260 10 4482 https://biblioteca.senasa.gob.ar/files/original/70656b7ede7d51131f0603b30a0adf00.pdf 0821478bcb5ba41106b667c26d4b40da PDF Text Text �Servicio Nacional de Sanidad y Calidad Agroalimentaria Manual de Procedimientos para la ANEMIA INFECCIOSA EQUINA (AIE) Dr. Marcelo Daniel de la Sota Dirección de Luchas Sanitarias �SENASA Servicio Nacional de Sanidad y Calidad Agroalimentaria Av. Paseo Colón 367 C1063ACD Ciudad de Buenos Aires - República Argentina tel. (054) (011) 4331-6041 al 49 y lineas rotativas. website: http://www.senasa.gov.ar Coordinación General Dr. Marcelo D. de la Sota (Dirección Nacional de Sanidad Animal) email.: mdelasot@senasa.gov.ar Responsables de los Contenidos Dr. Marcelo D. de la Sota (Dirección de Luchas Sanitarias) Dr. Raul J. Gonzalez (Programa Enfermedades Equinas) Edición: Lic. Cristina del Llano (Coordinación de Gestión Técnica) Armado y diagramación: Area de Diseño Gráfico. Buenos Aires, agosto de 2005 4 Dirección de Luchas Sanitarias �AUTORIDADES Dr. Jorge Néstor AMAYA Presidente Ing. Carlos CASAMIQUELA Vicepresidente Dr. Jorge Horacio DILLON Director Nacional de Sanidad Animal Dr. Marcelo Daniel de la SOTA Director de Luchas Sanitarias Dr. José Luis ANTONELLI Coordinador General de Campo Manual de Procedimientos de Anemia Infecciosa Equina 5 �INDICE FINALIDAD ........................................................................................................................................................... 11 MANUAL DE PROCEDIMIENTOS PARA LA ANEMIA INFECCIOSA EQUINA (AIE) .......................................... 13 1. Consideraciones Generales ......................................................................................................................... 13 1.1 Importancia económica ....................................................................................................................... 14 2. Etiología ........................................................................................................................................................ 14 3. Descripción ................................................................................................................................................... 15 4. Formas de presentación clinica .................................................................................................................... 15 5. Transmisión de la enfermedad ...................................................................................................................... 16 6. 7. 8. 9. 5.1 Transmisión natural .............................................................................................................................. 16 5.2 Transmisión por el hombre .................................................................................................................. 17 5.3 Otras vías de transmisión .................................................................................................................... 17 Diagnóstico de Laboratorio ........................................................................................................................... 18 6.1 Periodo de ventana para la detección de la enfermedad por medio del test ...................................... 18 6.2 Precisión de los tests diagnósticos y divergencias más frecuentes. ................................................... 18 Proceso Epizoótico ....................................................................................................................................... 19 7.1 Reservorios del virus ........................................................................................................................... 19 7.2 Población hospedadora ....................................................................................................................... 19 Medidas de Prevención y control .................................................................................................................. 20 8.1 Aplicación de las medidas de control y prevención. ............................................................................ 20 8.2 Medidas protectoras en territorios limpios (Países o regiones de países) .......................................... 20 8.3 Medidas en territorios con la enfermedad enzoótica ........................................................................... 21 8.4 Medidas a adoptar ante brotes o hallazgos de reactores positivos al test .......................................... 21 8.5 Procedimientos en predios rurales ...................................................................................................... 22 8.6 Medidas para los ingresos ................................................................................................................... 22 8.7 Procedimientos en los eventos hípicos ............................................................................................... 22 8.8 Procedimientos en los remates ferias .................................................................................................. 23 8.9 Desinfección ........................................................................................................................................ 23 Diagnóstico y Certificación: Procedimientos ............................................................................................... 23 9.1 Extracción y remisión de la muestra .................................................................................................... 23 9.2 Recepción de las muestras ................................................................................................................. 24 9.3 Tiempo de validez de las certificaciones ............................................................................................. 24 10. Procedimiento para la denuncia ................................................................................................................... 24 11. Eliminación de los reactores ......................................................................................................................... 25 REGLAMENTO SANITARIO EQUINO - Res. SAGP y A N° 617/05 .................................................................... 27 �Prefacio El presente manual de procedimientos fue redactado por la Dirección de Luchas Sanitarias, a cargo del Dr. Marcelo de la Sota y el Programa de Enfermedades de los Equidos a cargo del Dr. Raúl González. El mismo cuenta con la revisión de la Comisión Nacional de Enfermedades de los Equinos. �Finalidad El presente manual se dirige principalmente a los Veterinarios privados, sectores interesados en la producción equina y actividades hípicas, y particularmente a vastos sectores rurales que estando cultural y tradicionalmente tan cerca del caballo quedan a veces tan lejos de los conocimientos más elementales para proteger su salud. También va dirigido a las autoridades nacionales, provinciales y municipales locales igualmente responsables y encargadas de emprender acciones sanitarias contra la AIE. En su desarrollo, se pretende reavivar el debate acerca de cual fue el aprendizaje y cuales fueron los defectos u omisiones en el intento de controlar la AIE desde siempre, puntualizando aquello que está al alcance de todos y cada uno para controlarla en todo el país. Seguramente se reiterarán conceptos y se desmitificarán algunas creencias populares sobre la enfermedad que a lo largo de los años sumaron confusión y produjeron alarmas exageradas en aquellos que se enfrentaron o vuelven a enfrentarse con esta enfermedad. Por tanto, centraremos su contenido en los principios de la enfermedad, descripción, pruebas de laboratorio, evaluación de sus resultados, medidas preventivas, atención de sospechas, focos y casos de infección. 11 �Manual de Procedimientos para la ANEMIA INFECCIOSA EQUINA (AIE) 1. Consideraciones Generales Esta enfermedad se encuentra incorporada mediante el Decreto Nº 991 de fecha 14 de marzo de 1969, al grupo de enfermedades a que refiere el artículo 6º del Reglamento General de Policía Sanitaria. Por lo tanto son de aplicación todas las regulaciones previstas en la Ley Nº 3959 de Policía Sanitaria de los animales y su decreto reglamentario, lo que incluye la denuncia obligatoria, la interdicción preventiva ante la presencia de casos y la eliminación de portadores de acuerdo al articulado de las normas específicas para la Anemia Infecciosa. Lo referente a la notificación, vigilancia y seguimiento epidemiológico, análisis de riesgo y emergencias sanitarias, así como los procedimientos que contemplan los aspectos de protección y lucha contra esta enfermedad y los diferentes niveles de responsabilidad de los distintos actores en la misma, se encuentran establecidos en las Resoluciones SENASA N° 422/03 y SAGPyA N° 617/05. Manual de Procedimientos de Anemia Infecciosa Equina 13 �En el país, a pesar de la existencia de normativas oficiales para su control y del esfuerzo colectivo desarrollado por varios sectores en los últimos 35 años, la AIE ha constituido un enigma para muchos propietarios y productores, adquiriendo importancia no solo en relación a pérdidas directas sino también a las limitaciones, necesariamente estrictas, que imponen las exportaciones y el sostenido tráfico del comercio caballar y las actividades ecuestres. Las diferencias en la prevalencia e incidencia de esta enfermedad dependen de diversos factores, como la región geográfica y sus ecosistemas, la densidad de población de équidos y su dinámica regional, también del nivel socio cultural de sus propietarios y consecuentemente la asistencia sanitaria y profesional de los equinos y por ende del conocimiento o no de la enfermedad, muy en especial de las formas de transmisión. Pero básicamente, el cumplimiento responsable de las medidas de prevención y control, ya sean estas las impuestas por la autoridad sanitaria oficial o simplemente las de propia incumbencia y responsabilidad del propietario son definitorias. La morbilidad y la mortalidad vienen determinadas preferentemente por la sensibilidad de la población, es decir, que en los territorios con la enfermedad enzoótica (presente en forma marcada y permanente) predominan los cursos crónicos y latentes, mientras que en regiones limpias o de baja prevalencia pueden prevalecer los cursos graves sobretodo en los primeros brotes de esta enfermedad, tal como aconteció a fines de la década del 60. 1.1 Importancia económica En general, existe la creencia que solo los grandes brotes de enfermedades de los animales, con registros de alta mortalidad, acompañados de cuadros clínicos claros y manifiestos son los que originan cuantiosas pérdidas económicas. La Anemia Infecciosa Equina, en su forma más frecuente de presentación crónica e inaparente, es un claro ejemplo de enfermedad de presentación «poco visible» para el productor, lo que hace posible que, a través de su diseminación insidiosa, solapada y permanente, genere pérdidas regionales por millones de dólares anuales sin que cada productor en particular registre tal magnitud. Esto se expresa mediante el permanente reemplazo y reposición de equinos de trabajo que propone esta enfermedad, y que es lo que provoca tales mermas productivas. Según un estudio realizado en Santa Fe a comienzos de los años 90, en el centro y este de la región ubicada al norte del paralelo 32, el desplazamiento de bovinos provocado por la superpoblación de equinos de trabajo portadores de esta enfermedad – para el cálculo fue considerado que por su bajo rendimiento se requieren para cumplir tareas rurales de dos a tres equinos por uno – era equivalente a 40-50 millones de dólares anuales medidos en kilos de carne bovina. En esta línea de análisis, si bien no existen antecedentes de ponderación económica similares a lo descripto, debiera tomarse en cuenta que en todo nuestro territorio nacional, el equino es aún hoy una herramienta insustituible, no solo formando parte de la cadena de recolección y distribución de una gran variedad de productos pecuarios y agrícolas primarios que de otra forma no llegarían luego a ser bienes contabilizables en el mercado, o al menos lo harían generando mayores costos - sino también en relevantes tareas tales como el control de fronteras o las relacionadas con el desarrollo sociocultural de numerosas poblaciones rurales en las cuales el caballo garantiza la asistencia sanitaria y educativa de sus pobladores. 2. Etiología El virus RNA de la anemia infecciosa pertenece a la familia Retro viridae, incluyéndose entre los llamados lentivirus, caracterizados por una alta tasa de mutación, que por estar genéticamente relacionado con el virus de HIV-SIDA, ha sido motivo de muchas investigaciones en el campo de la medicina humana en los últimos años, en el intento de conocer más en 14 �profundidad aspectos de la estructura molecular y el mecanismo de replicación de estos virus. Se conoce que algunas cepas de AIE matan rápidamente, mientras que otras inducen una enfermedad crónica severa, pero es sabido también que muchas cepas de campo de la actualidad, inducen muy pobres o ausentes signos clínicos de enfermedad tornando compleja su detección si no se recurre a análisis de laboratorio. No obstante, es imperioso asumir que todas las cepas de AIE tienen el potencial genético para enfermar, independientemente que la enfermedad se manifieste clínicamente o no. 3. Descripción La AIE es una enfermedad infecciosa producida por un virus que es exclusiva de caballos, asnos y mulas, de amplia difusión en todo el mundo, que no tiene cura ni vacuna preventiva, caracterizada por una variedad de síntomas relacionados a la anemia, que termina invariablemente en la muerte del animal. La duración del plazo de incubación (tiempo que transcurre entre el ingreso del virus y la aparición de síntomas) es variable, de 5 a 30 días y en oportunidades hasta varios meses. Esto depende ante todo de la cantidad y calidad de la dosis infectante, si bien esto no ejerce ninguna influencia sobre el nivel de gravedad y el posterior curso clínico seguido por la enfermedad. El curso dependerá más de la predisposición y respuesta inmunitaria del animal infectado que de factores debilitadores de la resistencia. Una vez infectado, el equino es portador del virus por el resto de su vida. 4. Formas de presentación clinica Un equino infectado puede evidenciar una de las cuatro siguientes formas: a. Sobreaguda: presentación no frecuente. Es una presentación de infección en la cual el animal muere súbitamente antes de presentar signos clínicos. Solo es detectable posmortem (mediante necropsia y análisis de laboratorio). b. Aguda: Sus síntomas principales son fiebre alta e intermitente, incremento de la frecuencia del pulso, apatía, incoordinación en algunos casos, mucosas de tonalidad entre roja sucia e ictérica (amarillenta) con hemorragias difusas, edemas subcutáneos, y pérdida de condición corporal pese a conservar el apetito. En esta forma el nivel de virus en sangre es muy alto por lo que podrá ser transmitido más fácilmente a otros caballos como se verá más adelante. c. Subaguda a crónica: se mantienen los mismos signos clínicos descriptos para la forma aguda pero de una manera más atenuada, pudiendo ocurrir la muerte del animal luego de una corta agudización de los signos. El equino infectado entra y sale de esta forma clínica hacia la forma aguda o crónica de manera cíclica, presentando períodos de normalidad - la forma inaparente - entre episodios. Este comportamiento cíclico, generalmente dilata la consulta profesional y la imprescindible confirmación del laboratorio; si bien la detección de algún síntoma, como la pérdida de peso y la apatía debieran provocar siempre la sospecha. Los equinos que se encuentran en esta etapa tienen generalmente un nivel más moderado de virus circulante pero constituyen igualmente muy buena fuente de virus. 15 �d. Subclínica o inaparente: solo detectable por medio del test de laboratorio aplicado rutinariamente, es otra forma de presentación muy frecuente de la enfermedad. En esta etapa el caballo luce sano y nadie advierte su enfermedad pudiendo mantenerse así gran parte de su vida. Otros en cambio, regresan a la forma subaguda a crónica a causa de estrés, excesivo trabajo, a otras enfermedades o a parasitosis, a ciertas medicaciones como los corticoides o por la reversión del virus a formas más dañinas dentro del propio organismo del equino. Como conclusión, la forma crónica y la inaparente, con sus «señales» pobres o ausentes, constituyen el verdadero desafío para el control de la enfermedad por constituir el único y verdadero reservorio y fuente de virus para la persistencia de la enfermedad en los rodeos y su propagación territorial. 5. Transmisión de la enfermedad La AIE no es una enfermedad contagiosa, sino una enfermedad infecciosa transmisible. El uso poco preciso de los términos contagiosa o infecciosa, conduce a veces a un exagerado temor a la infección y a la enfermedad y a la justificación de que todo lo que se haga es en vano. Al contrario de lo que muchas veces se cree, y a excepción de la vía intrauterina, la transmisión del virus no se produce por transmisión directa (contagio) de un animal infectado a otro susceptible o sano. Para que el ingreso del virus a un animal sano se produzca, es indispensable que se vehiculice sangre desde un portador en forma mecánica. Desde esta óptica, puede afirmarse entonces que si se controlaran las vías más comunes de vehiculización, la enfermedad es altamente controlable. Las principales vías de transmisión mecánica a las que referimos son básicamente dos, la transmisión natural producida a través de algunas especies de insectos hematófagos y la que provoca la mano del hombre. 5.1 Transmisión natural Se ha comprobado fehacientemente que los distintos tipos de tábanos y moscas «chupadoras» de sangre son transmisores mecánicos del virus. Algunos investigadores citan la probabilidad de que algunas especies de mosquitos lo hagan - en particular los de gran tamaño - pero en menor grado y siempre de manera mecánica. Para que esta forma de transmisión sea posible, es preciso que el acto alimentario del insecto, iniciado sobre un equino portador del virus, quede incompleto por algún motivo (p.e. defensas del animal) debiendo entonces concluir su comida sobre otro equino sano. Según pudo comprobarse, el virus va perdiendo su capacidad infectante en la boca de estos insectos sobreviviendo en ella entre 15 minutos a 4 horas. Por lo tanto, la probabilidad y el grado de transmisión son altos cuando en una población de equinos se dan simultáneamente estas tres condiciones: 16 1. alta carga de tabánidos sobre el lugar (región, época del año, etc.), 2. distancias estrechas entre los equinos (factor que adquiere mucha importancia en lugares de estabulación o de alta concentración), y 3. un nivel infectivo suficiente en la sangre de el/los portador/es, que como fuera dicho es muy alto cuando se presentan síntomas clínicos. Dirección de Luchas Sanitarias �5.2 Transmisión por el hombre Se afirma que el virus puede sobrevivir varios meses a temperatura ambiente en sangre o suero secos infectados. Esta es la razón para afirmar que involuntariamente la mano del hombre es en muchos casos la principal forma de diseminación, y para ello bastará la presencia de tan solo un portador de virus para iniciar una diseminación masiva dentro de un establecimiento. A nivel rural, entre los elementos de uso común con riesgo cierto de vehiculizar el virus, se citan los frenos, espolines, mordazas, cinchas, sudaderas, rasquetas y demás elementos relacionados al equino, cuando sin una buena higiene y desinfección previa, son compartidos por distintos equinos. Es así como estos enseres tan familiares y conocidos para el hombre de a caballo, se transforman en «armas» sanitariamente peligrosas. Son igualmente considerados de alto riesgo, la omisión de cambio de aguja al efectuar tratamientos, vacunaciones o desparasitaciones colectivas, extracciones de sangre y/o las esterilizaciones o desinfecciones imperfectas de agujas, jeringas, sondas gástricas y todo tipo de instrumentos o material punzo cortante utilizado en maniobras quirúrgicas, odontológicas, terapéuticas (infiltraciones), diagnósticas, de identificación (tatuajes), etc... También está descripto en algunos trabajos, que los saches o frascos multidosis (vacunas, vitaminas, terapéuticos, etc.), al ser compartidos por más de un caballo están expuestos a quedar contaminados con el virus, siendo una excelente vía de diseminación. En definitiva, todo aquello que pueda vehiculizar sangre infectada de un portador enfermo (aún estando seca, en la cual según algunos autores el virus persiste varios meses) a un receptor sano, debe ser considerado de alto riesgo. El Servicio Oficial de los Estados Unidos concluye al respecto: «No existe una base científica que justifique el miedo de adquirir la AIE a partir de reactores positivos conocidos, cuando el predio o lugar en donde estos equinos se cuarentenan, respeta 200 yardas (180 metros) de distancia respecto del resto de equinos sanos», agregando «La probabilidad de diseminar y adquirir el virus cuando se mezclan en un predio equinos no testeados (sin diagnóstico de laboratorio), aún cuando solo exista un infectado entre 10.000, es significativamente mayor - probablemente más de un millón de veces - que la proveniente de equinos positivos bien cuarentenados.» En esto reside la importancia de conocer el estado serológico de toda la población mediante un test periódico. 5.3 Otras vías de transmisión En niveles menos frecuentes, se describe la transmisión del virus desde la yegua infectada al potro, aún cuando este aspecto no está absolutamente claro si el contagio tiene lugar por vía intrauterina o post partum a través de la leche materna. También se contempla la posibilidad de contagio por medio del coito, puesto que se ha conseguido la transmisión experimental del virus mediante inyección subcutánea de esperma de un semental enfermo con signos clínicos. Por ser eliminado el virus con excreciones y secreciones, algunos consideran posible la transmisión oral al beber agua o pienso infectados, si bien esta circunstancia únicamente desempeñaría un papel importante si se acompaña de la existencia de microlesiones en la boca o en el tracto digestivo del receptor susceptible que actuarían como puerta de entrada a dosis infectantes suficientes. Manual de Procedimientos de Anemia Infecciosa Equina 17 �6. Diagnóstico de Laboratorio. El cuadro clínico de la enfermedad es como vimos muy variable pero al menos permite la sospecha en muchos casos. Por este motivo, ante la presencia de cuadros febriles, incremento de la frecuencia del pulso, apatía, pérdida de condición corporal aún con apetito conservado, resulta imprescindible la práctica del test diagnóstico específico para descartarla y para esto se han propuesto distintos tests serológicos para la identificación de anticuerpos ya que la detección de los mismos indican invariablemente que ese animal tomo contacto con el virus, en consecuencia ha contraído la enfermedad. La Organización Internacional de Epizootias (OIE) recomienda hasta hoy como método diagnóstico de elección la prueba de inmunodifusión en gel de agar (ID), desarrollada por Leroy Coggins en 1972, por ser la única prueba que descubre con máxima seguridad a los portadores de virus sin manifestaciones clínicas. Este test solo puede ser realizado por laboratoristas de la Red Oficial de Laboratorios para lo cual los técnicos son entrenados y evaluados periódicamente en su competencia para integrar la misma. La lista y ubicación geográfica de estos laboratorios con la nómina de los profesionales autorizados a extender certificaciones, es actualizada y difundida bimestralmente por el servicio oficial para conocimiento de los usuarios. En la actualidad existen otras pruebas (Tests de ELISA) con ventajas y desventajas respecto del Test de Coggins (ID), no obstante sigue siendo éste último el requerido para las campañas oficiales en los diversos países y para el comercio internacional. Si el resultado del test de Coggins es claramente positivo en los équidos adultos, el diagnóstico se considera confirmado, independientemente de la ausencia o existencia de signos clínicos y de cuál sea la gravedad de los mismos, y aun cuando existan indicios presuntivos de estarse desarrollando además otras patologías no infecciosas. 6.1 Periodo de ventana para la detección de la enfermedad por medio del test El llamado efecto «ventana» de una enfermedad es el período comprendido entre el momento en que se produce la infección o ingreso del virus al organismo y la probabilidad cierta de que el test diagnóstico de laboratorio detecte los anticuerpos como para dar un resultado positivo, confirmando de esta forma la condición de portador. Este período es para la AIE de 1 a 3 o más meses. En razón de lo dicho, es que para confirmar un diagnóstico negativo, se recomienda que siempre se ratifique esa condición mediante otra prueba efectuada a los 60 días de la primera, sobretodo cuando se incorporan nuevos equinos a una población controlada. Es decir que antes de incorporarlos definitivamente al predio, se los mantenga separados del resto de la población residente hasta conocer el resultado de esta prueba confirmatoria. Durante este período se pondrá especial cuidado en prevenir las formas potenciales de transmisión vistas arriba. Esta particularidad de la enfermedad también explica porque en la reglamentación para los controles de tránsito y de ingreso y permanencia a concentraciones, se haya adoptado el plazo de 60 días como el período aceptable dentro del cual todo equino, que se traslada o que asiste o permanece en lugares de alta concentración, debe estar certificado con resultado negativo por un laboratorio habilitado por el SENASA. De esta forma se apunta a minimizar el riesgo y la probabilidad de diseminación a través de los portadores. 6.2 Precisión de los tests diagnósticos y divergencias más frecuentes. No siempre en el laboratorio pueden obtenerse resultados precisos. Algunas veces ocurren discordancias como resultado de diferencias de test a test, por ejemplo: entre la técnica de ID y la de ELISA, de un laboratorio a otro, de lectura a lectura usando el mismo método y 18 �realizándolo en el mismo laboratorio, o entre dos muestras de un mismo animal. Esto puede suceder en presencia de muestras de sangre que están cerca del límite técnico que tienen las pruebas en si mismas para poder detectar los anticuerpos, a diferencias relacionadas a un fenómeno biológico o simplemente a diferencias en el desempeño humano. La razón biológica de divergencia más frecuente es que el equino en cuestión tenga muy bajos niveles de anticuerpos contra el virus de AIE. El equino puede haber estado recientemente expuesto y recién está comenzando a producir anticuerpos. Otras veces, los portadores inaparentes tienen un nivel consistentemente bajo de anticuerpos contra el virus de AIE, lo que sugiere un bajo nivel de replicación viral y una baja estimulación. Afortunadamente, este tipo de reacciones se observan en muy baja proporción, pero en ambos casos el resultado final es el mismo: el nivel de anticuerpos es tan bajo que la reacción de la prueba escapa a la detección de algunos de los tests de rutina o es de difícil o débil lectura. La presentación de resultados débilmente positivos en el test de Coggins pueden presentarse: 1. En potros sanos que vehiculizan todavía anticuerpos maternos persistentes. Un segundo análisis realizado 2 meses después del destete arrojará resultado claramente negativo. 2. En équidos infectados que están aún en período de incubación. En este caso el segundo análisis efectuado 30-60 días después arrojará resultado claramente positivo. 3. En animales con la infección latente. El segundo análisis da por lo regular el mismo resultado débilmente positivo. En el procesamiento del test y en el reporte de resultados, pueden ocurrir errores humanos en múltiples aspectos. Primero, podría haber ocurrido un error técnico en el procesamiento de la muestra. Por ejemplo, en el test de ID, errores en la preparación del agar y placas y el uso de sacabocados más pequeños que los recomendados, o el lavado de los «wells» para ELISA, pueden dar resultados incorrectos. Segundo, el técnico puede sentirse incómodo o poco dispuesto para interpretar y reportar como positiva una muestra con una reacción a la ID muy débil. Tercero, puede ocurrir una pérdida en la integridad de la muestra por contaminación o mal rotulado. No obstante lo dicho, las falsas reacciones negativas en el test de AIE son extremadamente raras y además puede afirmarse que el impacto de estos equinos diagnosticados como falsos negativos es considerado significativamente bajo con respecto a los cientos de miles que nunca han sido testeados. 7. Proceso Epizoótico 7.1 Reservorios del virus El virus está muy adaptado a los équidos y tiene como reservorio única y exclusivamente a las poblaciones equinas infectadas. Independientemente de que la enfermedad se manifieste clínicamente o no, está presente en todo portador del virus - por tanto positivo al test siendo de esta forma una potencial fuente de diseminación por las vías de transmisión vistas. 7.2 Población hospedadora El hecho de que en los territorios enzoóticos, casos con la forma aguda se presenten con menor frecuencia que la enfermedad latente o inaparente, no puede atribuirse, por consiguiente, a la falsa creencia de que un gran número de animales superaron la enfermedad. 19 �Todos los solípedos son igualmente susceptibles, independientemente de cuál sea su especie, raza, edad o sexo. Una vez infectado el animal susceptible, en virtud de la persistencia típica de este lentivirus, el équido, a pesar de generar anticuerpos, se convierte en un portador de virus por el resto de su vida. En la infección natural, tanto en la enfermedad clínica como en la latente, los anticuerpos formados no garantizan ninguna protección inmunitaria, por lo que los animales infectados pueden enfermar gravemente y morir al cabo de meses o años, tras largos períodos asintomáticos. Por esto, hasta el presente, no ha sido posible disponer de una vacuna eficaz, ni de una terapia efectiva. 8. Medidas de Prevención y control Vistas las características de la enfermedad, todas las medidas preventivas y de lucha y control que se aplican en los distintos países del mundo, se concentran en: a) La detección de los portadores mediante el test diagnóstico de laboratorio. b) La eliminación de los mismos, mediante sacrificio o envío a faena. El objetivo de lo expresado es evitar la difusión territorial del virus y el incremento de equinos portadores. El sostenimiento de este sistema, permite en algunos casos y regiones que, en condiciones ecológicas favorables y con la participación responsable y activa de todos los actores ligados al caballo y al ámbito rural y ecuestre, pueda ser controlado o erradicado paulatinamente. Si bien son conceptualmente iguales, las medidas de prevención pueden ser modificadas según se hable de países o regiones libres de la enfermedad, o de territorios con presencia enzoótica de la misma, pudiéndose en éstos territorios diferenciar a su vez zonas o regiones según el nivel de prevalencia de la enfermedad. 8.1 Aplicación de las medidas de control y prevención. Puede decirse de manera general que respecto a la implementación de estas medidas, las acciones de control están más relacionadas con la aceptación y aplicación de las reglamentaciones establecidas por la autoridad sanitaria, y las acciones de prevención recaen en manos de productores y propietarios, siendo por lo tanto de su propia y exclusiva responsabilidad el disponerlas en defensa del patrimonio propio o de terceros. En este sentido, para el éxito en el control de la enfermedad debe sumarse al accionar de las entidades oficiales, la participación imprescindible del usuario mediante el conocimiento y cumplimiento de las normas, el requerimiento de asesoramiento técnico profesional privado, y la aceptación y aplicación responsable de las medidas y recomendaciones que son de su exclusiva competencia. 8.2 Medidas protectoras en territorios limpios (Países o regiones de países) Cada importación o ingreso de solípedos al país o región libre exigirá en origen un certificado oficial en el que se haga constar que no más de 5 días antes de efectuar el embarque o transporte: 20 1. Los animales no presentaron signos clínicos de la enfermedad. 2. Los animales permanecieron como mínimo durante los 3 meses últimos en su establecimiento de origen. 3. Los animales arrojaron resultado negativo al test de Coggins realizado 30 días antes de su embarque o egreso. Dirección de Luchas Sanitarias �4. Los animales que ingresan para permanecer corto tiempo en el país o región (exposiciones y concursos hípicos) también cumplirán los tres requisitos precedentes. 5. Los que vayan a quedarse definitivamente en el país o región limpia se someterán posteriormente a su arribo, a una cuarentena de 30 días como mínimo, debiendo presentar un segundo test negativo confirmatorio realizado a los 60 días del efectuado en origen para que se autorice su ingreso definitivo. 8.3 Medidas en territorios con la enfermedad enzoótica Marco general Además de la denuncia obligatoria, desde 1979 existe en la República Argentina la obligación oficial de certificar con un test negativo no sólo a todos los équidos que traspasen las fronteras del país y a los destinados a la producción de sueros, sino también a todo équido que se traslade o que ingrese y/o permanezca en concentraciones a los que asisten equinos desde diversos orígenes. Si bien la legislación no contempla la obligatoriedad de realizar pruebas de control dentro de los predios en la medida que no se registren egresos desde los mismos, para mantener predios controlados las recomendaciones técnicas establecidas desde los comienzos de la campaña de lucha, y de aplicación voluntaria, son los mismos: 1. Realizar uno o dos test anuales en poblaciones estables de manera sistemática, en especial en zonas, o luego de temporadas de alta carga de insectos. 2. Establecer cuarentenas internas para los ingresos de nuevos equinos, reconfirmando la condición de negativos de los ingresantes a los 30-60 días posteriores y recién allí incorporarlos definitivamente al predio. 3. Garantizar el buen manejo de las posibles fuentes de transmisión descriptas anteriormente (material descartable, intercambio de enseres, desinfección, etc.). Como fuera dicho, la realización del test solo puede ser efectuada en laboratorios habilitados de la Red Oficial, quienes para su habilitación y mantenimiento en la Red, son previamente entrenados y luego evaluados periódicamente por el servicio oficial. 8.4 Medidas a adoptar ante brotes o hallazgos de reactores positivos al test Es única responsabilidad del propietario o responsable que ante animales clínicamente enfermos o inaparentes con resultado positivo al test de Coggins, proceda a: i) separarlos inmediatamente del resto, ii) efectuar la denuncia y iii) eliminarlos, por sacrificio inmediato en el lugar a los sintomáticos o con marcado a fuego y posterior remisión a faena. Una vez confirmado el diagnóstico, está contraindicado todo tipo de tratamiento, ya que vale recordar que el animal positivo, es un animal infectado, y se convierte en portador y reservorio del virus toda su vida, convirtiéndose en una potencial fuente de diseminación de la enfermedad sino se evitan las vías mecánicas de transmisión. Todo equino que estuvo en contacto con un caso infeccioso de una forma tal que se considera que ha estado considerablemente expuesto y por consiguiente corre el riesgo de contraer la infección, se debe aislar de los demás caballos y ser sometido a control clínico y serológico. Siempre que se presente esta enfermedad, se llevará a cabo una adecuada lucha contra los insectos y se acentuará la prevención de diseminación descripta para las formas de transmisión por la mano del hombre. Manual de Procedimientos de Anemia Infecciosa Equina 21 �8.5 Procedimientos en predios rurales En zonas de baja infección, al ocurrir en los predios hallazgos ocasionales de portadores, se deben eliminar de la población todos los equinos con test positivo; y de manera inmediata los que presenten además manifestaciones clínicas; el resto de los equinos del predio que contactaron con los positivos (sean negativos al test o no testeados), deben ser aislados y remuestreados a los 60 días para su confirmación diagnóstica. De verificarse nuevos hallazgos en éstos lotes, se repetirá el procedimiento tantas veces como sea necesario hasta asegurarse que toda la población es negativa. En los territorios con alta presencia de la enfermedad, se irán constituyendo paulatinamente efectivos de equinos seronegativos, los que deben ser mantenidos a la distancia indicada de 180 metros de la población infectada; estos lotes se protegerán del ingreso del virus con una continuada lucha contra los insectos y un adecuado manejo diferencial de los aperos, arneses y utensilios. Mediante la eliminación progresiva de los équidos seropositivos de la población remanente, combinada con el aislamiento y ulterior control de los animales en contacto, se irá reduciendo continuadamente el número de équidos infectados presentes en el territorio, y con ellos los reservorios del virus. Posteriormente, estos predios se manejarán como fue descripto para zonas de baja infección. 8.6 Medidas para los ingresos En forma similar a otras enfermedades infecciosas que afectan a los animales, la responsabilidad de los ingresos de équidos a establecimientos o predios de cualquier índole es exclusivamente de la entidad, del propietario o responsable de los mismos, por lo tanto para prevenir el ingreso de la enfermedad a una población, todo equino que ingrese debiera hacerlo bajo las siguientes condiciones: 1) Con diagnóstico y certificado negativo de origen. 2) Aislamiento del resto de la población estable, un mínimo de 180 metros de distancia (50 metros pueden ser efectivos en épocas o regiones sin tábanos). 3) Verificación de la negatividad mediante dos pruebas consecutivas, separadas una de otra por un intervalo de 30 días entre ambas o al menos una prueba confirmatoria a los 60 días de la fecha de realizada la anterior. 4) Durante la cuarentena, se garantizará el control y el buen manejo de las posibles fuentes de transmisión mecánica descriptas. 8.7 Procedimientos en los eventos hípicos La adaptación de las medidas recién descriptas, dada la gran dinámica de movimiento y estabulación de equinos debe centrarse en: 22 1) Diagnóstico y certificado negativo de origen. 2) Verificación de la negatividad. Se podrá disponer al ingreso la utilización de la prueba rápida de Elisa para los de corta permanencia, y en todos los casos - mayor lapso de tiempo de permanencia o reingresantes al predio – se confirmará la negatividad por test de Coggins. 3) Los que arrojen resultado positivo a ELISA se aislarán de inmediato en un box con protección contra insectos, hasta confirmación por la técnica de inmunodifusión. 4) Hasta conocer el estado serológico de los ingresantes o reingresantes, se garantizará el control y el buen manejo de las posibles fuentes de transmisión mecánica. �8.8 Procedimientos en los remates ferias Los certificados de AIE, deberán ser presentados al ingreso de los equinos a las autoridades sanitarias para su verificación y siempre con anterioridad a la realización de la subasta. Las tropas o équidos que arriben al predio ferial y que no se encuentren amparados por la mencionada certificación, serán considerados de riesgo sanitario, quedando interdictados en el lugar para posteriormente ser remitidos a faena sanitaria. Los certificados que no den cumplimiento a las normas establecidas al respecto, quedarán intervenidos y retenidos por la autoridad oficial independientemente del tiempo que reste para su vencimiento, labrándose las actuaciones correspondientes a efectos de determinar las responsabilidades del caso. Estas tropas o équidos que arriben al predio ferial con estas certificaciones intervenidas, quedarán aislados e interdictados en el predio hasta la realización de una prueba oficial a cargo del remitente. Los licenciatarios, propietarios o responsables de los mercados de concentración (Rosario, Liniers, Córdoba u otros), o de ferias regionales serán responsables de que los equinos que se encuentren o presten servicio en las instalaciones de los mismos cuenten con la certificación de Anemia Infecciosa Equina con diagnóstico negativo con una antigüedad no mayor a sesenta (60) días. 8.9 Desinfección El virus exhibe una marcada resistencia a las influencias físico-químicas, por lo que sólo una limpieza y desinfección escrupulosamente efectuada con un desinfectante en concentración suficiente permiten la destrucción del virus. Para la desinfección química de los instrumentos, primero se debe remover todo resto de suciedad mediante lavado y cepillado y luego sumergirlos en desinfectantes fenólicos por 10 minutos. Cuando la materia orgánica no es removida puede utilizarse clorhexidina o compuestos fenólicos combinados con un detergente. Para la desinfección personal se indican alcohol, hipoclorito de sodio o compuestos yodados. 9. Diagnóstico y Certificación: Procedimientos Es la resultante del conjunto de responsabilidades y tareas compartidas por el responsable, propietario o tenedor del/los equinos que solicita el test, el veterinario acreditado que extrae la sangre e identifica al equino y el laboratorista de la Red Oficial que realiza y lee la prueba serológica específica e informa el resultado. Cada uno de los actores mencionados asume su responsabilidad firmando en los respectivos lugares asignados en el formulario de certificado de Anemia Infecciosa Equina, Libreta Sanitaria o Pasaporte. 9.1 Extracción y remisión de la muestra Las muestras de sangre deben ser extraídas por la autoridad oficial o por un profesional veterinario acreditado oficialmente, siendo su responsabilidad: a. Acompañar a las muestras que remite, con el certificado de AIE, Libreta Sanitaria o Pasaporte aprobados por la autoridad oficial. b. Completar apropiadamente o verificar según se trate, los datos de estos documentos, con especial énfasis en lo referente a la reseña del animal y a la ubicación del equino al momento de extraer la sangre. 23 �c. En caso de verificar que la residencia de los equinos difieren de la consignada en las libretas, acompañará al material remitido de una nota con firma y sello consignando la ubicación de los equinos al momento de la extracción. d. Comunicar al propietario o tenedor del equino sobre los procedimientos y obligaciones a cumplir según las normativas de control vigentes. La sangre se volcará en tubos sin anticoagulante, utilizando rigurosas condiciones de asepsia, y luego las muestras se mantendrán refrigeradas en heladera sin congelar, hasta su remisión al laboratorio seleccionado. 9.2 Recepción de las muestras El laboratorista es responsable de: a. No dar ingreso a ninguna muestra, si el material remitido no viene acompañado de su correspondiente certificado de AIE, Libreta Sanitaria o Pasaporte aprobados por la autoridad oficial. b. No procesar las muestras si la documentación adjunta correspondiente a cada muestra no garantiza el eventual seguimiento oficial ante posibles hallazgos de reactores positivos, en particular: 1. La ubicación de los equinos al momento de la extracción. 2. Los datos del tenedor de los mismos. 3. La correcta identificación de cada equino. 4. La firma y aclaración del veterinario extractor de la muestra y del propietario o tenedor. 5. Cualquier otra irregularidad que impida la actuación oficial ante una denuncia. 6. Certificar solo sobre documentos con modelos aprobados oficialmente. Para facilitar la operatoria, los laboratorios podrán disponer de un formulario de recepción propio donde conste la conformidad del remitente y del laboratorio respecto de la documentación que acompañan a las mismas, número de muestras recepcionadas y su correlatividad con el Nº de certificado o Libreta que acompaña a cada muestra. 9.3 Tiempo de validez de las certificaciones La reglamentación vigente establece la obligatoriedad de realizar el test diagnóstico a los équidos que se encuentren en alguna de las condiciones que siguen: a. Todos los équidos del país que se movilizan, cualquiera sea su origen y destino, con excepción de aquellos con destino final a faena. b. Todos los équidos residentes en lugares de concentración tales como: clubes hípicos, caballerizas, centros de descanso, clubes de campo, countries; hipódromos, cuadreras, centros de entrenamiento o eventos deportivos para la práctica del pato, polo, trote, salto, equitación, prueba completa; espectáculos públicos, domas, jineteadas, desfiles tradicionalistas, marchas; paseos, recreación; o cualquier otra actividad o situación en la que convivan o se reúnan equinos de diversos orígenes. La validez de un resultado negativo, es de 60 días contados a partir de la fecha de extracción de la muestra. 10. Procedimiento para la denuncia Por estar reglamentada la denuncia obligatoria, la misma no es excluyente respecto de quien la formula ante la autoridad oficial, por lo que todo el que esté en conocimiento de la existencia de reactores estará igualmente obligado a realizarla. 24 Dirección de Luchas Sanitarias �No obstante, por ser el hallazgo de un positivo la resultante de responsabilidades compartidas por el tenedor del/los equinos, el veterinario que extrae la sangre y el laboratorista de la Red, el siguiente es el ordenamiento de procedimientos a seguir: a. El laboratorista está obligado a i) comunicar conjuntamente el resultado a la delegación oficial correspondiente a su zona de ubicación y al veterinario extractor, por cualquier medio fehaciente de comunicación (con evidencia documentada y comprobable); ii) retener la documentación que acompañó a la/las muestra/as objeto de la denuncia y iii) hacer entrega o remitir la documentación original al veterinario oficial cuando éste se lo requiera. b. El veterinario actuante notificará de inmediato por cualquier medio fehaciente de comunicación a la delegación oficial regional correspondiente a la localidad en que se encuentra el predio de residencia de los equinos y al tenedor de los equinos en forma conjunta. c. A partir del momento de tomar conocimiento del resultado POSITIVO del examen, es responsabilidad exclusiva del propietario o responsable, el aislamiento e inmovilización de/del los equino/s dentro del predio, hasta la intervención oficial y su posterior eliminación. d. El tenedor podrá optar por realizar una segunda prueba confirmatoria, la que será única y realizada solo en forma oficial, y sin que hayan transcurrido más de VEINTE (20) días corridos de intervalo entre la primera y la segunda extracción y manteniendo al equino en estricto aislamiento. e. De presentarse litigios sobre resultados de pruebas realizadas sobre un mismo equino, solamente se dará por válida y definitiva aquella cuya extracción y diagnóstico sea realizado únicamente por el servicio oficial. 11. Eliminación de los reactores Los equinos con sintomatología de la enfermedad, confirmados con resultado positivo al test, deberán ser sacrificados de inmediato en el lugar de residencia. Los portadores serológicos sin síntomas, se marcarán a fuego con las letras AIE en la tabla del cuello del lado izquierdo y podrán ser remitidos a faena directa en cuyo caso serán marcados además con una letra F en la grupa derecha. Cualquiera de las acciones indicadas deberán ser supervisadas por un funcionario oficial. Manual de Procedimientos de Anemia Infecciosa Equina 25 �REGLAMENTO SANITARIO EQUINO (Res. SAGPyA N° 617/05) Apartados del Anexo II relacionados a la A.I.E. 7.12. Anemia infecciosa Equina 7.12.1. Los équidos que se movilicen con cualquier origen y destino, con excepción de aquéllos destinados a faena, deberán haber sido sometidos al diagnóstico de Anemia Infecciosa Equina, y transitar acompañados con una certificación de Anemia Infecciosa Equina negativa vigente. 7.12.2. Para los casos de importación y exportación de équidos el diagnóstico de Anemia Infecciosa Equina será realizado por la Dirección de Laboratorios y Control Técnico del SENASA o por el organismo oficial o laboratorio de Red que autorice la Dirección Nacional de Sanidad Animal del SENASA. 7.12.3. Todo équido clínicamente enfermo y/o sospechoso de padecer Anemia Infecciosa Equina deberá ser inmediatamente aislado del resto de los equinos hasta tanto se confirme la enfermedad por medio del diagnóstico de Anemia Infecciosa Equina. En équidos con sintomatología clínica sospechosa de Anemia Infecciosa Equina, un diagnóstico 27 �serológico negativo solamente se interpretará como tal, cuando hayan transcurrido VEINTE (20) días desde la aparición de los primeros síntomas. Vencido este plazo se deberá realizar un segundo diagnóstico serológico. 7.12.4 La certificación con resultado negativo de Anemia Infecciosa Equina será la resultante del conjunto de las tareas realizadas por el responsable del equino, el veterinario que extrae la sangre a analizar y el laboratorista que realiza la prueba serológica y consigna el resultado, debiendo firmar todos en los respectivos lugares asignados en el formulario de certificado de Anemia Infecciosa Equina o Libreta Sanitaria Equina. 7.12.5 La validez del certificado de Anemia Infecciosa Equina en todos los casos será de SESENTA (60) días corridos a partir de la fecha de extracción de la muestra de sangre. 7.12.6 El diagnóstico positivo en un potrillo al pie de la yegua madre, la cual es también positiva, será considerado como tal luego que el potrillo sea destetado y se efectúen DOS (2) pruebas realizadas con un intervalo de SESENTA (60) días corridos entre ellas. Si el resultado POSITIVO subsiste, el potrillo será considerado infectado con el virus de la Anemia Infecciosa Equina. 7.12.7 Todo équido confirmado como reactor positivo, será marcado a fuego con las letras AIE, de DIEZ (10) centímetros de altura y QUINCE (15) centímetros de ancho, en el cuello, del lado izquierdo. 7.12.8 Los équidos con diagnóstico positivo y con sintomatología de Anemia Infecciosa Equina deberán ser sacrificados con intervención de la Dirección Nacional de Sanidad Animal dentro de las CUARENTA Y OCHO (48) horas de haber recibido la comunicación por parte del veterinario actuante. En todos los casos que el equino evidencie sintomatología de Anemia Infecciosa Equina, el veterinario actuante lo hará constar en la documentación que, conjuntamente con el material, se envíe al laboratorio. 7.12.9 Los équidos con diagnóstico positivo a Anemia Infecciosa Equina y sin sintomatología de Anemia Infecciosa Equina (portadores inaparentes), deberán en todos los casos ser aislados y posteriormente eliminados por sacrificio en el lugar donde se encuentran o por remisión a faena, en cuyo caso se deberán marcar a fuego previamente con las letras AIE, de DIEZ (10) centímetros de altura y QUINCE (15) centímetros de ancho, en el cuello, del lado izquierdo, y ser despachados según el régimen vigente de remisión de équidos a faena. 7.12.10 El aislamiento de los reactores o cuando se sospeche que la enfermedad que aqueja al equino es Anemia Infecciosa Equina y hasta tanto no se cuente con el resultado del diagnóstico de laboratorio, se efectuará cumpliendo con las siguientes pautas: 7.12.10.1. Se lo aislará debiendo encontrarse separado por lo menos TRESCIENTOS (300) metros de otros équidos, si se encuentra en el campo. 7.12.10.2. El aislamiento de los équidos reactores será permanente, no pudiendo salir bajo circunstancia alguna de ese lugar hasta su eliminación por sacrificio o remisión al frigorífico. 7.12.10.3. Se evitará todo intercambio de jeringas, útiles de aseo, enseres de monta, recipientes de alimentación, termómetros u otros objetos entre equinos enfermos o sospechosos y equinos sanos, salvo una adecuada y esmerada esterilización. 7.12.10.4. Se evitará el acercamiento de insectos al enfermo y a los lugares de alojamiento de los sospechosos. 7.12.11 Ante el hallazgo de UN (1) resultado positivo, el lugar o predio de residencia del reactor quedará interdictado, procediéndose al sangrado y diagnóstico de la totalidad de las existencias cuando éstas sean menores al número de DIEZ (10) équidos, y del DIEZ (10) por ciento de las existencias en forma aleatoria por encima de esta cifra. 28 Dirección de Luchas Sanitarias �7.12.12 De registrarse UNO (1) o más resultados positivos en los muestreos indicados en el numeral anterior, el propietario o responsable del predio quedará obligado al saneamiento total de las existencias equinas, manteniéndose la interdicción del predio hasta su cumplimiento y siendo los costos emergentes del mismo a su cargo. 7.12.13 Ante un resultado positivo el propietario o responsable del équido podrá optar únicamente por un segundo diagnóstico bajo los requisitos que se detallan: 7.12.13.1 El propietario del animal deberá manifestar al veterinario de la Dirección Nacional de Sanidad Animal del SENASA dentro de las CUARENTA Y OCHO (48) horas de tomado conocimiento del primer diagnóstico, su decisión de realizar el segundo diagnóstico. 7.12.13.2 Esta segunda prueba – la extracción de la muestra y el diagnóstico oficial – tendrá carácter definitivo y será realizada exclusivamente por personal del SENASA. 7.12.13.3 Entre el primer y segundo diagnóstico no podrán transcurrir más de VEINTE (20) días de intervalo. 7.12.13.4 Aislamiento total del equino dentro del predio en un lugar autorizado por la Dirección Nacional de Sanidad Animal. 7.12.13.5 El Veterinario Oficial procederá a la extracción de la muestra de sangre, y la remitirá al laboratorio oficial. Todos los costos emergentes serán a cargo del propietario. 7.12.13.6 La remisión de la sangre deberá hacerse en la forma indicada en el presente reglamento e irá, asimismo, acompañada con la ficha de identificación. 7.12.13.7 En caso de repetirse el diagnóstico positivo, el Veterinario Oficial actuante deberá proceder a la marcación del animal, dentro de un plazo no mayor de CUARENTA Y OCHO (48) horas. 7.12.14 Los laboratorios que elaboren productos biológicos medicinales de origen equino, tanto para uso humano como animal, deberán utilizar únicamente equinos libres de Anemia Infecciosa Equina. 7.13. Laboratorios de A.I.E - Registro de pruebas efectuadas 7.13.1 El laboratorio llevará el registro de la totalidad de las pruebas diagnósticas de Anemia Infecciosa que efectúe, incluyendo las repeticiones de pruebas y las que se efectúen sin requerimiento de certificación (relevamientos), de tal forma que exista correspondencia entre la cantidad de dosis provistas y declaradas por el Laboratorio proveedor de cada equipo diagnóstico y el número de dosis utilizadas. 7.13.2 Los laboratorios deberán contar con un libro foliado, rubricado indistintamente por personal autorizado dependiente de la Dirección Nacional de Sanidad Animal o de la Dirección de Laboratorio y Control Técnico del SENASA, cuyas medidas mínimas sean de VEINTIDOS (22) por TREINTA (30) centímetros, y en el cual deberán constar los siguientes datos: 7.13.2.1 En su primer hoja: nombre del laboratorio, nombre del director técnico, código de habilitación otorgado, domicilio, localidad, partido o departamento y distrito correspondiente a la oficina local de la Dirección Nacional de Sanidad Animal al cual corresponde. 7.13.2.2 En las hojas subsiguientes se reproducirá el modelo de registro según se detalla en el Anexo III . 7.13.2.3 En los casos en que se utilicen registros informáticos, las planillas deberán respetar el modelo mencionado y sus impresiones deberán quedar adheridas firmemente sobre las hojas respectivas del libro foliado. Manual de Procedimientos de Anemia Infecciosa Equina 29 �7.13.3 7.14 Los laboratorios obligatoriamente remitirán esta información en los términos descriptos en forma mensual a la Dirección de Luchas Sanitarias. Manejo de la certificación y del estampillado 7.14.1 La totalidad de los resultados diagnósticos que se vuelquen en los certificados y Libretas Sanitarias oficiales, además de la firma y sello del Director Técnico, llevarán adherida la estampilla oficial con el autoadhesivo provisto en el equipo diagnóstico. 7.14.2 Cuando se utilice el formulario de certificación, sus TRES (3) hojas deberán firmarse en forma hológrafa, por el profesional acreditado que remite la muestra, por el propietario, tenedor o responsable del equino y por el Director Técnico del Laboratorio, prescindiendo del uso de carbónicos u otros mecanismos de duplicación. 7.14.3. En caso de requerirse en una misma muestra la repetición de una prueba diagnóstica, las estampillas correspondientes a las dosis utilizadas deberán quedar adheridas en el libro foliado en la columna correspondiente a Nº de certificado o libreta. 7.14.4. Se procederá de igual modo al descripto en el numeral anterior cuando se realicen pruebas que no demanden certificación (relevamientos). 7.15. Comercialización y utilización del antigeno Anemia Infecciosa Equina. 7.15.1. Los laboratorios de la Red habilitados para efectuar las pruebas de Anemia Infecciosa Equina deberán llevar un archivo que contendrá los remitos y facturas de compra de los equipos diagnósticos. 7.15.2. Las cajas o estuches que contengan al antígeno de Anemia Infecciosa Equina, llevarán en un superficie una parte fácilmente removible (troquelada, perforada) en la que conste el nombre comercial del producto, número de serie o lote y cantidad de dosis diagnósticas. 7.15.3. Acompañando a la presentación comercial del producto se incluirán en su interior las estampillas oficiales, numeradas del UNO (1) al número total de dosis contenidas en el envase; y en cada una de ellas, el número de serie o lote y la fecha de vencimiento, conforme lo establecido por la Resolución Nº 118 del 4 de febrero de 1994 del exSERVICIO NACIONAL DE SANIDAD ANIMAL. 7.15.4. Cada titular de Certificado de Uso y Comercialización -importadores o elaboradores- y cada comercializador inscripto llevará un archivo en el que consten en forma completa los documentos de compra y venta, o de venta, del antígeno de Anemia Infecciosa Equina, según corresponda en cada caso. 7.15.4.1. La documentación debe ser conservada hasta DOS (2) años después de realizada cada operación. A los fines de su auditoria oficial debe obrar copia de cada documento tanto en el archivo del emisor del mismo (documento de salida o venta) como del receptor (documento de entrada o compra). 7.15.4.2. El documento a archivar será la factura o, en su defecto, el remito que documenta el movimiento del antígeno de Anemia Infecciosa Equina entre partes. 7.15.4.3. La Documentación Comercial del movimiento del antígeno de Anemia Infecciosa Equina será archivada en el domicilio legal de cada operador (lugar formal de auditoría). 7.15.4.4. Unicamente se podrán efectuar ventas desde los laboratorios elaboradores o importadores a los Laboratorios Habilitados de Red. 30 �7.15.4.5. Prohíbese la venta a cualquier lugar o persona no habilitada y registrada oficialmente para efectuar diagnósticos 7.15.4.6. La información que deben conservar los Laboratorios Habilitados de Red será un archivo, el que contendrá, por un lado, los remitos o facturas de compra del antígeno de Anemia Infecciosa Equina y, por otro, el libro foliado con el detalle de la utilización de las dosis diagnósticas de los equipos adquiridos. 7.15.4.7. Los laboratorios elaboradores o importadores deberán informar mensualmente a la Dirección Nacional de Sanidad Animal el número total de equipos comercializados a sus clientes con el detalle de las facturas o remitos, según corresponda,. 7.15.4.8. Además de la remisión mensual indicada en el punto precedente, toda la información descripta debe conservarse ordenada cronológicamente y a disposición del personal del SENASA a los fines de la auditoría oficial del sistema. 7.15.4.9. La Dirección Nacional de Sanidad Animal comunicará mensualmente a los laboratorios titulares de Certificados de Uso y Comercialización la nómina de las altas, bajas y suspensiones de laboratorios de la Red, con la identificación de sus Directores Técnicos, a efectos de la programación de sus ventas. Ante la detección de cualquier incumplimiento en el funcionamiento del sistema, el SENASA podrá suspender el Certificado de Uso y Comercialización del producto que corresponda. La conservación de documentos para auditoría oficial del sistema y el flujo de información para auditoria interna es responsabilidad del titular del Certificado de Uso y Comercialización. 31 �32 Pour On Baño Cumafos SANUVET 10 SIPERKINA 91217 93206 FAEVE S.A. VETANCO S.A. AGROINSUMOS S.A. TRINSEC POUR-ON VETANCID POLVO WARBICIDE POUR-ON 98262 92186 93128 (*) ANTES DE USAR, LEA LAS INSTRUCCIONES Y CONSULTE SIEMPRE A SU VETERINARIO DE CONFIANZA. Cipermetrina Cipermetrina Pour On Espolvoreo Ambiental Pour On Pour On Cipermetrina BURNET SACIFIA TEHUELCHE POUR-ON 92491 Cipermetrina, BOP.,diclorvós Pour On OVER Pour On Cipermetrina OVER SYNECTO PLUS POUR-ON Aspersión Animal Pour On Pour On Aspersión Amb y animal Aspersión Amb y animal Pour On Aspersión Animal Pour On Aspersión Amb y animal Tópica SYNECTO MAX A.R. POUR-ON Cipermetrina Tópica Aspersión Amb y animal 97252 Cipermetrina, Carbaril,BOP Cipermetrina Cipermetrina Asimetrina Cipermetrina Cipermetrina Cipermetrina Cipermetrina Carbaril Carbaril Triclorfón, Diclorvós Cipermetrina,Diclorvós Pour On 90176 OVER POUR ON BIOTENK 93202 SYNECTO ASPERSION BIOGENESIS S.A. PIRETRAL 92432 90175 BIOTENK S.A. BROUWER S.A. PIRETRAL POUR-ON 92492 OVER FAEVE S.A. OPIGAL 50 87001 DELENTE LABORATORIOS FAEVE S.A. MOSCASIN POUR-ON 93183 STOP FLY IND. QUIMICAS ALMIDAR LUVUCIT 90248 SUPER SYNECTO POUR-ON ANUBIS S.R.L. LER CHAMPU MEDICADO 93335 95341 Deltametrina LAB.LER S.R.L. HOECHST ROUSSEL VET S.A. INSECTICIDA RURAL 82642 93432 Tópica Pour On Diclorvós,Malatión BIOGENESIS S.A. JOHN MARTIN S.R.L. GALMETRIN PLUS POMADA 87504 Cipermetrina Tópica BROUWER S.A. DERRAMIN Tópica 88234 Cialotrina Pirimifós VON FRANKEN SAIC Cipermetrina,DDVP SCHERING PLOUGH S.A. CURABICHERAS PIRETROIDE Aspersión Animal Pour On Pour On DKL 5 CURABICHERA LIQUIDO Diazinón Cipermetrina Cipermetrina Tópica y Ambiental Aspersión Amb y animal 82799 NOVARTIS ARGENTINA S.A. CLIK 600 ASPERSION 1805 Diclorvós Cipermetrina 87313 INSTITUTO SAN JORGE BAGO PHARMAVET DE CASTAÑO SRL CIPERSIX CIPERVET POUR ON 96162 BIOGENESIS S.A. 87595 ALSI QUIMICA SANITARIA CIOVAL CIPERKILL 86368 BOX 92376 80246 Tópica Pour On Triclorfón Cipermetrina ALLIGNANI HNOS S.R.L. LOPEZ VILLANUEVA Y ASOC. BICHOLUZ RIO DE JANEIRO 82488 Pour On PROAGRO S.A. Cipermetrina BAYER ARGENTINA SA ASUNTOL LIQUIDO BICHERON POUR ON 1544 96016 Pour On Cipermetrina BIOGENESIS S.A. ACIENDEL Cipermetrina BIOGENESIS S.A. ACIENDEL 87595 VIA DE ADMINISTRACION 0080/E COMPONENTES EMPRESA PRODUCTO CERTIFICADO PRODUCTOS REPELENTES DE INSECTOS HEMATOFAGOS INDICADOS EN EQUINOS (*) �REGISTRO DE PRUEBAS DIAGNOSTICAS DE ANEMIA INFECCIOSA EQUINA EFECTUADAS EN LABORATORIOS DE RED OFICIAL Para volcar datos en el libro foliado y remisión mensual de la información a la Dirección de Luchas Sanitarias AL COMENZAR CADA EQUIPO DE DIAGNOSTICO Marca ............................................................. N° de Serie Estampillas Nros. de ......................................................... ......................................... Fecha de Compra .............../......................................./.............. a N° de Dósis ................................ ..................................... Factura/Remito N° ..................................................... DATOS A COMPLETAR Prueba N° Fecha de Ingreso Remitente Origen de la Muestra Resultado Certificado/ Libreta N° .............................................................................................................................................................................................................................. ............................................................................................................................................................................................................................. ............................................................................................................................................................................................................................ .............................................................................................................................................................................................................................. ............................................................................................................................................................................................................................. ............................................................................................................................................................................................................................ .............................................................................................................................................................................................................................. ............................................................................................................................................................................................................................. ............................................................................................................................................................................................................................ .............................................................................................................................................................................................................................. ............................................................................................................................................................................................................................. ............................................................................................................................................................................................................................ .............................................................................................................................................................................................................................. ............................................................................................................................................................................................................................. ............................................................................................................................................................................................................................ RESPONSABLE Lugar ................................................................................................ .................................................. Firma y Sello Fecha C.244 .............../......................................./.............. .............................................................................. Aclaración 33 �N° Colegio de Veterinarios de la Provincia de: 000000000 Fecha: ............../................./ ................... IDENTIFICACION Nombre del Equino: .................................................................................. Edad: ......... DISEÑO DE MARCA A FUEGO Identificación Individual: ........................................................................ Sexo:............ Raza o Tipo:..................................................................... Pelo: .................................. Padre: ..........................................................Madre:.......................................................... PROPIETARIO Apellido y Nombre:.......................................................................................................... RENSPA N°: ....................................................... Domicilio: Calle: ........................................................................................................... N°:........................ Localidad: ....................................................... Partido o Dto.: ..................................................................... Los datos consignados son verídicos, corresponden al equino y se ajustan a la realidad Prov.:.............................................................. ...................................... Firma del Propietario CERTIFICACION DE LA EXTRACCION DE LA MUESTRA Fecha de Extracción: ........./....................../.............. La Muestra se Encuentra Identificada con: ............................... Fecha de Remisión: ........./....................../.............. Equino CON SINTOMAS Equino SIN SINTOMAS Lugar de Extracción: Calle: ................................................................................................................................... N°:........................ Localidad: ....................................................... Partido o Dto.: ...................................................... Prov.:.............................................. Responsable de la Extracción: Doctor................................................................................................ MP N°:....................................... Acreditación SENASA N°: ..................................................... Los datos consignados son verídicos, corresponden al equino y se ajustan a la realidad. Los datos de filiación se encuentran correctamente transcriptos, sin tachaduras ni enmiendas ...................................... Firma y Sello del Profesional CERTIFICACION DEL DIAGNOSTICO Laboratorio donde se efectuó el análisis:.............................................................................................................. Red N°:..................... Diagnóstico Positivo Negativo FECHA DE RESULTADO ........./....................../.............. Pegar el stiker correspondiente a la prueba, en este lugar. ......................................................... Lugar de Expedición Vencimiento ........./....................../.............. Expedición ........./....................../.............. ...................................... Firma Laboratorista Certifico el resultado del análisis del equino cuya filiación figura en este documento MP N°: .......................... C247 35 �INTERVENCION SENASA FECHA MOTIVO LUGAR FIRMA .............................................................................................................................................................................................................................. .............................................................................................................................................................................................................................. .............................................................................................................................................................................................................................. ............................................................................................................................................................................................................................. ............................................................................................................................................................................................................................. ............................................................................................................................................................................................................................. INTERVENCIONES SERVICIO VETERINARIO PRIVADO ACREDITADO FECHA MOTIVO LUGAR FIRMA .............................................................................................................................................................................................................................. .............................................................................................................................................................................................................................. .............................................................................................................................................................................................................................. ............................................................................................................................................................................................................................. .............................................................................................................................................................................................................................. ............................................................................................................................................................................................................................. 1 - En los formularios estará dibujada la silueta de un équido, con DOS (2) perfiles, derecho e izquierdo. Entre ambos la cabeza, cuello y pecho, de frente; también estarán los perfiles izquierdo y derecho de los miembros y los mismos vistos de atrás. 2 - La individualización de todo equino que requiera certificación diagnóstica específica de Anemia Infecciosa Equina, deberá efectuarla el veterinario que extraiga la sangre para exámen, con el equino a la vista, cumplimentando la documentación identificatoria correspondiente. 3 - Para una correcta identificación el veterinario actuante acreditado deberá consignar la totalidad de las señas particularas, como ser: remolinos, manchas, cicatrices, pelos blancos, marcas a fuego, pelaje, edad, etcétera, todo ello correctamente ubicado, remitiendo luego al laboratorio los TRES (3) ejemplares conjuntamente con la muestra de sangre contenida en un tubo identificado con una faja de seguridad. 4 - Para dar ingreso a las muestras deberá verificarse que los datos que figuran en el certificado que acompaña la muestra, estén completados en su totalidad, y rubricados por el veterinario que extrae la muestra con sello aclaratorio. 5 - Deberá mantenerse en archivo por un lapso no menor a UN (1) año y en el orden en que fueron expedidos, los duplicados de los certificados, los que deberán ser presentados al personal del SENASA, cuando este lo requiera. 6 - Los certificados deberán ser firmados, tanto por el profesional que remite la muestra como por el Director Técnico del laboratorio en forma ológrafa, prescindiendo del uso de carbónicos u otros mecanismos de duplicación. 7 - El laboratorio deberá llevar registro de la totalidad de las pruebas diagnósticas Anemia Infecciosa Equina, sean estas para la extensión de los certificados diagnósticas o de relevamientos a establecimientos que no la requieran. 8 - En caso de que el diagnóstico sea POSITIVO, el laboratorio lo comunicará al veterinario actuante, reservándose para sí el triplicado. El original y el duplicado los remitirá de inmediato a la Oficina Local del SENASA. 8.1 - Los formularios duplicados y triplicados no tendrán valor como certificación. 8.2 - En caso de extravío del formulario, se podrá solicitar una copia, en la que deberá constar tal carácter. 8.3 - Los certificados deberán ser confeccionados con tinta o cualquier material inalterable y no presentar raspaduras ni enmiendas. 36 �� Dublin Core The Dublin Core metadata element set is common to all Omeka records, including items, files, and collections. For more information see, http://dublincore.org/documents/dces/. Title A name given to the resource Publicaciones SENASA Dublin Core The Dublin Core metadata element set is common to all Omeka records, including items, files, and collections. For more information see, http://dublincore.org/documents/dces/. Title A name given to the resource Manual de Procedimientos para la Anemia Infecciosa Equina (AIE) Publisher An entity responsible for making the resource available Servicio Nacional de Sanidad y Calidad Agroalimentaria Date A point or period of time associated with an event in the lifecycle of the resource 2005 Contributor An entity responsible for making contributions to the resource Dirección de Luchas Sanitarias Language A language of the resource Es Type The nature or genre of the resource Monografía Identifier An unambiguous reference to the resource within a given context B.S.0037 Abstract A summary of the resource. El presente manual se dirige principalmente a los Veterinarios privados, sectores interesados en la producción equina y actividades hípicas, y particularmente a vastos sectores rurales que estando cultural y tradicionalmente tan cerca del caballo quedan a veces tan lejos de los conocimientos más elementales para proteger su salud. También va dirigido a las autoridades nacionales, provinciales y municipales locales igualmente responsables y encargadas de emprender acciones sanitarias contra la AIE. En su desarrollo, se pretende reavivar el debate acerca de cual fue el aprendizaje y cuales fueron los defectos u omisiones en el intento de controlar la AIE desde siempre, puntualizando aquello que está al alcance de todos y cada uno para controlarla en todo el país. Seguramente se reiterarán conceptos y se desmitificarán algunas creencias populares sobre la enfermedad que a lo largo de los años sumaron confusión y produjeron alarmas exageradas en aquellos que se enfrentaron o vuelven a enfrentarse con esta enfermedad. Por tanto, centraremos su contenido en los principios de la enfermedad, descripción, pruebas de laboratorio, evaluación de sus resultados, medidas preventivas, atención de sospechas, focos y casos de infección. Table Of Contents A list of subunits of the resource. FINALIDAD MANUAL DE PROCEDIMIENTOS PARA LA ANEMIA INFECCIOSA EQUINA (AIE) 1. Consideraciones Generales 1.1 Importancia económica 2. Etiología 3. Descripción 4. Formas de presentación clinica 5. Transmisión de la enfermedad 5.1 Transmisión natural 5.2 Transmisión por el hombre 5.3 Otras vías de transmisión 6. Diagnóstico de Laboratorio 6.1 Periodo de ventana para la detección de la enfermedad por medio del test 6.2 Precisión de los tests diagnósticos y divergencias más frecuentes. 7. Proceso Epizoótico 7.1 Reservorios del virus 7.2 Población hospedadora 8. Medidas de Prevención y control 8.1 Aplicación de las medidas de control y prevención. 8.2 Medidas protectoras en territorios limpios (Países o regiones de países) 8.3 Medidas en territorios con la enfermedad enzoótica 8.4 Medidas a adoptar ante brotes o hallazgos de reactores positivos al test 8.5 Procedimientos en predios rurales 8.6 Medidas para los ingresos 8.7 Procedimientos en los eventos hípicos 8.8 Procedimientos en los remates ferias 8.9 Desinfección 9. Diagnóstico y Certificación: Procedimientos 9.1 Extracción y remisión de la muestra 9.2 Recepción de las muestras 9.3 Tiempo de validez de las certificaciones 10. Procedimiento para la denuncia 11. Eliminación de los reactores REGLAMENTO SANITARIO EQUINO - Res. SAGP y A N° 617/05 Enfermedades de los Equinos https://biblioteca.senasa.gob.ar/files/original/de57dbef6cd95e116eac773161c81dd9.pdf a8f811827681a398d8911eb173cd3ed4 PDF Text Text Dirección de Epidemiología y Análisis de Riesgo epidemiologia@senasa.gov.ar Informe Final: Halicephalobus: Recomendaciones sanitarias El siguiente informe se ha llevado a cabo tomando en consideración los aportes realizados por el grupo de expertos, conformado a pedido del SENASA. En el mismo se presenta las conclusiones que deben ser consideradas ante la ocurrencia de futuras sospechas de ésta enfermedad, como así las medidas de prevención y mitigación. El presente se confeccionó a raíz de un evento de un equino muerto con antecedentes de signología nerviosa en un club de campo de la ciudad de Avellaneda, provincia de Buenos Aires. Para la construcción de las siguientes recomendaciones, se citó a la conformación de un grupo de expertos profesionales, pertenecientes a variadas ramas de la biología, lo cuales están relacionados con la temática. Ellos son:      Dr. Chavez Eliseo. Zoólogo. (Universidad Nacional de La Plata Dr. Tanzola Ruben Daniel. Biólogo (Universidad del Sur) Dra. Radman Nilda. Microbiología (Universidad Nacional de La Plata) Dra. Salomón, Maria Cristina. Bioquímica (Universidad Nacional de Cuyo) Dr. Suarez Victor. Veterinario (INTA Salta) De acuerdo con la bibliografía internacional referida a Halicephalobus gingivalis, nematode Rhabditoidea, descripto por Stefanski en 1954 en Francia es habitante común de suelos enriquecidos con materia orgánica vegetal en descomposición y posible de aislar a partir de materia fecal de equinos. Es patógeno facultativo o accidental de equinos. Cosmopolita y, zoonótico. Forma tempranamente granulomas evidentes en piel y mucosas, es letal al legar a nervioso central. Dado el riesgo que implica, se realizan las siguientes observaciones y recomendaciones para diagnóstico, manejo y control de la Halicephalobiasis. Página 1 de 7 �Dirección de Epidemiología y Análisis de Riesgo epidemiologia@senasa.gov.ar 1. Recomendaciones operativas Protocolo de desparasitación y desinfección       Primera desparasitación: dosis única de Fenbendazol 100mg/kg vía oral (sonda nasogástrica) e Ivermectina 1,2 -1,8 mg/Kg. Le sigue un período de 48hs de limpieza y desinfección de los boxes (soda caustica 5% o hipoclorito de sodio 10%), donde previamente debe se debe retirar la cama de cada equino de forma diaria para ser quemada. Segunda desparasitación a los 4 días: dosis única de Fenbendazol 100mg/kg e Ivermectina 1,2 – 1,8 mg/kg. Le sigue un período de 48hs de limpieza y desinfección de los boxes (soda caustica 5% o hipoclorito de sodio 10%). Se debe retirar la cama de cada equino de forma diaria para ser quemada. Cumplido, los equinos deben ser llevados a la zona limpia, por un período de 72hs. Durante estas 72hs se deberá realizar una exhaustiva limpieza y desinfección diaria de los boxes que fueron desalojados (zona sucia) con soda caustica al 5% o hipoclorito de sodio al 10%. 2. Posible impacto en la sanidad equina. Considerando el género del parasito y su ciclo de vida, el cual según las revisiones bibliográficas, describe una etapa ambiental y una segunda, con estadios adultos, dentro del hospedador definitivo (equino), se resuelve tener presente las siguientes premisas:     La totalidad de las descripciones y hallazgos diagnósticos se llevaron a cabo mediante las necropsias respectivas de los animales fallecidos y complementándolo con estudios histopatológicos/parasitológicos. El mayor porcentaje de la casuística revisada, alude a la ocurrencia del evento en equinos estabulados. Esto plantea la posibilidad del riesgo de contagio entre los animales mediando algún tipo de material infeccioso, posiblemente materia fecal, cama, etc. Considerar entre los diagnósticos diferenciales las distintas encefalitis equinas de origen vírico. No se recomienda la utilización de corticoides en equinos con sospecha o riesgo de padecer ésta parasitosis. El riesgo se considera según el nexo epidemiológico acorde a la investigación llevada a cabo. (Están contraindicados, coadyuvan en la diseminación de la parasitosis por el organismo). Página 2 de 7 �Dirección de Epidemiología y Análisis de Riesgo epidemiologia@senasa.gov.ar  Controlar los animales que estén en riesgo posteriormente a situaciones de stress y/o inmunodepresoras (traslados, exigencias deportivas, enfermedades concomitantes, vacunaciones, etc.). 2 Recomendaciones para el diagnóstico, a partir de casos clínicos y posibles contactos Se considera que el diagnóstico debe realizarse tanto en animales vivos con signología compatible inespecífica, como en aquellos con sospecha de muerte por éste parásito o que tengan un nexo epidemiológico que los relacione. En caso de establecer sospecha de Halicephalobisis, es factible realizar un diagnóstico precoz de la infestación:      3 En animales en pie se debe observar la presencia de nódulos subcutáneos y submucosos (Realizar biopsias mediante la técnica aspiración (PAF) o ablación parcial y observación en fresco). Observar la presencia de tumoraciones superficiales renales por palpación rectal. Se describen éstas ubicaciones en un gran porcentaje de la casuística. Realizar observaciones en fresco, con previa concentración del material mediante centrifugación, de las secreciones nasales, lavados bronquiales y orina, previamente concentrar el material mediante centrifugación. En todos los casos respetar las condiciones de bioseguridad adecuadas para trabajar con éste patógeno. Como técnica coproparasitológica se recomienda la de Baerman, Recuperación de larvas, realizada con heces refrigeradas. También se pueden sembrar éstas sobre placas de agar conteniendo una pátina de Bacilus subtilis o Escherichia coli. Se observarán a ojo desnudo o conicroscopio estereoscópico, trayectos correspondientes a la migración de los vermes por el agar. Recomendaciones para el tratamiento de animales con sintomatología compatible; y el tratamiento preventivo de posibles contactos. Al reconocer a ésta entidad patógena con cierto poder de contagiosidad, (la cual aún no se ha aclarado con certeza), se recomienda que ante la presencia de animales con diagnostico positivos, como a los susceptibles convivientes y sospechosos con nexo epidemiológico, se lleven adelante las siguientes acciones precautorias:   Ante la presencia de vermes en nódulos subcutáneos o en secreciones o heces, realizar resección quirúrgica y/o tratamiento general con Ivermectina (1.2 a 1.8 mg/kg) acompañado con Fenbendazol (100mg/Kg) vía nasogástrica, en forma inmediata a fin de evitar la migración vía hemática de los vermes al SNC. Las mismas drogas y dosis deben ser repetidas a los 4 días de la primera, para reforzar la terapéutica. Recordar la dosis toxica de IVM, la cual es de 3 – 6 mg/Kg, presentado cuadro con sinología nerviosa indeseada. Los equinos considerados contactos deben ser medicados con Ivermectina y Fenbendazol a la dosis anteriormente nombradas. Página 3 de 7 �Dirección de Epidemiología y Análisis de Riesgo   4 epidemiologia@senasa.gov.ar  Permanecer en estado de alerta ante la aparición de signos compatibles en los contactos directos e indirectos. Ante la aparición de un caso, reforzar los controles clínicos y las medidas higiénicosanitarias en el establecimiento. Realizar las denuncias correspondientes a las autoridades sanitarias pertinentes. Posibles riesgos para la salud humana y de otras especies. Atento a la bibliografía consultada, se considera a éste agente infeccioso como un parasito zoonótico. Se han descripto numerosos casos en personas que tuvieron contacto estrecho con los animales fallecidos y/o con potenciales fuentes infecciosas del ambiente. En todos los casos la infección culmina en la muerte del individuo, presentado un cuadro neurológico central, producto de la migración del parásito en el SNC. Hasta el momento no se han podido clarificar la via de ingreso, pero se postula la percutánea como una de ellas. Por tal motivo se considera tener precauciones especiales y se recomiendan los siguientes ítems:         Los contactos humanos deben concurrir a consulta médica a las áreas del nosocomio correspondiente, con la finalidad de ser evaluados y consignar controles y tratamiento acorde. Comunicar a las autoridades de salud el evento para estar preparados ante cualquier contingencia. Minimizar el ingreso de personas al sitio de agonía o de fallecimiento del animal. De la misma manera se debe reducir el movimiento de personas en el establecimiento. Todos aquellos elementos que tengan contacto con el animal sospechoso/infectado, o con potenciales fuentes de infección, deben ser descontaminados adecuadamente o eliminados, en los que se permita. Los elementos de limpieza del ambiente donde se encuentra el animal sospecho/infectado o fuentes potenciales de infección, deben ser de uso exclusivo de ese sector y no retirarse. Se deben descontaminar todos los días. La recolección de camas y heces debe ser diaria con su eliminación/destrucción adecuada. Los encargados de la tarea deben tomar las medidas de bioseguridad adecuada (guantes, mamelucos, antiparras, etc). Colocar mallas metálicas en el sector de permanencia del animal sospechoso/infectado, a fin de evitar la proliferación y diseminación del agente por medio de los insectos. Restringir la presencia de mascotas en el área. Tomar medidas para minimizar la aparición de roedores que puedan difundir el agente patógeno. Página 4 de 7 �Dirección de Epidemiología y Análisis de Riesgo epidemiologia@senasa.gov.ar 5 Recomendaciones para la prevención y/o control de la patología a nivel poblacional. Al considerar ésta entidad a un nivel poblacional, se debe recordar que el halicephalobus es un parasito de ciclo mixto, con etapas dentro del animal como en el ambiente. Esto genera la posibilidad de difundirse en el hábitat y ser capaz de permanecer vital en el mismo, hasta encontrar al próximo hospedador para continuar con el ciclo. Por tal motivo se deben minimizar lso riesgos de difusión a otros equinos y especies susceptibles.        Aislar a los animales infectados (cuarentenas, uso de material de bioseguridad, botas, guantes, barbijos etc). Los animales fallecidos sin diagnóstico de certeza, deben ser necropsiados y estudiados por los servicios especializados complementarios (Bacteriología, virología micología y parasitología). Los cadáveres deben ser incinerados, con lo que se consigue la destrucción total del parasito y su potencial fuente de infección. Realizar tareas de limpieza y desinfección (soda caustica al 5% o hipoclorito de sodio al 10%) de los boxes y superficies donde permaneció el animal problema. Toma de muestras sanguíneas (sangre entera y suero), materia fecal y camas recuperadas de boxes (tener en cuenta que se trata de vermes de vida libre adaptados al parasitismo). para realizar diagnósticos por biología molecular. Remitir muestras sospechosas a laboratorios especializados. En todos los casos debe notificarse la sospecha y confirmación ante las autoridades correspondientes, (SENASA local, autoridad sanitaria animal y humana acorde a la región en cuestión) . Referencias bibliográficas Anderson RC, Linder KE, Peregrine AS: .Halicephalobus gingivalis (Stefanski, 1954) from a fatal infection in a horse in Ontario, Canada with comments on the validity of H. deletrix and a review of the genus. Parasite. 1998 Sep;5(3):255-61. Anwar, M. A. Gokozan, H. N. Ball, M. K. Otero, J. McGwire, B. S. 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Vet Parasitol. 2016 Mar 15;218:82-6. Fonderie, P., W. Bert, F. Hendrickx, W. Houthoofd and T. Moens. 2012. Anthelmintic tolerance in free-living and facultative parasitic isolates of Halicephalobus (Panagrolaimidae). Parasitology 139, 1301-1308. Hermosilla C, Coumbe KM, Habershon-Butcher J, Schöniger S.: Fatal equine meningoencephalitis in the United Kingdom caused by the panagrolaimid nematode Halicephalobus gingivalis: case report and review of the literature. Equine Vet J. 2011 Nov;43(6):759-63 Kinde H, Mathews M, Ash L, St Leger J.: Halicephalobus gingivalis (H. deletrix) infection in two horses in southern California. J Vet Diagn Invest. 2000 Mar;12(2):162-5. Lim CK, Crawford A, Moore CV, Gasser RB, Nelson R, Koehler AV, Bradbury RS, Speare R, Dhatrak D, Weldhagen GF: First human case of fatal Halicephalobus gingivalis meningoencephalitis in Australia. J Clin Microbiol. 2015 May;53(5):1768-74. Nadler Steven A, Ramon A Carrenob, Byron J Adamsc, Hailu Kinded, James G Baldwine, Manuel Mundo-Ocampoe: Molecular phylogenetics and diagnosis of soil and clinical isolates of Halicephalobus gingivalis (Nematoda: Cephalobina: Panagrolaimoidea), an opportunistic pathogen of horses. International Journal for Parasitology. 33 10, 2003, 1115–1125 Ondrejka SL, Procop GW, Lai KK, Prayson RA. Fatal parasitic meningoencephalomyelitis caused by Halicephalobus deletrix : a case report and review of the literature. Arch Pathol Lab Med. 2010 Apr; 134(4):625-9. Papadi, B. Boudreaux, C. Tucker, J. A. Mathison, B. Bishop, H. Eberhard, M. E. Case report: Halicephalobus gingivalis: a rare cause of fatal meningoencephalomyelitis in humans. American Journal of Tropical Medicine and Hygiene; 2013. 88(6):1062-1064. Pearce Simon G., Ludovic P. Bouré, Judith A. Taylor, and Andrew S. Peregrine: Treatment of a granuloma caused by Halicephalobus gingivalis in a horse. Journal of the American Veterinary Medical Association, December 15, 2001, Vol. 219, No. 12 , Pages 1735-1738 Pintore Maria Domenica, Francesco Cerutti, Antonio D’Angelo, Cristiano Corona, Paola Gazzuola, Loretta Masoero, Corrado Colombo, Roberto Bona, Carlo Cantile, Simone Peletto, Cristina Casalone and Barbara Iulini: Isolation and molecular characterisation of Halicephalobus gingivalis in the brain of a horse in Piedmont, Italy. Parasites & Vectors 2017 10:135 Página 6 de 7 �Dirección de Epidemiología y Análisis de Riesgo epidemiologia@senasa.gov.ar Stefanski W. Rhabditis gingivalis sp. n. parasite trouvé dans un granulome de la gencive chez un cheval. Acta Parasitologica Polonica, 1954, 1, 329-334. Wilkins PA, Wacholder S, Nolan TJ, Bolin DC, Hunt P, Bernard W, Acland H, Del Piero F. Evidence for transmission of Halicephalobus deletrix (H gingivalis) from dam to foal. J Vet Intern Med. 2001 Jul-Aug; 15(4):412-7. Yoshiga, T. Detection of Halicephalobus gingivalis in soil nematode samples using PCR. Japanese Journal of Nematology; 2007. 37(2):101-104. Página 7 de 7 � Dublin Core The Dublin Core metadata element set is common to all Omeka records, including items, files, and collections. For more information see, http://dublincore.org/documents/dces/. Title A name given to the resource Publicaciones SENASA Dublin Core The Dublin Core metadata element set is common to all Omeka records, including items, files, and collections. For more information see, http://dublincore.org/documents/dces/. Title A name given to the resource Informe Final: Halicephalobus: Recomendaciones sanitarias. Publisher An entity responsible for making the resource available Servicio Nacional de Sanidad y Calidad Agroalimentaria Date A point or period of time associated with an event in the lifecycle of the resource 2013 Contributor An entity responsible for making contributions to the resource Dirección de Epidemiología y Análisis de Riesgo. Language A language of the resource Es Type The nature or genre of the resource Monografía Identifier An unambiguous reference to the resource within a given context B.S.0043 Abstract A summary of the resource. El siguiente informe se ha llevado a cabo tomando en consideración los aportes realizados por el grupo de expertos, conformado a pedido del SENASA. En el mismo se presenta las conclusiones que deben ser consideradas ante la ocurrencia de futuras sospechas de ésta enfermedad, como así las medidas de prevención y mitigación. El presente se confeccionó a raíz de un evento de un equino muerto con antecedentes de signología nerviosa en un club de campo de la ciudad de Avellaneda, provincia de Buenos Aires. https://biblioteca.senasa.gob.ar/files/original/710248feb193f60178a853f8077dfb68.pdf 5f815d28254dedc6f56e0df7d8d1eaf0 PDF Text Text LAS PRUEBAS TUBERCULINICAS EN EL GANADO BOVINO Pedro M Torres Jefe Programa Control de Tuberculosis. Servicio Nacional de Sanidad y Calidad Agroalimentaria (SENASA). Av.Paseo Colon 367-4°piso (C1063ACD) Buenos Aires. tuberculosis@senasa.gov.ar Introducción La prueba tuberculínica constituye el instrumento básico para detectar la presencia de infección tuberculosa, por lo tanto, desempeña un papel fundamental en el programa de control y erradicación de la tuberculosis bovina. El empleo de la prueba tuberculínica en el ganado bovino tiene ya una larga historia, que ha permitido acumular una gran cantidad de conocimientos y una amplia experiencia, especialmente en los países cuyos programas de control de la tuberculosis bovina han alcanzado la etapa de la erradicación. Antes de describir las diferentes pruebas tuberculínicas actualmente utilizadas en medicina veterinaria para el control de la tuberculosis en las distintas especies que afecta, es importante realizar la revisión de conceptos básicos que nos permitirán comprender no solamente la razón de su utilización, sino también su capacidad para el diagnóstico, lo mismo que sus limitaciones. El conocimiento de las herramientas disponibles para el control y erradicación del problema en los animales, nos dará la posibilidad para determinar, no sólo la prueba que utilizaremos, sino también cómo, donde y cuando la aplicaremos para lograr el mejor resultado. La definición de la prueba tuberculínica, es sin duda el primer paso. Esta prueba consiste en la inoculación de un antígeno, la PPD (derivado proteico purificado) en forma intradérmica a un animal, con el objeto de poder establecer si el mismo fue infectado por el agente causante de la enfermedad. La lenta y localizada respuesta del organismo al antígeno inyectado se debe a un mecanismo de hipersensibilidad de tipo IV (retardada), la cual se manifiesta durante las 72 horas posteriores a la exposición al antígeno. Al contrario de lo que ocurre en otras formas de hipersensibilidad, la de tipo IV no puede ser transferida de un animal a otro mediante la transferencia de suero, sino que es necesario transferir células T (linfocitos), por lo que la respuesta inmune en tuberculosis se considera mediada por células. Las células T que dan lugar a las respuestas de tipo retardado tienen que haber sido sensibilizadas previamente por exposición al antígeno, y su misión es atraer células de otros tipos hacia la zona de reacción. Cuando el Mycobacterium bovis penetra en el organismo del huésped y las células del sistema inmunitario de éste se ponen en contacto con él, se produce la infección �tuberculosa, paralelamente aparece la resistencia inmunitaria adquirida junto con la hipersensibilidad retardada o de tipo tuberculínico (fenómenos paralelos ambos mediados por células), y se pondrá de manifiesto después de transcurrido el perìodo prealèrgico de 4 a 5 semanas, pudiendo persistir durante toda la vida del animal. Cuando el antígeno (PPD) se inocula en forma intradérmica en la piel de un animal sensibilizado, es decir expuesto al agente en un momento suficientemente anterior a la prueba, como para que el animal pueda haber desarrollado su respuesta inmunitaria, se produce una reacción inflamatoria en el lugar de la inoculación. Esta respuesta inflamatoria tarda varias horas en desarrollarse y alcanzar su máxima expresión, variando según las especies. En los porcinos y aves, el punto máximo de la reacción en proceso se produce a las 48 horas, mientras que los bovinos y otros rumiantes a las 72 horas. La reacción a la tuberculina es una reacción in vivo, sigue siendo una de las respuestas biológicas más interesantes, más estudiadas, que requiere del desarrollo de habilidades, y es la única forma práctica masiva que tenemos para demostrar el hecho más significativo en tuberculosis, que es la infección del ganado con el Mycobacterium bovis. Reactivo para la prueba tuberculìnica El PPD, Derivado Proteico Purificado de tuberculina, es un extracto antigénico derivado del cultivo de un bacilo tuberculoso en un medio sintético. Los Derivados Proteicos Purificados de tuberculinas que se producen son tres, utilizando ya sea Mycobacterium tuberculosis, Mycobacterium bovis y Mycobacterium avium. De ellas sólo las tuberculinas bovina y aviar tienen aplicación veterinaria. De acuerdo con los diferentes métodos de elaboración, existían distintos tipos de tuberculina, incluyendo la tuberculina vieja de Koch (O.T y K.O.T) y la tuberculina de Medio Sintético concentrado por calor (H.C.S.M). En la actualidad solamente se usa el PPD por su mayor potencia y especificidad. El empleo del derivado proteico purificado de tuberculosis, para el diagnóstico de la tuberculosis en los animales, es preparado de acuerdo con los requerimientos de la Organización Mundial de la Salud (OMS.,1968) y OMS/OPS (1972), en lo que respecta a orígenes de los materiales, métodos de producción, precauciones, sustancias agregadas libres de contaminantes, identidad, seguridad, potencia, especificidad y ausencia de agentes sensibilizantes. El bioensayo para la actividad biológica tiene especial importancia y la potencia se expresa en Unidades Internacionales (U.I). Por lo tanto la calidad del PPD siempre debe ser controlada, no siendo digna de confianza ninguna prueba, si se desconoce la potencia de la tuberculina con la que se efectuó. Este PPD se inocula a un animal o animales para determinar su situación de exposición con respecto al agente. De tal manera, cuando es inoculado intradermicamente a animales no expuestos a Mycobacterias, denominados vírgenes o sanos, no se observa ninguna respuesta inflamatoria local importante o que puedan clasificarse como sospechosas o positivas. �Por lo tanto, faltó en esos animales el estímulo previo que los sensibilizara y generen una respuesta frente al agente o sus productos. De la otra manera, si se inoculara a animales infectados o enfermos, es decir ya anteriormente expuestos y sensibilizados al bacilo tuberculoso, aparecerá la reacción tuberculínica, siendo la misma un ejemplo destacado de una respuesta inmunológica específica de hipersensibilidad tardía de tipo IV, mediada por células. Patogénesis de la hipersensibilidad tardía de la piel En las primeras horas no se observan modificaciones apreciables en el lugar de inoculación, pero luego se instala una vasodilatación con aumento de la permeabilidad vascular, con eritema e inflamación, que tiene como característica especial su dureza. Microscópicamente la lesión presenta en las primeras cuatro horas una acumulación celular, transitoria de neutrófilos, pero a las doce horas pasan a ser principalmente mononucleares (monocitos y celulas T). La reacción de hipersensibilidad alcanza su máxima intensidad a las 72 horas postinoculación y la lesión tuberculínica suele desaparecer gradualmente en el plazo de 5 a 7 días, dependiendo del grado de intensidad de la reacción. En reacciones severas puede llegar a observarse necrosis en el sitio de inoculación, pero no se trata de un fenómeno común. La reacción tuberculínica es una reacción inmunológica específica mediada por linfocitos T. Estas células sensibles a los antígenos que se encuentran en la circulación, entran en contacto con el antígeno inyectado, respondiendo al mismo por movilización de otros linfocitos y por división, diferenciación y liberación de linfoquinas. En el sitio de la inyección tuberculínica, se acumula el producto de la multiplicación de los linfocitos y de nuevas generaciones de células linfocitarias. Los macrófagos fagocitan el antígeno inyectado y finalmente lo destruyen, desapareciendo así el estímulo para que continúe la producción de linfoquinas, con lo cual los tejidos vuelven al estado normal. Las pruebas tuberculínicas deben ser aplicadas a intervalos no menores de sesenta (60) días, ya que el sitio alrededor del tejido que se inoculó previamente con la tuberculina puede estar temporalmente desensibilizado. De manera tal, la reacción tuberculínica aparece sólo en animales que tienen o han tenido la infección tuberculosa y puede entonces emplearse para identificar animales con infección o enfermedad. Este test ha servido como base para todos los programas de control y erradicación de la enfermedad en el mundo, a través de la identificación de animales infectados y de su eliminación y ha permitido alcanzar el objetivo de erradicación en países como U.S.A, Canadá, Australia, Cuba y algunas áreas de Uruguay, Chile y Paraguay. �Interpretación de la prueba tuberculínica Para la correcta interpretación de la prueba y sobre todo para que los resultados sean comparables, repetibles e igualmente interpretables por distintos profesionales, existen seis constantes que deben establecerse claramente con los resultados de cada prueba. Estas constantes son: 1. Potencia de la PPD. 2. Dosificación del antígeno. 3. Sitio de la inoculación. 4. Tiempo de lectura. 5. Medición de las respuestas o reacciones para su interpretación. 6. Instrumental a utilizar. No es suficiente clasificar a un animal o a un rodeo como reactor positivo, sospechoso o negativo, ya que la repetición del test por otro profesional que varíe cualquiera de las constantes, puede producir resultados dispares y ser motivo de situaciones conflictuantes a veces importantes. Los criterios de cuantificación de estas variables pueden cambiar en distintos países y aún dentro de un mismo país, de acuerdo con distintas situaciones epidemiológicas y es correcto y lógico que eso suceda, pero es sumamente importante que cada diagnóstico, especialmente aquellos de animales que se mueven hacia otros países, se acompañen de las aclaraciones que permitan conocer todos los pasos seguidos para el mismo, al igual que los criterios de evaluación utilizados para el análisis. La potencia de una tuberculina, es la medida de su actividad biológica en animales previamente sensibilizados con un organismo específico, valorada de acuerdo con patrones y un estándar internacional establecido. De acuerdo a lo establecido por la World Health Organization (WHO), el PPD bovino deberá contener 1 mg de proteínas por mililitro de antígeno para una potencia de 32,500 U.I/mg/ml. La potencia estimada de tuberculina bovina deberá ser, no inferior al 66% ni mayor del 150% de la potencia indicada en el prospecto. El PPD aviar con 0,5 mg de proteína por mililitro de antígeno deberá alcanzar 25,000 U.I/0.5mg/ml. La potencia estimada para las tuberculinas aviares no deberá ser inferior al 75% ni superior al 133% de la indicada en la etiqueta. Las tuberculinas PPD deberán conservarse al abrigo de la luz y a una temperatura de 2ºC a 8ºC, descartando el sobrante que quede en el frasco, sino se va a utilizar en el mismo día. Por lo tanto, cuando utilizamos antígenos de distintas potencias biológicas no hay duda que aquel de mayor potencia nos dará la máxima sensibilidad en las pruebas, por lo que los animales y rodeos testeados con resultados negativos utilizando una PPD de baja potencia, pueden dar resultados muy diferentes a una nueva prueba en la que se cambie el antígeno. Cuando utilizamos el lugar de inoculación más sensible, que es la tabla del cuello, si la potencia de la PPD es baja, los resultados que se obtengan en la identificación de �animales infectados, podrían ser iguales o aún menor que los que se podrían registrar utilizando un área menos sensible, como ser el pliegue ano caudal y una PPD de adecuada potencia. Al utilizar el sitio de inoculación menos sensible y una PPD de baja potencia, la veracidad de los resultados podría alterarse seriamente, sobre todo cuando se desconoce el verdadero diagnóstico de situación sanitario del rodeo. Una segunda constante mencionada, la dosificación del antígeno, es otro dato imprescindible de consignar en un diagnóstico. Manteniendo invariables las cinco constantes, el volumen de antígeno inoculado no importa el sitio, hará variar la sensibilidad de la prueba, que puede aumentar en una cierta proporción de acuerdo al volumen de PPD inyectado. Existen trabajos que muestran que no hay una diferencia significativa en sensibilidad y especificidad para el test ano caudal, utilizando 0.2 ml y 0.4 ml de dosis de PPD de 0.1 mg/ml, aunque el tamaño de la reacción de los animales infectados sería mayor con la dosis de 0.4ml, no observándose la diferencia en los animales no infectados (Francis et al., 1978). Otros estudios muestran escasa diferencia entre la sensibilidad del test cervical simple con 0.1ml de dosis y el test ano caudal con 0.2ml a igual potencia (Kantor et al., 1984). En este último trabajo tuvo como conclusión , que la prueba ano caudal utilizando 0.2 ml de PPD de 1mg/ml de alta potencia, era más sensible que la prueba cervical comparativa y tan sensible como la prueba cervical simple utilizando 0.1ml de PPD de potencia moderada. Por lo tanto, es claro entonces la necesidad de registrar esta información en el diagnóstico de situación. En la actualidad y de acuerdo al manual de normas y procedimientos en vigencia, las dosis correspondientes a las pruebas tuberculínicas en el ganado bovino y en otras especies animales, se hará inoculando 0.1ml de tuberculina PPD bovina de 1.0 mg/ml de concentración (Secretaría de Agricultura, Dirección Nacional de Sanidad Animal, Argentina., 1999). La tercera constante en estudio es el sitio de inoculación, siendo posiblemente el dato más comúnmente registrado, ya que sirve para identificar el tipo de prueba utilizada. Algunas veces no se hace la distinción entre prueba cervical simple o cervical comparativa. Sin embargo no faltan ocasiones en que la única información disponible es de un resultado negativo a la prueba tuberculínica, sin ningún otro dato adicional. La implementación de una prueba de alta sensibilidad, hace que las posibilidades de que surjan inconvenientes con una nueva prueba no importa cual, son escasas al igual que cuando se utiliza una prueba de menor sensibilidad en un rodeo controlado. Los problemas se presentan generalmente cuando luego de una primera prueba de baja o mediana sensibilidad en rodeos infectados o no controlados, se pasa a una prueba muy sensible. Existen otros factores que intervienen en el resultado de un re-test y que luego �consideraremos, pero es de suma importancia conocer la prueba inicialmente utilizada para poder evaluar el resultado que se recibe y decidir que se hará posteriormente. Actualmente no existen prácticamente discrepancias en el tiempo de lectura de la prueba, que es la cuarta constante y debe realizarse a las 72 horas, más/menos 6 horas, post- inoculación en el bovino y a las 48 horas en el porcino y las aves. Existen trabajos que demostraron que las reacciones a PPD bovina en animales tuberculosos, están bien avanzadas a las 48 horas y alcanzan su máxima expresión a las 72 horas (Lepper et al.,1977) y (Francis et al.,1978). Por este motivo es importante registrar cualquier alteración en el tiempo de lectura, cuando situaciones imprevistas dificultan efectuarla en el momento adecuado, en virtud de que reactores en el umbral de las 72 horas, pueden ser erróneamente clasificados 24 horas mas tarde. Por lo tanto, sería sumamente importante consignar cualquier tipo de reacción encontrada al momento de la lectura y no simplemente la categoría de clasificación del animal. La quinta constante a considerar es la medición de las respuestas o reacciones postinoculación. En los animales domésticos, cuando a los reaccionantes a la prueba tuberculínica, pretenden otorgarle una clasificación cuantitativa, criterios como tamaño de un grano de arroz, de maíz, de un huevo o de una naranja, son totalmente inservibles, ya que se modificarán con cada observador. Por supuesto que no existirán dudas respecto a la clasificación de reactores de un animal con una reacción del tamaño del huevo o una naranja, pero sí aparecerían juntamente con serios inconvenientes, con las reacciones pequeñas. La alternativa vigente es el uso del instrumento de medida, que permita cuantificar en forma correcta y en la misma escala, la reacción localizada a través de la medición del aumento del grosor de la piel en el sitio de inoculación, por cualquier profesional en cualquier lugar. Por lo tanto, en un diagnóstico de estas características, es aconsejable eliminar todo tipo de subjetividades en la lectura e interpretación de la prueba y para ello el uso del calibre es el procedimiento adecuado, si se pretende algo más que un diagnóstico cualitativo (reaccionante o no reaccionante). Excepto cuando se utilicen calibres automáticos, las medidas del espesor de la piel previa y posterior inoculación, variarán de observador a observador y es usual que esto suceda en virtud de la diferente presión que cada profesional de acuerdo con la aplicación de su fuerza, ejerza sobre la boca del calibre. No obstante, esto no constituye ningún problema, en virtud de que el diagnóstico surge de la diferencia de medidas del pliegue de la piel previa y posterior inoculación, y siempre que el veterinario acreditado que realice ambas lecturas sea el mismo, la diferencia medida en milímetros será la misma. �En el manual de normas y procedimientos de la resolución vigente, se describen los criterios de interpretación, en forma individual para cada una de las pruebas tuberculínicas, pero es importante recalcar que la simple observación sin proceder a la palpación, se debe considerar el procedimiento de la técnica de lectura en forma incorrecta. En algunos países como por ejemplo Estados Unidos, no se considera actualmente adecuado el uso del calibre en la prueba ano caudal, mientras que en otros, sí se lo utiliza para cuantificar y eliminar toda subjetividad de la prueba. La diferencia se debe a que en USA, con cualquier reacción a la palpación, se considera al animal como positivo, en tanto en los otros países, lo hacen de acuerdo a una escala con umbrales en milímetros, en donde se clasifican a los animales reactores en positivos, sospechosos y negativos, surgiendo ambos criterios de situaciones epidemiológicas totalmente diferentes. La sexta constante es el instrumental a utilizar, variable de suma importancia en la obtención del éxito o el fracaso del saneamiento del rodeo. Es necesario utilizar jeringas de uso veterinario de 1 a 2 ml de volumen, automáticas o manuables graduadas en 0.1 mililitros. Las agujas serán hipodérmicas, calibre 6, con una longitud de la cánula de 5 milìmetros y bisel corto. En el caso de animales difíciles de inmovilizar, se podrán usar agujas más cortas. Los calibres deberán estar graduados al 0.1 milímetro, pudiendo ser metálicos o de plásticos. La falta de calidad instrumental, puede llevar aparejado una disminución en la dosis aplicada, debido a una pérdida de tuberculina, como también una disminución de la tasa de cobertura o inoculación de los animales en tiempo y forma, teniendo como resultado una disminución de la eficacia o efectividad en el cumplimiento de los objetivos propuestos. En los sistemas productivos intensivos, con especial referencia a los tambos de alta producción, tales circunstancias pueden tener implicancias directas en la eficiencia o rentabilidad empleada para llevar a cabo el programa de saneamiento o monitoreo del rodeo. Es precisamente el estudio epidemiológico de cada situación en particular, la variable que inevitablemente tendremos siempre que analizar, cuando antes de iniciar cualquier diagnóstico de situación por medio de la prueba tuberculínica, nos planteemos cinco preguntas bàsicas: 1. 2. 3. 4. 5. Cuál es el objetivo del trabajo? Qué sabemos de la condición sanitaria del rodeo respecto a la enfermedad? Cuál de las pruebas tuberculínicas vamos a utilizar? Qué categorías vamos a testear? Cómo vamos a evaluar los resultados? �La definición del objetivo constituye sin duda el punto de partida y es de fundamental importancia para la programación de las actividades posteriores. El deseo por parte del productor y veterinario acreditado, de conocer la posible existencia de la tuberculosis bovina en el rodeo, con el único fin por ejemplo, de definir el origen y los costos de futuros reemplazos en el manejo de la reposición de hembras, o tal vez para contar con otro elemento de juicio en el momento de descartar animales para venta, hace que la organización de las tareas posibles de realizar, será muy diferente a la que se programe cuando se desea eliminar la enfermedad en el rodeo. Es posible que la prueba tuberculínica que utilicemos puede ser la misma, pero los animales a inocular y la evaluación de los resultados obtenidos serán totalmente diferentes. Por lo tanto, es una necesidad iniciar las tareas de saneamiento a partir de un diagnóstico de situación transparente, en el cual el productor pueda reconocer el problema concreto de la enfermedad en su rodeo y el profesional crear las alternativas posibles. Es necesario crear un equipo con las personas que son responsables en las diversas tareas. Esto se realiza con las prácticas y las relaciones de motivación y comunicación constante que el veterinario acreditado debe transmitir al personal de campo y el desempeño de las actividades se refleja en los indicadores que serán analizados, valorados e interpretados. Toda la información analizada, debe pasar por los mecanismos de retroalimentación y estar a disposición permanente de los propietarios del establecimiento. Es fundamental para el logro de las metas y objetivos propuestos, desarrollar las actitudes y habilidades del personal a cargo, a través de charlas de actualización en los diferentes temas de la problemática a resolver. De tal manera, se podría afirmar, que es muy difícil que exista una planificación coherente, si no sabemos para qué estamos trabajando y esa es la importancia de este primer paso, definir que es lo que esperamos obtener con la utilización de éste método de diagnóstico. La segunda pregunta, correspondiente al conocimiento de la condición sanitaria del rodeo respecto a la enfermedad, merece un análisis detallado de la historia del rodeo, como se fue formando, la situación de la tuberculosis en los rebaños adyacentes, en áreas vecinas, basándose para ello en resultados tuberculínicos confiables y/o en los datos disponibles que surjan de la vigilancia epidemiológica en faena, los resultados de pruebas anteriores y el orígen de los animales que a él ingresen dentro del marco local o regional, que nos permitirá tener una visión global de la historia natural de la enfermedad en el rodeo. Los datos que se obtengan por medio de una detallada anamnesis, en algún grado nos permitirá evaluar, primero el riesgo de que la tuberculosis esté presente y segundo, la posibilidad de su ingreso al rodeo a través de las distintas vías de transmisión. �Esto constituye parte del estudio epidemiológico que antes se mencionó como variable de análisis, que no se limitará a medir el problema presente y los riesgos de introducción o reinfección, sino que deberá abarcar aspectos mucho más amplios, bajo un enfoque sistémico, en la que no podrán dejarse de lado aspectos sociales, culturales y fundamentalmente económicos del establecimiento en estudio y del área o región en que se encuentre. Del correcto análisis de esa situación, depende la adecuada selección de la prueba tuberculínica a utilizar que se planteó en tercer lugar. Cuando hablamos de un estricto análisis de diagnóstico de situación, debe quedar claro que el mismo no se limita a presencia o ausencia de la enfermedad o a su grado de difusión en el rodeo, sino que contempla otros aspectos, como las posibilidades de eliminación de los reactores, en el caso de rodeos infectados, en forma tal que su número y el momento de su segregación afecten en la menor proporción posible el esquema productivo del establecimiento. Es sabido que la erradicación de la tuberculosis bovina, es sin duda una acción sanitaria redituable, pero debe tenerse en consideración todas las alternativas posibles de aplicación, para que en el proceso se afecten lo menos posible los ingresos del establecimiento, hasta el punto de no hacer peligrar la continuidad del programa de saneamiento. Por lo tanto, juntamente con el diagnóstico de situación inicial y con el resultado de una prevalencia de infección, debe evaluarse también la capacidad económica y financiera de cada establecimiento en particular, ajustando las acciones a las posibilidades reales del propietario. De acuerdo con el sitio de inoculación, podemos clasificar a las pruebas tuberculínicas en ano-caudal y cervicales. Las cervicales a su vez pueden ser de dos tipos: cervical simple y cervical comparativa, según se utilice un antígeno PPD bovino o dos, PPD bovino y PPD aviar respectivamente. La exactitud de una prueba puede medirse y expresarse, en base a su habilidad de clasificar correctamente animales de acuerdo a su situación sanitaria. Estas medidas son la sensibilidad (Se) y especificidad (Ep). Debido a que sobre estas dos propiedades esenciales, se basa la decisión del tipo de prueba a utilizar en cada una de las distintas situaciones que pueden presentarse, al igual que los criterios utilizados en la interpretación de los resultados de la lectura postinoculación, es importante dejar claro ambos conceptos. La sensibilidad es la probabilidad de que una prueba identifique correctamente aquellos animales infectados y enfermos. La especificidad es la probabilidad de que una prueba identifique correctamente aquellos animales no infectados o sanos. �Para establecer estos dos atributos, se debe aplicar la prueba en muestras de animales cuya situación respecto a la enfermedad es conocida y los resultados pueden tabularse en cuadro 2 x 2, del cual pueden calcularse la Se y Ep. En el caso de la tuberculosis bovina, la prueba utilizada es la prueba tuberculínica que es un test indirecto, ya que no se utiliza para detectar al agente de la enfermedad, sino para evidenciar en los animales en estudio una reacción inmunitaria contra el mismo. Esta reacción que representa la manifestación de la capacidad individual para producir defensas detectables y mensurables contra el mycobacterium, no diferencia infección ni enfermedad, sino simplemente mide la exposición del huésped al agente con el correspondiente desarrollo del proceso inmunitario. Una prueba tuberculínica es tanto más sensible cuanto mayor es el número de respuestas positivas entre los animales infectados, y es tanto más específica cuanto menor es el número de respuestas positivas en animales no infectados o sensibilizados por otras micobacterias diferentes del bacilo bovino. No existe actualmente ninguna prueba tuberculínica absolutamente sensible, capaz de detectar con una sola aplicación el 100% de los animales infectados; siempre habrá un cierto porcentaje de “falsos negativos”. Tampoco existe la prueba absolutamente específica; todas las micobacterias poseen ciertos antígenos comunes y los animales sensibilizados por el M.avium complex (MAC) Subsp.paratuberculosis,o por una variedad muy grande de otras micobacterias generalmente saprófitas que se hallan en el medio ambiente, pueden dar también reacción tuberculínica positiva, son los denominados “falsos reactores positivos” En las poblaciones de ganado bovino con altos porcentajes de infección, se deben preferir sistemas de saneamiento que utilicen pruebas tuberculínicas altamente sensibles, con el propósito de interrumpir lo más rápidamente posible la transmisión de la infección. La prueba que detecta la mayor proporción de animales infectados con el menor número de repeticiones será la adecuada, aunque con ella se corra el riesgo de tener algunas falsas respuestas positivas. Es conveniente utilizar la prueba tuberculínica operativa ano-caudal, de rutina, para determinar la presencia de infección tuberculosa en un rodeo o región, y la prueba cervical simple, más sensible, para eliminar los reactores de los rebaños infectados. El criterio de interpretación podrá ser más o menos severo, según las condiciones de infección del rodeo o de la región en que se aplicará la prueba y el objetivo que se persigue con la misma. En un rodeo con antecedentes de tuberculosis, será necesario emplear un criterio más estricto que en otro donde nunca se haya detectado un reaccionante. �De acuerdo a lo expresado anteriormente, de la Se de la prueba elegida, dependerá la mayor o menor proporción de enfermos y/o infectados detectados, mientras que la Ep determinará la proporción de falsos positivos que formarán parte de la tasa de prevalencia aparente de la enfermedad, surgiendo la misma, directamente de la práctica diagnóstica realizada por el profesional. Los datos que se obtienen de esa práctica rural, están clasificados como positivos y negativos a la prueba diagnóstica e incluyen tanto verdaderos positivos y verdaderos negativos como falsos positivos y falsos negativos. El profesional veterinario a pesar de no poder cuantificarlos, deberá estar prevenido sobre la posible inclusión de falsos positivos y falsos negativos, en la medida de la presencia de la enfermedad en el rodeo. Los resultados en cada caso serán el producto de la Se y Ep del test diagnóstico que se utilice, que no siempre son exactamente conocidas. Partiendo que la prevalencia verdadera esta calculada por aquellos animales probados y realmente infectados por la “prueba de oro”, determinándose normalmente por un método estándar (aislamiento bacteriológico), se puede inferir que la prevalencia aparente detectada es diferente a la verdadera. Esto se debe a la capacidad diagnóstica de cada prueba, expresada como Se y Ep, que al aplicarse sobre una población animal la discrimina en los cuatro grupos mencionados. Si fuese la Se y Ep del ciento por ciento cada una, solo existirían dos grupos, sanos y enfermos, que permitirían solucionar los problemas epidemiológicos y sin conflicto. En la realidad esos grupos de superposición sí se presentan y su gravitación en el saneamiento y eliminación de la enfermedad en el rodeo, puede ser tan importante como detener todo el proceso del mismo, siempre y cuando el profesional acreditado no tenga en claro los conceptos anteriores que pueden sintetizarse en dos propiedades importantes de la pruebas, que son el valor predictivo positivo (VP+) y el valor predictivo negativo (VP-) El primero también denominado diagnosticabilidad, indica que proporción de los animales positivos a la prueba están realmente infectados o enfermos. Es la probabilidad que un animal con resultado positivo a la prueba, sea correcto. El valor predictivo negativo, indica la proporción de animales realmente sanos del total de animales que no reaccionaron a la prueba. Es la probabilidad que un animal no esté infectado si tiene un resultado negativo a la prueba. Los valores predictivos indican la exactitud de la prueba, por lo tanto, es la proporción de animales correctamente identificados por la prueba, ambos VP dependen de la prevalencia de la enfermedad en la población y de la Se y Ep de la prueba utilizada. Existe una relación cercana entre VP+ y la Ep, así como entre VP- y la Se. Cuando aumenta la Ep de la prueba, se incrementa el VP+ y por lo tanto la probabilidad de que un resultado positivo sea verdadero, aumenta. �Cuando aumenta la Se de la prueba, aumenta el VP- y por lo tanto la probabilidad de que un resultado negativo sea correcto, aumenta. La Se permite una mayor confianza en un resultado de prueba negativo. Esto nos permite inferir, que una prueba tuberculínica negativa de mayor Se como la cervical simple, seleccionada para una eventual compra de animales, aquellos que fueron negativos a la prueba no diseminarán la enfermedad. Es importante tener presente que si la Se y la Ep de la prueba no se modifican o sea se mantienen constante, su diagnosticabilidad variará directamente con el valor de la prevalencia de la enfermedad en el rodeo. A mayor prevalencia corresponderá una diagnosticabilidad del test más elevada y viceversa, cuando la prevalencia de la enfermedad disminuye, el VP+ del test, se irá reduciendo y aumentará consecuentemente la eliminación de falsos reactores positivos. El conocimiento de estos conceptos y su comprensión son fundamentales para el correcto uso de las distintas pruebas tuberculínicas, que se detallan en el manual de normas y procedimientos de la legislación vigente, ya que cada una fundamentalmente de acuerdo con su Se y Ep tendrá un uso adecuado o una contraindicación, de acuerdo con la situación sanitaria que se esté analizando. No existe una prueba aconsejable para todos los casos y la opción entre las distintas pruebas diagnósticas disponibles dependerá del análisis de las variables que se han mencionado anteriormente. Que categorías del rodeo vamos a testear, nos indica la siguiente pregunta, la cual está relacionada con la edad de los bovinos a tuberculinizar. En la primera prueba ano-caudal, cuando se desconoce si los animales están o no infectados, es conveniente aplicar la PPD bovina a todos los bovinos mayores de 3 meses de edad en las razas lecheras, ya que la leche es el vehículo ideal como vía de transmisión del bacilo tuberculoso, observándose en éstas categorías de terneros/as una mayor frecuencia de la infección por ingestión de leche que por vía aerógena. Las ubres de vacas positivas a la tuberculina pueden eliminar bacilos en leche sin que exista mastitis tuberculosa. La eliminación por leche es trascendente, siendo el vehículo ideal para la transmisión de los bacilos, ya que éstos se encuentran en emulsión en la grasa y ésta facilita su difusión por el tracto digestivo, cuando los alimentos son digeridos. Por lo tanto la medida de prevención es no dar más de doce horas de calostro y retirar las crías del contacto de su madre, para continuar con la crianza artificial de los terneros/as, utilizando sustitutos lácteos. Dicha medida de manejo, contribuye de manera esencial, a que el núcleo genético de las futuras vaquillonas de reemplazo, en sus tambos, mantengan una sanidad de base óptima en el inicio de la reposición. �Es importante destacar que las vaquillonas preñadas, es una categoría sensible de contraer la infección, especialmente las que provienen con un origen libre de la infección tuberculosa, por lo tanto, la no separación de los animales por grupo de edad, es un factor de riesgo que contribuye a la propagación de la enfermedad. En las razas de carne se puede iniciar el diagnóstico tuberculínico, a partir de los 24 meses de edad, si no existieron ingresos de animales en ese lapso. En cambio si hay en el establecimiento animales recientemente adquiridos, o se comprueba que el rodeo está infectado, en la siguiente prueba tuberculínica se deberá examinar a todos los animales a partir de los 6 meses de edad. En el rodeo de carne con sistemas de producción extensiva, la propagación es lenta y la transmisión de la enfermedad de la vaca al ternero desempeña en ella un papel importante. En este tipo de rodeos, la tuberculosis bovina puede afectar a unos pocos animales sin que se difunda rápidamente entre los demás. Solamente cuando las condiciones de crianza se realiza en los sistemas estabulados o semiestabulados, la propagación de la enfermedad puede incrementarse. Como vamos a evaluar los resultados, es la pregunta que nos hacemos en la evaluación epidemiológica inicial de un establecimiento infectado. El veterinario acreditado que realiza la prueba tuberculínica en un rodeo, tiene que actuar con criterio epidemiológico, tomando en cuenta la totalidad del rodeo y no interpretar los resultados en base a los animales considerados aisladamente. Las pruebas tuberculínicas negativas no son garantía sanitaria suficiente, si se desconoce el estado sanitario del rodeo del cual provienen los animales, excepto cuando los mismos proceden de un rodeo certificado oficialmente libre, puede garantizar dicha condición. Por lo tanto, es un instrumento valioso en el control y erradicación de la tuberculosis bovina y con ese criterio deben manejarse. La interpretación de los resultados de las pruebas tuberculínicas, están debidamente detalladas en la guía de saneamiento de la tuberculosis bovina en un rodeo(Torres.,2000). Como expresamos anteriormente en la selección de la prueba tuberculínica, existen situaciones y factores que pueden impedir a la prueba diagnóstica clasificar correctamente al animal. De tal manera, deben tenerse siempre presente cuando se analizan los resultados de una prueba. Positividad a la reacción tuberculínica no es sinónimo de enfermedad. Un resultado positivo sólo indica la exposición del animal en estudio al agente en algún momento de su vida, con un tiempo mínimo de incubación, anterior al estudio como para haber desarrollado la respuesta inmune. En el momento de la prueba, el animal entonces puede encontrarse infectado en un período prodrómico, enfermo o inclusive sin desarrollo de lesiones granulomatosas. �La experiencia ha mostrado que no existe correlación entre el tamaño de la respuesta tuberculínica y la extensión de las lesiones que puedan ser encontradas en el examen post mortem del animal. Por el contrario, las reacciones suelen ser más importantes cuando la infección es reciente, pasado el período de incubación prealérgico. Con otro enfoque, algunos resultados positivos, pueden deberse a la existencia de mecanismos de defensa contra agentes microbianos distintos al M.bovis, pero que tienen semejanza antigénica con él, generando reacciones cruzadas al PPD bovino. Entre las especies de micobacterias más importantes que causan dicha sensibilidad tuberculínica, se pueden encontrar el M.avium Complex (MAC), de los cuales ninguno de los serotipos reconocidos, es considerado patógeno importante en el bovino y son capaces de causar lesiones pequeñas no progresivas y circunscriptas particularmente a los linfonódulos mesentéricos. El M.avium Subsp. Paratuberculosis es el agente causal de la enfermedad paratuberculosa en el bovino y puede ser una importante fuente de sensibilidad heteroespecífica. Otras micobacterias no patógenas, como las especies que se encuentran en las lesiones de piel (dermatitis tuberculosa) Ej: Complejo M.fortuitum, M.Kansasii, M.Phlei, pueden producir sensibilidad tuberculínica. En las etapas finales del control de la enfermedad en un rodeo o en una región, el problema de los “falsos reactores positivos” va cobrando mayor importancia. Estos animales generalmente reaccionan a la tuberculina bovina, dando respuestas pequeñas. Los agentes sensibilizantes paraespecíficos son más comunes en algunas regiones que en otras, tal es el ejemplo de los resultados obtenidos en el estudio de las micobacterias no tuberculosas en los suelos de la Provincia de La Pampa (Oriani.; 2000). En condiciones de muy baja prevalencia de infección y/o sensibilización, comprobada por micobacterias diferentes del M.bovis o del M.tuberculosis, es cuando la especificidad de la prueba adquiere particular relevancia, por lo cual se deben reducir al mínimo posible los “falsos positivos”. El origen de la sensibilización de los reactores “sospechosos” a la prueba operativa de rutina, sólo se puede dilucidar cuando el criterio epidemiológico así lo aconseje, mediante el empleo de la prueba doble cervical comparativa, utilizando PPD bovino y PPD aviar. La función de ésta prueba comparativa, es clarificar si la probabilidad de que la causa de la sensibilidad tuberculínica en un animal sospechoso, es debida a una infección con M.bovis. Sin embargo, el uso de la prueba comparativa, como prueba única en los rodeos o en regiones altamente infectados es desaconsejable, porque es más compleja, tanto en su ejecución como en su interpretación, que las pruebas cervical simple o ano caudal y, si bien tiene una mayor especificidad, su sensibilidad es marcadamente inferior y ello restringe su aplicación en las áreas infectadas de tuberculosis. �También debe considerarse que un animal puede dar un resultado negativo, aún cuando pueda estar realmente infectado, si lo reciente de la infección no ha permitido el adecuado desarrollo del proceso inmunológico, cuando un fuerte shock de stress bloquea su sistema de defensa, o cuando en bovinos, como en humanos, la sensibilidad tuberculínica tiende a disminuir a medida que las lesiones progresan y toda la sensibilidad puede desaparecer en las etapas avanzadas de la enfermedad, estado que se denomina anergia tuberculinica. Otras causas de anergia son la infección muy reciente, como ser el período de incubación, y motivos fisiológicos, como es la preñez avanzada. Las enfermedades virales, inmunodeficiencias y esteroides administrados, también disminuyen la capacidad del animal infectado para su respuesta a la tuberculina. Por último hay que recordar que la anergia puede resultar el producto de una desensibilización local y sistémica, debida a una inoculación tuberculínica. Cuando se detecta la infección tuberculosa en un rodeo, ningún animal dentro de él podrá ser considerado con certeza como no infectado por el resultado de una sola prueba tuberculínica. Dado que todos los animales de ese establecimiento han estado expuestos a un foco de infección, es muy probable que entre ellos existan, casos de infección reciente, aún en la etapa prealérgica y que sólo se los pueda identificar mediante la repetición de las pruebas. Los casos complicados de saneamiento son cuando aparecen los animales tuberculosos anérgicos, que se hallan en las últimas etapas de la enfermedad, con lesiones abiertas diseminadoras de bacilos. Una práctica que alienta la aparición de éstos animales, es la no eliminación a faena de los reactores positivos a la prueba tuberculínica. Dichos animales dejan de responder a la prueba, pero continúan propagando la enfermedad. La prueba indicará la aparición de nuevos casos de infección en el rodeo a una tasa bastante constante, ocasionando una falta en el control de la enfermedad. REFERENCIA BIBLIOGRAFICA Francis,J., Seiler,R., Wilkie,W., et al., 1978. The sensitivity and specificity of various tuberculin tests using bovine PPD and other tuberculins. Veterinary Record 103, 420435. Kantor, I., 1984. La prueba tuberculinica en el Ganado bovino. OPS/OMS. Lepper,A., Pearson,C., Corner,L., 1977. Anergy to tuberculin in beef cattle. Australian Veterinary Journal 53, 214-216. Organización Mundial de la Salud., 1968. Comité de Expertos de la OMS en Patrones Biológicos. Serie informe técnico Nº 384, pp.23-42. �Oriani,S.,Bernardelli,A., Sagardoy,M.,2000. Micobacterias no tuberculosas (MNT) en suelos de la Provincia De La Pampa (Argentina). Email. veter@teletel.com.ar Secretaría de Agricultura, Dirección Nacional de Sanidad Animal, Argentina, 1999. Plan Nacional de Control y Erradicación de la Tuberculosis Bovina. Resolución N° 115/99 SENASA/SAGPyA. Torres,P., 2000. Pruebas tuberculinicas (inoculación, lectura e interpretación). Preguntas y respuestas. SAGPyA, SENASA, OPS/OMS. WHO Expert Comité on Biological Standardization Requirements for Tuberculins., 1968. Technical Report, Series Nº 384, Geneva. � Dublin Core The Dublin Core metadata element set is common to all Omeka records, including items, files, and collections. For more information see, http://dublincore.org/documents/dces/. Title A name given to the resource Publicaciones SENASA Dublin Core The Dublin Core metadata element set is common to all Omeka records, including items, files, and collections. For more information see, http://dublincore.org/documents/dces/. Title A name given to the resource Las pruebas tuberculinas en el ganado bovino Publisher An entity responsible for making the resource available Servicio Nacional de Sanidad y Calidad Agroalimentaria Date A point or period of time associated with an event in the lifecycle of the resource 2000 Contributor An entity responsible for making contributions to the resource Programa Control de Tuberculosis Language A language of the resource Es Type The nature or genre of the resource Monografía Identifier An unambiguous reference to the resource within a given context B.S.0044 Abstract A summary of the resource. La prueba tuberculínica constituye el instrumento básico para detectar la presencia de infección tuberculosa, por lo tanto, desempeña un papel fundamental en el programa de control y erradicación de la tuberculosis bovina. El empleo de la prueba tuberculínica en el ganado bovino tiene ya una larga historia, que ha permitido acumular una gran cantidad de conocimientos y una amplia experiencia, especialmente en los países cuyos programas de control de la tuberculosis bovina han alcanzado la etapa de la erradicación. Tuberculosis https://biblioteca.senasa.gob.ar/files/original/573a2fa6b1f611c148f40ab7fd5b7a83.pdf 852728bb5be57e9eaee4b582a957e524 PDF Text Text CURSO VETERINARIOS ACREDITADOS EN SANIDAD y BIENESTAR AVIAR MÓDULO 1 SITUACIÓN ACTUAL DE LA PRODUCCIÓN AVÍCOLA ENFERMEDADES BAJO PROGRAMA ÍNDICE �1. VETERINARIO PRIVADOS ACREDITADOS EN SANIDAD Y BIENESTAR AVIAR 1.1. Objetivo de la capacitación 2. SITUACIÓN ACTUAL DE LA PRODUCCIÓN AVÍCOLA 2.1. Situación de la producción de carne aviar mundial y en la República Argentina 2.2. Características de la producción de carne aviar en la República Argentina 2.3. Situación de la producción de huevo mundial y en la República Argentina 2.4. Características de la producción de huevo en la República Argentina 3. ENFERMEDADES BAJO PROGRAMA 3.1. Influenza aviar 3.2. Enfermedad de Newcastle (ENC) 3.3. Salmonelosis 3.4. Micoplasmosis 3.5. Otras Enfermedades 1. VETERINARIO PRIVADOS ACREDITADOS EN SANIDAD Y BIENESTAR AVIAR 2 �Según lo establece la Resolución SENASA N° 1-E/2018, se consideran como Veterinario privado acreditado a todas aquellas personas que hayan egresado de universidades reconocidas por el MINISTERIO DE EDUCACIÓN de la Nación, con título veterinario habilitante, acreditados y autorizados por este Organismo, para realizar las tareas inherentes a los distintos Programas Sanitarios que autorice la Dirección Nacional de Sanidad Animal. 1.1. Objetivo de la capacitación La acreditación de veterinarios privados del sector avícola tiene como objeto mantener la actualización permanente, en relación a conceptos técnicos, aspectos sanitarios de las principales enfermedades que afectan a la producción y la importancia de la notificación de sospechas de enfermedad. Si bien, cabe destacar que en el sector avícola los profesionales veterinarios son especialistas y de dedicación exclusiva a la especie, resulta imprescindible formar y mantener a los profesionales acreditados con un nivel elevado de conocimiento para que puedan tomar las medidas correctas e identificar las principales enfermedades aviares que rigen el mercado mundial, además es fundamental ejercer el cumplimiento de las medidas de bioseguridad, higiene y manejo así como el cumplimiento de los muestreos programados por SENASA. 2. SITUACIÓN ACTUAL DE LA PRODUCCIÓN AVÍCOLA 2.1. Situación de la producción de carne aviar mundial y en la República Argentina La evolución del sector de carne aviar ha demostrado una dinámica muy interesante ya que en 1950 se comercializaban las aves vivas, hacia 1960 las aves con garras y cabeza, llegando a la década del 80 donde se comercializaba la carne de ave eviscerada fresca, con menudos y sin garras ni cabeza. 3 �En la década del 90 comenzó la comercialización de carne de pollo trozada fresca y congelada, algo que vemos actualmente, junto con lo descripto en la década del 80, aparecieron los cortes deshuesados cocidos congelados, siendo un segmento importante en la comercialización de esta carne. En la última década la carne de pollo es el producto que presentó el mayor aumento de demanda en el mercado mundial de carnes. La carne aviar representa el 45% de toda la carne comercializada mundialmente. El crecimiento de la demanda por carne de aves continuará liderando el aumento en el consumo de carnes, debido a su estatus como la fuente más económica y más accesible de proteínas de origen animal. Sin embargo, mientras en algunos países la disminución en los costos de alimentación ha sido un estímulo importante en el aumento de la producción, en otros casos, las enfermedades, principalmente la influenza aviar, han limitado su crecimiento. Los principales países productores son EEUU, China y Brasil, en tanto Brasil y EEUU, lideran las exportaciones. Por su parte, Japón, Arabia Saudita, UE, México y Rusia son los principales importadores. La República Argentina mantiene un espacio en el mercado internacional ocupando el 8º lugar como productor y 8º como exportador. La faena nacional de aves en establecimientos habilitados por el SENASA alcanza cerca de 722 millones de cabezas anuales, y considerando la faena provincial y municipal se calculan aproximadamente 800 millones de cabezas. Su distribución porcentual por provincias es: Entre Ríos 50,96 %, Buenos Aires 34,83%, Córdoba 4,63%, Santa Fe 4,61%, Rio Negro 3,31% y el resto del país con el 1,66 %. 4 �El consumo ha experimentado un importante incremento desde 2003 (20 kg. per cápita) llegando un consumo per cápita en el año 2019 de 43,33 Kg/ persona/año. Diversas razones motivaron el aumento del consumo. Por un lado, la reducción del precio al consumidor y su relación con el precio de la carne vacuna se combinaron favorablemente otorgándole mayor competitividad. La significativa disminución del precio fue el resultado de la reducción del costo industrial -vía incorporación de tecnología-, la fuerte integración de la cadena y la incidencia que tuvo la apertura del comercio exterior. Por otro lado, contribuyeron a aumentar el consumo las cualidades dietéticas y nutricionales de la carne aviar, sumadas al desarrollo de nuevos productos semi-listos o preparados que respondieron a los cambios en los hábitos de vida del consumidor. Durante el 2019, se exportaron a 60 países. De acuerdo con el volumen, las exportaciones se distribuyeron principalmente entre los siguientes países: 26% China, 11% Sudáfrica, 7% Chile, 3% Hong Kong, 0.2% Alemania, el 52% restante corresponde a otros países como Omán, Angola, Emiratos Árabes, Bélgica, Vietnam, Singapur, Cuba, etc. 2.2. Características de la producción de carne aviar en la República Argentina El ciclo avícola productivo de carne (línea pesada) comienza con la importación de reproductores abuelos de un día de edad de países cuyos Certificados Veterinario Internacional (CVI) son acordados previamente. Actualmente en el país hay 4 líneas genéticas de abuelos (ROSS, COBB, ARBOR ACRES y HUBBART), comercializado por cinco firmas, las cuales obtienen sus reproductores padres y a su vez le comercializan a más de 70 empresas. 5 �En la Argentina, la producción de pollos parrilleros se realiza, en un 98%, mediante sistemas de producción integrados. Estos sistemas responden a un modelo de integración vertical de procesos. El grado de integración es variable entre empresas según las etapas de producción que controlan directamente (reproducción de abuelos y padres, incubación, engorde, fabricación de alimentos, faena de aves, procesado, etc.). Las empresas avícolas, también denominadas “empresas integradoras”, realizan la etapa de engorde en granjas propias o contratan el servicio de productores granjeros. Esta última situación es la más implementada, en la cual la empresa aporta las aves, el servicio veterinario, el alimento, la faena y comercialización de los productos y el granjero recibe una remuneración, por ave faenada, por el aporte de las instalaciones, la mano de obra, la electricidad y la calefacción. Un pequeño porcentaje de la producción de pollos parrilleros se lleva a cabo a través de productores independientes, que realizan las etapas de cría y engorde y la adquisición de insumos por cuenta propia. El Centro de Empresas Procesadoras Avícolas (CEPA) agrupa a los productores argentinos de carne de aves y representa a 32 empresas, de las cuales 27 son exportadores. Se proyecta de acá al 2025 un crecimiento de alrededor del 30% en las exportaciones de pollo a nivel mundial, siendo Asia del Este, la Unión Europea, Arabia Saudita, México, Sub-Sahara Africana, Norte y Medio Este Africano los países y regiones que más van a crecer. El sector enfrenta permanentes cambios en el escenario global, donde muchos de los países importadores se están reconvirtiendo en productores de pollo teniendo como eje la seguridad y soberanía alimentaria. 6 �2.3. Situación de la producción de huevo mundial y en la República Argentina La producción mundial de huevos también ha mostrado un dinamismo notable en las últimas décadas. Este crecimiento no ha sido homogéneo, ya que mientras que en la década de los 90 los países desarrollados contribuían con 52% de la producción global, en 2015 ya los países menos desarrollados o emergentes aportaban más del 60%, siendo China la principal causa de este cambio. Dentro de este escenario, Asia contribuye con 62,1% de la producción global y Europa, con 14,3%, mientras que Centro y Sudamérica aportan el 9,8%. En Sudamérica la producción ha aumentado exponencialmente, donde Brasil lidera la producción de huevos en la región, con 47,4% del total. Lo sigue Colombia, con 14,5% de participación, y más atrás se ubican Argentina, Perú y Chile. Estos cinco países abarcan el 87% de la producción de la región. El 97% va a consumo interno y el 3% restante se exporta a más de 56 países habilitados. El consumo ha experimentado un importante y sostenido incremento desde 2002 con 129 a 284 unidades per cápita en 2019, ubicando a la Argentina como el 5º consumidor de huevos del mundo. 2.4. Características de la producción de huevo en la República Argentina El ciclo avícola productivo de huevo (línea liviana), comienza con la importación de reproductores padres de un día de edad de países cuyos certificados (CVI) sean acordados previamente, principalmente desde Brasil, 7 �y dependiendo de la situación sanitaria por influenza aviar, desde España y Alemania. A diferencia de la producción de pollos, el sistema de producción de huevos no se halla integrado verticalmente. Los productores de huevos adquieren los insumos y realizan la venta del producto por cuenta propia. La compra de las gallinas ponedoras, el alimento, los aspectos sanitarios, el transporte de insumos, las instalaciones y la mano de obra son gerenciadas por el productor. La etapa de recría se realiza en galpones a piso o a jaula y la etapa de postura es llevada a cabo en su mayoría en galpones con jaulas. Aproximadamente el 90% de los productores compran la pollita bb y realizan la etapa de recría y producción en la misma granja. La producción de huevo se concentra principalmente en las provincias de Buenos Aires 39.3%, Entre Ríos 26.7%, Córdoba 8.3% y Mendoza 7.6%. Las empresas productoras de huevos son agrupadas en la Cámara Argentina de Productores Avícolas (CAPIA) que agrupa a más de 400 empresas a lo largo del país. Representa actualmente el 80% del sector y tiene como principal misión auspiciar el desarrollo y consolidar la industria avícola. La avicultura de postura en la Argentina tiene mucho para ofrecer, posee un potencial enorme, el cual depende exclusivamente de los actores que la componen para fijar las metas a las que quiera llegar. 3. ENFERMEDADES BAJO PROGRAMA El Programa de Sanidad Aviar tiene como objetivo disminuir en forma significativa el impacto negativo de las enfermedades de las aves 8 �domésticas que afectan la producción, comercialización y salud pública del país. En base a este criterio, se determinan las denominadas “Enfermedades bajo programa”. A continuación, se detallarán los componentes más relevantes de estas enfermedades (etiología, patogenia, epidemiología, cuadro clínico), la situación país y normativa relacionada, lo cual va a permitir comprender las actividades llevadas a cabo por el Programa, detalladas en los siguientes módulos. 3.1. El virus de la influenza aviar pertenece a la familia Orthomyxoviridae, es un virus RNA segmentado y envuelto. De acuerdo con sus nucleoproteínas y proteínas matrices, se clasifican en 3 tipos A, B y C. A su vez, atendiendo a sus 2 antígenos de superficie Hemoaglutinina (H) y Neuraminidasa (N), se subclasifican en subtipos. Estos virus exhiben una gran variabilidad antigénica y capacidad de mutación, así como un amplio espectro de virulencia. Las variaciones de los antígenos principales H y N son las causas de los cambios en la epizootiología de la influenza tipo A. Los virus de la influenza aislados de aves pertenecen sin excepción al tipo A, y si bien encontramos subtipos de H1 a H18 y N1 a N11 (198 combinaciones posibles), en las aves están presentes del H1 al H16 y N1 al N9, siendo el resto encontrados recientemente en murciélagos (H17-H18 y N10- N11). Entre los virus de la influenza de las aves y de los mamíferos existen relaciones de parentesco antigénico. La OIE define la influenza aviar de declaración obligatoria como “una infección de aves de corral, causada por cualquier virus de influenza tipo A perteneciente al subtipo H5 o H7 o por cualquier virus de influenza aviar con un índice de patogenicidad intravenosa (IPIV) superior a 1,2 en pollos 9 �de 6 semanas de edad, o que cause una mortalidad del 75% por lo menos, en pollos de 4 a 8 semanas de edad infectados por vía intravenosa” Cabe aclarar esta definición, ya que solo son de denuncia obligatoria los casos en aves de corral (en aves industriales o traspatio, pero NO en silvestres) y con aislamiento o detección viral (con aislamiento o detección por RT PCR, NO solo serología positiva). Es decir, que “la denuncia a la OIE, y consecuente pérdida del estatus del país se da si el caso ocurre en aves de corral y hay detección/aislamiento viral”. Históricamente, los problemas más severos de influenza aviar han sido causados por virus de los subtipos H5 y H7, los que inicialmente pueden presentarse como de baja patogenicidad y después, por mutación en su hemoaglutinina, se transforman en virus de alta patogenicidad. En este siglo, los brotes más importantes de IA han sido producidos por virus de los subtipos de H5N1, H5N2, H5N3, H5N8, H5N9, H7N1, H7N3, H7N4 y H7N7. Los virus pertenecientes al subtipo H9, se han presentado en ocasiones con mediana patogenicidad. Es una enfermedad altamente contagiosa, que tiene como principales huéspedes a gallinas, pollos y pavos, aunque es probable que todas las especies aviares sean susceptibles a la infección. La importancia epidemiológica de las aves silvestres radica en que las mismas pueden portar y distribuir el virus sin provocar en ellos enfermedades. Corresponde dar particular importancia a las aves acuáticas silvestres y, especialmente a aves del orden anseriforme (patos, gansos y cisnes), en cuyo tracto digestivo se multiplican estos virus, para ser expulsados con las heces y difundirse ampliamente en el medio ambiente acuático. También los patos domésticos pueden estar infectados en forma inaparente con virus de la influenza, y contagiar a otras especies de aves domésticas. 10 �Los signos y síntomas son muy variables dependiendo de la patogenicidad del virus. El virus de influenza de baja patogenicidad (IABP) causa infecciones entéricas o respiratorias, produciendo una enfermedad leve o moderada. Los signos de la enfermedad pueden ser plumaje erizado, reducción de la producción de huevos, o trastornos leves en el sistema respiratorio y, generalmente, cursan sin la manifestación de lesiones graves y características. El virus de influenza de alta patogenicidad (IAAP) causa infecciones sistémicas, produciendo enfermedad grave. Al tratarse de una enfermedad hiperaguda, se suele registrar una alta mortandad con ausencia casi total de signos o lesiones. En la República Argentina la influenza aviar es de declaración obligatoria, es una enfermedad exótica, de la cual no se han detectado casos ni aislado virus hasta la fecha. Desde el año 1998, el SENASA ha implementado acciones y actividades dirigidas a la prevención de la influenza aviar (IA). Una de las primeras medidas que se adoptaron fue la puesta en marcha de las técnicas diagnósticas por serología para determinación de anticuerpos contra influenza tipo A. Estas medidas obedecieron en un comienzo, más al propósito de ofrecer garantías sanitarias a los países importadores de productos avícolas argentinos, que a una preocupación por el posible ingreso de esta enfermedad, ya que hasta el momento, la influenza aviar era una enfermedad de presentación esporádica en algunos países del mundo, en su mayoría del hemisferio norte. 11 �Ante la extraordinaria difusión geográfica, en particular de la cepa A/H5N1 del virus de IA, el SENASA desarrolló e implementó diversas acciones de prevención contra la enfermedad. El país cuenta con la Resolución SENASA N° 73/2010, que ha adoptado la definición de la enfermedad acorde al Capítulo correspondiente de la OIE y obliga su notificación, vigilancia y eventual control y erradicación. Anualmente, se implementa un plan de prevención que incluye el control de las importaciones, la vigilancia epidemiológica, el control de la bioseguridad de establecimientos avícolas comerciales, la capacitación a agentes del organismo y la difusión e información a actores de la actividad avícola, entre otras actividades programadas. Frente a la aparición de sospechas o casos de estas enfermedades, los agentes del SENASA implementan actividades relacionadas a la investigación inmediata de la sospecha o eventual control y erradicación. 3.2. La enfermedad de Newcastle (ENC) es considerada en todo el mundo como una de las enfermedades más importantes en aves de corral debido a la alta mortalidad que puede producir y a las repercusiones económicas que derivan de las restricciones de comercio y embargos en las zonas y países donde se han producido brotes. Es una infección vírica aviar, producida por un virus RNA monocatenario de la familia Paramyxoviridae, subfamilia Paramyxovirinae. De los 9 serotipos existentes, es el paramixovirus-1 (PMV-1) el denominado Enfermedad de Newcastle, siendo de declaración obligatoria cuando “su índice de patogenicidad intracerebral (IPIC) es superior a 0,7 en pollitos (Gallus gallus) de un día de edad o se ha demostrado (directamente o por deducción) la presencia de múltiples aminoácidos básicos en el virus, en el extremo C-terminal de la proteína F2 y un residuo de fenilalanina en la posición 117, la cual está en el extremo N-terminal de la proteína F1. Por 12 �«múltiples aminoácidos» se entiende la presencia de al menos tres residuos de arginina o lisina entre las posiciones 113 y 116. La imposibilidad de demostrar la presencia de este modelo característico de residuos de aminoácidos exigirá la caracterización del virus aislado mediante una prueba de determinación del IPIC”. (Organización Mundial de Sanidad Animal. OIE, 2014). La Enfermedad de Newcastle (ENC) fue descubierta en Newcastle-uponTyne, Inglaterra en 1926 (Doyle) y hoy es endémica de muchos países. El virus de la ENC se ha detectado en más de 250 especies de aves, en 27 de los 50 órdenes de aves que existen. Todas las aves parecen ser susceptibles a la infección, aunque el grado de la enfermedad varía según la especie y en función de la cepa viral. Los miembros del orden Phasianiformes (aves gallináceas), en particular los pollos y gallinas, son altamente susceptibles a la ENC, según los estudios realizados a nivel experimental y en observaciones a campo. Los patos y los gansos son considerados potenciales reservorios del virus de la enfermedad de Newcastle (VEN) y presentan generalmente infecciones inaparentes, sin embargo son capaces de albergar el virus y actuar como diseminadores. Los VEN encontrados comúnmente en aves silvestres, acuáticas silvestres migratorias y otras aves acuáticas, generalmente son de baja patogenicidad para los pollos, similares a los virus clasificados como entéricos asintomáticos o lentogénicos. En general, las aves silvestres muestran pocos o ningún síntoma, incluso tras ser infectadas con cepas virulentas del VEN. La importancia que tienen las aves acuáticas es que pueden actuar como reservorios del VEN y como fuente de infección en aves de corral, pudiendo originar, eventualmente, brotes de EN en estas especies. Muy 13 �esporádicamente cepas patógenas son encontradas en aves silvestres que pueden jugar un papel de mayor importancia en la difusión del VEN una vez que la infección se ha producido en aves de corral. Las palomas (orden Columbiformes) son muy susceptibles a la ENC y los virus lentogénicos o mesogénicos del VEN son endémicos en sus poblaciones. Pueden transmitir el VEN a las aves domésticas. Las vías más frecuentes de transmisión del VEN son el contacto directo de aves, o el contacto indirecto con alimentos contaminados, subproductos contaminados, agua, transporte por personas y otros fómites. Como se indicó anteriormente, la infección es normalmente transmitida por contacto directo de aves enfermas y también por aves sin síntomas clínicos que poseen el virus. Las aves vacunadas que están clínicamente sanas también pueden excretar el virus después de estar expuestas. Existen numerosas vías de introducción potencial del VEN en un país o un área libre de enfermedad, éstas incluyen: el comercio legal de aves domésticas, el comercio legal de aves exóticas, el comercio legal de productos avícolas (huevos, carne y derivados), la migración de aves silvestres, la transmisión mecánica (movimientos de personas y objetos contaminados), la vía aerógena, a través de vacunas contaminadas, por un acto bioterrorista y mediante el comercio ilegal de aves y subproductos avícolas. En la República Argentina, la Enfermedad de Newcastle fue diagnosticada por primera vez en el año 1961, estando presente desde ese año hasta 1987 en el que se registró el último foco en pollos parrilleros, del Departamento Uruguay de la Provincia de Entre Ríos. Actualmente, la República Argentina es un país libre de enfermedad de Newcastle. 14 �Como contención se utilizó el sacrificio sanitario, la vacunación en anillo y la posterior vigilancia epidemiológica. Desde entonces y hasta el presente no se han registrado nuevos casos de la enfermedad debido, fundamentalmente, a los estrictos programas de vacunación que se efectúan en todo el país y a la eficacia de las vacunas utilizadas. Durante los años 1996 y 1997, se realizó un estudio retrospectivo sobre la enfermedad de Newcastle en la Argentina, concluyendo el mismo con la declaración de “país libre de enfermedad de Newcastle” por medio de la Resolución N° 446/1997 de la ex Secretaría de Agricultura, Ganadería y Pesca de la Nación, la cual fue comunicada a la Organización Mundial de Sanidad Animal (OIE) en ese mismo año. La República Argentina ha sido reconocida oficialmente como país libre de enfermedad de Newcastle velogénico viscerotrópico por la Unión Europea, Canadá, Chile y los Estados Unidos. El SENASA ha establecido estrictas normas de control y de vigilancia epidemiológica activa y pasiva implementándolas en forma permanente para la enfermedad en todo el país, tendientes a salvaguardar la situación epidemiológica alcanzada mediante la Resolución Nº 683 del 31 de Octubre de 1996 del ex - Servicio Nacional de Sanidad Animal. La principal herramienta de prevención de la enfermedad es la ejecución de un estricto programa de vacunación en todo el país. Cabe aclarar que la vacunación contra enfermedad de Newcastle en aves domésticas es de carácter voluntario y se realiza como parte de los programas de vacunación de rutina a cargo de las empresas privadas. Gran parte de los productores optan por vacunar contra la enfermedad en forma preventiva. Los planes de vacunación abarcan las aves en producción industrial o intensiva. Las explotaciones de tipo doméstico (aves de 15 �traspatio) de gallináceas no vacunan, excepto cuando las aves de raza u ornamentales asisten a ferias y exposiciones rurales. Sin embargo, cabe aclarar que la Resolución de la ex SAGPyA N° 723/2000, establece la vacunación obligatoria de las palomas de raza mensajera en todo el territorio nacional contra la enfermedad de Newcastle, ya que son una de las especies aviares de mayor susceptibilidad y resultan de alto riesgo para la diseminación de esta enfermedad, ya que la actividad que desarrollan involucra un puente de contacto entre aves susceptibles (silvestres y comerciales). Actualmente, la cobertura vacunal alcanza el 85 % de la población avícola comercial del país. Esto se establece por la relación de vacunas comercializadas por año, en relación a la cantidad de aves existentes durante ese mismo año y la cantidad de dosis que se administran. Por lo general, los lotes de pollos de engorde reciben una dosis (o eventualmente dos dosis) de vacunas vivas y/o inactivadas. Las aves reproductoras y las gallinas de postura de huevo comercial son vacunadas durante la cría y recría con un mínimo de 3 a 4 aplicaciones de vacuna a virus vivo atenuado, seguida generalmente por una vacuna aplicada antes de la producción. En algunas compañías se utilizan vacunas durante la fase de producción (a partir de la semana 19 de vida y cada 90 días). La legislación vigente autoriza para su uso vacunas elaboradas a partir de cepas lentogénicas exclusivamente, con un índice de patogenicidad intracerebral (IPIC) inferior a 0.4. El uso de cepas mesogénica y velogénicas (viscerotrópicas o neurotrópicas) para la elaboración de vacunas se encuentra prohibido. La Resolución Senasa N° 130 del 16 de marzo de 2021, establece las características que deben reunir las vacunas contra la enfermedad de Newcastle 16 �en la cual se autoriza la importación y utilización de vacunas vivas e inactivadas contra la Enfermedad de Newcastle elaboradas con cepas lentogénicas y/o recombinantes con fracción Newcastle. Esta norma abroga a la Resolución Senasa N° 1086/2019. Asimismo, se autoriza a los laboratorios nacionales y multinacionales a elaborar y/o comercializar vacunas a virus vivo e inactivado contra la ENC utilizando exclusivamente cepas lentogénicas con un Índice de Patogenicidad Intracerebral (IPIC) igual o menor a CERO COMA SIETE (0,7) en la elaboración. Dentro de las vacunas a virus vivo, son usadas principalmente las elaboradas con cepas lentogénicas tipo B1 (B1 y La Sota). También están aprobadas, aunque de menor utilización, las cepas: Clon 30, VG/Georgia, Ulster, C2, Ulster y PHY LMV 42. Para esta enfermedad, se implementa un monitoreo anualmente programado que incluye la vigilancia epidemiológica (activa y pasiva) dirigida especialmente a aves de traspatio no vacunadas. 3.3. La salmonelosis es una de las enfermedades infecciosas más comunes en el mundo, que afecta tanto a seres humanos como animales. Es causada por dos especies de Salmonella (S. entérica y S. bongori). El género Salmonella está incluido dentro de la familia enterobacteriaceae y son bacilos gran negativos lactosa y urea negativas, móviles o inmóviles. La especie S. entérica se divide a su vez en 6 subespecies, siendo la subespecie entérica la más importante. Las cepas de Salmonella a su vez se clasifican en más de 2.000 serovariedades, según la clasificación KaufmanWhite, basada en la diversidad de los siguientes antígenos: lipopolisacáridos (LPS) que se corresponden con los antígenos somáticos O y las proteínas flagelares, correspondientes a los antígenos H. 17 �Algunos serovares son específicos de especie, como S. gallinarum -que a su vez incluye dos biovares, S. Gallinarum biovar gallinarum y biovar pullorumy es el único serovar inmóvil. El biovar gallinarum (tifosis aviar) afecta a aves jóvenes, caracterizándose por una diarrea verdosa y, en aves adultas, la caída significativa de la producción. El biovar pullorum (pullororsis) afecta a aves jóvenes causando una diarrea blanca, sin embargo las aves adultas cursan generalmente como portadores asintomáticos. Otros serovares pueden afectar a distintos huéspedes, recibiendo el nombre de salmonellas paratíficas o paratifoideas. Los serovares S. Typhimurium, S. Enteritidis y S. Heidelberg son ejemplos de salmonellas paratíficas, se caracterizan por poseer la capacidad de afectar a más de una especie. La infección con serovariedades paratíficas de Salmonella pueden cursar de manera subclínica, dificultando su detección. La capacidad de Salmonella de sobrevivir y multiplicarse en macrófagos, evadiendo la respuesta humoral, les permite persistir en el hospedador, dando lugar a huéspedes asintomáticos. Las distintas serovariedades presentan características diferenciales en cuanto a su capacidad de colonización y virulencia. La presencia de una serovariedad en el tracto digestivo de las aves estaría excluyendo la posibilidad de que otra serovariedad relacionada ocupe ese nicho, estableciéndose de esta manera una competencia entre serovariedades dentro de cada individuo. En un estudio llevado a cabo con aislamientos de Salmonella de origen humano, se demostró que la capacidad de invasión también difiere entre las serovariedades, siendo S. Enteritidis y S. Heidelberg las que presentaron mayor capacidad invasiva (Jones et al, 2008). 18 �Durante las últimas décadas y a nivel mundial, ha habido un aumento de enfermedades zoonóticas transmitidas por alimentos procesados tales como la Salmonelosis. El control de esta enfermedad es actualmente una de las mayores preocupaciones de los sectores de sanidad animal y salud pública. Las Salmonellas paratíficas (ej. S. entérica var. Enteritidis y var. Typhimurium) son las principales causas de gastroenteritis bacterianas en humanos a nivel mundial –especialmente en países desarrollados– y se asocian frecuentemente al consumo de productos avícolas contaminados. Su presencia en huevos y carne de aves afecta la seguridad de los alimentos y constituye una barrera sanitaria que limita la exportación. La prevención y el control de estos patógenos requiere, por un lado, comprender sus complejos ciclos de transmisión y, por el otro, implementar actividades de vigilancia epidemiológica para la identificación de casos. A fin de garantizar la inocuidad de los alimentos de origen aviar, se debe controlar la introducción y multiplicación de estos microorganismos a lo largo de la cadena productiva avícola, es decir “desde la granja a la mesa”, en todos los procesos que suponen producción, transformación, distribución y consumo. Por tal razón, producir alimentos avícolas libres de estos patógenos y en particular de las serovariedades que producen ETAs en el hombre, es una prioridad del SENASA, la cual se traduce en menores costos para las empresas avícolas y en un escenario más favorable para la comercialización de estos alimentos, máxime teniendo en cuenta que las barreras sanitarias imperan sobre las arancelarias. Asimismo, el Código Sanitario para los Animales Terrestres de la Organización Mundial de Sanidad Animal (OIE) en su capítulo 6.5 recomienda medidas para la prevención, la detección y el control de las infecciones de aves de corral por Salmonella, complementando a su vez al 19 �Código de Prácticas de Higiene para la Carne y al Código de Prácticas de Higiene para los Huevos y Ovoproductos del Codex Alimentarius, considerando que una estrategia de reducción de los organismos patógenos en las granjas, es la primera etapa del proceso que contribuirá a reducir la presencia de agentes patógenos transmisibles por los alimentos en el producto avícola final. Ante esta situación, entre los años 2009 y 2013, se ha realizado un muestreo en las granjas avícolas de pollos de engorde y gallinas de postura, con el objetivo de estimar la prevalencia de Salmonellas no específicas de especie y con importancia en Salud Pública, posibles contaminantes del producto avícola en la etapa final de su procesado. Los resultados obtenidos permitieron dar sustento a la intervención del SENASA, elaborando la Resolución SENASA N° 86/2016 que puso en marcha el “Programa de vigilancia y control de la contaminación por Salmonellas sp en granjas avícolas comerciales”, con el objetivo de obtener una reducción continua en la prevalencia de Salmonellas paratíficas en las aves y en el medio ambiente de dichas granjas, con el fin de proteger la salud del patrimonio avícola nacional y procurar la seguridad alimentaria e inocuidad de los alimentos de origen aviar. Cabe aclarar que las Salmonellas bajo programa son S. Enteritidis, S. Typhimurium y S. Heidelberg. RESUMEN DE LAS ACTIVIDADES DEL PROGRAMA DE CONTROL DE SALMONELLA EN GRANJAS COMERCIALES. 20 �El muestreo está a cargo del sector privado, el veterinario acreditado es el responsable de la toma de muestra y posterior seguimiento. Las muestras obtenidas deben ser enviadas a los laboratorios que trabajan en adhesión con el Plan Nacional de Sanidad Avícola (PNSA), para la realización del diagnóstico bacteriológico (determinación de Salmonella spp.) Podrán encontrar los mismos en el siguiente link: https://www.argentina.gob.ar/sites/default/files/2019lista_de_laboratorios_adheridos_al_programa_de_sanidad_aviar.pdf En aquellos casos en los que se determine la presencia de Salmonella spp., se procederá a la tipificación para determinar la serovariedad mediante la tipificación serológica o por pruebas moleculares (PCR). Se considera granja positiva cuando se detecte la presencia de Salmonella ser. Enteritidis, S. ser. Typhimurium y/o S. ser. Heidelberg (distintas de las cepas vacunales) en el ambiente. En este caso, el veterinario acreditado del establecimiento, el responsable técnico del laboratorio, o bien, el Programa de Sanidad Aviar, comunicarán inmediatamente al veterinario oficial local con jurisdicción en el establecimiento en cuestión. 21 �En las granjas de Pollo de engorde se procederá a dar de baja la autogestión del establecimiento, se permitirá la faena del lote (en caso de estar en granja) y se bloqueará el ingreso de animales, hasta tanto se regularice la situación. El veterinario acreditado debe presentar un descargo a la oficina local de las medidas que implementará para solucionar dicha contaminación. Una vez presentado el mismo, el veterinario de la Oficina local procederá a inspeccionar la granja, a fin de corroborar el cumplimiento de las medidas dispuestas mediante acta de constatación y planilla de inspección y podrá identificar las medidas que considere insuficientes y/o deficientes. Una vez cumplimentado se permitirá el ingreso de aves y el alta la autogestión en caso de considerarlo pertinente. En las granjas de gallinas de huevos para consumo se procederá a dar de baja la autogestión del establecimiento y se bloqueará el ingreso de animales, hasta tanto se regularice la situación. El veterinario acreditado debe presentar un descargo a la oficina local de las medidas que implementará para solucionar dicha contaminación. Una vez presentado el mismo, el veterinario de la Oficina local procederá a inspeccionar la granja, a fin de corroborar el cumplimiento de las medidas dispuestas mediante acta de constatación y planilla de inspección e identificar las medidas que considere insuficientes y/o deficientes. Las medidas implementadas pueden ser respaldadas con el uso de vacunas vivas y/o inactivadas contra S. Gallinarum y/o S. Enteritidis u otra serovariedad oportunamente aprobadas por el SENASA, a fin de alcanzar una reducción efectiva en la diseminación de Salmonellas y/o inhibición de su crecimiento en huevos. 22 �Una vez cumplimentado se permitirá el ingreso de aves y el alta la autogestión en caso de considerarlo pertinente. Para una mayor comprensión, el Programa de Sanidad Aviar ha elaborado un Manual de procedimientos, el mismo se encuentra como material complementario así también en el siguiente link: https://www.argentina.gob.ar/sites/default/files/ 2._manual_de_procedimientos_operativos_vigilancia_y_control_de_salmonell a_spp._en_granjas_avicolas_comerciales_res._senasa_ndeg_86.2016._version_2018_0.pdf En aves reproductoras, la vigilancia y control de Salmonellas tíficas (Salmonella Gallinarum, S. Pullorum), paratíficas (S. Enteritidis S. Typhimurium y S. Heidelberg) y micoplasmosis (Micoplasma Gallisepticum y Micoplasma Sinoviae), se llevan a cabo en forma obligatoria desde el año 2002, en el marco del Plan Nacional de Sanidad Avícola, cuya legislación es la Resolución SENASA Nº 882 Esta vigilancia que también la realiza el sector privado mediante los laboratorios adheridos, y a su vez es fiscalizado y auditado anualmente por el Organismo. 3.4. Micoplasmosis cabe mencionar que los agentes causales son microorganismos que, por su tamaño, se encuentran entre las bacterias y los virus. El Mycoplasma gallisepticum es responsable de la enfermedad respiratoria crónica y el Mycoplasma sinoviae de la sinovitis infecciosa. Esta enfermedad esta enmarcada bajo la Resolución SENASA 882/2002, bajo un criterio de coparticipación del sector privado y el sector oficial. Las normas técnicas del plan establecen la cantidad de muestras, la frecuencia de los muestreos, el tipo de muestras para cada categoría y las pruebas de laboratorio que se deben emplear para cada determinación. En 23 �forma ordinaria, las empresas remiten las muestras extraídas por el veterinario acreditado de la empresa a laboratorios adheridos al Plan, los cuales se encuentran autorizados por SENASA para procesar las muestras correspondientes al mismo. La base técnica utilizada para el diseño de este programa es el control de las micoplasmosis y salmonelosis aviares, en base al remplazo de planteles contaminados por planteles libres y la aplicación de medidas de bioseguridad en las cabañas de reproducción y plantas de incubación. Para una mayor comprensión, el Programa de Sanidad Aviar ha elaborado un Manual de procedimientos en relación a la normativa 882/2002, el mismo se encuentra como material complementario así también en el siguiente link: https://www.argentina.gob.ar/sites/default/files/ 1._manual_de_procedimientos_operativos_programa_de_control_de_micopla smosis_y_salmonelosis_en_aves_reproductoras_res._senasa_ndeg_882.2002-version_2018.pdf Con el objetivo de verificar el cumplimiento del Plan Nacional de Sanidad Avícola (PNSA), el SENASA realiza anualmente auditorias en plantas de incubación (PI) de huevos fértiles. En las mismas se toman muestras de dos lotes de los nacimientos del día previsto de visita, en caso de ser plantas de baja producción se podrá tomar muestra de un solo lote. De cada lote se recogerán 20 huevos picados no nacidos desechados dentro del cascarón, los que serán colocados dentro de una bolsa contenedora y enviados al laboratorio central del SENASA para su diagnóstico. 3.5. Otras Enfermedades: Si bien hay otras enfermedades importantes en la producción avícola nacional, el SENASA no las incluye dentro de su programa pero actúa o interviene en casos de epizootias, colaborando con el sector privado para su control. 24 �La Laringotraquítis Infecciosa (LTI) es una enfermedad endémica y de presentación esporádica, afectando principalmente a pollos de engorde. Para su intervención cuando así lo requiera, el SENASA elaboró la Resolución SENASA N° 333 del 2015 que contiene el plan de contingencia de dicha enfermedad. La Bronquitis Infecciosa (BI) también es otra de las principales enfermedades que se incrementan año tras año y el SENASA participa en su control. A nivel sanitario, estas y otras enfermedades aviares tales como la enfermedad de Gumboro (bursitis infecciosa), cólera aviar, enfermedad de Marek, viruela aviar, anemia infecciosa, síndrome de caída de la postura, encefalomielitis aviar, infecciones por adenovirus, Micoplasmosis aviar (M. gallisepticum y M. synoviae) y Tifosis aviar son enfermedades endémicas y de aparición esporádica en las aves de producción industrial, controladas con el uso de vacunas aprobadas por el SENASA pero de aplicación voluntaria por parte de los empresas productoras. Es importante destacar que la mejor herramienta para controlar y/o evitar el ingreso en una explotación avícola de agentes patógenos, es el cumplimiento de todas las medidas de bioseguridad y la aplicación de las buenas prácticas de producción y de manufactura. Asimismo, hay que hacer hincapié en el concepto que, en la patología aviar moderna, es hablar de “enfermedades multicausales” o multifactoriales: durante los meses de invierno aumentan los problemas de manejo de temperatura y ventilación en los galpones de crianza, se incrementa la concentración de amoníaco y por lo tanto, existe una situación de estrés ambiental que desencadena en cuadros respiratorios, donde los mismos virus vacunales pueden desencadenar una enfermedad multicausal. 25 � Dublin Core The Dublin Core metadata element set is common to all Omeka records, including items, files, and collections. For more information see, http://dublincore.org/documents/dces/. Title A name given to the resource Publicaciones SENASA Dublin Core The Dublin Core metadata element set is common to all Omeka records, including items, files, and collections. For more information see, http://dublincore.org/documents/dces/. Title A name given to the resource Módulo 1: Situación actual de la producción avícola: Enfermedades bajo programa. Publisher An entity responsible for making the resource available Servicio Nacional de Sanidad y Calidad Agroalimentaria Date A point or period of time associated with an event in the lifecycle of the resource [201?] Contributor An entity responsible for making contributions to the resource Coordinación Técnica de Capacitación y Desarrollo y Carrera del personal Language A language of the resource Es Type The nature or genre of the resource Monografía Identifier An unambiguous reference to the resource within a given context B.S.0105 Abstract A summary of the resource. El presente módulo trata sobre la situación actual de la producción avícola, las enfermedades bajo programa. Table Of Contents A list of subunits of the resource. 1. VETERINARIO PRIVADOS ACREDITADOS EN SANIDAD Y BIENESTAR AVIAR 1.1. Objetivo de la capacitación 2. SITUACIÓN ACTUAL DE LA PRODUCCIÓN AVÍCOLA 2.1. Situación de la producción de carne aviar mundial y en la República Argentina 2.2. Características de la producción de carne aviar en la República Argentina 2.3. Situación de la producción de huevo mundial y en la República Argentina 2.4. Características de la producción de huevo en la República Argentina 3. ENFERMEDADES BAJO PROGRAMA 3.1. Influenza aviar 3.2. Enfermedad de Newcastle (ENC) 3.3. Salmonelosis 3.4. Micoplasmosis 3.5. Otras Enfermedades https://biblioteca.senasa.gob.ar/files/original/b3622aebd346d90e95c1bed74f117bcb.pdf fd4f499232a47237852923dac1c606f5 PDF Text Text CURSO VETERINARIOS ACREDITADOS EN SANIDAD Y BIENESTAR AVIAR MÓDULO 2 ACTIVIDADES DEL PROGRAMA DE SANIDAD AVIAR: PREVENCIÓN, DETECCIÓN TEMPRANA ÍNDICE �1. Actividades del programa 1.1. Introducción 2. Medidas de prevención 2.1. Control de las importaciones 2.2. Control de las medidas de Bioseguridad 2.3. Sistema de identificación, trazabilidad y control de movimientos. 2.4. Capacidad diagnóstica del laboratorio 2.5. Capacitación 2.6. Difusión 3. Detección temprana 3.1. Vigilancia Epidemiológica 3.2. Conclusiones 1. ACTIVIDADES DEL PROGRAMA 2 �1.1. Introducción El Programa de Sanidad Aviar implementa actividades enfocadas al mejoramiento de la situación sanitaria nacional, la prevención de enfermedades exóticas, como la influenza aviar (IA), y erradicadas del país, como la enfermedad de Newcastle (ENC) y el control de otras enfermedades de impacto pecuario como la salmonelosis y la micoplasmosis. Todas estas actividades se agrupan en tres pilares fundamentales, basados en la situación sanitaria de las dos principales enfermedades aviares que rigen el mercado mundial, que son la IA y ENC, de las cuales nuestro país posee estatus de “país libre”. Por lo expuesto, podemos decir que el programa desarrolla actividades de: ❖ PREVENCIÓN a. Control de las importaciones. b. Control de las medidas de bioseguridad. c. Sistema de identificación, trazabilidad y control de movimientos. d. Capacidad diagnóstica del laboratorio. e. Capacitación. f. Difusión. ❖ DETECCIÓN TEMPRANA • Vigilancia epidemiológica activa y pasiva. 3 �❖ CONTROL Y ERRADICACIÓN a. Sospecha de enfermedades denunciables. b. Implementación del Plan de Contingencia. 2. MEDIDAS DE PREVENCIÓN 2.1. Control de las importaciones En virtud de la Resolución SENASA N°1519/2019- artículo 5°: solo se autoriza la importación de aves de UN (1) día o huevos fértiles para incubación cuando estos se destinen para la obtención de: Inciso a) Razas puras. Inciso b) Linajes consanguíneos (bisabuelos). Inciso c) Linajes para cruzamientos (abuelos). Inciso d) Reproductores (padres) correspondientes a líneas livianas que se estén produciendo en el país y hayan demostrado su adaptación al medio, únicamente destinados para la producción de huevos de consumo. Esta restricción radica en la necesidad de poder realizar un estricto control sanitario de todos los lotes importados. Asimismo, al tratarse de reproductores, nos aseguramos de que provienen de progenitores de alto valor genético que se encuentran en establecimientos con estrictas medidas de bioseguridad, manejo e higiene; lo que representa una mayor garantía sanitaria. Dichas importaciones están respaldadas por las cláusulas de certificación internacional exigida por la REPÚBLICA ARGENTINA, elaborada por la Dirección Nacional de Sanidad Animal del SENASA y consensuada con el país exportador. Estas consideran, en primer lugar, el estatus sanitario del país o zona de origen, que debe ser libre de influenza aviar de notificación obligatoria y de enfermedad de Newcastle. Asimismo, las aves de un día y huevos fértiles deben proceder de núcleos de reproducción habilitados e inspeccionados por el Servicio Veterinario oficial del país exportador, cuyos 4 �planteles sean libres de salmonelosis de las aves, micoplasmosis y en los cuales se realice una vigilancia epidemiológica permanente de otras enfermedades aviares transmisibles. De acuerdo a la normativa vigente, existe la obligación de avisar al SENASA el ingreso de animales vivos y su material reproductivo con una antelación de VEINTICUATRO (24) horas. El punto G del Anexo I de la Res. SENASA Nº 1354/1994 indica: “Del Aviso de Llegada de la mercadería: El interesado deberá comunicar en forma fehaciente el arribo de la mercadería (con antelación no menor a 24 horas hábiles), al responsable del Puesto de Frontera habilitado por donde ingresará el objeto de la importación a la República Argentina.” Con relación a las importaciones de productos, subproductos y/o derivados de origen animal y/o mercaderías y/o insumos que contengan como componentes o entre sus componentes ingredientes de origen animal, el marco reglamentario es la Res. SENASA Nº 816/2002. El Anexo III de dicha norma establece el Procedimiento para la importación de dichas mercancías, en el cual para los mismos rige una autorización general enmarcada en un procedimiento técnico – administrativo ad hoc. Una vez emitida dicha autorización, se otorgan los “Avisos de Llegada” que deben presentarse con una anticipación mínima de TRES (3) días hábiles al ingreso de la mercadería, para vía marítima, aérea, fluvial o terrestre, debiendo el Organismo autorizar o denegar la misma. Será reintegrado al solicitante, firmado y convalidado, si no mediare impedimento alguno, después de las CUARENTA Y OCHO (48) horas de recibido. El “Aviso de Llegada” tendrá una validez de QUINCE (15) días corridos contados desde la fecha de su autorización. Dicho documento podrá ser prorrogable por única vez, por un lapso similar, ante situaciones que así lo justifiquen. Todas las partidas que arriban a los puestos de frontera se someten a una inspección documental y clínica de los animales y un control sanitario, 5 �mediante un muestreo representativo, cuyas muestras son procesadas en la Dirección de Laboratorios y Control Técnico (DILAB) del SENASA, para el diagnóstico de influenza aviar, la enfermedad de Newcastle, micoplasma y salmonellas. En el establecimiento de destino, las aves son sometidas a un período de aislamiento cuarentenario durante el tiempo necesario para asegurar el estado sanitario del embarque. El período de duración mínimo de las cuarentenas de importación es de 30 días desde su ingreso. Todos estos procedimientos de importación se encuentran basados en los análisis de riesgos previos y en el control cuarentenario de los ingresos. Esta actividad preventiva brinda adecuadas garantías para la no introducción de factores de riesgo y/o infección asociados a cualquier ingreso. 2.2. Control de las medidas de Bioseguridad (Resolución SENASA N° 1699/2019) Los establecimientos avícolas comerciales deben estar inscriptos en el Registro Nacional Sanitario de Productores Agropecuarios (RENSPA), común a las explotaciones de las otras producciones. Cabe aclarar que las explotaciones avícolas deben ser únicas y no deben compartir registro con las de otras especies. El 11 de diciembre de 2019 entró en vigencia la nueva Resolución SENASA N° 1699/2019, esta norma establece las medidas mínimas de bioseguridad, manejo e higiene a las que deben ajustarse estos establecimientos para ser habilitados. Quedando así abrogadas las Resoluciones SENASA 542/2010 y su modificatoria 106/2013. 6 �Antes de instalar la granja, se debe contar con Certificado de uso de suelo y ajustarse a las habilitaciones Provinciales o Municipales que lo requieran. Una vez otorgado el mismo, el Senasa deberá verificar el cumplimiento de las distancias mínimas que debe existir entre establecimientos, las cuales varían de acuerdo a la actividad zootécnica de los mismos: • Producción de carne o huevo para consumo – 1000 mts. • Plantas de incubación – 1.000 mts. • Plantas de faena o procesadoras de subproductos– 1.000 mts. • Reproductores padres - 5.000 mts. • Reproductores abuelos - 10.000 mts. Como requisito principal se establece la existencia “Veterinario Acreditado en Sanidad Aviar”, definido como un profesional veterinario, de ejercicio privado, matriculado y responsable ante el SENASA del manejo sanitario del establecimiento avícola. El Artículo 15 de la Resolución establece sus obligaciones: elaborar los planes sanitarios, de limpieza y desinfección y de control de plagas, denunciar las enfermedades de declaración obligatoria (24 hs.), educar al avicultor en la implementación de buenas prácticas avícolas (BPA), advertir al propietario, titular o encargado del establecimiento sobre el incumplimiento de la resolución y respetar los períodos de carencia de los productos veterinarios administrados, entre otras. En caso de incumplimiento de las obligaciones establecidas anteriormente, como sanción, será pasible de ser excluido del registro que llevan las Oficinas Locales, como así también ser denunciado ante el Colegio de Médicos Veterinarios correspondiente. 7 �Las medidas de bioseguridad, manejo e higiene a las que deben ajustarse las granjas, cuyo cumplimiento debe estar asesorado por el veterinario privado y fiscalizado por el SENASA, son: • Presencia de documentación: Registro del Criador avícola para gallinas y Registro del Criador para pollos de engorde, libro de actas foliado, Documentos de transito electrónico (DT-e), habilitaciones, inscripciones, Manuales de Buenas Prácticas, etc. • El control de accesos: la normativa vigente exige que las granjas y los establecimientos avícolas en general cuenten con un alambrado que delimite el predio e impida el acceso de vehículos por lugares no permitidos, así como de animales. Asimismo, los establecimientos deben contar con una puerta de entrada y carteles que identifiquen el predio y prohíban el ingreso de personal ajeno a la explotación. • Equipos de desinfección al ingreso del predio: las granjas deben contar con un medio adecuado para el lavado y la desinfección de vehículos (a presión), y para el lavado y desinfección del calzado de las personas que ingresan al predio, además deben contar con equipamiento para el lavado de manos al ingreso y egreso de los galpones. • Mantenimiento del predio: los alrededores de los galpones deben hallarse desmalezados, sin encharcamiento ni materiales ajenos a la producción. • Mantenimiento de las instalaciones: las estructuras del galpón deben estar íntegras y permitir su limpieza y desinfección. Importante la presencia de mallas antipájaro para evitar el ingreso de otras aves. • No se permite la presencia de otros animales ajenos a la actividad que realiza el predio. 8 �• Eliminación de la mortandad diaria: los cadáveres de aves deben ser eliminados a través de un medio adecuado que no produzca contaminación ambiental ni residuos, y que a su vez sea permitido por la autoridad local competente (municipio, departamento o provincia). Este método debe ser preferentemente mediante la composta, o bien incineración cerrada o fosa cerrada. • Se prohíbe la eliminación de aves muertas fuera del predio del establecimiento así como el uso y/o traslado para la alimentación de otros animales. Si la mortandad de aves supera el UNO POR CIENTO (1%) diario y la misma se debe a razones no infecciosas, los cadáveres podrán ser trasladados a un destino permitido por las autoridades municipales del partido o departamento correspondiente, acompañado de un Documento de Tránsito electrónico (DT-e) extendido en la Oficina Local del SENASA, el “CERTIFICADO SANITARIO DE DESECHOS DE LA PRODUCCIÓN AVÍCOLA (AVES MUERTAS, CAMA USADA DE GALPÓN, GUANO U OTROS)" avalado por el Veterinario Acreditado en Sanidad Aviar del y certificado de traslado avalado por las autoridades municipales del partido o departamento correspondiente. • La cama usada y el guano podrán ser eliminados dentro del predio del establecimiento o trasladarse en camiones cerrados y tapados que no pierdan su contenido, a destinos autorizados por las normas provinciales, municipales y departamentales vigentes, acompañados por el DT-e y el “CERTIFICADO SANITARIO DE DESECHOS DE LA PRODUCCIÓN AVÍCOLA (AVES MUERTAS, CAMA USADA DE GALPÓN, GUANO U OTROS)" avalado por el Veterinario Acreditado en Sanidad Aviar del establecimiento. Si se esparce en un campo de otra propiedad, debe hacerlo con el consentimiento del propietario del mismo. 9 �• Las granjas de postura deben contar con un depósito de huevos separado de los galpones, respetando las exigencias dispuestas por el SENASA o la jurisdicción local según corresponda. • Se prohíbe el traslado sin tratamiento del guano o la cama usada de galpón u otros desechos, cuando en el establecimiento y durante los últimos TRES (3) meses anteriores a la finalización de la crianza, se hubieran presentado brotes de enfermedades infectocontagiosas de declaración obligatoria. Los mismos deben ser tratados en el establecimiento por compostaje u otro método que garantice la inactivación de patógenos. • Los establecimiento de producción comercial de aves deben estar respaldado por un equipo de sacrificio sanitario, que elimine la totalidad de sus aves dentro de las 48 horas de que el SENASA haya notificado la presencia de una enfermedad ausente en el país. El equipo de sacrificio debe garantizar la aplicación de un método indoloro, que consiga una rápida inconciencia y muerte, que requiera una mínima inmovilización, evite la excitación, sea irreversible y minimice el estrés animal. Asimismo, debe garantizar la seguridad de los operarios, así como de otras especies animales que se encuentren en la explotación y no debe tener consecuencias adversas sobre el medio ambiente. Además debe disponer de un lugar físico dentro o cercano a su predio, donde se procederá a realizar el enterramiento de sus aves ante la implementación de sacrificio sanitario. • Control de plagas “documentado”: todos los establecimientos deben contar con un sistema adecuado que garantice la ausencia de roedores, moscas y otros insectos. • Se debe realizar un análisis microbiológico del agua con una frecuencia no mayor a DOCE (12) meses. 10 �Asimismo, la normativa establece las causales de la cancelación de la habilitación, las mismas se detallan a continuación: • El incumplimiento de las exigencias establecidas en la presente resolución. • En el caso de establecimientos habilitados con anterioridad a la entrada en vigencia de la presente norma, la falta de adecuación a la presente normativa en el plazo estipulado de CIENTO OCHENTA (180) días. • Cuando los establecimientos de aves de huevo para consumo y de reproducción no registran movimientos o falta de antecedentes sanitarios registrados en el sistema del SENASA por un período de DOS (2) años de otorgada la habilitación sanitaria correspondiente. • Cuando los establecimientos de incubación y de aves para carne no registran movimientos o falta de antecedentes sanitarios registrados en el sistema del SENASA por un período de UN (1) año de otorgada la habilitación sanitaria correspondiente. • Toda falta de cooperación con la autoridad competente y toda obstrucción en el momento de realizar inspecciones. • El incumplimiento de muestreos necesarios para la aplicación de los planes nacionales de vigilancia y/o control de enfermedades y/o de residuos químicos y/o contaminantes. Finalmente cabe mencionar que, para establecimientos de producciones alternativas, de otras especies o de agricultura familiar, esta normativa considera que los requisitos respecto a las instalaciones pueden adecuarse según las condiciones y características de estas actividades. Se recomienda leer la normativa completa, la misma se adjunta como material complementario 2.3. Sistema de identificación, trazabilidad y control de movimientos. 11 �En la producción aviar no se utiliza ningún sistema de identificación de animales de forma individual, sin embargo la identificación y trazabilidad se realiza por lotes. En el caso de las gallinas, por el dinamismo de la producción y la necesidad de producción continua, se manejan más de un lote por establecimiento, lo que hace más dificultoso la sistematización de la producción y los movimientos. En el caso de los pollos de engorde, el lote está definido como un grupo de aves que bajo un mismo número de RENSPA ingresan para una nueva crianza, reciben el mismo tratamiento sanitario y manejo productivo y la diferencia de edad entre las aves no supera los diez (10) días. Asimismo, una vez remitidos a faena, se debe respetar un periodo de descanso sanitario superior a los 10 días. Cabe mencionar que existen excepciones: en aquellas explotaciones con una capacidad que no permita completar el establecimiento en 10 días, se puede extender el período de formación de lote y, en establecimientos con faena fraccionada, se puede permitir el “multilote”; ambas evaluadas por el veterinario local de SENASA y otorgado por el Programa. El control de movimientos de animales se realiza a través de un Documento de Tránsito Electrónico (DTe) que se emite de forma electrónica mediante el Sistema Integrado de Gestión en Sanidad Animal (SIGSA), ya sea desde la Oficina Local o por autogestión. Cabe aclarar, que aquellos establecimientos de producción avícola industrial (pollos y gallinas) que destinen sus aves a faena para exportación de carne fresca o procesada a la Unión Europea deberán cumplir con la Resolución SENASA N° 565/2015. 12 �El DT-e debe ir acompañado a la planta de faena por su respectivo Registro del Criador (RC), contenidos como anexos en la Resolución SENASA N° 1699/2019 para pollos de engorde y gallinas de postura. Este registro permite realizar una mejor trazabilidad del ave y por ende del producto, ya que en él se detallan los DTe de ingreso de pollitos BB (RENSPA de planta de incubación) que dieron origen al lote y también se cargan los datos de los DTe de egresos a faena. Asimismo, aporta información sanitaria de interés, como lo es la presencia/ausencia de enfermedades, la mortandad, las vacunaciones realizadas y la aplicación de fármacos en caso de ser necesarios. Esta información permite certificar que las aves que se trasladan a faena se encuentran clínicamente sanas, no han sido tratadas con sustancias prohibidas ni se han administrado productos no autorizados para la especiey categoría de ave, y en caso de haber administrado productos, se han respetado los períodos de carencia. El RC es certificado por el veterinario acreditado responsable del establecimiento y es recibido y analizado, junto con el DTe, por el responsable de planta de faena del SENASA. Todo movimiento está condicionado al correcto registro de la explotación de origen y destino, la categoría de ave a mover y el motivo del movimiento, a la existencia de los registros especiales correspondientes y el cumplimiento de los antecedentes sanitarios. ESQUEMA DE REFERENCIA DEL CICLO AVÍCOLA PRODUCTIVO 13 �EXPLOTACIÓN DE ORIGEN REGISTROS ESPECIALES (RE) RE1 AVES- HAB. SANITARIA (RES. Senasa 1699/2019). Es obligatorio en todos RE2 AVES-PNSA (RES. 882/02). Es obligatorio en reproductoras RE3 AVES-FAENA UE. Es opcional en faena UE CATEGORÍA A MOVER MOTIVO DE MOVIMIENTO EXPLOTACIÓN DE DESTINO REGISTROS ESPECIALES (RE) RE1 AVES- HAB. SANITARIA (RES. Senasa 1699/2019) Es obligatorio en todas RE2 AVES-PNSA (RES. 882/02) Es obligatorio en reproductoras RE3 AVES-FAENA UE Es opcional en faena UE Cabe mencionar que no está permitido el traslado de aves adultas para realizar replume en otras granjas, establecido por la Disposición N°3/2013 14 �2.4. Capacidad diagnóstica del laboratorio La Dirección de Laboratorios y Control Técnico (DILAB) del SENASA, cuenta con todas las técnicas y la capacidad para realizar el diagnóstico de todas las enfermedades bajo programa. 2.5. Capacitación Los agentes del SENASA asisten a cursos, seminarios, simulacros y talleres, tanto en el país como en el exterior, lo que es ampliamente enriquecedor para perfilar profesionales interiorizados de los avances científicos y técnicos relacionados con la actividad avícola y con las funciones de los agentes en su lugar de tareas. 2.6. Difusión Se realizan jornadas de difusión y actualización en producción avícola y en medidas de bioseguridad e higiene para la cría de aves, destinadas al público en general y a productores de tipo familiar. Se elaboró material escrito de difusión (folletos, afiches y carteles) destinados a las Oficinas del SENASA, a los puestos fronterizos, a los aeropuertos y al público en general. 15 �Por medio del departamento de prensa del SENASA se realizaron colaboraciones periodísticas en distintos medios gráficos, radiales y publicaciones en la página Web del organismo. 3. DETECCIÓN TEMPRANA 3.1. VIGILANCIA EPIDEMIOLÓGICA Con el objetivo de detectar rápidamente y tempranamente la circulación de virus de influenza aviar y la enfermedad de Newcastle, se lleva a cabo la vigilancia epidemiológica. La vigilancia epidemiológica pasiva involucra la atención de las notificaciones de mortandad y de la presencia de síntomas compatibles con IA o ENC, para realizar el diagnóstico diferencial. La vigilancia epidemiológica activa comprende un muestreo anual, sistemático y dirigido a zonas y subpoblaciones de aves de mayor riesgo, destinada a detectar la posible presencia de virus o aves infectadas con cepas de ENC o IA de baja patogenicidad. El objetivo de la vigilancia activa es demostrar la ausencia de infección y circulación del virus de influenza aviar de notificación obligatoria (VIA) y de las cepas virulentas o patógenas del virus de la enfermedad de Newcastle (VEN) en las aves domésticas de todo el territorio nacional. En detalle, los objetivos específicos serían: • Demostrar la ausencia de infección por VIA y VEN en aves domésticas consideradas de mayor riesgo por su sistema de cría (aves de traspatio o de crianza familiar). • Detectar infecciones subclínicas con cepas de IA de los subtipos H5 y H7 de baja patogenicidad en aves domésticas. 16 �• Detectar precozmente la circulación de los VIA y VEN en casos de observación de signos clínicos compatibles o aumentos de mortalidad en aves domésticas y silvestres. Para el diseño del programa de vigilancia, se contempla el análisis del riesgo de introducción de la enfermedad año a año, considerando la ocurrencia de esa enfermedad en otros países del mundo y de la región. También se evalúan las posibilidades prácticas de extracción de las muestras y de su procesamiento. Además, el Programa considera las sugerencias impartidas desde la OIE y obedece a un diseño estadístico dirigido esencialmente a las poblaciones de aves industriales y de aves de traspatio, además de los eventuales muestreos de aves silvestres realizados y procesados por el INTA y la participación de organizaciones no gubernamentales que han colaborado con el SENASA en esta actividad. Cabe mencionar que en 2011 se realizó un “análisis de riesgo sobre influenza aviar”. El trabajo permitió identificar vías potenciales de ingreso de influenza aviar de alta o baja patogenicidad a la población de aves domésticas del país. Las vías identificadas como potencialmente peligrosas incluyeron la introducción ilegal de productos y subproductos, la migración de aves silvestres (sólo para influenza aviar de baja patogenicidad – IABP) y el comercio de vacunas. Futuras acciones deberán ser dirigidas a caracterizar estas vías específicas, mejorar la calidad de los parámetros utilizados para cuantificarlas e identificar aquellos puntos críticos en los que el SENASA puede intervenir para mitigar el riesgo. 17 �3.2. CONCLUSIONES La sensibilidad del programa de vigilancia se observa incrementada a medida que transcurren los años y la población avícola argentina se somete a este muestreo. Esta sensibilidad se refleja en la aparición frecuente de sospechas que surgen a partir de la detección de títulos altos de la EN y serologías positivas de IA en aves de corral. La detección de casos sospechosos de presencia de virus de IA o EN que finalmente fueron descartados, pone en evidencia y reafirma el criterio de que las aves de traspatio que se encuentran en predios con condiciones de bioseguridad deficiente, que toman contacto con el medio ambiente, y aves silvestres que se encuentran cercanas a zonas de humedales suelen tomar contacto con el virus de IA/EN, manifestándose en la serología positiva. Esto último, fortalece la estrategia de reforzar las medidas de bioseguridad de establecimientos avícolas comerciales e instalar las granjas en zonas alejadas de ríos, lagunas y zonas atlánticas. Podemos concluir que los resultados de la vigilancia epidemiológica demuestran con validez estadística y científica la inexistencia de actividad viral para ambas enfermedades y por lo tanto, se mantiene el estatus de país libre de enfermedad de Newcastle y de influenza aviar de declaración obligatoria. 18 � Dublin Core The Dublin Core metadata element set is common to all Omeka records, including items, files, and collections. For more information see, http://dublincore.org/documents/dces/. Title A name given to the resource Publicaciones SENASA Dublin Core The Dublin Core metadata element set is common to all Omeka records, including items, files, and collections. For more information see, http://dublincore.org/documents/dces/. Title A name given to the resource Módulo 2: Actividades del programa de sanidad aviar: prevención, detección temprana. Publisher An entity responsible for making the resource available Servicio Nacional de Sanidad y Calidad Agroalimentaria Date A point or period of time associated with an event in the lifecycle of the resource [201?] Contributor An entity responsible for making contributions to the resource Cordinación Técnica de Capacitación y Desarrollo y Carrera del personal Language A language of the resource Es Type The nature or genre of the resource Monografía Identifier An unambiguous reference to the resource within a given context B.S.0106 Abstract A summary of the resource. l Programa de Sanidad Aviar implementa actividades enfocadas al mejoramiento de la situación sanitaria nacional, la prevención de enfermedades exóticas, como la influenza aviar (IA), y erradicadas del país, como la enfermedad de Newcastle (ENC) y el control de otras enfermedades de impacto pecuario como la salmonelosis y la micoplasmosis. Table Of Contents A list of subunits of the resource. 1. Actividades del programa 2 1.1. Introducción 2. Medidas de prevención 2.1. Control de las importaciones 2.2. Control de las medidas de Bioseguridad 2.3. Sistema de identificación, trazabilidad y control de movimientos. 2.4. Capacidad diagnóstica del laboratorio 2.5. Capacitación 2.6. Difusión 3. Detección temprana 3.1. Vigilancia Epidemiológica 3.2. Conclusiones Creator An entity primarily responsible for making the resource Servicio Nacional de Sanidad y Calidad Agroalimentaria https://biblioteca.senasa.gob.ar/files/original/28f7c7d0950a409bf5980d7d63d7ad81.pdf d5187891fb4743e58d77f75f9a3ed5bc PDF Text Text CURSO VETERINARIOS ACREDITADOS EN SANIDAD Y BIENESTAR AVIAR MÓDULO 3 ▪ ACTUACIÓN ANTE LA SOSPECHA Y CONFIRMACIÓN DE ENFERMEDADES EXÓTICAS ▪ COMPARTIMENTACIÓN �ÍNDICE 1. Control y erradicación 1.1. Sospecha de enfermedades de denuncia obligatoria 1.2. Implementación del plan de contingencia ante la confirmación de enfermedades exóticas. 1.3 Sacrificio sanitario 1.3.1. Gasificación con dióxido de carbono (CO2) 1.3.2 Método de espuma de alta hermeticidad 1.3.3 Dislocación cervical 1.4 Eliminación de cadáveres 1.4.1 Enterramiento 1.4.2 Incineración 1.4.3 Compostaje 1.5 Eliminación de la cama, deyecciones de aves o productos avícolas 2. Sistema de Compartimentación 2 �1. CONTROL Y ERRADICACIÓN 1.1. Sospecha de enfermedades de denuncia obligatoria El Sistema de Registro y Notificación de Enfermedades Denunciables de los Animales es de aplicación obligatoria en todo el territorio de la República Argentina. El Servicio Nacional de Sanidad y Calidad Agroalimentaria (Senasa), es la autoridad de aplicación del Sistema. La base normativa de la notificación de enfermedades está fundada en la Resolución Senasa Nº 153/2021, la cual tiene por objetivo adecuar a la normativa internacional vigente en cada materia sobre los sistemas de notificación de enfermedades animales, de vigilancia epidemiológica y seguimiento epidemiológico continuo, análisis de riesgo, emergencias sanitarias y un dispositivo reglamentario que contemple todos los aspectos de protección y lucha contra las enfermedades. Esta norma abroga las Resoluciones N° 234/1996 del entonces Servicio Nacional de Sanidad Animal, la Resolución Senasa N°422/2003 y la Resolución Senasa N° 540/2010. La Resolución Senasa 153/2021 agrupa todas aquellas enfermedades de denuncia obligatorias en tres grupos: GRUPO I NOTIFICABLES quedan incluidas aquellas enfermedades que deben notificarse de manera obligatoria cuya sospecha o confirmación debe ser informada dentro de las 24 hs, quedando comprendidas las enfermedades transfronterizas de los animales, aquellas enfermedades para las cuales la República Argentina posee estatus oficial de libre otorgado por la Organización Mundial de Sanidad Animal (OIE), las enfermedades consideradas exóticas en Argentina, y las enfermedades prevalentes que requieren intervención inmediata del Senasa para proteger la salud pública y animal, según lo establecido en el programa oficial de prevención, control y/o erradicación. En este grupo se encuentran incluidas: Influenza Aviar, Enfermedad de Newcastle, Clamidiosis en aves de corral y Laringotraqueitis infecciosa aviar. GRUPO II y III REPORTABLES en estos dos grupos quedan incluidas aquellas 3 �enfermedades cuya confirmación de casos deben ser reportadas de manera inmediata (brote epidémico) en menos de 24 hs. o bien deberán realizar un reporte con una frecuencia que determine el SENASA. En estos grupos se encuentran incluidas: GRUPO II: Micoplasmosis aviar (Mycoplasma gallisepticum y M. sinoviae), Pullorosis (S. pullorum), Salmonelas móviles (S. enteritidis, S. tiphymurium y S. heidelberg), Tifosis aviar (S. gallinarum). GRUPO III: Bronquitis infecciosa aviar, Bursitis infecciosa (Enfermedad de Gumboro). Esta norma también establece parámetros productivos que permitirán detectar precozmente posibles manifestaciones asociadas a signos clínicos relacionados con la enfermedad de Newcastle e Influenza Aviar, los cuales se fundan en las siguientes observaciones y criterios. Observaciones clínicas y patológicas en las aves. 1. Reducción de la ingesta de alimento y agua superior al 20%, sin justificar. 2. Reducción de la producción de huevos superior al 5% durante más de dos días, sin justificar. 3. Un índice de mortalidad semanal superior a un 3%, sin justificar. 4. Todo indicio clínico o lesión post-mortem que sugiera la presencia de IA /ENC. Observaciones epidemiológicas. 1. Si las aves han estado en contacto directo o indirecto con una explotación avícola que, se haya demostrado infectada con el virus de la influenza aviar /enfermedad de Newcastle 2. Si una explotación de cría o recría ha distribuido aves que se haya demostrado que estuvieran infectados con el virus de la influenza aviar/ enfermedad de Newcastle 3. Si existe la posibilidad de que las aves hayan estado expuestos al virus, por ejemplo, debido a la entrada en la explotación de personas, vehículos, etc. 4 �El Articulo 6 de la mencionada norma establece la Obligatoriedad de notificar para toda autoridad nacional, provincial o municipal, profesionales veterinarios, transportistas, entes sanitarios, personas responsables o encargadas de cualquier explotación ganadera, industrial o doméstica, universidades, organismos de investigación, zoológicos, parques o reservas naturales nacionales, provinciales o municipales y laboratorios diagnósticos estatales o privados, o cualquier persona humana o jurídica, la notificación y reporte ante el Senasa de la sospecha o confirmación de caso de todas las enfermedades, síndromes y eventos listados en la presente norma, en todas las especies de animales domésticos y de la fauna silvestre. La Resolución Senasa Nº 153/2021 establece los procedimientos de notificación frente a una sospecha incluyendo la protocolización y registro de su ocurrencia temporal y geográfica. El sistema se activa con la denuncia de un productor, veterinario privado, transportista, etc. Este puede realizarla en una Oficina Local, preferentemente de la jurisdicción en donde se encuentra el predio con el o los animales sospechosos, a través de la App “Notificaciones Senasa” que se encuentra disponible en Play Store o también se puede realizar enviando un correo a notificaciones@senasa.gob.ar . La denuncia de una presunción de enfermedad es registrada en la Oficina Local con una planilla de "Registro de enfermedad denunciable de los animales", llenando en forma completa los datos requeridos. Dentro de las DOCE (12) horas de registrada una denuncia, el Veterinario Local deberá proceder a cumplimentar la Intervención Sanitaria en el predio denunciado, protocolizando dicha visita de acuerdo al formato establecido en la Resolución Senasa Nº 153/2021. Según el art. 4º de la Ley N° 3959, ley fundamental para las políticas sanitarias de los animales: Todo propietario o persona que de cualquier manera tenga a su cargo el cuidado o asistencia de animales atacados por enfermedades contagiosas o sospechosos de tenerlas, está obligado a hacer 5 �inmediatamente la declaración del hecho a la autoridad local que los reglamentos sanitarios determinen. Asimismo, los veterinarios de la actividad privada que se encuentran en permanente contacto con el productor pecuario facilitando la difusión de los diferentes programas sanitarios, integran el Sistema Nacional de Vigilancia Epidemiológica (Resolución Nº 234/96) que les establece también la responsabilidad ante el conocimiento de cualquier evento sanitario. Esta responsabilidad de productores y profesionales, personal de transporte u otros, es la inmediata denuncia ante el veterinario local del Senasa, quien debe actuar inmediatamente según procedimiento ya detallado. Pero también la responsabilidad de productores, veterinarios y otros, hasta que actúe el veterinario oficial, es la determinada en los siguientes artículos de la Ley mencionada: Art. 5. - Sin perjuicio de esta declaración y aún antes de que las autoridades hayan intervenido, desde el momento en que el propietario o su encargado hayan notado los síntomas primeros de la enfermedad contagiosa, deberán proceder al aislamiento del animal enfermo, separándolo de los sanos en cuanto sea posible. Art. 6. - La misma declaración y aislamiento son obligatorios de los animales muertos o que se supongan muertos de enfermedades contagiosas, debiendo sus despojos ser enterrados o destruidos en la forma que el Poder 6 �Ejecutivo determine en sus reglamentos. Art. 7. - En el momento en que la autoridad reciba la denuncia del caso o tenga conocimiento de la existencia de la enfermedad, procederá a asegurarse del cumplimiento de las medidas prescriptas en los artículos 5 y 6 proveyendo lo necesario a su ejecución, si no hubiesen sido cumplidas, y disponiendo, cuando sea posible, la visita y examen de los animales enfermos y de los muertos, en su caso, por el perito de que pueda disponer, para verificar la naturaleza de la enfermedad.” Específicamente para la Influenza Aviar, la Resolución SENASA N° 73/2010 y para la enfermedad de Newcastle la Resolución SENASA N° 683/96, adoptan la definición de la enfermedad acorde al Capítulo correspondiente de la OIE y obligan su notificación, vigilancia y eventual control y erradicación. Los Planes de Contingencia, respaldados por las resoluciones antes mencionadas, consideran: Frente a la aparición de signos clínicos y/o mortandad en aves que puedan ser atribuibles a influenza aviar de notificación obligatoria o enfermedad de Newcastle, el Senasa implementará rápidamente acciones tendientes a confirmar o descartar la presencia de activad viral. Entre estas actividades se incluyen: • Interdicción del predio o establecimiento bajo sospecha y de los establecimientos vecinos, si por razones geográficas o de contacto se justificara. • Censado de todas las aves del establecimiento bajo sospecha (vivas, muertas y enfermas) y aislamiento de las mismas. 7 �• Toma de muestras y envío al laboratorio oficial. La toma de muestras se realizará por parte de los Veterinarios del Senasa, teniendo en consideración los siguientes criterios: - Preferentemente extraer muestras de SUERO E HISOPADOS (traqueal y/o cloacal) de aves enfermas o aves recientemente muertas (o moribundas y sacrificadas en forma benéfica), en un número total de 20 (o de la totalidad si la cantidad de aves es menor a 20). - De hallar aves recientemente muertas (menos de 6 horas de acuerdo a las condiciones climáticas) o moribundas (y sacrificadas por el veterinario de Senasa), podrá enviarse el ave entera en número mínimo de 3 a 5 aves,en bolsas de polietileno que no pierdan su contenido. - Se recomienda no realizar necropsias. En caso de realizarla el envío de órganos debe ser en bolsa de polietileno estéril o recipiente estéril: tráquea, pulmón, bazo, hígado e intestino (tonsilas cecales). Los intestinos se deben acondicionar en forma separada al resto de los órganos. - Aves con signos nerviosos: encéfalo o directamente la cabeza del ave. - En todos los casos, las muestras deberán ser acompañadas del protocolo de sospecha de enfermedad denunciable y de un informe de la investigación realizada en terreno, así como de las medidas de control a las que fueron sometidos los animales afectados durante dicha investigación (cuarentena, prohibición del movimiento, disposición de cadáveres, etc.). • Prohibición del ingreso y salida de las aves que se encuentran en el lugar. 8 �• Restricción de movimientos de vehículos, implementos, alimentos, huevos, subproductos o desechos tales como cama de pollo o guano, aves muertas, y todo material que en forma potencial sea capaz de transmitir la enfermedad, de manera de evitar la diseminación de la misma. • Desinfección de vehículos a la entrada y salida de los mismos. • Adecuada manipulación y eliminación diaria en el predio de aves muertas. • Incremento de las medidas de bioseguridad en general y de las medidas básicas de higiene personal tales como lavado de manos, cambio de ropa y desinfección del calzado. • El Senasa mantendrá, integrará y operará el Dispositivo Nacional de Emergencia de Sanidad Animal establecido por Resolución N° 779 del 26 de julio de 1999 del SERVICIO NACIONAL DE SANIDAD Y CALIDAD AGROALIMENTARIA, y expedirá las normas oficiales que establezcan las medidas de seguridad que deberán aplicarse al caso particular en el que se diagnostique la presencia de una enfermedad o plaga exótica de los animales. Estas medidas se cumplirán hasta que se garantice la ausencia de enfermedad por métodos clínicos y de diagnóstico de laboratorio. 9 �RESUMEN DE LA ACTUACIÓN ANTE LA SOSPECHA 10 �1.2. Implementación del plan de contingencia ante la confirmación de enfermedades exóticas. Si se confirmara por las pruebas de laboratorio un foco de influenza aviar de notificación obligatoria o enfermedad de Newcastle patógeno, se implementarán procedimientos destinados al control y rápida erradicación de la enfermedad, para lo cual se combinan diferentes estrategias, dependiendo a su vez de la patogenicidad de la cepa viral, las mismas incluyen: • Se activa el SISTEMA NACIONAL DE EMERGENCIAS SANITARIAS (SINAESA) Res. SENASA N° 779/99, lo que implica la reunión de sus integrantes, la comunicación interna y externa del alerta a fin de que se extremen las medidas de vigilancia en todo el país y que se implementen las medidas sanitarias correspondientes. • Se realizará una delimitación de tres zonas: Zona de foco: comprende el establecimiento afectado (puede involucrar más de uno). Zona de perifoco: de un radio mínimo de TRES (3) kilómetros, alrededor de la zona de foco. Zona de vigilancia: de un radio mínimo de SIETE (7) kilómetros, alrededor de la zona de perifoco. 11 �A continuación se describen las medidas que se deben aplicar según la zona: En la« zona de foco» se aplicarán las siguientes medidas: • Continúa la interdicción del predio, establecido durante la sospecha de la enfermedad. • Conformación de un equipo de trabajo encargado de realizar las tareas de la vigilancia epidemiológica. • Sacrificio sanitario in situ de todas la aves del establecimiento • Destrucción y enterramiento de cadáveres, huevos, restos de alimentos, cama usada, guano, etc. • Limpieza y desinfección de las instalaciones y sus alrededores, implementos, vehículos de transporte y de todo material que pueda estar contaminado utilizando para tal fin técnicas y desinfectantes autorizados oficialmente. 12 �• Vacío Sanitario de un período de espera o vacío sanitario de 21 a 30 días por lo menos. • Centinelización se instalarán en los galpones o predios lavados y desinfectados, aves centinelas. • Investigación epidemiológica: el Senasa garantizará que se realice la investigación epidemiológica correspondiente a fin de establecer el origen de la infección inicial y detectar una posible difusión de la enfermedad, indagando, el tiempo transcurrido desde el ingreso del agente etiológico hasta la aparición de los signos, los posibles contactos establecidos entre las aves afectadas y otras y/o personas, movimientos registrados en los establecimiento. Información a recabar con el fin de extremar las medidas de control y prevenir la difusión de la enfermedad. • Vacunación: el Senasa evaluará la necesidad de implementar un plan de vacunación de las aves de corral u otras, en explotaciones o locales que se encuentren o no en las zonas afectadas. De adoptarse como medida de control, la vacunación contra influenza aviar, la misma se realizará con las vacunas autorizadas por el Senasa y exclusivamente bajo la supervisión del mismo, utilizando registros de vacunación y documentación mediante actas. • Comunicación a la OIE y a los países de la región: la Dirección Nacional de Sanidad Animal del Senasa efectuará las comunicaciones correspondientes dentro de los plazos determinados a la Organización Mundial de Sanidad Animal, a todos los países y particularmente a los estados miembros del Mercosur y a la República de Chile, las novedades registradas en la República Argentina referentes a la influenza aviar de declaración obligatoria y a la evolución de las mismas mediante un informe técnico completo y detallado sobre los hechos registrados y las medidas implementadas. En la «zona de perifoco» se aplicarán las siguientes medidas: 13 �• Localización y censado de todas las explotaciones avícolas, incluidos los predios de aves de traspatio. • Inspección clínica de las aves y vigilancia epidemiológica de todos los establecimientos/predios de aves de la zona. • Desinfección adecuada de todas las entradas y salidas de esos lugares. • Los movimientos de aves (para faena o cría) y huevos (para consumo o incubación) se realizarán únicamente bajo la autorización del Senasa, por lo que se establecerá un control de tránsito dentro de la zona. • Se deberá proceder a faena controlada, con la correspondiente identificación de la carne procedente de las mismas. • El transporte de aves de un día o huevos para incubación, se realizarán de preferencia a establecimientos dentro de la zona de perifoco o de vigilancia o a un establecimiento con control oficial. • El transporte de huevos para consumo, se realizarán preferiblemente a un establecimiento elaborador de ovoproductos o deberán ser identificados para su comercialización previa desinfección de los mismos. • En caso de ser necesario se implementará el sacrificio de las aves. • Estará prohibida la realización de ferias, exposiciones o mercados en los cuales se concentren aves domésticas u otras. • No habiéndose registrado otras novedades, las medidas en la «zona de perifoco» se mantendrán durante 21 días como mínimo a partir del día en que finalizó la desinfección del establecimiento afectado. Luego de este período la zona de foco pasará a formar parte de la «zona de vigilancia». En la «zona de vigilancia» se dispondrán las siguientes medidas: • Localización y censado de todas las explotaciones avícolas o locales en los que se encuentren aves. 14 �• Inspección clínica y vigilancia epidemiológica en determinados establecimientos/predios de aves de la zona. • Control de los desplazamientos y traslados dentro y fuera de la zona. • En lo referente a las aves que se trasladen a faena, y a los huevos para incubación, podrán ser trasladados con autorización del Senasa, con identificación de las carnes y desinfección de los huevos, previo al traslado. • Los huevos para consumo podrán ser transportados a un establecimiento elaborador de ovoproductos o deberán ser identificados para su comercialización previa desinfección de los mismos. • Estará prohibida la realización de ferias, exposiciones o mercados en los cuales se concentren aves domésticas u otras. • De no haberse registrado novedades, las medidas adoptadas en la «zona de vigilancia», se mantendrán durante un período de 30 días como mínimo, a partir de haber se realizado la desinfección en el establecimiento infectado. 1.3 Sacrificio sanitario La legislación del Senasa establece que la erradicación de la influenza aviar de declaración obligatoria debe realizarse mediante el sacrificio sanitario obligatorio de las aves enfermas o sospechosas y sus contactos, y su posterior eliminación, con el fin de detener la replicación del virus y evitar la difusión de la enfermedad. Dado que no siempre la enfermedad cursa con alta mortalidad, esta medida deberá aceptarse como imprescindible para controlar la diseminación del virus en el caso de presentación de un brote de influenza aviar de baja patogenicidad de declaración obligatoria (H5/H7). Los criterios principales, para el sacrificio, en términos de bienestar animal, son que el método sea indoloro, consiga una rápida inconciencia y muerte, 15 �requiera una mínima inmovilización, evite la excitación, sea apropiado para la especie, sea irreversible y minimice el estrés animal. El método de sacrificio debe garantizar la seguridad de los operarios, así como de otras especies animales que se encuentren en la explotación y no debe tener consecuencias adversas sobre el medio ambiente. El sacrificio sanitario se realizará lo más rápido posible (24 – 48 hs.) luego de la confirmación de la enfermedad y dentro de la misma explotación infectada o lo más cerca posible. Métodos para el sacrificio de aves El Senasa determinará para cada caso los procedimientos de sacrificio que correspondan aplicar, pudiéndose implementar también la matanza por faena sanitaria, según las condiciones prácticas que se detecten, el número y especies de animales afectados y la patogenicidad del subtipo viral encontrado. Por lo tanto no se considera definitiva la lista de los procedimientos posibles enumerados a continuación. Son factibles los siguientes métodos químicos y físicos para sacrificio de aves: 1. Gasificación con dióxido de carbono (CO2) 2. Sistema de espuma de alta hermeticidad. 3. Dislocación cervical. 4. Electrocución. 5. Gasificación con nitrógeno o argón. 6. Gasificación con mezclas de gases. 7. Agentes inyectables. 8. Gasificación con monóxido de carbono (CO). 9. Gasificación con ácido cianhídrico (HCN). Si bien se permiten varios sistemas, los aconsejados y más convenientes son la utilización de dióxido de carbono y el sistema de espuma de alta hermeticidad, considerándolos humanitarios, prácticos y eficientes. 1.3.1 Gasificación con dióxido de carbono (CO2) 16 �Siempre que sea posible se utilizará, preferentemente, el sacrificio de las aves mediante gasificación con CO2. Este método de eutanasia para aves es muy rápido y eficaz, fácil de utilizar y con riesgos mínimos para los operarios. El CO2 es un gas incoloro, no inflamable, no explosivo y que no genera efectos adversos al medio ambiente. A concentraciones superiores al 60% actúa como agente anestésico y produce depresión del sistema nervioso central con rápida pérdida de la conciencia y muerte. La bibliografía recomienda situar las aves en una atmósfera de CO2 mayor al 70%, ya que pierden la conciencia muy rápido debido al efecto narcótico del gas. Sin embargo en condiciones prácticas parece ser suficiente la exposición a una concentración mínima del 55% al 60% del volumen del compartimiento. La concentración incidirá en la velocidad de muerte de las aves. El CO2 se vende en tubos en estado líquido (-72°C), por lo cual requiere válvula especial de liberación, con resistencia eléctrica. El procedimiento consiste en crear en el piso una cámara de fumigación con láminas de polietileno (6mt x 40mt = 240mt2 = 3200 aves) y, en caso de aves a jaula, las mismas pueden ser sacrificadas ubicándolas en contenedores cerrados. Se debe tener la precaución de mantener su concentración constante por al menos 3 minutos, luego de 20 minutos de exposición al gas hay que asegurarse que los animales estén muertos. 17 �1.3.2 Método de espuma de alta hermeticidad. Es un método eficiente, que hace posible un sacrificio sanitario rápido y seguro para la erradicación de enfermedades, permite mejorar el bienestar animal durante el proceso de sacrificio sanitario y disminuye el riesgo potencial de exposición humana, debido que se requieren de 2 a 3 operarios. El proceso completo de despoblación toma entre dos y tres horas. Necesita grandes cantidades de agua para su utilización. 18 �Emplea una tecnología que combina el agua y espuma con burbujas de CO2. La misma es efectiva solo para aves criadas en el piso y ha sido probada como un método de despoblación para: pollos, codorniz, patos y pavos, existiendo diferencias en el tiempo de deceso entre especies, siendo de aproximadamente 3 a 5 minutos en pollos y 10 minutos para patos y pavos. Las espumas a base de agua utilizadas para la despoblación deben ser de fácil disponibilidad, biodegradable, compatible con los métodos de eliminación de canales y de ningún riesgo para la salud humana. La aplicación debe realizarse de una manera que perturbe a las aves lo menos posible y evite el amontonamiento o el hacinamiento. La espuma se aplica al 1%, por lo tanto, si para 10 m2 se necesitan 160 a 180 litros de agua se utilizará de 1.6 a 1.8 litros espuma. Se debe considerar que para sacrificar pavos se debe utilizar el doble, debido a la altura a la que debe alcanzar la espuma. Los concentrados de espuma pueden usarse con agua potable, dura o salada, pudiendo haber diferencias de rendimiento, siendo el agua potable la recomendada. Los sistemas de suministro de espuma deben producir espuma que tenga la consistencia y densidad apropiadas para ocluir completamente la vía aérea superior de las aves domésticas; de modo que cuando se sumerge en la espuma, la oclusión de las vías respiratorias se produce de manera rápida y abrumadora, de modo que las aves no luchan indebidamente. En este momento, el tamaño de burbuja deseado de la espuma basada en agua usada para la despoblación de aves de corral no debe exceder 1,58 cm y preferiblemente debería ser menor. En sólo 15 minutos, la máquina elimina 15.000 pollos alojados en un galpón de 100 metros de largo por 12 de ancho. El equipo de sacrificio es conducido a la puerta del galpón. Se comienza a rociar espuma densa con altura ajustable. Cabe aclarar que no mata a las aves por contacto, no ahoga las aves y no desinfecta las aves. Produce un bloqueo del aire, por tal motivo la cabeza de las aves debe estar cubierta 19 �hasta la muerte. Para que el sistema funcione, debe haber una cobertura de 15 a 30 cm de espuma sobre las cabezas de las aves. La espuma a base de agua debe demostrar un tiempo de persistencia de no menos de 30 minutos (independientemente de las condiciones climáticas o la exposición solar) para asegurar que todas las aves han sido sacrificadas correctamente. En términos de tiempo hasta la muerte y porcentaje total de la población muerta cuando la espuma a base de agua es utilizado en cualquier tipo o edad de aves de corral, el sistema de espuma utilizado debe dar como resultado la muerte del 95% de las aves dentro de los 7 minutos o menos después de que las aves hayan sido completamente sumergidas en la espuma. 1.3.3 Dislocación cervical Para la eutanasia de un número reducido de aves puede realizarse el sacrificio mediante la dislocación del cuello (utilizando pinzas de Burdizzo, tijeras o las manos). La pinza de Burdizzo tiene particular utilidad para el sacrificio de aves de corral con cuello fuerte (patos, gansos, etc.). La técnica consiste en separar el cráneo y el cerebro de la médula espinal aplicando una presión a la base posterior del cráneo. 1.4 Eliminación de cadáveres Existen varios métodos para eliminar las aves muertas, desechos y otros desperdicios. Preferentemente se debe proceder al enterramiento en el mismo establecimiento u otro lugar adecuado para este fin, aprobado por el Senasa. Cuando no es posible o conveniente el enterramiento, la mejor opción es elaborar compostas o bien la incineración. Los huevos u otro material orgánico contaminante (guano, cama de galpón, restos de alimentos, productos, basura, etc.) deberán recogerse con cuidado a fin de que se elimine junto con las canales. 20 �1.4.1 El enterramiento Es el procedimiento más adecuado para la eliminación de animales y otros elementos de riesgo, ya que generalmente es cómodo, económico, rápido y seguro. 1.4.2 Incineración La incineración es el método menos recomendable para la eliminación de una gran cantidad de aves, principalmente por su elevado costo y por el tiempo que se requiere para hacerlos cenizas. 1.4.3 Compostaje El compostaje es un proceso de descomposición controlada de la materia orgánica. La descomposición ocurre en un ambiente aerobio en presencia de determinadas condiciones de pH, temperatura y humedad, en la cual microorganismos mesófilos y termófilos elevan la temperatura por un tiempo determinado permitiendo así la inactivación viral. 1.5 Eliminación de la cama, deyecciones de aves o productos avícolas La cama, las deyecciones, los huevos u otros deberán tratarse mediante un método idóneo para eliminar el virus. Dicho método deberá incluir una de las siguientes manipulaciones: • Se enterrarán con los cadáveres a una profundidad que impida el acceso a parásitos, aves silvestres u otros animales. • Se incinerarán o tratarán con vapor de agua a temperatura de 70 °C o mayor. • Se amontonarán y humidificarán (si resultara necesario para facilitar la fermentación), se cubrirán para mantener el calor de forma que se alcance una temperatura de fermentación mínima de 20°C y se mantendrán cubiertos durante 42 días. • En el caso de haber utilizado como método de sacrificio la espuma, la cama o guano debe enterrarse en forma separada de las aves sacrificadas. 21 �2. Sistema de Compartimentación La eventual presentación de enfermedades tales como la Influenza Aviar y enfermedad de Newcastle en nuestro país ocasionaría graves consecuencias sanitarias y económicas incluyendo un elevado número de muertes de aves por la enfermedad y por sacrifico, generando dificultades en toda la cadena productiva aviar, y restricciones a las exportaciones de productos avícolas. El sistema de compartimentación se rige bajo el marco de la normativa Resolución Senasa N°484/ 2017. La compartimentación son los procedimientos que utiliza un país para definir en su territorio, subpoblaciones de animales de estatus sanitario distintos a efectos del control de enfermedades o de comercio internacional. Es un procedimiento aceptado y recomendado por la OIE para facilitar el comercio, para mejorar la sanidad de los animales a través de medidas de bioseguridad eficaces, facilitando el control de enfermedades ante su introducción y para reducir la probabilidad y el impacto de los focos de enfermedades como la influenza aviar y la enfermedad de Newcastle. Los compartimentos se definen como una subpoblación de animales definida esencialmente por métodos de gestión y explotación relacionados con la bioseguridad (Código Sanitario de los Animales Terrestres, Capítulo 4.3). Se componen de explotaciones y unidades productivas que forman parte de un compartimento, tales como plantas de incubación, planta de alimento, granjas de reproductoras o cualquier otra infraestructura asociada. Las empresas avícolas que deseen inscribirse como “Compartimento libre de influenza aviar y enfermedad de Newcastle” deben presentar ante la Dirección Nacional de Sanidad Animal, la siguiente documentación: 22 �a) Solicitud de inscripción: cuyo contenido se aprueba como Anexo I de la citada Resolución. b) Manual de Buenas Prácticas de Manejo elaborado conforme con lo establecido en el Anexo II, de la citada Resolución. Las empresas avícolas que se encuentren interesadas en obtener la certificación, deben estar habilitados de conformidad con lo dispuesto en la Resolución Senasa Nº1699/2019 o inscriptos en los registros del Senasa, según corresponda de acuerdo a la explotación productiva que realicen, y deben cumplir con los planes sanitarios requeridos por este servicio Una vez analizada y aprobada la documentación remitida por la firma, el Programa de Sanidad Aviar, de la Dirección de Planificación y Estrategia de Sanidad Animal dependiente de la Dirección Nacional de Sanidad Animal otorgará el “Certificado de Compartimento libre de Influenza aviar y enfermedad de Newcastle” . 23 � Dublin Core The Dublin Core metadata element set is common to all Omeka records, including items, files, and collections. For more information see, http://dublincore.org/documents/dces/. Title A name given to the resource Publicaciones SENASA Dublin Core The Dublin Core metadata element set is common to all Omeka records, including items, files, and collections. For more information see, http://dublincore.org/documents/dces/. Title A name given to the resource Módulo 3: Actuación ante la sospecha y confirmación de enfermedades exóticas. Publisher An entity responsible for making the resource available Servicio Nacional de Sanidad y Calidad Agroalimentaria. Date A point or period of time associated with an event in the lifecycle of the resource [201?] Contributor An entity responsible for making contributions to the resource Coordinación Técnica de Capacitación y Desarrollo y Carrera del personal Language A language of the resource Es Type The nature or genre of the resource Monografía Identifier An unambiguous reference to the resource within a given context B.S.0107 Abstract A summary of the resource. El Sistema de Registro y Notificación de Enfermedades Denunciables de los Animales es de aplicación obligatoria en todo el territorio de la República Argentina. El Servicio Nacional de Sanidad y Calidad Agroalimentaria (Senasa), es la autoridad de aplicación del Sistema. La base normativa de la notificación de enfermedades está fundada en la Resolución Senasa Nº 153/2021, la cual tiene por objetivo adecuar a la normativa internacional vigente en cada materia sobre los sistemas de notificación de enfermedades animales, de vigilancia epidemiológica y seguimiento epidemiológico continuo, análisis de riesgo, emergencias sanitarias y un dispositivo reglamentario que contemple todos los aspectos de protección y lucha contra las enfermedades. Esta norma abroga las Resoluciones N° 234/1996 del entonces Servicio Nacional de Sanidad Animal, la Resolución Senasa N°422/2003 y la Resolución Senasa N° 540/2010. Table Of Contents A list of subunits of the resource. 1. Control y erradicación 1.1. Sospecha de enfermedades de denuncia obligatoria 1.2. Implementación del plan de contingencia ante la confirmación de enfermedades exóticas. 1.3 Sacrificio sanitario 1.3.1. Gasificación con dióxido de carbono (CO2) 1.3.2 Método de espuma de alta hermeticidad 1.3.3 Dislocación cervical 1.4 Eliminación de cadáveres 1.4.1 Enterramiento 1.4.2 Incineración 1.4.3 Compostaje 1.5 Eliminación de la cama, deyecciones de aves o productos avícolas 2. Sistema de Compartimentación Bienestar Animal Veterinarios https://biblioteca.senasa.gob.ar/files/original/b9124f9b5752f02e3d972ec6995e9c3b.pdf 936256b76111140ec086ab63cd1bedb7 PDF Text Text CURSO VETERINARIOS ACREDITADOS EN SANIDAD y BIENESTAR AVIAR MÓDULO 4 BIENESTAR ANIMAL EN LA PRODUCCIÓN AVÍCOLA �ÍNDICE 1. BIENESTAR ANIMAL EN LA PRODUCCIÓN AVÍCOLA 1.1. Introducción 1.2. Definición 1.3. Importancia 1.4. Normativa nacional e internacional 1.4.1. Normativa nacional 1.4.2. Normativa internacional 1.5. Bibliografía 2 �1. BIENESTAR ANIMAL EN LA PRODUCCIÓN AVÍCOLA Durante este módulo abordaremos la noción de bienestar animal (BA) y conoceremos la normativa vigente en Argentina para aves de producción, así como las recomendaciones internacionales en la temática. 1.1. INTRODUCCIÓN El BA es un área de estudio compleja y multidisciplinaria en la que intervienen aspectos científicos, éticos, legales, económicos, políticos, culturales, sociales y religiosos. En las últimas décadas, se ha evidenciado un interés creciente por esta temática a nivel mundial. Los consumidores se muestran interesados por el trato que reciben los animales en general, y particularmente aquellos criados para la producción de alimentos, mientras que muchos ganaderos y productores lo consideran como una parte integrante de las características de calidad de sus productos. El BA no es un requisito más a cumplir impuesto por mercados, sino una herramienta más dentro de las cadenas de valor que tienen como fin promover la calidad e inocuidad de los productos. El BA debe cuidarse de manera integral a lo largo de la cadena pecuaria, de manera tal de minimizar los problemas, salvaguardar la inversión y propiciar el desarrollo sostenible de cada actividad, atendiendo además a la demanda del público en general y los consumidores de productos de origen animal en particular. Este concepto se proyecta a la seguridad alimentaria, la sustentabilidad y al impacto ambiental de la producción animal. 1.2. DEFINICIÓN El BA puede definirse como el estado de un animal en relación a sus intentos por hacer frente al ambiente. Esto significa que las condiciones del ambiente en el que se encuentren los animales influirán directamente en su bienestar, a tres niveles:  El funcionamiento biológico (su estado de salud) 3 � El comportamiento  Los estados afectivos (confort, placer, satisfacción, sufrimiento, dolor, frustración, etc.) Leer con atención La Organización Mundial de Sanidad Animal (OIE) señala que el término BA designa el estado físico y mental de un animal en relación con las condiciones en las vive y muere. La salud animal es un componente esencial del BA, pero no es el único. Las buenas condiciones de BA exigen que los animales se críen en situaciones de mínimo estrés, dolor y/o temor; que se les permita satisfacer sus necesidades nutricionales, sanitarias y comportamentales; que se prevengan sus enfermedades y se les administren tratamientos veterinarios apropiados; que se los proteja, maneje y alimente correctamente; y que se los manipule y sacrifique de manera compasiva. El BA se refiere, entonces, al estado del animal y puede ser evaluado de manera científica, independientemente de consideraciones morales. Leer con atención Un animal está en buenas condiciones de bienestar si (según indican pruebas científicas) está sano, cómodo, bien alimentado, seguro, puede expresar formas innatas de comportamiento y si no padece sensaciones desagradables de dolor, miedo o sufrimiento. 1.3. IMPORTANCIA El actual enfoque, conocido como “un bienestar”, reconoce los vínculos directos e indirectos existentes entre el bienestar humano, el BA y la integridad del ambiente. Así como la salud humana y la sanidad animal son interdependientes y están vinculadas a los ecosistemas en los cuales coexisten, preservar y mejorar el BA tiene diversas conexiones directas e indirectas con el bienestar del hombre y con temas ambientales. Existen diferentes áreas en las que el bienestar de animales y humanos se interrelacionan y confluyen con la sostenibilidad de los ecosistemas. Entre 4 �ellas, las más relacionadas con la ganadería resaltan los nexos que vinculan el BA con la salud de los animales, la productividad agropecuaria, la seguridad e inocuidad de los alimentos, la salud humana y el bienestar social. Por ejemplo, los animales bajo mejores cuidados son más rentables, la adecuada sanidad animal reduce los costos de producción y un mejor manejo resulta en un aumento en la producción. Por otro lado, los animales tienen un papel importante en la subsistencia humana al ser fuente de comida, ingresos, condición social e identidad cultural, al igual que de compañía y seguridad. Figura 1. Ilustración que representa el concepto de “un bienestar”. Otros autores presentan el vínculo existente entre las condiciones en que son mantenidos los animales de granja y la salud de los animales, los humanos y el ambiente. Cuando los animales son criados en pobres condiciones, sin acceso a una nutrición adecuada, hacinados, incómodos, en condiciones poco higiénicas y bajo malos tratos por parte de los granjeros, el estrés asociado con estas condiciones aumenta la vulnerabilidad de los animales a las enfermedades. Un informe publicado por la Comisión de Producción Industrial de Animales de Granja (PEW) destaca cómo el contacto cercano entre los animales facilita el intercambio y la evolución de los patógenos, y el estrés inducido por el confinamiento denso aumenta la probabilidad de infección y enfermedad en los animales. Los patógenos que circulan en estas poblaciones animales pueden provocar enfermedades a los 5 �humanos, incluso pueden ser un eslabón importante en la aparición de enfermedades infecciosas emergentes. Las aves estresadas son más susceptibles a las infecciones. Evitar el adelgazamiento de las parvadas de pollos y asegurar el manejo humanitario durante la captura y el transporte tienen un papel importante en la reducción de estrés agudo. Los pollos criados en condiciones que promueven el BA presentan niveles más bajos de estrés y están mejor preparados para afrontar las condiciones adversas que los pueden enfermar. Leer con atención El cuidado integral del BA en cada eslabón de la cadena pecuaria redunda en beneficios para todos los actores:  Minimiza el estrés y el sufrimiento de los animales.  Disminuye la mortalidad, las enfermedades y las lesiones en los animales.  Merma las pérdidas y los gastos derivados de éstas.  Reduce el deterioro de las carcasas.  Facilita las rutinas de trabajo diarias, disminuye los riesgos para el personal y califica el trabajo del granjero.  Maximiza la productividad y la rentabilidad de la actividad.  Reduce la necesidad de uso de antibióticos y con ello colabora a combatir la resistencia antimicrobiana.  Mejora la calidad e inocuidad del producto que llega al consumidor.  Mejora la percepción pública como consecuencia del trato digno y humanitario con los animales.  Aumenta la competitividad frente a mercados nacionales e internacionales. 1.4. NORMATIVA NACIONAL E INTERNACIONAL 1.4.1. NORMATIVA NACIONAL A nivel nacional existen normas que regulan los diversos aspectos del BA relacionados con la producción avícola. A continuación profundizaremos sobre la normativa específica para aves de consumo, con énfasis en la producción primaria. Las normas generales a todas las especies, así como 6 �las específicas para aves en relación al transporte y la faena, pueden ser consultadas en la bibliografía complementaria de este módulo. La resolución SENASA N° 413/2003 prohíbe el método de alimentación forzada en las aves, cualquiera fuera la posible utilización posterior de las mismas, sus productos u órganos. La resolución SENASA N° 575/2018 establece los requisitos para el BA en los sistemas productivos de pollos de engorde, en el período comprendido desde la llegada de las aves de un día a la explotación hasta el momento de la captura. La misma señala que las granjas de pollos de engorde deben contar con un Manual de Bienestar Animal, donde se describan claramente las medidas que adopte la empresa para cumplir con los requisitos establecidos en su ANEXO. Algunos de ellos son:  Alojamiento adecuado para proteger a las aves de las condiciones ambientales adversas y de la acción de animales predadores.  Condiciones térmicas apropiadas al estadio de desarrollo de los pollos, evitándose niveles extremos de calor, humedad y frío.  Verificación de la gestión del entorno térmico con la frecuencia suficiente como para que los posibles fallos del sistema puedan comunicarse antes de que causen problemas de bienestar.  Período suficiente de oscuridad continuada al día para facilitar el descanso de los pollos y período adecuado de luz continúa. La intensidad lumínica debe permitir a los pollos encontrar el alimento y el agua después de su alojamiento en el galpón, estimular la actividad y facilitar la inspección adecuada.  Sistema de ventilación que asegure una correcta renovación del aire del interior del galpón. Concentraciones superiores a 25 ppm de amoníaco, 5000 ppm de CO2 y 50 ppm de CO resultan perjudiciales para el BA. Además, los niveles de polvo deben mantenerse al mínimo. 7 �Figura 2. Ambiente óptimo en la nave, en relación a la edad de los de pollos de engorde.  Acciones tendientes a minimizar la exposición de los pollos de engorde a ruidos fuertes o repentinos, con el fin de prevenir el estrés y las reacciones de miedo que conducen al amontonamiento.  Suelo de fácil limpieza y desinfección. Material de la cama seco y suelto, para aislar a los pollitos del suelo y alentar el comportamiento específico de la especie.  Manejo de la cama, la ventilación y los bebederos, que evite la presentación de afecciones como pododermatitis, celulitis y enteritis. Figura 3. La pododermatitis es una de las consecuencias de un mal manejo de cama, junto con mala ventilación y excesiva densidad de carga. Estos son algunos de los problemas más frecuentes del bienestar en pollos de engorde. 8 � Acceso fácil y libre al alimento y al agua, exceptuando que lo contrario sea indicado por un veterinario o que se encuentren bajo ayuno pre sacrificio. Leer con atención Los pollos de engorde que sean físicamente incapaces de acceder al alimento o al agua, deberán ser sometidos a sacrificio humanitario lo antes posible.  Densidad de alojamiento que permita a los pollos acceder al alimento y al agua, desplazarse y cambiar de postura, pudiendo expresar el comportamiento específico de la especie.  Capacitación anual para el personal, así como cuando exista recambio de empleados.  Planes de emergencia para reducir y mitigar las consecuencias de desastres naturales, equipos brotes de enfermedad y deficiencias de mecánicos, tomando en consideración los los programas nacionales y las recomendaciones del SENASA.  Tiempo máximo de ayuno que no superar las 12 horas. El agua no debe retirarse sino hasta el momento de la carga y, en épocas de clima cálido, la restricción hídrica debe hacerse en forma escalonada para minimizar el tiempo de restricción.  Captura con luz suave o luz azul, para calmar a los pollos. Leer con atención El sacrificio resulta humanitario si es indoloro, apropiado para la especie e irreversible, permitiendo alcanzar una rápida inconsciencia y muerte con una mínima inmovilización. Debe, asimismo, garantizar la seguridad de los operarios y no tener consecuencias adversas sobre el medio ambiente. Los métodos autorizados para realizar el sacrificio por cuestiones sanitarias o ante emergencias son: a) Aturdimiento por choque eléctrico manual, inmediatamente seguido de un corte en el cuello; b) Dislocación cervical o c) Dióxido de carbono o una mezcla de dióxido de carbono y argón, colocados en un recipiente adecuado y a una concentración apropiada. 9 � Carga en las jaulas de transporte de manera adecuada para minimizar el estrés y evitar lesiones en las aves. El límite máximo de carga será establecido conforme lo dispone el Anexo II de la Resolución SENASA N° 581/2014 (Tabla 1). Figura 4. Forma adecuada de capturar a las aves (izq.) y de cargar las jaulas de transporte en el camión (der.), de modo de minimizar el estrés y evitar lesiones. Figura 5. Formas inadecuadas de capturar a las aves. Tabla 1. Límites máximos de carga para aves, establecidos en la normativa vigente (Res. SENASA Nº 581/2014). 10 �Leer con atención Al momento de la captura: a) Planificar las acciones para reducir al mínimo el estrés y período de tiempo hasta el momento del sacrificio. b) Someter a sacrificio humanitario a aquellos pollos de engorde no aptos para la carga o el transporte, por encontrarse enfermos o heridos. c) Realizar la captura únicamente por operarios que hayan recibido una capacitación formal y cuenten con la idoneidad necesaria. d) Sujetar a las aves por el lomo, sosteniendo las alas y manteniendo al ave siempre en posición vertical, no debiendo ser capturadas por el cuello, ni las alas. Solo aquellas aves con un peso inferior a 1,8 kg pueden excepcionalmente ser cargadas por las 2 patas, mientras que el número máximo en cada mano no sea mayor a 3 animales. Si se emplean equipos de captura mecánicos, estos deben ser diseñados, manejados y mantenidos de forma tal que minimicen las heridas, el estrés o el miedo en los pollos. 1.4.2. NORMATIVA INTERNACIONAL A nivel internacional, la OIE publicó las primeras normas sobre BA en el año 2004 en el Código Terrestre y en el 2008 en el Código Acuático. Estas normas se actualizan con regularidad en función de la evolución de los conocimientos científicos y se completan progresivamente con el fin de abarcar diferentes aspectos del BA. El capítulo 7.10 del Código Terrestre establece las normas relativas al BA en los sistemas de producción de pollos de engorde. El mismo se encuentra disponible para su lectura en la bibliografía complementaria. Actualmente, la OIE se encuentra trabajando en un capítulo sobre BA en gallinas ponedoras. 1.5. BIBLIOGRAFÍA OIE (2018). OIE - World Organization for Animal Health. Recuperado el 04 de 05 de 2018, de http://www.oie.int/es/bienestar-animal/el-bienestaranimal-de-un-vistazo/ 11 �Broom, D. (1991). Animal welfare: Concepts and measurements. Journal of Animal Science, 69, 4167-4175. Fraser, D., Weary, D. M., Pajor, E. A., & Milligan, B. N. (1997). A scientific conception of animal welfare that reflects ethical concerns. Animal welfare , 6, 187-205. OIE (2020). Código Sanitario para los Animales Terrestres. Recuperado el 05 de 03 de 2020, de https://www.oie.int/es/normas/codigo- terrestre/acceso-en-linea/ Racciatti, D.S., Bottino D. (2018). Buenas prácticas ganaderas y el bienestar animal. Agropost 156, 6-7. Smith, C., & Velarde, A. (2016). One Welfare–a platform for improving human and animal welfare. Veterinary Record. Organización Mundial de Sanidad Animal (OIE) (2013). – «Una sola salud» en breve. Recuperado el 18 de 07 de 2018, de www.oie.int/es/para-losperiodistas/onehealth-es/ Pinillos, R. G., Appleby, M., Manteca, X., Scott-Park, F., Smith, C., & Velarde, A. (2016). One Welfare–a platform for improving human and animal welfare. The Veterinary record, 179(16), 412-413. Akhtar, A. (2013). The need to include animal protection in public health policies. Journal of public health policy, 34(4), 549-559. Northcutt, J.K., Berrang, M.E., Dickens, J.A., Fletcher, D.L.,Cox, N.A. (2003) Effect of broiler age, feed withdrawal, and transportation on levels of coliforms, Campylobacter, Escherichia coli and Salmonella on carcasses before and after immersion chilling. Poultry Science, 82:169-73. PEW Commission on Industrial Farm Animal Production. (2008) Industrial farm animal production, antimicrobial resistance and human health. Recuperado el el 05 de 03 de 2020, de http://www.ncifap.org/ Resolución SENASA Nº 575/2018. 2020 Servicio Nacional de Sanidad y Calidad Agroalimentaria 12 �13 � Dublin Core The Dublin Core metadata element set is common to all Omeka records, including items, files, and collections. For more information see, http://dublincore.org/documents/dces/. Title A name given to the resource Publicaciones SENASA Dublin Core The Dublin Core metadata element set is common to all Omeka records, including items, files, and collections. For more information see, http://dublincore.org/documents/dces/. Title A name given to the resource Módulo 4: Bienestar animal en la producción avícola Publisher An entity responsible for making the resource available Servicio Nacional de Sanidad y Calidad Agroalimentaria Date A point or period of time associated with an event in the lifecycle of the resource [201?] Language A language of the resource Es Type The nature or genre of the resource Monografía Identifier An unambiguous reference to the resource within a given context B.S.0108 Abstract A summary of the resource. Este módulo aborda la noción de bienestar animal (BA) y conoceremos la normativa vigente en Argentina para aves de producción, así como las recomendaciones internacionales en la temática. Table Of Contents A list of subunits of the resource. 1. BIENESTAR ANIMAL EN LA PRODUCCIÓN AVÍCOLA 1.1. Introducción 1.2. Definición 1.3. Importancia 1.4. Normativa nacional e internacional 1.4.1. Normativa nacional 1.4.2. Normativa internacional 1.5. Bibliografía Creator An entity primarily responsible for making the resource Servicio Nacional de Sanidad y Calidad Agroalimentaria Bienestar Animal https://biblioteca.senasa.gob.ar/files/original/a9c59e3963f375c6353654f228083584.pdf 523595826c18a2d548c6e8f2216518e3 PDF Text Text República Argentina - Poder Ejecutivo Nacional 2018 - Año del Centenario de la Reforma Universitaria Resolución Número: RESOL-2018-670-APN-PRES#SENASA CIUDAD DE BUENOS AIRES Viernes 5 de Octubre de 2018 Referencia: EE 10008319/2018 - RECTIFICA RESOLUCIÓN SENASA N° 263/2018 VISTO el Expediente Nº EX-2018-10008319- -APN-DNTYA#SENASA, la Resolución N° 263 del 4 de julio de 2018 del SERVICIO NACIONAL DE SANIDAD Y CALIDAD AGROALIMENTARIA, y CONSIDERANDO: Que por la Resolución Nº 263 del 4 de julio de 2018 del SERVICIO NACIONAL DE SANIDAD Y CALIDAD AGROALIMENTARIA, se prohíbe la elaboración, la importación, el fraccionamiento, la comercialización y el uso de las sustancias activas carbofuran, carbosulfan, diazinon, aldicarb y dicofol y sus productos formulados. Que mediante Memorándum N° ME-2018-32180800-APN-DAYB#SENASA, la Dirección de Agroquímicos y Biológicos dependiente de la Dirección Nacional de Agroquímicos, Productos Veterinarios y Alimentos, informa que se ha detectado un error material involuntario en el undécimo considerando y en el Artículo 3° de la citada Resolución N° 263/18, en cuanto al nombre de la sustancia activa “carburan”, siendo el correcto “carbofuran”. Que, por lo expuesto, corresponde rectificar el décimo once considerando y el Artículo 3° de la mentada Resolución N° 263/18. Que el suscripto es competente para dictar la presente medida en virtud de las facultades conferidas por el Artículo 8°, inciso h) del Decreto N° 1.585 del 19 de diciembre de 1996, sustituido por su similar N° 825 del 10 de junio de 2010. Por ello, EL PRESIDENTE DEL SERVICIO NACIONAL DE SANIDAD Y CALIDAD AGROALIMENTARIA RESUELVE: �ARTÍCULO 1º.- Rectifícase y sustitúyase el undécimo considerando de la Resolución Nº 263 del 4 de julio de 2018 del SERVICIO NACIONAL DE SANIDAD Y CALIDAD AGROALIMENTARIA, el que quedará redactado de la siguiente manera: “Que, sin perjuicio de ello, es necesario mantener en el mercado la formulación en gránulos de carbofuran al DIEZ POR CIENTO (10 %) como única alternativa de aptitud insecticida y nematicida en los cultivos de papa y ajo.”. ARTÍCULO 2º.- Rectifícase y sustitúyase el Artículo 3° de la citada Resolución Nº 263/18, el que quedará redactado de la siguiente manera: “ARTÍCULO 3º.- Excepción. Se exceptúa de la prohibición establecida en los Artículos 1º y 2º de la presente resolución, la formulación en gránulos de carbofuran al DIEZ POR CIENTO (10 %).”. ARTÍCULO 3°.- Comuníquese, publíquese, dese a la DIRECCIÓN NACIONAL DEL REGISTRO OFICIAL y archívese. Digitally signed by NEGRI Ricardo Luis Date: 2018.10.05 18:41:38 ART Location: Ciudad Autónoma de Buenos Aires Ricardo Luis Negri Presidente Presidencia Servicio Nacional de Sanidad y Calidad Agroalimentaria Digitally signed by GESTION DOCUMENTAL ELECTRONICA GDE DN: cn=GESTION DOCUMENTAL ELECTRONICA - GDE, c=AR, o=MINISTERIO DE MODERNIZACION, ou=SECRETARIA DE MODERNIZACION ADMINISTRATIVA, serialNumber=CUIT 30715117564 Date: 2018.10.05 18:41:41 -03'00' � Dublin Core The Dublin Core metadata element set is common to all Omeka records, including items, files, and collections. For more information see, http://dublincore.org/documents/dces/. Title A name given to the resource Resoluciones SENASA Dublin Core The Dublin Core metadata element set is common to all Omeka records, including items, files, and collections. For more information see, http://dublincore.org/documents/dces/. Title A name given to the resource Resolución SENASA N° 0670/2018 Description An account of the resource Prohibición sustancia activa. Creator An entity primarily responsible for making the resource Servicio Nacional de Sanidad y Calidad Agroalimentaria Date A point or period of time associated with an event in the lifecycle of the resource Viernes 5 de Octubre de 2018 Language A language of the resource Es Type The nature or genre of the resource Resolución Abstract A summary of the resource. Se rectifica y sustituye el undécimo considerando de la Resolución N° 263/2018 del SERVICIO NACIONAL DE SANIDAD Y CALIDAD AGROALIMENTARIA, el que quedará redactado de la siguiente manera: "Que, sin perjuicio de ello, es necesario mantener en el mercado la formulación en gránulos de carbofuran al DIEZ POR CIENTO (10%) como única alternativa de aptitud insecticida y nematicida en los cultivos de papa y ajo". Source A related resource from which the described resource is derived <a href="https://servicios.infoleg.gob.ar/infolegInternet/verNorma.do?id=315072">Resolución SENASA N° 0670/2018</a> https://biblioteca.senasa.gob.ar/files/original/12d0850964ddf870dbf30b55e7a88cc2.pdf 2b3ee3ee9348d2a048926bc19361847f PDF Text Text República Argentina - Poder Ejecutivo Nacional 2018 - Año del Centenario de la Reforma Universitaria Resolución Número: RESOL-2018-684-APN-PRES#SENASA CIUDAD DE BUENOS AIRES Viernes 12 de Octubre de 2018 Referencia: EE 23694783-2018 - MODIFICA DECRETO N° 4238/68 (DADORES DE FRÍO) VISTO el Expediente N° EX-2018-23694783- -APN-DNTYA#SENASA, la Ley N° 27.233, el Reglamento de Inspección de Productos, Subproductos y Derivados de Origen Animal, aprobado por el Decreto N° 4.238 del 19 de julio de 1968, y CONSIDERANDO: Que el Artículo 6° de la Ley N° 27.233, faculta al SERVICIO NACIONAL DE SANIDAD Y CALIDAD AGROALIMENTARIA, a establecer los procedimientos y sistemas para el control público y privado del tráfico federal, importaciones y exportaciones de los productos, subproductos y derivados de origen animal, adecuando los sistemas de fiscalización y certificación higiénico-sanitaria. Que mediante el Decreto N° 4.238 del 19 de julio de 1968 se aprobó el Reglamento de Inspección de Productos, Subproductos y Derivados de Origen Animal. Que la ampliación de los mercados exige aprovechar al máximo las capacidades instaladas tanto en plantas procesadoras como en los depósitos de frío, facilitando la complementación entre establecimientos de distintos rubros habilitados por este Servicio Nacional. Que el tránsito de productos de un establecimiento habilitado a otro para completar frío, no debería ser una traba que afecte el comercio si se hace en condiciones higiénico-sanitarias, manteniendo la trazabilidad y al mismo tiempo permitiendo la optimización de recursos por parte de la industria. Que por lo expuesto, resulta necesario actualizar el citado Reglamento para acompañar los procesos productivos de manera que éstos no afecten la inocuidad de los productos, previniendo la aparición de peligros y verificando los procesos en cada etapa de la cadena agroalimentaria. Que la Dirección de Asuntos Jurídicos ha tomado la intervención que le compete. Que el suscripto es competente para el dictado del presente acto, en virtud de las atribuciones conferidas por el Artículo 8º, inciso f) del Decreto Nº 1.585 del 19 de diciembre de 1996, modificado por su similar Nº 825 del 10 de junio de 2010. �Por ello, EL PRESIDENTE DEL SERVICIO NACIONAL DE SANIDAD Y CALIDAD AGROALIMENTARIA RESUELVE: ARTÍCULO 1º.- Reglamento de Inspección de Productos, Subproductos y Derivados de Origen Animal. Capítulo V – Numerales 5.4.6, 5.4.6.1, 5.4.6.2, 5.4.6.3 y 5.4.6.4 Incorporación. Se incorporan los Numerales 5.4.6, 5.4.6.1, 5.4.6.2, 5.4.6.3 y 5.4.6.4 al Capítulo V del Reglamento de Inspección de Productos, Subproductos y Derivados de Origen Animal, que como Anexo I (IF-2018-48127505-APNDNIYCA#SENASA) forma parte integrante de la presente resolución. ARTÍCULO 2º.- Reglamento de Inspección de Productos, Subproductos y Derivados de Origen Animal. Capítulo XXVIII. Numeral 28.12.1. Incorporación. Se incorpora el Numeral 28.12.1 al Capítulo XXVIII del citado Reglamento, que como Anexo II (IF-2018-47793770-APN-DNIYCA#SENASA) forma parte integrante de la presente resolución ARTÍCULO 3º.- La presente resolución entra en vigencia a partir del día siguiente al de su publicación en el Boletín Oficial. ARTÍCULO 4º.- Comuníquese, publíquese, dese a la DIRECCIÓN NACIONAL DEL REGISTRO OFICIAL y archívese. Digitally signed by NEGRI Ricardo Luis Date: 2018.10.12 09:23:43 ART Location: Ciudad Autónoma de Buenos Aires Ricardo Luis Negri Presidente Presidencia Servicio Nacional de Sanidad y Calidad Agroalimentaria Digitally signed by GESTION DOCUMENTAL ELECTRONICA GDE DN: cn=GESTION DOCUMENTAL ELECTRONICA - GDE, c=AR, o=MINISTERIO DE MODERNIZACION, ou=SECRETARIA DE MODERNIZACION ADMINISTRATIVA, serialNumber=CUIT 30715117564 Date: 2018.10.12 09:24:00 -03'00' � Dublin Core The Dublin Core metadata element set is common to all Omeka records, including items, files, and collections. For more information see, http://dublincore.org/documents/dces/. Title A name given to the resource Resoluciones SENASA Dublin Core The Dublin Core metadata element set is common to all Omeka records, including items, files, and collections. For more information see, http://dublincore.org/documents/dces/. Title A name given to the resource Resolución SENASA N° 0684/2018 Description An account of the resource Tráfico internacional. Creator An entity primarily responsible for making the resource Servicio Nacional de Sanidad y Calidad Agroalimentaria Date A point or period of time associated with an event in the lifecycle of the resource Viernes 12 de Octubre de 2018 Language A language of the resource Es Type The nature or genre of the resource Resolución Abstract A summary of the resource. Reglamento de Inpección de Productos, Subproductos y Derivados de Origen Animal. Capítulo V - Numerales 5.4.6, 5.4.61, 5.4.6.2, 5.4.6.3, y 5.4.6.4 Incorporación. Se incorporan los Numerales 5.4.6, 5.4.6.1, 5.4.6.2, 5.4.6.3 y 5.4.6.4 al Capítulo V del Reglamento de Inspección de Productos, Subproductos y Derivados de Origen Animal, que como Anexo I (IF-2018-48127505-APN-DNIYCA#SENASA) forma parte integrante de la presente resolución. Source A related resource from which the described resource is derived <a href="https://servicios.infoleg.gob.ar/infolegInternet/verNorma.do?id=315277">Resolución SENASA N° 0684/2018</a> https://biblioteca.senasa.gob.ar/files/original/757a98b3c9724ab0f1d8e13966dbf5a4.pdf 0f0cce8f4cc1ee32efe836296ee5261b PDF Text Text República Argentina - Poder Ejecutivo Nacional 2018 - Año del Centenario de la Reforma Universitaria Resolución Número: RESOL-2018-744-APN-PRES#SENASA CIUDAD DE BUENOS AIRES Lunes 29 de Octubre de 2018 Referencia: EE 32213455/2018 - MODIFICACIÓN DEL DECRETO Nº 4.238/68 - NUMERAL 27.1.2 VISTO el Expediente N° EX-2018-32213455- -APN-DNTYA#SENASA, la Ley N° 27.233, el Decreto N° 4.238 del 19 de julio de 1968, y CONSIDERANDO: Que mediante el Artículo 3° de la Ley N° 27.233, se establece como responsabilidad primaria e ineludible de toda persona física o jurídica vinculada a la producción, obtención o industrialización de productos, subproductos y derivados de origen silvo-agropecuario y de la pesca, el velar y responder por la sanidad, inocuidad, higiene y calidad de su producción, de conformidad a la normativa vigente y a la que en el futuro se establezca. Que por el Artículo 4° de la citada Ley, se dispone que la intervención de las autoridades sanitarias competentes, en cuanto corresponda a su actividad de control, no exime la responsabilidad directa o solidaria de los distintos actores de la cadena agroalimentaria respecto de los riesgos, peligros o daños a terceros que deriven de la actividad desarrollada por estos. Que en el Capítulo XXVII del Reglamento de Inspección de Productos, Subproductos y Derivados de Origen Animal, aprobado por el Decreto N° 4.238 del 19 de julio de 1968, en su Numeral 27.1, Obligatoriedad de la Documentación Sanitaria, se prescribe que toda primera materia, producto, subproducto o derivado de origen animal, destinado al consumo, elaboración o depósito, en un establecimiento habilitado o que se encuentre en tránsito interjurisdiccional o internacional, debe estar amparado permanentemente por una documentación sanitaria extendida por el SERVICIO NACIONAL DE SANIDAD Y CALIDAD AGROALIMENTARIA. Que es necesario establecer como requisito que los huevos en cáscara sean amparados por un documento que sirva tanto para conocer el origen como para poder efectuar posteriormente la trazabilidad del producto involucrado. Que se impone entonces proceder a la sustitución del Numeral 27.1.2 del Reglamento mencionado para posibilitar la implementación del sistema de certificación que ampare los huevos que realizan tránsito federal. �Que la Comisión Permanente de Estudio y Actualización del citado reglamento ha tomado la debida intervención. Que la Dirección de Asuntos Jurídicos ha tomado la intervención que le compete. Que el suscripto está facultado para el dictado del presente acto conforme lo establecido en el Artículo 8°, inciso f) del Decreto N° 1.585 del 19 de diciembre de 1996, modificado por su similar N° 825 del 10 de junio de 2010. Por ello, EL PRESIDENTE DEL SERVICIO NACIONAL DE SANIDAD Y CALIDAD AGROALIMENTARIA RESUELVE: ARTÍCULO 1°.- Derogación y Sustitución. Se deroga el inciso a) del Numeral 27.1.2 del Capítulo XXVII del Reglamento de Inspección de Productos, Subproductos y Derivados de Origen Animal, aprobado por el Decreto N° 4.238 del 19 de julio de 1968 y se sustituye su texto por el siguiente: Animales silvestres de caza muertos. Excepciones 27.1.2 Quedan también exceptuados del cumplimiento del de Numeral 27.1 los animales silvestres de caza, muertos, que se remiten desde el lugar de captura hasta establecimientos habilitados, para su inspección y procesamiento. ARTÍCULO 2°.- Comuníquese, publíquese, dése a la DIRECCIÓN NACIONAL DEL REGISTRO OFICIAL y archívese. Digitally signed by NEGRI Ricardo Luis Date: 2018.10.29 15:25:50 ART Location: Ciudad Autónoma de Buenos Aires Ricardo Luis Negri Presidente Presidencia Servicio Nacional de Sanidad y Calidad Agroalimentaria Digitally signed by GESTION DOCUMENTAL ELECTRONICA GDE DN: cn=GESTION DOCUMENTAL ELECTRONICA - GDE, c=AR, o=MINISTERIO DE MODERNIZACION, ou=SECRETARIA DE MODERNIZACION ADMINISTRATIVA, serialNumber=CUIT 30715117564 Date: 2018.10.29 15:25:53 -03'00' � Dublin Core The Dublin Core metadata element set is common to all Omeka records, including items, files, and collections. For more information see, http://dublincore.org/documents/dces/. Title A name given to the resource Resoluciones SENASA Dublin Core The Dublin Core metadata element set is common to all Omeka records, including items, files, and collections. For more information see, http://dublincore.org/documents/dces/. Title A name given to the resource Resolución SENASA N° 0744/2018 Description An account of the resource Productos de origen silvo-agropecuaria y de la pesca. Creator An entity primarily responsible for making the resource Servicio Nacional de Sanidad y Calidad Agroalimentaria Date A point or period of time associated with an event in the lifecycle of the resource Lunes 29 de Octubre de 2018 Language A language of the resource Es Type The nature or genre of the resource Resolución Abstract A summary of the resource. Se deroga el inciso a) del Numeral 27.1.2 del Capítulo XXVII del Reglamento de Inspección de Productos, Subproductos y Derivados de Origen Animal, aprobado por el Decreto N° 4.238 del 19 de julio de 1968. Source A related resource from which the described resource is derived <a href="https://servicios.infoleg.gob.ar/infolegInternet/verNorma.do?id=315943">Resolución SENASA N° 0744/2018</a>