es una enfermedad contagiosa zoonótica con importancia para la salud pública y la economía agropecuaria en la mayoría de los países en desarrollo. La permanencia de esta enfermedad limita las posibilidades del sector pecuario y la comercialización internacional, influyendo negativamente en la rentabilidad de las explotaciones, en la calidad de los productos, en el consumo y en la salud pública. El objetivo del presente trabajo es estimar la prevalencia animal y de predios infectados de brucelosis bovina en establecimientos de cría y mixtos en la zona de mayor producción bovina de la República Argentina. Brucelosis https://biblioteca.senasa.gob.ar/files/original/5ce2c4873d4be3ca9772f38b12e97700.pdf 55b1bc9f73a2338570f28f6ba0024d4b PDF Text Text SERVICIO NACIONAL DE SANIDAD ANIMAL Y CALIDAD AGROALIMENTARIA DIRECCIÓN DE CONTROL DE GESTIÓN Y PROGRAMAS ESPECIALES AUTOGESTION ADHESION DE SERVICIOS INTERACTIVOS CON CLAVE FISCAL AFIP   Diciembre 2017 El siguiente documento tiene como finalidad brindarle al usuario una herramienta de capacitación que le facilite el trabajo con e ingreso al Sistema Integrado de Gestión de Sanidad Animal (SIGSA). � Contenido INTRODUCCION ........................................................................................................................................... 3  PRESENTACIÓN Y ACCESO AL SISTEMA.............................................................................................. 3  ADHESION DE SERVICIOS INTERACTIVOS .......................................................................................... 4  DELEGACION DE REPRESENTACION DE CUIT .................................................................................... 7  SOPORTE TÉCNICO-MESA DE AYUDA DEL SIGSA-CONTACTO ................................................... 11  2 �INTRODUCCION El presente manual muestra paso a paso la adhesión de SERVICIOS INTERACTIVOS en la página de AFIP con CLAVE FISCAL. En el ejemplo se muestra la adhesión de SIGSA, pero todos los Servicios se adhieren de la misma manera, solo debe seleccionar el correspondiente al listado de SERVICIOS INTERACTIVOS del organismo. PRESENTACIÓN Y ACCESO AL SISTEMA Para acceder al Sistema de Información de Sanidad Animal del SENASA se debe ingresar utilizando el navegador Mozilla Firefox. Acceda a la web de la AFIP: www.afip.gob.ar/ Ingresar a la Clave fiscal del titular, indicando CUIT y clave 3 �ADHESION DE SERVICIOS INTERACTIVOS Cuando ingrese con su clave fiscal elija al menú "Administrador de Relaciones de Clave Fiscal" como se indica en la imagen inferior. Una vez dentro del menú presionar el botón "ADHERIR SERVICIO" 4 �Seleccionar del listado de organismos disponibles "SENASA" Dentro del menú "Servicios Interactivos" buscar y seleccionar "SIGAD" o “SIGSA” 5 �Una vez seleccionado el servicio presionar el botón "CONFIRMAR" para finalizar la adhesión. Para confirmar la adhesion el sistema muestra un formulario con los datos correspondientes. 6 �Después de que se genere este formulario F3283/E debe cerrar la sesión y volver a ingresar a la CLAVE FISCAL para actualizar el menú principal, en donde aparecerán los "SERVICIOS" habilitados. DELEGACION DE REPRESENTACION DE CUIT Para delegar la representación de un SERVICIO INTERACTIVO a otro CUIT, ingresar al menú "ADMINISTRADOR DE RELACIONES DE CLAVE FISCAL". 7 �Dentro del menú, presionar el botón "NUEVA RELACION" En la ventana siguiente se visualizan los datos del autorizante (titular). Presionar el boton" BUSCAR" para seleccionar el "SERVICIO INTERACTIVO" a delegar. Seleccionar los servicios disponibles el que se quiere delegar. 8 �Una vez seleccionado el servicio se debe seleccionar el representante, para cargarlo se debe introducir el CUIT de la persona que lo representará y presionar el botón "BUSCAR", y una vez identificado el mismo presionar el botón "CONFIRMAR" Para finalizar la delegación confirmar SERVICIO y REPRESENTANTE presionando el botón "BUSCAR". 9 �Después de que se genere este formulario F3283/E debe cerrar la sesión y volver a ingresar a la CLAVE FISCAL para actualizar el menú principal, en donde aparecerán los "SERVICIOS" habilitados. El interesado deberá ingresar con su CLAVE FISCAL e ingresar al menú "ACEPTACION DE DESIGNACION" para aprobar la delegación del servicio en cuestión, luego cerrar la sesión, volver a ingresar para visualizar el menú principal el nuevo servicio adherido. 10 �MENU DE ACEPTACION DE DESIGNACION. SOPORTE TÉCNICO-MESA DE AYUDA DEL SIGSA-CONTACTO Para cualquier duda o consulta pueden comunicarse con la mesa de ayuda de SIGSA. Horario de atención telefónica de Lunes a Viernes de 8 a 16 hs Teléfonos: (011) 4121-5374/5634/5252 Guardias de fin de semana para URGENCIAS de 8 a 20 hs al corporativo (011)-15-4041-3614. 11 � Dublin Core The Dublin Core metadata element set is common to all Omeka records, including items, files, and collections. For more information see, http://dublincore.org/documents/dces/. Title A name given to the resource Publicaciones SENASA Dublin Core The Dublin Core metadata element set is common to all Omeka records, including items, files, and collections. For more information see, http://dublincore.org/documents/dces/. Title A name given to the resource Autogestión - Adhesión de Servicios Interactivos con Clave Fiscal AFIP Publisher An entity responsible for making the resource available Servicio Nacional de Sanidad y Calidad Agroalimentaria Date A point or period of time associated with an event in the lifecycle of the resource 2017 Language A language of the resource Es Type The nature or genre of the resource Manual Identifier An unambiguous reference to the resource within a given context B.S.0088 Abstract A summary of the resource. El siguiente documento tiene como finalidad brindarle al usuario una herramienta de capacitación que le facilite el trabajo con el ingreso al Sistema Integrado de Gestión de Sanidad Animal (SIGSA). Table Of Contents A list of subunits of the resource. INTRODUCCIÓN PRESENTACIÓN Y ACCESO AL SISTEMA ADHESIÓN DE SERVICIOS INTERACTIVOS DELEGACIÓN DE REPRESENTACIÓN DE CUIT SOPORTE TÉCNICO-MESA DE AYUDA DEL SIGSA- CONTACTO