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2259783a2e1f422ae58b4095d951f21f
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GUÍA
INFLUENZA AVIAR
Pautas para la prevención
�El Servicio Nacional de Sanidad y Calidad Agroalimentaria (Senasa) es un organismo descentralizado,
responsable de ejecutar las políticas nacionales en materia de sanidad y calidad animal, vegetal y de la
inocuidad de los alimentos de su competencia, así como de verificar el cumplimiento de la normativa
vigente en la materia.
Equipos de trabajo
Coordinación General de Comunicación Institucional
Dirección Nacional de Sanidad Animal
Edición 2026
�Contenido
Introducción
4
Objetivo
4
La enfermedad
4
Ciclo de transmisión
4
Síntomas en aves
5
Pautas de prevención
5
En la producción en establecimientos avícolas
5
En la crianza de aves de traspatio
6
En la manipulación de aves silvestres
6
Acciones del Senasa
6
Fiscalización de procesos de producción
7
Notificación al Senasa
7
Anexos
8
Glosario
8
Preguntas y respuestas frecuentes
9
Contacto
11
GUÍA. INFLUENZA AVIAR. PAUTAS PARA LA PREVENCIÓN
3
�Introducción
La influenza aviar representa un desafío sanitario de importancia mundial
por su capacidad de afectar tanto a aves domésticas como silvestres, generar
pérdidas productivas, comprometer el comercio internacional de mercancías
aviares y afectar el bienestar animal. En la Argentina, el Senasa desarrolla acciones permanentes de vigilancia epidemiológica, prevención y respuesta inmediata para reducir el riesgo de ingreso y propagación de esta enfermedad.
Esta guía reúne información técnica y recomendaciones preventivas destinadas a productores avícolas, criadores de aves de traspatio, personas que trabajan con fauna silvestre y público general.
Objetivo
Brindar información clara y actualizada sobre la influenza aviar, sus formas de
transmisión, síntomas, medidas de prevención y mecanismos de notificación,
promoviendo prácticas de bioseguridad que contribuyan a proteger la sanidad
animal, la producción avícola y la salud pública.
La enfermedad
La influenza aviar (IA) tipo A es una enfermedad altamente infecciosa, producida por un virus de la familia Orthomyxoviridae que afecta principalmente a las aves
domésticas y silvestres. En ocasiones también pueden contraerlo las personas y otras especies animales, como los mamíferos marinos.
De la gran cantidad de familias de aves, son especialmente susceptibles a la
IA las gallinas, pavos, codornices, faisanes, así como también especies acuáticas, como patos, gansos, flamencos y cisnes. La influenza aviar puede clasificarse en dos categorías, según la gravedad de la enfermedad:
• Influenza aviar de baja patogenicidad (IABP), que – típicamente - causa
leves o ningún signo clínico;
• Influenza aviar de alta patogenicidad (IAAP), que puede causar signos clínicos graves y, potencialmente, altos índices de mortalidad (hasta un 90 o
100% de las aves de un lote).
Ciclo de transmisión
Las aves infectadas eliminan el virus principalmente a través de las heces y las secreciones respiratorias. Por este motivo, la enfermedad puede propagarse entre establecimientos mediante la contaminación de vehículos, equipos, herramientas de trabajo, ropa y calzado del
personal, cuando no se aplican adecuadamente las medidas de bioseguridad.
GUÍA. INFLUENZA AVIAR. PAUTAS PARA LA PREVENCIÓN
4
�En cuanto a la transmisión, la misma puede producirse por contacto directo con
aves infectadas o de forma indirecta, a través de agua, alimento o materiales
contaminados con secreciones o excretas que contengan el virus. Debido a su
capacidad de persistencia, el virus de la IA puede sobrevivir durante períodos
prolongados en el ambiente, especialmente en condiciones de bajas temperaturas, lo que favorece su dispersión y permanencia..
Otra de las vías de transmisión del virus es por medio el contacto directo con las
secreciones de las aves infectadas o indirecto, a través de los piensos y el agua
contaminada. Debido a su naturaleza resistente, el virus de IA tiene la capacidad
de sobrevivir en el medio ambiente durante largos períodos y a muy bajas temperaturas.
Respecto a las aves migratorias silvestres –en especial las acuáticas–, las mismas son hospedadoras y reservorios naturales del virus de la influenza aviar,
debido a que pueden transportarlo en sus tractos intestinales o respiratorios.
Cuando estas especies silvestres tienen leves signos clínicos de la enfermedad
- o carecen de ellos - pueden propagarla entre países vecinos o a través de largas distancias, que suelen ser consistentes con sus rutas migratorias. Por esta
razón, la influenza aviar está considerada dentro del Marco Global de Enfermedad Transfronterizas de los Animales (GF-TADs, en inglés).
En los últimos años, los cambios en la ecología y epidemiología de ciertas cepas
del virus de IA llevaron a la infección de numerosas poblaciones de aves silvestres. Como consecuencia, se produjo la muerte de muchas especies silvestres,
incluyendo algunas en peligro de extinción.
Síntomas en aves
•
•
•
•
•
•
•
Falta de apetito y descoordinación.
Plumaje erizado.
Respiración dificultosa, con secreciones nasales.
Diarrea.
Menor producción de huevos, con cáscara blanda o deforme.
Hinchazón de cabeza y color azulado de cresta, barbillas y patas.
Postración y muerte.
Pautas de prevención
En la producción en establecimientos avícolas
Conforme a la Resolución Senasa N.° 1699/2019 (https://www.boletinoficial.gob.
ar/detalleAviso/primera/223674/20191211), los establecimientos avícolas deben
implementar, mantener y verificar el cumplimiento de las medidas de manejo,
higiene y bioseguridad, orientadas a prevenir el ingreso y la diseminación de agentes patógenos, como el virus de la influenza aviar.
GUÍA. INFLUENZA AVIAR. PAUTAS PARA LA PREVENCIÓN
5
�Estas medidas comprenden:
• Controlar los ingresos de personas, vehículos y equipos.
• Realizar un manejo adecuado de residuos y mortalidades.
• Controlar plagas y roedores.
• Utilizar ropa y calzado exclusivo para las tareas dentro de la granja.
• Limpiar y desinfectar vehículos, herramientas y equipos de trabajo.
• Restringir el contacto entre aves domésticas y silvestres.
• Mantener protegidos el alimento y fuentes de agua.
• Registrar y notificar cualquier signo compatible con la enfermedad.
En la crianza de aves de traspatio
Las aves de traspatio también pueden verse afectadas por la influenza aviar y
actuar como puente epidemiológico entre aves silvestres y establecimientos
productivos.
• Mantener las aves en espacios protegidos y limpios.
• No compartir jaulas, bebederos o comederos con otras aves sin desinfección previa.
• Evitar la presencia de aves silvestres en zonas de alimentación.
• Separar las aves nuevas durante al menos 14 días antes de incorporarlas
al grupo.
• Notificar de inmediato al Senasa ante mortandad o síntomas sospechosos.
En la manipulación de aves silvestres
Las personas que trabajan con aves silvestres deben extremar las medidas de
prevención para evitar la exposición al virus y reducir el riesgo de dispersión.
• Evitar el contacto directo con aves enfermas o muertas.
• Utilizar elementos de protección personal adecuados.
• Higienizar y desinfectar herramientas, vehículos y ropa de trabajo.
• Dar aviso al Senasa ante hallazgos de mortandad o comportamientos
anormales.
Acciones del Senasa
El Senasa coordina acciones de vigilancia epidemiológica, prevención, control
y comunicación frente a la influenza aviar en todo el territorio nacional.
Entre sus principales funciones se encuentran la toma y análisis de muestras, la investigación de sospechas, la delimitación de zonas sanitarias, la
fiscalización de medidas de bioseguridad y la difusión de recomendaciones
para distintos sectores involucrados.
GUÍA. INFLUENZA AVIAR. PAUTAS PARA LA PREVENCIÓN
6
�Fiscalización de procesos de producción
El Senasa verifica el cumplimiento de las normativas sanitarias vigentes mediante inspecciones y controles en establecimientos avícolas, transportes,
ferias y otros puntos vinculados a la producción y comercialización de aves y
sus productos.
Asimismo, promueve la aplicación de planes de contingencia y medidas preventivas contempladas la Resolución Senasa N.° 466/2025 (https://www.boletinoficial.gob.ar/detalleAviso/primera/327816/20250703).
Notificación al Senasa
La notificación temprana es fundamental para contener la enfermedad y reducir su impacto sanitario y productivo.
El Senasa recibe denuncias sobre mortandad o signos compatibles con influenza aviar a través de oficinas locales, correo electrónico, WhatsApp y formularios web oficiales, garantizando una respuesta rápida y la intervención
de equipos técnicos especializados.
Cualquier persona puede notificar al Senasa si identifica mortandad, signos
nerviosos, digestivos y/o respiratorios en aves silvestres o de corral, a través
de los siguientes canales:
En la oficina del Senasa más cercana (personalmente o por teléfono), por
Whatsapp al 11 5700 5704; escribiendo un correo electrónico a notificaciones@senasa.gob.ar, a través del Formulario Avisá al Senasa disponible en
nuestro sitio web.
Para más información, puede consultar la Ficha técnica de influenza aviar o
el micrositio para la prevención de influenza aviar.
GUÍA. INFLUENZA AVIAR. PAUTAS PARA LA PREVENCIÓN
7
�Anexos
Glosario
Aves de traspatio: designa a las aves que se crían en un predio registrado
ante el Senasa como aves de traspatio, cuyos productos solo se ofrecen directamente para el autoconsumo.
Aves silvestres: designa un ave cuyo fenotipo no se ha visto afectado por la
selección humana y que vive independiente, sin necesitar supervisión o control de seres humanos.
Aves de corral: designa todas las aves criadas o mantenidas en cautiverio
para la producción de mercancías comerciales avícolas o la reproducción
para estos fines. Las aves no de corral se considerarán como aves de corral
cuando tengan contacto directo o indirecto con estas últimas o con instalaciones avícolas.
Aves no de corral: incluye las aves silvestres de vida libre, traspatio, así como
las silvestres cautivas criadas para espectáculos, competencias, exposiciones, colecciones de zoológicos y concursos, y para la reproducción o la venta a dichos efectos, así como las aves de compañía, siempre que no tengan
contacto directo o indirecto con aves de corral o instalaciones de producción
avícolas.
Aves de un día: designa a las aves que tienen, como máximo, 72 horas después de haber salido del huevo.
Aves domésticas: Aves criadas y manejadas por las personas con fines productivos, recreativos o de compañía.
Biocontención: acciones que se implementan para disminuir el riesgo biológico de diseminación de un patógeno.
Bioseguridad: designa a un conjunto de medidas de gestión, manejo, sanitarias y profilácticas, cuyo objetivo es reducir el riesgo de introducción, radicación y propagación de enfermedades, infecciones o infestaciones animales
hacía, desde y dentro de una población animal.
Brote: designa la presencia de uno o más casos de IA H5/H7 en una unidad
epidemiológica.
Caso: designa a un ave con o sin signos clínicos manifiestos, que ha resultado
positivo a las pruebas diagnósticas confirmatorias de IA H5/H7, o a aves con
sintomatología en las que mediante una evaluación epidemiológica se compruebe un nexo epidemiológico con un caso confirmado.
Hospedadores: Animales o seres vivos en los que un agente infeccioso puede
alojarse, desarrollarse o multiplicarse.
GUÍA. INFLUENZA AVIAR. PAUTAS PARA LA PREVENCIÓN
8
�IAAP: Influenza Aviar Altamente Patógena. Variante de la gripe aviar que provoca cuadros graves y alta mortalidad en aves.
IABP: Influenza Aviar de Baja Patogenicidad. Variante de la gripe aviar que
generalmente produce síntomas leves o puede pasar desapercibida en aves.
Vigilancia epidemiológica: Monitoreo y análisis permanente de enfermedades
para detectar, prevenir y controlar riesgos sanitarios.
Zona de Control Sanitario (ZCS): corresponde a un área territorial donde se
detectan uno o más brotes de IAAP en aves de corral, cuyos límites son determinados por el Senasa. Tiene por finalidad realizar actividades de bioseguridad, biocontención y vigilancia para contener y erradicar el o los brotes de
la zona. En brotes de aves de corral, esta ZCS está compuesta por la Zona de
Perifoco (ZP) con un radio de tres kilómetros y la Zona de Vigilancia (ZV) con
un radio de siete kilómetros alrededor de la anterior. Cuando existan cursos
o espejos de agua o nexos epidemiológicos del brote, el Senasa puede modificar la ZCS, según riesgo epidemiológico.
Zoonosis: Enfermedades que pueden transmitirse entre animales y personas.
Preguntas y respuestas frecuentes
¿Qué es la influenza aviar? Es una enfermedad viral contagiosa que afecta
principalmente a aves domésticas y silvestres. Existen dos variantes: la de
baja patogenicidad (IABP), que causa síntomas leves o ninguno, y la de alta
patogenicidad (IAAP), que puede provocar cuadros graves y alta mortalidad
en aves.
¿Es peligrosa para las personas? El riesgo es muy bajo. Solo están expuestas las personas con contacto directo, cercano y prolongado con aves infectadas o ambientes muy contaminados. No existe ningún caso registrado de
transmisión entre personas en el mundo.
¿Los alimentos son seguros? Sí. Comer carne aviar, huevos, pescado y maris
cos es seguro. Tampoco hay riesgo en la recolección de almejas y caracoles
de la costa.
¿Qué hago si mis aves están enfermas o hay mortandad? Notificá al Senasa
de inmediato por cualquiera de estos canales:
• Oficina Senasa más cercana
• WhatsApp: 11 5700-5704
• Email: notificaciones@senasa.gob.ar
• Formulario web: “Avisá al Senasa”
¿Cómo protejo mis aves de traspatio?
• Mantenelas en espacios cerrados, alejadas de aves silvestres.
• Protegé el agua y la comida para no atraer aves silvestres.
• Limpiá y desinfectá las instalaciones regularmente.
• Lavate las manos después de manipular las aves.
• Si incorporás aves nuevas, mantenelas aisladas al menos 14 días.
GUÍA. INFLUENZA AVIAR. PAUTAS PARA LA PREVENCIÓN
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�¿Mis mascotas corren riesgo? Es poco frecuente, pero posible. Evitá que
perros y gatos tengan contacto con aves silvestres o mamíferos marinos
muertos o con síntomas. Si tu mascota tuvo ese contacto y presenta síntomas, consultá al veterinario.
¿Qué pasa si encuentro un lobo marino muerto en la costa? Podés notificarlo al Senasa, que evalúa si tomar muestras para vigilancia. El retiro del
animal es responsabilidad de los municipios o las autoridades de Ambiente
o Parques Nacionales, según la jurisdicción.
¿Por qué el Senasa no aplica eutanasia a animales silvestres enfermos?
Porque, según la Ley de Fauna N° 22.421, el control sanitario de la fauna
silvestre en territorio provincial es competencia de cada provincia.
GUÍA. INFLUENZA AVIAR. PAUTAS PARA LA PREVENCIÓN
10
�Contacto
Coordinación General de Comunicación Institucional
Correo electrónico: publicaciones@senasa.gob.ar
Teléfono: 4121-5211
GUÍA. INFLUENZA AVIAR. PAUTAS PARA LA PREVENCIÓN
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��
Dublin Core
The Dublin Core metadata element set is common to all Omeka records, including items, files, and collections. For more information see, http://dublincore.org/documents/dces/.
Title
A name given to the resource
Publicaciones SENASA
Dublin Core
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Title
A name given to the resource
Guía. Influenza aviar. Pautas para la prevención
Publisher
An entity responsible for making the resource available
Servicio Nacional de Sanidad y Calidad Agroalimentaria
Date
A point or period of time associated with an event in the lifecycle of the resource
2026
Contributor
An entity responsible for making contributions to the resource
Coordinación General de Comunicación Institucional
Dirección Nacional de Sanidad Animal
Language
A language of the resource
Es
Type
The nature or genre of the resource
Manual
Identifier
An unambiguous reference to the resource within a given context
B.S.0204
Abstract
A summary of the resource.
Brinda información clara y actualizada sobre la influenza aviar, sus formas de transmisión, síntomas, medidas de prevención y mecanismos de notificación, promoviendo prácticas de bioseguridad que contribuyan a proteger la sanidad animal, la producción avícola y la salud pública.
Table Of Contents
A list of subunits of the resource.
Introducción
Objetivo
La enfermedad
Ciclo de transmisión
Síntomas en aves
Pautas de prevención
En la producción en establecimientos avícolas
En la crianza de aves de traspatio
En la manipulación de aves silvestres
Acciones del Senasa
Fiscalización de procesos de producción
Notificación al Senasa
Anexos
Glosario
Preguntas y respuestas frecuentes
Contacto
Enfermedades de las Aves
Influenza Aviar
-
https://biblioteca.senasa.gob.ar/files/original/2f7cfe2ce8c5eb7293869feae43d3494.pdf
670fdf2ef61d606e4e2ccc76bc6b427c
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GUÍA OPERATIVA
Influenza aviar en aves
no de corral (traspatio)
Plan de contingencia
Servicio Nacional de Sanidad y Calidad Agroalimentaria (Senasa)
�El Servicio Nacional de Sanidad y Calidad Agroalimentaria (Senasa) es un organismo descentralizado
encargado de ejecutar las políticas nacionales en materia de sanidad y calidad animal y vegetal e inocuidad de los alimentos de su competencia, así como de verificar el cumplimiento de la normativa vigente
en la materia.
Equipos de trabajo
Dirección Nacional de Sanidad Animal
Programa Nacional de Sanidad Aviar
Coordinación General de Comunicación Institucional
Edición 2026
�Introducción
El presente documento tiene como objetivo establecer los lineamientos técnicos destinados al personal profesional del Servicio Nacional de Sanidad y
Calidad Agroalimentaria (Senasa), en relación con las estrategias, medidas
sanitarias, acciones y actividades generales que deberán adoptarse ante
la confirmación de uno o más brotes de influenza aviar (IA), subti-pos H5 o
H7, en aves de traspatio (no comerciales) dentro del territorio de la
República Argentina.
La confirmación del evento sanitario se efectúa mediante la técnica de RTPCR, a partir de la detección del ácido ribonucleico (ARN) viral específico del
virus de IA H5 o H7, con resultado emitido por el Laboratorio Central del Senasa. Una vez confirmada la detección, deberán implementarse las medidas
sanitarias correspondientes en el predio positivo, así como las acciones de
fiscalización y control dentro del área de prevención vinculada al brote, con el
propósito de contener y erradicar la enfermedad.
En caso de detectarse un brote de IA H5/H7 en aves de traspatio, la Dirección
Nacional de Sanidad Animal (DNSA), en conjunto con el Centro Regional involucrado, serán los responsables de diseñar y establecer el área de prevención
correspondiente. Los límites serán determinados por el Senasa, en función de
la situación epidemiológica local. La delimitación del área de prevención tendrá como finalidad la implementación de acciones de biocontención, vigilancia
epidemiológica y control sanitario, orientadas a prevenir la diseminación del
agente y proteger el estatus sanitario del país.
Marco legal: referencias normativas
y recomendaciones internacionales
El marco legal que sustenta las acciones vinculadas a la sanidad aviar y la respuesta ante enfermedades está compuesto por un conjunto de leyes, decretos
y resoluciones vigentes en la República Argentina, así como también por recomendaciones internacionales.
• Ley N.° 27.233. Declara de interés nacional la sanidad animal y vegetal, así como la prevención, control y erradicación de enfermedades y plagas que afecten la producción agropecuaria, la flora y la fauna. Designa al
Senasa como autoridad de aplicación, responsable de planificar, ejecutar
y controlar las acciones sanitarias en todas las etapas de la producción,
transformación, transporte, comercialización y consumo de agroalimentos, incluyendo producciones familiares y artesanales.
• Ley N.° 27.342. Amplía el alcance de la Ley N° 3.959, extendiendo la defensa sanitaria a todas las especies animales, incluso aquellas que no se
consideran “ganado”, siempre que el Poder Ejecutivo las incluya en la nomenclatura sanitaria correspondiente.
GUÍA OPERATIVA. INFLUENZA AVIAR EN AVES NO DE CORRAL (TRASPATIO). PLAN DE CONTINGENCIA
3
�• Ley de Policía Sanitaria Animal N.° 3.959. Establece la defensa de los ganados en la República Argentina frente a la introducción de enfermedades
contagiosas exóticas.
• Resolución Senasa N.° 779/1999. Aprueba el Sistema Nacional de Emergencias Sanitarias, que establece los niveles, estructuras, responsabilidades y funciones para la gestión de emergencias sanitarias por enfermedades exóticas, persistentes o situaciones epidemiológicas de riesgo en el
país y en naciones limítrofes.
• Resolución Senasa N.° 153/2021. Determina la obligatoriedad de notificar de forma inmediata al Senasa la sospecha de enfermedades incluidas
en el Grupo I, entre ellas la Influenza Aviar.
• Resolución Senasa N.° 466/2025. Aprueba el Plan de Contingencia para
Influenza Aviar (IA) como herramienta específica para la gestión de brotes.
• Código Sanitario de los Animales Terrestres - Organización Mundial de
Sanidad Animal (OMSA). Proporciona directrices y recomendaciones internacionales para la prevención, control y erradicación de enfermedades
animales, armonizando las acciones nacionales con los estándares internacionales. Capítulos 7.6 y 10.4.
Glosario conceptual
- Área de prevención (AP): corresponde a un área territorial donde se detecta
un brote de IA H5/H7 en aves no de corral, cuyos límites son determinados por
el Senasa y tienen por finalidad realizar actividades de biocontención y vigilancia.
– Aves de corral: designa todas las aves criadas o mantenidas en cautiverio
para la producción de mercancías comerciales avícolas o la reproducción para
estos fines. Las aves no de corral se considerarán como aves de corral cuando
tengan contacto directo o indirecto con estas últimas o con instalaciones avícolas.
– Aves silvestres: designa un ave cuyo fenotipo no se ha visto afectado por la
selección humana y que vive independiente, sin necesitar supervisión o control
de seres humanos.
– Aves de traspatio: designa a las aves que se crían en un predio registrado
ante el Senasa como aves de traspatio, cuyos productos solo se ofrecen directamente para el autoconsumo.
– Aves de un día: designa a las aves que tienen, como máximo, 72 horas después de haber salido del huevo.
– Aves no de corral: incluye las aves silvestres de vida libre, traspatio, así como
las silvestres cautivas criadas para espectáculos, competencias, exposiciones,
GUÍA OPERATIVA. INFLUENZA AVIAR EN AVES NO DE CORRAL (TRASPATIO). PLAN DE CONTINGENCIA
4
�colecciones de zoológicos y concursos, y para la reproducción o la venta a dichos efectos, así como las aves de compañía, siempre que no tengan contacto
directo o indirecto con aves de corral o instalaciones de producción avícolas.
– Aves silvestres cautivas: designa a aves cuyo fenotipo no se ha visto significativamente afectado por la selección humana, pero que están cautivas o
viven bajo o necesitan supervisión o control de seres humanos.
– Aves silvestres de vida libre: designa a aves cuyo fenotipo no se ha visto
afectado por la selección humana y que viven independientes sin necesitar
supervisión o control de seres humanos.
– Biocontención: acciones que se implementan para disminuir el riesgo biológico de diseminación de un patógeno.
– Bioseguridad: designa a un conjunto de medidas de gestión, manejo, sanitarias y profilácticas, cuyo objetivo es reducir el riesgo de introducción, radicación y propagación de enfermedades, infecciones o infestaciones animales
hacía, desde y dentro de una población animal.
– Brote: designa la presencia de uno o más casos de IA H5/H7 en una unidad
epidemiológica.
– Caso: designa a un ave con o sin signos clínicos manifiestos, que ha resultado positivo a la/s prueba/s diagnóstica/s confirmatoria/s de IA H5/H7, o a
aves con sintomatología en las que mediante una evaluación epidemiológica
se compruebe un nexo epidemiológico con un caso confirmado.
– Cierre del brote: se define como tal o “Día 0”, a la fecha en que se culmina
con las tareas de sacrificio de las aves, enterramiento, limpieza y desinfección del predio.
– Interdicción de predio: de acuerdo con la normativa vigente del Senasa,
equivale a vedar o prohibir. Es una medida que impide disponer de aquello
que está interdicto. La medida de interdicción, entre otras cosas, tiende a la
imposibilidad de trasladar (ingreso y egreso) animales, productos, subproductos o materiales potencialmente infectantes, con relación al predio interdicto, ya sea por razones sanitarias u otras irregularidades y que, como
consecuencia, se encuentran bajo control o fiscalización del Senasa.
– Nexo epidemiológico: se refiere al contacto directo o indirecto entre aves
susceptibles y aves enfermas a través del cual es posible que se haya transmitido el virus de IA H5/H7 por las vías de transmisión habituales.
– Predio: designa al lugar donde se encuentran las aves de corral y no de
corral.
– Rastrillaje epidemiológico: proceso sistemático y activo de búsqueda y seguimiento de casos de IA en aves de corral y de no corral. Este procedimiento
tiene como objetivo identificar aves infectadas, prevenir la propagación de la
enfermedad y controlar brotes.
GUÍA OPERATIVA. INFLUENZA AVIAR EN AVES NO DE CORRAL (TRASPATIO). PLAN DE CONTINGENCIA
5
�– Sacrificio sanitario: designa la operación, efectuada bajo la supervisión del
Senasa, diseñada para eliminar un brote. Consiste en llevar a cabo las siguientes actividades:
i. matanza de los animales afectados o que se sospeche han sido afectados o que hayan estado expuestos a la infección por contacto directo con
estos animales, o contacto indirecto con el agente patógeno causal;
ii. eliminación de los animales muertos o de los productos de origen animal, según el caso, por enterramiento, transformación, incineración o
cualquier otro método que oportunamente disponga el Senasa;
iii. limpieza y la desinfección de las explotaciones, a través de los procedimientos recomendados por OMSA, con el fin de destruir el agente infeccioso de la IA. Se aplica en instalaciones, vehículos y objetos diversos que
puedan haber sido directa o indirectamente contaminados.
– Unidad epidemiológica: designa a un grupo de aves con la misma probabilidad de exposición a un agente patógeno.
– Zona de Control Sanitario (ZCS): corresponde a un área territorial donde
se detecta uno o más brotes de IA H5/H7 en aves de corral, cuyos límites son
determinados por el Senasa, y tiene por finalidad realizar actividades de bioseguridad, biocontención y vigilancia para contener y erradicar el o los brotes
de la zona. En brotes de aves de corral, esta ZCS está compuesta por la Zona
de Perifoco (ZP) con un radio de 3 kilómetros y la Zona de Vigilancia (ZV) con
un radio de 7 kilómetros alrededor de la anterior. Cuando existan cursos o
espejos de agua o nexos epidemiológicos del brote, el Senasa puede modificar la ZCS, según riesgo epidemiológico.
– Zoológico y entidades afines: entidad o institución, pública o privada, donde
se mantienen animales silvestres bajo cuidado humano, independientemente de su finalidad, como parques zoológicos, acuarios, reservas, bioparques,
centros de rescate y santuarios, entre otros.
La enfermedad
La influenza aviar, también conocida como “gripe aviar”, es una infección viral contagiosa, producida por el virus de la influenza aviar tipo “A”, familia
Orthomyxoviridae, genero influenzavirus. Esta enfermedad puede afectar a varias especies de aves de corral, así como también a las aves de compañía y silvestres.
Cabe aclarar que se han aislado virus de IA, con menor frecuencia, en algunas especies de mamíferos, como ratas, ratones, comadrejas, hurones, cerdos, gatos, tigres, perros, caballos, así como en los humanos.
La enfermedad se encuentra incluida en la lista única de enfermedades de notificación obligatoria de la OMSA y, según la Resolución Senasa N.° 153/2021,
es una de las enfermedades de denuncia obligatoria definidas en la normativa.
GUÍA OPERATIVA. INFLUENZA AVIAR EN AVES NO DE CORRAL (TRASPATIO). PLAN DE CONTINGENCIA
6
�Aunque la presencia del virus en aves de traspatio no compromete el estatus sanitario del país ni afecta el comercio internacional, es indispensable
implementar medidas de contención y bioseguridad ante la detección de un
brote de influenza aviar en un predio de estas características, con el objetivo
de controlar y erradicar la enfermedad.
La influenza aviar de alta patogenicidad (IAAP) es una enfermedad sobre la
que deben implementarse acciones de erradicación inmediatas, tan pronto
como se detecte su existencia. Para mayor información, acceder al sitio web
oficial de la OMSA o al Micrositio del Senasa.
Sistema Nacional de Emergencias Sanitarias
El Sistema Nacional de Emergencias Sanitarias se compone por los niveles
central y regional, y la estructura organizacional, responsabilidades y funciones que determinan el funcionamiento de la cadena de comandos de incidentes para la gestión de eventos emergenciales, basado en la normativa vigente
en la materia.
Este sistema se activa ante la detección de enfermedades persistentes, exóticas o situaciones epidemiológicas que así lo justifiquen, tanto dentro del territorio nacional como en países limítrofes, cuando éstas impliquen un riesgo
sanitario.
Estrategia sanitaria y procedimientos
de respuesta
De detectarse la presencia de la enfermedad de un brote de IA H5/H7, la política adoptada por el Senasa busca lograr la erradicación de esta enfermedad
en el país, en el menor tiempo posible. El objetivo principal es la biocontención de la misma y así evitar la difusión del virus a otras poblaciones de aves,
salvaguardando la salud pública y sanidad avícola, protegiendo la biodiversidad y mitigando las posibles consecuencias económicas en la avicultura
nacional e internacional.
Procedimiento de atención y seguimiento de
influenza aviar tipo a H5H7 en aves de traspatio
Consideraciones generales
Una vez confirmada la detección de la presencia del virus de IA H5/H7 a través
de los resultados oficiales emitidos por la Dirección General de Laboratorios
y Control Técnico (DGLyCT) del Senasa e informada por la Dirección Nacional
de Sanidad Animal (DNSA), se deberá conformar un equipo exclusivo de tra-
GUÍA OPERATIVA. INFLUENZA AVIAR EN AVES NO DE CORRAL (TRASPATIO). PLAN DE CONTINGENCIA
7
�bajo para el predio del brote y otros (los que fueran necesarios) para el área
de prevención (AP), conforme al Sistema Nacional de Emergencias Sanitarias.
Los vehículos utilizados deben ser exclusivos para tal fin, quedar fuera de los
predios involucrados, tanto en el brote como en el Área de Prevención y proceder a su desinfección, antes y después de la recorrida.
Se deberá constatar y cargar en el Sistema Único de Registro (SUR) los siguientes antecedentes sanitarios (AS) y la documentación respaldatoria en
cada AS, según el trabajo realizado:
– Inspección de predio/establecimiento avícola. En la fecha de alta, se deberá colocar el/los día/s de inspección y atención. Adjuntar la documentación
respaldatoria (ver Anexo 1y 3).
– Brote influenza aviar H5. En la fecha de alta, se deberá asentar el día de
emisión de la orden de trabajo de la DGLyCT; en la fecha de baja, indicar el
día en que finalizaron las tareas de sacrificio, enterramiento, limpieza y desinfección. En observaciones, colocar el número de protocolo de enfermedad
denunciable (ver Anexo 1).
– Muestreo sospecha de I.AVIAR/ENC. Verificar que se haya realizado la carga dicho antecedente al momento de la atención. La fecha de alta se deberá
colocar el día de atención, mientras que en la de baja corresponde indicar el
día de emisión de la orden de trabajo emitida por la DGLyCT. Adjuntar la documentación respaldatoria (ver Anexo 2).
Equipo de protección individual
Antes de ingresar al predio afectado se deberá disponer de Equipos de Protección Individual (EPI) que serán utilizados durante toda la jornada de trabajo,
esto es, mientras dure la exposición al riesgo. Una vez finalizadas las tareas,
los elementos deberán quitarse y desecharse en el mismo establecimiento.
Es fundamental que todos los agentes tengan acceso a los EPI, cuyos componentes son:
• Protección corporal, con ropas protectoras, preferiblemente mamelucos
desechables con manga larga y ajustables en los extremos más un delantal
impermeable.
• Protección de cabeza, con gorro/cofia desechable que cubra completamente los cabellos.
• Protección de pies, con botas de goma o poliuretano que puedan ser desinfectados y, preferentemente, cubre botas desechables.
• Protección de manos, con guantes protectores desechables (de nitrilo o
vinilo) o guantes de trabajo de goma resistente que puedan desinfectarse;
para evitar dermatitis pueden usarse guantes de algodón por debajo de los
guantes protectores.
GUÍA OPERATIVA. INFLUENZA AVIAR EN AVES NO DE CORRAL (TRASPATIO). PLAN DE CONTINGENCIA
8
�• Protección respiratoria, mediante respiradores que cubran boca y nariz. En
casos particulares se podrán requerir equipos de respiración autónoma.
• Protección ocular por medio de anteojos protectores, que deben lavarse y
desinfectarse después de su uso.
Secuencia de colocación del EPI
1. Colocar el primer par de cubrecalzados.
2. Colocar el mameluco descartable.
3. Colocar el primer par de guantes, asegurándose de que queden debajo de las mangas del mameluco; para ello, perforar el mameluco con
el dedo pulgar.
4. Colocar el segundo par de guantes sobre las mangas del mameluco.
Si es necesario, sellar los extremos con cinta adhesiva para asegurar
el ajuste.
5. Colocar el segundo par de cubrecalzados.
6. Colocar el protector respiratorio (barbijo) y verificar que esté bien
ajustado.
7. Colocar el gorro o cofia desechable.
8. Colocar los anteojos protectores.
El procedimiento de colocación y retirada del EPI tiene como objetivo reducir
al mínimo la posibilidad de autocontaminación y autoinoculación.
Secuencia de retirada del EPI
Previo al retiro del equipo, es necesario conseguir una bolsa de residuos
para desechar el EPI y un balde con líquido desinfectante. Luego, continuar con los siguientes pasos:
1. Realizar un lavado higiénico de los guantes con el desinfectante.
2. Retirar el gorro/cofia.
3. Desanudar el segundo cubrecalzado.
4. Retirar el mameluco con una mano desde el lado externo, de manera que el par de guantes externo se desprenda junto con él. Enrollar el mameluco hacia abajo, dejando expuesta la parte interna y
manteniendo la externa hacia adentro.
5. Realizar un lavado higiénico de los guantes en contacto con la piel
con el desinfectante.
6. Retirar los anteojos protectores y lavarlos en el desinfectante.
7. Retirar el primer cubrecalzado.
8. Retirar la mascarilla, tomándola desde las bandas elásticas, sin
tocar la parte frontal.
9. Realizar un tercer lavado higiénico de manos.
10. Retirar el primer par de guantes en forma de rollo, tratando de no
tocar la parte externa del guante.
GUÍA OPERATIVA. INFLUENZA AVIAR EN AVES NO DE CORRAL (TRASPATIO). PLAN DE CONTINGENCIA
9
�Otras consideraciones
>> Con respecto a la higiene de las manos, la misma debe consistir
en el lavado con agua y jabón durante 15/20 segundos o en el uso
de otros procedimientos estándares de desinfección de las manos.
>> Los EPI deben desecharse adecuadamente, disponiéndolos en
bolsas plásticas y dentro de un recipiente con tapa, cuidando que
no contaminen otros lugares. El dispositivo de plástico debe cerrarse cuidadosamente antes de su eliminación.
>> Usar una muda limpia de ropa protectora en cada instalación
visitada.
>> Después de visitar una instalación sospechosa/afectada, las
personas no deben acudir a lugares de reunión pública (bares,
restaurantes, etc.) sin haberse duchado –incluyendo lavado del
pelo y cambiado de ropa–. Asimismo, no podrá ingresar a otro establecimiento/predio avícola sin un vacío sanitario de 72 horas.
Material audiovisual
Para visualizar el procedimiento de colocación y retirada del EPI,
acceder aquí.
Medidas sanitarias en el brote
En primer lugar, el personal oficial actuante debe resguardar y asegurar las
medidas de bioseguridad al ingreso y egreso del predio. Para ello, deberá
continuar con la interdicción del predio en donde fueron halladas las aves que
resultaron positivas a IA H5/H7 y prohibir el acceso de personas y vehículos
ajenos al mismo.
El veterinario del Senasa deberá informar al propietario las medidas sanitarias que deberán realizarse en el predio, tales como interdicción, sacrificio,
disposición de cadáveres de aves, productos, subproductos y medidas de limpieza y desinfección, condiciones de levantamiento de la interdicción.
Es importante destacar que todas las acciones y comunicaciones entregadas
deben registrarse en un acta de constatación emitida a través del sistema de
gestión de actas de constatación del Senasa (SIGACTAS). en la cual se deberá
constatar detalladamente lo siguiente:
GUÍA OPERATIVA. INFLUENZA AVIAR EN AVES NO DE CORRAL (TRASPATIO). PLAN DE CONTINGENCIA
10
�“Continúa la interdicción del predio, implicando la prohibición del ingreso y egreso de aves, productos y subproductos, así como cualquier otro material que pudiera representar un riesgo sanitario. El ingreso de personas y
vehículos quedará restringido exclusivamente a aquellos autorizados por el Senasa. El SENASA procederá al sacrificio sanitario de la totalidad de las aves, al enterramiento adecuado de los animales y a la posterior limpieza y
desinfección integral del predio. La medida de interdicción permanecerá vigente hasta tanto el Senasa determine
su levantamiento”.
Asimismo, el agente oficial deberá dar intervención a las dependencias de
Salud Pública, Ambiente y Fauna Silvestre de la jurisdicción competente.
Además, deberán investigarse, evaluarse y documentarse los ingresos y
egresos al predio realizados durante los 14 días previos a la confirmación
de la enfermedad, mediante el Formulario de relevamiento epidemiológico,
disponible en la carpeta interna N.° 24 de Sanidad Aviar.
En cuanto al sacrificio, el mismo será realizado por personal del Senasa, con
colaboración del propietario. Debe incluir a la totalidad de las aves presentes
en la unidad epidemiológica y realizarse con la mayor rapidez posible, respetando los lineamientos de bienestar animal establecidos por la normativa
vigente..
Todos los datos del sacrificio deberán constatarse a través del SIGACTAS,
en el “Acta de sacrificio de aves y/o destrucción de productos y subproductos
avícolas” (ver Anexo 4). Además, la misma deberá adjuntarse al AS de “Brote de
Influenza Aviar H5”.
La infraestructura, los elementos y las maquinarias existentes en el predio
(instalaciones, comederos, bebederos, nidales, jaulas, almacenes de alimentos y utensilios, depósito de pienso, depósito de agua, botas, etc.) deberán someterse a una profunda limpieza y desinfección, con productos autorizados por el Senasa
Métodos para la captura de las aves
Instalar pequeños corrales en donde confinar a las aves antes de capturarlas. Se puede utilizar media sombra o tela similar. Si son aves que pueden
volar, este corral debe contar con techo. Inducir el desplazamiento de los
animales hacia el corral, ya sea mediante arreo coordinado entre varias personas y/o asistido por el uso de tela tipo media sombra o red a modo de embudo. También se puede colocar cebo en el corral para atraerlas.
Dependiendo del tamaño de las aves, de su cantidad y de si pueden volar o
no, la captura también puede realizarse mediante el uso de uno o de una
combinación de algunos de los siguientes implementos:
>> Redes de niebla.
GUÍA OPERATIVA. INFLUENZA AVIAR EN AVES NO DE CORRAL (TRASPATIO). PLAN DE CONTINGENCIA
11
�>> Copos o redes de pesca para captura individual (se debe tener precaución
de no lesionar a las aves con el borde de la red. Para ello sacar al ave de la
red con cuidado, sujetándole las patas con una mano y el cuerpo y las alas -o
el cuello en el caso de especies de cuello largo como gansos y cisnes- con la
otra (Figuras 1 y 2).
>> Pistolas o cañones lanza redes.
>> Capuchas (o similar) para colocar en la cabeza de las aves impidiendo que
vean (esto las calma) pero sin asfixiarlas.
>> Toallas o trapos para la manipulación segura de las aves, cubriendo las
partes que puedan dañar al personal (garras, picos, etc.).
>> Guantes de cuero para protección de las manos del personal.
Figura 1. Captura de un pollo usando
una red de pesca de 50 cm de diámetro.
Figura 2. Captura de un ganso con una red de pescar
salmón más larga y fuerte.
Estas imágenes no contemplan las medidas de bioseguridad y protección
personal. Recuerde implementarlas correctamente al manipular las aves en
caso de sospecha o confirmación de enfermedad.
Figuras 3 y 4. Retiro de ave de la red de pesca.
GUÍA OPERATIVA. INFLUENZA AVIAR EN AVES NO DE CORRAL (TRASPATIO). PLAN DE CONTINGENCIA
12
�En el siguiente enlace se podrá visualizar el video de una jornada de capacitación para la captura y sujeción de aves, dictada por el personal del Ecoparque de la Ciudad de Buenos Aires para agentes del Senasa.
Métodos para el sacrificio de las aves
Gasificación con dióxido de carbono en contenedores
Cálculo del CO2 necesario (en kg)
• Volumen efectivo a gasificar (m3) = largo x ancho x altura del contenedor x 0,55.
• CO2 necesario (en kg) = volumen efectivo a gasificar x 2 m3 ~ 1,9 kg CO2.
Concentración del gas y tiempo de exposición
i. Llene el contenedor con CO2 hasta el 55 - 60% de su volumen antes de
introducir las aves en ella.
ii. Cargue las aves en el contenedor, luego cierre y asegure la puerta.
iii. Introduzca el gas hasta lograr una concentración de dióxido de carbono del 45% por volumen en la parte superior de la cámara.
iv. Espere el tiempo necesario para permitir la pérdida del conocimiento
y la muerte de las aves. Si el contenedor es transparente o tiene ventana,
continúe el gaseado por dos minutos más luego del cese de la respiración.
v. Abra la puerta y deje que se libere el gas en el aire.
vi. Verifique en busca de aves supervivientes. En caso de encontrar algunas, proceda a su eliminación de manera humanitaria. Por ejemplo,
mediante dislocación cervical o agente eutanásico farmacológico.
Los patos y las ocas son resistentes a los efectos del CO2 y requerirán una
concentración mínima del 80% y mayor tiempo de exposición para morir.
Contenedores
Prácticamente, cualquier contenedor sellable puede utilizarse como recipiente para el gaseado: desde algo tan simple como un cubo de basura con
tapa, hasta unidades especialmente construidas con sistemas automatizados de suministro de gas. El tamaño y el número de contenedores deben ser
apropiados para la cantidad de aves y el equipo disponible para manipular
los contenedores. También se han utilizado contenedores forrados de lona
o camiones de mercancías a prueba de fugas con mangueras de tanques de
CO2. A continuación se presentan algunos ejemplos.
GUÍA OPERATIVA. INFLUENZA AVIAR EN AVES NO DE CORRAL (TRASPATIO). PLAN DE CONTINGENCIA
13
�i. Tanque de agua de 1000 litros
• Altura x Largo x Ancho: 120 cm x 100 cm x 100 cm.
• Se le debe realizar una abertura superior para ingresar a las aves, procurando que no pierda hermeticidad. Por ejemplo, se puede recubrir los
bordes de la abertura con un burlete de goma para evitar la salida del gas.
• Las aves no se deben colocar unas sobre otras. Todas deben estar apoyando en el suelo y ninguna sobre otra ave.
• Desventaja: su altura hace que se necesite más gas.
ii. Caja plástica de polietileno gran espesor
• Altura x Largo x Ancho: 57.5 cm x 86 cm x 53.5 cm.
• Se le debe realizar una abertura para que ingrese el conducto con el gas
y sellarla. Además, se debe verificar que el sellado de la tapa no deje salir
el gas o procurar un método de sellado adicional.
• El plástico es traslúcido y permite ver las aves.
• Las rueditas facilitan su traslado.
• Desventaja: Entran pocas aves y no entran las de gran tamaño.
iii. Contenedor gigante con tapa Mascardi
• Altura x Ancho x Largo: 71 cm x 104 cm x 70 cm.
• Se le debe realizar una abertura para que ingrese el conducto con el gas
y sellarla. Además, se debe verificar que el sellado de la tapa no deje salir
el gas o procurar un método de sellado adicional.
• Desventaja: Entran pocas aves y no entran las de gran tamaño.
iv. Tambor de 200 litros con suncho
• Alto x Diámetro = 98 cm 59 cm.
• Se le debe realizar una abertura para que ingrese el conducto con el gas
y sellarla.
• Debe utilizarse acostado para que entren más aves sin apilarlas unas
sobre otras.
• Para que permanezca de costado y no se mueva, se le deben colocar topes o algún soporte.
• Desventaja: Entran pocas aves y no entran las de gran tamaño. Al acostarlo, la tapa queda de costado lo que puede dificultar su colocación.
v. Bateas rectangulares o cilíndricas
Rectangulares con tapa:
• RR – 550 lt c/tapa (83x 67x 98.5 cm).
• RR - 600 c/tapa (59.5x 59.5x 198 cm)
Cilíndricos:
• RC -1000 (Diámetro: 121 Altura: 122 Diámetro inferior: 110 cm).
• Se puede solicitar el agregado de una llave/canilla.
• A solicitud el fabricante puede realizar una abertura para que ingrese el
conducto con el gas y sellarla con un costo adicional.
• Debe utilizarse acostado para que entren más aves sin apilarlas unas
sobre otras.
• Para que permanezca de costado y no se mueva, se le deben colocar topes o algún soporte.
• Desventaja: producto caro, el precio es muy superior a los anteriores.
GUÍA OPERATIVA. INFLUENZA AVIAR EN AVES NO DE CORRAL (TRASPATIO). PLAN DE CONTINGENCIA
14
�Métodos alternativos al CO2 para el sacrificio sanitario
Adición de anestésicos a los alimentos o al agua
Como alternativa al uso de CO2 y para el refinamiento de la técnica de dislocación cervical, se sugiere realizar una adición de anestésicos a los alimentos o
al agua. Esta puede ser una alternativa para las especies de paseriformes que
se encuentran alojadas en jaulones.
El producto anestésico (tiletamina/zolazepam, por ejemplo) puede añadirse a los
alimentos o al agua de las aves. Las que estén sólo anestesiadas, pero no muertas, después de la ingestión requerirán que se les aplique otro método como, por
ejemplo, la dislocación cervical o destrucción de la masa encefálica.
Para un uso eficaz, los animales deberán ingerir rápidamente cantidades suficientes de anestésicos. Para ello, se recomienda dejar a los animales en ayuno
o retirarles el agua durante una o dos horas antes. Este método, de acuerdo a
las sugerencias de la OMSA, sólo es aplicable en aves adultas y no debe realizarse al aire libre, ya que otros animales pueden acceder accidentalmente a
los alimentos o al agua medicada.
Otras observaciones
>> Puede presentar ventajas desde el punto de vista de la bioseguridad, en
caso de que haya un número elevado de aves enfermas.
>> Los resultados pueden variar, dado que no es posible regular la dosis ingerida con exactitud. Además, los animales pueden rechazar los alimentos o el agua adulterada debido a la enfermedad o al mal sabor.
>> Se debe tener sumo cuidado al preparar y suministrar los alimentos o
el agua tratada, al desechar sus restos y al eliminar los cadáveres contaminados.
Dislocación cervical
Las aves de traspatio inconscientes pueden ser sacrificadas mediante dislocación cervical (estiramiento del cuello), ya sea manual o mecánica. La técnica consiste en separar el cráneo y el cerebro de la médula espinal mediante
la aplicación de presión sobre la base posterior del cráneo (ver figura 5), lo que
provoca la muerte por anoxia cerebral, debido al cese de la respiración y/o del
riego sanguíneo cerebral.
La sobredosis de un anestésico disociativo administrado por vía intramuscular, como la tiletamina/zolazepam, o suministrado en el alimento o en el agua,
debe emplearse para inducir un estado de inconsciencia profunda. Una vez
alcanzado este nivel, puede procederse a la aplicación del método. Cuando se
realiza correctamente, la dislocación cervical produce una rápida pérdida de
la consciencia.
GUÍA OPERATIVA. INFLUENZA AVIAR EN AVES NO DE CORRAL (TRASPATIO). PLAN DE CONTINGENCIA
15
�En situaciones en las que el número de aves a sacrificar es reducido y no
se dispone de otros métodos, las aves conscientes con un peso inferior a 3
kg pueden ser sacrificadas mediante dislocación cervical. Este procedimiento
puede aplicarse en gallinas y, dependiendo de su tamaño, también en patos y
pavos.
La dislocación cervical puede realizarse manualmente. Sin embargo, en aves
de mayor tamaño —como gansos, pavos y, en algunos casos, patos— se requiere una mayor aplicación de fuerza. Por este motivo, se recomienda el uso
de dispositivos de dislocación cervical asistida mecánicamente, que emplean
brazos de palanca largos y un punto de contacto corto y estrecho sobre el
cuello, lo que permite incrementar la eficacia del procedimiento. Para este fin
puede utilizarse una pinza de Burdizzo.
Figura 5. Procedimiento de dislocación cervical.
Para obtener resultados consecuentes se necesita fuerza y técnica, por lo que
el personal deberá descansar con regularidad para ser eficaz. Además, se
requiere de agentes capacitados, que actúen de forma humanitaria. Las aves
deben ser observadas hasta comprobar su muerte por la ausencia de reflejos
del tronco cerebral.
Para grandes concentraciones de aves es preferible recurrir a otros métodos
de mayor velocidad de ejecución.
GUÍA OPERATIVA. INFLUENZA AVIAR EN AVES NO DE CORRAL (TRASPATIO). PLAN DE CONTINGENCIA
16
�Procedimiento de la técnica
1. Sostenga al ave al revés, por encima de las rodillas, y afirme las piernas
contra su cuerpo.
2. Sostenga la cabeza entre los dedos anular e índice a cada lado del cuello (en la base del cráneo) y doble la cabeza hacia atrás.
3. En un movimiento coordinado, aplicar fuerza creciente para estirar el
cuello, hasta que la cabeza esté separada de la espina cervical del cuello.
Inyección de barbitúricos y otros medicamentos
Es una buena opción cuando las aves involucradas son de mayor porte, como
es el caso de pavos y gansos. Por lo general, para la eutanasia se utiliza el
pentobarbital sódico, administrado por vía intravenosa o intraperitoneal (seguir las indicaciones según prospecto).
La administración por vía intravenosa provoca una muerte más rápida; no
obstante, en muchas especies la vía intraperitoneal resulta más sencilla de
aplicar, lo que permite reducir el estrés asociado a la manipulación (ver figura
6). Cabe señalar que el pentobarbital sódico puede generar irritación del peritoneo, efecto que puede evitarse mediante su dilución.
La inyección intracardiaca debe emplearse exclusivamente cuando el animal
se encuentra completamente anestesiado, dado que se trata de un procedimiento altamente doloroso. Por su parte, la administración intracefálica a
través del foramen magnum es eficaz en aves de gran tamaño y de corral,
aunque requiere la intervención de personal con experiencia técnica.
Figura 6. Lugar recomendado
para realizar la inyección en
aves.
GUÍA OPERATIVA. INFLUENZA AVIAR EN AVES NO DE CORRAL (TRASPATIO). PLAN DE CONTINGENCIA
17
�Los frascos de anestésicos y barbitúricos a utilizar deberán ser transportados en cajas cerradas con algún sistema de seguridad (candado, llave u
otro mecanismo de cerrado). La misma debe ser manipulada únicamente
por el agente oficial actuante, sin quedar al alcance de ninguna otra persona. Los frascos deben sacarse sólo al momento de ser utilizados y ser
guardados inmediatamente después.
Decapitación
La decapitación implica el corte de la cabeza por el cuello, utilizando una cuchilla afilada. Como la actividad cerebral puede continuar hasta 30 segundos
posteriores a la decapitación y es posible que el ave no quede inconsciente
de inmediato, se deben suministrar anestésicos antes de iniciar el sacrificio.
La decapitación produce la muerte por isquemia cervical. Las actividades
motoras que se producen tras la pérdida de postura, aunque sean potencialmente angustiosas para los observadores, no son percibidas por un animal
inconsciente como dolor o angustia. El pataleo reflejo en animales inconscientes puede confundirse con actividad consciente y puede producirse incluso después de la decapitación, ya que los circuitos neurológicos implicados en
la marcha se localizan en la médula espinal.
El material a utilizar —guillotina o cuchillo— debe mantenerse en óptimas
condiciones de funcionamiento, bien afilado y correctamente limpio.
En aves pequeñas, de un peso menor a 200 gramos, la decapitación se realiza
con tijeras de disección: se secciona la articulación atlanto-occipital, separando la cabeza del cuello, y se aplica un corte firme y rápido.
>> Ventajas: La técnica es eficaz y no necesita ser controlada.
>> Desventajas: Los fluidos corporales contaminan la zona de trabajo. El
animal puede sentir dolor si no hay pérdida inmediata del conocimiento.
Para aves de corral, se recomienda contar con una superficie elevada (mesa
o tabla) a fin de realizar la decapitación sobre la misma y contar con un recipiente debajo para contener los fluidos corporales de las aves. Para evitar el
derrame de líquidos se recomienda la utilización de un embudo que ayude a
la contención de los mismos.
Es importante tener en cuenta que las aves sacrificadas por este método
deben ser depositadas en bolsas o contenedores (tambor) que no filtren los
líquidos al ambiente hasta. Al finalizar el sacrificio de todas las aves, los cadáveres (y su sangre) deben ser trasladados en estos contenedores hacia el
espacio determinado para su enterramiento.
Los recipientes utilizados para la contención de fluidos y los cadáveres deben
ser debidamente lavados y desinfectados en el mismo establecimiento.
GUÍA OPERATIVA. INFLUENZA AVIAR EN AVES NO DE CORRAL (TRASPATIO). PLAN DE CONTINGENCIA
18
�En la granja, se puede utilizar el cono como dispositivo de inmovilización,
introduciendo a las aves boca abajo a través del agujero, de manera que su
cabeza quede expuesta y al descubierto.
Cono para inmovilizar.
El tiempo durante el que se inmoviliza a las aves en un cono debería ser el
menor posible antes del aturdimiento (no superar los dos minutos en pavos,
gansos y patos, o un minuto para las demás aves de corral). Para calmar al
ave, se recomienda mantener contacto manual con la misma durante los primeros segundos que esté en el cono.
Desangrado
El ave debe colocarse en el cono que la inmoviliza, para evitar lesiones. Luego, con cuchillos limpios y desinfectados (agua clorada), se procede al corte
de grandes vasos del cuello para causar el desangrado, debiendo el ave permanecer un mínimo de 3 minutos en este estado para asegurar la efectividad
del método. La sangre debe recolectarse en un recipiente para tal fin.
Técnica de desangrado.
GUÍA OPERATIVA. INFLUENZA AVIAR EN AVES NO DE CORRAL (TRASPATIO). PLAN DE CONTINGENCIA
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�Arma de fuego
Este método en aves no está aprobado por la OMSA. Además, la pérdida de
fluidos corporales puede representar un riesgo para la bioseguridad. Sin embargo, la American Veterinary Medical Association (AVMA) aprueba su uso en
ratites (ñandúes, avestruces y otras aves emparentadas de gran porte).
Nota: Es de suma importancia efectuar una recorrida exhaustiva de la
totalidad del predio (sin excepción), con el objetivo de verificar y asegurar
que no permanezcan aves vivas, cadáveres, ni materiales utilizados que
deban ser eliminados. Todo elemento que represente un riesgo sanitario
deberá ser identificado y dispuesto, conforme a lo establecido en los protocolos vigentes, sin dilación ni omisión.
Eliminación de los cadáveres
Existen diferentes métodos para eliminar las aves muertas, desechos y otros
desperdicios. Preferentemente, se debe proceder al enterramiento en el mismo establecimiento u otro espacio adecuado para este fin, aprobado previamente por el Senasa. Cuando nos es posible o conveniente el enterramiento,
la mejor opción es elaborar compostas o recurrir a la incineración.
Los huevos u otro material orgánico contaminante (guano, cama de galpón,
restos de alimentos, productos, basura, etc.) deben recogerse con cuidado, a
fin de que se elimine junto con los cadáveres.
Enterramiento
El enterramiento es el procedimiento más adecuado para la eliminación de
animales y otros elementos de riesgo, ya que generalmente es cómodo, económico, rápido y seguro. No obstante, es necesario considerar los siguientes
factores para la toma de decisiones:
• Los lugares para el entierro deben contar con la aprobación de la autoridad competente del lugar.
• Disponibilidad del terreno para reducir al mínimo la distancia a través de
la cual se transporta el material infectado. Es apropiado que el enterramiento se realice en la misma granja.
• Tipos de suelos (los rocosos pueden imposibilitar la actividad) y pendientes.
• Profundidad del manto freático.
• Presencia de tuberías de agua, gas, electricidad, drenaje, cable de telefonía u otras.
• Disponibilidad de la máquina retroexcavadora, camiones de volteo, tractores, así como su accesibilidad al terreno.
• Presencia de corrientes de aguas como canales, arroyos, ríos u otros.
• Posibilidad de inundación del terreno.
Otra opción que podría resultar adecuada es optar por un lugar de enterramiento común para varias granjas, en una zona determinada.
GUÍA OPERATIVA. INFLUENZA AVIAR EN AVES NO DE CORRAL (TRASPATIO). PLAN DE CONTINGENCIA
20
�Para la construcción de la fosa, debe utilizarse maquinaria pesada, como camiones de volteo, tractores, excavadoras y retroexcavadoras, entre otras. Asimismo, antes de iniciar su construcción, es importante considerar:
• El tamaño, en función del número y peso de las aves.
• Para su llenado se debe calcular 600 kg/m3 de fosa.
• No debe ser muy ancha (inferior a 6 metros).
• Debe ser larga, con la posibilidad de irse rellenando por fracciones.
• Es conveniente dejar un terraplén por el frente, para que pueda ingresar
el vehículo con los cadáveres o los residuos.
• Se debe dejar un metro entre las aves sacrificadas y el piso superior
(relleno).
• Se puede construir más de una fosa, previendo que no se cruce con alguna que esté llena.
En las fosas, también se debe depositar restos de alimentos, excretas, huevos,
basura y material que no garantice la desinfección.
El peso del lote de aves que será preciso enterrar depende del tipo de producción (pollos, gallinas, pavos, patos, gansos, etc.). La edad de las aves o las
semanas de cría pueden ser provistas por el propietario, por técnicos especializados en avicultura o bien obtenerse de tablas.
Un kilogramo de peso tiene un volumen promedio de 0,06242 m3. El volumen
de la fosa se debe calcular multiplicando el valor anterior por el peso medio y
la cantidad promedio de aves alojadas.
Se recomienda cubrir la fosa con láminas geotextiles o nylon para evitar la
contaminación del manto freático. Posteriormente, depositar los cadáveres,
cubrirlos con 40 centímetros de tierra y colocar sobre la misma una capa
uniforme de hidróxido de calcio (Ca (OH)2) antes de finalizar el llenado. Los
cadáveres no se deben cubrir directamente con cal, ya que esta retrasa su
descomposición.
Incineración
Es el método menos recomendable para la eliminación de una gran cantidad
de aves, principalmente por su elevado costo y por el tiempo que se requiere.
Sin embargo, si por alguna razón fuera necesario realizar este método, se
debe considerar:
• Aprobación de los organismos oficiales encargados de la protección del
ambiente.
• Disponibilidad de agua o material contra incendios.
• El método no puede realizarse en épocas de lluvias.
• Se requiere gran cantidad de combustible.
GUÍA OPERATIVA. INFLUENZA AVIAR EN AVES NO DE CORRAL (TRASPATIO). PLAN DE CONTINGENCIA
21
�• Se requiere de un acomodo especial de los cadáveres para asegurar una
buena incineración.
• Una inadecuada incineración aumenta el riesgo de escape de virus, al
dejar cadáveres semiquemados.
• Un error puede generar accidentes personales, locales o ambientales.
• Las cenizas deben enterrarse o llevarse a un relleno sanitario.
• El método provoca severa contaminación ambiental.
• Se deben utilizar hornos crematorios convencionales cuando se trate de
pocas aves sacrificadas.
Compostaje
El compostaje es un proceso de descomposición controlada de la materia orgánica. La descomposición ocurre en un ambiente aerobio en presencia de
determinadas condiciones de pH, temperatura y humedad, en la cual microorganismos mesófilos y termófilos elevan la temperatura por un tiempo determinado permitiendo así la inactivación viral.
Este método puede ser alternativo al enterramiento en sitios en que, por razones de legislación o alto nivel de las napas freáticas, no se permita el enterramiento.
Para su planeamiento, se deben considerar la disponibilidad de materiales
necesarios para su realización (ej.: fuente de carbono como paja), su ubicación
y el tiempo requerido para la inactivación viral a temperaturas adecuadas (15
días a temperaturas mayores a 62ºC). Se puede realizar luego una eliminación
definitiva, enterrando el compost.
Limpieza y desinfección
La infraestructura, elementos y maquinarias existentes en la unidad epidemiológica (instalaciones, comederos, bebederos, nidales, jaulas, almacenes
de alimentos y utensilios, depósito de alimento, depósito de agua, botas, etcétera) deben ser sometidas a limpieza y desinfección, con productos autorizados por el Senasa. El personal oficial actuante debe resguardar y asegurar las
medidas de bioseguridad al ingreso y egreso del predio.
El procedimiento debe quedar constatado en el SIGACTAS (o el sistema informático que el organismo sanitario considere a futuro) y podrá registrarse en el
acta de sacrificio, en caso que ambos procedimientos se realicen en el mismo
día; o en el “Acta de limpieza y desinfección” del sistema SIG (ver anexo 5),
debiéndose cargar en el AS de “Brote de Influenza Aviar H5”.
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22
�Cierre del brote
Se efectuará el cierre del brote y levantamiento de la interdicción cuando hayan finalizado las tareas de sacrificio sanitario, enterramiento, limpieza y desinfección.
Estas acciones se deberán registrar mediante un Acta de Constatación en SIGACTAS. La misma se carga en sistema dentro del AS “Inspección de Predio/
Establecimiento Avícola” (ver anexo 3) y subir la documentación correspondiente. Luego se procederá a bajar el AS de “Brote de Influenza Aviar H5”,
con la fecha del cierre del brote.
Nota: Si durante las inspecciones se observan aves enfermas o muertas
debido al ingreso de aves silvestres o domésticas (accidental), se debe
proceder como una atención de sospecha.
Área de prevención
El área de prevención (AP) en la que se detecta un brote de IA H5/H7 en aves
no de corral será delimitada por el Senasa a través de la Dirección Nacional
de Sanidad Animal, en coordinación con el Centro Regional correspondiente
a la jurisdicción donde se registró el brote. Dicha área tiene por finalidad la
implementación de medidas de biocontención y la ejecución de actividades de
vigilancia epidemiológica.
El área de prevención estará determinada a partir de un análisis de riesgo integral, el cual considera factores epidemiológicos, productivos y ambientales,
con el fin de definir de manera adecuada el alcance de las medidas de vigilancia, control y bioseguridad necesarias para prevenir la diseminación del virus.
Deberá informarse de manera inmediata la confirmación de la situación sanitaria a los veterinarios acreditados en Sanidad y Bienestar de las Aves que
se encuentren involucrados dentro del área de prevención. El objetivo de esta
comunicación es que los profesionales refuercen las medidas de manejo, higiene y bioseguridad en los establecimientos bajo su supervisión, y promuevan activamente la importancia de la notificación temprana de cualquier signo
compatible con influenza aviar ante el Senasa.
Las tareas sanitarias a implementar, así como la duración del mantenimiento
del área bajo medidas de prevención, serán definidas por la DNSA en función
de los criterios técnicos y sanitarios aplicables a cada caso. La comunicación
de las acciones a implementarse será mediante comunicación oficial a través
del Sistema de Gestión Documental Electrónica (GDE).
El área recuperará su condición de libre una vez declarado el cierre oficial del
brote, siempre que durante el período establecido por la autoridad competente se haya ejecutado la vigilancia epidemiológica, sin la aparición de nuevos
eventos sanitarios.
GUÍA OPERATIVA. INFLUENZA AVIAR EN AVES NO DE CORRAL (TRASPATIO). PLAN DE CONTINGENCIA
23
�El Senasa será el responsable de llevar a cabo la vigilancia, pudiendo delegar dicha función a los veterinarios acreditados en Sanidad y Bienestar de las
Aves, según la Resolución N.° 468/2025
Acciones en predios de aves de traspatio
Se deberá realizar un rastrillaje epidemiológico y visitar los predios comprendidos en la zona, para verificar la existencia de aves, signos clínicos, coordenadas geográficas, entre otros aspectos. En caso de no contar con registro
ante el Senasa, se deberá asignar un número de RENSPA.
El tipo de vigilancia (clínica, serológica o molecular) a implementar será determinada por la Dirección Nacional de Sanidad Animal mediante comunicación oficial.
Luego de cada visita a establecimientos, se deberá dar cuenta de la actualización mediante un Acta de Constatación y subirla al AS de “Inspección de
Predio/Establecimiento Avícola” (ver anexo 3). En caso de encontrar nexo epidemiológico o presencia de aves con mortandad y/o síntomas compatibles al
momento de la inspección, se debe proceder a la actuación de sospecha de
enfermedad denunciable.
Acciones en establecimientos de aves de corral
En los establecimientos de producción avícola industrial involucrados se dispondrá el bloqueo de todos los movimientos de ingreso y egreso, así como de
las actividades de autogestión, hasta tanto el Senasa, como autoridad sanitaria competente, lo autorice expresamente.
En cada establecimiento inspeccionado se deberán asentar las acciones realizadas mediante la confección de un Acta de Constatación en SIGACTAS, verificando el cumplimiento de las medidas de manejo, higiene y bioseguridad
vigentes. Dicha acta deberá ser cargada en el aplicativo AS “Inspección de
Predio/Establecimiento Avícola” (ver anexo 3). En caso de detectarse la existencia de nexo epidemiológico o la presencia de aves con mortandad y/o signos
clínicos compatibles durante la inspección, se deberá proceder de inmediato
conforme al protocolo de actuación ante sospecha de enfermedad de denuncia obligatoria.
La vigilancia sanitaria a implementar en el área de prevención será definida
por la Dirección Nacional de Sanidad Animal mediante comunicación oficial,
pudiendo esta delegar su ejecución en veterinarios acreditados en Sanidad
y Bienestar Avícola, conforme a lo establecido en la Resolución SENASA N.º
468/2025.
GUÍA OPERATIVA. INFLUENZA AVIAR EN AVES NO DE CORRAL (TRASPATIO). PLAN DE CONTINGENCIA
24
�Vigilancia epidemiológica en el área de prevención
Vigilancia clínica
Es un componente de la vigilancia sanitaria, que consiste en la observación
sistemática y continua del estado de salud de los animales, con el fin de detectar de manera temprana la presencia de signos clínicos, aumento de morbilidad o mortalidad, o cualquier manifestación compatible con enfermedades
de importancia sanitaria.
En el ámbito de la sanidad animal, la vigilancia clínica se basa en la inspección
directa de los animales, la evaluación de parámetros productivos y el análisis de cambios en el comportamiento o en la presentación clínica habitual
de las poblaciones bajo seguimiento. Esta actividad puede ser realizada por
un veterinario oficial o acreditado, y/o por los productores de los establecimientos, quienes deben notificar de forma inmediata a la autoridad sanitaria
ante la detección de hallazgos sospechosos. Su finalidad principal es identificar precozmente los eventos sanitarios relevantes, activar oportunamente
los mecanismos de notificación y respuesta, y contribuir a la prevención de la
diseminación de la enfermedad.
Vigilancia serológica
El procedimiento se implementará conforme a la frecuencia establecida, según las indicaciones de la DNSA. Cabe destacar que dicha vigilancia estará a
cargo del sector privado, de acuerdo con lo dispuesto en la Resolución Senasa
Nº 468/2025 contemplando las siguientes consideraciones:
• Cantidad de aves a muestrear: aves de corral 20.
Aves no de corral : hasta 10
• Tipo de muestras: suero.
• Materiales:
• Viales tipo Eppendorf (estériles).
• Jeringas estériles de 2,5 ml a 3 ml.
• Agujas dependerá de la especie a muestrear.
• Guantes.
• Gradillas, alcohol, marcador indeleble y algodón.
• Conservadora y refrigerantes.
Procedimiento para la extracción de sangre
Para punción de la vena cubital (ala) se deberá colocar el ave en posición de
decúbito lateral, extender el ala, mojar con algodón húmedo las plumas y/o
levantarlas sobre la cara ventral de la base ósea de eje humeral, identificar la
vena la cubital (vena del ala), presionar para ingurgitarla y extraer como mínimo 2.5 ml de sangre.
GUÍA OPERATIVA. INFLUENZA AVIAR EN AVES NO DE CORRAL (TRASPATIO). PLAN DE CONTINGENCIA
25
�Para obtener un suero sin hemólisis, se deberá transferir cuidadosamente la
sangre de la jeringa al tubo, dejando que la misma escurra por su pared lateral. Además, es muy importante evitar agitar los tubos mientras se deja que la
sangre repose para separar el suero.
Los sueros deben mantenerse refrigerados entre +2 °C y +8 °C, desde el momento de su obtención hasta su envío al laboratorio. Este proceso no debe
superar las 72 horas, siendo lo ideal completarlo dentro de las primeras 24
horas.
Vigilancia molecular
El procedimiento para la toma de muestras y la correspondiente carga del
acta en el SIGATM deberá ajustarse a las directrices impartidas por la DNSA y
contemplar las siguientes consideraciones:
• Cantidad de aves a muestrear: aves de corral 20. Aves no de corral hasta 10.
• Tipo de muestras: hisopado traqueal, hisopado orofaríngeo o hisopado
cloacal.
• Materiales:
- Gradillas, alcohol, marcador indeleble y algodón.
- Hisopos estériles de dacrón, rayón o fibra de poliéster (no de algodón ni
de alginato de calcio) con palillo de plástico (no madera).
- Tubo de polipropileno transparente, fondo redondo, dimensiones 11
x 55 mm, volumen de 3 a 4 ml. Tapón a presión con aletas o tapón
a rosca.
- Medio de transporte viral o en su defecto solución fisiológica de
cloruro de sodio al 0,9 %, estéril o PBS.
- Tijera para corte de los cabos de hisopos.
- Conservadora y refrigerantes.
Extracción de las muestras
• Hisopado: es necesario elegir una opción (traqueal u orofaríngeo). Se debe
realizar uno por ave.
Para el hisopado traqueal, el veterinario actuante debe levantar la cabeza del
ave, abrir el pico, extraer suavemente la lengua (para hacer más visible el orificio traqueal) e introducir el hisopo en la tráquea, girándolo dos o tres veces.
Luego se deberá cortar de inmediato la extremidad del hisopo que estaba en
contacto con la mano y sumergir el resto en el tubo previamente identificado.
Si se opta por el hisopado orofaríngeo, el profesional debe levantar la cabeza
del ave, abrir el pico y movilizar el hisopo 3 a 4 veces tomando contacto con las
paredes de la cavidad orofaríngea. Luego deberá cortar de inmediato la extremidad del hisopo que estaba en contacto con la mano y sumergir el resto en el
tubo previamente identificado.
GUÍA OPERATIVA. INFLUENZA AVIAR EN AVES NO DE CORRAL (TRASPATIO). PLAN DE CONTINGENCIA
26
�Se deberá remitir un pool de 5 hisopos por tubo.
Los hisopos deben estar sumergidos en el medio de transporte viral; o en su
defecto solución fisiológica de cloruro de sodio al 0,9 %, estéril o PBS estéril
hasta cubrir la cabeza (de 3 a 5 ml por pool).
Consideraciones para la carga de protocolo de toma de muestra en SIGATM
• Área: Programa de sanidad avícola.
• Motivo: Muestreo aves.
• Submotivo: Muestreo en área de prevención.
• Observaciones: colocar el número de protocolo de enfermedad denunciable correspondiente al brote.
• Matriz: hisopados.
• Muestras: identificar de manera clara los pooles, señalando qué tipo de
hisopado y que cantidad corresponde.
• Grupo de análisis: diagnóstico molecular de influenza aviar (tildar RTPCR en tiempo real gen M).
• Laboratorio: SENASA – Dirección General de Laboratorios y Control Técnico.
Acondicionamiento de las muestras
Embalaje primario
a. El recipiente primario debe ser hermético.
b. En el caso de que se envíen varios recipientes primarios, cada uno de ellos
deberá estar envuelto individualmente para evitar posibles daños.
c. Cuando se calcule el volumen de las muestras que se van a enviar,
también se deberá tener en cuenta el volumen del medio de transporte.
d. Las muestras se deben colocar de tal forma que no se produzcan
derrames.
e. Las muestras identificadas individualmente –correspondientes a un mismo
predio– se deben colocar en una bolsa de nylon o bolsa conservadora,
identificando esta última con el N.° de Renspa o titular del predio.
f. Se debe colocar refrigerantes en cantidad suficiente, consideran do el
tiempo de duración del transporte; cerrar y sellar la tapa. Tener en cuenta que cuanto menor sea el espacio “libre” en la conservadora, mayor será el
tiempo en que las muestras se mantengan refrigeradas.
Embalaje secundario
a. El recipiente secundario debe ser hermético.
b. El embalaje debe contener material absorbente suficiente para embeber
todo el contenido de los embalajes primarios, en caso de rotura o filtraciones.
GUÍA OPERATIVA. INFLUENZA AVIAR EN AVES NO DE CORRAL (TRASPATIO). PLAN DE CONTINGENCIA
27
�Embalaje terciario
a. Se deberá acondicionar el embalaje primario y secundario dentro del
terciario, de forma tal que evite roturas y derrames.
b. En este recipiente se debe incorporar, cuando sea necesario, hielo seco o
húmedo alrededor del embalaje secundario. En caso de emplear hielo seco, el
envoltorio debe permitir la salida del dióxido de carbono para evitar incrementos de presiones que ocasionen la ruptura del paquete. Si se usa hielo húmedo,
el embalaje deberá ser a prueba de goteo.
c. El embalaje externo debe introducirse en una bolsa sellada de plástico para
protegerlo de la humedad.
d. Colocar refrigerantes en cantidad suficiente considerando el tiempo de duración del transporte; cerrar y sellar la tapa. Tener en cuenta que cuanto
menor sea el espacio “libre” en la conservadora, mayor será el tiempo en que
las muestras se mantengan refrigeradas.
e. En el exterior de la caja debe adherirse un sobre de polietileno con los protocolos correspondientes a las muestras remitidas.
Envío de las muestras
Finalizado el embalaje de las conservadoras, las mismas deben ser despachadas a un laboratorio oficial mediante 3 alternativas:
1. Si los centros regionales cuentan con laboratorios con mesas de entrada
de muestras (MEM) propias, deberán entregarse en estas a los efectos de
que sean remitidas a la MEM de la Dirección de Laboratorio Animal (DILAB).
2. De no contar con laboratorios con MEM propias, las conservadoras deben ser despachadas directamente con destino a la MEM de la DILAB, ubicada en Talcahuano 1660, Martínez (CP 1640), Provincia de Buenos Aires.
3. Entrega puerta a puerta al Laboratorio Animal en Martínez, con recepción durante las 24 horas.
En caso de entrega puerta a puerta, se deberá informar en simultáneo vía correo electrónico a los responsables de recibir las muestras en Martínez.
Nota: Quien envíe el correo electrónico desde los correos institucionales,
deberá indicar nombre y apellido del remitente ya que, en ocasiones, es
necesario transmitir información o hacer consultas por datos faltantes.
Si se remiten mediante transporte terrestre o aéreo, una vez obtenido el N.°
de Guía que entrega la empresa se deberá enviar por correo a los responsables de recibir las muestras en Martínez el formulario para informar el despacho y la solicitud de retiro de las conservadoras enviadas.
Cabe aclarar que para informar entregas “puerta a puerta”, el formulario
de despacho cuenta con un campo específico para indicar dicha modalidad
de envío. Las muestras se podrán recibir de lunes a jueves, de 08:30 a 14:30
horas, y los viernes de 08:00 a 12:00 horas. Fuera de ese horario, se deberá
entregar en la guardia.
GUÍA OPERATIVA. INFLUENZA AVIAR EN AVES NO DE CORRAL (TRASPATIO). PLAN DE CONTINGENCIA
28
�Listado de contactos del laboratorio
AREA
Coordinación
administrativa
MEM Laboratorio
Martínez
Envíos y retiros
de encomiendas
MEM Laboratorio
Martínez
Recepción puerta
a puerta
MAIL
logisticadilab@senasa.gob.ar
CORPORATIVO
- (11) 4874 6700
TELÉFONO
- Int. 2794.
acardozo@senasa.gob.ar
- (11) 5155 5139
- #379
mgirgenti@senasa.gob.ar
-
mesalabadm@senasa.gob.ar
- (11) 3685 4523
- (11) 2270 6127
- Int. 2762/2763.
- Int. 2662/2603.
- (11) 4874 6762
- Int. 2603.
bcarrera@senasa.gob.ar
- Int. 2719.
Cuadro modalidad de envíos
MODALIDAD
COMUNICACIÓN
Informar envío a:
Puerta a puerta
-
Ana Cardozo: acardozo@senasa.gob.ar
-
Marcelo Girgenti: mgirgenti@senasa.gob.ar
- MEM: mesalabadm@senasa.gob.ar
-
Bárbara Carrera Ojeda: bcarrera@senasa.gob.ar
Enviar el formulario para informar el despacho y la solicitud de retiro de las conservadoras enviadas:
Transporte
-
Ana Cardozo: acardozo@senasa.gob.ar
-
Marcelo Girgenti: mgirgenti@senasa.gob.ar
- Logística: logisticadilab@senasa.gob.ar
Contactos
Programa de Sanidad Aviar
• Correo electrónico: avesygranja@senasa.gob.ar
• Teléfono de contacto: (011) 4121-5409.
GUÍA OPERATIVA. INFLUENZA AVIAR EN AVES NO DE CORRAL (TRASPATIO). PLAN DE CONTINGENCIA
29
�Anexos
Anexo 1 - Actas que se deben cargar en el SUR con el antecedente sanitario
correspondiente a cada momento de la detección de IAAP.
Confirmación de brote
Actividades dentro del
período de vigilancia
Tipo de antecedente
BROTE DE
INFLUENZA
AVIAR H5
Documentación para
adjuntar en cada AS
Fecha de baja
Orden de análisis con resultado
positivo
Fecha de la orden de análisis
Formulario de encuesta
epidemiológica
Fecha de realización de la
encuesta
Acta de sacrificio (incluye
limpieza y desinfección)
INSPECCION
DE PREDIO/
ESTABLECIMIENTO
AVICOLA
Fecha de alta
Acta constatación de Cierre
de brote
Acta de constatación de
levantamiento de interdicción
Fecha inicio
sacrificio
Fecha fin de
limpieza y
desinfección
Fecha de cierre de brote (la
misma que fin de limpieza y
desinfección)
Fecha de realización de
levantamiento.
Anexo 2 - Actas que se deben cargar en el SUR con el antecedente sanitario correspondiente al momento de la atención la sospecha de IA.
Atención de la sospecha
Tipo de antecedente
Documentación para
adjuntar en cada AS
OActas toma de muestra
(SIGATM)
AVES MUESTREO
SOSPECHA DE
I.AVIAR/ENC
Acta constatación (constatando
existencias, signos clínicos e
interdicción)
Fecha de alta
Fecha de baja
Fecha toma de
muestra
Fecha de emisión
de resultado
Fecha de realización de acta
GUÍA OPERATIVA. INFLUENZA AVIAR EN AVES NO DE CORRAL (TRASPATIO). PLAN DE CONTINGENCIA
30
�Anexo 3
Se deberá considerar la carga del correspondiente antecedente sanitario, según
lo observado al momento de la inspección según el siguiente cuadro.
ANTECEDENTE SANITARIO
Inspección predio/establecimiento
avícola - sin inconsistencias
MOTIVO
Se debe cargar cuando al momento de la
visita al predio de aves de corral no se encuentra inconsistencias al cumplimiento de
la Resolución Senasa N.° 1699/2019. Si el
predio es de aves de traspatio se debe cargar
cuando visita el mismo.
Se debe cargar cuando al momento de la vi-
Inspección predio/establecimiento sita al predio de aves de corral se encuentra
avícola - con inconsistencias gra- inconsistencias graves en el incumplimiento
de la Resolución Senasa N.° 1699/2019 o en
ves
caso de visitar predio de aves de traspatio y
observa que convive con producción industrial.
Inspección predio/establecimiento
avícola - con inconsistencias moderadas
Inspección predio/establecimiento
avícola - con inconsistencias leves
Se debe cargar cuando al momento de la
visita al predio de aves de corral se encuentra inconsistencias moderadas en el
incumplimiento de la Resolución Senasa N.°
1699/2019.
Se debe cargar cuando al momento de la
visita al predio de aves de corral encuentra
inconsistencias leves en el incumplimiento
de la Resolución Senasa N.° 1699/2019.
GUÍA OPERATIVA. INFLUENZA AVIAR EN AVES NO DE CORRAL (TRASPATIO). PLAN DE CONTINGENCIA
31
�Anexo 4 - Acta de sacrificio sanitario
Acta de sacrificio de aves y/o destrucción de productos y
subproductos avícolas
SENASA -SIGACTAS
(Cfr. Art. 14 del ANEXO aprobado por art. 1º del Decreto 776/2019)
CUVE: 6237766
NÚMERO DE ACTA: 0000000037766
INDIVIDUALIZACIÓN Y CONSTATACIÓN
Siendo __:__hs, del __ día del mes de________________ del 20___, el funcionario del SENASA: __________________________________
___________________
, cuil: ____-___________-___ , se constituyen en el RENSPA Nº ___________________________________ el cual
desarrolla la actividad de AVE TRASPATIO [ ] /AVE COMERCIAL [ ] , sito en la calle ____________________________________________
______ , ubicado en la localidad de ______________________________________, departamento de ______________________, provincia de
____________________, titularidad
atendidos
por
de ____________________________________, C.U.I.T./C.U.I.L. Nº ____-___________ -___, siendo
_____________________________________,
D.N.I./L.E./L.C.
Nº
___________________
en
calidad
de
_________________________ .Con la finalidad de dar continuidad al Acta de Toma de Muestras CUVE N° ________________________de fecha ____/____/20___, habiendo
recibido el resultado de POSITIVO A INFLUENZA AVIAR (H5/H7) protocolizada bajo el Protocolo Nº_________________, y cuyos resultados de
laboratorio se registran con la Orden de Análisis Nº___________________________, como medida de prevención sanitaria, de conformidad
con las facultades conferidas en la Resolución ex MAGyP Nº 38/2012 SE PROCEDE AL SACRIFICIO DEL TOTAL DE LOS ANIMALES constatados
(sanos y enfermos) siendo un total de (________________) animales y/o a la destrucción de los PRODUCTOS/SUBPRODUCTOS constatados
siendo un total de (______________________) cajones/unidades.
Dicho procedimiento inicio el día ____/____/20____ a las ___:___ hs. y finalizo el día ____/____/20____ a las ___:___hs., cuyas cantidades se
detallan a continuación:
(Completar el dato edad solamente en AVES COMERCIALES)
(Especie / categoría)___________________edad
_________ (días /semanas), (_____________) animales sanos, (_____________) animales enfermos y
(______________) muertos antes del sacrificio.
(Especie / categoría)___________________edad
__________ (días /semanas), (_____________) animales sanos, (_____________) animales enfermos y
(______________) muertos antes del sacrificio.
(Especie / categoría)___________________edad
_________ (días /semanas), (_____________) animales sanos, (_____________) animales enfermos y
(______________) muertos antes del sacrificio.
(Especie / categoría)___________________edad
__________ (días /semanas), (_____________) animales sanos, (_____________) animales enfermos y
(______________) muertos antes del sacrificio.
(Especie / categoría)___________________edad
_________ (días /semanas), (_____________) animales sanos, (_____________) animales enfermos y
(______________) muertos antes del sacrificio.
(Especie / categoría)___________________edad
__________ (días /semanas), (_____________) animales sanos, (_____________) animales enfermos y
(______________) muertos antes del sacrificio.
HUEVOS FÉRTILES _______________ (unidades). HUEVOS FRESCOS_______________ (cajones /unidades).
(Agente del SENASA)
___________________________________
___________________________________
Firma y Aclaración
Firma y Aclaración
Testigo
Interesado y/o Propietario
1/2
GUÍA OPERATIVA. INFLUENZA AVIAR EN AVES NO DE CORRAL (TRASPATIO). PLAN DE CONTINGENCIA
32
�Anexo 5 - Acta de limpieza y desinfección
Acta de Limpieza y Desinfección
SENASA -SIGACTAS
(Cfr. Art. 14 del ANEXO aprobado por art. 1º del Decreto 776/2019)
CUVE: 6237766
NÚMERO DE ACTA: 0000000037766
INDIVIDUALIZACIÓN Y CONSTATACIÓN
Siendo __:__hs, del __ día del mes de________________ del 20___, el funcionario del SENASA: __________________________________
___________________
, cuil: ____-___________-___ , se constituyen en el RENSPA Nº ___________________________________ el cual
desarrolla la actividad de AVE TRASPATIO [ ] /AVE COMERCIAL [ ] , sito en la calle ____________________________________________
_____________________
,
ubicado
en
la
localidad
de
___________________________________________,
______________________, provincia de _________________________, titularidad
departamento
de
de _________________________________________
_____________, C.U.I.T./C.U.I.L. Nº ______-____________ -____, siendo atendidos por _________________________________________,
D.N.I./L.E./L.C. Nº ___________________ en calidad de _________________________ .Con la finalidad de dar continuidad al Acta de Toma de Muestras CUVE N° ________________________de fecha ____/____/20___, habiendo
recibido el resultado de POSITIVO A INFLUENZA AVIAR (H5/H7) protocolizada bajo el Protocolo Nº__________________, y cuyos resultados de
laboratorio se registran con la Orden de Análisis Nº_________________________, se procede a la primera [ ] / segunda [ ] / tercera [ ]
LIMPIEZA - DESINFECCIÓN DE LAS INSTALACIONES, actividad que inició el día __/___/20___ a las ___:___ horas y finalizó el día __/___/20___
a las ___:___ horas .-
Se notifica por este acto que el presente procedimiento se realiza en el marco de la Emergencia Sanitaria declarada por la Resolución SENASA Nº
147 de fecha 15 de febrero de 2023, en virtud de la Ley 3959 y sus modificatorias y la Ley 27.233 y su Decreto Reglamentario 776/2019.
Se labra la presente acta en DOS (2) ejemplares de un mismo tenor y a un solo efecto, de las cuales todas sus copias son firmadas en original,
que previa lectura se firman de CONFORMIDAD/ DISCONFORMIDAD / NO FIRMA con los términos vertidos en la misma por parte del/los
funcionario/s del Servicio interviniente/s, el inspeccionado y en su caso los testigos. Se deja Expresa constancia que el inspeccionado recibe UNA
(1) Copia de todo lo actuado, quedando debidamente NOTIFICADO.-
(Agente del SENASA)
___________________________________
___________________________________
Firma y Aclaración
Firma y Aclaración
Testigo
Interesado y/o Propietario
1/1
GUÍA OPERATIVA. INFLUENZA AVIAR EN AVES NO DE CORRAL (TRASPATIO). PLAN DE CONTINGENCIA
33
��
Dublin Core
The Dublin Core metadata element set is common to all Omeka records, including items, files, and collections. For more information see, http://dublincore.org/documents/dces/.
Title
A name given to the resource
Publicaciones SENASA
Dublin Core
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Title
A name given to the resource
Guía operativa. Influenza aviar en aves no de corral (traspatio). Plan de contingencia
Publisher
An entity responsible for making the resource available
Servicio Nacional de Sanidad y Calidad Agroalimentaria
Date
A point or period of time associated with an event in the lifecycle of the resource
2026
Contributor
An entity responsible for making contributions to the resource
Dirección Nacional de Sanidad Animal
Programa Nacional de Sanidad Aviar
Coordinación General de Comunicación Institucional
Language
A language of the resource
Es
Type
The nature or genre of the resource
Manual
Identifier
An unambiguous reference to the resource within a given context
B.S.0199
Abstract
A summary of the resource.
El presente documento tiene como objetivo establecer los lineamientos técnicos destinados al personal profesional del Servicio Nacional de Sanidad y Calidad Agroalimentaria (Senasa), en relación con las estrategias, medidas sanitarias, acciones y actividades generales que deberán adoptarse ante la confirmación de uno o más brotes de influenza aviar (IA), subti-pos H5 o H7, en aves de traspatio (no comerciales) dentro del territorio de la República Argentina.
Table Of Contents
A list of subunits of the resource.
Introducción
Marco legal: referencias normativas y recomendaciones internacionales
Glosario conceptual
La enfermedad
Sistema Nacional de Emergencias Sanitarias
Estrategia sanitaria y procedimientos de respuesta
Procedimiento de atención y seguimiento de influenza aviar tipo a H5H7 en aves de traspatio
Medidas sanitarias en el brote
Cierre del brote
Area de prevención
Vigilancia epidemiológica en el área de prevención
Contactos
Anexos
Enfermedades de las Aves
Influenza Aviar
-
https://biblioteca.senasa.gob.ar/files/original/5a7c417d73cb54c9539b576055764d14.pdf
cefc722553a1fb17dd03ff75b2363f89
PDF Text
Text
GUÍA OPERATIVA
Influenza aviar en
aves de corral
Plan de contingencia
Servicio Nacional de Sanidad y Calidad Agroalimentaria (Senasa)
�El Servicio Nacional de Sanidad y Calidad Agroalimentaria (Senasa)
es un organismo descentralizado, responsable de ejecutar las políticas nacionales en materia de sanidad y calidad animal, vegetal y de
la inocuidad de los alimentos de su competencia, así como de verificar el cumplimiento de la normativa vigente en la materia.
Equipos de trabajo
Dirección Nacional de Sanidad Animal
Dirección General de Laboratorios y Control Técnico
Coordinación General de Comunicación Institucional
Edición 2025
�CONTENIDO
Introducción
Marco legal: referencias normativas y
recomendaciones internacionales
Glosario conceptual
La enfermedad
Sistema Nacional de Emergencias Sanitarias
Estrategia sanitaria y procedimientos de respuesta
Procedimiento de atención y seguimiento de
influenza aviar tipo a H5H7 en aves de corral
Consideraciones generales
Equipo de protección individual
Medidas sanitarias en el brote
Medidas sanitarias en la Zona de Control Sanitario
Procedimiento de muestreo - Establecimientos
dentro de la ZCS
Vigilancia molecular
Vigilancia serológica
Acondicionamiento de las muestras
Envío de las muestras
Sacrificio sanitario y disposición final de las aves
Sacrificio sanitario
Consideraciones generales
Captura previa al sacrificio de las aves
Métodos para el sacrificio de aves
5
5
6
8
9
9
9
9
10
12
14
18
18
19
19
20
22
22
22
23
25
Gasificación con dióxido de carbono (CO2)
25
Sistema de espuma de alta hermeticidad
29
Dislocación cervical
30
Electrocución
31
Agentes inyectables
Adición de anestésicos a los alimentos o al agua
31
Decapitación
Desangrado
32
Eliminación de los cadáveres
Enterramiento
Incineración
31
33
33
33
35
�Compostaje
Eliminación de la cama, deyecciones de aves o
productos avícolas
Medidas higiénico-sanitarias para el sacrificio y
eliminación
Biodigestor
Procedimiento de limpieza y desinfección
Limpieza
Desinfección
35
36
36
36
37
37
37
Desinfectantes y productos químicos recomendados
38
Registro
44
Anexos
Anexo 4
Anexo 5
Anexo 6
Contacto
39
41
43
44
49
�Introducción
El presente documento tiene como objetivo proporcionar información técnica
al personal profesional del Senasa sobre las estrategias, medidas sanitarias,
acciones y actividades generales que debe realizar el Servicio ante la
confirmación de uno o más brotes de influenza aviar (IA) en aves de corral en
la República Argentina.
Resulta igualmente esencial que veterinarios acreditados en sanidad
y bienestar aviar, técnicos, productores –así como cualquier persona
involucrada en la avicultura– conozcan los procedimientos que implementará
el Senasa como servicio veterinario oficial (SVO) en caso de presentarse IA
H5/H7: el propósito es trabajar conjuntamente para fortalecer las acciones
para el control y eliminación del virus.
Atento a lo mencionado, es responsabilidad exclusiva de los veterinarios
acreditados en sanidad y bienestar aviar y de las empresas avícolas la
elaboración y aplicación de un plan de contingencia propio, adecuado a las
particularidades de cada establecimiento.
El plan debe ser diseñado según los lineamientos y valores establecidos
en la presente guía operativa. El mismo deberá prever los insumos
necesarios y los contactos para la notificación inmediata, así como también
los procedimientos para la ejecución del sacrificio sanitario y el posterior
enterramiento. Este último procedimiento incluye la disposición adecuada de
las aves muertas, de sus productos y subproductos (huevos, cama, plumas,
plumones, guano, alimento, entre otros) y de todos los equipos de trabajo
utilizados durante las tareas (mamelucos, cubrebotas, cofias, etc.). Además,
deberá garantizar la correcta limpieza y desinfección de las instalaciones,
asegurando así el cumplimiento integral del protocolo sanitario.
Marco legal: referencias normativas y
recomendaciones internacionales
El marco legal que sustenta las acciones vinculadas a la sanidad aviar y la
respuesta ante enfermedades está compuesto por un conjunto de leyes,
decretos y resoluciones vigentes en la República Argentina, así como también
por recomendaciones internacionales.
>> Ley N.° 22.421. Establece las competencias sanitarias entre las
jurisdicciones provinciales y nacionales, en línea con la legislación vigente.
>> Ley N.° 27.233. Declara de interés nacional la sanidad animal y vegetal,
así como la prevención, control y erradicación de enfermedades y plagas
que afecten la producción agropecuaria, la flora y la fauna. Designa al
Senasa como autoridad de aplicación, responsable de planificar, ejecutar
y controlar las acciones sanitarias en todas las etapas de la producción,
transformación, transporte, comercialización y consumo de agroalimentos,
incluyendo producciones familiares y artesanales.
>> Ley N.° 27.342. Amplía el alcance de la Ley N.° 3.959 extendiendo la
defensa sanitaria a todas las especies animales, incluso aquellas que no
se consideran “ganado”, siempre que el Poder Ejecutivo las incluya en la
nomenclatura sanitaria correspondiente.
5
�>> Ley de Policía Sanitaria Animal N.° 3.959. Establece la defensa
de los ganados en la República Argentina frente a la introducción de
enfermedades contagiosas exóticas.
>> Resolución Senasa N.° 779/1999. Aprueba el Sistema Nacional
de Emergencias Sanitarias que establece los niveles, estructuras,
responsabilidades y funciones para la gestión de emergencias sanitarias
por enfermedades exóticas, persistentes o situaciones epidemiológicas de
riesgo en el país y en naciones limítrofes.
>> Resolución Senasa N.° 153/2021. Determina la obligatoriedad de
notificar de forma inmediata al Senasa la sospecha de enfermedades
incluidas en el Grupo I, entre ellas la influenza aviar.
>> Resolución Senasa N.° 466/2025. Aprueba el Plan de
Contingencia para Influenza Aviar (IA) como herramienta específica
para la gestión de brotes.
>> Código Sanitario de los Animales Terrestres - Organización Mundial
de Sanidad Animal (OMSA). Proporciona directrices y recomendaciones
internacionales para la prevención, control y erradicación de
enfermedades animales, armonizando las acciones nacionales con los
estándares internacionales. Capítulos 7.6 y 10.4.
Glosario conceptual
- Área de prevención (AP): corresponde a un área territorial donde se
detecta un brote de IA H5/H7 en aves no de corral, cuyos límites son
determinados por el Senasa y tienen por finalidad realizar actividades de
biocontención y vigilancia.
- Aves de corral: designa todas las aves criadas o mantenidas en cautiverio
para la producción de mercancías comerciales avícolas o la reproducción
para estos fines. Las aves no de corral se considerarán como aves de
corral cuando tengan contacto directo o indirecto con estas últimas o con
instalaciones avícolas.
- Aves silvestres: designa un ave cuyo fenotipo no se ha visto afectado por
la selección humana y que vive independiente, sin necesitar supervisión o
control de seres humanos.
- Aves de traspatio: designa a las aves que se crían en un predio registrado
ante el Senasa como aves de traspatio, cuyos productos solo se ofrecen
directamente para el autoconsumo.
- Aves de un día: designa a las aves que tienen, como máximo, setenta y dos
(72) horas después de haber salido del huevo.
- Aves no de corral: incluye las aves silvestres de vida libre, traspatio, así
como las silvestres cautivas criadas para espectáculos, competencias,
exposiciones, colecciones de zoológicos y concursos, y para la reproducción
o la venta a dichos efectos, así como las aves de compañía, siempre que no
tengan contacto directo o indirecto con aves de corral o instalaciones de
producción avícolas.
6
�- Aves silvestres cautivas: designa a aves cuyo fenotipo no se ha visto
significativamente afectado por la selección humana, pero que están cautivas
o viven bajo o necesitan supervisión o control de seres humanos.
- Aves silvestres de vida libre: designa a aves cuyo fenotipo no se ha visto
afectado por la selección humana y que viven independientes sin necesitar
supervisión o control de seres humanos.
- Biocontención: acciones que se implementan para disminuir el riesgo
biológico de diseminación de un patógeno.
- Bioseguridad: designa a un conjunto de medidas de gestión, manejo,
sanitarias y profilácticas, cuyo objetivo es reducir el riesgo de introducción,
radicación y propagación de enfermedades, infecciones o infestaciones
animales hacía, desde y dentro de una población animal.
- Brote: designa la presencia de uno (1) o más casos de IA H5/H7 en una (1)
unidad epidemiológica.
- Caso: designa a un ave con o sin signos clínicos manifiestos, que ha
resultado positivo a las pruebas diagnósticas confirmatorias de IA H5/H7, o a
aves con sintomatología en las que mediante una evaluación epidemiológica
se compruebe un nexo epidemiológico con un caso confirmado.
- Interdicción de predio: de acuerdo con la normativa vigente del Senasa,
equivale a vedar o prohibir. Es una medida que impide disponer de aquello
que está interdicto. La medida de interdicción, entre otras cosas, tiende
a la imposibilidad de trasladar (ingreso y egreso) animales, productos,
subproductos o materiales potencialmente infectantes, con relación al predio
interdicto, ya sea por razones sanitarias u otras irregularidades y que, como
consecuencia, se encuentran bajo control o fiscalización del Senasa.
- Nexo epidemiológico: se refiere al contacto directo o indirecto entre
aves susceptibles y aves enfermas a través del cual es posible que se haya
transmitido el virus de IA H5/H7 por las vías de transmisión habituales.
- Predio: designa al lugar donde se encuentran las aves de corral y no de corral.
- Rastrillaje epidemiológico: proceso sistemático y activo de búsqueda
y seguimiento de casos de IA en aves de corral y de no corral. Este
procedimiento tiene como objetivo identificar aves infectadas, prevenir la
propagación de la enfermedad y controlar brotes.
- Sacrificio sanitario: designa la operación, efectuada bajo la supervisión
del Senasa, diseñada para eliminar un brote. Consiste en llevar a cabo las
siguientes actividades:
i.
matanza de los animales afectados o que se sospeche han sido afectados
o que hayan estado expuestos a la infección por contacto directo con
estos animales, o contacto indirecto con el agente patógeno causal;
ii.
eliminación de los animales muertos o de los productos de origen
animal, según el caso, por enterramiento, transformación, incineración
o cualquier otro método que oportunamente disponga el Senasa;
7
�iii.
limpieza y la desinfección de las explotaciones, a través de los
procedimientos recomendados por OMSA, con el fin de destruir el
agente infeccioso de la IA. Se aplica en instalaciones, vehículos y objetos
diversos que puedan haber sido directa o indirectamente contaminados.
- Unidad epidemiológica: designa a un grupo de aves con la misma
probabilidad de exposición a un agente patógeno.
- Zona de Control Sanitario (ZCS): corresponde a un área territorial donde
se detecta uno (1) o más brotes de IA H5/H7 en aves de corral, cuyos límites
son determinados por el Senasa, y tiene por finalidad realizar actividades
de bioseguridad, biocontención y vigilancia para contener y erradicar el o los
brotes de la zona. En brotes de aves de corral, esta ZCS está compuesta por
la Zona de Perifoco (ZP) con un radio de tres (3) kilómetros y la Zona de
Vigilancia (ZV) con un radio de siete (7) kilómetros alrededor de la anterior.
Cuando existan cursos o espejos de agua o nexos epidemiológicos del brote,
el Senasa puede modificar la ZCS, según riesgo epidemiológico.
- Zoológico y entidades afines: entidad o institución, pública o privada, donde
se mantienen animales silvestres bajo cuidado humano, independientemente
de su finalidad, como parques zoológicos, acuarios, reservas, bioparques,
centros de rescate y santuarios, entre otros.
La enfermedad
La influenza aviar, también conocida como “gripe aviar”, es una infección
viral contagiosa producida por el virus de la influenza aviar tipo “A”, familia
Orthomyxoviridae, género influenzavirus. Esta enfermedad puede afectar a
varias especies de aves de corral, así como también a las aves de compañía y
silvestres.
Cabe aclarar que se han aislado virus de IA –con menos frecuencia– en
algunas especies de mamíferos, como ratas, ratones, comadrejas, hurones,
cerdos, gatos, tigres, perros, caballos, así como en los humanos.
La enfermedad se encuentra incluida en la lista única de enfermedades
de notificación obligatoria de la OMSA y es una de las enfermedades de
denuncia obligatoria definidas en la normativa, según la Resolución Senasa
N.° 153/2021.
Las medidas de control que deben aplicarse ante la aparición de un brote
de IA en un establecimiento se encuentran legisladas en el ámbito nacional.
La influenza aviar de alta patogenicidad (IAAP) es una enfermedad sobre la
que deben implementarse acciones de erradicación inmediatas, tan pronto
como se detecte su existencia. También deben adoptarse medidas para
evitar su propagación ante la entrada o desplazamientos a otras regiones,
establecimientos y ecosistemas sobre los cuales se mantiene un sistema de
vigilancia para su control.
Para mayor información, acceder al sitio web oficial de la OMSA o al micrositio del Senasa.
8
�Sistema Nacional de Emergencias Sanitarias
El Sistema Nacional de Emergencias Sanitarias se compone por los
niveles central y regional, y la estructura organizacional que establece
responsabilidades y funciones que determinan el funcionamiento de la
cadena de comandos de incidentes para la gestión de eventos emergenciales,
basado en la normativa vigente en la materia.
Este sistema se activa ante la detección de enfermedades persistentes, exóticas
o situaciones epidemiológicas que así lo justifiquen, tanto dentro del territorio
nacional como en países limítrofes, cuando estas impliquen un riesgo sanitario.
Estrategia sanitaria y procedimientos de respuesta
De detectarse la presencia de la enfermedad de un brote de IA H5/H7,
la política adoptada por el Senasa busca lograr la erradicación de esta
enfermedad en el país, en el menor tiempo posible. El objetivo principal
es la biocontención de la misma y así evitar la difusión del virus a otras
poblaciones de aves. Como resultado, se salvaguarda la salud pública y
la sanidad avícola, se protege la biodiversidad y se mitigan las posibles
consecuencias económicas en la avicultura nacional e internacional.
Procedimiento de atención y seguimiento de
influenza aviar tipo a H5H7 en aves de corral
Consideraciones generales
Una vez confirmada la detección de la presencia del virus de IA H5/H7 a través
de los resultados oficiales emitidos por la Dirección General de Laboratorios y
Control Técnico (DGLyCT) del Senasa e informada por la Dirección Nacional de
Sanidad Animal (DNSA), se deberá conformar un equipo exclusivo de trabajo
para el establecimiento del brote y otros (los que fueran necesarios) para la
ZCS, conforme al Sistema Nacional de Emergencias Sanitarias.
Los vehículos utilizados deben ser exclusivos para tal fin, quedar fuera de los
predios/establecimientos involucrados y proceder a su desinfección, antes y
después de la recorrida.
Se deberá constatar y cargar en el Sistema Único de Registro (SUR) los
siguientes antecedentes sanitarios (AS) y la documentación respaldatoria en
cada AS, según el trabajo realizado:
-
Inspección de predio/establecimiento avícola. En la fecha de alta, se
deberá colocar el día de inspección/atención. Adjuntar la documentación
respaldatoria (ver Anexo 3).
-
Muestreo sospecha de I.AVIAR/ENC. En la fecha de alta, se deberá
colocar el día de atención, mientras que en la fecha de baja corresponde
indicar el día de emisión de la orden de trabajo de la DGLyCT. Adjuntar la
documentación respaldatoria (ver Anexo 2).
9
�-
Brote influenza aviar H5. En la fecha de alta, se deberá asentar el
día de emisión de la orden de trabajo de la DGLyCT; en la fecha de
baja, indicar el día en que finalizaron las tareas de sacrificio,
enterramiento, limpieza y desinfección. En observaciones, colocar el
número de protocolo de enfermedad denunciable (ver Anexo 1).
Equipo de protección individual
Antes de ingresar al predio afectado se deberá disponer de equipos de protección
individual (EPI) que serán utilizados durante toda la jornada de trabajo, esto
es, mientras dure la exposición al riesgo. Una vez finalizadas las tareas, los
elementos deberán quitarse y desecharse en el mismo establecimiento.
Es fundamental que todos los agentes tengan acceso a los EPI, cuyos
componentes son:
• Protección corporal con ropas protectoras, preferiblemente mamelucos
desechables con manga larga y ajustables en los extremos más un delantal
impermeable.
• Protección de cabeza con gorro/cofia desechable que cubra completamente
los cabellos.
• Protección de pies con botas de goma o poliuretano que puedan ser
desinfectados y, preferentemente, cubrebotas desechables.
• Protección de manos con guantes protectores desechables (de nitrilo o
vinilo) o guantes de trabajo de goma resistente que puedan desinfectarse;
para evitar dermatitis pueden usarse guantes de algodón por debajo de los
guantes protectores.
• Protección respiratoria mediante respiradores que cubran boca y nariz. En
casos particulares se podrán requerir equipos de respiración autónoma.
• Protección ocular por medio de anteojos protectores, que deben lavarse y
desinfectarse después de su uso.
Secuencia de colocación del EPI
1. Colocar el primer par de cubrecalzados.
2. Colocar el mameluco descartable.
3. Colocar el primer par de guantes, asegurándose de que queden
debajo de las mangas del mameluco; para ello, perforar el
mameluco con el dedo pulgar.
4. Colocar el segundo par de guantes sobre las mangas del
mameluco. Si es necesario, sellar los extremos con cinta adhesiva
para asegurar el ajuste.
5. Colocar el segundo par de cubrecalzados.
6. Colocar el protector respiratorio (barbijo) y verificar que esté bien
ajustado.
7. Colocar el gorro o cofia desechable.
8. Colocar los anteojos protectores.
El procedimiento de colocación y retirada del EPI tiene como objetivo reducir al
mínimo la posibilidad de autocontaminación y autoinoculación.
10
�Secuencia de retirada del EPI
Previo al retiro del equipo, es necesario conseguir una bolsa de residuos
para desechar el EPI y un balde con líquido desinfectante. Luego, seguir
los siguientes pasos:
1. Realizar un lavado higiénico de los guantes con el desinfectante.
2. Retirar el gorro/cofia.
3. Desanudar el segundo cubrecalzado.
4. Retirar el mameluco con una mano desde el lado externo, de
manera que el par de guantes externo se desprenda junto con
él. Enrollar el mameluco hacia abajo, dejando expuesta la parte
interna y manteniendo la externa hacia adentro.
5. Realizar un lavado higiénico de los guantes en contacto con la piel
con el desinfectante.
6. Retirar los anteojos protectores y lavarlos en el desinfectante.
7. Retirar el primer cubrecalzado.
8. Retirar la mascarilla, tomándola desde las bandas elásticas, sin
tocar la parte frontal.
9. Realizar un tercer lavado higiénico de manos.
10. Retirar el primer par de guantes en forma de rollo, tratando de no
tocar la parte externa del guante.
Otras consideraciones
• Con respecto a la higiene de las manos, la misma debe consistir
en el lavado con agua y jabón durante 15/20 segundos o en el
uso de otros procedimientos estándares de desinfección de las
manos.
• Los EPI deben ser desechados adecuadamente, disponiéndolos
en bolsas plásticas y dentro de un recipiente con tapa, cuidando
que no contaminen otros lugares. El dispositivo de plástico debe
ser cerrado cuidadosamente antes de su eliminación.
• Usar una muda limpia de ropa protectora en cada instalación
visitada.
• Después de visitar una instalación sospechosa/afectada las
personas no deben acudir a lugares de reunión pública (como
restaurantes) sin haberse duchado –incluyendo lavado del
pelo y cambiado de ropa–. Asimismo, no podrá ingresar a otro
establecimiento/predio avícola sin un vacío sanitario de 72 horas.
Material audiovisual
Para visualizar el procedimiento de colocación y retirada del EPI, acceder aquí.
11
�Medidas sanitarias en el brote
a. En primer lugar, el personal oficial actuante debe resguardar y asegurar
las medidas de bioseguridad al ingreso y egreso del establecimiento. Para
ello, deberá continuar con la interdicción del establecimiento en donde
fueron halladas las aves que resultaron positivas a IA H5/H7, asimismo, se
deberá prohibir el acceso de personas y vehículos ajenos al mismo.
b. El veterinario del Senasa deberá informar al propietario y al veterinario
acreditado en sanidad y bienestar aviar las medidas sanitarias que
deberán realizarse en el predio, tales como interdicción, sacrificio,
disposición de cadáveres de aves, productos, subproductos y medidas de
limpieza y desinfección, condiciones de levantamiento de la interdicción.
c. Es importante destacar que todas las acciones y comunicaciones
entregadas deben registrarse en un acta de constatación emitida a
través del sistema de gestión de actas de constatación del Senasa
(SIGACTAS). Se deberá constatar detalladamente que continúa la
interdicción del predio, lo que implica que queda prohibido el egreso de
aves, productos y subproductos, así como cualquier otro material que
pudiera representar un riesgo sanitario.
El ingreso de personas y vehículos quedará restringido exclusivamente
a aquellos autorizados por el Senasa. El titular del establecimiento
deberá proceder al sacrificio sanitario de la totalidad de las aves, al
enterramiento adecuado de los animales y a la posterior limpieza y
desinfección integral de las instalaciones. La medida de interdicción
permanecerá vigente hasta tanto el Senasa determine su levantamiento.
d. Asimismo, el agente oficial deberá dar intervención a las
dependencias de Salud Pública, Ambiente y Fauna Silvestre de la
jurisdicción competente.
e. Respecto a los ingresos y egresos al establecimiento, se deberá investigar,
evaluar y documentar la trazabilidad de las aves, productos y subproductos
durante los catorce (14) días previos de confirmada la enfermedad.
f. El veterinario oficial deberá completar el Formulario de relevamiento
epidemiológico, disponible en la carpeta interna N.° 24 de Sanidad Aviar.
g. En cuanto al sacrificio, el mismo debe incluir a la totalidad de las
aves presentes en la unidad epidemiológica. El mismo debe realizarse
con la mayor rapidez posible, respetando los lineamientos de bienestar
animal establecidos en la normativa vigente.
Todos los datos del sacrificio deberán constatarse a través del
SIGACTAS, en el “Acta de sacrificio de aves y/o destrucción de productos
y subproductos avícolas” (ver Anexo 4). Además, la misma deberá
adjuntarse al AS de “Brote de Influenza Aviar H5”.
h. Las aves muertas, sus productos y subproductos, y todos los
elementos utilizados para el sacrificio sanitario (mameluco, cubrebotas,
cofias, etc.) deberán enterrarse en el lugar, teniendo la precaución
de tapar correctamente la fosa para que no quede expuesto a ningún
predador. En caso de no poder realizarse la disposición de los
cadáveres en el mismo predio, la misma deberá efectuarse en un lugar
previamente autorizado por el Senasa.
12
�i. La infraestructura, los elementos y las maquinarias existentes en la
unidad epidemiológica (instalaciones, comederos, bebederos, nidales,
jaulas, dependencias ajenas como baño, almacenes de alimentos y
utensilios, depósito de pienso, depósito de agua, botas, etc.) deberán
someterse a una profunda limpieza y desinfección, con productos
autorizados por la autoridad competente.
Desinfectantes y productos químicos recomendados
Los desinfectantes que pueden emplearse en el proceso de desinfección
en brotes de IAAP recomendados para el virus de la influenza aviar son:
• Agentes tensoactivos catiónicos (sales de amonio cuaternario 4 %).
• Agentes oxidantes (hipoclorito de sodio 2 %, hipoclorito de calcio
2% y Virkon®).
• Aldehídos (glutaraldehido 2 %).
• Ácidos (ácido cítrico 2 %) y álcalis (hidróxido de sodio 2 %, hidróxido
de calcio 3 %; carbonato de sodio 4 %).
• Fenoles sintéticos 2 %
• Ácido cresílico 2 %.
Este listado no es definitivo y se podrán utilizar otros compuestos que determine
oportunamente el Senasa.
El procedimiento debe quedar constatado en SIGACTAS y se puede
registrar en la misma acta de sacrificio –si ambos procedimientos se
realizaron en el mismo día– o, de lo contrario, registrarlo en el “Acta de
limpieza y desinfección” (ver Anexo 5), cuando el procedimiento demore
más de un día. También se deberá cargar en el AS.
j) Se considerará como “día 0” a la fecha de finalización de las tareas de
sacrificio sanitario, enterramiento, limpieza y desinfección.
k) Cierre de brote. Se procederá al cierre del brote, luego de haber
culminado con las tareas de sacrificio sanitario, enterramiento, limpieza
y desinfección, manteniendo la interdicción del predio (día cero). La
acción también deberá cargarse en el AS mediante Acta de constatación.
Asignar la fecha de baja (la del cierre del brote) al antecedente sanitario.
l) Se procederá a levantar la interdicción del predio de aves de
corral luego de haber cumplimentado un vacío sanitario de al menos
veintiocho (28) días desde el cierre del brote, de haber constatado las
medidas de manejo, de higiene y de bioseguridad del predio (según
normativa vigente) y de haber realizado un proceso de centinelización o
muestreo ambiental con resultados moleculares negativos.
13
�La acción debe ser respaldada mediante Acta de constatación y deberá
cargarse en sistema el AS “Inspección de predio/establecimiento avícola”
(ver Anexo 3).
m) Finalmente, cumpliendo satisfactoriamente con los incisos anteriores, el
veterinario actuante puede permitir la repoblación completa del establecimiento.
Medidas sanitarias en la Zona de Control Sanitario
Una vez confirmado el brote en aves de corral, la Dirección Nacional de Sanidad
Animal (DNSA), en conjunto con el centro regional interviniente, establecerá la
ZCS a partir del brote, la cual estará conformada por la zona de perifoco y zona
de vigilancia. Cuando existan cursos/espejos de agua o nexos epidemiológicos del
brote, el Senasa puede modificar la ZCS según riesgo epidemiológico.
Asimismo, la DNSA bloqueará la autogestión, así como el ingreso y egreso de
aves (de corral y no de corral) en todos los establecimientos ubicados dentro
de la Zona de Control Sanitario (ZCS). Además, esta Dirección identificará
dichos establecimientos en los sistemas informáticos del Senasa mediante la
asignación del AS “Renspa en Zona De Control Sanitario de Brote de IAAP”.
Tanto las restricciones como el AS permanecerán vigentes hasta que la zona
recupere su estatus de zona libre. Este antecedente permitirá identificar
adecuadamente los movimientos de las aves que se envían a faena, con el
objetivo de realizar la adecuada segregación de la exportación de la carne y
subproductos derivados de la faena de dichas aves.
Además, se deberá notificar a los médicos veterinarios acreditados en sanidad
y bienestar aviar que sus establecimientos están situados dentro de una ZCS,
instándolos a reforzar sus medidas de manejo, higiene y bioseguridad. El titular,
responsable y el veterinario del establecimiento deberán comunicar de forma
inmediata cualquier sospecha de la enfermedad.
Movimientos de aves de corral
i.
Los movimientos de los predios deben ser solicitados por el veterinario
acreditado en sanidad y bienestar aviar. Los mismos serán autorizados
exclusivamente por el Senasa, sujeto a cumplimiento de normativa vigente
y evaluación del riesgo.
ii.
Previo a la emisión del Documento de Tránsito electrónico (DT-e), el Senasa
establecerá el recorrido para el traslado de aves de corral procedentes de la
ZCS, así como los puntos de control, ya sean fijos o móviles, para asegurar
la verificación del cumplimiento de dicho recorrido.
iii.
Los vehículos utilizados deben encontrarse debidamente habilitados y
transitar con el correspondiente Certificado Único de Lavado y Desinfección
de Vehículos de Transporte de Animales Vivos (CULyD). El conductor debe
adoptar las pertinentes medidas de bioseguridad y procurar mantenerse
dentro del habitáculo del vehículo durante el trayecto.
iv.
El personal oficial y el veterinario acreditado en sanidad y bienestar aviar
deberán verificar la aptitud sanitaria de las aves y supervisar su carga. Si
la verificación la realiza el agente oficial, la misma se deberá registrar en
sistema mediante SIGACTAS y colocar el AS de inspección adjuntando la
documentación correspondiente. En caso de ser realizada por el veterinario
14
�acreditado del establecimiento, deberá registrarse en el sistema el
correspondiente “Registro de Criador”, debidamente suscripto por el
profesional interviniente.
Las actividades recreativas que involucren la concentración de aves de raza u ornamentales quedarán prohibidas.
Asimismo, los agentes del Senasa en la región realizarán un rastrillaje
epidemiológico en la ZCS, verificando si los establecimientos ubicados
dentro del radio delimitado cuentan con el registro correspondiente en el
Renspa. En caso de no tenerlo, se deberá gestionarlo.
Además, es fundamental documentar la visita de cada establecimiento en
el sistema SUR, registrando la condición sanitaria del lugar y la presencia de
aves, con la cantidad y la especie. En caso de ser necesario, se deberán
realizar las correcciones pertinentes en los sistemas informáticos del
Senasa para actualizar la información.
El acta se cargará dentro del AS de inspección correspondiente. En caso de
identificarse una sospecha, el veterinario oficial del Senasa deberá proceder
según el procedimiento de notificación y atención de sospechas de influenza
aviar y enfermedad de Newcastle.
En cuanto a la vigilancia epidemiológica, los predios con aves de corral
estarán sujetos a una vigilancia clínica, a controles serológicos y/o
moleculares. En el caso de aves que no sean de corral, la vigilancia se realizará
de acuerdo al riesgo epidemiológico que presenten. Estas acciones serán
implementadas conforme a lo establecido por el Sistema Nacional de
Emergencias Sanitarias, en coordinación con la autoridad central y regional
correspondiente.
3 km
7 km
10 km
Brote en ave de corral y de no corral
Zona de perifoco (3km)
Zona de vigilancia (7km)
Zona de
control sanitario (10 km)
Acciones en la zona de perifoco (3 km)
•
En los establecimientos con aves de traspatio deberá realizarse el
rastrillaje epidemiológico previamente mencionado. Además, será
obligatorio establecer contacto con el productor con una frecuencia
mínima de una (1) vez por semana –presencial o telefónicamente–, con el objetivo de monitorear el estado sanitario de las aves.
15
�Si durante estas visitas/comunicaciones se detectan aves muertas
o signos clínicos compatibles con la enfermedad (como cianosis
de crestas y barbillones, petequias en patas, entre otros) deberá
activarse de inmediato el protocolo de sospecha de enfermedad de
denuncia obligatoria y registrar las acciones implementadas.
•
En establecimientos de aves de corral se deberá realizar una vigilancia clínica, serológica y/o molecular dentro de los siete (7)
días de la atención del brote y repetir cada siete (7) días, hasta
que la ZCS recupere la condición de libre. La vigilancia que se
desarrolla-rá será determinada por la DNSA.
Se recuerda que para la carga del acta de toma de muestra deberá utilizarse
el SIGATM. Luego, se deberá cargar en sistema el AS “Muestreo en Zona de
Control Sanitario” con el resultado del laboratorio.
MOVIMIENTOS EN LA ZONA DE PERIFOCO
Categoría
Ingresos
Egresos
Aves de corral
No.
Sí. Se permite el egreso de aves
a faena o de aves recriadas,
siempre que cuenten con un (1)
resultado negativo mediante la
prueba de RT-PCR realizada dentro de los tres (3) días previos a
la fecha del egreso.
Aves de no corral
No.
No.
Cama
No.
No.
No.
No. Excepcionalmente solo se
permitirá el egreso del guano
de los predios que cuenten con
galpones automáticos, siempre y
cuando las aves cumplan con la
vigilancia con resultados negativos. El mismo debe ser eliminado dentro de la ZCS.
Guano
Sí, según evaluación de
Huevo fértil/fresco
riesgo.
Sí, siempre que las aves de las
que provienen cuenten con un (1)
resultado negativo en el análisis
de laboratorio.
Carne aviar
Sí, según evaluación de
riesgo.
Sí, con documentación respaldatoria.
Aves de un día
No.
Sí, con documentación respaldatoria.
Feria/exposiciones No.
No.
Nota: todo movimiento será autorizado por la oficina del Senasa correspondiente a la jurisdicción donde se encuentra la ZCS.
16
�Acciones en la zona de vigilancia (7 km)
•
En los establecimientos con aves de traspatio, deberá realizarse el
rastrillaje epidemiológico previamente mencionado. Además, será
obligatorio establecer contacto con el productor con una frecuencia
mínima de una (1) vez por semana –durante dos semanas, presencial
o telefónicamente–, con el objetivo de monitorear el estado sanitario
de las aves. Si durante estas visitas/comunicaciones se detectan aves
muertas o signos clínicos compatibles con la enfermedad (como cianosis de crestas y barbillones, petequias en patas, entre otros) deberá
activarse de inmediato el protocolo de sospecha de enfermedad de
denuncia obligatoria y registrar las acciones implementadas.
•
En establecimientos de aves de corral se deberá realizar una vigilan-
cia dentro de los catorce (14) días de la atención del brote y repetir
cada catorce (14) días hasta que la ZCS recupere la condición de libre.
La vigilancia que se desarrollará será determinada por la DNSA.
Se recuerda que para la carga del acta de toma de muestra deberá
utilizarse el SIGATM. Luego, se deberá cargar en sistema el AS “Muestreo
en Zona de Control Sanitario” con el resultado del laboratorio.
MOVIMIENTOS EN LA ZONA DE VIGILANCIA
Categoría
Ingresos
Egresos
Aves de corral
Sí, una vez ingresada
entra en vigilancia.
Sí. Se permite el egreso de aves
a faena o de aves recriadas, que
cuenten con un (1) resultado negativo mediante la prueba de RT-PCR
realizada dentro de los tres (3) días
previos a la fecha del egreso.
Aves de no corral
No.
No.
Cama
No.
No.
Guano
No.
No. Excepcionalmente solo se permitirá el egreso del guano de los
predios que cuenten con galpones
automáticos, siempre y cuando las
aves cumplan con la vigilancia con
resultados negativos. El mismo
debe ser eliminado dentro de la
ZCS.
Huevo fértil/fresco
Sí, según evaluación de
Sí, según evaluación de riesgo.
riesgo.
Carne aviar
Sí, según evaluación de Sí, con documentación respaldatoriesgo.
ria.
Aves de un día
Sí. Una vez ingresada
entra en vigilancia.
Feria/exposiciones No.
Sí, según evaluación de riesgo.
No.
Nota: todo movimiento será autorizado por la oficina del Senasa correspondiente a la jurisdicción
donde se encuentra la ZCS.
17
�Procedimiento de muestreo - Establecimientos
dentro de la ZCS
Para coordinar la toma de muestras, el agente oficial del Senasa deberá
comunicarse previamente con el veterinario acreditado en sanidad y
bienestar aviar de la granja en cuestión. Se deberán contemplar los tiempos
de vacío sanitario entre granjas (72 horas como mínimo).
La vigilancia a implementar será definida por la DNSA en función del riesgo
epidemiológico y puede consistir en estudios serológicos y/o moleculares.
Al momento del muestreo, se deberá realizar la inspección del
establecimiento avícola, contemplando la confección del formulario mediante
la aplicación SIGAPP y del acta de constatación a través de SIGACTAS. Luego,
se deberá cargar en el SUR los AS de:
•
Inspección de predio/establecimiento avícola, con la actualización
de los datos en el SIGSA.
•
Muestreo en Zona de Control Sanitario, adjuntando el resultado
de laboratorio.
Vigilancia molecular
El procedimiento de toma de muestra y carga del acta en SIGATM para
la vigilancia molecular (ver frecuencia según ZCS) debe contemplar las
siguientes consideraciones:
• Cantidad de aves a muestrear: 20.
• Tipo de muestras: 20.
Materiales
• Gradillas, alcohol, marcador indeleble y algodón.
•
Hisopos estériles de dacrón, rayón o fibra de poliéster (no de algodón ni de alginato de calcio) con palillo de plástico (no madera).
•
Tubo de polipropileno transparente, fondo redondo, dimensiones
11 x 55 mm, volumen de 3 a 4 ml. Tapón a presión con aletas o
tapón a rosca.
•
Medio de transporte viral o en su defecto solución fisiológica de
cloruro de sodio al 0,9 %, estéril, sachet por 100 o 250ml o PBS.
•
Tijera para corte de los cabos de hisopos.
•
Conservadora y refrigerantes.
Extracción de las muestras
Hisopado: es necesario elegir una opción: traqueal u orofaríngeo.
-Traqueal. Uno por ave. Levantar la cabeza del ave, abrir el pico, extraer
suavemente la lengua e introducir el hisopo en la tráquea girando 2 o 3 veces (al
extraer la lengua se hace bien visible el orificio traqueal). Pasar un hisopo por ave,
luego cortar de inmediato la extremidad del hisopo que estaba en contacto con la
18
�mano y sumergir el resto en el tubo previamente identificado. Los mismos deben
estar sumergidos en PBS o solución fisiológica estéril hasta cubrir la cabeza del
hisopo (de 3 a 5 ml por pool). Se debe remitir cinco (5) hisopos por tubo.
- Orofaríngeo: Uno por ave. Levantar la cabeza del ave, abrir el pico, movilizar
el hisopo 3 a 4 veces tomando contacto con las paredes de la cavidad
orofaríngea y luego cortar de inmediato la extremidad del hisopo que
estaba en contacto con la mano y sumergir el resto en el tubo previamente
identificado. Los mismos deben estar sumergidos en PBS o solución
fisiológica estéril hasta cubrir la cabeza del hisopo (de 3 a 5 ml por pool). Se
debe remitir cinco (5) hisopos por tubo.
SIGATM: Carga de protocolo de toma de muestra
• Área: Programa de Sanidad Avícola.
• Motivo: Muestreo aves.
• Submotivo: Muestreo en Zona de Control Sanitario.
• Observaciones: colocar el número de protocolo de enfermedad
denunciable correspondiente al brote.
• Matriz: hisopados.
• Muestras: identificar de manera clara los pooles, señalando qué
tipo de hisopado corresponde.
• Grupo de análisis: Diagnóstico molecular de influenza aviar (tildar RT-PCR en tiempo real gen M).
Vigilancia serológica
El procedimiento se implementará conforme a la frecuencia establecida
para cada ZCS y según las indicaciones de la DNSA. Cabe destacar que dicha
vigilancia estará a cargo del sector privado, de acuerdo con lo dispuesto en la
Resolución Senasa N.º 468/2025.
Acondicionamiento de las muestras
Embalaje primario
a. El recipiente primario debe ser hermético.
b. En el caso de que se envíen varios recipientes primarios, cada uno de
ellos deberá estar envuelto individualmente para evitar posibles daños.
c. Cuando se calcule el volumen de las muestras que se van a enviar,
también se deberá tener en cuenta el volumen del medio de transporte.
d. Las muestras se deben colocar de tal forma que no se produzcan
derrames.
e. Las muestras identificadas individualmente –correspondientes a un mismo
predio– se deben colocar en una bolsa de nylon o bolsa conservadora,
identificando esta última con el N.° de Renspa o titular del predio.
f.
Se debe colocar refrigerantes en cantidad suficiente, considerando
el tiempo de duración del transporte; cerrar y sellar la tapa. Tener en
19
�cuenta que cuanto menor sea el espacio “libre” en la conservadora,
mayor será el tiempo en que las muestras se mantengan refrigeradas.
Embalaje secundario
a. El recipiente secundario debe ser hermético.
b. El embalaje debe contener material absorbente suficiente para embeber
todo el contenido de los embalajes primarios, en caso de rotura o
filtraciones.
Embalaje terciario
a. Se deberá acondicionar el embalaje primario y secundario dentro del
terciario, de forma tal que evite roturas y derrames.
b. En este recipiente se debe incorporar, cuando sea necesario, hielo seco
o húmedo alrededor del embalaje secundario. En caso de emplear hielo
seco, el envoltorio debe permitir la salida del dióxido de carbono para
evitar incrementos de presiones que ocasionen la ruptura del paquete.
Si se usa hielo húmedo, el embalaje deberá ser a prueba de goteo.
c. El embalaje externo debe introducirse en una bolsa sellada de plástico
para protegerlo de la humedad.
d. Colocar refrigerantes en cantidad suficiente considerando el tiempo de
duración del transporte; cerrar y sellar la tapa. Tener en cuenta que
cuanto menor sea el espacio “libre” en la conservadora, mayor será el
tiempo en que las muestras se mantengan refrigeradas.
e. En el exterior de la caja debe adherirse un sobre de polietileno con los
protocolos correspondientes a las muestras remitidas.
Envío de las muestras
Finalizado el embalaje de las conservadoras, las mismas deben ser
despachadas a un laboratorio oficial mediante tres (3) alternativas:
1. Si los centros regionales cuentan con laboratorios con mesas de entrada
de muestras (MEM) propias, deberán entregarse en estas a los efectos
de que sean remitidas a la MEM de la Dirección de Laboratorio Animal
(DILAB).
2. De no contar con laboratorios con MEM propias, las conservadoras deben
ser despachadas directamente con destino a la MEM de la DILAB, ubicada
en Talcahuano 1660, Martínez (CP 1640), Provincia de Buenos Aires.
3. Entrega puerta a puerta al Laboratorio Animal en Martínez, con recepción
durante las 24 horas.
En caso de entrega puerta a puerta, se deberá informar en simultáneo vía
correo electrónico a los responsables de recibir las muestras en Martínez.
Quien envíe el correo electrónico desde los correos institucionales, deberá indicar nombre
y apellido del remitente ya que, en ocasiones, es necesario transmitir información o hacer
consultas por datos faltantes.
20
�De ser mediante transporte (público o privado, terrestre o aéreo), una vez
obtenido el N.° de Guía que entrega la empresa, se deberá enviar a los correos
de los responsables de recibir las muestras en Martínez el formulario para
informar el despacho y la solicitud de retiro de las conservadoras enviadas.
Cabe aclarar que para informar entregas “puerta a puerta”, el formulario de
despacho cuenta con un campo específico para indicar dicha modalidad de envío.
Las muestras se podrán recibir de lunes a jueves, de 08:30 a 14:30 h, y los viernes
de 08:00 a 12:00 h (fuera de ese horario, se deberá entregar en la guarda).
Listado de contactos del laboratorio
AREA
MAIL
Coordinación
Administrativa
logisticadilab@senasa.gob.ar
MEM Laboratorio Animal de
Martínez
Envíos y retiros
de encomiendas
acardozo@senasa.gob.ar
mgirgenti@senasa.gob.ar
CORPORATIVO
- (11) 4874 6700
TELÉFONO
- Int. 2794
- (11) 5155 5139
-
- #379
-
- Int. 2719
- Int.
2762/2763
MEM Laboratorio
Martínez
Recepción puerta
a puerta
mesalabadm@senasa.gob.ar
- (11) 3685 4523
- Int.
2662/2603
bcarrera@senasa.gob.ar
- (11) 2270 6127
- (11) 4874 6762
- Int. 2603
Cuadro modalidad de envíos
Modalidad
Comunicación
Informar envío a:
Puerta a puerta
-
Ana Cardozo: acardozo@senasa.gob.ar
-
Marcelo Girgenti: mgirgenti@senasa.gob.ar
-
MEM: mesalabadm@senasa.gob.ar
-
Bárbara Carrera Ojeda: bcarrera@senasa.gob.ar
Enviar el formulario para informar el despacho y la solicitud de
retiro de las conservadoras enviadas:
Transporte
-
Ana Cardozo: acardozo@senasa.gob.ar
-
Marcelo Girgenti: mgirgenti@senasa.gob.ar
-
Logística: logisticadilab@senasa.gob.ar
21
�Sacrificio sanitario y disposición final de las aves
Sacrificio sanitario
Los criterios principales para el sacrificio de las aves, en términos de bienestar
animal, contemplan que el método sea indoloro y obtenga una rápida inconciencia
y muerte; que requiera una mínima inmovilización y evite la excitación; que sea
apropiado para la especie, irreversible y minimice el estrés animal.
El método de sacrificio debe garantizar la seguridad de los operarios, así como
también de otras especies animales que se encuentren en la explotación, sin
perjudicar o generar consecuencias adversas sobre el ambiente.
Se debe fijar una zona buffer externa y comenzar allí con el sacrificio –de afuera–
hacia adentro, para evitar diseminaciones de la epizootia durante el proceso.
El sacrificio sanitario se realizará lo más rápido posible (24-48 horas) luego
de la confirmación de la enfermedad y dentro de la misma explotación
infectada (o lo más cerca posible).
Consideraciones generales
Para la correcta ejecución del sacrificio es esencial programar previamente
las actividades, teniendo en cuenta cuál será el método más adecuado, según
las características del establecimiento y de las aves involucradas.
Se deberá considerar con anterioridad:
• La ubicación de la explotación o predio.
• La distancia desde el galpón a otros edificios (viviendas, otras granjas).
• El acceso a las instalaciones, considerando la posibilidad de ingreso de maquinaria.
• Las especies, el tamaño y el número de animales presentes en la explotación.
• El sistema de producción existente (a piso, a jaula, semiintensivo, u otro). La
presencia o ausencia de una estructura donde encerrar a las aves es un factor
clave para decidir el método más efectivo.
• Los detalles estructurales del galpón (cerrado, abierto, con subdivisiones o
separaciones del galpón, sistema de ventilación, tipo y características de las
aberturas, volumen total del galpón).
• El acopio del material necesario en relación al método de sacrificio a implementar (abastecimiento de CO2 u otro, material para el sellado de aberturas,
disponibilidad de contenedores aptos para la inundación con gases, maquinaria,
ropa protectora, materiales de captura como redes, copos, equipos de limpieza y
desinfección, etc.).
• La cantidad suficiente de personal y operarios especializados.
22
�Captura previa al sacrificio de las aves
Sistemas confinados
Durante la captura, las técnicas ruidosas, bruscas o agresivas pueden
ocasionar que las aves se asusten y dificulten la captura. En un espacio
cerrado, las aves asustadas pueden apelotonarse, pudiendo provocar la
muerte por asfixia o aplastamiento, que no son considerados métodos
autorizados.
Un correcto manejo garantiza la seguridad del ave y del operario.
Los equipos de alimentación y agua deben estar retirados del camino para
facilitar las actividades de la despoblación, de limpieza y desinfección, así
como también para favorecer el movimiento seguro de las personas, las
aves y los equipos. Esto debe hacerse de manera oportuna para minimizar
el estrés de las aves relacionado con el tiempo total que permanecen sin
alimento ni agua.
Reducir la intensidad de la luz o trabajar con luz azul puede hacer que las aves sean más
dóciles en estos sistemas.
Sistemas abiertos
Instalar pequeños corrales para confinar a las aves antes de capturarlas. Se
puede utilizar una mediasombra o tela similar. Si son aves que pueden volar,
este corral deberá contar con techo.
Inducir el desplazamiento de los animales hacia el corral, ya sea mediante
arreo coordinado entre varias personas o asistido por el uso de tela tipo
mediasombra a modo de embudo. Para facilitarlo y atraer a las aves, se
puede colocar un cebo en el corral.
Dependiendo del tamaño de las aves, de su cantidad y de si pueden volar
o no, la captura también puede realizarse mediante el uso de uno o de una
combinación de algunos de los siguientes elementos:
a. Redes de niebla.
b. Copos o redes de pesca para captura individual. Se debe tener precaución
y no lesionar a las aves con el borde de la red. Luego de capturarla, se deberá
retirar al ave de la red con cuidado, sujetándole las patas con una mano, y
el cuerpo y las alas (o el cuello, en el caso de especies de cuello largo como
gansos y cisnes) con la otra.
23
�Imagen 1. Captura de un pollo usando una
red de pesca de 50 cm de diámetro.
Imagen 2. Captura de un ganso con una red de
pescar salmón más larga y fuerte.
Estas imágenes no contemplan las medidas de bioseguridad y protección
personal.
Imágenes 3 y 4. Retiro de ave de la red de pesca.
En esta instancia, es fundamental retirar al ave de las patas. Una vez que
las mismas estén sujetas, se deberá asegurar el cuello (para especies como
gansos y cisnes) o el cuerpo y las alas, y luego sacar con cuidado al ave de la
red.
Es importante implementar correctamente las medidas de bioseguridad y protección personal al manipular las aves en caso de sospecha o confirmación de enfermedad.
En el siguiente enlace se podrá visualizar un video de una jornada de
capacitación sobre captura y sujeción de aves, dictada por personal del
Ecoparque de la Ciudad de Buenos Aires a los agentes del Senasa.
24
�c. Pistolas o cañones lanza redes (para ver el video, acceder al enlace aquí).
d. Capuchas (o similar) para colocar en la cabeza de las aves impidiendo que
vean (esto las calma), pero sin asfixiarlas.
e. Toallas o trapos para la manipulación segura de las aves, cubriendo las
partes que puedan dañar a la persona (garras, picos, etc.).
f. Guantes de cuero para la protección personal de las manos.
Métodos para el sacrificio de aves
El Senasa acompañará al sector privado en los procedimientos de sacrificio
que posean los establecimientos.
El organismo también podrá implementar la matanza por faena sanitaria,
según las condiciones prácticas que se detecten, el número y especies de
animales afectados, y la patogenicidad del subtipo viral encontrado. Por lo
tanto, no se considera definitiva la lista de los procedimientos posibles.
De este modo, son factibles los siguientes métodos químicos y físicos para
sacrificio de aves:
• Gasificación con dióxido de carbono (CO2).
• Sistema de espuma de alta hermeticidad.
• Dislocación cervical.
• Electrocución.
• Gasificación con nitrógeno o argón.
• Gasificación con mezclas de gases.
• Agentes inyectables.
• Adición de anestésicos a los alimentos o al agua.
• Decapitación.
• Desangrado.
• Gasificación con monóxido de carbono (CO).
• Gasificación con ácido cianhídrico (HCN).
A continuación, se desarrollan los métodos considerados más óptimos para el
sacrificio de aves.
Gasificación con dióxido de carbono (CO2)
Este método de eutanasia para aves es muy rápido y eficaz, fácil de utilizar
y con riesgos mínimos para los operarios. Requiere que las explotaciones
cuenten con alguna estructura (fija o móvil) donde encerrar a las aves.
25
�El dióxido de carbono CO2 es un gas incoloro, no inflamable y no explosivo,
que no genera efectos adversos en el ambiente. A concentraciones superiores
al 60 %, el gas actúa como agente anestésico y produce depresión del sistema
nervioso central, con rápida pérdida de la conciencia y muerte.
La bibliografía sugiere situar a las aves en una atmósfera de CO2 mayor al 70 %,
ya que pierden la conciencia muy rápido debido al efecto narcótico del gas. Sin
embargo, por experiencias prácticas, parece ser suficiente la exposición a una
concentración mínima del 55 % al 60 % del volumen del compartimiento. La
concentración incidirá en la velocidad de muerte de las aves.
Los patos y las ocas son resistentes a los efectos del dióxido de carbono y, por ende, requerirán una concentración mínima de CO2 del 80 % y mayor tiempo de exposición para morir.
En animales conscientes, el CO2 al 100 % puede causar grave disnea y
angustia. Solo se recomienda su uso al 100 % en pollitos de hasta 72 horas de
vida, debido a que son más tolerantes al mismo.
Si es posible, se debe disponer de mecanismos por los cuales la
concentración de CO2 se pueda medir rápidamente y con exactitud. Se debe
tener precaución de mantener su concentración constante por al menos 3
minutos y, luego de 20 minutos de exposición al gas, hay que asegurarse de
que los animales estén muertos.
Materiales requeridos:
• Tubo de CO2.
• Válvula de doble manómetro.
• Manguera de ½ pulgada.
• Calentador.
• Láminas de polietileno 200 micrones.
• Mediasombra.
• En casos en los que las aves no se encuentren en
confinamiento, será necesario contar con un contenedor donde
colocar a las aves para el gaseado.
Se debe conocer con anterioridad cuáles son las empresas abastecedoras del
gas y un volumen de gas estimado para solicitar el suministro necesario. Para
ello, será necesario calcular previamente el volumen (m3) del compartimiento
donde se sacrificarán las aves, siendo:
- Volumen efectivo por gasificar: Largo x ancho x altura x 0,55; o largo x
ancho x (altura de la cabeza del ave + aproximadamente 50 cm).
Cantidad necesaria de CO2 en kg a solicitar: volumen efectivo a gasificar x 2.
>>
En conclusión: 1 m3= 1,9 kg CO2.
Un tubo de 50 litros alcanza para sacrificar aproximadamente 22.000 a 30.000
aves, dependiendo de la etapa reproductiva que se encuentre. Se debe tener
presente que se requiere de una fuente de energía eléctrica de al menos 0,8 Kva.
26
�Las gasificaciones con CO2 pueden realizarse mediante diferentes métodos,
dependiendo del sistema de producción de las aves (en sistemas confinados a
piso, a jaula, en aviario o en sistemas abiertos) y –en caso de contar con uno–
las características estructurales del galpón.
En el galpón
Este método se puede utilizar en aves que son criadas a piso, como por
ejemplo pollos de engorde, reproductores, recría de gallinas de alta postura,
entre otras. Existen dos procedimientos posibles:
a. Gaseado total. Se debe cerrar con telas plásticas las ventanas, puertas y
otras salidas de aire lo más herméticamente posible, a fin de minimizar la
fuga del gas. Posteriormente, se deberá introducir el gas con mangueras.
b. Gaseado parcial. Formando previamente corrales dentro del galpón o bien en
galpones equipados con paredes ajustables, se deben forzar las aves hacia un
lugar más restringido. Luego deben encerrarse las aves bajo una tela plástica,
formando una cápsula lo más hermética posible, en donde se introduzca el gas
por medio de mangueras desde la parte inferior de la cápsula (el CO2 es un gas
más pesado que el oxígeno y tiende a acumularse en la parte inferior).
>> Pasos por seguir
1. Se debe conformar una cámara virtual, empleando láminas de
polietileno de al menos 6 metros de ancho. De dicho ancho, se
utilizarán 2 m para conformar el piso, mientras que el resto se
eleva para constituir las paredes laterales del túnel, las cuales
son sostenidas en alto por los operarios.
2. Se ingresa una determinada cantidad de aves –por ejemplo,
para 240 m2 debería ser de 3.000 a 3.200 gallinas– y luego se
introduce una manguera de 30 metros de largo perforada, que se
encuentra conectada a la válvula de liberación de CO2.
Posteriormente, se deben cubrir las aves con la mediasombra,
con el fin de evitar la ruptura de la lámina de polietileno con las
garras. Es muy importante sellar bien las uniones de las láminas
de polietileno para que no se filtre el gas.
Luego, se debe indicar con un color dónde se encuentran las
primeras perforaciones, de modo tal que se garantice que se
encuentren dentro de la cámara virtual.
3. A continuación, se deben plegar las paredes laterales,
anteriores y posteriores de esta cámara virtual, y se libera el
gas durante aproximadamente 5 a 8 minutos (o el tiempo que
sea necesario) hasta evidenciar la muerte de todas las aves. Un
equipo de sacrificio entrenado (6 a 8 personas), en un plantel
industrial de aves, podrá sacrificar 30.000 aves con un tubo de
gas. De acuerdo con estos parámetros, se debe definir un modelo
que determine cuántos puntos de aplicación de gas se requieren,
en función del rendimiento de cada uno.
Para ambos métodos, luego del sacrificio el personal especializado
determinará la concentración de gas en el interior, para que comience la
extracción segura de las aves. Los animales muertos deben ser humidificados
mediante una fina neblina de agua y la recolección y eliminación posterior
realizarse con la menor producción de polvo posible.
27
�Únicamente ingresará el personal necesario para el retiro de las aves y el
número del mismo debe ser reducido al mínimo.
En contenedores o receptáculos
El contenedor o receptáculo debe ser lo suficientemente hermético como para
mantener una concentración adecuada de gas durante el tiempo suficiente, a fin de
garantizar la muerte de las aves colocadas en su interior. Sin embargo, debe tener
una ventilación adecuada para permitir que el aire salga cuando se inyecte el gas.
Existen dos métodos posibles:
a. Colocación de las jaulas o módulos que contienen a las aves dentro en una
unidad de gas confinada (UGC). Antes de manipular a las aves, se aconseja
pulverizar agua sobre las jaulas para disminuir la producción de polvo y
reducir el riesgo de dispersión del agente.
>> Pasos por seguir
1. Colocar la UGC en un emplazamiento nivelado, sólido y
abierto.
2. Conectar el cilindro de gas a la UGC.
3. Llenar la cámara con CO2 hasta el 55–60 % de su volumen
antes de introducir las aves en ella.
4. Cargar las jaulas o módulos con las aves en la UGC. Luego,
cerrarla y asegurar la puerta.
5. Introducir el gas hasta lograr una concentración de dióxido
de carbono del 45 % por volumen en la parte superior de la
cámara. El CO2 es más pesado que el oxígeno, por ello un
llenado incompleto del contenedor puede evitar la exposición
a los animales más altos o que se encuentran en la parte
superior.
6. Esperar el tiempo necesario para permitir la pérdida del
conocimiento y la muerte de las aves.
7. Abrir la puerta y dejar que se libere el gas.
8. Extraer las jaulas o módulos con las aves.
9. Verificar cada jaula o módulo en busca de aves
supervivientes. En caso de encontrar algunas, proceda a su
eliminación de manera humanitaria. Por ejemplo, mediante
dislocación cervical o agente eutanásico farmacológico.
10. Disponer las carcasas correctamente. Para ello, las aves
pueden colocarse en un camión y ser transportados hasta
el lugar escogido para su eliminación. Los camiones que
contengan aves sacrificadas –en caso de brote– deben vigilarse
hasta el final de su recorrido.
b. Instalación de los animales en un contenedor o aparato lleno de gas. En el caso de
aves individuales o pequeños grupos en sistemas abiertos (por ejemplo traspatio,
ornamentales y silvestres), prácticamente cualquier contenedor sellable puede
utilizarse como recipiente para el gaseado. Desde un cubo de basura con tapa,
hasta unidades especialmente construidas con sistemas automatizados de
suministro de gas. También se han utilizado contenedores forrados de lona o
camiones de mercancías a prueba de fugas con mangueras de tanques de CO2.
28
�El tamaño y el número de contenedores deben ser apropiados para la cantidad de aves.
Contenedores para aves
En todos los casos, el material utilizado debe estar diseñado, construido y
mantenido de modo que los animales no se puedan lesionar y puedan ser
observados. Además, los contenedores o aparatos no se deben sobrecargar
para evitar que los animales se asfixien trepando unos sobre otros. De ser
necesario, debe utilizarse acostado, con la salida en orientación lateral, para
que puedan ingresar más aves sin ser apiladas unas sobre otras.
Sistema de espuma de alta hermeticidad
Es un método eficiente, que hace posible un sacrificio sanitario rápido y
seguro para la erradicación de enfermedades, permite mejorar el bienestar
animal durante el proceso de sacrificio sanitario y disminuye el riesgo
potencial de exposición humana, debido que se requieren de 2 a 3 operarios.
El proceso completo de despoblamiento toma entre dos y tres horas, y
requiere de grandes cantidades de agua para su utilización.
Para realizarlo, es necesario que las aves se mantengan en un espacio
confinado con paredes y suelo herméticos. Emplea una tecnología que
combina el agua y espuma con burbujas de CO2, que es efectiva solo para
aves criadas en el piso. El método fue probado para el despoblamiento de
pollos, codorniz, patos y pavos, y estableció diferencias en el tiempo de
deceso entre especies de aproximadamente 3 a 5 minutos en pollos y 10
minutos para patos y pavos.
Las espumas a base de agua utilizadas para el sacrificio de las aves deben
ser de fácil disponibilidad, biodegradables, compatibles con los métodos de
eliminación de canales y no deben implicar riesgo alguno para la salud humana.
La aplicación debe realizarse de una manera que perturbe a las aves lo
menos posible y evite el amontonamiento o el hacinamiento. La espuma se
aplica al 1 %, por lo tanto, si para 10 m2 se necesitan 160 a 180 litros de agua,
se utilizará de 1,6 a 1,8 litros espuma. Para sacrificar pavos, se debe utilizar
el doble, debido a la altura a la que debe alcanzar la espuma.
Los concentrados de espuma pueden usarse con agua potable, dura o salada, y puede
haber diferencias de rendimiento (el agua potable es más recomendada).
29
�Estos sistemas deben producir espuma con una consistencia y densidad adecuada
para ocluir completamente la vía aérea superior de las aves domésticas de modo
que, cuando se sumerge en la espuma, la oclusión de las vías respiratorias se
produzca de manera rápida y abrumadora, y las aves no luchen indebidamente. En
este momento, el tamaño de burbuja deseado de la espuma basada en agua usada
para la despoblación de aves de corral no debe exceder 1,58 cm.
En solo 15 minutos, la máquina elimina 15.000 pollos alojados en un galpón de 100 metros
de largo por 12 de ancho.
Inicialmente, el equipo de sacrificio deberá ser conducido a la puerta del
galpón y comenzar a rociar espuma densa con altura ajustable. Cabe aclarar
que la espuma no mata a las aves por contacto, ni las ahoga o desinfecta.
El método solo produce un bloqueo del aire, motivo por el cual la cabeza de
las aves debe tener una cobertura de espuma de 15 a 30 cm. La espuma a
base de agua debe demostrar un tiempo de persistencia de no menos de 30
minutos (independientemente de las condiciones climáticas o la exposición
solar) para asegurar que todas las aves han sido sacrificadas correctamente.
En términos de tiempo hasta la muerte y porcentaje total de población muerta,
cuando la espuma es utilizada en cualquier tipo o edad de aves de corral,
debe dar como resultado una mortandad del 95 % de las aves dentro de los 7
minutos (o menos) posteriores a que hayan sido completamente sumergidas.
Algunos trabajos señalan que puede utilizarse espuma de los bomberos
para apagar incendios, por lo que se puede buscar la colaboración del
departamento de bomberos más cercano para facilitar este insumo.
Dislocación cervical
Las aves de corral inconscientes pueden ser sacrificadas por dislocación
cervical (estiramiento del cuello) manual o mecánica.
La sobredosis de un anestésico disociativo inyectado intramuscularmente,
como la tiletamina/zolazepam o proporcionado en el alimento o agua, debe
utilizarse para inducir la inconsciencia. Una vez que se ha alcanzado un
nivel profundo de inconsciencia, puede procederse al sacrificio mediante
dislocación cervical. Si se realiza correctamente, la dislocación cervical
provoca una rápida pérdida de consciencia.
La técnica consiste en separar el cráneo y el cerebro de la médula espinal
aplicando una presión a la base posterior del cráneo.
30
�Procedimiento de la técnica
1. Sostenga al ave al revés, por encima de las rodillas, y afirme las piernas
contra su cuerpo.
2. Sostenga la cabeza entre los dedos anular e índice a cada lado del cuello
(en la base del cráneo) y doble la cabeza hacia atrás.
3. En un movimiento coordinado, aplicar fuerza creciente para estirar el
cuello, hasta que la cabeza esté separada de la espina cervical del cuello.
Electrocución
Es la técnica utilizada en plantas de faena, pero este sacrificio es realizado
por unidades de matanza móvil, en caso de disponer de las mismas.
Agentes inyectables
Es una buena opción cuando se trabaja con un pequeño número de aves. Una
inyección mortal de altas dosis de anestésicos y sedativos provoca depresión
del sistema nervioso central, pérdida de conocimiento y la muerte.
Por lo general, se utilizan barbitúricos combinados con otros fármacos, en
inyección intravenosa o intraperitoneal. Por ejemplo, el pentobarbital sódico
puede utilizarse a una concentración del 20 %, (200 mg/ml) a una dosis de
200 mg/kg (esta dosis es orientativa y debe evaluarse a efecto). La inyección
intravenosa produce una muerte más rápida, pero la ruta intraperitoneal
puede ser más fácil de realizar en muchas especies, reduciendo de ese modo
el estrés causado por la manipulación. Sin embargo, el pentobarbital sódico
puede producir irritación del peritoneo lo que se puede evitar diluyéndolo.
Los frascos de anestésicos y barbitúricos que se utilizarán deben ser
transportados en cajas cerradas con algún sistema de seguridad (candado,
llave u otro mecanismo de cerrado). La misma solo debe ser manipulada
por el agente oficial actuante y no debe quedar al alcance de ninguna otra
persona. Los frascos deben sacarse solo al momento de ser utilizados y
vueltos a guardar inmediatamente después.
Adición de anestésicos a los alimentos o al agua
Puede ser una alternativa para las especies de passeriformes que se
encuentran alojadas en jaulones.
Se puede añadir a los alimentos o al agua de las aves un producto anestésico, como
la tiletamina/zolazepam. Las aves que estén solo anestesiadas, pero no muertas
después de la ingestión requerirán que se les aplique otro método de sacrificio
como, por ejemplo, la dislocación cervical o destrucción de la masa encefálica.
Para una utilización eficaz, los animales deben ingerir rápidamente
cantidades suficientes de anestésicos, lo cual se facilitará si se pone a los
animales en ayuno o se les retira el agua una o dos horas antes.
Este método es únicamente aplicable en aves adultas, según los lineamientos dispuestos
por la OMSA.
31
�Puede presentar ventajas desde el punto de vista de la bioseguridad, en caso
de que haya un número elevado de aves enfermas. No obstante, no se debe
aplicar al aire libre, ya que otros animales pueden acceder accidentalmente a
los alimentos o al agua medicada.
Los resultados pueden variar, dado que no es posible regular la dosis ingerida
con exactitud. Además, los animales pueden rechazar los alimentos o el agua
adulterados debido a la enfermedad o al mal sabor.
Es importante tener sumo cuidado al preparar y suministrar los alimentos o el agua tratados, al eliminar sus restos y al eliminar los cadáveres contaminados.
Decapitación
La decapitación implica el corte de la cabeza por el cuello, utilizando una
cuchilla afilada. Ya que la actividad cerebral puede continuar durante hasta 30
segundos y es dudoso que el ave quede inconsciente de inmediato. Previo al
sacrificio, se deben utilizar anestésicos.
La decapitación produce la muerte por isquemia cervical. Las actividades
motoras que se producen tras la pérdida de postura –aunque potencialmente
angustiosas para los observadores– no son percibidas por un animal
inconsciente como dolor o angustia. El pataleo reflejo en animales
inconscientes puede confundirse con actividad consciente y puede producirse
incluso después de la decapitación, ya que los circuitos neurológicos
implicados en la marcha se localizan en la médula espinal.
El material que se utilizará, sea una guillotina o cuchillo, debe mantenerse en
buenas condiciones de funcionamiento, estar limpio y siempre bien afilado.
• En aves pequeñas de menos de 200 gr la decapitación se realiza
con tijeras de disección: se secciona la articulación atlanto-occipital, separando la cabeza del cuello por medio de un corte firme
y rápido.
• Para aves de corral se recomienda contar con una superficie elevada (mesa o tabla), a fin de realizar la decapitación sobre la misma y contar con un recipiente debajo para contener los fluidos
corporales de las aves. Para evitar el derrame de líquidos, se recomienda la utilización de un embudo que ayude a la contención
de los mismos.
Es importante tener en cuenta que las aves sacrificadas por este método
deben ser depositadas en bolsas o contenedores (tambor) que no filtren los
líquidos al ambiente hasta finalizado el sacrificio de todas las aves del lugar;
luego, los cadáveres deben ser trasladados en los contenedores hacia el lugar
determinado para su enterramiento. La sangre debe ser desechada junto con
los cadáveres.
Los recipientes utilizados para la contención de fluidos y los cadáveres deben
ser debidamente lavados y desinfectados en el mismo establecimiento.
En la granja, se puede utilizar el cono como dispositivo de inmovilización: se
coloca a las aves boca abajo en el dispositivo con la cabeza a través de un
agujero y se puede llevar a cabo el sacrificio inmediatamente.
32
�Imagen 5. Uso de cono para la inmovilización de un pavo.
Desangrado
El ave se coloca en el cono que la inmoviliza, evitándole lesiones. Con
cuchillos limpios y desinfectados (agua clorada) se procede al corte
de grandes vasos del cuello, produciendo el desangrado. El ave debe
permanecer un mínimo de 3 minutos en este proceso para asegurar un
correcto desangrado. La sangre se recolecta en un recipiente para tal fin.
Eliminación de los cadáveres
Existen varios métodos para eliminar las aves muertas, desechos y otros
desperdicios. Preferentemente se debe proceder al enterramiento en el
mismo establecimiento u otro lugar adecuado para este fin, aprobado
previamente por el Senasa. Cuando nos es posible o conveniente el
enterramiento, la mejor opción es elaborar compostas o bien la incineración.
Los huevos u otro material orgánico contaminante (guano, cama de galpón,
restos de alimentos, productos, basura, etc.) deben recogerse con cuidado a
fin de que se elimine junto con los cadáveres.
Enterramiento
El enterramiento es el procedimiento más adecuado para la eliminación
de animales y otros elementos de riesgo, ya que generalmente es cómodo,
económico, rápido y seguro. No obstante, es necesario considerar los
siguientes factores para la toma de decisiones:
• Los lugares para el entierro deben contar con la aprobación de la
autoridad competente del lugar.
• Disponibilidad del terreno para reducir al mínimo la distancia a
través de la cual se transporta el material infectado, es apropiado que
el enterramiento se realice en la misma granja.
33
�• Tipo de suelos (los rocosos pueden imposibilitar la actividad).
• Profundidad del manto freático.
• Presencia de tuberías de agua, gas, electricidad, drenaje, teléfonos u
otras.
• Disponibilidad de la máquina retroexcavadora, camiones de volteo,
tractores, así como su accesibilidad al terreno.
• Presencia de corrientes de aguas como canales, arroyos, ríos u otros.
• Posibilidad de inundación del terreno.
• Pendientes del suelo.
Otra opción que podría resultar adecuada es optar por un lugar de
enterramiento común para varias granjas en una zona determinada.
Para la construcción de la fosa debe usarse maquinaria pesada (camiones de
volteo, tractores, excavadoras y retroexcavadoras). Asimismo, antes de iniciar
su construcción, es importante considerar:
• El tamaño, en función del número y peso de las aves.
• Para su llenado se debe calcular 600 kg/m3 de fosa.
• No debe ser muy ancha (no más de 6 metros).
• Debe ser larga, con la posibilidad de irse rellenando por fracciones.
• Es conveniente dejar un terraplén por el frente para que pueda
ingresar el vehículo con los cadáveres o los residuos.
• Se debe dejar un metro entre las aves sacrificadas y el piso superior
(relleno).
• Se puede construir más de una fosa, previendo que no se cruce por
alguna que esté llena.
En las fosas, también se debe depositar restos de alimentos, excretas, huevos, basura y
material que no garantice la desinfección.
El peso del lote de aves que será preciso enterrar depende del tipo de
producción (pollos de engorde, reproductores pesados o livianos, gallinas
de alta postura de huevos blancos o de color, u otras especies). La edad de
las aves o las semanas de cría pueden ser provistas por el propietario, por
técnicos especializados en avicultura o bien obtenerse de tablas.
• Un kilogramo de peso tiene un volumen promedio de 0,06242 m3.
• El volumen de la fosa se debe calcular multiplicando el valor anterior por el peso medio y la cantidad promedio de aves alojadas.
Se recomienda cubrir la fosa con láminas geotextiles o nylon para evitar la
contaminación del manto freático. Posteriormente, depositar los cadáveres,
cubrirlos con 40 centímetros de tierra y colocar sobre la misma una capa
uniforme de hidróxido de calcio [Ca (OH)] antes de finalizar el llenado.
También es conveniente evitar poner la cal directamente sobre los cadáveres
porque retrasa y puede evitar su descomposición.
34
�Debido a la producción de gases por descomposición de los cadáveres, se
puede producir una considerable expansión del material enterrado por lo
cual no se compactará la tierra al recubrir la fosa, asimismo, para evitarlo se
deben colocar tubos cribados para su ventilación.
En caso de usar como método de sacrifico la espuma, no colocar en la fosa de eliminación
las aves junto al guano o cama debido al exceso de gas metano, lo cual puede causar la
explosión de la fosa.
Incineración
Es el método menos recomendable para la eliminación de una gran cantidad
de aves, principalmente por su elevado costo y por el tiempo que se requiere
para hacerlo cenizas. Sin embargo, si por alguna razón fuera necesario
realizar este método, se debe considerar:
• Aprobación de los organismos oficiales encargados de la protección medio ambiente.
• Disponibilidad de agua o material contra incendios.
• El método no puede utilizarse en épocas de lluvias.
• Se requiere gran cantidad de combustible.
• Se requiere de un acomodo especial de los cadáveres para asegurar una buena incineración.
• Una inadecuada incineración incrementa el riesgo de escape de
virus, al dejar cadáveres semiquemados.
• Un error puede generar accidentes personales, locales o ambientales.
• Las cenizas deben enterrarse o llevarse a un relleno sanitario.
• El método provoca severa contaminación ambiental.
• Se deben utilizar hornos crematorios convencionales cuando se
trate de pocas aves sacrificadas.
Compostaje
El compostaje es un proceso de descomposición controlada de la materia
orgánica. La descomposición ocurre en un ambiente aerobio en presencia
de determinadas condiciones de pH, temperatura y humedad, en la cual
microorganismos mesófilos y termófilos elevan la temperatura por un tiempo
determinado permitiendo así la inactivación viral.
Este método puede ser alternativo al enterramiento en sitios en que, por razones
de legislación o alto nivel de las napas freáticas, no se permita el enterramiento.
Para su planeamiento, se deben considerar la disponibilidad de materiales
necesarios para su realización (ej.: fuente de carbono como paja), su ubicación
y el tiempo requerido para la inactivación viral a temperaturas adecuadas
(15 días a temperaturas mayores a 62 ºC). Se puede realizar luego una
eliminación definitiva, enterrando el compost.
35
�Eliminación de la cama, deyecciones de aves o productos avícolas
La cama, las deyecciones, los huevos u otros deben tratarse mediante un
método idóneo para eliminar el virus. Dicho método debe incluir una de las
siguientes manipulaciones:
a. Se enterrarán con los cadáveres a una profundidad que impida el
acceso a parásitos, aves silvestres u otros animales.
b. Se incinerarán o tratarán con vapor de agua a temperatura de >70°C.
c. Se amontonarán y humidificarán (si resultara necesario para facilitar
la fermentación), se cubrirán para mantener el calor de forma que
se alcance una temperatura de fermentación mínima de 20 °C y se
mantendrán cubiertos durante 42 días.
d. En el caso de haber utilizado como método de sacrificio la espuma,
la cama o guano debe enterrarse en forma separada de las aves
sacrificadas.
Medidas higiénico-sanitarias para el sacrificio y eliminación
La realización del sacrificio y la eliminación de los lotes afectados se
realizarán bajo la supervisión del Senasa. Teniendo en cuenta que el humano
es el principal vehiculizador del virus entre granjas y sobre todo a grandes
distancias, estas actuaciones exigen contemplar una serie de medidas
higiénico-sanitarias destinadas a la eliminación efectiva del virus y a evitar su
propagación. Por ello, es necesario que:
• en el sacrificio y eliminación participen exclusivamente el número de personas necesarias para el mismo (únicamente el personal
afectado a estas áreas, sin tener contacto con otras granjas avícolas);
• se disponga de un lugar de desinfección a la entrada y salida de la
explotación para vehículos y calzados.
• todo el personal utilice ropa adecuada para tal fin y todo el material
descartable sea eliminado en la misma explotación;
• el material no desechable sea desinfectado en forma adecuada,
previo a su retiro de la explotación;
• se mantenga una adecuada y estricta higiene de las manos y desinfección de botas, después del contacto con aves de corral o con
superficies contaminadas.
Biodigestor
La tecnología de digestión anaeróbica es utilizada para el procesamiento de
residuos orgánicos, consolidándose con la implementación de plantas de biogás.
Las aves sacrificadas deben moverse, previa autorización del Senasa, en
camiones herméticamente cerrados y desinfectados al egreso e ingreso del
establecimiento. El mismo debe ir con la documentación correspondiente
y con certificado de desinfección suscrito por el veterinario acreditado en
Sanidad y Bienestar Aviar.
36
�Procedimiento de limpieza y desinfección
La limpieza se define como la eliminación de la materia orgánica, suciedad,
grasitud o polvo que es visible en una superficie.
Por su parte, la desinfección es el procedimiento de reducción de los
microorganismos infectantes a niveles seguros, mediante la aplicación de
productos específicos para tal uso. La desinfección solo es efectiva si antes
se realizó una correcta limpieza de la superficie o zona infectada.
Las operaciones de limpieza y desinfección se llevarán a cabo bajo la
supervisión y en concordancia con el veterinario oficial del Senasa. Previo
a la desinfección, se informará al avicultor/propietario de las medidas de
bioseguridad y el protocolo de limpieza que se deberá efectuar.
El personal que conforma el equipo de limpieza y desinfección debe estar
provisto de ropa protectora adecuada, en lo posible descartable. Todo el
equipo de protección individual, incluyendo calzado, deberá limpiarse y
desinfectarse al terminar el operativo.
Limpieza
Una vez extraídos los cadáveres, restos de alimentos o cualquier materia
orgánica para su eliminación, se realizará una limpieza profunda de
las instalaciones con un producto desengrasante (detergentes u otros
surfactantes autorizados) y agua. Deben preferentemente emplearse
sistemas de limpieza a presión con agua caliente, a fin de favorecer la
eliminación de la suciedad adherida.
Como se mencionó anteriormente, todo material infectivo, cadáveres,
alimento, guano, cama, subproductos y demás materia orgánica se debe
eliminar por enterramiento.
Desinfección
Se rociarán todas las superficies limpias que hayan estado en contacto
con las aves infectadas y las cercanas a los mismos con desinfectantes
autorizados por el Senasa, dejando que el producto actúe el tiempo que
indique el fabricante. Luego, se deberá enjuagar con agua fría.
El desinfectante debe permanecer durante veinticuatro horas como mínimo.
Los implementos, bebederos, comederos, jaulas, nidos, incluyendo las
dependencias ajenas como cuartos de baños, almacenes de alimentos y
utensilios, depósitos de pienso, depósitos de agua de bebida, entre otros,
deben tratarse en forma similar con especial atención al uso de agua caliente
o vapor a temperatura de >70 °C. Aquellos implementos que se pudieran
remover del galpón se ubicarán en un lugar apartado y cubierto al amparo de
otros animales o aves durante por lo menos 28 días.
37
�Los desagües y conductos de evacuación se llenarán con desinfectantes
concentrados.
Una vez transcurridos los siete días de la primera limpieza y desinfección, se recomienda
repetir el procedimiento de limpieza y desinfección.
Posteriormente, se procederá a realizar un programa integrado de control
de plagas (artrópodos y roedores), ya que los mismos pueden actuar
como vectores mecánicos, mediante productos insecticidas y rodenticidas
autorizados por el Senasa.
Desinfectantes y productos químicos recomendados
Los desinfectantes recomendados que pueden emplearse en el proceso
de desinfección en brotes de IAAP son los agentes tensoactivos catiónicos
(sales de amonio cuaternario 4 %), agentes oxidantes (hipoclorito de sodio 2
%, hipoclorito de calcio 2 % y Virkon®), aldehídos (glutaraldehido 2 %), ácidos
(ácido cítrico 2 %) y álcalis (hidróxido de sodio 2 %, hidróxido de calcio 3 %;
carbonato de sodio 4 %); fenoles sintéticos 2 % y ácido cresílico 2 %.
Este listado no es definitivo y se podrán utilizar otros compuestos que
determine oportunamente el Senasa.
Registro
Se debe elaborar y conservar un registro escrito de todas las actividades,
consignando el trabajo realizado, la fecha y los productos aprobados por el
Senasa, como se observa en el Anexo N.° 6.
38
�Anexos
Anexo 1: Actas que se deben cargar en el SUR con el antecedente
sanitario correspondiente a cada momento de la detección de IAAP
Actividades dentro del
período de vigilancia
Confirmación de brote
Tipo de antecedente
BROTE DE INFLUENZA
AVIAR H5
INSPECCIÓN DE PREDIO/
ESTABLECIMIENTO
AVÍCOLA
Documentación para
adjuntar en cada AS
Fecha de
alta
Fecha de
baja
Orden de análisis con resultado positivo
Fecha de la orden de
análisis
Formulario de encuesta
epidemiológica
Fecha de realización de
la encuesta
Acta de sacrificio (incluye
limpieza y desinfección)
Fecha inicio sacrificio
Fecha fin
de limpieza
y desinfección
Acta constatación de
Cierre de brote
Fecha de cierre de brote
(la misma que fin de
limpieza y desinfección)
Acta de constatación de
levantamiento de interdicción
Fecha de realización de
levantamiento
Anexo 2: Actas que se deben cargar en el SUR con el antecedente sani-
tario correspondiente al momento de la atención la sospecha de IA
Atención de la
sospecha
Tipo de
antecedente
AVES MUESTREO
SOSPECHA DE
I.AVIAR/ENC
Documentación para
adjuntar en cada AS
Fecha de
alta
Fecha de
baja
Actas toma de muestra
(SIGATM)
Fecha toma
de muestra
Fecha de
emisión de
resultado
Acta constatación
(constatando existencias,
signos clínicos e interdicción)
Fecha de realización de
acta
39
�Anexo 3: Se deberá considerar la carga del correspondiente antecedente sanitario, según lo observado al momento de la inspección en
función del siguiente cuadro
ANTECEDENTE SANITARIO
MOTIVO
INSPECCIÓN PREDIO/
ESTABLECIMIENTO AVÍCOLA - SIN
INCONSISTENCIAS
Se debe cargar cuando al momento de la visita
al predio de aves de corral no se encuentra
inconsistencias al cumplimiento de la Resolución
Senasa N.° 1699/2019. Si el predio es de aves de
traspatio se debe cargar cuando visita el mismo.
INSPECCIÓN PREDIO/
ESTABLECIMIENTO AVÍCOLA - CON
INCONSISTENCIAS GRAVES
Se debe cargar cuando al momento de la
visita al predio de aves de corral se encuentra
inconsistencias graves en el incumplimiento de
la Resolución Senasa N.° 1699/2019 o en caso
de visitar predio de aves de traspatio y observa
que convive con producción industrial.
INSPECCIÓN PREDIO/
ESTABLECIMIENTO AVÍCOLA - CON
INCONSISTENCIAS MODERADAS
Se debe cargar cuando al momento de la
visita al predio de aves de corral se encuentra
inconsistencias moderadas en el incumplimiento
de la Resolución Senasa N.° 1699/2019.
INSPECCIÓN PREDIO/
ESTABLECIMIENTO AVÍCOLA - CON
INCONSISTENCIAS LEVES
Se debe cargar cuando al momento de la
visita al predio de aves de corral encuentra
inconsistencias leves en el incumplimiento de la
Resolución Senasa N.° 1699/2019
40
�Anexo 4
41
�42
�Anexo 5
43
�Anexo 6
44
�45
�46
�47
�48
�Contacto
Programa Nacional de Sanidad Aviar
Correo: avesygranja@senasa.gob.ar
Teléfono de contacto: (011) 4121 – 5409.
49
�argentina.gob.ar/senasa
�
Dublin Core
The Dublin Core metadata element set is common to all Omeka records, including items, files, and collections. For more information see, http://dublincore.org/documents/dces/.
Title
A name given to the resource
Publicaciones SENASA
Dublin Core
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Title
A name given to the resource
Guía operativa. Influenza aviar en aves de corral. Plan de contingencia
Publisher
An entity responsible for making the resource available
Servicio Nacional de Sanidad y Calidad Agroalimentaria
Date
A point or period of time associated with an event in the lifecycle of the resource
2025
Contributor
An entity responsible for making contributions to the resource
Dirección Nacional de Sanidad Animal
Dirección General de Laboratorios y Control Técnico
Coordinación General de Comunicación Institucional
Language
A language of the resource
Es
Type
The nature or genre of the resource
Manual
Identifier
An unambiguous reference to the resource within a given context
B.S.0198
Abstract
A summary of the resource.
El presente documento tiene como objetivo proporcionar información técnica
al personal profesional del Senasa sobre las estrategias, medidas sanitarias,
acciones y actividades generales que debe realizar el Servicio ante la confirmación de uno o más brotes de influenza aviar (IA) en aves de corral en
la República Argentina.
Table Of Contents
A list of subunits of the resource.
Introducción
Marco legal: referencias normativas y recomendaciones internacionales
Glosario conceptual
La enfermedad
Sistema Nacional de Emergencias Sanitarias
Estrategia sanitaria y procedimientos de respuesta
Procedimiento de atención y seguimiento de influenza aviar tipo a H5H7 en aves de corral
Procedimiento de muestreo - Establecimientos dentro de la ZCS
Sacrificio sanitario y disposición final de las aves
Procedimiento de limpieza y desinfección
Anexos
Enfermedades de las Aves
Influenza Aviar
-
https://biblioteca.senasa.gob.ar/files/original/2351c7e4d120fd0ddb012599f830a81f.pdf
ed45d4614cbf519e317fed8066462c84
PDF Text
Text
GUÍA OPERATIVA
Notificación y atención de
sospechas de influenza aviar
y enfermedad de Newcastle
En aves (de corral y de no corral) y mamíferos marinos
�El Servicio Nacional de Sanidad y Calidad Agroalimentaria (Senasa)
es un organismo descentralizado, responsable de ejecutar las políticas nacionales en materia de sanidad y calidad animal, vegetal y de
la inocuidad de los alimentos de su competencia, así como de verificar el cumplimiento de la normativa vigente en la materia.
Equipos de trabajo
Dirección Nacional de Sanidad Animal
Dirección General de Laboratorios y Control Técnico
Coordinación General de Comunicación Institucional
Edición 2025
�INDICE
Introducción 5
Definiciones 5
Obligatoriedad de notificar
5
Vías de notificación
6
Sospecha de influenza aviar/enfermedad de Newcastle
6
Consideraciones generales de sospecha
6
Aves de corral y de traspatio
6
Eventos sanitarios
7
Consideraciones epidemiológicas
7
Aves silvestres
7
Mamíferos marinos
8
Procedimientos 8
Sospecha 8
Previo a la visita al predio
9
En el predio con sospecha
11
Medidas de protección personal
11
Secuencia de colocación del EPI
12
Secuencia de retirada del EPI
12
Otras consideraciones
13
Inspección del establecimiento
13
Interdicción del establecimiento
14
Movimientos o traslados
14
Censo
14
Ficha técnica
14
Extracción de muestras
18
Aves comerciales
18
Materiales
18
Tipo de muestra
18
Consideraciones para tener en cuenta
19
Aves silvestres (observaciones y recolección de datos)
19
Conservación 21
Tipo y cantidad
21
Aves de corral
22
Aves no de corral (traspatio)
22
Aves silvestres y mamíferos marinos
22
Resumen de tipo y cantidad de muestras
23
Acondicionamiento 23
Embalaje primario
23
Embalaje secundario
23
�
Embalaje terciario
24
Envío
24
Protocolo en SIGATM 26
Envío al laboratorio oficial del Senasa
26
Aislamiento 27
Tránsito 27
Carga en el SUR
27
Diagnóstico 28
Contacto 29
Anexo 29
�Introducción
La presente guía tiene como objetivo proporcionar información técnica a los
profesionales y técnicos del Senasa sobre las acciones que deben seguir en
caso de recibir una notificación de sospecha por Influenza Aviar (IA) o enfermedad de Newcastle (ENC) –ambas de declaración obligatoria– en aves de
corral, aves no de corral y mamíferos marinos.
La Influenza Aviar y enfermedad de Newcastle son enfermedades zoonóticas, cuya transmisión puede efectuarse por contacto indirecto a través de
vehículos (autos, celulares, ropa, calzados, etc.) o por contacto directo, con
la manipulación de aves enfermas, sospechosas o muertas, o bien durante
el desarrollo de actividades que impliquen el contacto con fluidos o excreciones de animales. Los animales infectados eliminan el virus por medio de sus
excreciones y secreciones.
Si se confirma la presencia de alguna de estas enfermedades, las medidas
sanitarias de control y erradicación previstas en la legislación deberán ser
implementadas de forma inmediata.
Definiciones
Aves de corral: designa todas las aves criadas o mantenidas en cautiverio
para la producción de productos comerciales animales, o la reproducción
para estos fines. Las aves no de corral se consideran como aves de corral
cuando tengan contacto directo o indirecto con aves de corral o instalaciones
avícolas.
Aves de traspatio: designa a las aves que se crían en un predio registrado
ante el Senasa como aves de traspatio, cuyos productos están destinados
únicamente para el autoconsumo.
Aves silvestres cautivas: designa a aves cuyo fenotipo no se ha visto significativamente afectado por la selección humana, pero que están cautivas o
viven bajo supervisión o control de los seres humanos.
Aves silvestres de vida libre: designa a aves cuyo fenotipo no se ha visto afectado por la selección humana y que viven independientes, sin necesitad de
supervisión o control por parte de los seres humanos.
Aves no de corral: incluye a las aves silvestres de vida libre, las de traspatio
y las silvestres cautivas criadas para espectáculos, competencias, exposiciones, colecciones de zoológicos y concursos, reproducción o la venta. También
abarca a las aves de compañía, siempre y cuando no tengan contacto directo
o indirecto con aves de corral o instalaciones de producción avícolas.
Mamíferos marinos: incluye a los mamíferos marinos que se han adaptado
a vivir en el mar y que, según el conocimiento actual, son susceptibles a los
virus de influenza aviar, como por ejemplo los delfines, lobos marinos, focas,
elefantes marinos.
Obligatoriedad de notificar
El artículo 6º de la Resolución Senasa N° 153/2021 establece la obligatoriedad para toda autoridad nacional, provincial o municipal, veterinarios, trans-
5
�portistas, entes sanitarios, personas responsables o encargadas de cualquier
explotación ganadera, industrial o doméstica, universidades, organismos
de investigación, zoológicos, parques o reservas naturales nacionales, provinciales o municipales y laboratorios diagnósticos estatales o privados, o
cualquier persona humana o jurídica, de notificar y reportar al Senasa una
sospecha o confirmación de caso de todas las enfermedades, síndromes y
eventos listados en la normativa en cuestión, en todas las especies de animales domésticos y de la fauna silvestre.
Vías de notificación
La notificación de sospechas de enfermedades de notificación obligatoria
debe realizarse a través de los siguientes canales oficiales:
Presencial (o telefónicamente) en las oficinas del Senasa.
WhatsApp al (11) 5700 5704.
Correo electrónico notificaciones@senasa.gob.ar
Formulario Avisá al Senasa, disponible en el sitio web oficial.
Sospecha de influenza aviar/enfermedad de Newcastle
Se considera sospecha a las situaciones en las que se presenta un cuadro
clínico sindrómico compatible o se detectan resultados patológicos post
mortem o resultados de laboratorio indicativos de la posible infección por IA
o ENC, pero que no son concluyentes; o se ha establecido un vínculo epidemiológico con un caso confirmado de una infección o infestación.
Consideraciones generales de sospecha
a.
La detección de una o más aves con algún signo clínico o lesiones anatomopatológicas compatibles con IA y ENC, aumento repentino de la
mortandad o alteración de parámetros productivos.
b.
Una o más aves que, según investigación epidemiológica, resulten nexo
epidemiológico a un brote, y que pueden o no presentar signos clínicos
o lesiones anatomopatológicas compatibles con la/s enfermedades.
c.
En aves de corral, un diagnóstico positivo de laboratorio a IA H5/H7 por
pruebas serológicas o moleculares, sin la presencia de signos clínicos
compatibles, mortandad o alteración de parámetros productivos asociados.
d.
En aves de no corral, un diagnóstico positivo de laboratorio a IA H5/H7
por pruebas serológicas, sin la presencia de signos clínicos compatibles, mortandad o alteración de parámetros productivos asociados.
Aves de corral y de traspatio
La decisión de considerar como sospechosa a una explotación de IA/ENC se
encuentra normada en la Res. Senasa N.° 153/2021, la cual establece los
siguientes síndromes y criterios:
Caída de postura: disminución de la postura mayor al 5% durante más
6
�de 2 días sin ninguna justificación. Los huevos pueden ser deformes,
sin pigmentación, de color anormal, ásperos, de cáscara delgada o sin
cáscara y con albúmina acuosa.
Síndrome neurológico (SN): tortícolis, opistótonos, movimientos rítmicos laterales de la cabeza, temblores, ataxia, incoordinación, paresia
o parálisis, espasmos clónicos, desorientación, nistagmo, alteraciones
visuales, movimientos circulares y convulsiones.
Síndrome respiratorio (SR): estornudos, tos, jadeo, rales, supuración
ocular y nasal, senos paranasales infraorbitarios inflamados o sinusitis, conjuntivitis asfixia y estertores. La cabeza y el cuello se encuentran
extendidos hacia delante y hacia arriba durante la inspiración. Se debe
notificar cuando está asociado a una mortandad semanal superior al
3% sin justificar.
Eventos sanitarios
Son aquellos que, por sus características epidemiológicas, presentan las siguientes características:
Aparición por primera vez de una enfermedad o una cepa nueva de un agente
patógeno, en el país o en una región.
Mortandades de animales superiores a la media habitual de la unidad productiva; en aves representa un índice de mortalidad semanal superior al 3%.
Mortandad de fin de ciclo mayor o igual al 10%, sin justificar.
Reducción de la ingesta de alimento y agua superior al 20%, sin causa aparente, en planteles comerciales de aves de corral.
Cualquier situación sanitaria fuera de lo común.
Todo indicio clínico o lesión post mortem que sugiera la presencia de IA/ENC.
Consideraciones epidemiológicas
Si las aves han estado en contacto directo o indirecto con una explotación avícola que haya
estado infectada con el virus de la IA o ENC.
Si una explotación de cría o recría ha distribuido aves que, según se haya demostrado
posteriormente, estuvieran infectados con el virus de la IA o ENC.
Si existe la posibilidad de que las aves hayan estado expuestos al virus de la IA o ENC, por
ejemplo, debido a la entrada en la explotación de personas, vehículos, etc.
Aves silvestres
Al momento de determinar una sospecha de IA/ENC en aves silvestres, se
deberá tener en cuenta:
Que se trate de una mortalidad que afecta a una o más especies, y más
de 3 individuos en el mismo lugar o área.
Que las aves muertas se localicen cercanas a establecimientos avícolas.
Que las aves muertas se localicen en zonas húmedas (lagunas, ríos,
7
�embalses etc.), y en particular cuando estas áreas se encuentren próximas a establecimientos avícolas.
Especies de mayor interés: aves acuáticas y marinas, como patos, gansos,
cisnes, grullas, playeritos, gaviotas, pelicanos, flamencos, petreles; y aves
rapaces, como jotes, chimangos, caranchos, gavilanes, búhos.
Nota: ante cualquier consulta, comunicarse con la Coordinación General de
Epidemiología de la Dirección Nacional de Sanidad Animal.
El contacto de aves silvestres con aves domésticas es un factor determinante para la
aparición de nuevos brotes.
Mamíferos marinos
Al momento de determinar una sospecha1 de influenza aviar en mamíferos
marinos, se deberá tener en cuenta:
La detección de animales con signos clínicos compatibles con IA o animales
muertos.
Coexistencia de mamíferos marinos y aves silvestres con sintomatología
compatible a IA o mortandad. En este caso, se deberá tomar muestras de
ambas especies.
1 Dado que la situación
epidemiológica de la influenza aviar es dinámica
se deben verificar las
indicaciones vigentes comunicadas por memorándum oficial de la Dirección
Nacional de Sanidad
Animal.
Procedimientos
Sospecha
Ante la recepción de una notificación de sospecha, como medida preventiva
inmediata y hasta confirmar si efectivamente se trata de un caso sospechoso, se deberá bloquear la autogestión del predio, restringir los ingresos y
egresos y comunicar de inmediato al área de notificación de sospechas de
enfermedades de denuncia obligatoria, la cual articulará con el Programa
Nacional de Sanidad Aviar y la Coordinación General de Epidemiologia para
que se indiquen las medidas sanitarias que se implementarán.
8
�El veterinario del Senasa debe cumplir, dentro de las 24 horas de recibida una notificación,
con la intervención sanitaria en el predio.
Es posible descartar la sospecha antes de concurrir al predio cuando:
Se identifica otra posible causa de la sintomatología.
La mortandad observada está relacionada al manejo de la temperatura, la
humedad, altos niveles de amoníaco.
Se reconocen intoxicaciones alimenticias o por el agua, por ejemplo.
En esos casos, el veterinario oficial deberá completar en el Sistema Integrado de Gestión de Sanidad Animal (SIGSA) el protocolo de enfermedad directamente como Caso Descartado de influenza aviar o enfermedad de Newcastle (según corresponda), seleccionando el síndrome o evento que más se
ajuste a la situación: síndrome respiratorio, nervioso, caída de postura y/o
mortandad, según Res. Senasa N.° 153/2021, justificando correctamente el
motivo de descarte.
De proseguir con la atención de la sospecha de IA o ENC, se deberá registrar
el correspondiente Protocolo de Enfermedad de Notificación Obligatoria ingresando al SIGSA.
Previo a la visita al predio
Las medidas de biocontención y procedimientos de atención tienen la finalidad de controlar y evitar la dispersión del posible patógeno, hasta tanto se
descarte o confirme la presencia de un agente infeccioso. Entre las acciones
que el veterinario oficial del Senasa deberá seguir antes de la visita al establecimiento, se incluyen:
a.
En caso de no poseer número de Renspa, otorgar y registrar la actividad
avícola correspondiente.
b.
Reconfirmar el bloqueo de la autogestión y de emisión de movimientos
efectuado. El establecimiento quedará interdictado con prohibición de
ingreso y salida de aves.
Durante el tiempo que dure la sospecha, no se podrán retirar cadáveres de
aves, carne de aves de corral, piensos, utensilios, materiales, desperdicios,
guano, cama, huevos, o cualquier otro elemento de la explotación que pueda
ser portador del virus de la IA/ENC, en cumplimiento con las medidas de
bioseguridad necesarias para minimizar el riesgo de propagación de la enfermedad.
c.
Verificar en el SIGSA y en el Sistema Único de Registros (SUR):
1. stock de aves;
2. últimos movimientos 14 días previos a la sospecha;
3. georreferenciación;
4. infraestructura;
5. veterinario acreditado en sanidad y bienestar de las aves.
9
�Cualquier desvío observado en la visita se debe subsanar en el sistema al regreso de la misma.
d. Cargar el antecedente sanitario “Muestreo sospecha de I.AVIAR/ENC”,
con la fecha de atención de la sospecha.
e.
Comunicar con el veterinario acreditado en sanidad y bienestar de las
aves para poder fiscalizar con su presencia el establecimiento.
f.
En caso de que la sospecha sea en aves o mamíferos silvestres en cautiverio (zoológicos, ecoparques, centros de rescate o similar) se deberán tomar las mismas medidas, contemplando las diferencias entre un
predio rural y este tipo de establecimientos. Particularmente, para estos casos, se debe:
I. Prohibir el traslado de animales dentro o fuera de las instalaciones,
excepto situaciones específicas que se evaluarán en conjunto entre las
autoridades de fauna, los responsables veterinarios del predio y el Senasa.
II. Suspender temporalmente la administración de exámenes médicos
rutinarios/preventivos a las aves y mamíferos marinos.
III. Posponer todas las actividades no esenciales para evitar la dispersión del virus entre los diferentes recintos.
IV. Exigir la desinfección del calzado/cubrebotas desechables y ropa
exterior para entrar y al salir de los recintos de animales y/o áreas de
manejo en los recintos de animales.
g.
En caso de que la sospecha sea en aves o mamíferos silvestres de vida
libre, se deberá comunicar con las autoridades provinciales de fauna
silvestre. Particularmente, para estos casos, se debe:
I. recomendar que se limite el acceso de personas, animales de compañía y vehículos a la zona donde ocurrió la sospecha.
II. evaluar la posibilidad de implementar - de ser necesario - el procedimiento veterinario para realizar sedación, eutanasia y toma de
muestras. Los protocolos de eutanasia serán elegidos por los equipos
locales con experiencia en la materia, en función de la disponibilidad de
drogas aptas para esta especie y de acuerdo a los criterios y legislación
vigente en cada jurisdicción.
III. realizar la remoción y disposición final del cadáver (a cargo de la
autoridad municipal, provincial o nacional correspondiente), con el fin
de evitar el contacto con el público y la propagación del virus mediante
perros, aves y mamíferos carroñeros que puedan acceder al cadáver.
IV. desaconsejar el traslado de los animales con sintomatología relacionada a Influenza aviar a centros de rehabilitación o atención primaria de fauna marina.
h.
Registro y protocolización. Completar en el SIGSA el protocolo de enfermedad, según el siguiente criterio:
motivo del protocolo: sospecha;
seleccionar el síndrome o evento que más se ajuste a la situación: sín-
10
�drome respiratorio, nervioso, caída de postura y/o mortandad, según
Res. Senasa N.° 153/2021;
especie: seleccionar “Aves” en caso de tratarse de explotaciones comerciales o traspatio. Indicar “Fauna Silvestre” si se encuentran involucradas aves o mamíferos de la fauna silvestre (por ejemplo, lobo
marino);
enfermedad: seleccionar “Influenza aviar” o “enfermedad de Newcastle”, según corresponda.
tipo: en caso de haber seleccionado la especie “Ave”, deberá indicar en
este campo si corresponde a una explotación de traspatio o comercial.
En los casos en que se encuentren afectadas aves y mamíferos, cuando
se inicie el protocolo se deberán detallar todas las especies afectadas
en la tabla de población. Por ejemplo.
preparar los insumos necesarios para la toma y acondicionamiento de
la muestra.
En el predio con sospecha
Medidas de protección personal
A partir de la detección de casos de IA en personas, se han desarrollado una
serie de recomendaciones que el veterinario oficial debe tener en cuenta al
momento de atender una sospecha de la enfermedad en aves de corral y no
corral.
Antes de ingresar a predios con aves y proceder a la manipulación de aves
enfermas, sospechosas o materiales contaminados, se deberá disponer de
Equipos de Protección Individual (EPI) que serán utilizados durante toda la
jornada de trabajo, esto es, mientras dure la exposición al riesgo. Una vez
finalizadas las tareas, los elementos deberán quitarse y desecharse en el
mismo establecimiento.
Se debe asegurar que todos los agentes tengan acceso a los EPI. Los componentes del mismo son:
Protección corporal: ropas protectoras, preferiblemente mamelucos
desechables con manga larga y ajustables en los extremos más un delantal impermeable.
Protección de cabeza con gorro/cofia desechable que cubra completamente los cabellos.
11
�
Protección de pies con botas de goma o poliuretano que puedan ser
desinfectados y, preferentemente, cubrebotas desechables.
Protección de manos con guantes protectores desechables (de nitrilo
o vinilo) o guantes de trabajo de goma resistente que puedan desinfectarse; para evitar dermatitis pueden usarse guantes de algodón por
debajo de los guantes protectores.
Protección respiratoria mediante respiradores que cubran boca y nariz.
En casos particulares se podrán requerir equipos de respiración autónoma.
Protección ocular por medio de anteojos protectores, que deben lavarse y desinfectarse después de su uso.
El procedimiento de colocación y retirada del EPI tiene como objetivo reducir al mínimo la
posibilidad de autocontaminación y autoinoculación.
Secuencia de colocación del EPI
1.
Colocar el primer par de cubrecalzados.
2.
Colocar el mameluco descartable.
3.
Colocar el primer par de guantes, asegurándose de que queden debajo
de las mangas del mameluco; para ello, perforar el mameluco con el
dedo pulgar.
4.
Colocar el segundo par de guantes sobre las mangas del mameluco. Si
es necesario, sellar los extremos con cinta adhesiva para asegurar el
ajuste.
5.
Colocar el segundo par de cubrecalzados.
6.
Colocar el protector respiratorio (barbijo) y verificar que esté bien ajustado.
7.
Colocar el gorro o cofia desechable.
8.
Colocar los anteojos protectores.
En el caso de usar botas, las mismas deben quedar debajo del mameluco.
Luego, colocar por encima un par de cubrebotas.
Secuencia de retirada del EPI
Previo al retiro del equipo, es necesario conseguir una bolsa de residuos
para desechar el EPI y un balde con líquido desinfectante. Luego, seguir los
siguientes pasos:
1.
Realizar un lavado higiénico de los guantes con el desinfectante.
2.
Retirar el gorro/cofia.
3.
Desanudar el segundo cubrecalzado.
12
�4.
Retirar el mameluco con una mano desde el lado externo, de manera
que el par de guantes externo se desprenda junto con él. Enrollar el
mameluco hacia abajo, dejando expuesta la parte interna y manteniendo la externa hacia adentro.
5.
Realizar un lavado higiénico de los guantes en contacto con la piel con
el desinfectante.
6.
Retirar los anteojos protectores y lavarlos en el desinfectante.
7.
Retirar el primer cubrecalzado.
8.
Retirar la mascarilla, tomándola desde las bandas elásticas, sin tocar
la parte frontal.
9.
Realizar un tercer lavado higiénico de manos.
10. Retirar el primer par de guantes en forma de rollo, tratando de no tocar
la parte externa del guante.
En caso de tener botas, lavarlas y desinfectarlas con cepillo, luego proceder como indican
los puntos 9 y 10.
Otras consideraciones
Con respecto a la higiene de las manos, las mismas deben lavarse con
agua y jabón durante 15/20 segundos o utilizar otros procedimientos
estándares de desinfección de las manos.
Los EPI deben desecharse adecuadamente, disponiéndolos en bolsas
plásticas y dentro de un recipiente con tapa, cuidando que no contaminen otros lugares. El dispositivo plástico debe cerrarse cuidadosamente antes de su eliminación.
Usar una muda limpia de ropa protectora en cada instalación visitada.
Después de visitar una instalación sospechosa/afectada, las personas
no deben acudir a lugares de reunión pública sin haberse bañado, incluyendo lavado del pelo y cambiado de ropa. Asimismo, el profesional
no podrá ingresar a otro establecimiento/predio avícola sin un vacío
sanitario de 72 horas.
Material audiovisual
Para visualizar el procedimiento de colocación y retirada del EPI, acceder aquí.
Inspección del establecimiento
De tratarse de un establecimiento de aves de corral, el veterinario oficial
deberá realizar la inspección utilizando el SIG APP formularios (ID: 9015).
>> Siempre se debe llevar el acta de constatación, la cual luego será cargada en el sistema SIGACTAS (también se deberá realizar si el predio es de aves
no de corral o mamíferos marinos).
13
�El veterinario deberá llevar a cabo una anamnesis exhaustiva del establecimiento y de los síntomas presentados: Renspa, edad de las aves, plan de vacunación (especificar si se encuentran vacunadas contra la enfermedad de
ENC), cantidad de aves, mortalidad, morbilidad, tipo de alimento proporcionado, constatar medidas de bioseguridad, movimientos realizados, visitas,
posibles nexos epidemiológicos, etc. según corresponda.
En primera instancia, se deberá visitar la zona de almacenamiento de alimento para evaluar esta vía como posible fuente de infección. Luego, se deberá observar los alrededores del predio para evaluar la presencia de aves
silvestres, cuerpos de agua (natural o artificial) y estado de la malla antipájaros. Posteriormente, el veterinario del Senasa deberá recorrer únicamente
los galpones afectados.
En el caso de zoológicos y entidades afines, primero se deberán recorrer
las áreas donde no haya animales, a fin de evaluar el almacenamiento de
alimentos y otras potenciales vías de ingreso de la enfermedad. Luego, se
deberá recorrer las zonas no afectadas para comprobar que no haya sintomatología compatible o animales muertos. Por último, se deberán visitar las
zonas afectadas.
Interdicción del establecimiento
En este caso, se deberá realizar la comunicación de lo actuado al propietario
o responsable mediante el labrado de un Acta de constatación. En la misma
debe figurar el motivo de la inspección y la comunicación al productor de
la interdicción del establecimiento, indicando de manera detallada que no
podrá ingresar ni egresar aves, productos ni subproductos hasta que se descarte la sospecha.
De observarse la presencia de sintomatología compatible, se deberá proceder a la atención de sospecha descripta. Es importante considerar que, de
ser necesario, se interdictarán los establecimientos vecinos que por razones
geográficas o de contacto justifiquen la medida.
Movimientos o traslados
Los movimientos de personas, otras especies animales, vehículos, alimentos, residuos o cualquier elemento capaz de transmitir IA/ENC estarán subordinados a la autorización de la Dirección Nacional de Sanidad Animal
(DNSA) o a las personas que el Senasa designe.
Censo
Se deberá realizar el censo de todas las aves del establecimiento/predio o
local por categoría (identificando el número de aves halladas vivas, muertas
y enfermas), así como también de otras especies animales presentes en la
explotación.
Ficha técnica
Completar y enviar al área de notificación de sospechas de enfermedad denunciable (vía correo electrónico o WhatsApp) las siguientes fichas técnicas:
14
�Aves de corral y aves de traspatio
Datos generales
Historial
N.° de protocolo:
Signos clínicos:
Oficina:
Fecha inicio de signos:
Tipo de ave (Ejemplo:
ponedoras).
Establecimiento positivo en un radio de 10
km: SI/NO.
Especie. Ejemplo: gallina.
N.° total de animales (tipo y cantidad). Ejemplo: 5 patos, 10 gallinas, 2 gansos.
N.° total de animales con signos clínicos
(tipo y cantidad):
N.° total de animales muertos hasta día de
atención.
Muestras
Muestras en aves vivas: describir
si se envía en pool o no, la especie
muestreada y cantidad de hisopos
de cada especie muestreada. No se
debe mezclar hisopos de diferentes
especies.
Hisopados orofaríngeos o traqueales: por ejemplo: pool N°1:
contiene 5 hisopos de gallina, pool
N°2: contiene 2 hisopos de pato.
Hisopados cloacales:
Envío
Tipo de envío: vehículo oficial/
ómnibus/ aéreo/ puerta-puerta.
Fecha de despacho: solo en caso
de encomiendas tercerizadas.
Muestras aves muertas: describir
el tipo de hisopo, si se envía en
pool o no, la especie muestreada y
cantidad de hisopos de cada especie
muestreada. Si se envían cadáveres,
detallar la especie y la cantidad. No
se debe mezclar hisopos de diferentes especies.
Hisopados cloacal y traqueal:
tomar una muestra cloacal y una
traqueal por cada animal muerto.
Responsables de atención
Atendió:
Supervisó:
Contactos:
Vehículo oficial: dominio (exclusivo uso de vehículos oficiales o
vehículos afectados).
Fecha de arribo al laboratorio:
15
�Mamíferos y aves silvestres
Datos generales
N.° de protocolo:
Oficina local:
Nombre establecimiento/lugar:
Historial mamíferos marinos
Signos clínicos. Ejemplo: signos respiratorios,
letargo.
N.° total de animales presentes (especie y cantidad):
Especies afectadas con signos clínicos. Ejemplo: 2
lobos marinos y 1 elefante marino.
Especies afectadas c/mortandad. Ejemplo: 1.
Historial aves silvestres
Presencia de aves silvestres muertas o con signos:
SI/NO.
Especies (sacar foto):
N.° total de animales (tipo y cantidad). Ejemplo: 5
gaviotas, 10 gaviotines, 2 pelícanos.
N.° total de animales con signos clínicos (tipo y
cantidad).
N.° total de animales muertos hasta el día de la
atención
Muestras: detallar la especie y cantidad de hisopos por especie
Hisopados nasales:
Hisopados rectales:
Hisopados pulmonares:
Hisopados cerebrales:
Muestras aves vivas: describir el tipo
de hisopo, si se envía en pool o no,
la especie muestreada y cantidad de
hisopos de cada especie muestreada.
Hisopados orofaríngeos o traqueales:
Hisopados cloacales:
Envío
Tipo de envío: vehículo oficial/
ómnibus/aéreo/puerta-puerta.
Fecha de despacho: solo en caso
de encomiendas tercerizadas.
Muestras aves muertas: describir
si se envía en pool o no, la especie
muestreada y cantidad de hisopos de
cada especie muestreada.
Hisopados orofaríngeos o traqueales:
Hisopados cloacales y traqueales.
Tomar una muestra cloacal y una
traqueal por cada animal muerto.
Responsables de atención
Atendió:
Supervisó:
Contactos:
Vehículo oficial: dominio (exclusivo uso de vehículos oficiales o
vehículos afectados).
Fecha de arribo al laboratorio:
16
�Se debe tomar fotografías de las aves afectadas, con especial hincapié en crestas, barbillas y patas. La información debe ser enviada junto con la ficha técnica.
Ejemplos de fotografías tomadas durante la atención de sospecha
s en 2023 en Argentina:
17
�Extracción de muestras
El contagio de las personas puede producirse tanto por vía aerógena como
por contacto a través de las mucosas. Por ello, es fundamental tomar los
recaudos necesarios durante la recolección de muestras y su posterior envío
al laboratorio.
La IA y ENC pueden afectar a las aves comerciales y silvestres, por lo que se
debe considerar que una mortandad de especies silvestres también deberá
trabajarse como sospecha, según se indica a continuación.
Aves comerciales
Materiales
EPI: guantes, mameluco descartable, cubre calzado, protección respiratoria y ocular.
Gradillas, alcohol, marcador indeleble y algodón.
Hisopos estériles de dracrón, rayón o fibra de poliéster (no de algodón
ni de alginato de calcio) con palillo de plástico (no madera).
Tubo de polipropileno transparente, fondo redondo, dimensiones (mm)
11 x 55, volumen (ml) de 3 a 4. Con tapón a presión con aletas o tapón a
rosca.
Medio de transporte viral (BHI: caldo cerebro corazón, caldo triptosa
fosfato tamponado, caldo nutritivo, caldo peptona o medio comercial de
transporte para virus) o en su defecto solución fisiológica de cloruro de
sodio al 0,9%, estéril o PBS, hasta cubrir la cabeza del hisopo (de 3 a 5
ml por pool). Se deben remitir hasta 5 hisopos por tubo.
Tijera para corte de los cabos de los hisopos.
Conservadora y refrigerantes.
Tipo de muestra
1
Hisopado (uno por ave):
a.
Cloacal: Levantar las plumas de la cola despejando la zona cloacal e introducir el hisopo en la cloaca. Se debe girar el hisopo 2 o 3 veces hasta
obtener una muestra. El virus no se encuentra en la materia fecal, sino
dentro de las células, por lo que se debe raspar fuerte contra la pared
de la cloaca para que el hisopo arrastre algunas células.
b.
Traqueal: Levantar la cabeza del ave, abrir su pico, extraer suavemente
la lengua e introducir el hisopo en la tráquea, girando 2 o 3 veces de
manera enérgica para extraer algunas células (al extraer la lengua se
hace bien visible el orificio traqueal).
c.
Orofaríngeo: Levantar la cabeza del ave, abrir su pico, movilizar el hisopo de 3 a 4 veces, raspando de manera enérgica las paredes de la
cavidad orofaríngea para retirar algunas células.
18
�Para mamíferos marinos, se sugiere realizar hisopado nasal, rectal, pulmonar (a través de
una incisión intercostal) y cerebral (a través del foramen atlanto-occipital).
Consideraciones para tener en cuenta
Se debe mojar el hisopo con el medio de transporte viral o en su defecto solución fisiológica de cloruro de sodio al 0,9%, estéril o PBS previo
a la extracción del material.
Luego de tomar la muestra cortar de inmediato la extremidad del hisopo y sumergirlo en el tubo previamente identificado.
Los hisopos deben estar sumergidos en el medio de transporte viral
(BHI: caldo cerebro corazón, caldo triptosa fosfato tamponado, caldo
nutritivo, caldo peptona o medio comercial de transporte para virus) o
en su defecto solución fisiológica de cloruro de sodio al 0,9%, estéril o
PBS, hasta cubrir la cabeza del hisopo (de 3 a 5 ml por pool). Se deben
remitir hasta cinco (5) hisopos por tubo.
No mezclar hisopados traqueales/orofaríngeos con cloacales, es decir
que no pueden ir en un mismo tubo.
No mezclar hisopos de diferentes especies.
2.
Cadáveres: No está indicado enviar cadáveres al momento de la sospecha, salvo por expresa indicación de la Dirección Nacional de Sanidad
Animal.
3.
Órganos: No está indicado realizar necropsias por la potencial dispersión de la enfermedad, salvo expresa indicación de la Dirección Nacional de Sanidad Animal.
4.
Alimento (opcional): Cantidad mínima 1 kg, con doble bolsa plástica por
muestra.
Aves silvestres (observaciones y recolección de datos)
La información recogida durante la toma de muestras en aves silvestres debe
incluir:
1.
Localización geográfica mediante utilización de coordenadas.
2.
Descripción de la zona de captura (océano, lago, río, estanque, etc.) y su
distancia a pueblos y granjas de aves.
3.
Tiempo desde que inició el evento.
4.
Número y tipo de otras aves silvestres presentes en el área de captura
que no fueron muestreadas. Se debe prestar especial atención a las
aves que presenten signos de enfermedad, pero que no pudieron ser
muestreadas. Registrar la cantidad de animales afectados y su sintomatología.
5.
Si es posible, información sobre los movimientos normales de aves silvestres en el área de captura.
19
�También se deberán tomar fotografías digitales, las cuales deberán sacarse
lo antes posible luego de la toma de muestras. Es muy importante que, junto
al ave fotografiada, aparezca algún objeto que sirva de referencia para poder
apreciar bien el tamaño del animal.
Las imágenes se deben tomar de la siguiente manera:
Ave completa: por su lado dorsal, con un ala extendida y con la cola
extendida y visible.
Cabeza: de perfil, con el pico claramente visible.
Cola: de los extremos de las plumas de la cola, ya que pueden ayudar a
valorar la edad del animal.
Parte ventral: en condiciones ideales, tomar fotos de esta parte del ave.
En estas imágenes se deben apreciar las patas y los dedos, que pueden
resultar también útiles para identificar la especie. También debe apreciarse la anilla, si estuviera presente.
Ejemplos de fotos tomadas en el transcurso de atención de sospechas durante 2023 en Argentina:
20
�Dado que ya no se remitirán cadáveres al laboratorio, para corroborar la identificación
exacta es necesario que se fotografíe toda ave muestreada.
Las imágenes deben tener un código que permita relacionarlo con el de las
muestras tomadas (cuando se toma la foto, se puede colocar un papel con el
número de protocolo al lado del ave).
La fotografía es imprescindible en el caso de aves que no hayan podido ser
reconocidas por el personal que tomó la muestra. Si no se puede identificar
la especie, se perderá información muy valiosa para poder definir el curso de
la enfermedad en nuestro país.
Conservación
Hisopos: las muestras deberán ser conservadas y transportadas, desde su obtención hasta su envío al laboratorio a (+2ºC a +8ºC), en un
período que no supere las 72 horas. Plazo ideal: inferior a las 24 horas.
Cadáveres: como se mencionó anteriormente, no está indicado el envío
de cadáveres o realización de necropsias de aves. Sin embargo, en caso
de ser indicado por la DNSA, las aves enteras deberán enviarse de forma inmediata en bolsas de polietileno que no pierdan su contenido y se
remitirán refrigeradas (+2ºC a +8ºC) al laboratorio. Plazo máximo: 72
horas.
Órganos: en caso de indicarse, se recomienda el envío de los siguientes órganos en bolsa de polietileno estéril o recipiente estéril: tráquea,
pulmón, bazo, hígado e intestino (tonsilas cecales). Los intestinos se
deben acondicionar en forma separada al resto de los órganos. Si las
aves o mamíferos presentan signos nerviosos se tendrá que enviar encéfalo o directamente la cabeza del ave.
Tipo y cantidad
La toma de muestras se realizará por parte de los veterinarios oficiales del
Senasa, teniendo en consideración los siguientes criterios:
21
�Aves de corral
Ave viva: 20 hisopados traqueales u orofaríngeos de 20 aves enfermas
o en contacto estrecho y colocarlos en pooles de 5 hisopos (remitir 4
pooles).
Cadáveres: hisopado cloacal + traqueal u orofaríngeo de 2 cadáveres,
en caso que los hubiera. Las aves muertas de las cuales se extraen
muestras deben tener menos de 24 horas en este estado (según condiciones climáticas). En el caso de hallar aves moribundas, deberán ser
sacrificadas por el veterinario del Senasa.
Aves no de corral (traspatio)
Ave viva: 10 hisopados traqueales u orofaríngeos de 10 aves o la totalidad, en caso de ser menos de 10 las aves enfermas o con contacto
estrecho. Colocarlos en pooles de 5 hisopos si son la misma especie
(remitir 2 pooles).
Cadáveres: Tomar un hisopado cloacal + traqueal u orofaríngeo de 2
cadáveres en caso que los hubiera. Las aves muertas de las cuales se
extraen muestras deben tener menos de 24 horas en este estado (según condiciones climáticas). Si por alguna razón resultase imposible
realizar los hisopados, se podrá recoger una muestra de heces frescas.
En el caso de hallar aves moribundas, deberán ser sacrificadas considerando la normativa
vigente por el personal veterinario del Senasa.
Aves silvestres y mamíferos marinos
En el caso de aves silvestres de vida libre, si es posible, se deberán hisopar
animales sanos que compartan el mismo ambiente, dando prioridad a las
aves que viven en tierras húmedas junto a las aves afectadas.
Salvo por indicación de la DNSA, no se enviarán al laboratorio aves silvestres muertas.
Ave viva: hasta 10 hisopados traqueales u orofaríngeos de aves enfermas o en contacto estrecho. Colocarlos en pooles de 5 hisopos si son la
misma especie (remitir 2 pooles).
Cadáveres: tomar hisopado cloacal + traqueal u orofaríngeo de 2 cadáveres. Enviar también el cerebro o la cabeza entera de 2 cadáveres.
Las aves muertas de las cuales se extraen las muestras deben tener
menos de 24 horas sin vida, de acuerdo a las condiciones climáticas.
Todas las aves muestreadas deben ser identificadas. La identificación
de la especie resulta fundamental para evaluar el rol de las aves silvestres en la dispersión de la influenza aviar. Cuando sea posible, se
debe aportar información sobre la edad, sexo, peso, condición corporal
del ave y anillado.
Mamíferos marinos: se sugiere tomar muestras de los individuos muertos de todas las especies afectadas. Se debe identificar la especie de la
cual se toma muestras. Las muestras recomendadas son hisopado nasal,
rectal, pulmonar (a través de una incisión intercostal) y cerebral (a través
22
�del foramen atlanto-occipital) de animales muertos. No debe acercarse a
animales vivos, dado que pueden ser peligrosos y agresivos.
Resumen de tipo y cantidad de muestras
MUESTRAS
CATEGORÍAS
Aves vivas
Cadáveres
20 hisopados traqueales u
orofaríngeos.
Hisopado cloacal + traqueal u
orofaríngeo de 2 cadáveres.
Traspatio
10 hisopados traqueales u
orofaríngeos.
Hisopado cloacal + traqueal u
orofaríngeo de 2 cadáveres.
Silvestres
Hasta 10 hisopados traqueales u orofaríngeos.
Hisopado cloacal + traqueal
u orofaríngeo y cerebro de 2
cadáveres.
Aves de corral
Aves de
no corral
Mamíferos marinos
Hisopados nasal, rectal, pulmonar y cerebral de animales muertos
Acondicionamiento
Embalaje primario
El recipiente primario debe ser hermético.
En el caso de que se vayan a mandar varios recipientes primarios, cada
uno deberá estar envuelto individualmente para evitar posibles daños.
Cuando se calcule el volumen de las muestras que se van a enviar, se
deberá tener en cuenta el volumen del medio de transporte.
Colocar las muestras de tal forma que no se produzcan derrames.
Colocar las muestras identificadas individualmente (de un mismo predio) en una bolsa de nylon o bolsa conservadora, identificando a esta
última con el número de Renspa o titular del predio.
Colocar refrigerantes en cantidad suficiente, considerando el tiempo
de duración del transporte. Cerrar y sellar la tapa.
Tener en cuenta que cuanto menor espacio “libre” haya en la conservadora, las muestras
se mantendrán refrigeradas por mayor cantidad de tiempo.
Embalaje secundario
El contenedor secundario debe contener material absorbente, suficiente para absorber todo el contenido de los embalajes primarios en
caso de rotura o filtraciones.
Debe ser hermético.
23
�
Acondicionar el embalaje primario en cajas de telgopor, de forma tal
que evite roturas y derrames.
Embalaje terciario
Se deberá poner, cuando sea necesario, hielo seco o húmedo alrededor
de embalaje secundario. En caso de emplear hielo seco, el envoltorio
debe permitir la salida del dióxido de carbono para evitar incrementos
de presiones que lleven a la ruptura del paquete. Si se usa hielo húmedo, el embalaje será a prueba de goteo.
El embalaje externo debe introducirse en una bolsa sellada de plástico
para protegerlo de la humedad.
Colocar en el exterior de la caja un cartel que diga SOSPECHA, el remito generado en el Sistema Integral de Gestión de Acta de Toma de
Muestra (SIGATM) y el Número de Protocolo del SIGSA asociado. Pegar
etiqueta con la leyenda “refrigerado”/ “congelado”, según corresponda.
Envío
Finalizado el embalaje de las conservadoras, las mismas deben ser despachadas a la Dirección de Laboratorio Animal (DILAB) o bien al laboratorio
regional de la provincia de Santa Fe, mediante tres alternativas:
1.
Si los centros regionales cuentan con laboratorios con mesas de entradas propias deberán entregarse en estas a los efectos de que sean
remitidas a la Mesa de Entrada de Muestras (MEM) de la DILAB, o al
laboratorio de Santa Fe (consultar previamente disponibilidad de este
último).
2.
De no contar con laboratorios con mesas de entradas propias, las consevadoras deben ser despachadas directamente con destino a la MEM
de la DILAB –Talcahuano 1660, Martínez (CP 1640), Provincia de Buenos Aires– o al laboratorio regional de Santa Fe –Boulevard Pellegrini
3100, 1° Piso, provincia de Santa Fe–. Consultar previamente disponibilidad de este último.
3. Entrega “puerta a puerta”, con recepción durante las 24 horas.
En cualquiera de las tres modalidades (envío/entrega), se debe completar
la “Solicitud de retiro de encomiendas” y proceder de la siguiente manera,
según el destino de la muestra:
a. Laboratorio Central (Buenos Aires)
En caso de entrega puerta a puerta, se deberá informar en simultáneo (vía
correo electrónico) a la siguiente dirección: mesalabadm@senasa.gob.ar .
La persona que envíe el correo electrónico desde los correos institucionales
deberá identificarse con nombre y apellido ya que, en ocasiones, es necesario transmitir información o hacer consultas y se desconoce el remitente.
De ser mediante transporte (público o privado, terrestre o aéreo), una vez
obtenido el número de guía que entrega la empresa se debe enviar a los
correos de logisticadilab@senasa.gob.ar (con copia a Ana Cardozo y Marcelo
Girgenti) la “Solicitud de retiro de encomiendas” para informar el despacho y
la solicitud de retiro de las conservadoras enviadas. La solicitud cuenta con
un campo específico para informar entregas puerta a puerta.
24
�Contactos para envíos y retiros:
Ana Cardozo: acardozo@senasa.gob.ar. Tel: (11) 5155-5139; o #379.
Marcelo Girgenti: mgirgenti@senasa.gob.ar. Tel: (11) 4874-6700; interno 2719.
Coordinación Administrativa de Laboratorios: (11) 4874-6700; interno 2794.
Para entregas puerta a puerta:
(11) 2270-6127; (11) 3685-4523.
(11) 4874-6762, interno 2603.
(11) 4874-6700, internos 2603, 2763, 2662.
b. Laboratorio regional (Santa Fe)
Para muestras provenientes de Santa Fe Capital, el funcionario actuante las entregará puerta a puerta en el laboratorio.
Para muestras provenientes del interior de Santa Fe y Entre Ríos, vía comisionista, las mismas se entregarán puerta a puerta en el laboratorio.
En todos los casos, previamente se deberá informar el envío de las
muestras.
Completar toda la información solicitada en el formulario, ya que el tipo de muestra enviada o el plazo aproximado de arribo impacta en la programación del trabajo del área técnica.
Es responsabilidad del centro regional la logística y el aseguramiento del
envío y arribo de las muestras a las distintas terminales de transporte, para
su posterior retiro y entrega en la MEM del Laboratorio Animal ubicado en
Martínez.
Contacto regional
Ileana Balette:
WhatsApp al (11) 3685 – 4809.
Correo electrónico al jrlabsafe@senasa.gob.ar
25
�Protocolo en SIGATM
Envío al laboratorio oficial del Senasa
En todos los casos, las muestras deberán estar amparadas bajo el acta de
toma de muestras que debe generarse en el SIGATM. Para ello, se deberá
ingresar en el módulo ACTAS DNSA del Sistema, con el siguiente criterio:
En el caso de la especie “aves” o “animales silvestres” (si son aves
silvestres o fauna marina), se deberá cargar un acta para cada tipo de
Matriz disponible (hisopado traqueal, hisopado cloacal o hisopado orofaríngeo); es decir, no incluir en una misma acta dos tipos de hisopado
distintos.
Para el caso de los mamíferos, se deberá cargar una sola acta para la
matriz “hisopado”, independientemente si corresponden a hisopados pulmonares, rectales, nasales o cerebrales.
Área: Coordinación General de Control Territorial (CGCT).
Motivo de muestreo: sospecha de enfermedad notificable.
Submotivo: no hay disponibles.
Protocolo: indicar el número de protocolo que generó previamente en SIGSA.
Observaciones: describir información de interés.
Lugar de toma de muestras: se carga automáticamente ya que el sistema
arrastra la información del protocolo de SIGSA.
Fecha de toma de muestra: seleccionar manualmente.
Naturaleza del lote.
Especie: se carga automáticamente ya que el sistema arrastra la información del protocolo del SIGSA.
Matriz: para el caso de aves comerciales/traspatio/silvestres, seleccionar
hisopado traqueal, orofaríngeo o cloacal según corresponda. Para el caso
de mamíferos, seleccionar solo hisopado.
Muestras: agregar cada tubo de muestras tomadas, indicando el número
de tubo, animal muestreado (muy importante discriminar sano, enfermo o
muerto), tipo de identificación, categoría, edad, etc; discriminar por cantidad de hisopos y cantidad de pooles (ej: 2 pooles con 5 hisopados cada
uno).
Ensayo: seleccionar Diagnóstico Molecular de Influenza Aviar → RTPCR en tiempo real.
En el caso de aves silvestres y aves de traspatio, seleccionar también
Diagnóstico de Enfermedad de Newcastle → RT-PCR en tiempo real.
Laboratorio destino: Senasa - Dirección de Laboratorio y Control Técnico.
Oprimir el botón Finalizar.
Además, el veterinario deberá generar el remito y preparar el despacho, según las indicaciones disponibles en el instructivo de carga de acta de toma
de muestra en SIGATM.
26
�Al momento de despachar las muestras a la MEM de la DILAB, no se deberá hacer a nombre
de alguna persona en particular.
Aislamiento
Las muestras se deberán aislar de todas las aves involucradas, con el fin de
garantizar que no tomen contacto con otras aves.
Tránsito
El tránsito de aves, productos o subproductos de aves susceptibles a IA/ENC,
sin la autorización correspondiente, será considerado ilegal y de alto riesgo
sanitario, por lo que se decomisará inmediatamente y se procederá al sacrificio sanitario o destrucción, sin que el titular tenga derecho a indemnización.
Carga en el SUR
Una vez finalizada la visita, se deberá cargar en el SUR los antecedentes
sanitarios (AS) y adjuntar la documentación respaldatoria.
De acuerdo a lo observado al momento de la inspección, se deberá cargar el
AS de acuerdo al siguiente cuadro:
Antecedente Sanitario
Motivo
Inspección predio/establecimiento
avícola - sin inconsistencias
Se deberá cargar cuando no se encuentren inconsistencias al cumplimiento de la Res. Senasa 1699/2019
al momento de la visita al predio
de aves de corral. Si el predio es de
aves de traspatio, se deberá cargar
cuando visita el mismo.
Inspección predio/establecimiento
avícola - con inconsistencias graves
Se deberá cargar cuando se encuentren inconsistencias graves en el
incumplimiento de la Res. Senasa
1699/2019 al momento de la visita
al predio de aves de corral o en caso
de visitar predio de aves de traspatio
y observar que conviven con producción industrial.
Inspección predio/establecimiento
avícola - con inconsistencias moderadas
Se deberá cargar cuando se encuentran inconsistencias moderadas en
el incumplimiento de la Res. Senasa
1699/2019 al momento de la visita al
predio de aves de corral.
Inspección predio/establecimiento
avícola - con inconsistencias leves
Se deberá cargar cuando se encuentren inconsistencias leves en el
incumplimiento de la Res. Senasa
1699/2019 al momento de la visita al
predio de aves de corral.
27
�Además, considerando el antecedente sanitario de Muestreo Sospecha de I.
AVIAR/ENC, se deberá colocar:
Si el resultado es negativo: la fecha del resultado de laboratorio y adjuntar documentación respaldatoria (acta de constatación y resultado
de laboratorio).
Si el resultado es positivo: la fecha del resultado de laboratorio, adjuntar la documentación respaldatoria (acta de constatación y resultado
de laboratorio) y agregar el AS correspondiente a la enfermedad (ejemplo: “Brote de influenza aviar H5”), con la fecha de confirmación del
evento. Luego, continuar con la implementación de los procedimientos
destinados al control y rápida erradicación de la enfermedad.
En caso de no detectarse la secuencia específica de influenza aviar tipo
A o de la enfermedad de Newcastle (Paramyxovirus aviar tipo 1) de declaración obligatoria mediante la técnica RT - PCR en tiempo real o aislamiento viral, se deberá proceder al levantamiento de la interdicción,
desbloquear la autogestión, permitir movimientos e indicar la finalización de las actuaciones en el establecimiento a través del SIGACTAS.
Diagnóstico
En este apartado no se describirá el tratamiento de las muestras ni el procedimiento detallado de las técnicas analíticas para el diagnóstico de la
influenza aviar y enfermedad de Newcastle, las cuales se encuentran contenidas en los procedimientos (según normas de calidad vigentes) de la Dirección General de Laboratorios y Control Técnico (DGLYCT). Estos últimos
siguen los lineamentos de los laboratorios de referencia internacional para
el diagnóstico de IA e ENC
La totalidad de las muestras son analizadas por el Senasa en su Laboratorio
Central en Martínez o en su laboratorio regional de la provincia de Santa Fe.
En el cuadro siguiente, se detallan los ensayos que se deben seleccionar
para cada detección, según categoría:
Resumen de tipo y cantidad de muestras
DIAGNÓSTICO
CATEGORÍAS
Influenza aviar
RT - PCR
Enfermedad de
Newcastle RT - PCR
Sí
NO (*)
Traspatio
Sí
Sí
Silvestres
Sí
Sí
Sí
Sí
Aves de corral
Aves de
no corral
Mamíferos marinos
(*) Excepto signos compatibles o animales no vacunados.
28
�Contacto
Coordinación General de Epidemiología
Correo electrónico: notificaciones@senasa.gob.ar/ amarcos@senasa.gob.ar
Teléfono: (11) 4121 - 5349
Corporativos: #1590 o #336
Segato Lucila: (11) 3698 - 8143
Zumpano Romina: (11) 3685 - 2674
Programa Nacional de Sanidad Aviar
Correo electrónico: avesygranja@senasa.gob.ar
Teléfono: (11) 4121 - 5409
Corporativo: #1438 o #772
Anexo
Para descargar la Solicitud de retiro de encomiendas para traslados al Dilab,
acceder a la carpeta 36 de Enfermedades de notificación obligatoria.
29
��
Dublin Core
The Dublin Core metadata element set is common to all Omeka records, including items, files, and collections. For more information see, http://dublincore.org/documents/dces/.
Title
A name given to the resource
Publicaciones SENASA
Dublin Core
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Title
A name given to the resource
Guía operativa. Notificación y atención de sospechas de influenza aviar y enfermedad de Newcastle. En aves (de corral y de no corral) y mamíferos marinos
Publisher
An entity responsible for making the resource available
Servicio Nacional de Sanidad y Calidad Agroalimentaria
Date
A point or period of time associated with an event in the lifecycle of the resource
2025
Contributor
An entity responsible for making contributions to the resource
Dirección Nacional de Sanidad Animal
Dirección General de Laboratorios y Control Técnico
Coordinación General de Comunicación Institucional
Language
A language of the resource
Es
Type
The nature or genre of the resource
Manual
Identifier
An unambiguous reference to the resource within a given context
B.S.0197
Abstract
A summary of the resource.
La presente guía tiene como objetivo proporcionar información técnica a los
profesionales y técnicos del Senasa sobre las acciones que deben seguir en
caso de recibir una notificación de sospecha por Influenza Aviar (IA) o enfermedad de Newcastle (ENC) –ambas de declaración obligatoria– en aves de corral, aves no de corral y mamíferos marinos.
Table Of Contents
A list of subunits of the resource.
Introducción
Definiciones
Obligatoriedad de notificar
Vías de notificación
Sospecha de influenza aviar/enfermedad de Newcastle
Procedimientos
Extracción de muestras
Protocolo en SIGATM
Tránsito
Carga en el SUR
Diagnóstico
Contacto
Anexo
Enfermedad de Newcastle
Enfermedades de las Aves
Influenza Aviar
-
https://biblioteca.senasa.gob.ar/files/original/f5869bc5a2d94d7ab8287e499e7ec6cb.pdf
c0345eb7774d04118c9a801958bc9bff
PDF Text
Text
GUÍA OPERATIVA
Centinelización o muestreo
ambiental en aves de corral
�El Servicio Nacional de Sanidad y Calidad Agroalimentaria (Senasa) es un organismo descentralizado
encargado de ejecutar las políticas nacionales en materia de sanidad y calidad animal y vegetal e inocuidad de los alimentos de su competencia, así como de verificar el cumplimiento de la normativa vigente
en la materia.
Equipos de trabajo
Dirección Nacional de Sanidad Animal
Programa Nacional de Sanidad Aviar
Coordinación General de Comunicación Institucional
Edición 2026
�Contenido
Introducción
4
Marco normativo
4
Glosario conceptual
5
Requerimientos previos a la repoblación del predio afectado
5
Criterios de selección de un predio proveedor de aves centinelas
6
Procedimiento de centinelización
6
Acta de toma de muestras
7
Criterios a tener en cuenta para la confección en el SIGATM
7
Procedimiento de recolección de muestras en aves
9
Protocolo de recolección de muestras
10
Insumos necesarios
10
Procedimiento de toma de muestra según tipo de hisopado
10
Conservación
10
Acondicionamiento
11
Muestreo ambiental
11
Insumos necesarios
12
Consideraciones
12
Acondicionamiento
13
Resultados
13
Acta de toma de muestras
14
Carga del antecedente sanitario
14
Contactos
15
Programa de Sanidad Aviar
15
Mesa de ayuda del SIGATM
15
GUÍA OPERATIVA. CENTINELIZACIÓN O MUESTREO AMBIENTAL EN AVES DE CORRAL
3
�Introducción
La centinelización o el muestreo ambiental constituyen procedimientos oficiales ejecutados por el Servicio Nacional de Sanidad y Calidad Agroalimentaria
(Senasa), cuyo objetivo es verificar la ausencia del agente viral de influenza
aviar (IA) en las unidades productivas que fueron afectadas por este virus. Esta
determinación es un requisito indispensable para autorizar el levantamiento
de la interdicción sanitaria y el repoblamiento del establecimiento.
Dichos procedimientos se implementan únicamente tras el cumplimiento de
un período de vacío sanitario no menor a 28 días posteriores al cierre del brote
y con previa constatación oficial del acatamiento de las medidas de manejo,
higiene y bioseguridad, conforme a la normativa vigente y con respaldo de resultados diagnósticos moleculares negativos.
La metodología de centinelización contempla, entre otras alternativas técnicas, la introducción de aves centinelas susceptibles, las cuales son objeto
de un seguimiento clínico sistemático y estudios diagnósticos mediante técnicas de biología molecular, necesarias para confirmar la erradicación viral.
Por su parte, el muestreo ambiental contempla la recolección de muestras
de superficies, polvo y equipos en áreas críticas del establecimiento, con el
fin de detectar la posible persistencia del agente viral en el ambiente productivo, evaluar la eficacia de los procedimientos de limpieza y desinfección implementados y reducir el riesgo de reintroducción o diseminación del agente
etiológico.
Marco normativo
El marco legal que sustenta las acciones vinculadas a la sanidad aviar y la respuesta ante enfermedades está compuesto por un conjunto de leyes, decretos
y resoluciones vigentes en la República Argentina, así como también por recomendaciones internacionales. Entre ellas, se reconocen:
• Ley N.° 27.233. Declara de interés nacional la sanidad animal y vegetal, así como la prevención, control y erradicación de enfermedades y plagas que afecten la producción agropecuaria, la flora y la fauna. Designa al
Senasa como autoridad de aplicación, responsable de planificar, ejecutar
y controlar las acciones sanitarias en todas las etapas de la producción,
transformación, transporte, comercialización y consumo de agroalimentos, incluyendo producciones familiares y artesanales.
• Ley de Policía Sanitaria Animal N.° 3.959. Establece la defensa de los
ganados en la República Argentina frente a la introducción de enfermedades contagiosas exóticas.
• Resolución Senasa N.° 466/2025 establece el Plan de Contingencia ante
la presencia de uno o más casos de IA H5/H7 en la República Argentina.
GUÍA OPERATIVA. CENTINELIZACIÓN O MUESTREO AMBIENTAL EN AVES DE CORRAL
4
�Glosario conceptual
- Aves Centinelas: son ejemplares de aves de corral susceptibles a la infección
viral por influenza aviar, las cuales son introducidas de manera controlada y
estratégica en un predio que previamente fue afectado por IA H5/H7.
- Unidad epidemiológica: designa a un grupo de aves con la misma probabilidad de exposición a un agente patógeno.
- Vacío sanitario: constituye la fase temporal durante la cual se mantiene la
interdicción sanitaria oficial del predio, iniciándose formalmente tras la certificación del cierre del brote. Este período se caracteriza por un aislamiento biológico estricto, quedando terminantemente prohibida la movilización de
cualquier material inanimado (equipos, elementos, utensilios) dentro o fuera
del predio. Asimismo, se impone una restricción rigurosa al movimiento de
personas y vehículos. Cualquier movilización esencial de personal, vehículos
o activos dentro de los flujos operacionales deberá contar con la autorización
expresa y formal del Senasa, garantizando la bioseguridad del proceso.
Requerimientos previos a la repoblación del predio afectado
Antes de volver a repoblar el predio afectado, el productor/ titular de la habilitación sanitaria debe:
a. Haber cumplimentado un vacío sanitario de al menos VEINTIOCHO (28)
días desde el cierre del brote. Considerando el cierre del brote a la culminación de las tareas de sacrificio, enterramiento, limpieza y desinfección de
las instalaciones.
Adicionalmente en este tiempo el predio avícola podrá continuar con limpieza y desinfección y no deberá haber ninguna especie animal en las áreas
de producción situadas dentro del cerco perimetral.
b. Haber constatado las medidas de manejo, de higiene y de bioseguridad
del predio, según Resolución Senasa N.° 1699/2019 (acción constatada mediante SIGACTAS y carga de antecedente sanitario correspondiente).
c. De introducir aves centinelas, se podrá seleccionar en conjunto con el
productor/titular de la habilitación un predio proveedor de las mismas,
el cual deberá ser muestreado por el servicio oficial para el diagnóstico
molecular de IA, en el Laboratorio Nacional del Senasa en la localidad de
Martínez, Buenos Aires.
GUÍA OPERATIVA. CENTINELIZACIÓN O MUESTREO AMBIENTAL EN AVES DE CORRAL
5
�Criterios de selección de un predio proveedor de aves centinelas
• Las aves centinelas deben tener como mínimo 3 semanas de edad y
ser, preferentemente, libres de patógenos específicos (Specific Patogen Free –SPF).
• Las aves deben provenir de un predio con un resultado molecular negativo a IA, dentro de los 14 días anteriores a su introducción.
Procedimiento de centinelización
La cantidad de aves a ingresar se establecerá en función de la superficie de
la unidad epidemiológica, considerando un rango comprendido entre el 1 y el
5% y de la capacidad calculada por metro cuadrado. En todos los casos, deberá asegurarse un mínimo de 20 aves centinelas por cada galpón del predio.
Las aves deberán tener acceso y contacto con toda la superficie del galpón,
para lo cual se forzará a su contacto mediante el uso de corrales o desplazamiento por paredes ajustables.
En el caso de galpones con jaulas, el proceso de centinelización debe asegurar que las aves tomen contacto con la mayor superficie posible, pudiendo
aumentar el número de aves, de acuerdo al criterio establecido por el Senasa.
Una vez transcurridos los 14 días dentro del galpón (correspondiente a un
periodo de incubación), se tomarán muestras oficiales de al menos 20 aves a
través de hisopados traqueales/orofaríngeos, en pooles de 5 hisopos, considerando una prevalencia esperada del 15% y una confianza del 95%, para su
posterior diagnóstico molecular de RT-PCR a IA en el Laboratorio Nacional
del organismo sanitario. Si todas las muestras resultan negativas, se considera al galpón como negativo y el proceso de centinelización estará cumplido
para ese espacio.
El predio será declarado negativo cuando todos sus galpones cumplan el
procedimiento. Solo así se levantará la interdicción del establecimiento, pudiendo realizar el repoblamiento una vez cumplidos todos los requisitos previamente mencionados.
Respecto a las aves centinelas, una vez que han cumplido su función de vigilancia y han confirmado la negatividad del predio, podrán permanecer en el
establecimiento o bien se podrá realizar su eliminación sanitaria controlada
(sacrificio).
Tanto los muestreos, como el procesamiento de las muestras y emisión
de resultados solo serán válidos si son ejecutados por el Senasa.
GUÍA OPERATIVA. CENTINELIZACIÓN O MUESTREO AMBIENTAL EN AVES DE CORRAL
6
�Durante el periodo de permanencia de las aves centinelas en el predio, el
veterinario acreditado en Sanidad Aviar será el responsable de informar al
Senasa la presencia de mortandad o signos clínicos compatibles con IA. Si
hubiese alguna mortandad de aves centinelas, se procederá a la actuación
de sospecha de IA, siguiendo los lineamientos del protocolo de notificación y
atención de enfermedad denunciable.
En caso de registrarse un resultado positivo a IA H5/H7, se suspenderá el
proceso de centinelización y se reiniciarán las actividades de sacrificio controlado de las aves centinelas, disposición de mortalidad, sanitización de la
cama, limpieza, desinfección, vacío sanitario y nueva centinelización.
Acta de toma de muestras
Las actas de toma de muestras deberán ser confeccionadas por el veterinario
oficial del Senasa a través del sistema SIGATM, tanto para las aves muestreadas previo a su egreso del predio proveedor como para aquellas evaluadas
para finalizar el período de centinelización.
Una vez generadas, las actas deberán ser vinculadas al remito digital correspondiente mediante el mismo sistema y remitidas al Laboratorio del
Central del Senasa.
Criterios a tener en cuenta para la confección en el SIGATM
Área: Programa de Sanidad Avícola.
Motivo: Muestreo Aves.
El submotivo se debe seleccionar según a la instancia de toma de
muestra:
• Proveedores aves centinela para el muestreo previo de las aves
a centinelizar.
• Muestreo aves centinela para el muestreo el día 14 de las aves
centinela que se encuentran en el galpón.
GUÍA OPERATIVA. CENTINELIZACIÓN O MUESTREO AMBIENTAL EN AVES DE CORRAL
7
�Para el campo correspondiente a la “Matriz”, el veterinario oficial deberá
seleccionar la opción “Hisopados”.
En los Ítems muestras, es necesario indicar el origen del hisopado (traqueal/
orofaríngeo/cloacal) y la cantidad de hisopos que contiene cada pool.
GUÍA OPERATIVA. CENTINELIZACIÓN O MUESTREO AMBIENTAL EN AVES DE CORRAL
8
�En el apartado “Ensayos”, se deberá completar el grupo de análisis correspondiente e indicar la opción “Diagnóstico molecular de influenza aviar”.
Luego, se deberá tildar el análisis “RT-PCR EN TIEMPO REAL GEN M” y hacer
clic en el botón “Asignar”.
Por último, se deberá seleccionar el laboratorio de destino al que se enviará
la muestra, que será en este caso la Dirección General de Laboratorios y
Control Técnico del Senasa.
Procedimiento de recolección de muestras en aves
Se deben respetar las prácticas de bioseguridad, incluido el uso de equipo
de protección personal, para la recolección de muestras. Se recuerda que
la toma, acondicionamiento, remisión y análisis es competencia del Senasa.
GUÍA OPERATIVA. CENTINELIZACIÓN O MUESTREO AMBIENTAL EN AVES DE CORRAL
9
�Protocolo de recolección de muestras
Insumos necesarios
• Elementos de protección personal (guantes, mameluco, gafas, barbijo,
botas y cubrebotas).
• Hisopos de material sintético (rayón o dacrón, no algodón y no deben ser
con mango de madera ya que inhibe la técnica de PCR).
• Tijeras.
• Desinfectantes.
• Tubos.
• Medio de transporte viral o en su defecto PBS/ solución fisiológica (líquido de conservación).
• Marcador indeleble para rotular.
• Etiquetas.
• Conservadoras y refrigerantes.
Procedimiento de toma de muestra según tipo de hisopado
- Traqueal: Uno por ave. Levantar la cabeza del ave, abrir el pico, extraer suavemente la lengua e introducir el hisopo en la tráquea girando 2 o 3 veces
de manera enérgica, para extraer algunas células (al extraer la lengua, se
hace más visible el orificio traqueal).
- Orofaríngeo: Uno por ave. Levantar la cabeza del ave, abrir el pico, movilizar
el hisopo 3 a 4 veces raspando de manera enérgica las paredes de la cavidad orofaríngea, para retirar algunas células.
Luego de tomar la muestra, cortar de inmediato la extremidad del hisopo y
sumergirlo en el tubo previamente identificado.
Los hisopos deben estar sumergidos en el medio de transporte viral (BHI):
caldo cerebro corazón, caldo triptosa fosfato tamponado, caldo nutritivo, caldo
peptona o medio comercial de transporte para virus) o en su defecto solución
fisiológica de cloruro de sodio al 0,9%, estéril o PBS, hasta cubrir la cabeza
del hisopo (de 3 a 5 ml por pool).
Se deben remitir hasta 5 hisopos por tubo y no se deben mezclar hisopados
traqueales/orofaríngeos con cloacales, es decir que no pueden ir en un mismo
pool.
Conservación
Las muestras deberán ser conservadas y transportadas, desde su obtención
hasta su envío al laboratorio a (+2ºC a +8ºC), en un período que no supere las
72 horas. Plazo ideal: inferior a las 24 horas.
GUÍA OPERATIVA. CENTINELIZACIÓN O MUESTREO AMBIENTAL EN AVES DE CORRAL
10
�Acondicionamiento
Embalaje primario
• El recipiente primario debe ser hermético. En el caso de que se vayan a
enviar varios recipientes primarios, cada uno deberá estar envuelto individualmente para evitar posibles daños.
• Cuando se calcule el volumen de las muestras que se van a enviar, se deberá tener en cuenta el volumen del medio de transporte.
• Colocar las muestras de tal forma que no se produzcan derrames.
• Colocar las muestras identificadas individualmente (de un mismo predio)
en una bolsa de nylon o bolsa conservadora, identificando a esta última con el
número de Renspa o nombre del titular del predio.
• Colocar refrigerantes en cantidad suficiente, considerando el tiempo de duración del transporte. Cerrar y sellar la tapa.
Embalaje secundario
El contenedor secundario debe ser hermético y contener material absorbente, suficiente para absorber todo el contenido de los embalajes primarios
en caso de rotura o filtraciones.
Embalaje terciario
Se deberá poner —cuando sea necesario— hielo seco o húmedo alrededor
del embalaje secundario. En caso de emplear hielo seco, el envoltorio debe
permitir la salida del dióxido de carbono para evitar incrementos de presiones que lleven a la ruptura del paquete.
Si se utiliza hielo húmedo, el embalaje deberá ser a prueba de goteo.
El embalaje debe introducirse en una bolsa sellada de plástico para protegerlo de la humedad. Colocar en su exterior el remito generado en el Sistema
Integral de Gestión de Acta de Toma de Muestra (SIGATM).
Muestreo ambiental
Esta metodología comprende la recolección de muestras de ambientales —
tales como superficies, polvo y equipos— en áreas críticas del establecimiento, con el propósito de detectar la posible persistencia del agente viral en el
ambiente productivo, verificar la eficacia de los procedimientos de limpieza
y desinfección aplicados y minimizar el riesgo de reintroducción o diseminación del agente etiológico.
Durante la actividad de muestreo ambiental deberán respetarse las medidas
de bioseguridad vigentes, incluyendo el uso obligatorio de equipo de protección personal (EPP).
GUÍA OPERATIVA. CENTINELIZACIÓN O MUESTREO AMBIENTAL EN AVES DE CORRAL
11
�La toma de muestras, su acondicionamiento, remisión y análisis
son competencia exclusiva del personal de Senasa.
El muestreo podrá realizarse mediante el uso de hisopos o gasas, debiendo
definirse previamente el insumo a emplear en consulta con la Dirección Nacional de Sanidad Animal y conforme a los criterios técnicos establecidos.
Insumos necesarios
• Elementos de protección personal (guantes, mameluco, gafas, barbijo, botas y cubrebotas).
• Hisopos de material sintético (rayón o dacrón, no algodón y no deben ser
con mango de madera ya que inhibe la técnica de PCR) o gasas 4x4.
• Tijeras.
• Desinfectantes.
• Tubos.
• Bolsa hermética.
• Medio de transporte viral o en su defecto PBS/ solución fisiológica (líquido
de conservación).
• Marcador indeleble para rotular y etiquetas.
• Conservadoras y refrigerantes.
Consideraciones
a. Entre las zonas adecuadas para la toma de muestras, se incluyen las superficies dentro del galpón que estuvieron en contacto con las aves enfermas
(bebederos, suelo, paredes, jaula, manijas, puertas, áreas de nidificación (de
corresponder), los comederos, ventiladores de circulación y de extracción (si
hubiese).
b. Para la recolección de muestras, el/los hisopos o la/las gasas a utilizar se
deben humedecer previamente con solución fisiológica.
c. Recolectar muestras de al menos 10 lugares seleccionados en el galpón.
d. Si se utiliza gasa, se deberá introducir en una bolsa y verter el líquido de
conservación adentro de la misma. Luego, sellarla sacando el aire presionando levemente. Hacer presión con las manos suavemente por 15 segundos, para liberar la muestra en el líquido.
Por último, verter el contenido del líquido de la mezcla en un tubo rotulado.
Identificar el tubo correctamente, con fecha, número de muestra, origen.
GUÍA OPERATIVA. CENTINELIZACIÓN O MUESTREO AMBIENTAL EN AVES DE CORRAL
12
�e. Si la muestra fuese tomada con un hisopo, luego de la recolección se deberá introducir el mismo en un tubo y agitarlo vigorosamente. Identificar el
tubo correctamente, con fecha, número de muestra, origen.
f. Cada hisopo o gasa podrá utilizarse para el muestreo de múltiples superficies correspondientes a una misma zona específica de la instalación (por
ejemplo, diferentes sectores de una pared). A su vez, se pueden utilizar varios hisopos para obtener muestras de un mismo lugar o zona, y agruparlas
en un único tubo.
En ningún caso deberán mezclarse hisopos provenientes de distintos lugares o zonas. Cada tubo deberá estar rotulado de manera clara y precisa,
consignando el origen de la muestra.
g. Evitar que se cree una muestra demasiado oscura, densa o viscosa.
h. Eliminar los materiales descartables de manera correcta, siguiendo las
medidas de bioseguridad.
i. Desde la toma de muestra hasta el arribo al Laboratorio Central del Senasa, la muestra debe estar refrigerada, siendo 72 horas el plazo máximo de
recepción.
j. No congelar ni freezar la muestra. Para períodos de tiempo más prologados se puede colocar en ultrafreezer (-80°C).
Acondicionamiento
Para el acondicionamiento de la muestras, seguir el mismo procedimiento
que para la centinelización (ver página 11).
Resultados
El predio será declarado negativo cuando la totalidad de las muestras obtenidas arrojen resultados negativos. En dicho momento, el Senasa procederá a levantar la interdicción sanitaria y el predio quedará habilitado para
el repoblamiento de aves, siempre y cuando se hayan cumplido todos los
requisitos previamente establecidos.
GUÍA OPERATIVA. CENTINELIZACIÓN O MUESTREO AMBIENTAL EN AVES DE CORRAL
13
�En caso de que los diagnósticos resulten positivos, se deberá proceder a
la reiteración de los procedimientos de limpieza y desinfección, los cuales
serán ejecutados y verificados conforme a los protocolos vigentes, hasta que
se obtengan resultados negativos que permitan la repoblación del predio.
Acta de toma de muestras
Para la confección de las actas de toma de muestras en el SIGATM, se debe
tener en cuenta los siguientes criterios:
Área: Programa de Sanidad Avícola
Motivo: Muestreo Aves
Submotivo: Muestreo ambiental
Posteriormente, para la confección del acta en SIGATM, se deberá proceder
de igual manera que en el proceso de centinelización, asegurando el registro
completo de la toma de muestra.
Carga del antecedente sanitario
Luego de realizar el muestreo de las aves centinelas en el proveedor de origen y en el predio afectado, y una vez obtenidos los resultados negativos, se
deberá cargar en el Sistema Único de Registro (SUR) el antecedente “Autorización de Ingresos y Egresos de Aves Centinela”, adjuntando el resultado de
laboratorio y la documentación correspondiente a la actuación.
GUÍA OPERATIVA. CENTINELIZACIÓN O MUESTREO AMBIENTAL EN AVES DE CORRAL
14
�Contactos
Programa de Sanidad Aviar
• Correo electrónico: avesygranja@senasa.gob.ar
• Teléfono de contacto: (011) 4121-5409.
Mesa de ayuda del SIGATM
• Correo electrónico: sigatmayuda@senasa.gob.ar
GUÍA OPERATIVA. CENTINELIZACIÓN O MUESTREO AMBIENTAL EN AVES DE CORRAL
15
��
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Dirección Nacional de Sanidad Animal
Programa Nacional de Sanidad Aviar
Coordinación General de Comunicación Institucional
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Es
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Manual
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An unambiguous reference to the resource within a given context
B.S.0196
Abstract
A summary of the resource.
La centinelización o el muestreo ambiental constituyen procedimientos oficiales ejecutados por el Servicio Nacional de Sanidad y Calidad Agroalimentaria (Senasa), cuyo objetivo es verificar la ausencia del agente viral de influenza aviar (IA) en las unidades productivas que fueron afectadas por este virus. Esta determinación es un requisito indispensable para autorizar el levantamiento de la interdicción sanitaria y el repoblamiento del establecimiento.
Table Of Contents
A list of subunits of the resource.
Introducción
Marco normativo
Glosario conceptual
Requerimientos previos a la repoblación del predio afectado
Criterios de selección de un predio proveedor de aves centinelas
Procedimiento de centinelización
Acta de toma de muestras
Criterios a tener en cuenta para la confección en el SIGATM
Procedimiento de recolección de muestras en aves
Protocolo de recolección de muestras
Insumos necesarios
Procedimiento de toma de muestra según tipo de hisopado
Conservación
Acondicionamiento
Muestreo ambiental
Insumos necesarios
Consideraciones
Acondicionamiento
Resultados
Acta de toma de muestras
Carga del antecedente sanitario
Contactos
Programa de Sanidad Aviar
Mesa de ayuda del SIGATM
Enfermedades de las Aves
Influenza Aviar
Toma de muestras
-
https://biblioteca.senasa.gob.ar/files/original/8896d6630f56235382f1a091488b59cd.pdf
29d6712c5fe332076b8472b911bf29e1
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DIRECCIÓN NACIONAL DE SANIDAD ANIMAL
DIRECCIÓN DE PLANIFICACIÓN Y ESTRATEGIA DE SANIDAD ANIMAL
PROGRAMA DE SANIDAD AVIAR
PROGRAMA
VIGILANCIA EPIDEMIOLÓGICA
PARA LA INFLUENZA AVIAR Y LA ENFERMEDAD
DE NEWCASTLE EN AVES
Año 2020
1
�DIRECCIÓN NACIONAL DE SANIDAD ANIMAL
DIRECCIÓN DE PLANIFICACIÓN Y ESTRATEGIA DE SANIDAD ANIMAL
PROGRAMA DE SANIDAD AVIAR
CONTENIDO
1. INTRODUCCIÓN .................................................................................................................................... 3
2. OBJETIVOS ............................................................................................................................................ 3
3. ESTRATEGIAS DE VIGILANCIA EPIDEMIOLÓGICA ACTIVA ..................................................................... 4
3.1. EN PREDIOS DE AVES DE TRASPATIO ................................................................................................ 4
3.2. EN EXPOSICIONES DE AVES DE RAZA Y ORNAMENTALES ................................................................. 6
3.3. EN NÚCLEOS DE REPRODUCCIÓN ..................................................................................................... 7
3.4 EN GRANJAS DE GALLINA DE POSTURA.............................................................................................. 7
3.5 MUESTREO COMPLEMENTARIO ......................................................................................................... 9
4. DIAGNÓSTICO DE IA Y NC A PARTIR DE LAS MUESTRAS OBTENIDAS EN LA VIGILANCIA
EPIDEMILÓGICA ACTIVA ......................................................................................................................... 10
DIAGRAMA DE FLUJO PARA EL DIAGNÓSTICO SEROLÓGICO Y VIROLÓGICO DE LA INFLUENZA
AVIAR ...................................................................................................................................................... 12
DIAGRAMA DE FLUJO PARA EL DIAGNÓSTICO SEROLÓGICO Y VIROLÓGICO DE LA ENFERMEDAD
DE NEWCASTLE....................................................................................................................................... 13
2
�DIRECCIÓN NACIONAL DE SANIDAD ANIMAL
DIRECCIÓN DE PLANIFICACIÓN Y ESTRATEGIA DE SANIDAD ANIMAL
PROGRAMA DE SANIDAD AVIAR
1. INTRODUCCIÓN
El presente documento fue elaborado en forma conjunta entre la Coordinación
General de Epidemiología y el Programa de Sanidad Aviar de la Dirección de
Planificación y Estrategia de Sanidad Animal dependiente de la Dirección Nacional
de Sanidad Animal y tiene como objetivo establecer los criterios y metodologías
generales empleadas durante el año 2020 en el programa de vigilancia activa para
la influenza aviar de notificación obligatoria (IA) y la enfermedad de Newcastle
(NC) dirigido a las subpoblaciones de aves de corral y la vigilancia epidemiológica
pasiva en las poblaciones de aves de corral y silvestres.
2. OBJETIVOS
OBJETIVO GENERAL
Demostrar la ausencia de infección y circulación del virus de influenza aviar de
notificación obligatoria (VIA) y de las cepas virulentas o patógenas del Virus de la
enfermedad de Newcastle (VEN) en las aves domésticas de todo el territorio
nacional.
OBJETIVOS ESPECÍFICOS
Demostrar la ausencia de infección por VIA y VEN en aves domésticas
consideradas de mayor riesgo por su sistema de cría (aves de traspatio o de
crianza familiar).
Detectar infecciones subclínicas con cepas de IA de los subtipos H5 y H7 de baja
patogenicidad en aves domésticas.
Detectar precozmente la circulación de los VIA y VEN en casos de observación de
signos clínicos compatibles o aumentos de mortalidad en aves domésticas y
silvestres.
3
�DIRECCIÓN NACIONAL DE SANIDAD ANIMAL
DIRECCIÓN DE PLANIFICACIÓN Y ESTRATEGIA DE SANIDAD ANIMAL
PROGRAMA DE SANIDAD AVIAR
3. ESTRATEGIAS DE VIGILANCIA EPIDEMIOLÓGICA ACTIVA
3.1. EN PREDIOS DE AVES DE TRASPATIO
El modelo de riesgo de la Influenza aviar y enfermedad de Newcastle, se realizó
en base al sistema AVE de información Geográfica para Asistencia en la Vigilancia
Epidemiológica.
Los factores de riesgo que se consideran asociados a la aparición de estas
enfermedades son:
Frontera con Chile
Frontera Norte
Frontera Marítima
Frontera Este
Aeropuertos
Principales Rutas
Zona de migración de aves: contempla humedales, ríos y cuerpos de
agua, más sitios RAMSAR* y lugares identificados como de asiento de
aves migratorias.
Aves de Traspatio: información proporcionada por el Sistema Integrado
de Gestión y Sanidad Animal (SIGSA) y análisis de densidad
poblacional.
Distribución de aves comerciales: datos obtenidos del SIGSA.
Se utilizó el método de comparación de a pares, donde la importancia relativa de
cada factor de riesgo fue ponderada comparando con el resto de los factores de
riesgo.
Habiendo analizado las muestras de los últimos seis años, se propuso
seleccionar las oficinas que realizarán vigilancia de traspatio en base a la
actualización del modelo mencionado.
* Argentina tiene actualmente 23 sitios designados como Humedales de Importancia
Internacional (sitios RASMAR).
4
�DIRECCIÓN NACIONAL DE SANIDAD ANIMAL
DIRECCIÓN DE PLANIFICACIÓN Y ESTRATEGIA DE SANIDAD ANIMAL
PROGRAMA DE SANIDAD AVIAR
A continuación se presenta el mapa de riesgo (Mapa 1) y las oficinas que poseen
una zona significativa de su territorio con un riesgo superior a mediano (Mapa 2).
Supuestos: partiendo de una población desconocida (o tendiente a
infinito) se presentan los siguientes supuestos:
Nivel de confianza: 95%
Mínima prevalencia esperada de predios positivos: 1%
Mínima prevalencia esperada de aves positivas
intrapredio: 20%
De
Cantidad promedio de aves por predio: 20
Número de aves a muestrear por establecimiento: 10
acuerdo
a
estos
supuestos
se
deberán
muestrear
306
establecimientos. El diseño asegurará una confianza del 95% de
5
�DIRECCIÓN NACIONAL DE SANIDAD ANIMAL
DIRECCIÓN DE PLANIFICACIÓN Y ESTRATEGIA DE SANIDAD ANIMAL
PROGRAMA DE SANIDAD AVIAR
detectar uno o más predios de traspatio infectados en las zonas
seleccionadas como de mayor riesgo, si la prevalencia de la IA o NC en
la población de aves de traspatio de esas zonas, es de por lo menos el
1% y la prevalencia de las aves infectadas es por lo menos el 20%.
Se adicionó un 15% más de establecimientos, con el fin de que se
cumpla con el mínimo calculado, obteniendo un número de 351 predios
a muestrear.
Se tomará muestras de sueros de la totalidad de las aves, si el número
de aves es menor de 10 ó de 10 aves si el número de aves es mayor o
igual a 10.
3.2. EN EXPOSICIONES DE AVES DE RAZA Y ORNAMENTALES
En la Argentina la cría de aves de raza pura y ornamental está muy
extendida y por lo general se realiza en condiciones de libertad o en
semicautiverio en casas de familia en medio urbano, semiurbano o rural.
Muchos de estos productores forman parte de las asociaciones de criadores
de distintos puntos del país. Los ejemplares reproductores de diferentes
tipos (gallinas, patos, pavos, faisanes, etc.) pueden movilizarse de un
predio a otro (en número por lo general reducido) o bien pueden asistir a
ferias y exposiciones rurales que se hallan bajo control del Senasa (ej.
Exposición Rural de Palermo, Chivilcoy, Rauch, Ayacucho, Río Cuarto,
Concepción del Uruguay, etc.). Dependiendo de la importancia de la
exposición (nacional, provincial o local) asisten aves de algunos o muchos
productores y de algunas o varias localidades del país, y una vez culminada
la misma los ejemplares pueden volver a su lugar de origen o se trasladan a
otro destino.
Se deberá tomar muestras de sueros. El número de muestras a tomar será
de 10, si el expositor ingresara más de 10 aves, o de la totalidad de las
aves si el expositor ingresara menos de 10 aves.
6
�DIRECCIÓN NACIONAL DE SANIDAD ANIMAL
DIRECCIÓN DE PLANIFICACIÓN Y ESTRATEGIA DE SANIDAD ANIMAL
PROGRAMA DE SANIDAD AVIAR
3.3. EN NÚCLEOS DE REPRODUCCIÓN
Las aves reproductoras son monitoreadas en el marco del muestreo para el Plan
Nacional de Sanidad Avícola (PNSA), que contiene el “Programa de control de
las micoplasmosis y salmonelosis de las aves y prevención y vigilancia de
enfermedades exóticas y de alto riesgo en planteles de reproducción”, como
parte de la Resolución SENASA N°882 del 5 de diciembre de 2002. Los
laboratorios adheridos al PNSA, deben enviar al laboratorio del SENSA una vez
por año, 20 (VEINTE) muestras de suero, correspondientes a cada núcleo/lote
de aves reproductoras. Las granjas de aves reproductoras padres o abuelas, se
encuentran organizadas en “núcleos”, cada granja puede disponer de uno o
varios núcleos. Cada núcleo dispone en general de 2 a 5 galpones. Se considera
como unidad epidemiológica al núcleo, ya que las aves dentro del núcleo tienen
la misma edad, el mismo origen, reciben el mismo manejo y tratamiento
sanitario y están bajo el control de la misma persona (por lo general exclusiva
para cada núcleo).
3.4 EN GRANJAS DE GALLINA DE POSTURA
Para optimizar las visitas a estos establecimientos, esta tarea se programó para
trabajar de manera conjunta con la Coordinación General de Vigilancia y Alerta
de Residuos y Contaminantes (COVARC), dependiente de la DIRECCION
NACIONAL DE INOCUIDAD Y CALIDAD AGROALIMENTARIA.
Este estudio está dirigido a los establecimientos de explotación comercial, de
todo el territorio nacional. Dentro de las diferentes explotaciones comerciales,
se focaliza en la subpoblación de gallinas de postura, por ser consideradas la de
mayor riego debido a la presencia de aves de diferentes edades dentro de la
granja y a su largo ciclo productivo, lo que resulta en una mayor probabilidad
de que una cepa del virus de baja patogenicidad de la influenza aviar pueda
circular en una granja sin manifestación clínica de enfermedad.
7
�DIRECCIÓN NACIONAL DE SANIDAD ANIMAL
DIRECCIÓN DE PLANIFICACIÓN Y ESTRATEGIA DE SANIDAD ANIMAL
PROGRAMA DE SANIDAD AVIAR
Diseño: “aleatorio en dos etapas” para la detección del VIA.
Supuestos: partiendo de una población de 43,1 millones de gallinas de postura
en producción distribuidas en 973 establecimientos con un promedio de 30.000
aves por predio, se definió el tamaño de la muestra considerando los siguientes
parámetros y supuestos:
Nivel de confianza: 95%
Mínima prevalencia esperada de predios positivos: 1%
Mínima prevalencia esperada de aves positivas: 15%
Cantidad promedio de aves por predio: 30.000
N° de animales a muestrear por lote: 20
De acuerdo a estos parámetros y supuestos se deben muestrear 312
establecimientos.
Asignación de predios:
Para
aumentar
la
sensibilidad
del
muestreo
se
seleccionaron
los
establecimientos a muestrear en base a ciertos factores de riesgo asociados a la
epidemiología de la enfermedad, identificándose las siguientes características:
Proximidad a posibles asentamientos de aves silvestres y migratorias:
Establecimientos
que
se
encuentren
cercanos
a
humedales
de
importancia en la zona por la densidad de aves silvestres o por las
especies de aves existentes (patos, gansos y cisnes). Se tomó como
referencia un área de 10 km. Se incluyeron cuerpos de agua permanente
(lagos, lagunas embalse) e hidrografía permanente (ríos).
Categoría
de
bioseguridad:
Se
tuvieron
en
cuenta
aquellos
establecimientos que estuvieran registrados en el Sistema Integrado de
Sistema de Gestión de Sanidad Animal (SIGSA)
en una categoría de
bioseguridad baja.
Linderos a establecimientos avícolas de traspatio: Establecimientos
ubicados dentro de un radio de 5 km. de distancia a establecimientos de
traspatio registrados en el SIGSA.
8
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DIRECCIÓN DE PLANIFICACIÓN Y ESTRATEGIA DE SANIDAD ANIMAL
PROGRAMA DE SANIDAD AVIAR
Zona de fronteras: Establecimientos que se encuentren dentro de
aproximadamente 100 km de la frontera norte, en las cuales puede
existir grupos de aves más expuestos al riesgo por encontrarse en zonas
limítrofes con un importante tráfico vecinal fronterizo de aves vivas o
productos avícolas.
Establecimientos que se encuentren de aproximadamente 100 km de la
frontera
con
Chile,
focalizándolos
en
los
pasos
fronterizos
que
comuniquen con el país vecino.
A partir de estas, se realizó la caracterización de la totalidad de los
establecimientos productivos del país (registrados en el SIGSA) agrupados
por Centro Regional del Senasa.
Se realizó la identificación de las diferentes características para cada uno de
ellos, asignando un valor de 1 punto a cada factor. La sumatoria de los
puntajes otorgados por la presencia de alguno o varios factores en cada
establecimiento, permitió clasificarlos de acuerdo al nivel de riesgo,
obteniendo un rango de diferente amplitud en cada regional.
La selección de los predios se realizó sobre esta subpoblación caracterizada
como de mayor riesgo, de manera aleatoria proporcional al número de
establecimientos registrados por centro regional.
Se deberá tomar muestras de suero de 20 aves por predio.
3.5 MUESTREO COMPLEMENTARIO
Durante la Vigilancia Epidemiológica 2019 se encontraron en diferentes
explotaciones sueros positivos a Influenza Aviar diferente a H5 y H7. Por lo
cual, resulta necesario que los mismos continúen en vigilancia.
La cantidad de aves a muestrear dependerá del establecimiento. En esta
oportunidad se procederá a tomar sueros e hisopos cloacales u orofaríngeos
o traqueales.
9
�DIRECCIÓN NACIONAL DE SANIDAD ANIMAL
DIRECCIÓN DE PLANIFICACIÓN Y ESTRATEGIA DE SANIDAD ANIMAL
PROGRAMA DE SANIDAD AVIAR
Si el establecimiento corresponde a aves-traspatio se operará de según
punto 3.1 y se deberá incorporar
al muestreo la misma cantidad de
hisopos.
Si el establecimiento corresponde a gallinas de postura, se operará según
punto 3.4 y se deberá incorporar al muestreo la misma cantidad de hisopos.
4. DIAGNÓSTICO DE IA Y NC A PARTIR DE LAS MUESTRAS
OBTENIDAS EN LA VIGILANCIA EPIDEMILÓGICA ACTIVA
Las
muestras
de
sueros
deberán
ser
enviadas
desde
la
MEM
al
Departamento de Enfermedades Exóticas para la realización del diagnóstico
serológico para la IA por las técnicas de Elisa multiespecie y/o IDAG, y en
caso de serología positiva para influenza aviar tipo A, deberá realizarse Elisa
para H5 y H7. Los mismos se deben remitir al Departamento de Aves
informando que se debe realizar las pruebas serológicas de HI específico
para H5 y H7. En caso de resultados negativos a HI (5 ó 7), deberán
procesarse para el resto de los subtipos.
Los sueros provenientes de aves de traspatio serán procesados por
Departamento de Aves para el diagnóstico serológico por la técnica de Elisa
o HI para NC.
En caso que los resultados serológicos arrojen un título promedio superior a
5.000 GMT por la prueba de Elisa para NC, ó resulte positiva una serología
para IA, se deberá comunicar de manera inmediata a la Dirección de
Planificación y Estrategia de Sanidad Animal a: MARCELO.BALLERIO
(DPYESA#SENASA) con copia a MARIANO.BACCI (DPYESA#SENASA) y a
MARIA.FERRER
(DPYESA#SENASA),
adjuntando
el
protocolo
con
el
resultado.
10
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DIRECCIÓN DE PLANIFICACIÓN Y ESTRATEGIA DE SANIDAD ANIMAL
PROGRAMA DE SANIDAD AVIAR
Según el resultado, se procederá a re muestrear el establecimiento para
demostrar la ausencia y/o presencia de infección y circulación del virus de
influenza aviar de notificación obligatoria (VIA) y de las cepas virulentas o
patógenas del Virus de la enfermedad de Newcastle (VEN).
Para el muestreo complementario se procederá enviar los sueros según lo
anterior, y las muestras de hisopos deberán ser enviadas al Departamento
de Biología Molecular para el diagnóstico de IA por la técnica de rt-RT-PCR.
11
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DIRECCIÓN DE PLANIFICACIÓN Y ESTRATEGIA DE SANIDAD ANIMAL
PROGRAMA DE SANIDAD AVIAR
DIAGRAMA DE FLUJO PARA EL DIAGNÓSTICO SEROLÓGICO Y
VIROLÓGICO DE LA INFLUENZA AVIAR
Vigilancia Serológica
Vigilancia Virológica
Suero
Hisopados
Informar a la
DPYESA
Elisa multiespecie y/o
IDAG
NEGATIVO
Ausencia de
anticuerpos
NEGATIVO
HI para el resto de
los subtipos de IA
POSITIVO
NEGATIVO
POSITIVO
Elisa
H5 y H7
RT-PCR Real Time para
IA tipo A
HI
H5 y H7
POSITIVO
Investigación
virológica y
epidemiológica
Ausencia
de
antígeno
Inoculación de
huevos
embrionados
rt- PCR Real
Time
para H5-H7
NEGATIVO
HA y
mortandad
POSITIVO
NEGATIVO
Secuenciación
HA
POSITIVO
Referencias:
HI: inhibición de la hemoaglutinación
rt- PCR Real Time: Reacción en cadena de
polimerasa en tiempo real
IA: influenza Aviar
IPIV: Índice de patogenicidad intravenosa
HA: hemoaglutinación
IAAP: Influenza aviar de alta patogenicidad
IABP: Influenza Aviar de baja patogenicidad
IAAP
IABP
Caracterización
viral:
*Secuenciación
*IPIV en pollos
IAAP
IABP
12
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DIRECCIÓN DE PLANIFICACIÓN Y ESTRATEGIA DE SANIDAD ANIMAL
PROGRAMA DE SANIDAD AVIAR
DIAGRAMA DE FLUJO PARA EL DIAGNÓSTICO SEROLÓGICO Y
VIROLÓGICO DE LA ENFERMEDAD DE NEWCASTLE
Vigilancia Serológica
r
Vigilancia Virológica
Elisa o HI
Hisopados
Título mayor a 5000
GMT
Informar a la
DPYESA
rt- PCR Real Time
POSITIVO
Secuenciación
Identificación de cepa
de cepa
NEGATIVO
Inoculación
de huevos
embrionado
s
HA y mortandad
NEGATIVO
POSITIVOS
rt- PCR Real Time
POSITIVO
Referencias:
rt- PCR Real time: Reacción en
Cadena de Polimerasa en tiempo
real
HA: hemoaglutinación
HI: inhibición de la
hemoaglutinación
IPIC: índice de patogenicidad
Intracerebral
NEGATIVO
Caracterización
viral
*Secuenciación
*IPIC en pollos
Cepas
velogénicas
Cepas
lentogénicas
13
�
Dublin Core
The Dublin Core metadata element set is common to all Omeka records, including items, files, and collections. For more information see, http://dublincore.org/documents/dces/.
Title
A name given to the resource
Publicaciones SENASA
Dublin Core
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Title
A name given to the resource
Programa. Vigilancia epidemiológica para la influenza aviar y la enfermedad de newcastle en aves.
Publisher
An entity responsible for making the resource available
Servicio Nacional de Sanidad y Calidad Agroalimentaria
Date
A point or period of time associated with an event in the lifecycle of the resource
2020
Contributor
An entity responsible for making contributions to the resource
Dirección Nacional de Sanidad Animal
Dirección de Planificación y Estrategia de Sanidad Animal
Programa de Sanidad Aviar
Language
A language of the resource
Es
Type
The nature or genre of the resource
Monografía
Identifier
An unambiguous reference to the resource within a given context
B.S.0168
Abstract
A summary of the resource.
El presente documento tiene como objetivo stablecer los criterios y metodologías generales empleadas durante el año 2020 en el programa de vigilancia activa para la influenza aviar de notificación obligatoria (IA) y la enfermedad de Newcastle (NC) dirigido a las subpoblaciones de aves de corral y la vigilancia epidemiológica pasiva en las poblaciones de aves de corral y silvestres.
Table Of Contents
A list of subunits of the resource.
1. Introducción
2. Objetivos
3. Estrategias de vigilancia epidemiológica activa
3.1. En predios de aves de traspatio
3.2. En exposiciones de aves de raza y ornamentales
3.3. En núcleos de reproducción
3.4 En granjas de gallina de postura
3.5 Muestreo complementario
4. Diagnóstico de IA y NC a partir de las muestras obtenidas en la vigilancia epidemiológica activa
Diagrama de flujo para el diagnóstico serológico y virológico de la influenza aviar
Diagrama de flujo para el diagnóstico serológico y virológico de la enfermedad de newcastle
Enfermedad de Newcastle
Influenza Aviar
-
https://biblioteca.senasa.gob.ar/files/original/4b16cbac4e624f4d180963d0d66c4d18.pdf
3a089343cfa1b4639b94a0d6392601db
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Manual de
Procedimientos
Influenza Aviar
www.senasa.gov.ar
��Servicio Nacional de Sanidad
y Calidad Agroalimentaria
Manual de Procedimientos
Influenza Aviar
�4
�Manual de Procedimientos / Influenza Aviar
Indice
Introducción
7
Características de la enfermedad
8
Distribución geográfica
8
Etiología
9
Resistencia
9
Patogenicidad
10
Cuadro clínico
10
Reservorios
12
Transmisión
12
Potencialidad zoonótica
12
Población hospedadora
13
Diagnóstico
14
Diagnóstico diferencial
14
Prevención y profilaxis
14
Capítulo 1
Acciones y procedimientos ante la
sospecha o confirmación de enfermedad
16
Capítulo 2
Vigilancia epidemiológica
21
Capítulo 3
Investigación epidemiológica
23
Capítulo 4
Sacrificio sanitario y eliminación
26
Capítulo 5
Limpieza y desinfección
35
Capítulo 6
Medidas de protección para los trabajadores 37
5
�Capítulo 7
Procedimientos en plantas de faena
42
Capítulo 8
Repoblación y centinelización
44
Capítulo 9
Toma de muestras, conservación
y acondicionamiento
46
Capítulo 10
Diagnóstico de laboratorio
52
Capítulo 11
Investigación epizootiológica
Protocolos
6
54
�Manual de Procedimientos / Influenza Aviar
Introducción
Debido a su patogenicidad, virulencia y a su capacidad de mutar desde formas levemente patógenas a formas altamente patógenas, algunos virus de influenza aviar
(IA) son de declaración obligatoria y otros no.
De acuerdo a lo establecido por la Organización Mundial de la Sanidad Animal (OIE),
los virus de influenza aviar se dividen en los de declaración obligatoria altamente
patógena (IAAP) y los de declaración obligatoria levemente patógena (IALP).
La OIE define a la influenza aviar de declaración obligatoria como una infección de
las aves de corral, causada por cualquier virus de influenza tipo A pertenecientes a
los subtipos H5 o H7 o por cualquier virus de influenza aviar con un índice de patogenicidad intravenosa (IPIV) superior a 1,2 en pollos de 6 semanas de edad o que
cause una mortalidad del 75% por lo menos, en pollos de 4 a 8 semanas de edad
infectados por vía intravenosa.
Los virus de IALP son todos los de influenza tipo A, pertenecientes a los subtipos H5 y
H7, que no tienen un IPIV superior a 1,2 o que causan una mortalidad inferior al 75%
en la prueba de capacidad letal intravenosa o aquellos cuya secuenciación del sitio
de división de la molécula de hemoaglutinina no presentan múltiples aminoácidos
básicos.
Caso de IA o «ave infectada con IA». Toda ave doméstica o silvestre en la que se
haya comprobado oficialmente la presencia de signos clínicos o lesiones post mortem de IA y se haya confirmado su presencia como resultado de un examen de laboratorio realizado conforme al manual de diagnóstico; o en la que se haya comprobado oficialmente la presencia de la enfermedad como resultado de un examen
de laboratorio realizado conforme al manual de diagnóstico, aun sin presencia de
signos clínicos compatibles con IA.
Foco de influenza aviar. Se considera a la aparición de una o más aves con signos
clínicos de IA y corroborado el diagnóstico en el Laboratorio del Senasa.
Sospecha de influenza aviar. Se considera a la aparición de una o más aves con
algún signo clínico o con lesiones anatomopatológicas compatibles con IA o aves en
las que se hubiere detectado aumento repentino de la mortandad, sin la confirmación del diagnóstico realizado en el Laboratorio del Senasa.
Explotación infectada de influenza aviar. Se considera a una explotación de aves
comerciales, caseras o de otra índole con aves domésticas, ornamentales o silves-
7
�tres, en la que haya sido confirmada la presencia de la infección por el virus de IA,
por exámenes de laboratorio.
Características de la enfermedad
Existen infinidad de subtipos de virus de influenza. Las diferencias antigénicas entre
ellos se basan en el subtipo de la hemoaglutinina (H) y de la neuraminidasa (N) presentes. Los subtipos que afectan a las aves son específicos de estas y las infecciones
en las aves domésticas, incluidos pavos, pollos, gallinas, perdices, gallinas de guinea,
codornices, faisanes, gansos y patos varían desde infecciones respiratorias leves o
subclínicas, hasta la presentación aguda y generalizada con severa mortalidad.
Históricamente, los problemas más severos de influenza aviar han sido causados
por virus de los subtipos H5 y H7, los que inicialmente pueden presentarse como de
baja patogenicidad y después por mutación en su hemoaglutinina, se transforman
en virus de alta patogenicidad.
Durante el siglo XX los brotes más importantes de IA han sido producidos por virus de
los subtipos de H5N1, H5N2, H5N3, H5N8, H5N9, H7N1, H7N3, H7N4 y H7N7. Los
virus pertenecientes al subtipo H9, se han presentado en ocasiones con mediana
patogenicidad.
La IA es una enfermedad altamente contagiosa, que tiene como principales huéspedes a gallinas, pollos y pavos, aunque es probable que todas las especies aviares
sean susceptibles a la infección. En algunos casos la enfermedad se presenta con
pocos signos clínicos o bien en forma fulminante, matando a las aves, sin que se
observen signos previos. Las tasas de morbilidad y mortalidad son muy variables.
Lo que más frecuentemente se observa, es una alta morbilidad y baja mortalidad,
sin embargo, en el caso de virus altamente patógenos la morbilidad y la mortalidad
pueden alcanzar al 100 %.
Distribución geográfica
Los virus de influenza tipo A no patógenos o ligeramente patógenos están presentes
en todo el mundo y las aves silvestres acuáticas suelen ser sus reservorios naturales. Los virus de influenza tipo A altamente patógena se han aislado ocasionalmente
en aves en libertad en Europa y otras regiones. En los últimos 6 años la IAAP, se ha
presentado con mucho más frecuencia que en los años anteriores y se ha extendido
a más de 60 nuevos países. El virus H5N1 altamente patógeno (cepa asiática) ha estado afectando a explotaciones avícolas del Sudeste asiático en países como Corea,
Vietnam, Japón, Tailandia, Camboya, Laos, Indonesia, China y Malasia, para luego
8
�Manual de Procedimientos / Influenza Aviar
difundirse al Este de Europa, presentándose en aves silvestres y en algunas explotaciones de aves de corral de Rusia, Kazajtán, Turquía, Grecia, Macedonia, Rumania,
Hungría y Mongolia. El mismo virus, también se presentó posteriormente en Francia,
Alemania y en aves silvestres de España. Actualmente el virus ha sido detectado en
algunos países del Norte y centro del continente africano. Si bien esta situación ha
despertado la alarma de todos los organismos internacionales relacionados con la
salud humana y animal, algunas publicaciones realizadas en prestigiosos centros
de investigación han permitido llevar cierta tranquilidad a los demás países ya que
se han detectado algunos cambios en el virus, que permiten estimar que ha perdido
algunas características de su agresividad.
Los virus de IA de los subtipos H5 y H7 de baja patogenicidad, luego de establecerse
y circular por un período variable de tiempo en aves de corral, pueden mutar y convertirse en virus altamente patógenos.
En la Argentina la influenza aviar es una enfermedad exótica.
Etiología
1) El virus de la influenza pertenece a la familia Orthomyxoviridae, es un virus RNA
segmentado y envuelto. De acuerdo a sus nucleoproteínas y proteínas matrices
se clasifican en tres tipos: A, B y C. A su vez, atendiendo a sus dos antígenos de
superficie, hemoaglutinina (H) y neuraminidasa (N), se clasifican en subtipos.
2) Los virus de la influenza aislados de aves pertenecen sin excepción al tipo A y
contienen todos los subtipos hasta ahora conocidos (16 H y 9 N) en las más
variadas combinaciones. Entre los virus de la influenza de las aves y de los mamíferos existen relaciones de parentesco antigénico.
3) Estos virus exhiben una gran variabilidad antigénica y capacidad de mutación,
así como un amplio espectro de virulencia. No hay correlación entre la virulencia
y el subtipo antigénico, porque las formas virulentas y avirulentas pueden pertenecer a un mismo subtipo.
4) Las variaciones de los antígenos principales H y N son las causas de los cambios
en la epizootiología de la influenza tipo A.
Resistencia
La resistencia de los virus aviares de la influenza en el medio ambiente es escasa.
Los rayos ultravioletas los inactivan rápidamente. Son sensibles a pH ácidos, y relativamente estables sólo con valores de pH comprendidos entre 6 y 8. Las temperatu-
9
�ras de 60°C anulan con gran rapidez su contagiosidad; para su inactivación pueden
aplicarse 56°C/3 horas o 60°C/30 min. Los virus de la influenza son sensibles a
los desinfectantes viricidas tales como agentes oxidantes y disolventes de lipídicos,
también se inactivan por la acción de la formalina y compuestos de yodo.
La mayoría de los estudios sobre persistencia ambiental del virus de IA han sido
llevados a cabo en América del Norte bajo condiciones climáticas frías, con los siguientes hallazgos:
Los virus de IA pueden sobrevivir en las heces por al menos 35 días a 4 ºC. El
virus de IA puede sobrevivir en el medio ambiente del galpón por más de 5 semanas (Webster et al., 1978).
Los virus de IA pueden permanecer infectivos en el agua de los lagos por más de
4 días a 22 ºC y más de 30 días a 0 ºC (Webster et al., 1978).
El virus de patos salvajes naturalmente infectados se conserva infectante en las
heces a 4°C durante 30 días y a 20°C durante 7 días
Los virus de influenza aviar pueden ser aislados de aguas de lagos donde las
aves acuáticas están presentes (Hinshaw et al., 1979). La acidificación del agua
de bebida potencialmente contaminada hasta un pH de 2.5 o clorinación, puede
ayudar a minimizar la difusión de la enfermedad.
Patogenicidad
La patogenicidad de los virus de IA es extremadamente variable y se basa en las características del subtipo del virus. A menudo se ha observado que un virus patógeno
para una especie avícola no necesariamente lo es para otra. La característica de los
virus de IA es su capacidad de mutación, de manera que subtipos no patógenos pueden convertirse en patógenos, de aquí surge la recomendación de la Organización
Mundial para la Sanidad Animal de incluir en la influenza aviar de los subtipos H5 y
H7 en la lista de enfermedades de declaración obligatoria y no a todos los casos en
los que se detecte virus de otros subtipos.
Cuadro clínico
El período de incubación de la IAAP es en promedio de tres días (con un rango de 24
horas a siete días). Según el Código Sanitario para los Animales Terrestres de la OIE,
el período de incubación de la influenza aviar altamente patógena es de 21 días.
Los signos y síntomas son muy variables. Las aves enfermas pueden reflejar altera-
10
�Manual de Procedimientos / Influenza Aviar
ciones en los sistemas respiratorios, digestivo, reproductor y nervioso.
Los signos más frecuentes son: disminución de la actividad locomotriz, reducción
del consumo de alimentos, emaciación, problemas respiratorios incluyendo tos, estornudo, estertores, plumaje erizado, edema de la cabeza y cara, cresta y barbillas
cianóticas y en ocasiones necróticas, desórdenes nerviosos, diarrea y en gallinas
disminución de la postura.
Las lesiones pueden ser muy variadas, desde la enfermedad hiperaguda con ausencia casi total de signos o lesiones, pero altamente mortal, hasta las epizootias
caracterizadas por una enfermedad leve con baja mortalidad.
En gallinas
Congestión grave de la musculatura
Deshidratación
Edema subcutáneo de la cabeza y del cuello
Secreciones nasal y oral
Congestión grave de la conjuntiva, a veces con petequias
Exudación mucosa excesiva en el lumen de la tráquea o traqueitis hemorrágica
grave.
Petequias en el interior del esternón, en la grasa serosa y abdominal, en las superficies serosas y en la cavidad corporal.
Congestión renal severa, a veces con depósitos de urato en los túbulos.
Hemorragias y degeneración de los ovarios y exudación en el oviducto.
Hemorragias en la superficie de la mucosa del proventrículo, particularmente en
la unión con la molleja.
Hemorragias y erosiones de la mucosa de la molleja.
Focos hemorrágicos en los tejidos linfoides de la mucosa intestinal.
En los pavos, las lesiones son similares a las de las gallinas, pero pueden ser menos
marcadas. Los patos infectados por IAAP y que excretan el virus pueden no presentar
ningún signo clínico o lesiones.
11
�Reservorios
Los virus de la influenza aviar están difundidos en el ámbito mundial en muchas especies de aves silvestres sin provocar en ellos enfermedades.
Corresponde dar particular importancia a las aves acuáticas silvestres y, especialmente a las aves del orden anseriforme (patos, gansos y cisnes), en cuyo tracto
digestivo se multiplican estos virus, para ser expulsados con las heces y difundirse
ampliamente en el medio ambiente acuático. También los patos domésticos pueden
estar infectados en forma inaparente con virus de la influenza, y contagiar a otras
especies de aves domésticas.
Transmisión
La principal fuente de contagio es el animal infectado que elimina el virus con las
heces, pero también con otras excreciones y secreciones. Estas secreciones pueden
contaminar las jaulas, los implementos, la ropa y el calzado de las personas, los vehículos, los equipos mecánicos de recolección de huevos, etc. que se transforman en
los principales elementos diseminadores de la enfermedad. Apenas tiene importancia el contagio vertical. En los primeros brotes es difícil descubrir cuál fue la fuente
de contagio; es frecuente responsabilizar entonces de ello a aves silvestres.
Potencialidad zoonótica
Normalmente, las cepas de influenza aviar infectan sólo a las aves. Sin embargo,
desde el año 1997 se han registrado infecciones en personas a partir de virus de
las aves de alta patogenicidad de los subtipos H5N1, H7N7 y H9N2, que han producido enfermedad de gravedad variable incluida la muerte de algunas personas.
Para llegar a infectarse una persona debe tener contacto directo y estrecho con aves
enfermas o sus secreciones, por lo que generalmente se considera una enfermedad
ocupacional que afecta a personal vinculado con la industria avícola: veterinarios,
granjeros, operarios de plantas, etc. En la mayoría de los casos la infección en personas con los virus de influenza aviar de alta patogenicidad provoca una conjuntivitis
sin afectación general.
Resultados de la vigilancia en humanos han identificado a los subtipos H2, H5, H6,
H7 y H9 de la influenza tipo A como muy probables de transmitirse a los seres humanos. La influenza tipo A que actualmente está circulando en los humanos corresponde a los subtipos H1 y H3, los cuales siguen experimentando cambios antigénicos
(OMS, 2005).
12
�Manual de Procedimientos / Influenza Aviar
Solo grandes epizootias de influenza aviar de alta patogenicidad como las que están ocurriendo en el Sudeste Asiático, con diseminación masiva de virus al medio
y deficientes medidas de higiene, aumentan la posibilidad de exposición a las personas y consiguientemente la infección. Esto a su vez aumenta las posibilidades de
intercambio génico entre virus de influenza humanos y animales. Esto puede ocurrir
cuando las personas están coinfectadas simultáneamente con ambos virus de influenza. Cuanto más frecuentes sean las coinfecciones mayor será la probabilidad
de que surjan nuevos subtipos virales con características genéticas que permitan la
transmisión eficiente de persona a persona. El virus de influenza humana (H1N1),
que ha causado recientemente numerosos casos de gripe humana y ha sido motivo de la declaración de Pandemia y alerta mundial por la Organización Mundial de
la Salud (OMS), contiene en su genoma fracciones de ARN de virus aviar, de virus
porcino y de virus humano. Después de complejas investigaciones, hoy se conoce
el genoma del virus que causó la gripe española en 1918-1919, revelándose que el
mismo contenía también ácido nucleico proveniente de los porcinos, de las aves y
del humano. Las técnicas de diagnóstico molecular que hoy se emplean, permiten
identificar el origen de los virus, comprobándose que cada especie que ha sido infectada ha dejado un rastro en el genoma viral.
Población hospedadora
Gallinas, pollos y pavos son las especies de aves más susceptibles, por lo que
en ellas provocan los virus de la influenza muy virulentos cifras de morbilidad y
mortalidad muy elevadas. Con menor frecuencia e intensidad enferman los patos.
También son susceptibles otras especies de aves domésticas, como codornices,
faisanes y pintadas; menos susceptibles parecen ser los gansos y las palomas.
El mismo virus puede transmitirse desde una especie de ave a otra, pero sólo rara
vez provoca en ambas enfermedad de la misma gravedad. Los conocimientos sobre
la inmunidad en la influenza aviar clásica son escasos, puesto que los animales suelen morir o son sacrificados. Las cepas de virus poco virulentas y los virus vacunales
inactivados generan una inmunidad que, sin embargo, protege sólo contra el mismo
subtipo.
Las aves inmunizadas pueden enfermarse, sin embargo los signos y lesiones que
desarrollan son menos graves así como también es menor la cantidad de virus que
excretan y diseminan en el medio ambiente.
Hay indicios de que ciertos animales excretan el virus todavía algunas semanas después de superar la enfermedad.
13
�Los frecuentes brotes de influenza registrados en los pavos de Estados Unidos no
permiten deducir la existencia de una situación enzoótica, puesto que con frecuencia son identificados otros subtipos de virus.
Si las aves se crían en alojamientos abiertos y la zona es rica en humedales, resulta
posible el contacto con patos salvajes, y con ello la infección de las aves de corral.
Diagnóstico
Debido a la variabilidad de los signos clínicos, el diagnóstico clínico solo puede ser
considerado presuntivo. El diagnóstico definitivo debe ser realizado en el laboratorio
con métodos virológicos y serológicos, siendo positivo cuando se realiza el aislamiento e identificación viral
Los siguientes signos clínicos ayudan al diagnóstico:
Depresión severa, inapetencia
Marcada disminución de la producción de huevos
Edema facial con crestas y barbillas tumefactas y cianóticas
Hemorragias petequiales en las superficies de las membranas internas
Muerte súbita (la mortalidad puede alcanzar 100%)
Diagnóstico diferencial
Enfermedades respiratorias, especialmente cólera aviar agudo.
Enfermedad de Newcastle, patógena.
Laringotraqueítis infecciosa aguda.
Prevención y profilaxis
Las medidas de prevención se centran en las prácticas de manejo y las medidas de
bioseguridad tendientes a evitar la introducción de la enfermedad y su diseminación. Las aves silvestres son causa potencial de posibles infecciones para las aves
domésticas.
Cuando la infección es producida por virus de baja patogenicidad, los esfuerzos
deben estar orientados a contener el problema en su forma original, para evitar la
conversión a formas más patógenas del virus. En este sentido, las granjas o zonas
14
�Manual de Procedimientos / Influenza Aviar
en cuarentena, son esenciales para
evitar la diseminación del virus y así
evitar dar lugar a la conversión. En
los países en los cuales la IA nunca
ha sido detectada, la aparición de
formas no patógenas debe ser evaluada, en cuanto la misma es potencialmente una posibilidad de aparición de las formas muy patógenas.
Si el problema es causado por virus
de alta patogenicidad, el enfoque
debe ser hacia la erradicación, por
medio del sacrificio, la despoblación,
desinfección y limpieza de las instalaciones y el control epidemiológico
con personal calificado de la zona
afectada.
Las vacunas monovalentes y polivalentes tienen la capacidad de
proteger contra la mortalidad y la
morbilidad. Estas vacunas reducen
la severidad de la enfermedad y la
diseminación del virus, pero éste no
se eliminará de la población avícola.
Código Sanitario para los
Animales Terrestres
“Artículo 10.4.3
País, zona o compartimiento libre de influenza aviar de declaración obligatoria
Se puede considerar que un país, una zona
o un compartimiento está libre de influenza
aviar de declaración obligatoria cuando una
vigilancia de la enfermedad acorde con lo estipulado en los artículos 10.4.27 a 10.4.33. ha
demostrado la ausencia de infección por virus
de influenza aviar de declaración obligatoria altamente patógenos y levemente patógenos en
el país, la zona o el compartimiento durante los
12 últimos meses.
Si se detecta la presencia de infección, el país,
la zona o el compartimiento libre hasta entonces de la enfermedad podrá recuperar su estatus sanitario:
1.
en el caso de infección por virus de influenza aviar de declaración obligatoria
altamente patógenos, 3 meses después
de haber aplicado medidas de sacrificio
sanitario (que incluyan la desinfección
de todas las explotaciones afectadas),
siempre y cuando se haya ejercido una
vigilancia acorde con lo estipulado en los
Artículos 10.4.27, a 10.4.33, durante ese
período de 3 meses;
2.
en el caso de infección por virus de influenza aviar de declaración obligatoria
levemente patógenos, podrán sacrificarse
las aves de corral para consumo humano
a condición que reúnan las condciones
descritas en el Artículo 10.4.20 o el Artículo 10.4.21, o podrán apllicarse medidas de sacrificio sanitario, pero en ambos
casos: 3 meses después de la desinfección de todas las explotaciones afectadas, siempre y cuando se haya ejercido
una vigilancia acorde con lo estipulado en
los Artículos 10.4.27 a 10.4.33, durante
ese período de 3 meses.”
Policía sanitaria
Esta enfermedad se encuentra incorporada al grupo de enfermedades a que se refiere el Artículo 4°
de la Ley N° 3959 de Policía sanitaria de los animales, y por lo tanto son de aplicación para ella las
regulaciones previstas en esa Ley,
entre las que se incluye la denuncia
obligatoria, interdicción preventiva
ante la presencia de sospechas o
casos de IA y otros.
15
�Capítulo 1
Acciones y procedimientos ante la sospecha o
confirmación de enfermedad
Denuncia de casos de enfermedad
La denuncia de casos de aves domésticas o silvestres con sintomatología atribuible
a IA, en todos los casos se efectuará en las oficinas del Senasa o en la Dirección
Nacional de Sanidad Animal y es obligatoria para:
a) Los responsables o propietarios de las aves afectadas.
b) Las personas responsables o encargadas de cualquier explotación avícola, industrial o doméstica.
c) Los veterinarios privados.
d) Cualquier autoridad nacional, provincial o municipal.
e) Los responsables de los laboratorios de diagnóstico o investigación, que se encuentren o no incluidos en la Red de laboratorios del Senasa, pertenecientes a
organismos nacionales o provinciales, privados o públicos.
f) Cualquier persona que tome conocimiento de la existencia de aves enfermas o
presumiblemente afectadas.
Acciones y medidas a tomar ante la sospecha
Ante la denuncia de un foco de influenza aviar o sospecha de la misma, el veterinario
local debe adoptar las siguientes acciones:
1. Protocolización.
2. Interdicción del establecimiento o local y de los establecimientos o locales vecinos que por razones geográficas o de contacto se justificare y comunicación
al propietario y/o responsable mediante acta.
3. Censo de todas las aves del establecimiento o local por categoría (identificando
el número de aves halladas vivas, muertas y enfermas) e identificación y censo
de otras especies animales presentes en la explotación.
4. Toma de muestras y envío al Laboratorio Oficial de acuerdo a las normas técnicas
que se detallan en el Capítulo 9 del presente Manual.
16
�Manual de Procedimientos / Influenza Aviar
5. Aislamiento de todas las aves de manera de garantizar que no tomen contacto
con otras aves.
6. Prohibición de la salida de aves que se encuentran en el establecimiento y del
ingreso de otras aves al mismo.
7. Los movimientos o traslados de personas, otras especies animales, vehículos,
alimentos, residuos o cualquier elemento capaz de transmitir la enfermedad, estarán subordinados a la autorización de la Dirección Nacional de Sanidad Animal
o a las personas que el Senasa designe.
8. En caso de detectarse el tránsito de aves susceptibles a IA, productos o subproductos de aves, sin la autorización correspondiente, serán considerados de tránsito ilegal y de alto riesgo sanitario; realizándose en forma inmediata su decomiso y posterior sacrificio sanitario o destrucción, sin tener derecho el titular de los
mismos a indemnización alguna.
9. Desinfección de las entradas y salidas del establecimiento o local y de las instalaciones que se encuentren en el mismo con los desinfectantes autorizados
oficialmente para tal fin.
10. La Dirección Nacional de Sanidad Animal del Senasa, a través del Sistema Nacional de Vigilancia Epidemiológica, comunicará el alerta al Sistema de Emergencias Sanitarias a fin de que se extremen las medidas de vigilancia en todo
el país.
Procedimientos ante la confirmación del foco
Si se confirmara por las pruebas de laboratorio, el diagnóstico de influenza aviar
altamente patógena o levemente patógena de los subtipos H5 y H7, se procederá a
tomar las siguientes medidas:
1. Inmediata comunicación en el nivel local y nacional a las autoridades sanitarias
del Ministerio de Salud de la Nación, a fin de que se tomen las medidas de prevención que correspondan con las personas que en forma directa o indirecta
hayan estado expuestas o en contacto con las aves enfermas.
El veterinario local debe adoptar las siguientes medidas:
2. Confección del protocolo (ver Manual de Procedimientos de Atención de Focos o
Casos de Enfermedad).
3. Delimitación de una «zona de foco» de un radio mínimo de CINCO (5) kilómetros rodeada de una «zona de vigilancia» de un mínimo de DIEZ (10) kilómetros de radio.
17
�4. Conformación de un equipo de trabajo encargado de realizar las tareas de la vigilancia epidemiológica en la zona del foco y en la zona de vigilancia, de acuerdo
a las pautas técnicas que se indican en el Capítulo 2 del presente Manual.
5. Sacrificio «in situ» de todas las aves afectadas en el establecimiento o local y
destrucción de los cadáveres, huevos y residuos (guano, cama de galpón, etc.)
de acuerdo con las normas técnicas que se detallan en el Capítulo 4 del presente
Manual.
6. Limpieza y desinfección de las instalaciones y sus alrededores, implementos, vehículos de transporte y de todo material que pueda estar contaminado utilizando
para tal fin técnicas y desinfectantes autorizados oficialmente y los procedimientos que se detallan en el Capítulo 5 del presente Manual.
7. Establecimiento de un período de espera o vacío sanitario de 21 a 30 días por lo
menos, período después del cual, se instalarán en los galpones o predios lavados
y desinfectados, aves centinelas, para lo cual se deberá proceder de la forma que
se describe en el Capítulo 8 del presente Manual.
8. Seguimiento y destrucción de las carnes de aves y huevos para consumo o para
incubación que provengan del establecimiento afectado y que hubieran salido
del mismo en el supuesto período de incubación de la enfermedad.
9. En la zona de foco se deben aplicar las siguientes medidas:
18
9.1
Localización de todas las explotaciones avícolas o locales en los que se
encuentren aves.
9.2
Visitas y examen clínico y/o de laboratorio, si fuera necesario, a todos los
establecimientos.
9.3
Desinfección adecuada de todas las entradas y salidas de esos lugares e
indicaciones de extremar las medidas de bioseguridad en los establecimientos.
9.4
Control de tránsito dentro de la zona, de aves, de las personas que trabajen con las mismas, de vehículos, cadáveres y huevos.
9.5
Los movimientos de aves para faena, los huevos para incubar o para consumo y las aves de un día, se realizarán únicamente bajo la autorización
de la Dirección Nacional de Sanidad Animal del Senasa, que evaluará de
acuerdo a la identificación del virus circulante y al grado de exposición
que pudieran tener las aves que dan origen a estos productos, cuál es el
destino que les corresponde.
�Manual de Procedimientos / Influenza Aviar
9.6
En caso de transporte para faena, el veterinario oficial del establecimiento
faenador deberá estar advertido de la llegada de esas aves para proceder
a un sacrificio apartado de otras aves y para la identificación de la carne
procedente de las mismas.
9.7
Las aves de UN (1) día o huevos para incubación podrán ser transportadas de preferencia a establecimientos dentro de la zona del foco o de
vigilancia o a un establecimiento con control oficial.
9.8
Los huevos para consumo podrán ser transportados preferiblemente a un
establecimiento elaborador de ovoproductos, o deberán ser identificados
para su comercialización dentro de la zona de foco o de vigilancia, o en
otra zona previa desinfección de los mismos.
9.9
No habiéndose registrado otras novedades, las medidas de la «zona de
foco» se mantendrán durante 21 días como mínimo a partir del día en que
se realizó la desinfección del establecimiento. A partir de ese momento, la
zona de foco pasará a formar parte de la “zona de vigilancia” y se procederá
a la “centinelización” de los predios que han estado infectados, que han
sido lavados y desinfectados y que han cumplido con el período de vacío
sanitario.
10. En la «zona de vigilancia» se dispondrán las siguientes medidas:
10.1 Localización de todas las explotaciones avícolas o locales en los que se
encuentren aves y establecimiento de indicaciones para que se extremen las medidas de bioseguridad en estos predios.
10.2 Control de los desplazamientos y traslados dentro de la zona.
10.3 En lo referente a las aves que se trasladen a faena, y a los huevos para
incubación, podrán ser trasladados con autorización del Senasa, y habiéndose avisado previamente al veterinario oficial del establecimiento
de destino que deberá realizar en el caso de las carnes la identificación
correspondiente. Los huevos para incubación deberán ser desinfectados
antes de su traslado.
10.4 Los huevos para consumo podrán ser transportados preferiblemente a un
establecimiento elaborador de ovoproductos, o deberán ser identificados
para su comercialización dentro de la zona del foco o de vigilancia, o en
otra zona previa autorización y desinfección de los mismos.
10.5 De no haberse registrado novedades, las medidas adoptadas en la «zona de
vigilancia», se mantendrán durante un período de 30 días como mínimo.
19
�11. Tanto en la zona de foco como en la zona de vigilancia, y en los períodos durante los cuales se mantengan las medidas antes descriptas, estará prohibido la
realización de ferias, exposiciones o mercados en los cuales se concentren aves
de corral u otras.
12. Investigación epidemiológica: El Senasa garantizará que se realice la investigación epidemiológica correspondiente a fin de establecer el origen de la infección inicial, el tiempo transcurrido desde el ingreso del agente etiológico hasta
la aparición de los signos, los posibles contactos establecidos entre las aves
afectadas y otras y /o personas, a fin de extremar las medidas de control y
evitar la difusión de la enfermedad. La investigación epidemiológica se deberá
realizar siguiendo los principios técnicos que se detallan en el Capítulo 3 del
presente Manual.
13. Vacunación: El Senasa evaluará la necesidad de implementar un plan de vacunación de las aves de corral u otras, en explotaciones o locales que se encuentren o no en las zonas afectadas. De adoptarse como medida de control, la
vacunación contra influenza aviar, la misma se realizará con las vacunas autorizadas por el Senasa y exclusivamente bajo la supervisión del mismo, utilizando
registros de vacunación y documentación mediante actas.
14. Comunicación a la OIE y a los países de la región: La Dirección Nacional de Sanidad Animal del Senasa efectuará las comunicaciones correspondientes dentro de los plazos determinados a la Organización Mundial para la Salud Animal,
a todos los países y particularmente a los estados miembros del MERCOSUR,
y a la República de Chile, las novedades registradas en la República Argentina
referentes a la influenza aviar de declaración obligatoria y a la evolución de las
mismas mediante un informe técnico completo y detallado sobre los hechos
registrados y las medidas implementadas.
20
�Manual de Procedimientos / Influenza Aviar
Capítulo 2
Vigilancia epidemiológica
Introducción
Tanto en la zona del foco como en la zona de vigilancia, se deberá organizar en forma
inmediata y simultáneamente con las tareas tendientes a la erradicación, las actividades de la vigilancia epidemiológica.
La vigilancia epidemiológica tiene como objetivos principales:
a) Determinar e identificar los establecimientos o predios o locales que se encuentran involucrados en el foco.
b) Determinar el grado de compromiso con la enfermedad en cada uno de estos
establecimientos o locales de acuerdo a la existencia en los mismos de aves
que han estado expuestas, aves con signos de enfermedad o aves que resultan
positivas a las pruebas diagnósticas.
c) Evaluar de acuerdo a la información que proceda de esta vigilancia el grado de
dispersión de la enfermedad.
El veterinario local, deberá prever de acuerdo a la cantidad de establecimientos o
locales poseedores de aves, existentes en la zona, la conformación de un equipo de
profesionales y técnicos, que deberán organizarse en grupos que puedan operar respetando extremas medidas de bioseguridad y la mejor eficiencia en cuanto a evitar el
ingreso innecesario de personas en lugares contaminados.
La vigilancia epidemiológica comprende las tareas de encuesta epidemiológica y
muestreo de aves.
Encuesta epidemiológica
La encuesta deberá considerar en cada caso obtener la información anamnésica de
cada establecimiento, que deberá realizarse bajo conceptos generales y teniendo en
cuenta los aspectos propios de la actividad avícola que se detallan en el Capítulo 3
del presente Manual.
Muestreo de aves
Para realizar el muestreo de las aves se deberá optar por un diseño estadístico que
podrá variar según sea aplicado para el muestreo en la zona del foco o para el mues-
21
�treo en la zona de vigilancia. Necesariamente este diseño deberá considerar la magnitud de la población avícola en la zona (cantidad de establecimientos y cantidad de
aves); las subpoblaciones susceptibles (aves industriales, aves de traspatio, aves
ornamentales, otras especies de aves de corral, otras especies animales susceptibles, etc.) y los tipos de explotaciones avícolas existentes (parrilleros, ponedoras,
reproductoras, recrías u otras). Se deberá establecer de acuerdo a esta información,
cuál es la unidad epidemiológica para el muestreo, para lo cual también se considerará la existencia de sistemas productivos con una sola edad o múltiples edades, la
posible existencia de núcleos de reproducción o de barreras sanitarias naturales o
artificiales existentes y los niveles de bioseguridad que se aplican en la zona y que
puedan influir en el criterio de la unidad epidemiológica asignada para el muestreo.
De esta información surgirá el criterio de tomar como unidad epidemiológica el galpón, la granja, el gallinero o predio.
A efectos del muestreo en establecimientos industriales podrá considerarse como
unidad epidemiológica para el muestreo la granja, constituida por uno o más galpones, que alojen aves de una misma especie, con un manejo sanitario-productivo
y medidas de bioseguridad comunes. O bien se podrá considerar, de acuerdo a lo
señalado anteriormente como unidad epidemiológica al o los galpones (ej. en núcleos de reproducción) siendo aquellos que alojen un número variable de aves de la
misma edad y una misma condición productiva.
El tipo de pruebas de laboratorio que serán empleadas para el procesamiento de
las muestras y la sensibilidad y especificidad de las mismas, también deberá ser
contemplado para establecer el tipo y el tamaño de la muestra a extraer. El muestreo
serológico deberá tener una frecuencia no menor a 7 días y no mayor a 15 días. En
todos los casos el diseño empleado deberá considerar trabajar con un nivel de confianza del 95 % como mínimo y con una prevalencia estimada no mayor al 5%.
22
�Manual de Procedimientos / Influenza Aviar
Capítulo 3
Investigación epidemiológica
En todos los casos en que en una explotacion avícola se sospeche, notifique o
compruebe la existencia de influenza aviar de declaración obligatoria, se realizará
una investigación epizootiológica exhaustiva para determinar, en la medida de lo
posible, el origen y la dispersión del agente y prevenir brotes adicionales.
El veterinario local de la Dirección Nacional de Sanidad Animal del Senasa será el
responsable de realizar una encuesta epizootiológica inicial con la confección del
Protocolo de Enfermedad Denunciable que se anexa en el presente Manual, el que
enviará en el menor tiempo posible a la Dirección Nacional de Sanidad Animal.
Los objetivos principales de la encuesta epizootiológica son:
1) Confirmar la sospecha de IA de declaración obligatoria.
2) Detectar las fuentes de contaminación o exposición y el posible origen de la enfermedad.
3) Estimar el período de tiempo en el cual pudo estar presente la enfermedad.
4) Establecer las posibles contaminaciones y nuevos lugares de riesgo considerando los movimientos de animales, personas y vehículos.
5) Localizar estos nuevos lugares de riesgo y proceder a su investigación.
6) Evaluar de acuerdo a la situación, las posibilidades de implementación de vacunación.
A modo de guía se establecen las pautas generales para la realización de una encuesta epizootiologica detallada:
1) Datos generales de la explotación, a consignar:
- Los datos del establecimiento.
- El tipo de explotación y tipo de producción.
- Los datos particulares del titular, encargado o propietario de las aves.
- La especie de ave, edad, categoría existente y origen de las mismas.
- Las características de la explotación avícola.
2) Anamnesis y datos clínicos, a consignar:
23
�- El número total de aves, el número de aves enfermas y muertas según especie y categoría.
- Los días transcurridos desde inicio de primeros signos clínicos.
- Los signos clínicos.
- Los porcentajes de mortalidad previos a la ocurrencia de la enfermedad.
- Los tratamientos efectuados (detallar motivos, los productos utilizados, la vía
de administración, la dosificación, los resultados, el o los administradores,
etc.)
- Las vacunaciones aplicadas (detallar la vacuna utilizada, la vía de administración, el o los administradores, etc.)
3) Datos de las explotaciones avícolas o tenedores de aves en proximidad a la explotación investigada, consignar:
- La existencia de otras explotaciones avícolas y la distancia aproximada.
- La presencia de aves enfermas o muertas.
- La existencia de lagunas, humedales, cotos de caza u otros lugares de concentración de aves silvestres, especialmente aves acuáticas migratorias y
eventos relacionados con mortandad en dichas aves.
4) Determinar movimientos de animales, personas, vehículos y maquinarias.
a) Movimiento de animales, investigar:
-
La entrada y salida de aves dentro de los 30 días previos al inicio de
signos clínicos (detallar la fecha, la cantidad, el origen o destino).
-
La entrada y salida de otras especies animales dentro de los 30 días
previos al inicio de los signos clínicos (detallar la fecha, la cantidad, el
origen o destino).
b) Movimientos de personas, investigar:
24
-
Las visitas a la explotación durante los 30 días previo al inicio de signos
clínicos.
-
Si hubieron personas trabajando en la explotación relacionadas o no,
en forma directa con las aves (veterinarios, supervisores o recorredores,
albañiles, personal de empresas de desinfección, vacunadores, repartidores de gas, repartidores de alimentos, etc).
�Manual de Procedimientos / Influenza Aviar
- Las visitas del personal de la explotación a otras explotaciones avícolas durante los 30 días previo al inico de signos clínicos.
c) Movimientos de vehículos y maquinarias, investigar:
- Los vehículos que han ingresado en la explotación durante los últimos
30 días, detallando fecha de ingreso, origen, motivo de ingreso, etc.
(tener en cuenta vehículos de entrega/retiro de alimento, de cama de
galpón, guano, gas, etc.)
- Si se compartió maquinaria o alimentos con otras explotaciones.
Se podrá considerar como una guía las preguntas que se adjuntan en el Informe de
investigación del Capítulo 11 “Investigación Epizootiológica” del presente Manual.
25
�Capítulo 4
Sacrificio sanitario y eliminación
Sacrificio sanitario
Consideraciones generales
La legislación del Senasa establece que la erradicación de la influenza aviar de declaración obligatoria debe realizarse mediante el sacrificio sanitario obligatorio de
las aves enfermas o sospechosas y sus contactos, y su posterior eliminación, con el
fin de detener la replicación del virus y evitar la difusión de la enfermedad.
Dado que no siempre la enfermedad cursa con alta mortalidad, esta medida deberá
aceptarse como imprescindible para controlar la diseminación del virus en el caso
de presentación de un brote de influenza aviar de baja patogenicidad de declaración
obligatoria (H5/H7).
Los criterios principales, para el sacrificio, en términos de bienestar animal, son que
el método sea indoloro, consiga una rápida inconciencia y muerte, requiera una mínima inmovilización, evite la excitación, sea apropiado para la especie, sea irreversible y minimice el estrés animal.
El método de sacrificio debe garantizar la seguridad de los operarios, así como de
otras especies animales que se encuentren en la explotación y no debe tener consecuencias adversas sobre el medio ambiente.
Se deberá fijar una zona buffer externa y comenzar allí con el sacrificio, de afuera
hacia adentro para evitar diseminaciones de la epizootia durante el proceso. Primero se sacrificará a los animales infectados, luego a los contactos y por último otras
especies susceptibles, si esto resultara necesario de acuerdo al riesgo y a las investigaciones epidemiológicas y de laboratorio.
El sacrificio sanitario se realizará lo más rápido posible (24 – 48 hs.) luego de la
confirmación de la enfermedad y dentro de la misma explotación infectada o lo más
cerca posible, preferentemente durante las horas de luz.
Los propietarios de animales, objetos y construcciones que el Senasa mande a sacrificar o destruir en virtud de la autorización que la Ley Básica de Policía Sanitaria
de los Animales Nº 3.959 le confiere, tendrán derecho a exigir una indemnización
según lo establecido por esta Ley en sus artículos 24 a 28.
26
�Manual de Procedimientos / Influenza Aviar
Consideraciones previas al sacrificio
Para la correcta ejecución del sacrificio es esencial planear previamente las actividades teniendo en cuenta el método más adecuado, según las características del
establecimiento y de las aves a ser sacrificadas.
La planificación de las actividades deberá realizarse teniendo en cuenta:
-
La ubicación de la explotación o predio.
-
La distancia desde el galpón a otros edificios (viviendas, otras granjas).
-
El acceso a las instalaciones que permitan la entrada de maquinaria.
-
Las especies, el tamaño y el número de animales presentes en la explotación.
-
El sistema de producción existente (a piso, a jaula, semi intensivo, u otro).
-
Los detalles estructurales del galpón (cerrado, abierto, presencia de subdivisiones o separaciones del galpón, sistema de ventilación, tipo y características de las
aberturas, volumen total del galpón ).
-
El acopio del material necesario (abastecimiento de CO2 u otro, material para
el sellado de aberturas, disponibilidad de contenedores aptos para la inundación con gases, maquinaria, ropa protectora, equipos de limpieza y desinfección,
etc.).
-
La determinación de personal suficiente y operarios especializados.
Métodos para el sacrificio de aves
El Senasa determinará para cada caso los procedimientos de sacrificio que correspondan aplicar, pudiéndose implementar también la matanza por faena sanitaria,
según las condiciones prácticas que se detecten, el número y especies de animales
afectados y la patogenicidad del subtipo viral encontrado. Por lo tanto no se considera definitiva la lista de los procedimientos posibles enumerados a continuación.
Los siguientes métodos químicos (por agentes inhalatorios o inyectables) y físicos
para sacrificio de aves, son factibles:
1) Gasificación con dióxido de carbono (CO2).
2) Gasificación con monóxido de carbono (CO).
3) Gasificación con ácido cianhídrico (HCN).
4) Gasificación con nitrógeno o argón.
27
�5) Gasificación con mezclas de gases.
6) Agentes inyectables.
7) Dislocación cervical.
8) Electrocución.
1) Gasificación con dióxido de carbono (CO2)
Siempre que sea posible se utilizará, preferentemente, el sacrificio de las aves mediante gasificación con CO2. Este método de eutanasia para aves es muy rápido y
eficaz, fácil de utilizar y con riesgos mínimos para los operarios.
El CO2 es un gas incoloro, no inflamable, no explosivo y que no genera efectos adversos al medio ambiente. A concentraciones superiores al 60% actúa como agente
anestésico y produce depresión del sistema nervioso central con rápida pérdida de
la conciencia y muerte.
El CO2 es envasado en cilindros como gas comprimido a alta presión de diversa
capacidad (se debe utilizar un regulador o válvula para reducir la presión cuando
se conecte a un sistema de tuberías de baja presión). Si no se dispone de CO2 en
cilindros podrá usarse en estado sólido como hielo seco. El uso de cada uno de estos
sistemas va ha requerir mayor o menor cantidad de personal especializado en su
manejo.
La bibliografía recomienda situar las aves en una atmósfera de CO2 mayor al 70%, ya
que pierden la conciencia muy rápido debido al efecto narcótico del gas. Sin embargo en condiciones prácticas parece ser suficiente la exposición a una concentración
mínima del 55 al 60% del volumen del compartimiento. La concentración incidirá en
la velocidad de muerte de las aves.
En animales conscientes el CO2 al 100% puede causar grave disnea y angustia. Solo
se recomienda su uso (CO2 al 100%) en pollitos de hasta 72 horas de vida, debido a
que son más tolerantes al mismo.
Si es posible se debe disponer de mecanismos por los cuales la concentración de
CO2 se pueda medir rápidamente y con exactitud. Hay que tener la precaución de
mantener su concentración constante por al menos 3 minutos, luego de 20 minutos
de exposición al gas hay que asegurarse que los animales estén muertos.
Se debe conocer con anterioridad cuáles son las empresas abastecedoras del gas
y un volumen de gas estimado para solicitar el suministro necesario. En este último
28
�Manual de Procedimientos / Influenza Aviar
sentido es preciso que se calcule previamente el volumen (m3) del compartimiento
donde se sacrificarán las aves, siendo el volumen a gasificar igual a (largo x ancho x
altura) x 0,55, ó bien, largo x ancho x (altura de la cabeza del ave + aprox. 50 cm). La
cantidad necesaria de CO2 en kg a solicitar es igual al volumen efectivo a gasificar x
2 (1 m3 ~ 1,9 kg CO2).
Las gasificaciones con CO2 pueden realizarse en el galpón donde se encuentran las
aves o bien en contenedores externos; la elección depende en parte del sistema
de producción de las aves (a piso, a jaula) y las características estructurales del
galpón.
●
Gasificación con dióxido de carbono en el galpón
Se puede utilizar este método en el caso de sacrificio de aves que son criadas a piso
(por ejemplo pollos de engorde, reproductores, recría de gallinas de alta postura,
etc.).
En este caso se proponen dos métodos:
a) Formando previamente corrales dentro del galpón o bien en galpones equipados
con paredes ajustables, se deben forzar las aves hacia un lugar más restringido;
luego deben encerrarse las aves bajo una tela plástica formado una cápsula lo
más hermética posible, en donde se introduce el gas por medio de mangueras
desde la parte inferior de la cápsula (el CO2 es un gas más pesado que el aire y
tiende a acumularse en la parte inferior).
b) Cerrar con telas plásticas las ventanas, puertas y otras eventuales salidas de
aire, lo más herméticamente posible para minimizar la fuga del gas; y posteriormente introducir el gas mediante mangueras.
Consecutivamente al sacrificio el personal especializado determinará la concentración de gas en el interior, para que comience la extracción segura de las aves. Los
animales muertos deben ser humidificados mediante una fina neblina de agua y
la recolección y eliminación posterior realizarse con la menor producción de polvo
posible.
Únicamente ingresará el personal necesario para el retiro de las aves y el número del
mismo deberá ser reducido al mínimo.
●
Gasificación con dióxido de carbono en contenedores o
receptáculos
En el caso de aves criadas a jaula, se deben extraer de las mismas y colocarlas en
contenedores. Antes de manipular a las aves se aconseja pulverizar agua sobre las
29
�jaulas para disminuir la producción de polvo y reducir el riesgo de dispersión del
agente.
Para este procedimiento se deberán utilizar contenedores provistos de tapas, los
cuales se puedan cerrar en forma lo más hermética posible (pueden también usarse
los acoplados de camiones para este fin).
El dióxido de carbono es más pesado que el aire, por ello un llenado incompleto del
contenedor puede evitar la exposición a los animales más altos o que se encuentran
en la parte superior.
La cámara debe ser llenada previamente con CO2 hasta el 55 - 60% de su volumen
antes de introducir los animales en ella. Sin embargo otros opinan que puede ser
mejor llenar la cámara una vez que los animales han sido colocados en ellas.
Los contenedores pueden así colocarse en un camión y ser transportados hasta el
lugar escogido para su eliminación. Los camiones que contengan aves sacrificadas
en caso de brote deberán vigilarse hasta el final de su recorrido.
2) Gasificación con monóxido de carbono (CO)
El monóxido de carbono produce rápidamente la muerte ya que se combina con los
eritrocitos con preferencia al oxígeno, produciendo de este modo hipoxia, causando
la muerte a concentraciones del 4% al 6%.
Sin embargo es extremadamente peligroso para el personal, debido a que es un
gas incoloro, inodoro y por lo tanto difícil de detectar. A su vez debido al peligro de
explosión la gasificación con CO solo podrá efectuarse por empresas y personal que
tengan los conocimientos técnicos y bajo supervisión de los bomberos locales. Por la
misma razón no se podrá usar este procedimiento en contenedores.
En ocasiones y ante la falta de un método más adecuado se ha utilizado el gas
proveniente de la combustión de un vehículo. Sin embargo, el monóxido de carbono
proveniente del escape de gas de combustión de motores contiene impurezas y, en
consecuencia, puede producir irritación y malestar.
3) Gasificación con ácido cianhídrico (HCN)
El acido cianhídrico produce muerte rápida e irreversible por hipoxia citotóxica, pero
también excitabilidad y angustia antes de la muerte.
Debido a la extrema toxicidad de este gas, este procedimiento deberá ser realizado
por personal técnico capacitado y únicamente si se reconoce que es imposible terminar con el sacrificio de las aves por otros métodos.
30
�Manual de Procedimientos / Influenza Aviar
4) Gasificación con nitrógeno o argón
El nitrógeno y el argón son gases inertes, ambos incoloros e inodoros, no combustibles y no explosivos. Se considera que tienen un impacto mínimo sobre el medio
ambiente. Ambos se pueden usar en una cámara cerrada siguiendo el proceso de
«flushing», durante el cual el pasaje de estos gases reduce los niveles de oxígeno al
máximo de 1,5%. A tales niveles de oxígeno, el animal se derrumba, y la muerte se
produce por hipoxemia.
El argón es más denso que el aire y así tiende a permanecer en las capas de aire
más bajas.
5) Gasificación con mezclas de gases
La bibliografía recomienda también la mezcla de gases para proceder al sacrificio de
aves de corral, así se podrán utilizar mezclas de: 40% CO2, 30% O2, 30% N2 o bien
30% CO2, 20% O2, 50% aire.
6) Agentes inyectables
Se utiliza para el sacrificio de aves en casos aislados como, por ejemplo, aves de
raza u ornamentales.
La inyección de barbitúricos es un método aceptable de eutanasia para aves de todas las edades y produce una muerte rápida y relativamente libre de estrés.
7) Dislocación cervical
Para la eutanasia de un número reducido de aves puede realizarse el sacrificio mediante la dislocación del cuello (utilizando pinzas burdizzo, tijeras o las manos). Los
burdizzos tienen particular utilidad para el sacrificio de aves de corral con cuello
fuerte (patos, gansos, etc.)
La técnica consiste en separar el cráneo y el cerebro de la médula espinal aplicando
una presión a la base posterior del cráneo.
8) Electrocución
El sacrificio por electricidad por medio de agua se ha utilizado en países de la
Comunidad Europea, algunos de los cuales disponen de una o más unidades de
matanza móviles. En el caso de nuestro país existen limitaciones en cuanto a su
disponibilidad.
31
�Eliminación de cadáveres
Existen varios métodos para eliminar las aves muertas, desechos y otros desperdicios. Preferentemente se debe proceder al enterramiento en el mismo establecimiento u otro lugar adecuado para este fin. Cuando nos es posible o conveniente el
enterramiento, la mejor opción es elaborar compostas o bien la incineración.
Los huevos u otro material orgánico contaminante (guano, cama de galpón, restos
de alimentos, etc.) deberán recogerse con cuidado a fin de que se elimine junto con
las canales.
1) Enterramiento
Los lugares para el entierro deberán contar con la aprobación de los reglamentos locales y oficiales encargados de la protección del medio ambiente.
Debido a que se debe reducir al mínimo la distancia a través de la cual se transporta el material infectado, es apropiado que el enterramiento se realice en la misma
granja.
Otra opción que podría resultar adecuada es optar por un lugar de enterramiento
común para varias granjas en una zona determinada.
El equipo recomendado para realizar la fosa es una excavadora o retroexcavadora (para tareas pequeñas). El tamaño de la fosa va a depender del equipo
que se utilice, así como del lugar disponible y el volumen del material que vaya
a enterrarse. Lo recomendado es que la fosa sea lo más profunda posible y de
paredes verticales (las limitaciones son la maquinaria disponible, el tipo de suelo
y el nivel de la capa freática).
Para el cálculo del tamaño de fosa se deberá previamente calcular el peso del lote
de aves que será preciso enterrar, el que a su vez depende del tipo de producción
(pollos de engorde, reproductores pesados o livianos, gallinas de alta postura de
huevos blancos o de color, u otras especies); y de la edad de las aves o semanas de
cría, estos datos pueden ser provistos por el propietario, por técnicos especializados
en avicultura o bien obtenerse de tablas.
A modo de guía tener en cuenta que un kilo de peso tiene un volumen promedio de
0.06242 m3. El volumen de la fosa se deberá calcular multiplicando el valor anterior
por el peso medio y la cantidad promedio de aves alojadas.
En la realización de la fosa, al volumen calculado se tendrá que añadir un metro
entre la superficie y los cadáveres.
32
�Manual de Procedimientos / Influenza Aviar
Debido a la producción de gases por descomposición de los cadáveres se puede producir una considerable expansión del material enterrado por lo cual no se asentará
la tierra al recubrir la fosa.
Se recomienda cubrir los cadáveres con 40 centímetros de tierra, y colocar sobre
la misma una capa uniforme de hidróxido de calcio [Ca (OH2)] antes de terminar
de llenar la fosa. También es conveniente evitar poner la cal directamente sobre los
cadáveres porque retrasa y puede evitar su descomposición.
2) Incineración
Se recurrirá a la incineración cuando no se pueda realizar el entierro. Se deberá
considerar la topografía del lugar, dirección de los vientos, presencia de instalaciones u objetos de fácil combustión, disponibilidad de combustible y materiales
que ayuden a la combustión, aprobación de los organismos oficiales encargados
de la protección del medio ambiente y la disponibilidad de agua o material contra
incendio. En general no resulta un procedimiento práctico cuando la cantidad de
aves sacrificadas es alta.
3) Compostaje
El compostaje es un proceso de descomposición controlada de la materia orgánica. La descomposición ocurre en un ambiente aerobio en presencia de determinadas condiciones de pH, temperatura y humedad, en la cual microorganismos
mesófilos y termófilos elevan la temperatura por un tiempo determinado permitiendo así la inactivación viral.
Este método puede ser alternativo al enterramiento en sitios en que, por razones
de legislación o alto nivel de las napas freáticas, no se permita el enterramiento.
Para su planeamiento se deben considerar la disponibilidad de materiales necesarios para su realización (ej.: fuente de carbono como paja), su ubicación y el tiempo
requerido para la inactivación viral a temperaturas adecuadas (15 días a temperaturas mayores a 62ºC).
Se puede realizar luego una eliminación definitiva quemando o enterrando el compost.
Eliminación de la cama, deyecciones de aves o productos
avícolas
La cama, las deyecciones, los huevos u otros deberán tratarse mediante un método
idóneo para eliminar el virus.
33
�Dicho método deberá incluir una de las siguientes manipulaciones:
1. Se enterrarán con los cadáveres a una profundidad que impida el acceso a parásitos, aves silvestres u otros animales.
2. Se incinerarán o tratarán con vapor de agua a temperatura de 70 °C o mayor.
3. Se amontonarán y humidificarán (si resultara necesario para facilitar la fermentación), se cubrirán para mantener el calor de forma que se alcance una temperatura de fermentación mínima de 20°C y se mantendrán cubiertos durante 42 días.
Medidas higiénico sanitarias que deben contemplarse en el
sacrificio y eliminación
La realización del sacrificio y la eliminación de los lotes afectados se realizarán bajo
la supervisión del Senasa.
Teniendo en cuenta que el hombre es el principal vehiculizador del virus entre granjas
y sobre todo a grandes distancias, estas actuaciones exigen contemplar una serie de
medidas higiénico-sanitarias destinadas a la eliminación efectiva del virus y a evitar su
propagación, por ello es necesario que:
En el sacrificio y eliminación participen exclusivamente el número de personas
necesarias para el mismo. Estando personal afectado únicamente a estas tareas, sin tener contacto con otras granjas avícolas.
Se disponga de un lugar de desinfección a la entrada y/o salida de la explotación
para vehículos y calzados.
Todo el personal deberá utilizar ropa adecuada para tal fin, y todo el material
descartable deberá ser eliminado en la misma explotación.
El material no desechable deberá desinfectarse en forma adecuada previo a ser
retirado de la explotación.
Se mantenga una adecuada y estricta higiene de las manos y desinfección de
botas, después del contacto con aves de corral o con superficies contaminadas.
34
�Manual de Procedimientos / Influenza Aviar
Capítulo 5
Limpieza y desinfección
Procedimiento de limpieza y desinfección
Las operaciones de limpieza y desinfección se llevarán a cabo bajo la supervisión del
inspector veterinario.
Previo a la desinfección se informará al avicultor/propietario de las medidas de bioseguridad y protocolo de limpieza que se ha de efectuar.
El personal que conforma el equipo de limpieza y desinfección deberá estar provisto
de ropa protectora adecuada, en lo posible descartable y toda la ropa y calzado deberá
ser limpiada y desinfectada al terminar el operativo y ser provisto de ropa y calzado
limpio para salir del establecimiento.
1. Desinfección
1.1
Una vez extraídos los cadáveres, restos de alimentos o cualquier materia
orgánica para su eliminación, se rociarán todas las superficies en las que
hayan estado en contacto con las aves infectadas y las cercanas a los
mismos, con desinfectantes autorizados por el Senasa.
1.2
El desinfectante deberá permanecer durante VEINTICUATRO (24) horas
como mínimo.
2. Primera limpieza profunda y desinfección
2.1
Se realizará una limpieza profunda de las instalaciones con un producto
desengrasante (detergentes u otros surfactante autorizados) y agua. Deberán preferentemente emplearse sistemas de limpieza a presión a fin de
favorecer la eliminación de la suciedad adherida y agua caliente.
2.2
Se rociará nuevamente con desinfectante indicado, todas las superficies
tratadas, y se dejarán transcurrir SIETE (7) días.
2.3
Los implementos, bebederos, comederos, jaulas, nidos, incluyendo las
dependencias ajenas como cuarto de baños, almacenes de alimentos u
utensillos, depósitos de pienso, depósitos de agua de bebida, etc. deberán tratarse en forma similar con especial atención al uso de agua caliente
o vapor a temperatura de 70°C o mayor. Aquellos implementos que se
35
�pudieran remover del galpón, se ubicarán en un lugar apartado y cubierto
al amparo de otros animales o aves durante por lo menos 21 días.
2.4
Los desagües y conductos de evacuación, se llenarán con desinfectantes
concentrados.
3. Segunda limpieza profunda y desinfección
3.1
Una vez transcurridos siete días, se realizará nuevamente otra limpieza
profunda con un producto desengrasante y abundante agua y se rociará
nuevamente con un desinfectante.
3.2
Luego de realizada la limpieza y desinfección se procederá a realizar un
programa integrado de control de plagas (artrópodos y roedores), ya que
los mismos pueden actuar como vectores mecánicos, mediante productos
insecticidas y rodenticidas autorizados por el Senasa.
Desinfectantes y productos químicos recomendados
Los desinfectantes que pueden emplearse en el proceso de desinfección en brotes
de IAAP recomendados para el virus de la influenza aviar son los agentes tensoactivos catiónicos (sales de amonio cuaternario 4%), agentes oxidantes (hipoclorito de
sodio 2%, hipoclorito de calcio 2% y Virkon®), aldehídos (glutaraldehido 2%; formalina y gas formaldehído), ácidos (ácido cítrico 2%) y álcalis (hidróxido de sodio 2%, hidróxido de calcio 3%; carbonato de sodio 4%); fenoles sintéticos 2% y ácido cresílico
2%. Este listado no es definitivo y se podrán utilizar otros compuestos que determine
oportunamente el Senasa (ver Manual de Desinfección).
36
�Manual de Procedimientos / Influenza Aviar
Capítulo 6
Medidas de protección para los trabajadores
Introducción
Estas medidas son validas para las actividades en las cuales los trabajadores entran
en contacto directo con el virus de la influenza aviar altamente patógena. El contacto
directo puede ocurrir en el manipuleo de aves enfermas o sospechosas o durante
el desarrollo de actividades que impliquen el contacto con fluidos o excreciones de
animales.
Los animales infectados eliminan el virus con todas sus excreciones, particularmente la materia fecal es altamente infecciosa. El contagio en el hombre
se puede producir tanto por vía aerógena como por contacto a través de las
mucosas.
Las actividades que implican un contacto directo con el virus de la influenza aviar
altamente patógena son:
●
El manipuleo de aves enfermas o sospechosas en granjas avícolas.
●
La práctica de la medicina veterinaria, incluyendo el examen postmortem.
●
El sacrificio de aves.
●
La eliminación de carcazas.
●
Los trabajos de limpieza y desinfección de las granjas contaminadas.
Por lo general se puede considerar a la influenza aviar de alta patogenicidad como
una zoonosis de baja transmisibilidad. Hasta el momento se ha producido el contagio con los subtipos H7N7, H9N2 y H5N1. El contacto directo con los animales infectados y sus productos y materiales contaminados representa entonces un riesgo
potencial.
Medidas de protección para el contacto directo con aves
enfermas o sospechosas
Se han desarrollado una serie de recomendaciones debido a la detección de casos humanos asociados a la epizootia en aves de corral en los países del Sudeste
asiático por el subtipo H5N1. Estas recomendaciones serán actualizadas conforme se vaya disponiendo de información adicional.
37
�Antes de ingresar a áreas avícolas y proceder a la manipulación de aves enfermas y
sospechosas o materiales contaminados, así como en el sacrificio de los animales
enfermos y en los trabajos de limpieza y desinfección, se deberá disponer de equipos de protección personal que serán utilizados durante toda la jornada de trabajo,
mientras dure la exposición al riesgo y se quitarán al salir de las explotaciones y se
desecharán en las mismas o guardarán en contenedores herméticamente cerrados
de tal manera de permitir su posterior limpieza y desinfección en un lugar designado
por el Senasa a tal fin.
Se debe asegurar que todos los trabajadores tengan acceso a los equipos de protección individual (EPIs) y a la información y capacitación para el uso de los mismos. Los
componentes de un equipo de protección individual necesarios para una correcta
protección son:
1. Protección corporal: ropas protectoras, preferiblemente mamelucos desechables con manga larga y ajustables en los extremos más un delantal impermeable.
2. Protección de cabeza: gorro desechable que cubra completamente a los cabellos.
3. Protección de pies: botas de goma o poliuretano que puedan ser desinfectadas,
y preferentemente cubre botas desechables. En el caso de visitas múltiples es
obligatorio el uso de cubrebotas desechables.
4. Protección de manos: guantes protectores desechables (de nitrilo o vinilo) 1 o
guantes de trabajo de goma resistente que puedan desinfectarse; para evitar
dermatitis pueden usarse guantes de algodón por debajo de los guantes protectores.
5. Protección respiratoria: mediante respiradores que cubran boca y nariz. En casos
particulares se podrán requerir equipos de respiración autónoma.
6. Protección ocular: por medio de anteojos protectores, que deben lavarse y desinfectarse después de su uso.
El procedimiento de colocación y retirada del EPI descripto a continuación se basa
en las recomendaciones de la Organización Mundial de la Salud (OMS) con el fin de
reducir al mínimo la posibilidad de auto-contaminación y auto-inoculación. Se han
1
38
Muchos estudios han demostrado que los guantes de nitrilo desechables se sostienen mucho mejor
“en uso” que los guantes de vinilo, que podrían fracturarse y permitir a los virus penetrarlos. Se ha
demostrado que el nitrilo es ligeramente superior a los guantes de goma de látex natural en estudios
similares.
�Manual de Procedimientos / Influenza Aviar
sugerido también otras alternativas válidas como la que propone el Centro de Control de Enfermedades de Atlanta (CDC) u otras recomendadas por los fabricantes.
La secuencia de colocación del equipo es la siguiente:
Colocarse el mameluco descartable.
Colocarse los cubrebotas, sellar con cinta los extremos al mameluco, si es necesario.
Colocarse el protector respiratorio y verificar su ajuste.
Colocarse el gorro desechable.
Colocarse los anteojos protectores.
Por último, colocarse los guantes, por encima de las mangas de la bata.
La secuencia de retirada del equipo es la siguiente:
Retirar los anteojos protectores.
Retirar el gorro.
Retirar la bata y cubrebotas.
Retirar los guantes protectores, y evitar el contacto de las superficies contaminadas con piel o mucosas.
Realizar un lavado higiénico de manos.
Retirar la mascarilla, tomándola desde las bandas elásticas, sin tocar la parte
frontal.
Realizar otro lavado higiénico de manos.
●
La higiene de las manos debe consistir en el lavado con agua y jabón por 15 a
20 segundos o el uso de otros procedimientos estándares de desinfección de
las manos.
●
Los EPIs desechables deben ser eliminados adecuadamente, disponiéndolos en
bolsas plásticas y dentro de un recipiente con tapa y cuidando que no contaminen otros lugares. El dispositivo de plástico debe ser cerrado cuidadosamente
antes de su eliminación.
●
Los EPIs no desechables deben almacenarse en bolsas plásticas hasta su posterior limpieza y desinfección.
39
�●
Usar una muda limpia de ropa protectora en cada instalación visitada.
●
Después de visitar una instalación afectada las personas no deben acudir a lugares de reunión pública (bares, restaurantes, etc.) sin haberse duchado, incluyendo lavado del pelo y cambiado de ropa.
Protectores respiratorios
Los protectores respiratorios son los únicos que han sido diseñados para proporcionar protección de las vías respiratorias a los trabajadores dado que poseen un filtro
que impide la penetración de aerosoles del tamaño inferior a una micra y permiten
un ajuste facial necesario para evitar la entrada de aire por los bordes laterales.
Los protectores respiratorios de partículas N-95 2, N-99 y N-100, ofrecen un mínimo
de eficiencia para filtrar el 95%, 99% y 99,97% de las partículas aéreas de una micra o inferiores (libres de aceite) respectivamente y con un ajuste facial adecuado
(menos del 10% de fuga) 3. El uso de los niveles de protección más altos deberá ser
considerado en el caso de gran producción de aerosoles.
Los protectores respiratorios pueden tener o no una válvula. Los protectores respiratorios con válvula, dejan pasar libremente el aire exhalado.
Recomendaciones para el uso de protectores respiratorios
Normas generales
●
Uso individual.
●
Mantener ajustado al marco facial.
●
Desechar cuando se observe roto, cuarteado, sucio o humedecido.
●
Luego de su uso, evitar manipular la parte exterior sin guantes y evitar el contacto
con la cara.
La mascarilla debe cubrir la boca y la nariz y estar sujeta de manera que prevenga la
salida de aire por los lados.
La colocación y retirada de los respiradores ha de ser cuidadosa: la correcta colo2
3
40
El Instituto Nacional de Salud y Seguridad Laboral (NIOSH) de los EE.UU. clasifica a los respiradores en
función de su eficacia de filtración de partículas y resistencia al aceite.
La norma europea para los equipos de protección respiratoria (EN:149:2001) clasifica a los respiradores dependiendo de su eficacia de filtración de partículas y de la fuga total hacia el interior; siendo en
este último caso recomendables los respiradores designados como FFP2 y FFP3, equivalentes a una
protección del respirador N-95 o mayor.
�Manual de Procedimientos / Influenza Aviar
cación del respirador comprende inicialmente el ajuste de las cintas alrededor de la
cabeza, las cuales deben estar apretadas pero cómodas para el operario y se debe
ajustar la varilla metálica alrededor de la nariz, de manera que se amolde al contorno facial y no haya fugas de aire.
Posteriormente se puede realizar una prueba de ajuste perfecto:
1. Cubrir la mascarilla en su totalidad con las manos. Realizar una inspiración forzada con lo que la mascarilla debe deprimirse ligeramente (la tela del respirador se
arrugara, en respiradores sin válvula).
2. Realizar una la expiración forzada, lo que provocará el efecto contrario. El aire no
debe salir a través de la cara, sino de la mascarilla.
Al retirar la mascarilla debe evitarse el contacto con su parte externa y se deben
lavar las manos luego de quitarla y desecharla. NUNCA deben ser llevadas colgadas
alrededor del cuello.
Los protectores respiratorios (N-95, FFP2 y FFP3), aun tratándose de dispositivos
de un solo uso, pueden ser reutilizados por la misma persona siempre que el respirador esté estructuralmente intacto y no esté dañado, manchado, sucio o humedecido. No existen recomendaciones claras respecto al tiempo de duración de los
respiradores, por lo que debemos realizar una utilización racional de ellos según
el tiempo de uso. Si se utiliza de manera continua, un turno de ocho horas sería lo
recomendable.
Se deberá sustituir cuando la respiración sea dificultosa (lo que indica que está obstruido), si está húmedo, sucio o arrugado, ya que disminuye su eficacia.
Prevención médica laboral
Si se tiene una fuerte sospecha o se confirman uno o más brotes de gripe aviar por
subtipo H5N1 u otra cepa de virus de IAAP, los servicios de Salud Pública realizarán
un análisis del riesgo de exposición y determinarán la necesidad de vacunación y/o
terapia antiviral profiláctica y/o vigilancia estrecha para todas las personas y trabajadores con riesgos de exposición.
Los sectores de salud animal y humana colaborarán en la mejor ejecución de las
medidas recomendadas.
41
�Capítulo 7
Procedimientos en plantas de faena
Procedimientos a seguir en plantas frigoríficas de aves ante
la sospecha o confirmación de presencia de influenza aviar
En el caso de que el inspector veterinario asignado a la planta de faena reciba una
comunicación del veterinario oficial del servicio de campo en la que se indica que
un determinado lote de aves que ha sido enviado a faena a esa planta con su autorización, proviene de una zona donde se ha detectado un foco o de una zona que
se encuentra bajo vigilancia por sospecha o confirmación de la ocurrencia de una
enfermedad exótica tal como la influenza aviar, se deberá proceder como a continuación se detalla:
1) Identificación del o los lotes indicados.
2) Autorizar la faena de ese o esos lotes al final de la faena del día.
3) Garantizar que se realice una intensa limpieza y desinfección de la línea de faena
al concluir la misma.
4) Garantizar que se realice la limpieza y desinfección en forma intensiva de los
camiones que fueron utilizados para el transporte de esos lotes, antes de que los
mismos se retiren de la planta.
5) Identificar la partida faenada a fin de que la misma se destine a subproductos
cocidos, harinas, u otros cuyo proceso de elaboración incluya la aplicación de
temperatura suficiente de manera que garantice la destrucción de los agentes
causales de enfermedad.
En el caso de que el inspector veterinario no hubiera recibido comunicación, pero observase en la inspección pre-mortem que las aves presentan síntomas compatibles
con la influenza aviar (síntomas respiratorios, nerviosos, plumaje erizado, presencia
de aves muertas, etc.), deberá proceder como a continuación se detalla:
a) Extraer muestras de las aves del lote sospechoso tal como se indica en el
Capítulo 9 del presente Manual y enviar las mismas al laboratorio del Senasa,
con carácter de urgente y a fin de que se confirme o no la sospecha.
b) Avisar al veterinario de la oficina del Senasa que corresponde a la zona de de
origen de las aves.
42
�Manual de Procedimientos / Influenza Aviar
c) En cuanto a la faena del lote, proceder como se indica en los puntos 1) a 4) del
párrafo anterior.
d) Identificar las carcazas una vez faenadas apartadas de otras aves en cámara, a
la espera de los resultados del laboratorio.
e) De confirmarse el diagnóstico por pruebas de laboratorio (de influenza aviar o de
otra enfermedad tal como la enfermedad de Newcastle), deberá cumplirse con lo
indicado en el punto 5) del párrafo anterior.
f) Si el resultado del laboratorio no confirmase el diagnóstico de influenza aviar u
otra enfermedad tal como la enfermedad de Newcastle, y de evaluarse que la carne o carcazas cumplen con las condiciones de higiene y sanidad, la mercadería
podrá ser liberada para su comercialización.
43
�Capítulo 8
Repoblación y centinelización
La introducción de aves de corral en explotaciones que hallan sido despobladas
como consecuencia de las medidas de control y erradicación implementadas, sólo
podrá realizarse una vez que hayan sido levantadas las medidas de restricción a los
movimientos en la zona de foco y vigilancia y se haya demostrado la ausencia de
actividad viral en las explotaciones previamente infectadas.
El procedimiento a seguir para demostrar la ausencia de actividad viral en las explotaciones afectadas podrá realizarse mediante la centinelización.
El procedimiento de centinelización comprende la introducción de aves centinelas o
testigos a las explotaciones previamente infectadas y la demostración de ausencia
de actividad viral en dichas aves.
El procedimiento se realizará con las siguientes pautas generales:
1. Las aves centinelas serán introducidas en la explotación o establecimiento por
decisión del Senasa y con autorización, bajo supervisión del personal del Senasa. Se deberá:
- Introducir preferentemente aves libres de patógenos específicos (SPF) y/o
que hayan dado resultados serológicos negativos respecto de influenza aviar,
dentro de los 14 días anteriores a su introducción.
- Tener como mínimo 3 semanas de edad.
- Estar identificadas o marcadas.
2. Se introducirá un número de aves centinelas equivalente a un rango del 1% al 5%
de la capacidad instalada de cada galpón.
3. En cualquier caso el número de aves centinelas a introducir no podrá ser menor
a DIEZ (10).
4. Deberán haber pasado como mínimo 21 días posteriores a la finalización de las
tareas de limpieza y desinfección.
5. Las aves deberán tener acceso y contacto con toda la superficie del galpón o
gallinero, para lo cual se forzará a su contacto mediante el uso de corrales o
desplazamiento por paredes ajustables.
6. Las aves centinelas permanecerán en la explotación por un mínimo de 21 días.
44
�Manual de Procedimientos / Influenza Aviar
7. Se realizará un examen clínico supervisado por el personal del Senasa al menos
una vez por semana y se someterán a exámenes de laboratorio serológicos y
virológicos a la totalidad de las aves centinelas a los 15 y/o 21 días, y en forma
periódica mientras permanezcan en la explotación.
8. Todas las aves que mueran durante dicho período serán sometidas a exámenes
de laboratorio (patológicos y virológicos) para descartar IA.
9. Una vez transcurrido el período estimado las aves no deberán presentar signos
clínicos ni diagnóstico de laboratorio compatible con influenza aviar para considerar que la enfermedad ha sido erradicada.
45
�Capítulo 9
Toma de muestras, conservación y
acondicionamiento
Consideraciones generales
1. Los tipos de muestras para proceder al diagnóstico de influenza aviar son, para
la identificación del agente: hisopados de orofaringe, de tráquea y / o de cloaca
(o heces) de aves vivas; distintos órganos (cerebro, bazo, pulmones, hígado, intestino) y/o contenido intestinal de aves muertas. Para las pruebas serológicas
se utilizan muestras de sangre coagulada o suero.
2. Se debe obtener y enviar los antecedentes del establecimiento o predio avícola y
remitirla en el formulario que se adjunta por vía fax a la Coordinación de Laboratorio Animal de la Dirección de Laboratorios y Control Técnico del Senasa.
3. Asegurarse de disponer del material necesario previo a la toma de muestras.
Tener frascos y tubos disponibles individualmente para cada ave muestreada.
4. De proceder a realizar necropsias se debe seleccionar el lugar adecuado para
las mismas, y garantizar la bioseguridad de las maniobras en cuanto a vestimenta, eliminación de desechos (por incineración o entierro) y desinfección total del
área de trabajo.
5. Las muestras deberán ser entregadas en mano en el Laboratorio por una persona responsable a la mayor brevedad posible, en condiciones de bioseguridad. NO
enviar por correo, comisionista u otros.
Materiales para la toma de muestras
Tubos de sangrado con tapón de goma o viales tipo eppendorf de 1,5 ml, preferentemente siliconados.
Hisopos estériles de mango plástico.
Jeringas de plástico estériles de 1 ml (para aves de tamaño pequeño) y 2,5 o 3
ml (para aves de tamaño mediano y grande).
Agujas hipodérmicas estériles de calibre 25G (15/5) o 27G (15/3) para aves de
pequeño tamaño y de calibre 21G (25/8) para aves de mayor tamaño.
46
�Manual de Procedimientos / Influenza Aviar
Solución tampón salino isotónico (PBS), pH 7, 2-7,4 ó solución isotónica de cloruro de sodio (solución fisiológica estéril)
Tijera.
Etiquetas, tela adhesiva o cinta de papel.
Bolsas de nylon de 10 x 20 cm.
Marcador indeleble.
Alcohol etílico 96°.
Algodón y toallas de papel.
Conservadora con refrigerantes.
Solución desinfectante (Solución de iodopovidona, clorhexidina, etc.)
Gradillas.
Equipo de protección personal.
Material para necropsia: material impermeable y desechable para apoyar las
aves, tijera para necropsia de aves, pinzas de mano izquierda, pinzas hemostáticas, nylon para sutura.
Métodos para la extracción de muestras
a. Hisopado cloacal, orofaríngeo o traqueal:
1. Rotular los tubos o viales.
2. Colocar unas gotas de solución fisiológica o solución PBS en cada tubo
(aproximadamente 0,5 ml), para asegurar la humedad de la muestra.
3. Humedecer el hisopo en la solución fisiológica o solución PBS.
4. Para obtener el hisopado cloacal: levantar las plumas de la cola, despejando la zona cloacal e introducir el hisopo en la cloaca, rotar suavemente el
hisopo dos o tres veces hasta obtener una muestra abundante. Obtener un
hisopo por ave.
5. Para obtener un hisopo orofaríngeo o traqueal: levantar la cabeza del ave,
abrir el pico e introducir el hisopo en la orofaringe o bien extraer suavemente la lengua para visualizar el orificio traqueal e introducir el hisopo en la
traquea. Rotar suavemente el hisopo dos o tres veces y obtener un hisopo
por ave.
47
�6. Colocar el hisopo conteniendo la muestra en el tubo o vial previamente identificado, sumergido en la solución fisiológica o solución PBS.
7. NO colocar en el mismo tubo hisopos cloacales y traqueales.
8. Según el tipo de tubo utilizado, podrán remitirse muestras individuales de
UN hisopo por cada tubo o bien pooles de hasta CINCO hisopos por tubo,
siempre que se correspondan a un mismo predio.
9. Refrigerar inmediatamente a temperatura de heladera (4° a 8° C) y remitir
refrigerado en el mismo día de la toma de muestras (NO CONGELAR).
10.
Los tubos deberán estar identificados individualmente y en paquetes por
lote y deberán estar acompañados por el protocolo correspondiente de
acuerdo al modelo adjunto.
b. Sangre o suero:
Extracción de sangre en pollos, gallinas domésticas u otras aves domésticas o silvestres de tamaño mediano y grande: “Extracción de sangre por la vena alar”.
1. Para facilitar la obtención de suero, se recomienda el uso de viales tipo eppendorf siliconados.
2. Se requiere una muestra de sangre de cada ave por tubo, el cual debe estar
previamente identificado.
3. Colocar el ave en posición de decúbito lateral o ventral, extendiendo el ala,
humedecer con algodón embebido en alcohol la cara ventral del ala y/o remover las plumas sobre la base ósea del eje humeral para permitir la identificación de la vena alar.
4. Insertar suavemente la aguja calibre 21G acoplada a una jeringa de 2,5 o
5 ml y aspirar levemente para evitar el colapso de la vena alar. Obtener un
volumen de al menos 1 ml de sangre.
5. Las muestras de sangre preferentemente deben centrifugarse y enviarse
suero libre de hemólisis. En caso de no disponer de centrifuga, las muestras
de sangre obtenidas deben dejarse a temperatura ambiente por dos o tres
horas para favorecer la formación del coágulo y liberación del suero.
6. Una vez obtenido el suero refrigerar a temperatura de heladera y remitir refrigerado (sangre o suero) o congelado (suero) a la mayor brevedad.
7. Deberán tomarse muestras de sangre de todas las aves cuando el lote esté
48
�Manual de Procedimientos / Influenza Aviar
compuesto de menos de 20 animales y muestras de 20 aves cuando el lote
sea mayor (de este modo, la posibilidad de detectar al menos un suero positivo será de 99 % sí el 25 % o más de la manada es positivo independientemente del tamaño de ésta).
Extracción de sangre en aves domésticas o silvestres de tamaño pequeño: “Extracción de sangre por la vena yugular”.
1. Tomar el ave con la mano izquierda, colocando su cabeza entre el dedo índice y mayor (flexionando ligeramente el cuello hacia la izquierda del ave) y
ambas patas entre el dedo anular y meñique, las alas deben quedar comprimidas en la palma de la mano.
2. Con unas gotas de alcohol humedecer la zona lateral del cuello y con el
pulgar izquierdo ingurgitar suavemente la vena yugular derecha (realizar presión en forma paralela a la misma).
3. Con la mano derecha insertar la aguja calibre 25G o 27G acoplada a una
jeringa de 1 ml, extraer un volumen del 1% del peso corporal.
4. Al retirar la aguja, comprimir ligeramente hasta lograr la hemostasia.
c. Órganos:
1. No se describirá en este apartado la técnica de necropsia en aves y extracción de muestras de órganos, debiendo ser realizada por técnicos con experiencia.
2. En caso de proceder a realizar la necropsia, examinar y obtener muestras
en forma aséptica de aves recientemente sacrificadas con distintas etapas
de enfermedad clínica, en una cantidad que sea muestra representativa de
la población afectada, asignándoles números correlativos a fin de identificar
frascos y protocolos de necropsia.
3. Los tejidos frescos para el aislamiento viral tales como hígado, bazo, tráquea,
pulmón o cerebro, deben ser obtenidos de aves recientemente sacrificadas
o muertas por la enfermedad con no más de 8 hs. post mortem (tiempo que
deberá ser menor si la temperatura ambiental es elevada).
4. Se deberán colocar distintos órganos de una misma ave en un frasco. De
enviar intestino o contenido intestinal, hacerlo en un frasco aparte.
5. Las muestras deben estar bien cerradas en recipientes herméticos con tapa
a rosca y sellados. Se debe asegurar que las superficies externas se decon-
49
�taminen adecuadamente. Enviar refrigerado.
6. En caso de no proceder a la necropsia, se podrá remitir muestras de hisopados y suero de aves enfermas o agónicas y aves con sintomatología recientemente sacrificadas, sin abrir, envueltas individualmente en triple bolsa
plástica y enviadas refrigeradas.
Conservación de las muestras
a. Hisopados.
Los puntos críticos para la conservación de los hisopados cloacales o traqueales
para el aislamiento viral son: la temperatura de conservación y la demora en su
envío. Las muestras obtenidas a campo deben conservarse a temperatura de
heladera, entre 4° y 8° C. El tiempo máximo desde la toma de muestras hasta
su recepción en la Mesa de Entrada del Laboratorio no debe superar las 72 hs.,
idealmente debe ser menor a 24 hs.
Como consecuencia de una incorrecta conservación de las muestras, ya sea por
demora en su envío o temperatura inadecuada, existe el riesgo de obtener falsos
negativos.
b. Sueros.
Deben remitirse en lo posible, sólo sueros límpidos, no hemolisados (de color rojo
o marrón verdoso) ni contaminados (de aspecto turbio).
La centrifugación, no es un procedimiento excluyente para que las muestras
sean viables. En caso de no disponer de centrífuga, mantener los tubos con la
sangre a temperatura ambiente por 2 ó 3 horas hasta la liberación del suero.
Se recomienda despegar el coágulo de las paredes del tubo o vial de no disponer
de tubos siliconados.
Los sueros pueden ser mantenidos a temperatura de heladera (entre 4° y 8 °C)
durante 7 días como máximo o bien congelarse a menos 20 °C, manteniéndose
en temperatura sin sufrir cambios. La sangre entera NO debe congelarse.
Acondicionamiento de las muestras para su envío
Las muestras deben ser acondicionadas bajo normas de bioseguridad. El embalaje
debe evitar la fuga de material infeccioso por rotura o mal empaque del envío.
Las muestras deben ser enviadas en un sistema de triple embalaje. El sistema de
tres envases consta de:
50
�Manual de Procedimientos / Influenza Aviar
1. Un recipiente primario a prueba de agua, bien cerrado (tubo, vial o frasco con
tapa a rosca), en el cual se colocará la muestra.
2. Un recipiente secundario resistente y a prueba de agua.
3. Un recipiente terciario o envoltorio externo.
El espacio entre el recipiente primario y secundario debe llenarse con material absorbente (algodón o toallas de papel), para contener el material del recipiente primario, en caso de que ocurra una pérdida durante el transporte.
Los protocolos y otro tipo de información, deben ser pegados con cinta adhesiva en
el exterior del recipiente secundario. El hielo común o hielo seco debe colocarse en el
exterior del recipiente secundario en un envase a prueba de fuga de líquido.
Como recipiente terciario pueden usarse cajas conservadoras de telgopor de un espesor adecuado (2,5 cm o mayor), esta caja térmica podrá ser colocada en otra caja
de cartón (cuatro envases).
El empaque externo debe sellarse e identificarse debidamente indicando el remitente, destinatario, fecha y hora de envío. Es recomendable también, colocar en la caja
de transporte una leyenda externa, bien visible: “IMPORTANTE: CONTIENE MATERIAL
BIOLOGICO PARA DIAGNOSTICO AVIAR. TIEMPO DE ENVIO Y TEMPERATURA CRITICOS.
ENTREGAR URGENTE AL DEPARTAMENTO DE AVES DE LA DILAB SENASA”.
La parte externa de los recipientes debe ser cuidadosamente examinada y debe
limpiarse y desinfectarse previo a su envío.
Por otra parte, es aconsejable una buena coordinación entre quien envía y quien
recibe el material biológico, de manera que la muestra llegue a tiempo y en buenas
condiciones. Es conveniente realizar arreglos con el destinatario, previo al envío,
para asegurarse de que las muestras sean adecuadamente conservadas.
51
�Capítulo 10
Diagnóstico de laboratorio
En este apartado no se describirá el tratamiento de las muestras ni el procedimiento detallado de las técnicas analíticas para el diagnostico de la influenza aviar, las
cuales se encuentran contenidas en los manuales del laboratorio de la Dirección de
Laboratorio y Control Técnico del Senasa. Estos últimos siguen los lineamentos de
los laboratorios de referencia internacional para diagnóstico de influenza aviar.
Se describen a continuación las pruebas de laboratorio que se realizan en la DILAB
para el diagnóstico virológico y serológico de Influenza aviar.
Diagnóstico virológico
Aislamiento en embriones de gallina libres de patógenos específicos
Las muestras de hisopados cloacales y/o traqueales, materia fecal y/o el pool de
órganos (bazo, hígado, plumón, cerebro, etc.) son procesadas e inoculadas en la cavidad alantoidea de, al menos, 4 huevos embrionados de gallina libres de patógenos
específicos (SPF) de 9 a 11 días de edad.
Luego de su incubación y pasajes ciegos, los fluidos alantoideos amnióticos se someten a la prueba de hemoaglutinación (HA).
Si la prueba de HA resulta positiva:
1. Se verifica la esterilidad de los líquidos embrionados que han reaccionado a la
prueba de HA.
2. Los fluidos hemoaglutinantes se someten a las pruebas de inhibición de hemoaglutinación con un antisuero policlonal específico para el virus de la enfermedad
de Newcastle para descartar la citada enfermedad.
3. Como rutina en el procedimiento diagnóstico de la totalidad de las muestras,
se realiza la prueba de ELISA de captura de antígeno para influenza aviar, utilizando kits comerciales, con el fin de tener una confirmación rápida y segura a
partir de los fluidos alantoideos.
Diagnóstico molecular, se realiza por la prueba de Transcripción Reversa - Reacción en Cadena de la Polimerasa (RRT-PCR), para su caracterización en influenza
tipo A, y subtipos H5 y H7.
52
�Manual de Procedimientos / Influenza Aviar
La caracterización de la patogenicidad se realiza mediante la inoculación del
líquido alantoideo estéril de los embriones inoculados, por vía intravenosa (IPIV)
a aves SPF de 4 a 6 semanas de edad. Se considerará una cepa de alta patogenicidad aquella con índice IPIV igual o superior a 1,2.
Pruebas serológicas
Como la enfermedad es exótica y se desconoce el suptipo que puede aparecer se
utiliza la prueba de inmunodifusión doble en agar (AGID) y/o ELISA indirecto, para
detectar, si se presentan, anticuerpos dirigidos a antígenos específicos de grupo.
Para la realización del test de ELISA indirecto se utiliza un kit comercial para diagnóstico de IA en pollos y pavos. Los resultados se informan como positivos o negativos.
Las muestras positivas son reconfirmadas por la técnica de AGID.
La inmunodifusión en agar gel es una determinación cuantitativa de anticuerpos
contra influenza aviar. Se debe tener en cuenta que no todas las especies aviares
pueden producir anticuerpos precipitantes seguidos a la infección de influenza aviar.
Los resultados de sueros sometidos a la prueba de AGID se informan como positivo,
negativo, débil positivo o inespecífico.
La prueba de inhibición de la hemoaglutinación (HI), se utiliza para determinar los
niveles de anticuerpos específicos para los subtipos H5 y H7 en aves silvestres o en
gallináceas que hayan resultado positivas a la prueba de AGID y/o Elisa indirecto. Los
títulos iguales o superiores a 16 son considerados positivos.
Confirmación
La Dirección de Laboratorios y Control Técnico del Senasa podrá recurrir, de evaluarlo necesario, a la remisión de muestras a los laboratorios de referencia internacional
para la influenza aviar a fin de obtener la colaboración correspondiente en el diagnóstico de la enfermedad.
Las muestras que resultaran positivas se derivarán a estos laboratorios internacionales de referencia para su confirmación, caracterización definitiva y secuenciación.
53
�Capítulo 11
Investigación epizootiológica
A. Información general
1. Datos de la explotación avícola:
Consignar especie y tipo de actividad.
Consignar nombre del establecimiento, domicilio y teléfono, número de
Renspa y coordenadas geográficas.
Propietario del establecimiento: consignar nombre, domicilio y teléfono.
Veterinario responsable: consignar nombre, domicilio y teléfono.
Propietario de las aves en sistemas de producción integrados: consignar
nombre de la integración, dirección comercial y teléfono.
Supervisor de zona o recorredor: consignar nombre, domicilio y teléfono.
2. Información de las aves en la explotación industrial:
Fecha de ingreso.
Número de crianza o número de lote.
Plantel de origen de las aves.
Planta de incubación de origen.
Número total de aves.
Cantidad de galpones.
Superficie (m² cubiertos).
3. Edad y número de aves en cada galpón:
Consignar por galpón, la edad de las aves, el número total de aves, el
número de aves enfermas (%) y el número de aves muertas (%).
4. Presencia de otros animales en el establecimiento:
Incluir otras especies de aves, animales de compañía, cerdos, bovinos,
54
�Manual de Procedimientos / Influenza Aviar
ovinos, equinos, etc. Consignar especie, raza, número total en la explotación, sexo y edad.
5. Realizar un croquis del lugar, indicando:
Las distancias en metros, el norte, los edificios, los galpones, las rutas, los
caminos, las vías ferroviarias, los riachuelos, los lagos y lagunas, los senderos, las tierras cultivadas y otros caracteres topográficos relevantes.
B. Signos clínicos, tratamientos y vacunaciones
1. Fecha en la cual se observan los primeros signos o lesiones por la persona
encargada de cuidar las aves.
2. La mortandad o enfermedad es reportada por (indicar granjero, veterinario,
supervisor, etc., e indicar nombre, dirección, teléfono y fecha de reporte).
3. ¿Murieron o fueron destruidos animales por causas de signos clínicos severos desde la aparición de la enfermedad?
4. Describir los signos clínicos y las lesiones que observe así como las descriptas por el propietario y por los otros veterinarios que visitaron el establecimiento antes que usted. Resumen de tratamientos durante los últimos
30 días. Consignar producto utilizado, fecha de inicio y finalización del tratamiento, cantidad de animales tratados, dosificación y vía de aplicación.
Indicar motivo por el cual se suministró y nombre del veterinario que lo indicó
y de la persona que lo administró.
5. ¿Se ha realizado vacunación? ( ) Sí ( ) No.
-
Resumen de vacunaciones durante los últimos 30 días.
-
Consignar fecha de vacunación, tipo de vacuna, nombre comercial, número de serie, vía de administración, cantidad de animales vacunados.
C. Posible fuente de infección
1. Movimientos de animales vivos hacia el establecimiento:
a) Movimiento de aves hacia el establecimiento durante los últimos 30 días
(incluir las estadías temporarias). Consignar fecha, especie, número de
animales, edad, sexo, lugar de origen o de compra.
b) Movimiento de otras especies de animales hacia el establecimiento en
los últimos 30 días. Consignar fecha, especie, número de animales movilizados, edad, sexo, lugar de origen.
55
�2. ¿Los lugares se encuentran cerca de un zoológico, laguna, cotos de caza o
de otra fuente posible de contaminación? Sí ( ) No ( ).
En caso de respuesta afirmativa, indicar esta fuente, el lugar y la distancia
además de los detalles sobre las visitas y contactos recientes.
3. ¿Miembros de la familia, o empleados y sus familias visitaron un país extranjero en el último año? Sí ( ) No ( ).
Consignar lugar de residencia.
4. ¿Visitaron residentes de países extranjeros a la familia o empleados y sus
familias en el último año? Sí ( ) No ( ).
Consignar lugar de residencia. En caso de respuesta afirmativa, dar el nombre de las personas, el país de origen, las fechas de su estadía e indicar si
ellos volvieron con carne o con productos derivados de la carne (precisar
cuáles son).
5. ¿Miembros de la familia, empleados o su familia recibieron del extranjero productos alimenticios en el transcurso de los últimos doce meses? Si ( ) No ( ).
En caso de respuesta afirmativa, dar el nombre de las personas, fechas, tipo
de alimento, país de origen e indicar el uso de dicho producto alimenticio.
6. ¿Se importaron y utilizaron maquinarias y equipo agrícola en el establecimiento? Sí ( ) No ( )
En caso de respuesta afirmativa, indicar el país de origen y la fecha de adquisición, indicar como se dispuso de las cajas y materiales de embalaje.
7. Describir la fuente y calidad de agua para las aves.
8. Indicar el nombre, dirección y teléfono del molino proveedor de alimentos
para el establecimiento.
9. ¿Se introdujeron alimentos para las aves o para otros animales presentes
en el establecimiento de otro origen diferente al habitual durante los últimos
doce meses? Si ( ) No ( )
En caso de respuesta afirmativa, indicar los productos, proveedores, nombres y lugares de origen y fecha de compra.
56
�Manual de Procedimientos / Influenza Aviar
10.
¿Los alimentos para las aves estuvieron expuestos a animales o aves silvestres durante su almacenamiento o su utilización? Sí ( ) No ( ).
En caso de respuesta afirmativa, explicar (por ej.: ¿Dónde? ¿Qué animales?, etc.)
11.
¿Se cambió y/o repuso parte de la cama en el transcurso de los últimos
dos meses? Sí ( ) No ( ).
En caso de respuesta afirmativa, indicar nombre y dirección del proveedor,
el origen, tipo de cama, cantidad de la misma, fecha de cambio y de compra y forma de entrega.
12.
¿Los animales de compañía u otras especies animales presentes en el
establecimiento están alimentados con carne de pollo o huevos u otro
alimento no comercial que provenga del exterior? Sí ( ) No ( ).
En caso de respuesta afirmativa, indicar el origen, nombre y dirección del
proveedor, tipo y cantidad de alimento.
13.
¿Se introdujo estiércol del exterior en el transcurso de los últimos dos meses? Sí ( ) No ( ).
En caso de respuesta afirmativa, indicar nombre y dirección del proveedor
u origen del mismo, lugar de abono, forma y fecha.
14.
Según el granjero, ¿cómo se introdujo la enfermedad?
D. Dispersión de la enfermedad
1. Salida de aves vivas durante los últimos 30 días (incluir las salidas temporales, tales como exposiciones). Consignar fecha, cantidad, persona que
realizó el transporte, destino y razón del movimiento.
2. Salida de huevos fértiles o de consumo durante los últimos 30 días. Consignar fecha, cantidad, persona que realizó el transporte, destino y razón del
movimiento.
3. ¿Se sacaron otros productos animales del establecimiento durante los últimos 30 días? Sí ( ) No ( ).
En caso de respuesta afirmativa, describir los productos, la cantidad aproximada, indicar las fechas, por quién fueron sacadas e indicar dónde se encuentran dichos productos actualmente (si se sabe).
57
�4. ¿Salieron y tuvieron acceso a otros establecimientos camiones, maquinarias
u otros equipos, durante los últimos 30 días? (Incluir el material adquirido
temporariamente o prestado). Sí ( ) No ( )
5. ¿Los propietarios del establecimiento o empleados han vivido o trabajado en otros establecimientos durante los últimos 30 días?
Sí ( ) No ( ).
En caso de respuesta afirmativa, indicar los nombres de las personas, las
direcciones y ubicación de los establecimientos, las especies de animales
que se cuidan y las compras o ventas efectuadas durante dicho período, si
se conocen.
6. ¿Los miembros de la familia o la familia de los empleados tienen un empleo
fuera del establecimiento? Sí ( ) No ( )
En caso de respuesta afirmativa, indicar los nombres de las personas, lugares y naturaleza del empleo. Por ejemplo matadero, otra explotación avícola,
planta de incubación, etc.
7. Enumerar los visitantes, su dirección y número de teléfono además de las
fechas y motivo de las visitas durante los dos últimos períodos críticos; mencionar en especial los proveedores de alimentos, comerciantes de animales,
supervisor de zona o recorredor de la empresa integradora (si posee), equipo de vacunación y toda persona que haya estado en la explotación.
8. ¿Se llamó a médicos veterinarios durante los últimos 30 días? Sí ( ) No ( ).
En caso de respuesta afirmativa, indicar los nombres y direcciones, número
de teléfono, fechas y motivos de visita y los resultados (en los animales que
estuvieron tratados, si hubo mejoría, etc.)
9. ¿Se transportó guano o cama de pollo o mortandad fuera del establecimiento durante los últimos 30 días? Sí ( ) No ( ).
En caso de respuesta afirmativa, indicar las fechas, la forma de transporte, el
lugar donde fue enviado o abonado, el nombre y el tipo de animales existentes en el establecimiento al que fue enviado (si posee).
10.
58
¿Hay guano, cama de pollo, aves muertas o sus plumas por las rutas o
�Manual de Procedimientos / Influenza Aviar
caminos, afluentes o lagos comunes o sobre el terreno de los establecimientos vecinos que provienen de otros establecimientos de la región
incluyendo el establecimiento afectado? Sí ( ) No ( ).
En caso de respuesta afirmativa, describir.
11.
¿De qué manera se sacan los desechos o basura de los establecimientos
(incluyendo la basura doméstica)?
- ¿Retirado por los servicios municipales? Sí ( ) No ( )
- ¿Enviado al basurero local? Sí ( ) No ( ).
En caso de respuesta afirmativa, indicar el lugar y la distancia del establecimiento.
- ¿Consumido por los animales? Sí ( ) No ( ).
En caso de respuesta afirmativa, precisar qué animales, etc.
12.
¿Los animales muertos durante los últimos 30 días fueron destruidos?
Sí ( ) No ( )
En caso de respuesta afirmativa, quién se encargó de las carcazas.
59
��PROTOCOLO DE ENFERMEDAD DENUNCIABLE
SISTEMA NACIONAL DE VIGILANCIA EPIDEMIOLOGICA
NOTIFICACION
SOSPECHA
FOCO
PROTOCOLO N°
1-Provincia ............................................... Partido o Depto. .................................................Of. Local .......................
2-RENSPA N° ..................................... RazónSocial y/o Propietario..............................................................................
Establecimiento................................................................. Coord. geograf.: Lat. S ................. Long. O ...................
3-FECHA DE
Notificación: ............./............./..........
Atención:............./............./.............Inicio:......../............./...........
4-ORIGEN DE INTER VENCION
Denuncia Espontánea
Denuncia Terceros
De Oficio
5-POBLACIÓN
Especie
Total
Sanos
Población
Total (A) Examin.
(A)+(B)
Total (B)
Examin.
Muertos
*
Indique con una “X”
Bovinos
H.1año
............................................................................................................................
...............
1a2años
...............................................................................................................................
................
+2 años
SUBTOTAL
Ovinos
........................................................................................................................................
Madres
....................................................................................................................................
Padrillos
....................................................................................................................................
Capones
....................................................................................................................................
Cachorros/as
.....................................................................................................................................
Lechones
........................................................................................................................................
Caprinos
........................................................................................................................................
Aves
........................................................................................................................................
Equinos
TOTAL
Porcinos
ORIGINAL
6-CATEGORIA DONDE SE
INICIO LA ENFERMEDAD
Enfermos
7-SINTOMAS Y LESIONES
(*): marcar con una “X” la categoría donde se extrajo la muestra
Lechones
Capones
Cachorros/as
Madres
Padrillos
Ternero
Novillos
Vaquillonas
Vacas
Toros
Bueyes
Ovinos
Porcinos
Caprinos
Gallina de postura
Gallina reproduct.
Pollos
8-MUESTRAS REMITIDAS
CANTIDAD
...............................................................................................................................
.............
...............................................................................................................................
.............
...............................................................................................................................
.............
...............................................................................................................................
.............
...............................................................................................................................
.............
9-DIAGNOSTICO PRESUNTIVO
10-VACUNACIONES
Fecha
...............................................................................
Enfermedad
Marca
Serie
Material en Formol
.............................................
Organosy/o Fluidos
.............................................
Líq. Esof. Faríngeo
.............................................
Hisopados
.............................................
Sueros
.............................................
Sangre
.............................................
Epitelio
.............................................
Amigdalas
.............................................
Ileon
.............................................
Otro
Menores
To tales
Ultima
...............................................................................................................................
...............................................................
Anteúltima
11-OBSERVACIONES .........................................................................................................
..........................................................................................................................................
..........................................................................................................................................
..........................................................................................................................................
..........................................................................................................................................
.......................................................................................................................................... ...........................................
Firma y Aclaración
��DATOS EPIDEMIOLOGICOS
12-TIPO DE EXPLOTACION
a- Cabaña
(indique con una “X” la opción elegida)
b- Cria
f- Mixto
c- Invernada
Acopio
13-CANTIDAD DE POTREROS DEL
ESTABLECIMIENT O CON ANIMALES
e- Engorde a Corral
d- Tambo
Tenencia Familiar
Otros...................................
CANTIDAD DE POTREROS AFECTADOS
14-CONSIGNE LOS DATOS DE INGRESODE ANIMALES DE LOS ULTIMOS 30 (Treinta) DIAS
DTA
Fecha
Provincia
Partido
Departamento
Establecimiento
Feria u Otros
Espe. Cant.
Novedad enOrigen
Si
No
......................................................................................................................................................................................
......................................................................................................................................................................................
......................................................................................................................................................................................
......................................................................................................................................................................................
En aquellos casos en que se manifieste la enfermedad en tropas ingresadas consigne con (*) el ingreso correspondiente e indique
la fecha en que se manifestó la enfermedad ................../................./..................
15-CONSIGNE LOS DATOS DE EGRESO DE ANIMALES DE LOS ULTIMOS 30 (Treinta) DIAS
DTA
Fecha
Provincia
Partido
Departamento
Establecimiento
Feria u Otros
Espe. Cant.
Aviso a Destino
(*)
Fecha
.....................................................................................................................................................................................
.....................................................................................................................................................................................
.....................................................................................................................................................................................
.....................................................................................................................................................................................
(*) Consignar SI ó NO, cuando alguna novedad sanitaria en destino, según corresponda.
16-INDIQUE LA/S PROBABLES FUENTES DE CONTAGIO
a) Hay o hubo focos (hasta 30 días antes) en establecimientos linderos.
b) Hay o hubo focos (hasta 30 días antes) en establecimiento en un radio de ... km, de donde desaparecieron los primeros enfermos.
c) Hay una feria, embarcadero de hacienda, playa de frigorífico u otro sitio de concentración de hacienda en el área focal, perifocal
o de vigilancia.
d) Se realizaron movimientos o trabajos en el establecimiento dentro de los 30 días previos a la aparición de la enfermedad.
En caso afirmativo, indicar si fueron: Arreos, Transporte en camión, Balneaciones, Castraciones, Veterinario, Marcaciones,
Movimiento de maquinaria agrícola, Otros .......................................................(tachar lo que no corresponda).
17-HIPOTESIS PRELIMINAR DE INGRESO DE LA ENFERMEDAD
...............................................................................................................................
.................................................................
...............................................................................................................................
.................................................................
...............................................................................................................................
.................................................................
N° Predios Area Perifocal
18-DEL AREA PERIFOCAL
N° Susceptibles Area Perifocal
TOTAL GENERAL
��RENSPA
Nº
Especie
Fecha
Entrada Nº
Edad
Sexo
H M
Raza
Propietario............................................................................................................... Dirección: ..................................................................
........................................................................................................... Localidad........................................................................................
Partido/Depto.: ......................................................................................................................... Telefax: ....................................................
Remitente:............................................................................................................... Dirección: ..................................................................
........................................................................................................... Localidad........................................................................................
Partido/Depto.: ......................................................................................................................... Telefax: ....................................................
Animal
Vivo
Historia Clínica:
Muerto
Fecha y Hora de la Muerte..................................................................................
(Signos, tratamientos, morbilidad, mortalidad, etc.)
Diagnóstico Clínico Presuntivo..................................................................................................................................................................
Veterinario Clínico: ........................................................................Veterinario Necropsista:........................................................................
DESCRIPCION DE ALTERACIONES MACROSCOPICAS
(Describir indicando forma, tamaño en cm o mm, color, consistencia, cantidad y localización)
Exterior
(Piel, ojos, orejas, tejido subcutáneo, etc.)
Sistema Respiratorio (Nariz, seños, laringe, tráquea, pulmones, pleura)
Sistema Circulatorio
Sistema Digestivo
(Corazón, arterias, venas y vasos linfáticos)
(Boca, faringe, esófago, intestino, recto, páncreas y peritoneo)
Sistema Hemopoyético
Sistema Urinario
(Ganglios, bazo, amígdalas, médula ósea, timo; indicar localización de linfonódulos afectados)
(Riñones, uréteres, vejiga, uretra)
Sistema Genital: Masculino (Testículos, epidídimo, vesículas seminales, próstata, pene, prepucio) Femenino (ovarios, útero, vagina, vulva, glándulas mamarias)
Sistema Endocrino
Sistema Locomotor
(Hipófisis, adrenales, tiroides, paratiroides)
(Músculos, huesos y articulaciones)
Sistema Nervioso (Cerebro, cerebelo, médula espinal, meninges, nervios)
Diagnóstico Presuntivo:
Análisis Complementarios
Bacteriología
Parasitológicos
Hematología
Serológicos
Virología
Otros
Estudio Histopatológico (Indicar tejidos muestreados)
C.120
Diagnóstico Final:
Lugar y Fecha:..............................................................................
Aclaración Firma..........................................................................
.............................................................................................
Firma
��ESTUDIO DE ENFERMEDAD DENUNCIABLE - INFORME FINAL
SISTEMA NACIONAL DE VIGILANCIA EPIDEMIOLOGICA
Notificación
Sospecha
PROTOCOLO N°
Foco
UBICACION
1-Provincia ............................................... Partido o Depto. .................................................Of. Local .......................
PRODUCTOR
2-RENSPA N° ..................................... RazónSocial y/o Propietario..............................................................................
Establecimiento................................................................. Coord. geograf.: Lat. S ................. Long. O ...................
FECHA DE ULTIMO
ANIMAL ENFERMO
FECHA LEVANTAMIENTO
............./............./..........
DE LA INTERDICCION
............./............./..........
FECHA DE LAS VISIT AS
CANTIDAD DE VISITAS
AL ESTABLECIMIENTO
Enfermos
Bovinos
H.1año
.........................................................................
1a2años
.........................................................................
+2 años
SUBTOTAL
Porcinos
Ovinos
................................................................................
Madres
...........................................................................
Padrillos
...........................................................................
Capones
............................................................................
Cachorros/as
............................................................................
Lechones
...............................................................................
Caprinos
................................................................................
Aves
................................................................................
Equinos
................................................................................
OTROS
TOTAL
CANTIDAD DE ESTABLECIMIENTOS
VISITADOS DURANTE EL
RASTREO EPIDEMIOLOGICO
Especie
Muertos
Total
H.1año
................................
1a2años
................................ CANTIDAD DE POTREROS
AFECTADOS
+2 años
SUBTOTAL
Ovinos
.......................................
Madres
..................................
Padrillos
..................................
Capones
...................................
CANTIDAD DE ESTABLECICachorros/as
...................................
Bovinos
Total
............./............./..........
............./............./..........
............./............./..........
............./............./..........
............./............./..........
............./............./..........
CANTIDAD DE SUSCEPTIBLES
VACUNADOS EN AREA PERIFOCAL
DETALLE DE ANIMALES SANOS Y
MUERTOS AL FINAL DEL PROCESO
Porcinos
ORIGINAL
EVOLUCION DE LA
ENFERMEDAD EN DIAS
Especie
1
2
3
4
5
6
Lechones
.......................................
Caprinos
.......................................
Aves
.......................................
Equinos
.......................................
OTROS
TOTAL
CANTIDAD DE ESTABLECIMIENTOS INTERDICTOS
EN LA ACTUACION
MIENTOS VACUNADOS EN
AREA PERIFOCAL
CANTIDAD DE ESTABLECIMIENTOS CON
FIEBRE AFTOSA DETECTADOS
EN EL RASTREO EPIDEMIOLOGICO
OBSERVACIONES...................................................................................................................................................
................................................................................................................................................................................
................................................................................................................................................................................
................................................................................................................................................................................
Fecha:............./ ............../ ....................
...........................................................................................
Firma y SelloVeterinario Responsable
��ENVIO DE MUESTRAS DE ENFERMEDAD DENUNCIABLE AL LABORATORIO
SISTEMA NACIONAL DE VIGILANCIA EPIDEMIOLOGICA
ANEXO IV
Notificación
Sospecha
Foco
PROTOCOLO N°
1-Provincia ............................................... Partido o Depto. .................................................Of. Local .......................
2-RENSPA N° ..................................... RazónSocial y/o Propietario..............................................................................
Establecimiento................................................................. Coord. geograf.: Lat. S ................. Long. O ...................
3-VETERINARIO ACTUANTE
Nombre: .............................................................................................................. Firma
Tel/Fax: ...............................................................................................................
4-Fecha de toma de muestra
: ........../........ / ..........
Fecha de remisión:............/................................
/
5-POBLACION
Especie
6-CATEGORIA DONDE SE INICIO LA ENFERMEDAD
8-MUESTRAS REMITIDAS
Total
Enfermos
Sanos
7-SINTOMAS Y LESIONES
9-DIAGNOSTICO PRESUNTIVO DE L A SOSPECHA
CANTIDAD
Material Formol 10%
............................................
Organos:Hígado
............................................
Riñón
............................................
Bazo
............................................
Vejiga
............................................
Amígdalas
............................................
Ileón
............................................
Hisopados
............................................
Suero
............................................
Sangre
............................................
Otro
Fecha
10-VACUNACIONES
Enfermedad
Marca
Serie
Ultima
...................................................................................................................................
Anteúltima
FECHA DE INGRESO MUESTRA: ....../ .... / ........
11- SOLICITUD DE PRUEBAS
Virológicas
Parasitólogica
Bacteriológicas
Toxonomia
Serológicas
Otros:.....................................
ESPECIFICAR
12-RESULTADO LABORATORIO
Agente Actuante
Serología
Resultado..........................................................................................................
.....................................................................................................................
.....................................................................................................................
.....................................................................................................................
FECHA DEL INFORME: ........./....... / ...........
................................................................................................
Firma y Aclaración
��EDICIONES SENASA
Dr. Carlos Amaya
Presidente
Carlos Casamiquela
Vicepresidente
Diana Guillén
Gerente General
Dr. Jorge Dillon
Director Nacional de Sanidad Animal
Dr. Mariano Ramos
Director de Luchas Sanitarias
Dra. Cora Espinoza
Jefa del Programa de Aves y Granjas
Dra. Cora Espinoza y Dra. Patricia Borgna
Responsables de contenidos
Gabriel Rizzo y Damián Atencio
Diseño y tapa de publicación .
Unidad de Información y
Comunicación Institucional
Av. Paseo Colón 367, Piso 7°frente, C1063ACD
Ciudad Autónoma de Buenos Aires
Tel. (054 11) 4121-5369
E-mail: prensa@senasa.gov.ar
República Argentina, agosto de 2009
�Manual de Procedimientos
Influenza Aviar
La influenza aviar es una enfermedad exótica para la
República Argentina. Por la gravedad de las
características que reviste, se ha elaborado el
presente Manual de Procedimientos, basado en la
Resolución Nº 1078/99, a fin de que ante la posible
detección de un foco o sospecha se tomen las
medidas emergenciales correspondientes.
El presente Manual fue redactado por el personal del
Programa de Enfermedades de Animales de Granja,
de la Dirección Nacional de Sanidad Animal del
Senasa.
Está dirigido principalmente a los veterinarios locales
de la Dirección Nacional de Sanidad Animal del
Servicio y a las autoridades provinciales, municipales
y nacionales encargadas de la aplicación de las
normas de policía sanitaria; por tanto, se centra en
los principios de la enfermedad, su descripción,
aplicaciones de las pruebas de laboratorio,
evaluación de sus resultados, atención de sospechas
y focos, etc.
4FSWJDJP�/BDJPOBM�EF�4BOJEBE�Z�
$BMJEBE�"HSPBMJNFOUBSJB
Dirección Nacional
de Sanidad Animal
Dirección de
Luchas Sanitarias
Av. Paseo Colón 367 C1063ACD
Tel.: 54 11 4121 5000
Ciudad Autónoma de Buenos Aires
República Argentina
�
Dublin Core
The Dublin Core metadata element set is common to all Omeka records, including items, files, and collections. For more information see, http://dublincore.org/documents/dces/.
Title
A name given to the resource
Publicaciones SENASA
Dublin Core
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Title
A name given to the resource
Manual de procedimientos. Influenza aviar
Publisher
An entity responsible for making the resource available
Servicio Nacional de Sanidad y Calidad Agroalimentaria
Date
A point or period of time associated with an event in the lifecycle of the resource
2009
Contributor
An entity responsible for making contributions to the resource
Dirección Nacional de Sanidad Animal
Programa de Enfermedades de Animales de Granja
Relation
A related resource
Resolución Senasa Nº 1078/99
Language
A language of the resource
Es
Type
The nature or genre of the resource
Manual
Identifier
An unambiguous reference to the resource within a given context
B.S.0162
Abstract
A summary of the resource.
La influenza aviar es una enfermedad exótica para la República Argentina. Por la gravedad de las características que reviste, se ha elaborado el presente Manual de Procedimientos, basado en la Resolución Nº 1078/99, a fin de que ante la posible detección de un foco o sospecha se tomen las medidas emergenciales correspondientes.
Table Of Contents
A list of subunits of the resource.
Introducción
Características de la enfermedad
Distribución geográfica
Etiología
Resistencia
Patogenicidad
Cuadro clínico
Reservorios
Transmisión
Potencialidad zoonótica
Población hospedadora
Diagnóstico
Diagnóstico diferencial
Prevención y profilaxis
Capítulo 1
Acciones y procedimientos ante la sospecha o confirmación de enfermedad
Capítulo 2
Vigilancia epidemiológica
Capítulo 3
Investigación epidemiológica
Capítulo 4
Sacrificio sanitario y eliminación
Capítulo 5
Limpieza y desinfección
Capítulo 6
Medidas de protección para los trabajadores
Capítulo 7
Procedimientos en plantas de faena
Capítulo 8
Repoblación y centinelización
Capítulo 9
Toma de muestras, conservación y acondicionamiento
Capítulo 10
Diagnóstico de laboratorio
Capítulo 11
Investigación epizootiológica
Protocolos
Influenza Aviar
-
https://biblioteca.senasa.gob.ar/files/original/410cc5d170e3ee1411650f8e2d9eb4f6.pdf
0a0b134e6f495c06d7da8d6b0106f29f
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DIRECCIÓN NACIONAL DE SANIDAD ANIMAL
DIRECCIÓN DE PLANIFICACIÓN Y ESTRATEGIA DE SANIDAD ANIMAL
COORDINACION GENERAL DE EPIDEMIOLOGIA /PROGRAMA NACIONAL DE SANIDAD AVIAR
PROGRAMA DE VIGILANCIA EPIDEMIOLÓGICA ACTIVA Y PASIVA
DE INFLUENZA AVIAR Y ENFERMEDAD DE NEWCASTLE
EN AVES DE CORRAL Y AVES SILVESTRES
EN LA REPUBLICA ARGENTINA
Programa de Vigilancia Influenza Aviar y Enfermedad de Newcastle 2021
1
�DIRECCIÓN NACIONAL DE SANIDAD ANIMAL
DIRECCIÓN DE PLANIFICACIÓN Y ESTRATEGIA DE SANIDAD ANIMAL
COORDINACION GENERAL DE EPIDEMIOLOGIA /PROGRAMA NACIONAL DE SANIDAD AVIAR
CONTENIDO
1. INTRODUCCIÓN .................................................................................................................................... 3
2. OBJETIVOS DEL SISTEMA DE VIGILANCIA EPIDEMIOLOGICA EN AVES. ................................................ 3
3. SISTEMA DE REGISRO DE EXPLOTACIONES .......................................................................................... 4
4. POBLACION OBJETIVO .......................................................................................................................... 5
5. ESTRATEGIAS DE VIGILANCIA EPIDEMIOLÓGICA.................................................................................. 5
5.1 VIGILANCIA PASIVA ............................................................................................................................ 5
5.2 VIGILANCIA ACTIVA ............................................................................................................................ 6
5.2.1 EN PREDIOS DE AVES DE TRASPATIO .............................................................................................. 6
5.2.2 EN PREDIOS DE AVES DE GALLINAS PONEDORAS ........................................................................... 8
5.2.3 EN NÚCLEOS DE REPRODUCCIÓN ................................................................................................. 10
5.2.4 MUESTREOS COMPLEMENTARIOS ................................................................................................ 10
5.2.5 MUESTREOS OPORTUNÍSTICOS EN AVES SILVESTRES ................................................................... 10
6. DIAGNÓSTICO DE IA Y ENC A PARTIR DE LAS MUESTRAS OBTENIDAS EN LA VIGILANCIA
EPIDEMILÓGICA ...................................................................................................................................... 11
6.1 DIAGNOSTICO DE INFLUENZA AVIAR ............................................................................................... 11
6.2 DIAGNOSTICO DE LA ENFERMEDAD DE NEWCASTLE ....................................................................... 12
FLUJOGRAMA DIAGNOSTICO DE INFLUENZA AVIAR .............................................................................. 13
FLUJOGRAMA DIAGNOSTICO DE ENFERMEDAD DE NEWCASTLE .......................................................... 14
Programa de Vigilancia Influenza Aviar y Enfermedad de Newcastle 2021
2
�DIRECCIÓN NACIONAL DE SANIDAD ANIMAL
DIRECCIÓN DE PLANIFICACIÓN Y ESTRATEGIA DE SANIDAD ANIMAL
COORDINACION GENERAL DE EPIDEMIOLOGIA /PROGRAMA NACIONAL DE SANIDAD AVIAR
1. INTRODUCCIÓN
La República Argentina es considerada libre de Influenza Aviar (IA) y de la
Enfermedad de Newcastle (ENC), dos enfermedades de alto impacto en la
producción y el comercio internacional de productos avícolas. La influenza aviar es
una enfermedad que nunca estuvo presente en nuestro territorio, mientras que la
enfermedad de Newcastle fue diagnosticada por primera vez en 1961 y estuvo
presente hasta 1987, año en el que se registró el último foco en pollos parrilleros.
Diez años después del último foco, Argentina se autodeclaró libre ante la
Organización Mundial de Sanidad Animal (OIE), según lo establece la Resolución
Senasa N° 446/1997.
Para preservar este estatus sanitario, el Programa Nacional de Sanidad Aviar del
Senasa y la Coordinación General de Epidemiología, implementan actividades
enfocadas a la prevención y la detección temprana de estas enfermedades. Entre
dichas acciones las de vigilancia activa resultan de suma importancia dado que
permiten demostrar la ausencia de los agentes causales de ambas enfermedades.
Considerando las posibles vías de ingreso, especialmente para IA, la vigilancia
pasiva en aves silvestres y producciones de traspatio, además de las comerciales,
también constituye una actividad crucial para la detección temprana, a la vez que
robustece la información técnica por la cual se demuestra la ausencia en el
territorio nacional.
El presente documento fue elaborado en forma conjunta por las distintas áreas de
la Dirección Nacional de Sanidad Animal, con la colaboración de la Dirección
General de Laboratorios y Control Técnico del Senasa. El mismo tiene como
objetivo establecer los criterios técnicos y procedimientos empleados en el marco
del sistema de vigilancia epidemiológica para la influenza aviar de notificación
obligatoria y la enfermedad de Newcastle.
2. OBJETIVOS DEL SISTEMA DE VIGILANCIA EPIDEMIOLOGICA EN AVES.
OBJETIVO GENERAL
Demostrar la ausencia de infección y circulación del virus de influenza aviar de
notificación obligatoria (VIA) y de las cepas virulentas o patógenas del Virus de la
enfermedad de Newcastle (VEN) en las aves de corral y silvestres en todo el
territorio nacional.
OBJETIVOS ESPECÍFICOS
Demostrar la ausencia de infección por VIA y VEN en aves de corral consideradas
de mayor riesgo por su sistema de cría.
Programa de Vigilancia Influenza Aviar y Enfermedad de Newcastle 2021
3
�DIRECCIÓN NACIONAL DE SANIDAD ANIMAL
DIRECCIÓN DE PLANIFICACIÓN Y ESTRATEGIA DE SANIDAD ANIMAL
COORDINACION GENERAL DE EPIDEMIOLOGIA /PROGRAMA NACIONAL DE SANIDAD AVIAR
Detectar infecciones de Influenza aviar de baja patogenicidad de los subtipos H5 y
H7, y de alta patogenicidad en aves gallináceas, patos, gansos y aves de caza
anátidas criadas en explotaciones dentro de territorio nacional.
Detectar precozmente la circulación de los VIA y VEN en casos de observación de
signos clínicos compatibles o aumentos de mortalidad o alteraciones en los
parámetros productivos en aves de corral y silvestres.
Detectar la circulación de virus de influenza aviar en aves silvestres de vida libre y
en cautiverio.
3. SISTEMA DE REGISRO DE EXPLOTACIONES
La República Argentina cuenta con un Registro Nacional Sanitario de Productores
Agropecuarios (RENSPA), establecido por la Resolución Senasa Nº 423/2014 del
SERVICIO NACIONAL DE SANIDAD Y CALIDAD AGROALIMENTARIA. Dicho marco
regulatorio establece que todos los productores agropecuarios tienen la obligación
de gestionar el RENSPA de cada una de sus explotaciones productivas
independientemente de la cantidad de animales que la conforman. Debido a la
necesidad de contar con este registro para evitar restricciones de movimientos de
animales asociadas a la producción y al comercio, prácticamente todas las granjas
comerciales de alta escala productiva están incorporadas a este registro nacional.
Por la misma razón, las explotaciones de traspatio, pertenecientes a pequeños
productores que de manera informal comercializan su producción o solo las
conservan para auto consumo, están subregistradas.
A raíz de ello, desde el Senasa, junto con las organizaciones de pequeños
productores y otras instancias nacionales y provinciales abocadas a asistir a los
productores de la agricultura familiar, se llevan a cabo acciones tendientes a
incrementar el registro de aves de traspatio.
Entre dichas acciones el relevamiento de aves y otros animales a través de los
vacunadores que ejecutan las campañas de inmunización contra Fiebre Aftosa y
brucelosis bovina, resulta de enorme valor contributivo. Cada año, en dos
oportunidades, los vacunadores de los Entes Sanitarios que llevan a cabo la
vacunación de bovinos y bubalinos informan o actualizan el stock de otras especies
animales de interés pecuario registrando en el acta de vacunación las existencias de
cada establecimiento visitado en la zona libre de aftosa sin vacunación ante la
declaración bajo juramento del responsable o propietario de los animales.
En las zonas libres de aftosa sin vacunación, la actualización del stock de todas las
especies de la totalidad de los predios se realiza por el productor a través de la
actualización anual con formato de declaración jurada en las Oficinas de Senasa.
Durante el año 2020, a través de los relevamientos anteriormente citados, se
declararon existencias de aves en establecimientos que no poseían declarada la
actividad avícola, hecho que contribuye a subsanar el sub registro identificado.
Programa de Vigilancia Influenza Aviar y Enfermedad de Newcastle 2021
4
�DIRECCIÓN NACIONAL DE SANIDAD ANIMAL
DIRECCIÓN DE PLANIFICACIÓN Y ESTRATEGIA DE SANIDAD ANIMAL
COORDINACION GENERAL DE EPIDEMIOLOGIA /PROGRAMA NACIONAL DE SANIDAD AVIAR
4. POBLACION OBJETIVO
A efectos de este Programa, se consideran los siguientes tipos de explotaciones
aviares: Aves- Recría y Producción de Huevos, Aves-Producción de Huevos, AvesTraspatio, Aves-Reproductoras (abuelas y padres).
No obstante, aunque no están incluidas dentro del programa también podrán ser
muestreadas en circunstancias excepcionales el siguiente tipo de producción:
Aves-Producción carne: cuando la mortandad al final del ciclo sea mayor o igual 10%
se bloqueará la salida de los animales a faena. El Veterinario Acreditado en Sanidad
deberá presentar un informe técnico que indique las causas de lo acontecido. De
presentarse desconformidad con lo demostrado se deberá fiscalizar el
establecimiento y tomar muestras para su posterior diagnóstico de IA/ENC
Dentro de la población de aves silvestres se consideran:
a) Aves silvestres de vida libre. Si bien los anseriformes se consideran las aves más
susceptibles y de mayor importancia desde el punto de vista epidemiológico,
también pueden incluirse en la vigilancia aquellas aves que tienen contactos con
anseriformes y/o aves de los siguientes géneros: galliformes, charadriformes,
phoenicopteriformes, ciconiformes, pelecaniformes, procelariformes, aves
rapaces y ratites.
b) Aves silvestres en cautiverio que pueden tener contacto con aves silvestres de
vida libre (zoológicos o patos de producción extensiva).
c) Aves silvestres que provienen de la vida libre, por ejemplo, incautaciones de
contrabando. Estas aves se pueden analizar cuando se incautan o antes de su
liberación.
Las aves que no deberían incluirse en la vigilancia de IA-ENC en aves silvestres son:
Aves de criadero.
Aves criadas en cautiverio que deben ser liberadas.
Aves silvestres confinadas que no tienen contacto con aves silvestres.
5. ESTRATEGIAS DE VIGILANCIA EPIDEMIOLÓGICA
El Programa de Vigilancia cuenta con un Sistema de Vigilancia que incluye un componente
pasivo y activo, descriptos a continuación:
5.1 VIGILANCIA PASIVA
La variabilidad de los signos clínicos ante casos de la enfermedad de Newcastle o de
influenza aviar de alta y baja patogenicidad, implica la imposibilidad de contar con
orientaciones categóricas en caso de sospecha. Una mortalidad elevada y repentina en
aves de corral o silvestres, ya sea con o sin sintomatología clínica, deberá ser investigada
por el Senasa local y, si amerita, por el laboratorio oficial a partir de muestras
recolectadas para la ocasión.
Programa de Vigilancia Influenza Aviar y Enfermedad de Newcastle 2021
5
�DIRECCIÓN NACIONAL DE SANIDAD ANIMAL
DIRECCIÓN DE PLANIFICACIÓN Y ESTRATEGIA DE SANIDAD ANIMAL
COORDINACION GENERAL DE EPIDEMIOLOGIA /PROGRAMA NACIONAL DE SANIDAD AVIAR
Un diagnóstico presuntivo de enfermedad clínica en poblaciones supuestamente
infectadas, deberá confirmarse siempre mediante pruebas diagnósticas virológicas en el
laboratorio Central de Senasa.
La decisión de considerar como sospechosa a una explotación de influenza aviar/
enfermedad de Newcastle se basará en las siguientes observaciones y criterios:
a) Observaciones clínicas y patológicas en las aves de cría:
1. La reducción de la ingesta de alimento y agua superior al 20%, sin justificar.
2. La reducción de la producción de huevos superior al 5% durante más de dos días, sin
justificar.
3. Un índice de mortalidad semanal superior a un 3%, sin justificar.
4. Un índice de mortalidad de fin de ciclo en pollos de engorde mayor o igual al 10%, sin
justificar o justificación insuficiente.
5. Todo indicio clínico o lesión post-mortem que sugiera la presencia de IA /ENC
b) Observaciones epidemiológicas:
1. Si las aves han estado en contacto directo o indirecto con una explotación avícola que, se
haya demostrado infectada con el virus de la influenza aviar /enfermedad de Newcastle
2. Si una explotación de cría o recría ha distribuido aves que, según se haya demostrado
posteriormente, estuvieran infectados con el virus de la influenza aviar.
3. Si existe la posibilidad de que las aves hayan estado expuestos al virus, por ejemplo,
debido a la entrada en la explotación de personas, vehículos, etc.
Para el caso de aves silvestres cualquier detección de aves muertas o con sintomatología
nerviosa, decaimiento o signos respiratorios deberá ser notificada al SENASA.
El Veterinario de Senasa local deberá comunicar la sospecha de una enfermedad de
notificación obligatoria a la Coordinación General de Control Territorial, dependiente de la
Dirección de Ejecución Sanitaria y Control de Gestión. Ver el Instructivo Sistema de
Notificaciones comunicado por ME-2021-04595771-APN-DESYCG#SENASA.
En referencia al procedimiento de actuación, se debe seguir el “Manual de Notificación de y
atención de sospechas en aves de corral y silvestres”
5.2 VIGILANCIA ACTIVA
5.2.1 EN PREDIOS DE AVES DE TRASPATIO
La vigilancia en explotaciones de traspatio está basada en riesgo, según el modelo de riesgo
de la Influenza aviar y enfermedad de Newcastle, tal como se describe en el sistema AVE de
información
Geográfica
para
Asistencia
en
la
Vigilancia
Epidemiológica.
(http://www.fao.org/3/i0943s/i0943s00.htm)
Programa de Vigilancia Influenza Aviar y Enfermedad de Newcastle 2021
6
�DIRECCIÓN NACIONAL DE SANIDAD ANIMAL
DIRECCIÓN DE PLANIFICACIÓN Y ESTRATEGIA DE SANIDAD ANIMAL
COORDINACION GENERAL DE EPIDEMIOLOGIA /PROGRAMA NACIONAL DE SANIDAD AVIAR
Los factores de riesgo que se consideran asociados a estas enfermedades lo constituye su
ubicación cercana a:
Frontera Oeste
Frontera Norte
Frontera Marítima
Frontera Este
Aeropuertos
Principales Rutas
Zona de migración de aves: contempla humedales, ríos y cuerpos de agua, más sitios
RAMSAR* y lugares identificados como de asiento de aves migratorias.
Aves de Traspatio: información proporcionada por el Sistema Integrado de Gestión y
Sanidad Animal (SIGSA) y análisis de densidad poblacional.
Distribución de aves comerciales: datos obtenidos del SIGSA.
Se utilizó el método de comparación de a pares, donde la importancia relativa de cada factor de
riesgo fue ponderada comparando con el resto de los factores de riesgo.
Habiendo analizado las muestras de los últimos seis años, se propuso seleccionar las oficinas que
realizarán vigilancia de traspatio en base a la actualización del modelo mencionado.
A continuación se presenta el mapa de riesgo (Mapa 1) y las oficinas que poseen una zona
significativa de su territorio con un riesgo superior a mediano (Mapa 2).
* Argentina tiene actualmente 23 sitios designados como Humedales de Importancia Internacional (sitios RAMSAR).
Programa de Vigilancia Influenza Aviar y Enfermedad de Newcastle 2021
7
�DIRECCIÓN NACIONAL DE SANIDAD ANIMAL
DIRECCIÓN DE PLANIFICACIÓN Y ESTRATEGIA DE SANIDAD ANIMAL
COORDINACION GENERAL DE EPIDEMIOLOGIA /PROGRAMA NACIONAL DE SANIDAD AVIAR
Supuestos: partiendo de una población desconocida (o tendiente a infinito) se presentan
los siguientes supuestos:
Nivel de confianza: 95%
Mínima prevalencia esperada de predios positivos: 1%
Mínima prevalencia esperada de aves positivas intrapredio: 20%
Cantidad promedio de aves por predio: 20
Número de aves a muestrear por establecimiento: 10
De acuerdo a estos supuestos se deberán muestrear 306 establecimientos. El diseño
asegurará una confianza del 95% de detectar uno o más predios de traspatio infectados en
las zonas seleccionadas como de mayor riesgo, si la prevalencia de la IA o NC en la población
de aves de traspatio de esas zonas, es de por lo menos el 1% y la prevalencia de las aves
infectadas es por lo menos el 20%.
Se adicionó un 15% más de establecimientos, con el fin de que se cumpla con el mínimo
calculado, obteniendo un número de 351 predios a muestrear durante el año 2021.
Se tomará muestras de sueros e hisopados cloacales o traqueales u orofaringeos de la
totalidad de las aves, si el número de aves es menor de 10 ó de 10 aves si el número de aves
es mayor o igual a 10.
5.2.2 EN PREDIOS DE AVES DE GALLINAS PONEDORAS
El objetivo del muestreo es demostrar la ausencia de infección y circulación del Virus de
Influenza Aviar de notificación obligatoria (VIA) en las gallinas ponedoras de explotación
comercial.
Este estudio está dirigido a los establecimientos de explotación comercial, de todo el
territorio nacional, y dentro de las diferentes explotaciones comerciales a la subpoblación de
gallinas de postura (incluyendo las aves recría), consideradas la de mayor riego debido a la
presencia de aves de diferentes edades dentro de la granja y a su largo ciclo productivo y por
lo tanto a la mayor probabilidad de que en una granja pueda existir una cepa de virus de baja
patogenicidad sin manifestación clínica de enfermedad. La cantidad registrada de esta
subpoblación es de 1004 granjas.
Como primer paso para la selección de los establecimientos a muestrear, se identificaron
criterios de inclusión basados en factores de riesgo asociados al posible contacto con el virus.
La selección de las mismas se realizó de acuerdo a la epidemiología de la enfermedad y
referencias bibliográficas:
Proximidad a posibles asentamientos de aves silvestres y migratorias:
- Humedales: Establecimientos que se encuentren cercanos a humedales de importancia
en la zona por la densidad de aves silvestres o por las especies de aves existentes (patos,
gansos y cisnes). Se tomó como referencia un área de 10 km. (3 puntos)
Se incluyeron cuerpos de agua permanente (lagos, lagunas, embalses) e hidrografía
permanente (ríos). (2 puntos)
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Categoría de bioseguridad: Se tuvieron en cuenta aquellos establecimientos que
estuvieran registrados en el Sistema Integrado de Gestión de Sanidad Animal (SIGSA) en
una categoría de bioseguridad baja: C, D y sin clasificar. (2 puntos)
Cercanía con establecimientos avícolas de traspatio: Establecimientos ubicados dentro
de un radio de 5 kms. de distancia a establecimientos de traspatio registrados en el
SIGSA. (3 puntos)
Linderos a establecimientos con aves no registrados: Establecimientos ubicados dentro
de un radio de 5 kms. de distancia con establecimientos identificados a través de las
actas de vacunación de aftosa que tienen aves y las actualizaciones de stock anuales de
la zona sin vacunación. (3 puntos)
Zona de fronteras: Establecimientos que se encuentren dentro de aproximadamente
100 km de la frontera norte, en las cuales puede existir grupos de aves más expuestos al
riesgo por encontrarse en zonas limítrofes con un importante tráfico vecinal fronterizo
de aves vivas o productos avícolas. Incluye a las regionales Salta-Jujuy; Chaco-Formosa y
Corrientes-Misiones. (1 punto)
Establecimientos que se encuentren a una distancia igual o menor a 100 km de la
frontera oeste, focalizándolos en los pasos fronterizos que comuniquen con el país
vecino. (1 punto)
Zonas con elevada densidad de granjas: se incluyeron aquellos establecimientos que se
encuentren a ubicados en zonas de alta densidad de producción avícola.
Establecimientos ubicados en un departamento/partido con densidad de granjas mayor
a 0,1 granjas por km2. (1 punto)
Establecimientos con distintos tipos de producción (o diferentes aves): Establecimientos
que registren en el SIGSA más de un tipo de especie avícola en un mismo
establecimiento. (1 punto)
Selección de los predios a muestrear
Más del 50% de los predios tiene valores por debajo de 5. Se considera que los predios con 6
puntos o más se clasifican como de riesgo y conforman la población en estudio (el 43% de las
granjas de ponedoras). En total son 431 granjas.
En una segunda etapa se definió el tamaño de la muestra considerando los siguientes
parámetros y supuestos.
Supuestos: Analizando 20 muestras de suero e hisopados por predio, con una prevalencia
animal esperada de 15%, contemplando una sensibilidad de la técnica diagnóstica del 95,4%,
se alcanza una sensibilidad a nivel predio del 94%.
Parámetros de la prueba diagnóstica utilizada (ELISA multiespecie) de acuerdo a información
proporcionada por la Coordinación de Virología del DILAB del SENASA:
Sensibilidad 95,4 %
Especificidad 99.7%
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Con una prevalencia esperada del 1% de predios y una sensibilidad a nivel predio del 94%, se
deben muestrear 203 predios para obtener una confianza del 95% (4.060 muestras).
5.2.3 EN NÚCLEOS DE REPRODUCCIÓN
Las aves reproductoras son monitoreadas en el marco del muestreo para el Plan Nacional de
Sanidad Avícola (PNSA), que contiene el “Programa de control de las Micoplasmosis y
Salmonelosis de las aves y prevención y vigilancia de enfermedades exóticas y de alto riesgo
en planteles de reproducción”, como parte de la Resolución SENASA N°882 del 5 de
diciembre de 2002.
Los veterinarios oficiales deben enviar al laboratorio del Senasa, una vez por año, 20 (veinte)
muestras de suero correspondientes a cada núcleo/lote de aves reproductoras.
Las granjas de aves reproductoras padres o abuelas se encuentran organizadas en “núcleos”,
cada granja puede disponer de uno o varios núcleos. Cada núcleo dispone en general de 2 a 5
galpones. Se considera como unidad epidemiológica al núcleo ya que las aves dentro del
mismo tienen la misma edad, el mismo origen, reciben el mismo manejo y tratamiento
sanitario y están bajo el control de la misma persona (por lo general exclusiva para cada
núcleo).
5.2.4 MUESTREOS COMPLEMENTARIOS
Durante la Vigilancia Epidemiológica 2020 se encontraron en diferentes explotaciones sueros
positivos a Influenza Aviar diferente a H5 y H7, o títulos altos para la Enfermedad de
Newcastle. Por lo cual resulta necesario que los mismos continúen en vigilancia.
La cantidad de aves a muestrear dependerá del establecimiento. Se procederá a tomar
sueros e hisopados cloacales u orofaríngeos o traqueales.
Si el establecimiento corresponde a aves-traspatio se tomarán sueros e hisopados cloacales u
orofaríngeos o traqueales de la totalidad de las aves, si el número de aves es menor de 10 ó
de 10 aves si el número de aves es mayor o igual a 10.
Si el establecimiento corresponde a gallinas de postura, se deberá tomar muestras de suero e
hisopados cloacales u orofaríngeos o traqueales de 20 aves por predio.
5.2.5 MUESTREOS OPORTUNÍSTICOS EN AVES SILVESTRES
Dado que algunas aves silvestres pueden actuar como reservorio para el virus de influenza
aviar y no desarrollan sintomatología, se completa la vigilancia pasiva con toma de muestras
de aves aparentemente sanas.
Esta componente consiste en identificar oportunidades de muestreo asociado a otras
instituciones, como por ejemplo trabajos de investigación de universidades o jornadas de
caza. Se busca la manera de participar ya sea en la obtención de las muestras o en el envío de
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las mismas al laboratorio para que sean analizadas de manera gratuita. Esto redunda en un
beneficio para las partes involucradas y nutre al sistema de vigilancia del SENASA.
En el caso de aves silvestres se programan actividades de muestreos en zoológicos, donde se
muestrean aves de vida libre que descienden en cuerpos de agua dentro de estas
instituciones. También se toman muestras de aves incautadas previo a su incorporación a las
colecciones o a su liberación al medio, ya sea en zoológicos, centros de rescate o cuando las
autoridades de fauna provinciales solicitan la colaboración del SENASA. Además, se busca
establecer acuerdos con investigadores que realizan capturas de aves silvestres y con
cazadores de patos para obtener muestras.
La prioridad de los muestreos oportunísticos depende de la especie de ave, el origen de la
misma, la época del año y la zona del país. Siempre se buscará establecer acuerdos que
permitan realizar muestreos oportunísticos en especies, épocas del año y zonas en las que se
considere más probable la circulación del virus de influenza aviar. Este componente se realiza
de manera conjunta con el INTA.
En todos los casos la vigilancia en aves silvestre está basada en vigilancia virológica
6. DIAGNÓSTICO DE IA Y ENC A PARTIR DE LAS MUESTRAS OBTENIDAS EN LA VIGILANCIA
EPIDEMILÓGICA
El análisis de las muestras de aves de corral, se realizará únicamente en el Laboratorio
Central de Senasa, ubicado en Talcahuano 1660, Martínez, provincia de Buenos Aires.
6.1 DIAGNOSTICO DE INFLUENZA AVIAR
Una vez ingresadas las muestras a la mesa de entradas del laboratorio, los sueros deberán
ser enviados al Departamento de Enfermedades de las Aves para la realización del
diagnóstico serológico para la IA por las técnicas de ELISA multiespecie y/o IDAG, y en caso
de serología positiva para influenza tipo A, deberá realizarse ELISA para H5 y H7. Se deberá
confirmar los positivos a H5 y H7 o continuar la investigación epidemiológica hasta
determinar el subtipo, mediante la técnica de HI.
Si las muestras resultaron serológicamente positivas, se remitirán los hisopados al
Departamento de Biología Molecular para análisis virológico mediante RT-PCR en tiempo real
del gen M, subtipos H5 y H7 y secuenciación para la determinación de la patogenicidad. De
obtenerse un resultado positivo para gen M, se transferirá una alícuota de la muestra al
Departamento de Aves para realizar el aislamiento viral y determinar la patogenicidad in vivo
(IPIV) y por secuenciación. (Ver Flujograma pág. 13)
Todo resultado positivo se investigará mediante la realización de una encuesta
epidemiológica según las pautas indicadas en el Capítulo 3 del Manual de Procedimientos de
Contingencia de la Influenza Aviar.
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6.2 DIAGNOSTICO DE LA ENFERMEDAD DE NEWCASTLE
Los sueros provenientes de aves de traspatio serán procesados por el Departamento de
Enfermedades de las Aves para el diagnóstico serológico por la técnica de ELISA o HI para
ENC según la especie.
En caso de resultados serológicos positivos a ELISA que arrojen un título promedio superior a
5.000 o un resultado de HI mayor o igual a 1/16 realizado con 4 unidades hemoaglutinantes
(UHA), los hisopados deberán ser enviados al Departamento de Biología Molecular para el
diagnóstico por la técnica de RT-PCR en tiempo real para gen M, F y secuenciación de F0 para
la determinación de la patogenicidad. De obtenerse un resultado positivo para gen M, se
transferirá una alícuota de la muestra al Departamento de Enfermedades de las Aves para
realizar el aislamiento viral y determinar la patogenicidad in vivo (IPIC) y por secuenciación.
(Ver Flujograma pág. 14)
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COORDINACION GENERAL DE EPIDEMIOLOGIA /PROGRAMA NACIONAL DE SANIDAD AVIAR
FLUJOGRAMA DIAGNOSTICO DE INFLUENZA AVIAR
Referencias:
HI: inhibición de la hemoaglutinación
rRT- PCR: Reacción en cadena de polimerasa en tiempo real
HA0: sitio de clivaje de la hemoaglutinina
IPIV: índice de patogenicidad intravenosa
HA: hemoaglutinación
IAAP: Influenza aviar de alta patogenicidad
IABP: Influenza Aviar de baja patogenicidad
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FLUJOGRAMA DIAGNOSTICO DE ENFERMEDAD DE NEWCASTLE
Referencias:
HI: inhibición de la hemoaglutinación
UHA: unidades hemoaglutinantes
rRT- PCR: Reacción en cadena de polimerasa en tiempo real
IPIV: Índice de patogenicidad intravenosa
F0: sitio de clivaje de la proteína F
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Dublin Core
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Title
A name given to the resource
Publicaciones SENASA
Dublin Core
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Title
A name given to the resource
Programa de Vigilancia Epidemiologica Activa y Pasiva de Influenza Aviar y Enfermedad de Newcastle en Aves de Corral y aves Silvestres en la República Argentina
Publisher
An entity responsible for making the resource available
Servicio Nacional de Sanidad y Calidad Agroalimentaria
Date
A point or period of time associated with an event in the lifecycle of the resource
2021
Contributor
An entity responsible for making contributions to the resource
Dirección Nacional de Sanidad Animal
Dirección de Planificación y Estrategia de Sanidad Animal
Coordinación General de Epidemiología
Programa Nacional de Sanidad Aviar
Language
A language of the resource
Es
Type
The nature or genre of the resource
Monografía
Identifier
An unambiguous reference to the resource within a given context
B.S.0079
Abstract
A summary of the resource.
El presente documento fue elaborado en forma conjunta por las distintas áreas de la Dirección Nacional de Sanidad Animal, con la colaboración de la Dirección General de Laboratorios y Control Técnico del Senasa. El mismo tiene como objetivo establecer los criterios técnicos y procedimientos empleados en el marco del sistema de vigilancia epidemiológica para la influenza aviar de notificación obligatoria y la enfermedad de Newcastle.
Table Of Contents
A list of subunits of the resource.
1. INTRODUCCIÓN
2. OBJETIVOS DEL SISTEMA DE VIGILANCIA EPIDEMIOLOGICA EN AVES
3. SISTEMA DE REGISRO DE EXPLOTACIONES
4. POBLACION OBJETIVO
5. ESTRATEGIAS DE VIGILANCIA EPIDEMIOLÓGICA
5.1 VIGILANCIA PASIVA
5.2 VIGILANCIA ACTIVA
5.2.1 EN PREDIOS DE AVES DE TRASPATIO
5.2.2 EN PREDIOS DE AVES DE GALLINAS PONEDORAS
5.2.3 EN NÚCLEOS DE REPRODUCCIÓN
5.2.4 MUESTREOS COMPLEMENTARIOS
5.2.5 MUESTREOS OPORTUNÍSTICOS EN AVES SILVESTRES
6. DIAGNÓSTICO DE IA Y ENC A PARTIR DE LAS MUESTRAS OBTENIDAS EN LA VIGILANCIA EPIDEMILÓGICA
6.1 DIAGNOSTICO DE INFLUENZA AVIAR
6.2 DIAGNOSTICO DE LA ENFERMEDAD DE NEWCASTLE
FLUJOGRAMA DIAGNOSTICO DE INFLUENZA AVIAR
FLUJOGRAMA DIAGNOSTICO DE ENFERMEDAD DE NEWCASTLE
Enfermedad de Newcastle
Enfermedades de las Aves
Influenza Aviar