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                    <text>INSTRUCTIVO

Certificado de Seronegatividad
para el movimiento (CSM)
Procedimiento para veterinarios acreditados en brucelosis bovina	

�El Servicio Nacional de Sanidad y Calidad Agroalimentaria (Senasa) es un organismo descentralizado,
responsable de ejecutar las políticas nacionales en materia de sanidad y calidad animal, vegetal y de la
inocuidad de los alimentos de su competencia, así como de verificar el cumplimiento de la normativa
vigente en la materia.
Equipos de trabajo
Programa Nacional de Brucelosis Bovina
Dirección Nacional de Sanidad Animal
Coordinación General de Comunicación Institucional
Edición 2026

�Introducción
El presente instructivo tiene como objetivo facilitar el procedimiento para generar el Certificado de Seronegatividad para el Movimiento (CSM) de categorías susceptibles a la brucelosis bovina. El CSM deberá vincularse al Documento de Tránsito electrónico (DT-e) para el movimiento y se gestionará a
través de los sistemas informáticos del Senasa.

Alcances
El CSM será requerido cuando el movimiento de los animales involucre a las
categorías vaca, toro y torito, y sean trasladados a un Registro Nacional Sanitario de Productores Agropecuarios (Renspa) de destino categorizado como
tam­bo, cabaña, cría, ciclo completo y genética. Este requisito se encuentra
contemplado en la Resolución Senasa N.° 67/2019.

Destinatarios
El documento está dirigido a productores, titulares de establecimientos y,
principalmente, veterinarios acreditados en brucelosis bovina, quienes son los
responsables de realizar el procedimiento de gestión del CSM.

Procedimiento
Inicialmente –previo al movimiento–, el productor/titular del establecimiento
deberá contactar a su veterinario acreditado e informarle que se realizará un
movimiento de vacas, toros y/o toritos a un Renspa de destino y que se requerirá el CSM. Posteriormente, el veterinario particular (acreditado) deberá
asistir al rodeo para realizar la toma de muestras serológicas de los bovinos
identificados para el movimiento y la remisión de las mismas al laboratorio
de red para su diagnóstico.
Finalizado el procedimiento de muestreo, el acreditado deberá cargar el protocolo de envío de muestras en el SIGATM. Para ello, deberá ingresar al sitio
web de la Agencia de Recaudación y Control Aduanero con su CUIT y clave
fiscal.

INSTRUCTIVO. CERTIFICADO DE SERONEGATIVIDAD PARA EL MOVIMIENTO (CSM)

3

�Allí deberá contar con el servicio del Senasa “SIGATM” vinculado. De lo contrario, se deberá buscar en la página principal el servicio y luego hacer clic en
el botón “Agregar”.

Una vez vinculado, el usuario podrá acceder al SIGATM a través del botón visualizado en “Mis Servicios”.

Se recuerda que, al momento de ingresar al SIGATM, el veterinario o
técnico debe contar con alguna acreditación vigente (en este caso, la de
brucelosis bovina). De lo contario, el sistema no permitirá el ingreso.

Carga en el sistema
Un vez que haya ingresado, el acreditado deberá dirigirse al apartado “Actas
DNSA” y generar “Nueva Acta”.

INSTRUCTIVO. CERTIFICADO DE SERONEGATIVIDAD PARA EL MOVIMIENTO (CSM)

4

�Allí, en el apartado “Área” –botón desplegable–, se deberá seleccionar el “Programa de Brucelosis”; en el campo “Motivo”, se deberá ingresar Muestreo de
brucelosis bovina; y en el de “Submotivo”, se deberá señalar la leyenda “Control
de Seronegatividad para El Movimiento (CSM)”. También se deberá registrar la fecha de la toma de muestras (los demás campos se completarán
automáticamente).

Posteriormente, en el menú desplegable “Lugar de Toma de Muestras” se deberá elegir la opción “Unidad productiva”.

Si posee el número de Renspa, se deberá agregarlo en el espacio indicado y
hacer clic en el ícono
. Luego, se desplegarán automáticamente los datos
asociados al registro.

Si se desconoce el número de Renspa o existen dudas sobre el mismo, hacer
clic en el ícono . El sistema abrirá un buscador que permite indicar el nombre del campo, del titular, o parte del número de Renspa.

INSTRUCTIVO. CERTIFICADO DE SERONEGATIVIDAD PARA EL MOVIMIENTO (CSM)

5

�Al finalizar, el sistema arrojará los datos del establecimiento. Verificar que los
mismos sean correctos.

A continuación, completar la Naturaleza del lote o muestra, indicando la especie y la matriz correspondiente al tipo de muestra. Se deberá cargar la
especie “Bovino” y la matriz “Suero”.

Luego, se procederá a cargar los datos correspondientes a las muestras. El
acreditado deberá tildar la opción “Muestras y submuestras” y hacer clic en
el botón azul “Agregar Muestra”. Esta opción permite la carga de muestras
de manera individual (una a la vez).

Para detallar los datos solicitados de cada muestra, se abrirá un cuadro denominado “Ítem de muestra”. El usuario deberá completar todos los campos
y, al finalizar, hacer clic en “Grabar”.

Consideraciones
• En “datos de recolección”, indicar “Muestra individual”.
• En “número de tubos”, ingresar 1.
• En “animal muestreado”, ingresar “No Aplica”.
• En “tipo de identificación”, seleccionar “Caravana” y detallar
en el campo “identificador” el número oficial de la misma.

INSTRUCTIVO. CERTIFICADO DE SERONEGATIVIDAD PARA EL MOVIMIENTO (CSM)

6

�* Los campos marcados con asteriscos son obligatorios.

Carga de múltiples muestras
Esta opción permite la carga de las muestras a través de una plantilla de
Excel, lo cual resulta útil para simplificar el trabajo cuando se trata de muchos bovinos. Para iniciar el proceso, se deberán descargar las siguientes
dos plantillas que se visualizan en pantalla:
• “Descargar plantilla para incorporar muestras (xls)”.
• “Códigos para completar la plantilla de muestras (xls)”. Este documento es
necesario para elaborar la planilla anterior.

En la plantilla de muestras, utilizando los códigos correspondientes, el usuario deberá registrar los datos solicitados de los animales muestreados y cargar el archivo en el sistema.

INSTRUCTIVO. CERTIFICADO DE SERONEGATIVIDAD PARA EL MOVIMIENTO (CSM)

7

�Posteriormente, se deberá registrar el ensayo. Allí indicará en el menú desplegable “Grupo de análisis”, la opción Diagnóstico de brucelosis. Luego, el
acreditado deberá tildar las pruebas solicitadas (BPAT y FPA) o aquellas que
el laboratorio realice y hacer clic en el botón “Asignar”.

Para concluir, el usuario deberá indicar el laboratorio de destino para el procesamiento de las muestras y, si todos los datos están correctos, ingresar el
botón “Finalizar”.

Visualización de actas
En el menú principal se podrán consultar las actas finalizadas o aquellas
grabadas que se encuentran en estado de preparación (borrador).

INSTRUCTIVO. CERTIFICADO DE SERONEGATIVIDAD PARA EL MOVIMIENTO (CSM)

8

�Registro de resultados en el SIGSA
Acceso al sistema
Una vez que el laboratorio procesó la muestra y emitió el resultado, el veterinario acreditado deberá registrar el mismo en el Sistema Integrado de Gestión
de Sanidad Animal (SIGSA).
Para ello, deberá ingresar en la página web de la Agencia de Recaudación y
Control Aduanero con su CUIT con su CUIT y clave fiscal.

El usuario deberá contar con el servicio del Senasa “Sigsa” vinculado. De lo
contrario, se deberá buscar en la página principal el servicio y luego hacer clic
en el botón “Agregar”.

Una vez vinculado, el usuario podrá acceder al SIGSA a través del botón visualizado en “Mis Servicios”.

INSTRUCTIVO. CERTIFICADO DE SERONEGATIVIDAD PARA EL MOVIMIENTO (CSM)

9

�Se recuerda que, al momento de ingresar al SIGSA, el veterinario o
técnico debe contar con alguna acreditación vigente (en este caso, la de
brucelosis bovina). De lo contario, el sistema no permitirá el ingreso.

Carga de resultados
Al ingresar en el SISGA, el acreditado deberá dirigirse al apartado “Sanitario”,
ingresar en la opción “Brucelosis” e indicar “Nueva serología”.

Allí deberá indicar el número de Renspa de la Unidad Productiva (UP). Luego
de que el sistema arroje los datos de la UP, el usuario deberá completar los
datos del laboratorio seleccionado e indicar en el apartado motivo la opción
“Cert. Serológico para el Movimiento (emisión DT-e)”.
Entre otros datos solicitados, el usuario deberá completar el número de protocolo, las fechas de toma de muestra y de diagnóstico, completar la columna “Cant. Negativos” y luego ingresar el botón “Generar”.
En caso de haber positivos animales positivos, se deberá completar la columna que solicite esa información, el apartado de “caravanas positivas” (asociadas al animal infectado) e iniciar los procedimientos de saneamientos definidos por la Resolución Senasa N.° 67/2019.
INSTRUCTIVO. CERTIFICADO DE SERONEGATIVIDAD PARA EL MOVIMIENTO (CSM)

10

�Al cargar en el SIGSA el resultado serológico con el motivo indicado, el sistema
registrará automáticamente el CSM, el cual quedará disponible hasta el momento que sea utilizado en el DT-e para el movimiento. Cuando el productor
por autogestión proceda a gestionar el DT-e deberá seleccionar dicho CSM.

Procedimiento para la emisión del DT-e
El titular del establecimiento deberá ingresar al sitio web de ARCA con su CUIT
y clave fiscal, y dirigirse al servicio SIGSA. Allí deberá ingresar con el perfil de
“Productor Agropecuario”.

INSTRUCTIVO. CERTIFICADO DE SERONEGATIVIDAD PARA EL MOVIMIENTO (CSM)

11

�Luego, deberá ingresar al apartado “Movimientos” y seleccionar “Nuevo movimiento”, indicando como motivo invernada o reproducción al tratarse de
un traslado de establecimiento a establecimiento. Allí se deberá indicar la información de ambas unidades productivas, tanto de origen como de destino.

Posteriormente, el usuario deberá ingresar la cantidad de bovinos que se van
movilizar.

Si se van a trasladar categorías vacas, toros y/o toritos y su destino tiene la
actividad tambo, cría, ciclo completo, cabaña o genética, el SIGSA solicitará
el Certificado de Seronegatividad para el Movimiento (CSM). Allí, el productor
deberá tildar la opción requerida y continuar con la emisión del DT-e.

INSTRUCTIVO. CERTIFICADO DE SERONEGATIVIDAD PARA EL MOVIMIENTO (CSM)

12

�Nota aclaratoria
• El CSM tiene una validez de 60 días desde la fecha de toma de muestra.
• Si la cantidad que se moverá es mayor a la certificada por el veterinario
acreditado, el sistema no permitirá continuar con la emisión del DT-e.
• Si la cantidad que se moverá es menor a la certificación por el veterinario acreditado, el resto le quedará como remanente para otro movimiento, siempre que este se realice dentro de los 60 días desde la toma
de muestra.
• Si el veterinario acreditado en brucelosis bovina tiene vencida su acreditación no podrá realizar el CSM, generar el protocolo ni ingresar al SIGSA para registrar la serología. Deberá acreditarse nuevamente para cumplimentar con las tareas sanitarias.

Contactos
Para mayor información o consultas específicas, comunicarse con el Programa Nacional de Brucelosis Bovina del Senasa a través de:
• Correo electrónico: brucelosisbovina@senasa.gob.ar
• Teléfono interno: (11) 4121-5410

INSTRUCTIVO. CERTIFICADO DE SERONEGATIVIDAD PARA EL MOVIMIENTO (CSM)

13

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Dirección Nacional de Sanidad Animal&#13;
Coordinación General de Comunicación Institucional</text>
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                <text>Resolución Senasa N° 67/2019</text>
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                <text>El presente instructivo tiene como objetivo facilitar el procedimiento para generar el Certificado de Seronegatividad para el Movimiento (CSM) de categorías susceptibles a la brucelosis bovina. El CSM deberá vincularse al Documento de Tránsito electrónico (DT-e) para el movimiento y se gestionará a través de los sistemas informáticos del Senasa.</text>
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                <text>Introducción&#13;
Alcances&#13;
Destinatarios&#13;
Procedimiento&#13;
Carga en el sistema&#13;
Carga de múltiples muestras&#13;
Visualización de actas&#13;
Registro de resultados en el SIGSA&#13;
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Carga de resultados&#13;
Procedimiento para la emisión del DT-e&#13;
Nota aclaratoria&#13;
Contactos</text>
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                    <text>INSTRUCTIVO

Receta electrónica
veterinaria
Procedimiento para prescribir productos veterinarios

�El Servicio Nacional de Sanidad y Calidad Agroalimentaria (Senasa) es un organismo descentralizado, responsable de ejecutar las políticas nacionales en materia de sanidad y calidad animal, vegetal y
de la inocuidad de los alimentos de su competencia, así como de verificar el cumplimiento de la normativa vigente en la materia.
Equipos de trabajo

Dirección Nacional de Sanidad Animal
Dirección de Productos Veterinarios
Coordinación General de Comunicación Institucional
Edición 2025

�Índice

Contenido
Introducción

3

Objetivo

3

1. Requisitos previos

3

2. Registro

5

3. Receta electrónica	

12

4. Descarga de la receta

15

Contacto

16

Anexos

16

�Introducción
El presente instructivo está dirigido a veterinarios matriculados y tiene como
finalidad brindar una guía clara y detallada para la elaboración de una receta electrónica veterinaria, requerida específicamente para la prescripción de
productos que están bajo las categorías I, II y III de Res. Senasa N.° 11/2025.
Esta herramienta informática fue desarrollada con el objetivo de garantizar la
trazabilidad de los medicamentos veterinarios que, de acuerdo a la categoría
de venta la dispensación, debe ser bajo esta herramienta, promoviendo además el uso responsable y consciente de los medicamentos.
Mediante las Resoluciones Senasa N.° 80/2025 y 461/2025, se incorporó la
obligatoriedad de registrar las prescripciones de ciertos medicamentos mediante la receta electrónica veterinaria, medida que busca asegurar la trazabilidad en toda la cadena de comercialización, desde la fabricación hasta
la adquisición final del producto. En este contexto, todos los veterinarios que
prescriban estos productos deberán utilizar obligatoriamente la receta electrónica como único formato válido para su indicación.

Objetivo
El presente instructivo está dirigido a veterinarios matriculados y tiene como
finalidad brindar una guía clara y detallada para la elaboración de una receta electrónica veterinaria, requerida específicamente para la prescripción de
productos que contengan Fosfomicina o Polimixina B.

1. Requisitos previos
Antes de comenzar, es necesario que el profesional se asegure contar con la
matrícula vigente y habilitado como veterinario por el colegio o consejo profesional de su jurisdicción, de acuerdo a la Ley N° 14.072.
Para poder realizar una receta electrónica, el usuario deberá dirigirse al sitio web de
la Agencia de Recaudación y Control Aduanero (ARCA)1 e ingresar con clave fiscal.

Imagen 1
1

Ex-AFIP
INSTRUCTIVO. RECETA ELECTRÓNICA VETERINARIA

4

�Luego, deberá acceder al servicio “SIGTRÁMITE” del Senasa. Si el profesional
no cuenta con el servicio vinculado, deberá buscar en la página principal el
servicio y luego hacer clic en “Agregar”.

Imagen 2

Una vez vinculado el servicio, el veterinario podrá acceder al sistema a través
del botón visualizado en la siguiente pantalla.

Imagen 3

2. Registro
Al ingresar al Sistema, el veterinario deberá dirigirse al Portal de Trámites.

Imagen 4

INSTRUCTIVO. RECETA ELECTRÓNICA VETERINARIA

5

�En esta pantalla se visualizará un buscador, donde el usuario deberá buscar
el trámite de “Receta electrónica” y dirigirse al “186 - Registro veterinarios
para emisión de receta electrónica” y hacer clic en “Iniciar Trámite”.

Imagen 5

Imagen 6

INSTRUCTIVO. RECETA ELECTRÓNICA VETERINARIA

6

�Al comenzar la gestión, se le solicitará al usuario agregar un correo electrónico y verificarlo para operar en el sistema.

Imagen 7

Al hacer clic en “Agregar Correos” y completar esta información, el sistema
enviará un mensaje a la dirección de correo electrónico ingresada. El profesional deberá dirigirse a su casilla, ingresar al correo recibido y acceder al
enlace para validar su perfil.

Imagen 8

INSTRUCTIVO. RECETA ELECTRÓNICA VETERINARIA

7

�Al ser redirigido al sistema, el usuario deberá ingresar a “Ir a Perfil” y guardar sus datos.

Imagen 9

Imagen 10

Para continuar con el trámite pendiente, el profesional deberá dirigirse al “Inicio” y acceder a la “Bandeja de tareas”.

Imagen 11
INSTRUCTIVO. RECETA ELECTRÓNICA VETERINARIA

8

�Ingresar nuevamente al trámite “186 - Registro veterinarios para emisión
de receta electrónica”, iniciar la gestión y hacer clic en “Completar”.

Imagen 12

Imagen 13

Imagen 14

INSTRUCTIVO. RECETA ELECTRÓNICA VETERINARIA

9

�Allí será necesario, por única vez, completar los datos personales y profesionales del veterinario: nombre y apellido, correo electrónico (personal,
preferentemente), teléfono celular, número de matrícula y colegio donde se
encuentra matriculado.

Imagen 15

Si el veterinario cuenta con más de una matrícula,
puede declarar cada una de ellas sin inconvenientes

Para finalizar el formulario, seleccionar la opción “Guardar y Enviar”.

Imagen 16

Luego, ingresando en “Visualizar”, el usuario podrá observar el formulario en
línea y descargarlo en formato PDF.

INSTRUCTIVO. RECETA ELECTRÓNICA VETERINARIA

10

�Imagen 17

Imagen 18

Al corroborar que los datos son los correctos, el profesional deberá finalizar el
trámite seleccionando “Enviar el formulario”.

Imagen 19

Si el veterinario quisiera modificar algún dato deberá
comunicarse con su sede regional del Senasa.
INSTRUCTIVO. RECETA ELECTRÓNICA VETERINARIA

11

�3. Receta electrónica
Finalizado el registro, el profesional ya estará en condiciones de emitir su primera receta. La misma puede ser:
Receta de compra: solo es utilizada por los veterinarios que asesoran un RENSPA
determinado. Bajo esta modalidad, los productores agropecuarios podrán adquirir medicamentos, tenerlos en su establecimiento y, ante una situación sanitaria,
el veterinario actuante podrá medicar a ese lote de animales o bien a ese animal.
Receta de aplicación: se debe utilizar para prescribir productos veterinarios
farmacológicos que, de acuerdo al caso clínico, el veterinario receta para que
el usuario pueda adquirir dicho medicamento. El usuario lo puede hacer ingresando al Trámite 187 – Receta electrónica veterinaria (ver imagen 5), hacer clic en “Iniciar Trámite” y comenzar la gestión con la opción “Completar”.

Imagen 20

Imagen 21

Allí se deberán cargar los datos personales del profesional, las patologías
involucradas en la prescripción, el principio activo a recetar (junto a datos de
producto veterinario específico, dosis, periodicidad, duración del tratamiento,
recomendaciones, etc.) e indicar si la receta es para uso en animales de compañía o de producción de alimentos.

INSTRUCTIVO. RECETA ELECTRÓNICA VETERINARIA

12

�Imagen 22

Una vez que se completaron todos los datos, el veterinario deberá ingresar
“Guardar y Enviar”.

Imagen 23

Para finalizar la receta y poder descargarla, el usuario deberá concluir el trámite ingresando “Enviar formulario”.

Imagen 24

INSTRUCTIVO. RECETA ELECTRÓNICA VETERINARIA

13

�La receta electrónica veterinaria de compra tiene una validez de 60 días, mientras
que la de aplicación tiene 30 días desde su emisión.

En el Apartado “Anexos” el usuario podrán observar ejemplos de recetas
electrónicas finalizadas.

Antes de finalizar la prescripción, el usuario podrá incorporar en la receta los correos electrónicos que considere necesarios (puede ser correo personal, del propietario del animal o de la distribuidora).

INSTRUCTIVO. RECETA ELECTRÓNICA VETERINARIA

14

�4. Descarga de la receta
Para descargar la receta veterinaria electrónica en formato PDF, seleccionar
“Descargar documentos” (en caso de que el sistema no le permita la acción,
hacer clic en “refrescar trámite”) y tildar el documento de interés.

Imagen 25

Imagen 26

No importa si la receta se usa o no, el sistema guardará todas las recetas emitidas
y enviará automáticamente la información del formulario al Senasa.

INSTRUCTIVO. RECETA ELECTRÓNICA VETERINARIA

15

�5. Contacto
Consultas sobre aspectos operativos y navegación del SIGTrámites:
ayudasigtramites@senasa.gob.ar
Consultas o solicitud de información sobre productos farmacológicos veterinarios:
dpv@senasa.gob.ar

6. Anexos
• Anexo I – Ejemplo receta animales de producción

INSTRUCTIVO. RECETA ELECTRÓNICA VETERINARIA

16

�• Anexo II – Ejemplo receta animales de compañía

INSTRUCTIVO. RECETA ELECTRÓNICA VETERINARIA

17

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Dirección de Productos Veterinarios&#13;
Coordinación General de Comunicación Institucional</text>
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                <text>&lt;a href="https://digesto.senasa.gob.ar/items/show/895"&gt;Resolución N° 80/2025&lt;/a&gt; del SENASA</text>
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                <text>El presente instructivo está dirigido a veterinarios matriculados y tiene como &#13;
finalidad brindar una guía clara y detallada para la elaboración de una rece�ta electrónica veterinaria, requerida específicamente para la prescripción de  productos que contengan Fosfomicina o Polimixina B. A fin de garantizar la trazabilidad de estos medicamentos y promover el  uso responsable y consciente de los antimicrobianos.</text>
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                <text>Introducción&#13;
Objetivo&#13;
1. Requisitos previos&#13;
2. Registro&#13;
3. Receta electrónica&#13;
4. Descarga de la receta&#13;
Contacto&#13;
Anexos</text>
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        <name>Antimicrobianos</name>
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        <name>Veterinarios</name>
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                    <text>INSTRUCTIVO

SIGATM: Carga del acta
de toma de muestras para
veterinarios acreditados
Programa de Enfermedades de los Equinos

�El Servicio Nacional de Sanidad y Calidad Agroalimentaria (Senasa) es un organismo descentralizado,
responsable de ejecutar las políticas nacionales en materia de sanidad y calidad animal, vegetal y de la
inocuidad de los alimentos de su competencia, así como de verificar el cumplimiento de la normativa
vigente en la materia.
Equipos de trabajo
Dirección Nacional de Sanidad Animal
Coordinación General de Comunicación Institucional

Edición 2026

�Introducción
El Sistema Integral de Gestión de Actas de Toma de Muestra (SIGATM) facilita
la vinculación provisional de las actas con el sistema de Gestión de Resultados y Certificados de Laboratorios de Red (GRECERT). Esta integración permite optimizar el procesamiento de muestras y agilizar el flujo de información,
contribuyendo a una gestión más eficiente y actual de los datos laboratorios.

Objetivo
El presente instructivo tiene como objetivo proporcionar información a los
veterinarios acreditados en el Programa Nacional de Enfermedades de los
equinos sobre el procedimiento para cargar digitalmente el acta de toma de
muestras en el SIGATM. Se trata de un documento específico destinado al uso
correcto del Sistema para la confección y carga de actas de Anemia Infecciosa
equina.

Carga en el sistema
Consideraciones previas
Para ingresar al SIGATM, el usuario debe dirigirse al sitio web de la Agencia de
Recaudación y Control Aduanero (ARCA)1 y acceder con clave fiscal.

ex-AFIP

1

INSTRUCTIVO. SIGATM: CARGA DEL ACTA DE TOMA DE MUESTRAS PARA VETERINARIOS ACREDITADOS

3

�Allí deberá contar con el servicio del Senasa “SIGATM” vinculado. De lo contrario, se deberá buscar en la página principal el servicio y luego hacer clic en
“Agregar”.

Una vez vinculado el servicio, el acreditado podrá acceder al sistema a través
del botón visualizado en la siguiente pantalla.

Se recuerda que, al momento de ingresar al SIGATM, el veterinario deberá contar con la
acreditación vigente. De lo contrario, el sistema no permitirá su ingreso.

Ingreso
Un vez que haya ingresado, el usuario deberá dirigirse al apartado “Actas
DNSA” e ingresar el botón “+Nueva Acta”.

INSTRUCTIVO. SIGATM: CARGA DEL ACTA DE TOMA DE MUESTRAS PARA VETERINARIOS ACREDITADOS

4

�Posteriormente, en la sección “Área”, se deberá abrir el menú desplegable
y seleccionar la opción “Plan de control de enfermedades equinas”.

En la siguiente pantalla, el sistema mostrará una serie de campos que el
acreditado deberá completar, de acuerdo a lo requerido.

Consideraciones de los campos a completar
a. En el motivo de muestreo el acreditado deberá seleccionar “Plan de
control de enfermedades equinas”. En el submotivo de muestreo deberá
ingresar según corresponda:
• Certificación: muestreo realizado asociado a un movimiento, con el
objetivo de acreditar el diagnostico de anemia infecciosa equina (AIE).
Vigencia de 60 días, excepto para ingreso a Patagonia (15 días).
• Saneamiento: corresponde a los muestreos para demostrar la ausencia de AIE en un establecimiento donde se identificó un equino positivo.
• Relevamiento sanitario: muestreo que se realiza en un establecimiento cuando se desconoce la situación sanitaria de los equinos que
se encuentran en el mismo.
b. El “Número de acta” se asigna automáticamente, luego de generarla.
c. La “Fecha de Alta” se genera automáticamente. Expresa el día en que
se dio de alta el acta.
d. El campo “Responsable de Toma de Muestras” se genera automáticamente (el usuario que ingresó con su CUIT y clave fiscal).
e. La “Fecha de toma de muestra” corresponde al día en que se tomó la
muestra.
f. En Usuario GDE/Documento GDE no se debe completar, es de uso oficial.
g. El campo “Observaciones” es un espacio de libre escritura, en el cual
se puede indicar cualquier tipo de observación que sea relevante.

INSTRUCTIVO. SIGATM: CARGA DEL ACTA DE TOMA DE MUESTRAS PARA VETERINARIOS ACREDITADOS

5

�Para el análisis de muestras con motivo de Exportación de equinos, las mismas
deberán ser gestionadas a través de un veterinario oficial del Senasa

Posteriormente, en el apartado “Lugar de Toma de Muestras”, se deberá abrir
el menú desplegable y seleccionar la opción “Unidad productiva”.

Si el usuario conoce el número del Registro Nacional Sanitario de Productores
Agropecuarios (Renspa) deberá detallarlo en el espacio indicado y hacer clic
en la lupa . Luego, se desplegarán automáticamente los datos asociados al
registro.

Si se desconoce el número de Renspa, se deberá ingresar al ícono del cuadro
. El sistema abrirá un buscador que permite indicar el nombre del campo,
del titular, o parte del número de Renspa.

INSTRUCTIVO. SIGATM: CARGA DEL ACTA DE TOMA DE MUESTRAS PARA VETERINARIOS ACREDITADOS

6

�Al finalizar, el sistema arrojará los datos asociados al Renspa. Aunque no es un
dato obligatorio, es posible detallar quién es el responsable privado de la unidad
productiva y su cargo.

Luego, el acreditado deberá completar la información solicitada en el apartado
“Naturaleza del lote o muestra”, indicando la “Especie” y “Matriz”.

Al hacer clic en “Seleccionar especie”, se deberá indicar la opción “Équido” y
luego ingresar el botón “Confirmar especie”.

INSTRUCTIVO. SIGATM: CARGA DEL ACTA DE TOMA DE MUESTRAS PARA VETERINARIOS ACREDITADOS

7

�Luego, en el menú desplegable “Matriz”, el acreditado deberá especificar la opción “Suero”.

En el siguiente apartado, se deberán cargar los datos de las muestras. El usuario deberá tildar la opción “Muestras y submuestras” y hacer clic en el botón
azul “Agregar Muestra”. Esta modalidad permite la carga de muestras de manera individual (una a la vez).

Para detallar los datos solicitados de cada muestra, se abrirá un cuadro deno
minado “Ítem de muestra”. Allí se deberá completar todos los campos y, al finalizar, seleccionar el botón “Grabar”.

* Los campos marcados con asteriscos son obligatorios.
INSTRUCTIVO. SIGATM: CARGA DEL ACTA DE TOMA DE MUESTRAS PARA VETERINARIOS ACREDITADOS

8

�Si alguno de los campos no corresponde con la naturaleza de la muestra, se
deberá ingresar la opción “No aplica” o “N/A”.

Carga de múltiples muestras
Esta opción permite la carga de las muestras a través de una plantilla de Excel,
lo cual resulta útil para simplificar el trabajo cuando se trata de una cantidad numerosa de animales. Para iniciar el proceso, se deberán descargar las plantillas:
• “Plantilla para incorporar muestras”.
• “Códigos para completar la plantilla de muestras”. Esta última es necesaria para completar la plantilla anterior.

INSTRUCTIVO. SIGATM: CARGA DEL ACTA DE TOMA DE MUESTRAS PARA VETERINARIOS ACREDITADOS

9

�Una vez descargada la plantilla para incorporar muestras, el usuario deberá
guardarlo, habilitar su edición y completar los datos solicitados, sin alterar ni
modificar los encabezados.

Otras consideraciones
• Las columnas “Numero de tubo/muestra”, “Animal muestreado”, “Tipo
de identificación”, “Identificador”, “Categoría” y “Edad” son campos obligatorios. Si por la naturaleza de la muestra no corresponde completar, se
deberá ingresar el código correspondiente a “No Aplica” o “N/A”.
• Las columnas no obligatorias como “Fecha de Vacunación” y “Observaciones” podrán dejarse en blanco.

La “Plantilla para incorporar muestras” solicita:
a. Número de tubo/muestra. Se recuerda que el acreditado que tome la
muestra deberá rotular con un número el tubo o la muestra que remitirá.
Ejemplo: tubo 1, tubo 2, tubo 3, etc.
b. Animal muestreado. Allí debe completarse el estado del animal (sano/
enfermo/hallado muerto/no aplica), según la tabla códigos.
c. Tipo identificación. Indicar el código numérico, según la tabla de códigos.
d. Identificador. Agregar el número del microchip en caso de poseerlo, o en
su defecto el nombre del equino.
e. Categoría. Completar con el código numérico, según la tabla códigos.
f. Edad. Agregar el código numérico, según la tabla de códigos.
g. Fecha vacunación. Completar este campo en caso de que exista registro
de vacunación contra EEO o Influenza Equina. De lo contrario, dejar en blanco sin borrar la columna.
h. Observaciones. Si corresponde, agregar observaciones o comentarios que
tengan que ver con la muestra. De lo contrario, dejar en blanco sin borrar la
columna.

INSTRUCTIVO. SIGATM: CARGA DEL ACTA DE TOMA DE MUESTRAS PARA VETERINARIOS ACREDITADOS

10

�Por otra parte, el xls de Códigos - necesario para completar la Plantilla - contiene cuatro solapas.

Para visualizar los códigos, en la solapa “Categorías por especie” se encuentra el cuadro con los números necesarios para identificar cada categoría. Allí se
deberá filtrar en la columna “Especie” e indicar la opción “Équido” También se
podrá filtrar a través del apartado “Área”, seleccionando la opción “Programa
de Enfermedades de los Equinos”. Por ejemplo: el N.° 22 es el código asignado
para la categoría “Padrillo”.

Además, en la solapa “Animal Muestreado” se encuentran las referencias para
indicar el código, según el estado del animal. Por ejemplo, el código N.° 2 corresponde a la opción “Animal sano”.

INSTRUCTIVO. SIGATM: CARGA DEL ACTA DE TOMA DE MUESTRAS PARA VETERINARIOS ACREDITADOS

11

�Una vez completada la plantilla del Excel, se deberá guardar el archivo y subirlo
al sistema, haciendo clic en “Subir archivo de muestras”. De esta manera, se
cargarán todas las filas de los ítems de muestras.

Una vez cargadas las muestras de forma individual o por medio de la plantilla de
Excel, la pantalla deberá visualizarse de la siguiente manera:

Si el usuario requiere modificar o eliminar algún dato de las muestras, podrá
hacerlo antes de finalizar el acta, utilizando los ítems de edición o borrar .

El sistema indicará error si no se cargan correctamente los códigos,
se incorporan letras en lugar de números o si se eliminan columnas.

Nota: Si se realiza una carga múltiple de muestras, es fundamental presentar en el laboratorio los certificados o libretas sanitarias equinas de cada animal (mientras dure el proceso
de transición hacia la digitalización).

INSTRUCTIVO. SIGATM: CARGA DEL ACTA DE TOMA DE MUESTRAS PARA VETERINARIOS ACREDITADOS

12

�Ensayos
Dentro del apartado “Ensayos”, en el menú desplegable “Grupo de análisis” el
acreditado deberá seleccionar: “DIAGNOSTICO DE ANEMIA INFECCIOSA”.

Luego, se desplegarán las técnicas diagnósticas asociadas a la matriz, donde deberá indicarse la opción “IDGA”. Luego, el acreditado deberá seleccionar el botón
“Asignar” para confirmar el ensayo.

Posteriormente, aparecerá en pantalla el ensayo seleccionado. De ser necesario,
el usuario podrá modificarlo, seleccionando y eliminándolo individualmente con
el ícono .

INSTRUCTIVO. SIGATM: CARGA DEL ACTA DE TOMA DE MUESTRAS PARA VETERINARIOS ACREDITADOS

13

�Al indicar los ensayos, se deberá considerar que luego, en la selección
del Laboratorio de Red de destino, solo se visualizará en el listado aquellos
laboratorios que tengan habilitada la técnica IDGA.

Laboratorio de destino
En el apartado “Laboratorio”, el usuario deberá seleccionar el establecimiento
al cual se enviarán las muestras para analizar.
ardado puede realizarse en cualquier momento durante la confección del

Consideraciones para la finalización de la carga
a. Si hace clic en el botón “Cancelar”, se borrará todo lo efectuado.
b.	 La opción de “Grabar borrador” permite guardar el acta como borrador y continuarla luego de su confección, pudiendo modificar los datos
previamente guardados. Esta opción puede realizarse en cualquier momento durante la elaboración del acta.
c. El botón de “Finalizar” completa el Acta de Toma de Muestra, permitiendo que el número de acta asignado se cargue al sistema. Solo al
poner finalizar el laboratorio de destino podrá recuperar el acta en su
propio sistema.

Visualización de actas
En el menú principal se podrán consultar las actas finalizadas o aquellas grabadas que se encuentran en estado de preparación (borrador).

INSTRUCTIVO. SIGATM: CARGA DEL ACTA DE TOMA DE MUESTRAS PARA VETERINARIOS ACREDITADOS

14

�Las actas que figuren en preparación podrán editarse haciendo clic en el ícono
, mientras que aquellas actas que figuren como finalizadas no podrán
editarse. Únicamente podrán visualizarse, copiarse o imprimirse en formato
PDF; o bien imprimir el talón. Esta última opción se utiliza para agregarlo a las
muestras que corresponden al acta.

Aunque la posibilidad esté disponible, no es necesario imprimir
el acta completa para acompañar las muestras.
Al finalizar el proceso, las muestras que sean despachadas o entregadas al
Laboratorio deberán estar acompañadas de la impresión del talón, el cual
contiene el número del acta generada.

IMPORTANTE: aunque se haya utilizado el SIGATM, el envío de las muestras deberá estar respaldado por la Libreta Sanitaria Equina (LSE) o el
Certificado de AIE en formato papel, con el fin de verificar la identificación del equino. El laboratorio, además de finalizar el ensayo en su sistema, deberá consignar los resultados y colocar las estampillas correspondientes en dichos documentos.

Contacto
Para consultas, los usuarios podrán comunicarse con la Mesa de Ayuda del
Senasa, a través del correo electrónico sigatmayuda@senasa.gob.ar.
Para contactarse con el Programa de Enfermedades de los Equinos, podrán
comunicarse al:
• Correo electrónico: equinos@senasa.gob.ar.
• Teléfono interno: (11) 4121 5411.
• Teléfono corporativo: (11) 5155 1467.

INSTRUCTIVO. SIGATM: CARGA DEL ACTA DE TOMA DE MUESTRAS PARA VETERINARIOS ACREDITADOS

15

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                <text>El Sistema Integral de Gestión de Actas de Toma de Muestra (SIGATM) facilita la vinculación provisional de las actas con el sistema de Gestión de Resulta- dos y Certificados de Laboratorios de Red (GRECERT).</text>
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                <text>Introduccion &lt;br /&gt;Objetivo &lt;br /&gt;Carga en el sistema&lt;br /&gt;Ensayos &lt;br /&gt;Laboratorio de destino &lt;br /&gt;Contacto</text>
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                    <text>INSTRUCTIVO

SIGATM: Carga del acta
de toma de muestras para
veterinarios oficiales
Programa de Enfermedades de los Equinos

�El Servicio Nacional de Sanidad y Calidad Agroalimentaria (Senasa) es un organismo descentralizado,
responsable de ejecutar las políticas nacionales en materia de sanidad y calidad animal, vegetal y de la
inocuidad de los alimentos de su competencia, así como de verificar el cumplimiento de la normativa
vigente en la materia.
Equipos de trabajo
Dirección Nacional de Sanidad Animal
Coordinación General de Comunicación Institucional
Edición 2025

�Introducción
El Sistema Integral de Gestión de Acta de Toma de Muestra (SIGATM) permite
la vinculación automática de las actas de toma de muestra con los sistemas de
la Dirección General de Laboratorios y Control Técnico (DGLyCT). Esta integración agiliza tanto el procesamiento de las muestras como el flujo de información, lo que se traduce en una optimización de los procesos de certificación.
Como resultado, se mejora la eficiencia en los diagnósticos y la comunicación
de resultados en tiempo real.

Objetivo
El objetivo del presente instructivo es brindar un soporte que facilite a los
veterinarios oficiales del Senasa la manera de gestionar las actas de toma de
muestras a través del SIGATM.

Acceso al sistema
El veterinario oficial del Senasa deberá ingresar al sitio web interno del organismo y dirigirse al Portal de Aplicaciones. Allí, en el menú principal, deberá
seleccionar la opción “SIG UNILAB Actas SIGATM”.

INSTRUCTIVO. SIGATM: CARGA DEL ACTA DE TOMA DE MUESTRAS PARA VETERINARIOS OFICIALES

3

�Confección del acta
Al ingresar, el usuario deberá seleccionar la opción “Actas DNSA” y se abrirá
una nueva pestaña. Luego, deberá ingresar en “+Nueva Acta”.

En la siguiente pantalla, el veterinario del Senasa deberá abrir el menú desplegable “Área” y seleccionar la opción “Programa de Enfermedades de los
Equinos”.

Posteriormente, el agente deberá seleccionar en el “Motivo de muestreo” la
opción “Muestreo equino” y, en el “Submotivo de muestreo”, la opción “Vigilancia”.

INSTRUCTIVO. SIGATM: CARGA DEL ACTA DE TOMA DE MUESTRAS PARA VETERINARIOS OFICIALES

4

�Una vez completados los campos, el sistema abrirá una pantalla con información de:
• Número de acta, el cual será asignado luego de generar el acta.
• Fecha de alta (se generará automáticamente).
• Responsable de toma de muestras (se generará automáticamente).
• Fecha de toma de muestra, que deberá asignarse por el usuario.
• Observaciones. Campo de libre escritura. Se puede indicar otra observación que sea relevante.

INSTRUCTIVO. SIGATM: CARGA DEL ACTA DE TOMA DE MUESTRAS PARA VETERINARIOS OFICIALES

5

�En el siguiente paso, se deberán completar los campos correspondientes a
“Lugar de toma de muestra”, donde el usuario tendrá que seleccionar “Unidad Productiva”.

Luego, se deberá completar el campo “Número oficial/Renspa”. Para ello, el
usuario podrá ingresar el número correspondiente al establecimiento de toma
de muestra y seleccionar el ícono para buscarlo.

También podrá completar este campo ingresando al ícono . Al realizar esta
acción, deberá dirigirse a la lupa que aparecerá en la ventana emergente y
buscar la unidad productiva por su nombre.

INSTRUCTIVO. SIGATM: CARGA DEL ACTA DE TOMA DE MUESTRAS PARA VETERINARIOS OFICIALES

6

�Una vez ingresado el Renspa, se desplegarán de manera automática los datos
asociados al mismo. De ser necesario, se podrá detallar el nombre del responsable privado y su cargo.
Posteriormente, el usuario deberá agregar los datos correspondientes a la
naturaleza del lote o muestra. Así, en el campo “Especie”, deberá dirigirse al
menú desplegable, ingresar la opción “Équido” y confirmar la selección.

En el siguiente menú, en el apartado “Matriz”, será necesario indicar la opción “Suero” como tipo de material a analizar.

Sólo se permite cargar un tipo de matriz por acta. Si hay más de una matriz, se
deberá confeccionar un acta distinta para cada una.

INSTRUCTIVO. SIGATM: CARGA DEL ACTA DE TOMA DE MUESTRAS PARA VETERINARIOS OFICIALES

7

�Muestras
Para realizar la carga de la muestra, se deberá seleccionar el botón “Agregar
muestra”.

En una nueva pantalla, se deberán completar los datos solicitados en cada
campo.

Luego, se deberá seleccionar el botón “Grabar” para finalizar la carga de la
muestra. La misma se visualizará listada de la siguiente manera:

INSTRUCTIVO. SIGATM: CARGA DEL ACTA DE TOMA DE MUESTRAS PARA VETERINARIOS OFICIALES

8

�Ingreso masivo de muestras
Para los casos donde se requiera cargar una alta cantidad de actas de toma de
muestras, será necesario completar un Excel con la información de cada una
de ellas. Para esto, se deberá descargar la Plantilla para incorporar muestras
y un documento de Excel que contiene los códigos de edades y categorías necesarios para completar la plantilla.
Una vez completada la plantilla preestablecida, el usuario deberá seleccionar
la opción “Buscar” para cargarla en el sistema.

Ensayos
Para indicar la prueba diagnóstica disponible, según la matriz de muestra seleccionada, se deberá desplegar el menú “Grupo de análisis” e ingresar la
opción “Diagnóstico de anemia infecciosa”. Posteriormente, se deberá tildar
la casilla “IDGA” y hacer clic en el botón “Asignar” para establecer el ensayo
correspondiente a la matriz.

Luego, se deberá abrir el menú desplegable “Laboratorio” y seleccionar el
destino al cual se enviarán las muestras a analizar.

INSTRUCTIVO. SIGATM: CARGA DEL ACTA DE TOMA DE MUESTRAS PARA VETERINARIOS OFICIALES

9

�Otras acciones
En la parte inferior del acta se observarán los siguientes botones:
Cancelar: permite regresar a la pantalla donde se listan las actas ingresadas, sin guardarse los datos modificados y/o ingresados.
Grabar borrador: se pueden realizar diferentes guardados parciales,
permitiendo modificar todos los datos. Mantiene el estado de “En preparación”.
Finalizar: al ingresar esta opción, el acta cambia su estado a “Pendiente de despacho” y se envía por sistema al laboratorio. No se puede
modificar ningún dato, sólo anularla.

Consulta e impresión de actas
En el apartado “Actas DNSA”, cada usuario podrá visualizar la pantalla con
las actas generadas.

Si se necesita buscar algún acta en particular, el agente deberá seleccionar la
opción de “Filtros” e ingresar el campo que desee filtrar.

INSTRUCTIVO. SIGATM: CARGA DEL ACTA DE TOMA DE MUESTRAS PARA VETERINARIOS OFICIALES

10

�Creación de remitos
Una vez que el acta figure con el estado “de despacho” (color naranja), el usuario deberá gestionar el remito. Para ello, deberá ingresar en la opción “Laboratorio”.

Posteriormente, deberá seleccionar el botón “Remitos”, donde se desplegarán
las opciones “Preparación de remitos” y “Despacho de remitos”.

Preparación de remitos
Al ingresar en esta opción, el usuario deberá hacer clic en el botón “+Agregar
Remito” en el margen superior de la pantalla.

INSTRUCTIVO. SIGATM: CARGA DEL ACTA DE TOMA DE MUESTRAS PARA VETERINARIOS OFICIALES

11

�En la pantalla emergente se deberá indicar el laboratorio de destino (según
corresponda) y seleccionar el botón “Guardar”.

Posteriormente, aparecerá un cartel en rojo con la leyenda “No existen actas
vinculadas”. Para asociar un acta al remito, el usuario deberá tildarla en el
cuadro de selección
e ingresa la opción “Agregar actas al Remito” (se pueden incluir más de una al remito).

El acta seleccionada pasará a estar ubicada en el apartado de “Actas incluidas
en el remito”.

INSTRUCTIVO. SIGATM: CARGA DEL ACTA DE TOMA DE MUESTRAS PARA VETERINARIOS OFICIALES

12

�Finalizada esta acción se podrá seleccionar “Preparar despacho” para continuar directamente con el Despacho de Remitos. Con la opción “Guardar” se
podrán mantener los registros sin enviar.

Despacho de remitos
En esta última instancia, se deberá completar el remito e indicar los datos del
transporte, una vez que la empresa haya despachado las muestras. Para ello,
el agente deberá ingresar a “Remitos” y luego en “Despacho de remitos”.

Allí podrá visualizar que el estado del remito se encuentra en “Preparado”. El
usuario deberá seleccionar el botón del lápiz
y completar los datos correspondientes a la “Información de Despacho”.

Es importante indicar si la entrega de la muestra se realiza en el laboratorio
o en la empresa transportista.

INSTRUCTIVO. SIGATM: CARGA DEL ACTA DE TOMA DE MUESTRAS PARA VETERINARIOS OFICIALES

13

�Posteriormente, el usuario deberá ingresar la opción “Despachar”.

Luego, en el apartado de “Actas”, el acta cargada se visualizará dentro del listado de las despachadas. La misma deberá identificarse con el estado de “Remitida” (color verde) para confirmar que fue enviada correctamente.

Finalmente, se deberá imprimir el remito con el código QR haciendo clic en el
ícono de PDF para acompañar las muestras al Laboratorio.

Contactos
Para consultas sobre el sistema:
• Correo: sigatmayuda@senasa.gob.ar
Para consultas específicas del Programa Nacional
de Enfermedades de los Equinos:
• Correo: equinos@senasa.gob.ar
• Teléfono interno: (11) 4121 5411.
• Teléfono corporativo: (11) 5155 1467.

INSTRUCTIVO. SIGATM: CARGA DEL ACTA DE TOMA DE MUESTRAS PARA VETERINARIOS OFICIALES

14

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SOLICITUD DE
LICENCIA ANUAL
ORDINARIA (LAO)
Edición 2024

�Introducción
La Solicitud de Licencia Anual Ordinaria (LAO) deberá gestionarse por el sistema GDE a través del módulo GEDO.
El presente instructivo es de uso interno para los agentes del Senasa y está
destinado a aquellas personas que deben presentar la solicitud de su licencia
anual ordinaria.
A continuación se detallan los pasos que se deberán seguir y se recuerda, que
esta licencia deberá estar firmada por el solicitante, autorizada por el superior
inmediato y se deberá enviar al referente de Recursos Humanos correspondiente.

La solicitud de la licencia por GDE debe realizarse hasta 15 días antes de su usufructo.

Procedimiento
1. Ingresar al Portal GDE, con su clave y usuario.

2. Ingresar en Generador Electrónico de Documentos Oficiales (GEDO) y seleccionar la opción Inicio de Documento.

INSTRUCTIVO. SOLICITUD DE LICENCIA ANUAL ORDINARIA (LAO)

2

�3. Buscar en la lupa el formulario el acrónimo FSOLI, y seleccionar dicho formulario.

4. Una vez seleccionado, se cierra la solapa y se selecciona Cargar Usuarios Firmantes para que se abra la ventana Firma Conjunta.

INSTRUCTIVO. SOLICITUD DE LICENCIA ANUAL ORDINARIA (LAO)

3

�5. En Firma Conjunta se deberá agregar el usuario de quien solicita la licencia y,
a continuación, en la ventana de Confirmación hacer clic en la opción NO (ya que
no es necesario agregar un usuario revisor).

6. Luego, en la ventana Firma Conjunta se agrega el usuario del superior inmediato que será el encargado de aprobar o rechazar la solicitud1. Nuevamente,
para la Confirmación cliquear en NO agregar un usuario revisor.

1. Tené en cuenta que en la tabla que presenta los usuarios debe quedar en primer lugar el nombre del
solicitante y debajo el nombre del superior inmediato.
INSTRUCTIVO. SOLICITUD DE LICENCIA ANUAL ORDINARIA (LAO)

4

�7. Una vez cargados los dos usuarios firmantes, cliquear en Guardar.

8. Se regresa a la ventana principal donde se deberá cliquear en Destinatarios a
fin de colocar a los usuarios que recibirán la comunicación.
• En el caso de los centros regionales: Los destinatarios de este formulario
deben ser los referentes de Recursos Humanos en los centros regionales.
• En el caso de la sede central: Los destinatarios de este formulario deben
ser los referentes de Recursos Humanos y los usuarios de las agentes que
componen el área de Contralor de la Dirección de Recursos Humanos.
Una vez cargados todos los usuarios, seleccionar la opción Aceptar.

INSTRUCTIVO. SOLICITUD DE LICENCIA ANUAL ORDINARIA (LAO)

5

�9. Regresar a la ventana principal donde se deberá cliquear en la opción Producirlo yo mismo a fin de completar la solicitud. En Referencia, completar Apellido,
Nombre y CUIL– LAO, con respecto al usuario solicitante.

10. En Asunto desplegar el menú para seleccionar 09 A) Licencia Anual Ordinaria.

INSTRUCTIVO. SOLICITUD DE LICENCIA ANUAL ORDINARIA (LAO)

6

�11. Completar los campos Nombre, Apellido, N° de CUIL y para Tipo de Convenio desplegar el menú y colocar Otros, en Especificar escribir Senasa y en Repartición desplegar
la lupa para escribir # según su dirección nacional, centro regional o unidad de
dependencia, luego seleccionarla.

Consejo: para que sea más sencillo ubicar tu repartición, se recomienda
escribir #Senasa y buscar la que corresponde a tu asiento de funciones
dentro de las opciones disponibles.

12. En el apartado Licencia se deben completar las fechas en que serán usufructuados los días. En primer lugar, se completa el Año al que corresponden
(según lo que posea cada agente), luego la Fecha desde, la Fecha hasta y los Días
en total.
En este apartado, si se quisiera colocar más de un período, se puede agregar
cliqueando en + para que se habilite otro apartado para ser completado de
igual manera.

13. En el apartado Domicilio particular se deben completar todos los campos (Dirección, N°, Piso, Dto., Localidad y Teléfono –solo acepta números sin guiones ni símbolos-).

INSTRUCTIVO. SOLICITUD DE LICENCIA ANUAL ORDINARIA (LAO)

7

�14. En el apartado Observaciones generales se debe completar obligatoriamente el
campo Motivo de la licencia, en la cual se puede escribir simplemente Vacaciones.
Los campos Comprobantes adjuntos y Observaciones son opcionales por lo que se pueden dejar en blanco.

15. Una vez completada la solicitud, tildar la opción Quiero recibir un aviso cuando
el documento se firme. Posteriormente, cliquear en Enviar a Firmar. Finalmente,
en Confirmación, cliquear en NO seleccionar usuario revisor.

INSTRUCTIVO. SOLICITUD DE LICENCIA ANUAL ORDINARIA (LAO)

8

�16. Una vez terminado, GDE nos dará la información de que el proceso de firma
se ha iniciado correctamente. En Mis Tareas encontrará el documento disponible para
proceder a la firma, para ello, seleccionar la flecha a la derecha de Ejecutar en
la columna Acciones.

INSTRUCTIVO. SOLICITUD DE LICENCIA ANUAL ORDINARIA (LAO)

9

�17. Una vez dentro del documento, se firma cliqueando Firmar con Certificado.
Luego de ser firmado, el documento desaparecerá de Mis Tareas ya que se ha
dirigido para que lo firme el superior inmediato indicado.

18. Cuando el superior inmediato, desde su usuario GDE, realice también su
proceso de firma el proceso habrá finalizado y todos los destinatarios que se
colocaron en el paso 8 recibirán el documento correspondiente. De esta forma, se da por finalizado el proceso de solicitud de licencia anual ordinaria

Ante cualquier duda, consulte con su Referente de RRHH.

INSTRUCTIVO. SOLICITUD DE LICENCIA ANUAL ORDINARIA (LAO)

10

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                <text>El presente instructivo es de uso interno para los agentes del Senasa y está destinado a aquellas personas que deben presentar la solicitud de su licencia anual ordinaria</text>
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                    <text>INSTRUCTIVO

Toma de muestras
en aves de raza
Veterinarios oficiales y acreditados en sanidad y bienestar aviar

�El Servicio Nacional de Sanidad y Calidad Agroalimentaria (Senasa) es un organismo descentralizado,
responsable de ejecutar las políticas nacionales en materia de sanidad y calidad animal, vegetal y de la
inocuidad de los alimentos de su competencia, así como de verificar el cumplimiento de la normativa
vigente en la materia.
Equipos de trabajo
Programa Nacional de Sanidad Aviar
Dirección de Planificación y Estrategia de Sanidad Animal
Dirección Nacional de Sanidad Animal
Coordinación General de Comunicación Institucional

Edición 2025

�Índice

Introducción	

4

Normativa

4

Definiciones	

4

Establecimientos

5

Período de muestreo

5

Cantidad de aves a muestrear por establecimiento

6

Toma de muestra

6

Materiales

6

Procedimiento para la extracción de sangre

6

Embalaje primario

7

Embalaje secundario

7

Embalaje terciario

7

Protocolo de remisión de muestras - SIGATM

8

Personal interno del Senasa

8

Veterinarios acreditados

9

Envío de las muestras

10

Información complementaria

10

Contacto

10

�Introducción
El presente instructivo tiene como finalidad establecer los procedimientos y
la metodología que deben aplicar los veterinarios oficiales y los acreditados
en Sanidad y Bienestar Aviar Senasa para realizar el muestreo serológico en
aves de raza, como requisito obligatorio para su participación en eventos y
exposiciones.
Asimismo, el instructivo detalla el procedimiento adecuado para la toma,
acondicionamiento y envío de las muestras a los Laboratorios de la Red Senasa, garantizando la trazabilidad y la calidad del material remitido para su
análisis.
La vigilancia epidemiológica serológica es una herramienta esencial para la
detección temprana de la Influenza Aviar, lo que permite la implementación
oportuna de medidas de control y prevención de la enfermedad. La participación activa y comprometida de todos los actores involucrados — en particular,
los productores y los veterinarios acreditados — es fundamental para fortalecer el sistema de vigilancia y asegurar la sanidad del sector avícola.
La notificación inmediata al Senasa de cualquier sospecha clínica es obligatoria y constituye un pilar esencial para la respuesta rápida y efectiva ante
eventuales casos de Influenza Aviar.

Normativa
Las siguientes resoluciones constituyen el marco regulatorio que deberá contemplarse para la realización del procedimiento del presente instructivo.
• Resolución Senasa N° E1/2018 - Procedimiento único de registro para
veterinarios y técnicos acreditados.
• Resolución Senasa N° 421/2025 - Requisitos sanitarios y documentales
y las actividades de control necesarios para el ingreso y egreso de los animales de todas las especies que concurren a exposiciones ganaderas.
• Resolución Senasa N° 468/2025 – Programa de Vigilancia Epidemiológica
Activa y Pasiva de la Influenza Aviar.

Definiciones
Con el objetivo de promover una comprensión precisa, es fundamental establecer las siguientes definiciones:
• Aves de raza: refiere a especies de aves como gallinas o gallos, pavos, gallinetas, faisanes, codornices, patos o gansos de razas puras con fines de
exposición en ferias y/o eventos.

INSTRUCTIVO. TOMA DE MUESTRAS EN AVES DE RAZA

4

�• Aves ornamentales: refiere a aves como canarios o psitácidos de razas puras,
con fines de exposición en ferias y/o eventos.
• Aves de traspatio: aves domésticas criadas a pequeña escala cuya producción
se consume en el lugar.
• Exposición: evento donde se concentran aves de distintos orígenes para ser
expuestos, visitados y/o vendidos.

Una vez finalizado el evento, las aves se trasladan al lugar de origen
o son vendidos a otros destinos.

• Establecimiento: predio donde se encuentran alojadas aves, pertenecientes a
uno o varios titulares. Dicho predio debe estar registrado ante el Senasa y se
identifica mediante los primeros 11 dígitos del Registro Nacional Sanitario
de Productores Agropecuarios (Renspa). Ejemplo: 00.000.0.00000
• Unidad Productiva: es la relación entre un productor y su actividad productiva
dentro de un establecimiento agropecuario, vinculada a una ubicación física
específica. El Senasa identifica y registra esta relación a través del Registro
Nacional Renspa. Ejemplo: 00.000.0.00000/00

Establecimientos
Las muestras deberán ser recolectadas por cada establecimiento. Si dentro de
un mismo establecimiento hay más de una Unidad Productiva (UP), se deberán
tomar muestras en aves de todas las UP presentes.
El resultado obtenido será válido para la emisión del Documento de Tránsito
electrónico (DT-e) correspondiente a cada UP.

Período de muestreo
El muestreo se debe realizar una vez por año, previo a la asistencia de la primera exposición. El resultado del mismo tendrá validez durante todo el año en
curso.

INSTRUCTIVO. TOMA DE MUESTRAS EN AVES DE RAZA

5

�Cantidad de aves a muestrear por establecimiento
En establecimientos cuya cantidad de aves sea igual o menor a 20, se deberá
muestrear la totalidad de ellas.
En aquellos que cuenten con una cantidad superior a 20, solo se deberán tomar
muestras de 20 aves.

TIPO DE MUESTRA
1

Una (1) muestra de sangre de cada ave (una por tubo).

Las muestras deben centrifugarse y enviarse sólo el suero libre de
hemólisis. Cantidad mínima: 1 ml.

Toma de muestra
Materiales
• Viales tipo Eppendorf (estériles).
• Jeringas estériles de 2,5 ml a 3 ml.
• Agujas dependerá de la especie a muestrear.
• Guantes.
• Gradillas, alcohol, marcador indeleble y algodón.
• Conservadora y refrigerantes.

Procedimiento para la extracción de sangre
Para punción de la vena cubital (ala) se deberá colocar el ave en posición de
decúbito lateral, extender el ala, mojar con algodón húmedo las plumas y/o
levantarlas sobre la cara ventral de la base ósea de eje humeral, identificar la
vena la cubital (vena del ala), presionar para ingurgitarla y extraer como mínimo
2.5 ml de sangre.
Para obtener un suero sin hemólisis, se deberá transferir cuidadosamente la
sangre de la jeringa al tubo, dejando que la misma escurra por su pared lateral.

Nunca se debe vaciar la sangre de forma brusca ni en el fondo del tubo.

INSTRUCTIVO. TOMA DE MUESTRAS EN AVES DE RAZA

6

�Además, es muy importante evitar agitar los tubos mientras se deja que la
sangre repose para separar el suero.
Los sueros deben mantenerse refrigerados entre +2 °C y +8 °C, desde el momento de su obtención hasta su envío al laboratorio. Este proceso no debe
superar las 72 horas, siendo lo ideal completarlo dentro de las primeras 24
horas.

Acondicionamiento
Embalaje primario
• Debe ser hermético (ej: vial tipo Eppendorf).
• En el caso de que se vayan a enviar varios recipientes primarios, cada uno
de ellos deberá estar envuelto individualmente para evitar posibles daños.
La/s muestra/s deberán colocarse de forma tal que no se produzcan derrames. Cada una de ellas deberá estar debidamente identificada – correspondiente al número de establecimiento – en una bolsa de nylon o conservadora.
Se deberán colocar una cantidad de refrigerantes suficiente, considerando el
tiempo de duración del transporte; luego, se deberá cerrar y sellar la tapa.
Tener en cuenta que, cuanto menor espacio “libre” en la conservadora, las
muestras se mantendrán refrigeradas por mayor cantidad de tiempo.

Embalaje secundario
• Debe ser hermético.
• Debe contar con material absorbente suficiente, para prevenir eventuales roturas o filtraciones del embalaje primario.
El embalaje secundario deberá ser acondicionado en una caja de telgopor, de
forma tal que evite roturas y/o posibles derrames.

Embalaje terciario
a. Se deberá poner, cuando sea necesario, hielo seco o húmedo alrededor
de embalaje secundario. En el caso de emplear hielo seco, el envoltorio
debe permitir la salida del dióxido de carbono para evitar incrementos de
presiones que lleven a la ruptura del paquete. Si se usa hielo húmedo, el
embalaje será a prueba de goteo.
b. Colocar refrigerantes en cantidad suficiente, considerando el tiempo de
duración del transporte; luego se deberá cerrar y sellar la tapa. Tener en
cuenta que cuanto menor espacio “libre” en la conservadora, las muestras
se mantendrán refrigeradas por mayor cantidad de tiempo.
INSTRUCTIVO. TOMA DE MUESTRAS EN AVES DE RAZA

7

�c. En el exterior de la caja deberá colocarse un sobre de polietileno que
contenga la documentación correspondiente. Cuando las muestras se envíen a Laboratorios de la Red del Senasa, se deberá incluir el talón con
el número de acta generada en Sistema Integral de Gestión de Actas de
Toma de Muestra (SIGATM).
Si las muestras se remiten a un Laboratorio Oficial del Senasa, deberá
adjuntarse el remito correspondiente al acta, también confeccionado en
el SIGATM. El embalaje externo debe introducirse en una bolsa sellada de
plástico para protegerlo de la humedad.

Protocolo de remisión de muestras - SIGATM
Personal interno del Senasa
Para realizar la Carga del acta de toma de muestras en el SIGATM, el veterinario oficial del Senasa deberá ingresar al sitio web interno del organismo y
dirigirse al Portal de Aplicaciones. Allí, en el menú principal, deberá seleccionar la opción “SIG UNILAB Actas SIGATM”.

Veterinarios acreditados
Para que el veterinario acreditado pueda ingresar al SIGATM, primero deberá
dirigirse al sitio web de la Agencia de Recaudación y Control Aduanero (ARCA)1
y acceder con clave fiscal.

1Ex - Afip
INSTRUCTIVO. TOMA DE MUESTRAS EN AVES DE RAZA

8

�Allí deberá contar con el servicio del Senasa “SIGATM” vinculado. De lo contrario, se deberá buscar en la página principal el servicio y luego hacer clic en
“Agregar”.

Una vez vinculado el servicio, el acreditado podrá acceder al sistema a través
del botón visualizado en la siguiente pantalla.

Al momento de ingresar al SIGATM, el veterinario debe tener vigente su acreditación en
Sanidad y Bienestar Aviar. De lo contrario, el sistema no permitirá el ingreso.

Al momento de completar el protocolo, se deberá considerar el Instructivo del
SIGATM para la carga del acta de toma de muestras de aves de raza, disponible
aquí.

INSTRUCTIVO. TOMA DE MUESTRAS EN AVES DE RAZA

9

�Envío de las muestras
Previo al envío de las muestras, el veterinario deberá comunicarse con el laboratorio seleccionado para su recepción. Finalizado el embalaje de las conservadoras, las mismas deben ser despachadas para su análisis y diagnóstico al
laboratorio seleccionado al confeccionar el acta en SIGATM.
En el caso de los Veterinarios Acreditados en Sanidad y Bienestar Aviar, los
envíos serán acordados con el Laboratorio de Red seleccionado o vía remito si
se selecciona el Laboratorio Oficial de Senasa en Martínez.

Los veterinarios del Senasa deberán enviar las muestras de la misma manera
que para la Vigilancia Epidemiológica.

Información complementaria
• Sitio web de Sanidad Aviar de Senasa.
• Buscador de Laboratorios de Red.
• Buscador de Veterinarios Acreditados.

Contacto
Programa de Sanidad Aviar

• Correo electrónico: avesygranja@senasa.gob.ar
• Teléfono de contacto: (011) 4121-5409

Mesa de Entradas - Laboratorio oficial de Senasa

• Correo electrónico: mesalabadm@senasa.gob.ar

INSTRUCTIVO. TOMA DE MUESTRAS EN AVES DE RAZA

10

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                <text>El presente instructivo tiene como finalidad establecer los procedimientos y&#13;
la metodología que deben aplicar los veterinarios oficiales y los acreditados&#13;
en Sanidad y Bienestar Aviar Senasa para realizar el muestreo serológico en&#13;
aves de raza, como requisito obligatorio para su participación en eventos y&#13;
exposiciones.</text>
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                <text>Introducción &#13;
Normativa&#13;
Definiciones &#13;
Establecimientos&#13;
Período de muestreo&#13;
Cantidad de aves a muestrear por establecimiento&#13;
Toma de muestra&#13;
Materiales&#13;
Procedimiento para la extracción de sangre&#13;
Embalaje primario&#13;
Embalaje secundario&#13;
Embalaje terciario&#13;
Protocolo de remisión de muestras - SIGATM&#13;
Personal interno del Senasa&#13;
Veterinarios acreditados&#13;
Envío de las muestras&#13;
Información complementaria&#13;
Contacto&#13;
&#13;
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        <name>Enfermedades de las Aves</name>
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                    <text>INSTRUCTIVO

Toma de muestras para la
vigilancia epidemiológica
activa en aves de corral
Veterinarios acreditados en Sanidad y Bienestar de las Aves

�El Servicio Nacional de Sanidad y Calidad Agroalimentaria (Senasa) es un organismo descentralizado,
responsable de ejecutar las políticas nacionales en materia de sanidad y calidad animal, vegetal y de la
inocuidad de los alimentos de su competencia, así como de verificar el cumplimiento de la normativa
vigente en la materia.
Equipos de trabajo
Programa Nacional de Sanidad Aviar
Dirección Nacional de Sanidad Animal
Coordinación General de Comunicación Institucional

Edición 2025

�Índice

Objetivo	

4

Normativa	

4

Criterios de selección de establecimientos	

5

Responsables	

5

Período de muestreo	

6

Definiciones	

6

Medidas de bioseguridad	

6

Procedimiento de muestreo

7

Cantidad de muestras

7

Materiales

7

Procedimiento para la extracción de sangre

8

Condiciones de conservación y transporte

8

Acondicionamiento

8

Protocolo de remisión de muestras -SIGATM

9

Envío de las muestras

10

Cuadro resumen

11

Información complementaria

12

Contacto

12

�Introducción
La Dirección Nacional de Sanidad Animal (DNSA) del Senasa, por medio de
la Coordinación General de Epidemiología —dependiente de la Dirección
de Planificación y Estrategia de Sanidad Animal— y en articulación con
el Programa Nacional de Sanidad Aviar, define anualmente los establecimientos que deberán ser muestreados, conforme a los criterios establecidos en una matriz de riesgo. Estos establecimientos deberán ser incorporados de manera obligatoria en las actividades de vigilancia.
En este contexto, la nueva Resolución Senasa N.° 468/2025 establece los
criterios técnicos y operativos que deben aplicarse para la toma de muestras en el marco de estas acciones de vigilancia.
La vigilancia epidemiológica serológica constituye una herramienta clave
para la detección temprana de la Influenza aviar, permitiendo la adopción
de medidas de control oportunas y la prevención de su diseminación. La
participación activa y comprometida de todos los actores del sector es fundamental para fortalecer y ampliar el sistema de vigilancia, asegurando
así la sanidad del sector avícola.

Objetivo
El presente instructivo tiene como objetivo proporcionar a los veterinarios
acreditados en Sanidad y Bienestar de las Aves los lineamientos técnicos
necesarios para la ejecución del muestreo serológico en aves de corral.
En el mismo se detallan los procedimientos a seguir, la metodología para
la selección de establecimientos, las especificaciones sobre el tipo y cantidad de muestras a remitir, así como su posterior envío a los laboratorios
que integran la red del Senasa. De esta manera, se garantiza el cumplimiento de las acciones de vigilancia sanitaria establecidas.

INSTRUCTIVO. TOMA DE MUESTRAS PARA LA VIGILANCIA EPIDEMIOLÓGICA ACTIVA EN AVES DE CORRAL

4

�Normativa
Las siguientes resoluciones constituyen el marco regulatorio que deberá
contemplarse para la realización del procedimiento del presente instructivo.
•	

Resolución Senasa N.° E1/2018 - Procedimiento único de registro
para veterinarios y técnicos acreditados.

•	

Resolución Senasa N.° 153/2021 - Sistema Nacional de Vigilancia
Epidemiológica de enfermedades animales.

•	

Resolución Senasa N.° 466/2025 - Plan de Contingencia para la Influenza Aviar.

•	

Resolución Senasa N.° 468/2025 - Programa de Vigilancia Epidemiológica Activa y Pasiva de la Influenza Aviar.

Criterios de selección de establecimientos
La selección de establecimientos a muestrear se encuentra basada en
riesgo permitiendo identificar de manera eficiente aquellos establecimientos con mayor probabilidad de transmisión de patógenos de interés
sanitario, lo que posibilita aplicar medidas preventivas que generan un
mayor impacto sobre la cadena avícola.
Para ello, se consideran distintos indicadores y factores de riesgo que conforman un índice de riesgo. Entre ellos se incluye: la antigüedad del establecimiento, la proximidad a humedales o cuerpos de agua permanentes
ubicados dentro de un radio de 10 kilómetros, y la cercanía a frigoríficos o
granjas situadas en zonas de alta densidad avícola dentro de un radio de 3
kilómetros, según buffers obtenidos mediante herramientas de georreferenciación, la cantidad de inspecciones oficiales realizadas en los últimos
12 meses, entre otros.
En el caso de pollos parrilleros, las muestras tomadas en planta de faena serán analizadas por los laboratorios de la Red Nacional del Senasa,
correspondientes a aquellos establecimientos que, durante un período
continuo de seis meses, hayan presentado una elevada mortalidad en su
ciclo productivo y en los cuales la sospecha de enfermedad haya sido descartada por los agentes oficiales del Senasa, conforme a los protocolos
vigentes.

Responsables
Veterinario acreditado en Sanidad y Bienestar de las Aves: debe proceder a la toma de

muestra de sueros, el acondicionamiento y la remisión de muestras, correspondientes a cada unidad epidemiológica de aves de los predios que
correspondan ser muestreados.

Red Nacional de Laboratorios del Senasa: los laboratorios públicos/privados incorpo-

rados en a la Red del Senasa son los encargados del análisis serológico y
la emisión de resultados.
INSTRUCTIVO. TOMA DE MUESTRAS PARA LA VIGILANCIA EPIDEMIOLÓGICA ACTIVA EN AVES DE CORRAL

5

�Remisión de muestras y diagnóstico serológico para la Influenza Aviar
Las muestras obtenidas deben ser remitidas a los laboratorios comprendidos dentro de la Red Nacional de Laboratorios de Controles Analíticos
Oficiales (REDLAB) del SENASA, según normativa vigente.

Período de muestreo
El muestreo se debe realizar una vez por año, con excepción de establecimientos ubicados dentro de la Zona de Control Sanitario (ZCS). Se recomienda ver cuadro disponible en página 11.

Definiciones
Con el objetivo de promover una comprensión precisa, es fundamental establecer las siguientes definiciones:
•	

Aves de corral: designa a todas las aves criadas o mantenidas en cautiverio para la obtención de productos comerciales avícolas, o la reproducción para estos fines. Las aves no de corral se consideran como
aves de corral cuando tengan contacto directo o indirecto con aves
de corral o instalaciones avícolas.

•	

Aves no de corral: incluye las aves silvestres de vida libre, traspatio, así
como las silvestres cautivas, criadas para espectáculos, competencias, exposiciones, colecciones de zoológicos y concursos, y para la
reproducción o la venta a dichos efectos, así como las aves de compañía, siempre que no tengan contacto directo o indirecto con aves
de corral o instalaciones de producción avícolas.

•	

Aves de raza: se refiere a especies de aves como gallinas o gallos, pavos,
gallinetas, faisanes, codornices, patos o gansos de razas puras con
fines de exposición en ferias y/o eventos.

•	

Aves ornamentales: se refiere a aves como canarios o psitácidos de razas
puras con fines de exposición en ferias y/o eventos.

•	

Aves de traspatio: se refiere a las aves domésticas criadas a pequeña escala cuya producción se consume en el lugar.

•	

Sistema Integrado de Gestión de Actas de Toma de Muestras (SIGATM): herramienta digital del
Senasa que permite registrar, gestionar y realizar el seguimiento de
las muestras tomadas en campo para distintos programas de vigilancia sanitaria y control oficial.

•	

Unidad epidemiológica: designa a un grupo de aves con la misma probabilidad de exposición a un agente patógeno, que están bajo el mismo
manejo sanitario y comparten condiciones de alojamiento, alimentación y bioseguridad.

INSTRUCTIVO. TOMA DE MUESTRAS PARA LA VIGILANCIA EPIDEMIOLÓGICA ACTIVA EN AVES DE CORRAL

6

�Medidas de bioseguridad
Las medidas de bioseguridad son fundamentales para prevenir la introducción y propagación de enfermedades dentro de los establecimientos
avícolas. Entre ellas, se destaca el uso obligatorio de elementos de protección personal (EPP) durante todas las tareas, lo que incluye, entre otros,
botas, guantes, mamelucos y barbijos, según el riesgo de la actividad.
Es imprescindible realizar la desinfección rigurosa de calzado, manos, vehículos y equipos, antes y después de ingresar al establecimiento, asegurando que todos los elementos que entren o salgan se encuentren libres
de posibles contaminantes.
Además, es crucial evitar la contaminación cruzada entre lotes mediante
la correcta planificación de los recorridos, la utilización exclusiva de equipos por lote, y la limpieza y desinfección adecuada entre visitas. Estas medidas, aplicadas de forma estricta y constante, son esenciales para proteger la salud de las aves, mantener la bioseguridad de las producciones y
preservar la sanidad del sistema productivo en su conjunto.

Procedimiento de muestreo
Cantidad de muestras
Se deberán tomar muestras de 20 aves.

TIPO DE MUESTRA
Una muestra de sangre de cada ave
(una por tubo).
Las muestras deben centrifugarse y enviarse sólo
el suero libre de hemólisis. Cantidad mínima: 1 ml.

Especies y categorías a muestrear
•

Aves destinadas a la producción de carne.

•

Aves destinadas a la producción de huevo.

•

Aves de reproducción abuelas y padres de línea pesada y
liviana

•

Establecimientos ubicados dentro de la Zona de Control Sanitario (ZCS) en caso de presentarse un brote de IA H5/H7,
determinado por el Senasa.

•

Aves de raza.

INSTRUCTIVO. TOMA DE MUESTRAS PARA LA VIGILANCIA EPIDEMIOLÓGICA ACTIVA EN AVES DE CORRAL

7

�Materiales
•

Viales tipo Eppendorf (estériles).

•

Jeringas estériles de 2,5 ml a 3 ml.

•

Agujas (dependerá del tamaño del ave a muestrear).

•

Guantes.

•

Gradillas, alcohol, marcador indeleble y algodón.

•

Conservadora y refrigerantes.

Procedimiento para la extracción de sangre
Para la punción de la vena cubital (ala), se deberá:
•

Colocar el ave en posición de decúbito lateral, extender el ala, mojar
las plumas con algodón húmedo; o levantar las mismas sobre la
cara ventral de la base ósea del eje humeral, identificar la vena la
cubital (vena del ala).

•

Presionar para ingurgitarla y extraer como mínimo 2.5 ml de sangre.

Para obtener un suero sin hemólisis, se deberá transferir cuidadosamente la sangre de la jeringa al tubo, dejando que la sangre escurra por su
pared lateral.

Nunca se debe vaciar la sangre de forma brusca ni en el fondo del tubo.
Además, es muy importante evitar agitar los tubos mientras se deja que
la sangre repose para separar el suero.
Los sueros deben mantenerse refrigerados entre +2 °C y +8 °C, desde el
momento de su obtención hasta su envío al laboratorio. Este proceso no
debe superar las 72 horas, siendo lo ideal completarlo dentro de las primeras 24 horas.

Condiciones de conservación y transporte
Acondicionamiento
Embalaje primario
•

Debe ser hermético (ej: vial tipo Eppendorf).

•

En el caso de que se vayan a enviar varios recipientes primarios,
cada uno de ellos deberá estar envuelto individualmente para evitar
posibles daños.

La/s muestra/s deberán colocarse de forma tal que no se produzcan derrames. Cada una de ellas deberá estar debidamente identificada – correspondiente al número de establecimiento – en una bolsa de nylon o
conservadora.
INSTRUCTIVO. TOMA DE MUESTRAS PARA LA VIGILANCIA EPIDEMIOLÓGICA ACTIVA EN AVES DE CORRAL

8

�Se deberán colocar una cantidad de refrigerantes suficiente, considerando el tiempo de duración del transporte; luego, se deberá cerrar y sellar
la tapa. Tener en cuenta que, cuanto menor espacio “libre” en la conservadora, las muestras se mantendrán refrigeradas por mayor cantidad de
tiempo

Embalaje secundario
•

Debe ser hermético.

•
Debe contar con material absorbente suficiente, para prevenir
eventuales roturas o filtraciones del embalaje primario.
El embalaje secundario deberá ser acondicionado en una caja de telgopor,
de forma tal que evite roturas y/o posibles derrames.

Embalaje terciario
a.

Se deberá poner, cuando sea necesario, hielo seco o húmedo alrededor de embalaje secundario. En el caso de emplear hielo seco, el
envoltorio debe permitir la salida del dióxido de carbono para evitar
incrementos de presiones que lleven a la ruptura del paquete. Si se
usa hielo húmedo, el embalaje será a prueba de goteo.

b.

Colocar refrigerantes en cantidad suficiente, considerando el tiempo
de duración del transporte; luego se deberá cerrar y sellar la tapa.
Tener en cuenta que cuanto menor espacio “libre” en la conservadora, las muestras se mantendrán refrigeradas por mayor cantidad de
tiempo.

c.

En el exterior de la caja deberá colocarse un sobre de polietileno que
contenga la documentación correspondiente. Cuando las muestras
se envíen a Laboratorios de la Red del Senasa, se deberá incluir el
talón con el número de acta generada en Sistema Integral de Gestión de Actas de Toma de Muestra (SIGATM).

Protocolo de remisión de muestras-SIGATM
Para que el veterinario acreditado pueda ingresar al SIGATM, primero deberá dirigirse al sitio web de la Agencia de Recaudación y Control Aduanero (ARCA)1 y acceder con clave fiscal.
1

ex AFIP

INSTRUCTIVO. TOMA DE MUESTRAS PARA LA VIGILANCIA EPIDEMIOLÓGICA ACTIVA EN AVES DE CORRAL

9

�Allí deberá contar con el servicio del Senasa “SIGATM” vinculado. De lo
contrario, se deberá buscar en la página principal el servicio y luego hacer
clic en “Agregar”.

Una vez vinculado el servicio, el acreditado podrá acceder al sistema a
través del botón visualizado en la siguiente pantalla.

Al momento de ingresar al SIGATM, el veterinario debe tener vigente su acreditación
en Sanidad y Bienestar Aviar. De lo contrario, el sistema no permitirá el ingreso.
Al momento de completar el protocolo, se deberá considerar el Instructivo
SIGATM para la carga del acta de toma de muestras en aves de corral, disponible en el sitio web de Sanidad Aviar del Senasa.

Envío de las muestras
Previo al envío de las muestras, el veterinario deberá comunicarse con
el laboratorio seleccionado para su recepción. Finalizado el embalaje de
las conservadoras, las mismas deben ser despachadas para su análisis y
diagnóstico al laboratorio seleccionado al confeccionar el acta en SIGATM.
En el exterior de la caja debe colocarse un sobre de polietileno que contenga la documentación correspondiente. Se deberá incluir el talón con el
número de acta generado en SIGATM.
Se recuerda que el embalaje externo debe introducirse en una bolsa sellada de plástico para protegerlo de la humedad.
INSTRUCTIVO. TOMA DE MUESTRAS PARA LA VIGILANCIA EPIDEMIOLÓGICA ACTIVA EN AVES DE CORRAL

10

�Cuadro resumen
Categoría

Selección

Frecuencia

Cantidad de
muestra

Tipo de muestra Edad de las aves

Remisión de las
muestras

Resultados

Observaciones

Aves de
producción
de carne y
producción de
huevo

El Senasa
definirá
anualmente los
criterios para
seleccionar los
establecimientos que deberán
incluirse obligatoriamente en
la vigilancia.

Anual

20 por unidad
epidemiológica

Suero

Producción de
carne: dentro
de los 14 días
previos a la
faena.
Producción de
huevos: a partir
de los 30 días
de vida.

Dentro de las
48 hs.

Deben ser
informados
dentro de los 5
días de recibida
la muestra.

Serología
positiva a
IA H5/H7 es
sospecha a IA.
La notificación
al Senasa debe
ser inmediata.

Aves de
reproducción
– abuelas y
padres de línea
liviana y pesada

Todos los establecimientos
de genética
de abuelos y
padres

Anual

20 por unidad
epidemiológica

Suero

Aves en la
recría: dentro
de los 14 días
previos a pasar
a producción y
14 días antes
del envío a
faena.

Dentro de las
48 hs.

Deben ser
informados
dentro de los 5
días de recibida
la muestra.

Serología
positiva a
IA H5/H7 es
sospecha a IA.
La notificación
al Senasa debe
ser inmediata.

Establecimientos ubicados
dentro de la
Zona de Control
Sanitario (ZCS)

La vigilancia
está implementada cuando los
establecimientos de aves de
corral queden
comprendidos
dentro de la
ZCS dispuesta
por el Senasa.

Zona de
perifoco: cada
siete días.
Zona de
vigilancia: cada
14 días.

20 por unidad
epidemiológica

Suero

Las edades
que en ese
momento se
encuentre
dentro de las
zonas.

Dentro de las
24 hs.

Deben ser
informados
dentro de las 48
hs de recibida
la muestra.

Serología
positiva a
IA H5/H7 es
sospecha a IA.
La notificación
al Senasa debe
ser inmediata.

Aves de raza

Predios que
envíen aves a
exposiciones

Anual, previo a
la exposición

20 por unidad
epidemiológica

Suero

Las edades
que en ese
momento se
encuentre.

Dentro de las
48 hs.

Deben ser
informados
dentro de los 5
días de recibida
la muestra.

Serología
positiva a
IA H5/H7 es
sospecha a IA.
La notificación
al Senasa debe
ser inmediata.

INSTRUCTIVO. TOMA DE MUESTRAS PARA LA VIGILANCIA EPIDEMIOLÓGICA ACTIVA EN AVES DE CORRAL

11

�Información complementaria
	

•	

Sitio web de Sanidad Aviar de Senasa.

	

•	

Buscador de Laboratorios de Red.

	

•	

Buscador de Veterinarios Acreditados.

Contacto
Programa de Sanidad Aviar
	

•	

Correo electrónico: avesygranja@senasa.gob.ar

	

•	

Teléfono de contacto: (011) 4121-5409

INSTRUCTIVO. TOMA DE MUESTRAS PARA LA VIGILANCIA EPIDEMIOLÓGICA ACTIVA EN AVES DE CORRAL

12

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                <text>El presente instructivo tiene como objetivo proporcionar a los veterinarios&#13;
acreditados en Sanidad y Bienestar de las Aves los lineamientos técnicos&#13;
necesarios para la ejecución del muestreo serológico en aves de corral.&#13;
En el mismo se detallan los procedimientos a seguir, la metodología para&#13;
la selección de establecimientos, las especificaciones sobre el tipo y cantidad&#13;
de muestras a remitir, así como su posterior envío a los laboratorios que integran la red del Senasa.</text>
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                <text>Objetivo&#13;
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Período de muestreo&#13;
Definiciones&#13;
Medidas de bioseguridad&#13;
Procedimiento de muestreo&#13;
Cantidad de muestras&#13;
Materiales&#13;
Procedimiento para la extracción de sangre&#13;
Condiciones de conservación y transporte&#13;
Acondicionamiento&#13;
Protocolo de remisión de muestras -SIGATM&#13;
Envío de las muestras&#13;
Cuadro resumen&#13;
Información complementaria&#13;
Contacto&#13;
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                    <text>INSTRUCTIVO

Toma de muestras para la
vigilancia epidemiológica
activa en aves de corral
Veterinarios acreditados en Sanidad y Bienestar de las Aves

�El Servicio Nacional de Sanidad y Calidad Agroalimentaria (Senasa) es un organismo descentralizado,
responsable de ejecutar las políticas nacionales en materia de sanidad y calidad animal, vegetal y de la
inocuidad de los alimentos de su competencia, así como de verificar el cumplimiento de la normativa
vigente en la materia.
Equipos de trabajo
Programa Nacional de Sanidad Aviar
Dirección Nacional de Sanidad Animal
Coordinación General de Comunicación Institucional

Edición 2026

�Índice

Objetivo

4

Normativa

4

Criterios de selección de establecimientos

5

Responsables

5

Período de muestreo

6

Definiciones

6

Medidas de bioseguridad

6

Procedimiento de muestreo

7

Cantidad de muestras

7

Materiales

7

Procedimiento para la extracción de sangre

8

Condiciones de conservación y transporte

9

Acondicionamiento

9

Protocolo de remisión de muestras -SIGATM

10

Envío de las muestras

11

Cuadro resumen

12

Información complementaria

13

Contacto

13

�Introducción
La Dirección Nacional de Sanidad Animal (DNSA) del Senasa, por medio de
la Coordinación General de Epidemiología —dependiente de la Dirección
de Planificación y Estrategia de Sanidad Animal— y en articulación con
el Programa Nacional de Sanidad Aviar, define anualmente los establecimientos que deberán ser muestreados, conforme a los criterios establecidos en una matriz de riesgo. Estos establecimientos deberán ser incorporados de manera obligatoria en las actividades de vigilancia.
En este contexto, la nueva Resolución Senasa N.° 468/2025 establece los
criterios técnicos y operativos que deben aplicarse para la toma de muestras en el marco de estas acciones de vigilancia.
La vigilancia epidemiológica serológica constituye una herramienta clave
para la detección temprana de la Influenza aviar, permitiendo la adopción
de medidas de control oportunas y la prevención de su diseminación. La
participación activa y comprometida de todos los actores del sector es fundamental para fortalecer y ampliar el sistema de vigilancia, asegurando
así la sanidad del sector avícola.

Objetivo
El presente instructivo tiene como objetivo proporcionar a los veterinarios
acreditados en Sanidad y Bienestar de las Aves los lineamientos técnicos
necesarios para la ejecución del muestreo serológico en aves de corral.
En el mismo se detallan los procedimientos a seguir, la metodología para
la selección de establecimientos, las especificaciones sobre el tipo y cantidad de muestras a remitir, así como su posterior envío a los laboratorios
que integran la red del Senasa. De esta manera, se garantiza el cumplimiento de las acciones de vigilancia sanitaria establecidas.

4

�Normativa
Las siguientes resoluciones constituyen el marco regulatorio que deberá
contemplarse para la realización del procedimiento del presente instructivo.
•	

Resolución Senasa N.° 43/2026 - Trámite único de acreditación para
veterinarios privados y técnicos, inspectores sanitarios.

•	

Resolución Senasa N.° 153/2021 - Sistema Nacional de Vigilancia
Epidemiológica de enfermedades animales.

•	

Resolución Senasa N.° 466/2025 - Plan de Contingencia para la
Influenza Aviar.

•	

Resolución Senasa N.° 468/2025 - Programa de Vigilancia Epidemiológica Activa y Pasiva de la Influenza Aviar.

Criterios de selección de establecimientos
La selección de establecimientos a muestrear se encuentra basada en
riesgo permitiendo identificar de manera eficiente aquellos establecimientos con mayor probabilidad de transmisión de patógenos de interés
sanitario, lo que posibilita aplicar medidas preventivas que generan un
mayor impacto sobre la cadena avícola.
Para ello, se consideran distintos indicadores y factores de riesgo que conforman un índice de riesgo. Entre ellos se incluye: la antigüedad del establecimiento, la proximidad a humedales o cuerpos de agua permanentes
ubicados dentro de un radio de 10 kilómetros, y la cercanía a frigoríficos o
granjas situadas en zonas de alta densidad avícola dentro de un radio de 3
kilómetros, según buffers obtenidos mediante herramientas de georreferenciación, la cantidad de inspecciones oficiales realizadas en los últimos
12 meses, entre otros.

Responsables
Veterinario acreditado en Sanidad y Bienestar de las Aves: debe proceder a la toma
de muestra de sueros, el acondicionamiento y la remisión de muestras,
correspondientes a cada unidad epidemiológica de aves de los predios que
correspondan ser muestreados.
Red Nacional de Laboratorios del Senasa: los laboratorios públicos/privados incor-

porados en a la Red del Senasa son los encargados del análisis serológico
y la emisión de resultados.
5

�Remisión de muestras y diagnóstico serológico para la Influenza Aviar
Las muestras obtenidas deben ser remitidas a los laboratorios comprendidos dentro de la Red Nacional de Laboratorios de Controles Analíticos
Oficiales (REDLAB) del SENASA, según normativa vigente.

Período de muestreo
El muestreo se debe realizar una vez por año, con excepción de establecimientos ubicados dentro de la Zona de Control Sanitario (ZCS). Se
recomienda ver cuadro disponible en página 12.

Definiciones
Con el objetivo de promover una comprensión precisa, es fundamental
establecer las siguientes definiciones:
•	

Aves de corral: designa a todas las aves criadas o mantenidas en cautiverio para la obtención de productos comerciales avícolas, o la reproducción para estos fines. Las aves no de corral se consideran como
aves de corral cuando tengan contacto directo o indirecto con aves
de corral o instalaciones avícolas.

•	

Aves no de corral: incluye las aves silvestres de vida libre, traspatio, así
como las silvestres cautivas, criadas para espectáculos, competencias, exposiciones, colecciones de zoológicos y concursos, y para
la reproducción o la venta a dichos efectos, así como las aves de
compañía, siempre que no tengan contacto directo o indirecto con
aves de corral o instalaciones de producción avícolas.

•	

Aves de raza: se refiere a especies de aves como gallinas o gallos, pavos,
gallinetas, faisanes, codornices, patos o gansos de razas puras con
fines de exposición en ferias y/o eventos.

•	

Aves ornamentales: se refiere a aves como canarios o psitácidos de razas
puras con fines de exposición en ferias y/o eventos.

•	

Aves de traspatio: se refiere a las aves domésticas criadas a pequeña
escala cuya producción se consume en el lugar.

•	

Sistema Integrado de Gestión de Actas de Toma de Muestras (SIGATM): herramienta digital
del Senasa que permite registrar, gestionar y realizar el seguimiento
de las muestras tomadas en campo para distintos programas de
vigilancia sanitaria y control oficial.

•	

Unidad epidemiológica: designa a un grupo de aves con la misma probabilidad de exposición a un agente patógeno, que están bajo el mismo
manejo sanitario y comparten condiciones de alojamiento, alimentación y bioseguridad.

6

�Medidas de bioseguridad
Las medidas de bioseguridad son fundamentales para prevenir la introducción y propagación de enfermedades dentro de los establecimientos
avícolas. Entre ellas, se destaca el uso obligatorio de elementos de protección personal (EPP) durante todas las tareas, lo que incluye, entre otros,
botas, guantes, mamelucos y barbijos, según el riesgo de la actividad.
Es imprescindible realizar la desinfección rigurosa de calzado, manos, vehículos y equipos, antes y después de ingresar al establecimiento, asegurando que todos los elementos que entren o salgan se encuentren libres
de posibles contaminantes.
Además, es crucial evitar la contaminación cruzada entre lotes mediante la correcta planificación de los recorridos, la utilización exclusiva de
equipos por lote, y la limpieza y desinfección adecuada entre visitas. Estas
medidas, aplicadas de forma estricta y constante, son esenciales para
proteger la salud de las aves, mantener la bioseguridad de las producciones y preservar la sanidad del sistema productivo en su conjunto.

Procedimiento de muestreo
Cantidad de muestras
Se deberá tomar muestras de suero de un total de 20 (veinte) aves.
Importante: La distribución de la toma de muestras deberá ser representativa, por lo que se deben tomar como mínimo 5 muestras por
galpón (ej: si son 2 galpones, 10 muestras cada galpón; 4 galpones, 5
muestras por galpón; más de 4 galpones elegir 4 galpones y tomar 5
muestras por galpón).

Criterios y condiciones para el muestreo
en granjas comerciales
Se establecen a continuación los criterios y condiciones bajo los cuales la
toma de muestras reviste carácter obligatorio, con el objetivo de asegurar
una adecuada vigilancia epidemiológica de influenza aviar en establecimientos avícolas comerciales.

1. Aves – producción de carne y aves – producción de huevo
1.1 Selección basada en riesgo
En función de la matriz de riesgo elaborada por la Dirección Nacional de
Sanidad Animal del Senasa, el listado de establecimientos para muestrear
será definido anualmente y comunicado a través de las cámaras avícolas,
las oficinas locales y mediante su publicación en la página oficial del
organismo.
7

�1.2 Sistemas de producción semiextensivos o extensivos
En los establecimientos que operen bajo sistemas semiextensivos o extensivos, y de conformidad con lo establecido en el artículo 19, inciso k) de la
Resolución Senasa N.° 1699/2019, se deberá realizar un muestreo anual
obligatorio de las aves, a fin de verificar la ausencia de influenza aviar.

2. Eventos de alta mortandad
En establecimientos que hayan registrado DOS (2) eventos de mortandades iguales o superiores al DIEZ POR CIENTO (10 %) en los últimos DOCE
(12) meses, aun con diagnóstico de laboratorio que confirme una etiología distinta de influenza aviar (por ejemplo, enfermedades respiratorias,
neurológicas o digestivas), se deberá realizar un muestreo serológico
obligatorio ante la ocurrencia del segundo evento, previo al envío de las
aves a faena.
Los resultados deberán ser presentados ante la oficina local correspondiente, junto con la documentación sanitaria respaldatoria, incluyendo el
registro productivo y el descargo sanitario del establecimiento.

3. Aves de reproducción (abuelos y padres – línea pesada y liviana)
En los establecimientos de reproducción aviar, el muestreo deberá realizarse conforme a la siguiente frecuencia:
•	Durante la etapa de recría: dentro de los CATORCE (14) días previos al
inicio de la producción.
•	Previo al egreso a faena: dentro de los CATORCE (14) días previos al envío
de las aves.
Estas instancias de muestreo revisten carácter obligatorio y deberán ser
cumplimentadas en la totalidad de los lotes o núcleos productivos.

4. Establecimientos ubicados en zona de control sanitario (zcs)
Ante la confirmación de un brote de influenza aviar (H5/H7) y la consecuente delimitación de Zonas de Perifoco y Zona de Vigilancia, los establecimientos comprendidos deberán ajustarse a los esquemas de muestreo
definidos por el Senasa.
La vigilancia serológica será responsabilidad del titular del establecimiento/habilitación, de acuerdo con los lineamientos específicos establecidos
para cada zona.
Las determinaciones por PCR serán realizadas por el Senasa, en forma
previa a la faena o a la autorización de movimientos de aves dentro de las
zonas mencionadas.

8

�Materiales
•	

Viales tipo Eppendorf (estériles).

•	

Jeringas estériles de 2,5 ml a 3 ml.

•	

Agujas (dependerá del tamaño del ave a muestrear).

•	

Guantes.

•	

Gradillas, alcohol, marcador indeleble y algodón.

•	

Conservadora y refrigerantes.

Procedimiento para la extracción de sangre
Para la punción de la vena cubital (ala), se deberá:
•	

Colocar el ave en posición de decúbito lateral, extender el ala, mojar
las plumas con algodón húmedo; o levantar las mismas sobre la
cara ventral de la base ósea del eje humeral, identificar la vena la
cubital (vena del ala).

•	

Presionar para ingurgitarla y extraer como mínimo 2.5 ml de sangre.

Para obtener un suero sin hemólisis, se deberá transferir cuidadosamente
la sangre de la jeringa al tubo, dejando que la sangre escurra por su

Nunca se debe vaciar la sangre de forma brusca ni en el fondo del tubo.
Además, es muy importante evitar agitar los tubos mientras se deja que
la sangre repose para separar el suero.
Los sueros deben mantenerse refrigerados entre +2 °C y +8 °C, desde el
momento de su obtención hasta su envío al laboratorio. Este proceso no
debe superar las 72 horas, siendo lo ideal completarlo dentro de las primeras 24 horas.

Condiciones de conservación y transporte
Acondicionamiento
Embalaje primario
•	

Debe ser hermético (ej: vial tipo Eppendorf).

•	

En el caso de que se vayan a enviar varios recipientes primarios,
cada uno de ellos deberá estar envuelto individualmente para evitar
posibles daños.

La/s muestra/s deberán colocarse de forma tal que no se produzcan
derrames. Cada una de ellas deberá estar debidamente identificada –
correspondiente al número de establecimiento – en una bolsa de nylon
o conservadora.
9

�Se deberán colocar una cantidad de refrigerantes suficiente, considerando el tiempo de duración del transporte; luego, se deberá cerrar y sellar
la tapa. Tener en cuenta que, cuanto menor espacio “libre” en la conservadora, las muestras se mantendrán refrigeradas por mayor cantidad de
tiempo

Embalaje secundario
•	

Debe ser hermético.

•	
Debe contar con material absorbente suficiente, para prevenir
eventuales roturas o filtraciones del embalaje primario.
El embalaje secundario deberá ser acondicionado en una caja de telgopor,
de forma tal que evite roturas y/o posibles derrames.

Embalaje terciario
a.	

Se deberá poner, cuando sea necesario, hielo seco o húmedo alrededor de embalaje secundario. En el caso de emplear hielo seco, el
envoltorio debe permitir la salida del dióxido de carbono para evitar
incrementos de presiones que lleven a la ruptura del paquete. Si se
usa hielo húmedo, el embalaje será a prueba de goteo.

b.	

Colocar refrigerantes en cantidad suficiente, considerando el tiempo
de duración del transporte; luego se deberá cerrar y sellar la tapa.
Tener en cuenta que cuanto menor espacio “libre” en la conservadora, las muestras se mantendrán refrigeradas por mayor cantidad de
tiempo.

c.	

En el exterior de la caja deberá colocarse un sobre de polietileno que
contenga la documentación correspondiente. Cuando las muestras
se envíen a Laboratorios de la Red del Senasa, se deberá incluir
el talón con el número de acta generada en Sistema Integral de
Gestión de Actas de Toma de Muestra (SIGATM).

Protocolo de remisión de muestras-SIGATM
Para que el veterinario acreditado pueda ingresar al SIGATM, primero
deberá dirigirse al sitio web de la Agencia de Recaudación y Control
Adua-nero (ARCA)1 y acceder con clave fiscal.
1

ex AFIP

10

�Allí deberá contar con el servicio del Senasa “SIGATM” vinculado. De lo
contrario, se deberá buscar en la página principal el servicio y luego hacer
clic en “Agregar”.

Una vez vinculado el servicio, el acreditado podrá acceder al sistema a
través del botón visualizado en la siguiente pantalla.

Al momento de ingresar al SIGATM, el veterinario debe tener vigente su acreditación
en Sanidad y Bienestar Aviar. De lo contrario, el sistema no permitirá el ingreso.
Al momento de completar el protocolo, se deberá considerar el Instructivo
SIGATM para la carga del acta de toma de muestras en aves de corral,
disponible en el sitio web de Sanidad Aviar del Senasa.

Envío de las muestras
Previo al envío de las muestras, el veterinario deberá comunicarse con
el laboratorio seleccionado para su recepción. Finalizado el embalaje de
las conservadoras, las mismas deben ser despachadas para su análisis y
diagnóstico al laboratorio seleccionado al confeccionar el acta en SIGATM.
En el exterior de la caja debe colocarse un sobre de polietileno que contenga la documentación correspondiente. Se deberá incluir el talón con el
número de acta generado en SIGATM.
Se recuerda que el embalaje externo debe introducirse en una bolsa sellada de plástico para protegerlo de la humedad.
11

�Cuadro resumen
Categoría

Selección

Frecuencia

Cantidad de
muestra

Tipo de muestra

Edad de las aves

Remisión de las
muestras

Resultados

Observaciones

Aves de
producción
de carne y
producción de
huevo

El Senasa definirá
anualmente los
criterios para
seleccionar los
establecimientos
que deberán
incluirse obligatoriamente en la
vigilancia.

Anual

20 por unidad
epidemiológica

Suero

Producción de
carne: dentro
de los 14 días
previos a la
faena. Producción
de huevos: a
partir de los 30
días de vida.

Dentro de las
48 hs.

Deben ser
informados
dentro de los 5
días de recibida
la muestra.

Serología
positiva a
IA H5/H7 es
sospecha a IA.
La notificación al
Senasa debe ser
inmediata.

Aves de
reproducción
– abuelas y
padres de línea
liviana y pesada

Todos los
establecimientos
de genética de
abuelos y padres

Anual

20 por unidad
epidemiológica

Suero

Aves en la
recría: dentro
de los 14 días
previos a pasar a
producción y 14
días antes del
envío a faena.

Dentro de las
48 hs.

Deben ser
informados
dentro de los 5
días de recibida
la muestra.

Serología
positiva a
IA H5/H7 es
sospecha a IA.
La notificación al
Senasa debe ser
inmediata.

Establecimientos ubicados
dentro de la
Zona de Control
Sanitario (ZCS)

La vigilancia está
implementada
cuando los
establecimientos
de aves de corral
queden comprendidos dentro de la
ZCS dispuesta por
el Senasa.

Zona de
perifoco: cada
siete días. Zona
de vigilancia:
cada 14 días.

20 por unidad
epidemiológica

Suero

Las edades que
en ese momento
se encuentre
dentro de las
zonas.

Dentro de las
24 hs.

Deben ser
informados
dentro de las 48
hs de recibida la
muestra.

Serología
positiva a
IA H5/H7 es
sospecha a IA.
La notificación al
Senasa debe ser
inmediata.

Aves de raza

Predios que
envíen aves a
exposiciones

Anual, previo a
la exposición

20 por unidad
epidemiológica

Suero

Las edades que
en ese momento
se encuentre.

Dentro de las
48 hs.

Deben ser
informados
dentro de los 5
días de recibida
la muestra.

Serología
positiva a
IA H5/H7 es
sospecha a IA.
La notificación al
Senasa debe ser
inmediata.

12

�Información complementaria
•	

Sitio web de Sanidad Aviar de Senasa.

•	

Buscador de Laboratorios de Red.

Contacto
Programa de Sanidad Aviar
•	

Correo electrónico: avesygranja@senasa.gob.ar

•	

Teléfono de contacto: (011) 4121-5409

13

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Resolución Senasa N° 153/2021&#13;
Resolución Senasa N° 466/2025&#13;
Resolución Senasa N° 468/2025</text>
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            <name>Abstract</name>
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                <text>El presente instructivo tiene como objetivo proporcionar a los veterinarios acreditados en Sanidad y Bienestar de las Aves los lineamientos técnicos necesarios para la ejecución del muestreo serológico en aves de corral.  En el mismo se detallan los procedimientos a seguir, la metodología para la selección de establecimientos, las especificaciones sobre el tipo y cantidad de muestras a remitir, así como su posterior envío a los laboratorios  que integran la red del Senasa. </text>
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            <name>Table Of Contents</name>
            <description>A list of subunits of the resource.</description>
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                <text>Objetivo &#13;
Normativa &#13;
Criterios de selección de establecimientos &#13;
Responsables &#13;
Período de muestreo &#13;
Definiciones &#13;
Medidas de bioseguridad &#13;
Procedimiento de muestreo&#13;
Cantidad de muestras&#13;
Materiales&#13;
Procedimiento para la extracción de sangre&#13;
Condiciones de conservación y transporte&#13;
Acondicionamiento&#13;
Protocolo de remisión de muestras -SIGATM&#13;
Envío de las muestras&#13;
Cuadro resumen&#13;
Información complementaria&#13;
Contacto&#13;
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        <name>Veterinarios</name>
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                    <text>Proceeding Paper

Isolation and Identification of Culturable Gut Microbiota in the
Larval Stage of Lesser Mealworm (Alphitobius diaperinus) †
Gisele Ivonne Antonuccio 1,2, *
1

2

3

*
†

Citation: Antonuccio, G.I.; Sauka,
D.H. Isolation and Identification of
Culturable Gut Microbiota in the
Larval Stage of Lesser Mealworm

and Diego Herman Sauka 1,3
Instituto de Microbiología y Zoología Agrícola (IMYZA), Instituto Nacional de Tecnología Agropecuaria (INTA),
Buenos Aires 1686, Argentina; sauka.diego@inta.gob.ar
Servicio Nacional de Sanidad y Calidad Agroalimentaria (SENASA),
Ciudad Autónoma de Buenos Aires C1107ADR, Argentina
Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas (CONICET),
Ciudad Autónoma de Buenos Aires C1425FQB, Argentina
Correspondence: antonuccio.gisele@inta.gob.ar
Presented at the 2nd International Electronic Conference on Microbiology, 1–15 December 2023; Available
online: https://ecm2023.sciforum.net.

Abstract: The highly prevalent pest Alphitobius diaperinus (Coleoptera: Tenebrionidae) causes significant structural damage in poultry farms. Despite previous investigations on its carriage of pathogenic
microorganisms, our understanding of its microbiome remains limited. This study aimed to analyze
the diversity of culturable gut microbiota in A. diaperinus obtained from laboratory breeding. Fifteen
seventh instar larvae underwent a 24-h starvation period, followed by surface disinfection. Dissected
midguts were homogenized and plated on nutrient agar (NA), brain heart infusion agar (BHI), and
Bacillus cereus agar (BC). The cultured isolates were subjected to gram staining, phylogenetic analysis,
biochemical property evaluation, and metabolic activity assessment. Bacterial counts were higher in
BHI (2.51 × 105 CFU/gut) than in NA (2.25 × 105 CFU/gut), possibly due to nutrient richness. NA
exhibited a dominant colony morphology of gram-negative bacilli, while BHI displayed additional
distinct colonies of gram-positive cocci. Surprisingly, yeast-like colonies were observed on BC plates.
Based on 16S rRNA gene sequences, eight bacterial isolates were identified as Enterobacter sp., and
two as Staphylococcus sp. Using RNA gene ITS region sequences, two yeast isolates were identified as
Debaryomyces sp. and Hyphopichia sp. A preliminary species-level identification of bacteria (Enterobacter cloacae, Staphylococcus gallinarum, and Staphylococcus succinus) was achieved using API systems
and complementary biochemical tests. Discrepancies between phylogenetic analysis and phenotypic
data suggest the potential existence of new species or subspecies. Further comprehensive studies are
required to confirm this hypothesis.
Keywords: Alphitobius diaperinus; gut microbiota; culturable microorganisms; bacterial diversity; yeast

(Alphitobius diaperinus) † . Biol. Life Sci.
Forum 2024, 31, 12. https://doi.org/
10.3390/ECM2023-16465
Academic Editor: Nico Jehmlich
Published: 30 November 2023

Copyright: © 2023 by the authors.
Licensee MDPI, Basel, Switzerland.
This article is an open access article
distributed under the terms and
conditions of the Creative Commons
Attribution (CC BY) license (https://
creativecommons.org/licenses/by/

1. Introduction
Alphitobius diaperinus, commonly known as the lesser mealworm, is an insect species
classified under the order Coleoptera and the family Tenebrionidae. This species, originally described by Panzer in 1797, has its origins in the African continent but has since
achieved a widespread global distribution. In addition to its significance in research as a
potential protein source for humans [1,2] and its role in exploring environmentally friendly
waste disposal solutions [3,4], A. diaperinus stands out as a notorious pest within poultry
environments.
Within the context of poultry farming, A. diaperinus presents a significant challenge
due to the substantial damage inflicted by both its larvae and adult individuals [5]. These
pests can cause extensive harm to poultry facilities, affecting not only the well-being of
the birds but also the economic viability of poultry production operations. Consequently,

4.0/).

Biol. Life Sci. Forum 2024, 31, 12. https://doi.org/10.3390/ECM2023-16465

https://www.mdpi.com/journal/blsf

�Biol. Life Sci. Forum 2024, 31, 12

2 of 6

effective pest control strategies are essential to mitigate the negative impact of A. diaperinus
on the poultry industry.
Although previous investigations have explored the potential carriage of pathogenic
microorganisms by A. diaperinus, our understanding of its microbiome remains limited.
This knowledge gap is substantial because the insect’s gut microbiota can play a crucial
role in various aspects of its biology and ecology. Therefore, this study aims to examine
the diversity of culturable gut microbiota present in A. diaperinus specimens obtained from
laboratory rearing.
By shedding light on the microbiome of A. diaperinus, we aspire to contribute to a
better understanding of the biology of this pest and identify potential vulnerabilities that
can be targeted for more effective pest management in poultry facilities. Additionally, this
research may have broader implications for pest control strategies and could potentially
lead to more sustainable and environmentally friendly solutions for managing A. diaperinus
infestations in various agricultural settings.
2. Materials and Methods
2.1. Isolation and Count of Culturable Bacteria and Yeast from the Gut of A. diaperinus
The Instituto de Microbiología y Zoología Agrícola (IMYZA) at the Instituto Nacional
de Tecnología Agropecuaria (INTA) in Hurlingham, Buenos Aires, Argentina, has established a unique laboratory rearing system for A. diaperinus for research purposes, which, to
the best of our knowledge, is the only one of its kind in the country.
Fifteen seventh-instar larvae were subjected to a 24-h starvation period and then
underwent surface disinfection. This disinfection procedure involved a series of steps,
including immersion in 70% ethanol, exposure to a 15% bleach solution, and three rinses
in physiological solution, following the protocol outlined by Fang Lu et al. [6]. The third
rinse served as a control before proceeding with the dissection of the midguts. These
15 midguts were kept hydrated in physiological solution and subsequently homogenized in
a sterile mortar. The resulting midgut suspension underwent serial dilution. We inoculated
100 µL of four dilutions (ranging from 10−3 to 10−6 ), each in quintuplicate, on nutrient agar
(NA) and brain heart infusion agar (BHI). Additionally, 100 µL of the undiluted midgut
suspension was inoculated in triplicate on Bacillus cereus agar (BC). The plates were then
incubated for 72 h at 28 ◦ C. Selections of colonies displaying distinct morphologies were
isolated from the various culture media until pure cultures were obtained, facilitating
subsequent identification processes. The cultured isolates underwent plate counting of the
colonies to estimate the colony forming units (CFU) per gut, followed by Gram staining.
2.2. Bacterial and Yeast Identification
The isolated bacteria were identified at the genus level by amplifying and subsequently
sequencing the 16S rRNA gene using primers as described by Weisburg et al. [7]. For yeast
identification, we amplified and sequenced a fragment comprising the internal transcribed
spacer (ITS) 1, the 5.8S rRNA gene and ITS 2, along with a segment of the large subunit
rRNA gene, utilizing primers following the protocol outlined by White et al. [8].
The PCR products underwent sequencing using the Big Dye Terminator v3.1 Cycle
Sequencing Kit and were subsequently analyzed on the ABI PRISM 3100 Genetic Analyzer Sequencer (Applied Biosystems, Hitachi, Tokyo, Japan). Sequence alignment was
carried out using the BLASTN algorithm (version 2.0; National Center for Biotechnology Information) and compared against sequences from reference strains available in the
GenBank database (http://www.ncbi.nlm.nih.gov/genbank/, accessed on 3 March 2023).
Phylogenetic analyses were performed using MEGA11.
Following this initial identification, the bacterial isolates were further identified to the
species level by employing the API 20E, API STAPH, and/or API 20A systems (bioMérieux)
as per the manufacturer’s instructions, in addition to other conventional biochemical tests.

�Biol. Life Sci. Forum 2023, 31, 12

3 of 6

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(bioMérieux) as per the manufacturer’s instructions, in addition to other conventional bi3 of 6
ochemical tests.
3. Results and Discussion
3. Results and Discussion
In this study, our initial analysis involved counting colony-forming units, which reIn this
study,
our initial
analysis
involved
colony-forming
units,
revealed
vealed
higher
bacterial
counts
in BHI
(2.51 counting
× 105 CFU/gut)
compared
to which
NA (2.25
× 105
5 CFU/gut) compared to NA (2.25 × 105 CFU/gut),
higher
bacterial
counts
in
BHI
(2.51
×
10
CFU/gut), possibly due to the greater nutrient richness in the former. Subsequently, we
possibly
to the greater
nutrient
richness
in the
Subsequently,
weanalyses,
subjected
a
subjecteddue
a selected
group of
microbial
isolates
to aformer.
comprehensive
series of
enselected
group
of
microbial
isolates
to
a
comprehensive
series
of
analyses,
encompassing
compassing gram staining, phylogenetic analysis, evaluation of biochemical properties,
gram
staining, phylogenetic
and assessment
of metabolicanalysis,
activity.evaluation of biochemical properties, and assessment
of metabolic
activity.
Gram staining yielded intriguing results, leading to the isolation of a total of eight
Gram
staining
yielded
results,
to the
of a total
of AN1eight
gram-negative
bacilli
(Figureintriguing
1): four from
NAleading
(designated
asisolation
INTA AN1-1,
INTA
gram-negative
bacilli
1): four and
fromanNA
(designated
INTA
INTA
5, INTA AN1-10,
and (Figure
INTA AN1-15)
additional
four as
from
BHIAN1-1,
(referred
to asAN1-5,
INTA
INTA
AN1-10,
and
INTA
AN1-15)
and
an
additional
four
from
BHI
(referred
to
as INTA
AC1-3, INTA AC1-6, INTA AC1-9, and INTA AC1-14). These bacilli were identified
as
AC1-3, INTA AC1-6, INTA AC1-9, and INTA AC1-14). These bacilli were identified as
dominant members of the gut microbiota in seventh stage A. diaperinus larvae. Furtherdominant members of the gut microbiota in seventh stage A. diaperinus larvae. Furthermore,
more, we observed two distinct colonies of gram-positive cocci from BHI (named INTA
we observed two distinct colonies of gram-positive cocci from BHI (named INTA AC1-4
AC1-4 and INTA AC1-8) (Figure 1). An unexpected finding in our assay was the isolation
and INTA AC1-8) (Figure 1). An unexpected finding in our assay was the isolation of two
of two yeasts from macerated intestines inoculated directly, undiluted, on BC, a medium
yeasts from macerated intestines inoculated directly, undiluted, on BC, a medium typically
typically used for the isolation of gram-positive bacteria belonging to the Bacillus cereus
used for the isolation of gram-positive bacteria belonging to the Bacillus cereus group. These
group. These yeasts stained as gram-positive, with one presenting pseudohyphae and the
yeasts stained as gram-positive, with one presenting pseudohyphae and the other not
other not (referred to as INTA AB1-1 and INTA AB1-4, respectively) (Figure 1).
(referred to as INTA AB1-1 and INTA AB1-4, respectively) (Figure 1).

◦ C.
Figure
Figure 1.
1. Pure
Pure cultures
cultures of
of the
the isolates
isolates were
were grown
grown in
in NA
NA medium
medium and
and incubated
incubated for
for 24
24 h
h at
at 29
29 °C.
Gram
× magnification
magnification immersion
Gram staining
stainingwas
was performed
performedand
andobserved
observedunder
underaa1000
1000x
immersion lens,
lens, revealing
revealing
the
following
isolates:
INTA
AN1-1
(a),
INTA
AC1-4
(b),
INTA
AC1-8
(c),
INTA
AB1-1
(d), and
the following isolates: INTA AN1-1 (a), INTA AC1-4 (b), INTA AC1-8 (c), INTA AB1-1
(d),INTA
and
INTA (e).
AB1-4
It’s important
note
thatone
only
one representative
gram-negative
is included
AB1-4
It’s(e).
important
to notetothat
only
representative
gram-negative
isolate isolate
is included
in the
in the for
figure
for clarity.
figure
clarity.

Our
thethe
genera
of of
each
of the
microbial
Our phylogenetic
phylogeneticanalysis
analysisenabled
enabledusustotodetermine
determine
genera
each
of the
microisolates
and construct
phylogenetic
trees trees
with with
the most
closely
related
species
within
each
bial isolates
and construct
phylogenetic
the most
closely
related
species
within
genus
(Figure
2). Based
on 16Son
rRNA
sequencing,
the eightthe
gram-negative
bacilli were
each genus
(Figure
2). Based
16S gene
rRNA
gene sequencing,
eight gram-negative
baclassified
Enterobacter
sp., closelysp.,
related
to related
E. hormaechei
subsp. hormaechei.
The two
cilli were as
classified
as Enterobacter
closely
to E. hormaechei
subsp. hormaechei.
gram-positive
cocci werecocci
identified
as Staphylococcus
spp., one closely
related
to S.
hominis
The two gram-positive
were identified
as Staphylococcus
spp., one
closely
related
to
subsp.
hominis
and
S.
hominis
subsp.
novobiosepticus,
and
the
other
to
S.
succinus
subsp.
casei
S. hominis subsp. hominis and S. hominis subsp. novobiosepticus, and the other to S. succinus
and
S. succinus
succinus,
respectively
(Figure 2). (Figure 2).
subsp.
casei andsubsp.
S. succinus
subsp.
succinus, respectively
The resulting 16S rRNA gene sequences have been deposited in the GenBank database
(Table 1).
Furthermore, based on rRNA gene ITS region sequencing, we classified the two
isolated yeasts as Debaryomyces sp. and Hyphopichia sp., with the latter closely related to
Hyphopichia burtonii (Figure 3). These sequences have also been deposited in the GenBank
database (Table 1).

�l. Life Sci. Forum 2023, 31, 12

4 o

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4 of 6

Figure
2. phylogenetic
The phylogenetic
16S
rRNAsequences
sequences illustrates
relationships
among
the the gra
Figure
2. The
treetree
of of
16S
rRNA
illustratesthe
the
relationships
among
gram-negative
isolates
and
type
strains
of
Enterobacter
species
(a),
as
well
as
among
the
two
gramnegative isolates and type strains of Enterobacter species (a), as well as among the two gram-posit
positive
isolates
and type
of Staphylococcus
(b). tree
The tree
constructedusing
using the
isolates
and type
strains
of strains
Staphylococcus
speciesspecies
(b). The
waswas
constructed
the neighb
neighbor-joining
method.
The
numbers
displayed
at
specific
nodes
indicate
consensus
bootstrap
joining method. The numbers displayed at specific nodes indicate consensus bootstrap values ba
values
based on 1000 replications.
on 1000
replications.
Table 1. Nucleotide lengths and GenBank accession numbers of sequences obtained from selected
gut
of Alphitobius
diaperinus.
Theisolates
resulting
16S rRNA
gene sequences have been deposited in the GenBank

base (Table 1).
Isolate

Sequenced Gene/Genes

Nucleotide Length
(bp)

da

GenBank Accession
Number

Table 1. INTA
Nucleotide
accession numbers
of sequences
obtained from selec
AN 1-1 lengths and
16SGenBank
rRNA
1401
OP339834.1
INTA
1-5
16S rRNA
1369
OP346784.1
gut isolates
ofAN
Alphitobius
diaperinus.

Isolate
INTA AN 1-1
INTA AN 1-5
INTA AN 1-10
INTA AN 1-15
INTA AC 1-3
INTA AC 1-6
INTA AC 1-9
INTA AC 1-14
INTA AC 1-4
INTA AC 1-8
INTA AB 1-1
INTA AB 1-4

INTA AN 1-10
16S rRNA
1396
INTA AN 1-15
16S rRNANucleotide Length
1397
Sequenced
Gene/Genes
INTA AC
1-3
16S rRNA
1395
(bp) 1396
INTA AC 1-6
16S rRNA
INTA
1-9
16S rRNA
16SAC
rRNA
1401 1399
INTA AC 1-14
16S rRNA
1369
16SAC
rRNA
1369 1417
INTA
1-4
16S rRNA
INTA
1-8
16S rRNA
16SAC
rRNA
1396 967
INTA AB 1-1
rRNA genes ITS region
446
16SAB
rRNA
INTA
1-4
rRNA genes ITS region 1397
612

OP346981.1
OP347118.1
GenBank
Accession Numbe
OP348220.1
OP348874.1
OP348886.1
OP339834.1
OP351273.1
OP346784.1
OP348929.1
OP348932.1
OP346981.1
OP348991.1
OP347118.1
OP348992.1

16S rRNA
1395
OP348220.1
16S
rRNAwe conducted a preliminary1396
In
addition,
species-level identification ofOP348874.1
bacteria using
API systems
and complementary biochemical 1399
tests. The isolates INTA AN1-1,
INTA AN1-5,
16S rRNA
OP348886.1
INTA AN1-10, INTA AN1-15, INTAAC1-3, INTA AC1-6, INTA AC1-9 and INTA AC1-14
16S rRNA
1369
OP351273.1
were identified as Enterobacter cloacae, INTA AC1-4 as Staphylococcus gallinarum, and INTA
rRNA
1417
OP348929.1
AC1-816S
as S.
succinus.
16S rRNA
967
OP348932.1
rRNA genes ITS region
446
OP348991.1
rRNA genes ITS region
612
OP348992.1

Furthermore, based on rRNA gene ITS region sequencing, we classified the two i
lated yeasts as Debaryomyces sp. and Hyphopichia sp., with the latter closely related to H

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5
5 of 6

Figure
tree tree
of rRNA
gene ITS
region
illustrates the
relationships
Figure3.3.The
Thephylogenetic
phylogenetic
of rRNA
gene
ITSsequences
region sequences
illustrates
the relations
among
the
yeast
isolates
and
the
type
strains
of
Debaryomyces
and
Hyphopichia
species.
The
tree
was The tree
among the yeast isolates and the type strains of Debaryomyces and Hyphopichia species.
constructed
using
the
neighbor-joining
method,
and
the
numbers
shown
at
specific
nodes
represent
constructed using the neighbor-joining method, and the numbers shown at specific nodes repre
consensus
values
derived
from 1000
consensusbootstrap
bootstrap
values
derived
fromreplications.
1000 replications.

Our findings diverged from previous reports in recent years on the bacterial and fungal
In addition,
wepolystyrene
conducted
a A.
preliminary
species-level
identification
of bacteria
u
diversity
in the gut of
fed
diaperinus population
[4]. These
discrepancies
in
API systems and
complementary
biochemical
tests.
Thediet.
isolates
INTA
AN1-1, INTA A
microorganism
genera
may be attributed
to differences
in larval
While
our laboratory
breeding
on feed
for baby
chicks,INTAAC1-3,
A. diaperinus colonies
other studies
exposed
5, INTArelies
AN1-10,
INTA
AN1-15,
INTA in
AC1-6,
INTAwere
AC1-9
and INTA A
to
plastic
compounds
and
microorganisms
potentially
involved
in
plastic
degradation.
14 were identified as Enterobacter cloacae, INTA AC1-4 as Staphylococcus gallinarum,
A separate Italian master’s thesis on the microbiological aspects and chemical comINTA
AC1-8 as S. succinus.
position of A. diaperinus, Tenebrio molitor, and Zophobas morio larvae intended for human
Our findings
diverged
from previous
in recent
years on the bacterial
and
consumption
supported
our findings
regarding reports
the presence
of Enterobacteriaceae
and
gal diversityspp.
in the
guttotal
of polystyrene
fed A. diaperinus
[4]. and
These
discrepan
Staphylococcus
in the
mesophilic bacterial
load, along population
with enterococci
lactic
in microorganism
genera
may5 be
to[9].
differences in larval diet. While our la
acid
bacteria, all ranging
between
andattributed
7 log CFU/g
Furthermore,
microbial
an industrial
productioncolonies
cycle of A.indiaperinus
atory
breeding relies
on dynamics
feed for during
baby chicks,
A. diaperinus
other studies w
intended
for
human
consumption
were
characterized
[10].
While
bacterial
diversity
exposed to plastic compounds and microorganisms potentially involved indeplastic de
creased during rearing, the number of aerobic endospores remained at 4.0 log CFU/g.
dation.
Coagulase-positive staphylococci were not detected, but fungal isolates from the genera
A separate
Italian
master’s
thesis on the microbiological aspects and chemical c
Aspergillus
and Fusarium
were
recovered.
position
of A.underscores
diaperinus, the
Tenebrio
molitor,
andofZophobas
morio larvaeprocedures,
intended for hu
Our study
potential
influence
rearing environments,
hygiene
measures,
and insectour
feedfindings
on insect microbiota.
consumption
supported
regarding the presence of Enterobacteriaceae
The disparities
between
analysis
and phenotypic
data for
certain
isolates and l
Staphylococcus
spp.
in thephylogenetic
total mesophilic
bacterial
load, along
with
enterococci
suggest
the possible
existence between
of new species
or 7subspecies.
Further
acid bacteria,
all ranging
5 and
log CFU/g
[9]. comprehensive studies,
including the sequencing of entire genomes for the three kinds of bacteria isolated from the
Furthermore, microbial dynamics during an industrial production cycle of A. dia
gut microbiota of A. diaperinus, are warranted. Bioinformatics analysis currently underway
inusprovide
intended
for insights
humaninto
consumption
were
characterized
[10]. While
bacterial dive
will
deeper
this ecological
niche,
potentially enhancing
insecticidal
decreased
during
rearing,
the number
of aerobic
strategies
against
beetles
with significant
poultry
impact. endospores remained at 4.0 log CF
In conclusion, thisstaphylococci
study sheds light
on not
the diverse
microbiota
of A.isolates
diaperinus,
re- the ge
Coagulase-positive
were
detected,
but fungal
from
vealing
potential
implications
for
insect
pest
management
and
offering
avenues
for
future
Aspergillus and Fusarium were recovered.
research into insect-microbe interactions.

Our study underscores the potential influence of rearing environments, procedu
hygiene measures, and insect feed on insect microbiota.
The disparities between phylogenetic analysis and phenotypic data for certain
lates suggest the possible existence of new species or subspecies. Further comprehen
studies, including the sequencing of entire genomes for the three kinds of bacteria isol

�Biol. Life Sci. Forum 2024, 31, 12

6 of 6

Author Contributions: Conceptualization, G.I.A. and D.H.S.; methodology, G.I.A. and D.H.S.;
software, G.I.A. and D.H.S.; validation, G.I.A. and D.H.S.; formal analysis, G.I.A. and D.H.S.; investigation, G.I.A. and D.H.S.; resources, D.H.S.; data curation, G.I.A. and D.H.S.; writing—original draft
preparation, G.I.A. and D.H.S.; writing—review and editing, D.H.S.; visualization, G.I.A. and D.H.S.;
supervision, D.H.S.; project administration, D.H.S.; funding acquisition, D.H.S. All authors have read
and agreed to the published version of the manuscript.
Funding: This research was funded by INTA 2023-PD-L06-I116.
Institutional Review Board Statement: Not applicable.
Informed Consent Statement: Not applicable.
Data Availability Statement: Data are contained within the article.
Conflicts of Interest: The authors declare no conflict of interest.

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Disclaimer/Publisher’s Note: The statements, opinions and data contained in all publications are solely those of the individual
author(s) and contributor(s) and not of MDPI and/or the editor(s). MDPI and/or the editor(s) disclaim responsibility for any injury to
people or property resulting from any ideas, methods, instructions or products referred to in the content.

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                    <text>Isolation and identification of culturable gut microbiota in the larval stage of
lesser mealworm (Alphitobius diaperinus)
Gisele Ivonne Antonuccio*1,2 and Diego Herman Sauka 1,3
1

Instituto Nacional de Tecnología Agropecuaria (INTA), Instituto de Microbiología y Zoología Agrícola (IMYZA), Hurlingham, Buenos Aires, Argentina
2

Servicio Nacional de Sanidad y Calidad Agroalimentaria (SENASA), Buenos Aires, Argentina
3

Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas (CONICET), Argentina
*Correspondence: antonuccio.gisele@inta.gob.ar

INTRODUCTION
The highly prevalent pest Alphitobius diaperinus (Coleoptera:
Tenebrionidae) causes significant structural damage in poultry
farms. Despite previous investigations on its carriage of
pathogenic microorganisms, our understanding of its microbiome
remains limited. This study aimed to analyze the diversity of
culturable gut microbiota in A. diaperinus obtained from
laboratory breeding.
MATERIALS AND METHODS
Fifteen seventh instar larvae underwent a 24-hour starvation
period, followed by surface disinfection. Dissected midguts were
homogenized and plated on nutrient agar (NA), brain heart
infusion agar (BHI), and Bacillus cereus agar (BC). The cultured
isolates were subjected to gram staining, phylogenetic analysis,
biochemical property evaluation, and metabolic activity
assessment.
RESULTS AND DISCUSSION
-Higher bacterial counts in BHI (2.51x105 CFU/gut) compared to
NA (2.25x105 CFU/gut), possibly due to nutrient richness.
-NA exhibited a dominant colony morphology of gram-negative
bacilli, while BHI displayed additional distinct colonies of grampositive cocci. Surprisingly, yeast-like colonies were observed on
BC plates (Figure 1).
-Based on 16S rRNA gene sequences, eight bacterial isolates were
identified as Enterobacter sp., and two as Staphylococcus sp. Using
RNA gene ITS region sequences, two yeast isolates were
identified as Debaryomyces sp. and Hyphopichia sp.
-The resulting 16S rRNA gene sequences have been deposited in
the GenBank database (Table 1). Based on rRNA gene ITS region
sequencing, we classified the two isolated yeasts. These sequences
have also been deposited in the GenBank database (Table 1).
-A preliminary species-level identification of bacteria (Enterobacter
cloacae, Staphylococcus gallinarum, and Staphylococcus succinus) was
achieved using API systems and complementary biochemical
tests.
-Discrepancies between phylogenetic analysis (Figures 2 and 3)
and phenotypic data suggest the potential existence of new
species or subspecies. Further comprehensive studies are required
to confirm this hypothesis.

Figure 1. Pure cultures of the isolates were grown in NA medium and incubated for 24 hours at 29°C. Gram staining was performed and observed under a 1000x
magnification immersion lens, revealing the following isolates: INTA AN1-1 (a), INTA AC1-4 (b), INTA AC1-8 (c), INTA AB1-1 (d), and INTA AB1-4 (e). It's important
to note that only one representative gram-negative isolate is included in the figure for clarity.

Figure 2. The phylogenetic tree of 16S rRNA sequences illustrates the relationships among the gram-negative isolates and type strains of Enterobacter species (a), as
well as among the two gram-positive isolates and type strains of Staphylococcus species (b). The tree was constructed using the neighbor-joining method. The numbers
displayed at specific nodes indicate consensus bootstrap values based on 1,000 replications.

Table 1. Nucleotide lengths and GenBank accession numbers of sequences obtained from
selected gut isolates of Alphitobius diaperinus.
Isolate

Sequenced gene/genes

Nucleotide
length (bp)

GenBank accession
number

INTA AN 1-1

16S rRNA

1401

OP339834.1

INTA AN 1-5

16S rRNA

1369

OP346784.1

INTA AN 1-10

16S rRNA

1396

OP346981.1

INTA AN 1-15

16S rRNA

1397

OP347118.1

INTA AC 1-3

16S rRNA

1395

OP348220.1

INTA AC 1-6

16S rRNA

1396

OP348874.1

INTA AC 1-9

16S rRNA

1399

OP348886.1

INTA AC 1-14

16S rRNA

1369

OP351273.1

INTA AC 1-4

16S rRNA

1417

OP348929.1

INTA AC 1-8

16S rRNA

967

OP348932.1

INTA AB 1-1

rRNA genes ITS region

446

OP348991.1

INTA AB 1-4

rRNA genes ITS region

612

OP348992.1
1

Figure 3. The phylogenetic tree of rRNA gene ITS region sequences illustrates the
relationships among the yeast isolates and the type strains of Debaryomyces and
Hyphopichia species. The tree was constructed using the neighbor-joining method, and
the numbers shown at specific nodes represent consensus bootstrap values derived
from 1,000 replications.

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          <description>The Dublin Core metadata element set is common to all Omeka records, including items, files, and collections. For more information see, http://dublincore.org/documents/dces/.</description>
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                <text>Isolation and identification of culturable gut microbiota in the larval stage of lesser mealworm &lt;em&gt;(Alphitobius diaperinus&lt;/em&gt;)</text>
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                <text>Antonuccio, Gisele</text>
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                <text>Sauka, Diego</text>
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                <text>Publicado en Biology and Life Sciences Forum 2024, 31, 12.</text>
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                <text>2024</text>
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                <text>Artículo</text>
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                <text>Póster académico</text>
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            <description>An unambiguous reference to the resource within a given context</description>
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                <text>B.S.0184 - B.S.0184-1</text>
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            <name>Abstract</name>
            <description>A summary of the resource.</description>
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                <text>La plaga altamente prevalente &lt;em&gt;Alphitobius diaperinus&lt;/em&gt; (Coleoptera: Tenebrionidae) causa daño estructural significativo en granjas avícolas. A pesar de investigaciones previas sobre su transporte de microorganismos patógenos, nuestro conocimiento de su microbioma sigue siendo limitado. Este estudio tuvo como objetivo analizar la diversidad de la microbiota intestinal cultivable en &lt;em&gt;A. diaperinus&lt;/em&gt; obtenida de la cría de laboratorio.&lt;br /&gt;Trabajo presentado en la Segunda Conferencia Electrónica Internacional de Microbiología (2nd International Electronic Conference on Microbiology), del 1 al 15 de Dicimbre de 2023.</text>
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        <name>Alphitobius diaperinus</name>
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                    <text>JORNADA TÉCNICA
Buenas Prácticas Agrícolas
Obligatorias

Dirección de Inocuidad y Calidad en Productos de Origen Vegetal

�Objetivo de la presentación
 Informar a cerca de los Requisitos obligatorios, de
Higiene e inocuidad que deben cumplir los productores
frutihortícolas, para implementar las BPA

 Intercambiar experiencias, identificar dificultades
fortalezas en la implementación de las BPA

y

�DEFINICIÓN de las B.P.A.

Son prácticas orientadas a la sostenibilidad ambiental,
económica y social para los procesos productivos de la
explotación agrícola que garantizan la calidad e
inocuidad de los alimentos.

�¿ Qué es la Sostenibilidad Ambiental?

 Valor que cada vez está más implantado en la sociedad y en la filosofía
de la muchas instituciones, empresas y ciudadanos de a pie .
 De esta forma, establecer relaciones sostenibles en todos los ámbitos
de la vida humana, garantiza la perdurabilidad de las mismas, es
decir, asegura un futuro a largo plazo.

�¿ Qué es la Sostenibilidad Económica?

 La sostenibilidad se refiere, por definición, a la satisfacción de las
necesidades actuales sin comprometer la capacidad de las
generaciones futuras de satisfacer las suyas, garantizando el
equilibrio entre crecimiento económico, cuidado del medio
ambiente y bienestar social.

�¿ Qué es la Sostenibilidad Social ?

 Sustentabilidad social implica impulsar acciones que permitan el
cumplimiento de los derechos económicos, políticos, culturales, equidad
de géneros y de razas entre las personas que habitan las diversas
regiones del planeta.

�DEFINICIÓN de las B.P.A.

Son prácticas orientadas a la sostenibilidad ambiental,
económica y social para los procesos productivos de la
explotación agrícola que garantizan la calidad e
inocuidad de los alimentos.

�¿ A que llamamos Procesos Productivos?
 Es el conjunto de actividades planificadas que nos permite
obtener un bien o servicio, satisfaciendo las necesidades de las
personas.

�¿ A que llamamos Explotación Agrícola ?

 La explotación agrícola, está compuesta por las actividades
socioeconómicas que permiten obtener riqueza de la tierra.

 A los productos obtenidos mediante las explotaciones agrícolas
se les conoce como productos agropecuarios.

�DEFINICIÓN de las B.P.A.
Son prácticas orientadas a la sostenibilidad ambiental,
económica y social para los procesos productivos de la
explotación agrícola que garantizan la calidad e
inocuidad de los alimentos.

�CaIidad
 Es el conjunto de cualidades que hacen aceptables

los alimentos a los consumidores.
 Las percibidas (Sensoriales / Organoléptica) como ser:

sabor, aroma, color, turgencia, firmeza, frescura.

 Las higiénico sanitarias y químicas.

�Inocuidad
La garantía que los alimentos no causarán perjuicios a
los consumidores cuando sean preparados o ingeridos
de acuerdo con sus usos previstos.

�Las B.P.A. son OBLIGATORIAS

Se incluyeron en el C.A.A. por Resolución
Conjunta SAyB y SGSyS N° 5 de año 2018.

�Qué es el Código Alimentario Argentino (CAA)
Ley 18824 y Dec.2126/71
Es un reglamento técnico que establece las normas
higiénico-sanitarias, bromatológicas, de calidad y
genuinidad que deben cumplir las personas físicas o
jurídicas, los establecimientos, y los productos que caen
en su órbita.

PROTECCIÓN DE LA SALUD PÚBLICA

�¿ A quién abarca el (CAA) ?
Ley 18824 y Dec. 2126/71
 Todos los alimentos, condimentos, bebidas o sus
materias primas y los aditivos alimentarios

 Involucra a los que elaboren, fraccionen, conserven,
transporten, expendan o expongan, etc.

�Quienes controlan la aplicación del Código
Alimentario Argentino (CAA)

SENASA
INAL
PROVINCIAS
MUNICIPIOS

�LEY 27.233
Artículo 1. Se declara de interés nacional.
La producción, inocuidad y calidad de los agroalimentos,
los insumos agropecuarios específicos y el control de los
residuos químicos y contaminantes químicos y
microbiológicos en los alimentos.
Articulo 2. Se declara de orden Público.
Las normas nacionales por las cuales se instrumenta o
reglamenta el desarrollo de las acciones destinadas a
preservar la condición higiénico-sanitaria de los alimentos
de origen agropecuario

�Ley 27.233
Artículo 3. Responsabilidad del productor.

Será responsabilidad primaria e ineludible de toda persona
física o jurídica vinculada a la producción...
…

velar y responder por la sanidad, inocuidad, higiene y
calidad de su producción…
… se extiende a quienes produzcan, elaboren, fraccionen,
conserven,
depositen,
concentren,
transporten,
comercialicen, expendan, importen, exporten vegetales,
alimentos…

�LEY 27.233
Artículo 4. Autoridades Sanitarias.

Establece que la intervención de las autoridades
sanitarias competentes, en cuanto corresponda a su
actividad de control, respecto de los riesgos o daños
a terceros.

�LEY 27.233
Artículo 7. Actores del Sistema.

 Del Sector Público: Entes Oficiales, Entidades
Académicas , Colegios Profesionales, Asociaciones Civiles
 Del Sector Privado : Actores de la Cadena
Agroalimentaria , Profesionales Habilitados / Acreditados

�LEY 27233
ENTES SANITARIOS (Resolución SENASA N° 671/16)

 Ejecución y prestación de Servicios de Asistencia
Sanitaria en Planes o Programas.
 Control Público o Certificación de Alimentos

IMPORTANTE SU PARTICIPACIÓN

�ALCANCE de las B.P.A.
SE INCORPORA AL C.A.A. en el artículo N° 154 TRIS.

Toda persona física o jurídica, responsable de la producción
de frutas y hortalizas deberá cumplir con las BPA, cuando se
realicen una o mas de las siguientes actividades:
Producción

primaria (cultivo – cosecha).

Almacenamiento

dentro del mismo predio productivo previo
a la Comercialización.
Con

excepción de los registrados como empaques.

�¿ PORQUÉ SON OBLIGATORIAS LAS B.P.A.
PARA FRUTAS Y HORTALIZAS ?

la producción primaria de frutas y hortalizas y su
manipulación realizada de manera inadecuada,
constituyen la principal fuente de pérdida de
inocuidad del producto

�BUENAS PRÁCTICAS

������REQUISITOS MÍNIMOS
OBLIGATORIOS DE LAS BUENAS
PRÁCTICAS AGRÍCOLAS
FRUTIHORTÍCOLAS

�¿ A que llamamos Requisito ?
 Algo que el sistema debe hacer o una cualidad que el sistema
debe poseer (Robertson).

¿ Y por que mínimo ?
 Del latín “minimus” mínimo hace referencia a lo menor
expresión de una cosa material o inmaterial, a lo más chico o
pequeño

�REQUISITOS MÍNIMOS OBLIGATORIOS
 Documentación obligatoria/trazabilidad
 Productos Fitosanitarios
 Agua
 Manipulación
 Animales
 Uso de Fertilizantes Orgánicos y Enmiendas

 Asistencia de un Profesional o Técnico

�1. DOCUMENTACIÓN OBLIGATORIA
TRAZABILIDAD
Trazabilidad / Rastreo de Productos
... “La capacidad para seguir el desplazamiento de un
alimento a través de una o varias etapas especificadas de
su producción, transformación y distribución.

�1. DOCUMENTACIÓN OBLIGATORIA
TRAZABILIDAD

ROTULACIÓN F y H

INSCRIPCIÓN RENSPA
Rs Senasa 423/2014

Rs Conj Senasa-AFIP 4297/2018
Rs Senasa 31/2015

Rs Ex Sag 297/1983-145/1983
Rs Ex Sag 554/1983 Rs Minagro 58/2007

��e.mail: consultasrenspa@senasa.gob.ar

�CREDENCIAL RENSPA

- Cumplir con las BPA Obligatorias – RESFC-2018-5-APN-SRYGS#MSYDS

�Gestión del DTV- e
El tránsito de productos, subproductos y derivados de origen vegeta
debe efectuarse al amparo del DTV.

��PRODUCTOR SUSCRIPTO CONOCE LA OBLIGATORIEDAD DE LAS BPA .
DECLARO CONOCER LA OBLIGATORIEDAD DEL CUMPLIMIENTO DE RESOLUCIÓN
N°05 /2018, Artículo 154 Tris del CAA..

�Rotulación de las frutas y hortalizas

�Rotulación de las frutas y hortalizas

�2. PRODUCTOS FITOSANITARIOS
 Utilizar sólo productos Autorizados por SENASA
 Leer detenidamente el Marbete(etiqueta)
 Registrar la aplicación en cuaderno de campo
 Gestionar los envases vacíos de agroquímicos
 Almacenarlos adecuadamente en lugar apto
 Usar equipo de protección personal (EPP)

�3. AGUA

 Uso eficiente seguro y racional.
 Deben
cumplir
con
los
requisitos
establecidos en el CAA para el Agua de
consumo e higiene.
 Agua para uso agrícola cumplir con las
legislaciones aplicables de cada provincia.

�MANEJO DEL AGUA

El agua que se utiliza para riego, lavado de
equipos, instrumental, preparación de soluciones
de fertilizantes y productos fitosanitarios debe:

Estar libre de contaminaciones fecales,
sustancias peligrosas y patógenos.

�4. MANIPULACIÓN
 Cumplir con pautas de higiene básicas para
la manipulación de frutas y hortalizas.
(LAVADO DE MANOS).
 Contar con agua potable y los elementos
adecuados para limpieza de manos.
 De no contar con agua potable utilizar agua
tratada (hervido, clarificación o cloración).

�4. MANIPULACIÓN
COSECHA
ACONDICIONAMIENTO
EMPAQUE – C REEXP
PAUTAS DE HIGIENE (LAVADO DE
MANOS)
EMPLEO DE
AGUA POTABLE
USO DE INSTALACIONES
SANITARIAS

�5. ANIMALES EN EL PREDIO

Contaminantes biológicos

�5. ANIMALES EN EL PREDIO

 Impedir el ingreso de animales a las áreas
cultivadas y a zonas de manipulación del
producto cosechado.
 Deberá impedirse el ingreso de animales
domésticos, de granja y otros animales de
trabajo (que no estén cumpliendo actividades).
 Los animales de trabajo que se utilicen para
tareas, deben ser de sanidad reconocida.

�6. USO DE FERTILIZANTES ORGANICOS Y ENMIENDAS

 Deben estar registrados por el SENASA.
 Si son de producción propia deben someterse a
tratamientos que minimicen el riesgo sanitario. Ver
Resolución Conjunta N°1-2019 sobre COMPOST.
 Prohibido la utilización de residuos provenientes de
sistemas cloacales y pozos sépticos.

�7. ASISTENCIA TÉCNICA
 Contar con la asistencia de un técnico/ profesional
para asesorar en la implementación de las BPA.

 La capacitación de los asistentes técnicos será
obligatoria a través de un curso con certificado
oficial y actualización periódica.

�7. ASISTENCIA TÉCNICA

 Uso de la plataforma virtual en la capacitación y
entrenamiento para la Formación de Formadores
y Asistentes Técnicos (Ministerio de Agroindustria,
INTA ,SENASA).
 Gestión
de
actividades
de
difusión
y
sensibilización sobre las BPA, para productores y
otros actores de la cadena agroalimentaria.

������http://www.alimentosargentinos.gob.ar/bpa/documentacion_obligatoria.php

�����VIGENCIA DE LA NORMATIVA

�VIGENCIA DE LA NORMATIVA (BPA)
ARTÍCULO 2°.- La presente resolución entrará en vigencia a partir del
día siguiente al de su publicación en el Boletín Oficial, otorgándoseles
plazo a los productores del Sector Frutícola hasta el 2 de
enero de 2020 y del sector hortícola hasta el 4 de enero de 2021,
para implementar lo establecido en el artículo 1.

e. 21/11/2018 N° 88489/18 v. 21/11/2018
Fecha de publicación 21/11/2018

�SISTEMA DE CONTROL (SICBPA)
Documentación
acompañante
(DTV-e)

Rotulación
Etiquetado
FyH

���- Ing. Agr. Norberto Echeverría
nechever@senasa.gob.ar
- Ing. Agr. MSc. Juan Ramón Ibáñez
jibanez@senasa.gob.ar
-Ing. Agr. MSc. María Carolina López
mclopez@senasa.gob.ar

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                <text>Jornada Técnica: Buenas prácticas agrícolas obligatorias</text>
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                <text>Servicio Nacional de Sanidad y Calidad Agroalimentaria/ Instituto Nacional de Tecnología Agropecuaria/ Ministerio de Agricultura, Ganadería y Pesca</text>
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                <text>Dirección de Inocuidad y Calidad en Productos de Origen Vegetal</text>
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                <text>Resolución Conjunta 5/2018 Secretaria de Regulación y Gestión Sanitaria - Secretaria de Alimentos y Bioeconomía</text>
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                <text>Se trata de una presentación que tiene por objeto Informar acerca de los Requisitos obligatorios, de Higiene e inocuidad que deben cumplir los productores&#13;
frutihortícolas, para implementar las Buenas Prácticas Agrícolas, como así también Intercambiar experiencias, identificar dificultades y fortalezas en la implementación de las BPA.</text>
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