439 10 4434 https://biblioteca.senasa.gob.ar/files/original/9a66c4d79bbed23906285b250c4f9abf.pdf cad56923d4e405c24e2a4eb943bb1e55 PDF Text Text https://www.boletinoficial.gob.ar/pdf/linkQR/VDNnQnpQWGdDcG8rdTVReEh2ZkU0dz09 MINISTERIO DE SALUD y JEFATURA DE GABINETE DE MINISTROS SECRETARIA DE GABINETE Y COORDINACION ADMINISTRATIVA Resolución Conjunta Nº 728/2014 y Nº 168/2014 Bs. As., 16/5/2014 VISTO el expediente Nº 2002-26505/11-0 del registro del MINISTERIO DE SALUD, la Resolución Conjunta M.S. Nº 349 y S.G. y C.A. Nº 29 de fecha 9 de marzo de 2012, la Resolución Conjunta M.S. Nº 1821 y S.G. y C.A. Nº 522 de fecha 4 de noviembre de 2013, el Convenio Colectivo de Trabajo Sectorial del Personal Profesional de los Establecimientos Hospitalarios y Asistenciales e Institutos de Investigación y Producción dependientes del MINISTERIO DE SALUD, homologado por Decreto Nº 1133 del 25 de agosto de 2009, y el ACTA Nº 32 de la Comisión Permanente de Interpretación de la Carrera Profesional Sanitaria —COPICPROSA— de fecha 19 de noviembre de 2013, y CONSIDERANDO: Que de conformidad con el artículo 57 del Convenio Colectivo de Trabajo Sectorial citado en el Visto, se deberá establecer el régimen del Sistema de Capacitación y Desarrollo previsto para los profesionales de la salud incorporados en dicho Convenio Colectivo, previa consulta a las entidades gremiales signatarias a través de la Comisión Permanente de Interpretación de la Carrera Profesional Sanitaria —COPICPROSA—. Que mediante el artículo 1° de la Resolución Conjunta M.S. Nº 349 y S.G. y C.A Nº 29 de fecha 9 de marzo de 2012 fueron aprobados por esa única vez y para los períodos de evaluación de desempeño correspondiente a los ejercicios 2009, 2010 y 2011 las exigencias en materia de capacitación para la promoción de grado escalafonario. Que a través del artículo 1° de la Resolución Conjunta M.S. Nº 1821 y S.G. y C.A Nº 522 de fecha 4 de noviembre de 2013 se prorrogó el Régimen Transitorio de Capacitación y Desarrollo para la evaluación correspondiente al ejercicio 2012 en los mismos términos de la Resolución Conjunta mencionada en el Considerando anterior. Que conforme establece el ACTA Nº 32 suscripta por los integrantes de la Comisión Permanente de Interpretación de la Carrera Profesional Sanitaria —COPICPROSA— de fecha 19 de noviembre de 2013 se redactó el régimen para el sistema de Capacitación y Desarrollo del Personal Profesional de los Establecimientos Hospitalarios y Asistenciales e Institutos de Investigación y Producción dependientes del MINISTERIO DE SALUD. Que han tomado la intervención que les compete la DIRECCION GENERAL DE ASUNTOS JURIDICOS del MINISTERIO DE SALUD y la DIRECCION GENERAL DE ASUNTOS JURIDICOS de la JEFATURA Página 1 �https://www.boletinoficial.gob.ar/pdf/linkQR/VDNnQnpQWGdDcG8rdTVReEh2ZkU0dz09 DE GABINETE DE MINISTROS. Que la presente medida se dicta en virtud de las atribuciones conferidas por los artículos 2° y 8° del Anexo I del Decreto Nº 1421 del 8 de agosto de 2002 y los apartados XI y XX del Anexo II al artículo 2° del Decreto Nº 357 de fecha 21 de febrero de 2002 y modificatorios, lo establecido en el artículo 5° del Decreto Nº 196 del 24 de febrero de 2011 y en el Decreto Nº 22 del 10 de diciembre de 2011. Por ello, EL MINISTRO DE SALUD Y LA SECRETARIA DE GABINETE Y COORDINACION ADMINISTRATIVA DE LA JEFATURA DE GABINETE DE MINISTROS RESUELVEN: ARTICULO 1° — Apruébase el régimen para el Sistema de Capacitación y Desarrollo del personal profesional de los Establecimientos Hospitalarios y Asistenciales e Institutos de Investigación y Producción dependientes del MINISTERIO DE SALUD para la evaluación correspondiente desde el ejercicio 2013 inclusive, en adelante, que como Anexo I forman parte integrante de la presente. ARTICULO 2° — Comuníquese, publíquese, dése a la Dirección Nacional del Registro Oficial y archívese. — Dr. JUAN L. MANZUR, Ministro de Salud. — Dra. FABIANA SAMBANCA, Secretaria de Gabinete y Coordinación Administrativa, Jefatura de Gabinete de Ministros. ANEXO I REGIMEN PARA EL SISTEMA DE CAPACITACION Y DESARROLLO DEL PERSONAL PROFESIONAL DE LOS ESTABLECIMIENTOS HOSPITALARIOS Y ASISTENCIALES E INSTITUTOS DE INVESTIGACION Y PRODUCCION DEPENDIENTES DEL MINISTERIO DE SALUD TITULO I.- DEL SISTEMA DE CAPACITACION Y DESARROLLO Y SUS FINALIDADES Artículo 1º.- El Sistema de Capacitación y Desarrollo (SCyD) del personal profesional de los Establecimientos Hospitalarios y Asistenciales e Institutos de Investigación y Producción dependientes del MINISTERIO DE SALUD comprendidos en el Convenio Colectivo de Trabajo Sectorial homologado por el Decreto Nº 1.133/2009, está integrado por los principios, normas, órganos y procedimientos mediante los cuales se administra la definición, implementación, evaluación y registro de las actividades de capacitación y desarrollo del personal, así como las actividades que permitan la actualización, mejoramiento y acreditación de las competencias laborales de los profesionales incluidos en él. Artículo 2°.- En la interpretación y aplicación del SCyD se observarán los siguientes principios: a. La capacitación continua, el desarrollo técnico de los profesionales y el reconocimiento de y/o la acreditación de sus competencias laborales específicas configuran un derecho que les cabe como trabajadores del sector público pero también constituyen un deber de éstos hacia la comunidad cuya salud se han comprometido a proteger. b. Asimismo, y en función del derecho del funcionario público a la promoción en el marco de su carrera, establecido en el Convenio Colectivo de Trabajo Sectorial, se fomentarán, ejecutarán y asegurarán Página 2 �https://www.boletinoficial.gob.ar/pdf/linkQR/VDNnQnpQWGdDcG8rdTVReEh2ZkU0dz09 debidamente las actividades de capacitación en un marco de igualdad de oportunidades. c. La gestión eficaz e integrada del SCyD es principalmente responsabilidad de las autoridades superiores y de los funcionarios con personal a su cargo, pero también de los profesionales, en el marco de lo prescripto en la Ley Nº 25.164 y su reglamentación. d. El SCyD también instrumentará actividades que promuevan un mayor nivel de información, comprensión y apreciación de las realidades laborales, del contexto general del país en el que se inserta la acción del equipo de salud, así como del nivel de formación ciudadana en general. TITULO II.- DE LA FORMULACION DEL PLAN ESTRATEGICO DE CAPACITACION Y DEL PLAN ANUAL DE CAPACITACION Artículo 3°.- Las actividades de capacitación estarán comprendidas en un Plan Estratégico de Capacitación (PEC) de cada Establecimiento o Instituto, cuya elaboración será coordinada por su titular, con la asistencia del titular de la Unidad Organizativa a cargo de las acciones de Personal y/o Capacitación y del área de Docencia e Investigación respectiva, sobre la base del relevamiento de necesidades y demandas realizado por cada titular de unidad organizativa y a propuesta de los titulares de cada Jefatura de Servicio o superior. El PEC deberá fundarse en el análisis de las brechas y proyecciones de la cantidad y características laborales del personal para brindar los servicios de la institución, acorde al Plan Estratégico del Establecimiento o Instituto formulado en el marco de las políticas de largo alcance del MINISTERIO DE SALUD y conforme a las pautas metodológicas y lineamientos a dictar por el INSTITUTO NACIONAL DE LA ADMINISTRACION PUBLICA (INAP). En el supuesto que la oferta académica, en el Sistema Educativo Nacional o en el régimen de Residencias Médicas, sea escasa o poco específica para la formación de especialistas en funciones o problemáticas encuadrables en el Agrupamiento de Investigación, Diagnóstico Referencial, Producción y Fiscalización, deberán integrarse las actividades de formación especializada correspondientes en el referido PEC. Bajo estas premisas y de conformidad con lo establecido por el 1° párrafo del artículo 74 del Convenio Colectivo de Trabajo General para la Administración Pública Nacional (CCTG APN Decreto Nº 214/06), las entidades sindicales signatarias podrán elevar sus estimaciones y propuestas para el PEC. Artículo 4º.- En el marco de lo establecido en el PEC se establecerán Planes Anuales de Capacitación (PAC), conteniendo el detalle de las actividades a implementarse en forma directa o a través de convenios con otras instituciones. El Plan Anual de Capacitación será informado cada año por el titular de cada Establecimiento o Instituto a la Autoridad Superior correspondiente del Ministerio de la Salud. El proyecto de Plan Anual de Capacitación será remitido hasta el 30 de septiembre de cada año por el titular de cada Establecimiento o Instituto al titular de la unidad de organización del Ministerio de la Salud al que reportara, la que dentro del plazo de DIEZ (10) días desde su recepción lo enviará al INSTITUTO NACIONAL DE LA ADMINISTRACION PUBLICA para su aprobación y certificación de las actividades respectivas. El Plan Anual contendrá las actividades de capacitación necesarias para atender los requerimientos específicos de la institución y para facilitar el cumplimiento de las exigencias para la promoción de Grado, de Categoría y eventual cambio de agrupamiento de los profesionales, según lo exigido por los artículos 30 y 34 del CCTS y, de corresponder, para atender al Plan de Recuperación previsto en los términos de su artículo 75 CCTS. Artículo 5°.- Los PEC y los PAC serán objeto de monitoreo periódico para asegurar su efectividad y, de ser necesario, podrán ser reformulados conforme a lo establecido en los artículos 3° y 4° del presente y según lo prescripto en el artículo 61 del Convenio Colectivo de Trabajo Sectorial. TITULO III.- DEL TIPO DE ACTIVIDADES DE CAPACITACION Página 3 �https://www.boletinoficial.gob.ar/pdf/linkQR/VDNnQnpQWGdDcG8rdTVReEh2ZkU0dz09 Artículo 6°.- Para la mejor organización de las actividades, éstas se desarrollarán conforme se orienten al: i. Desarrollo y Fortalecimiento de Competencias Generales en materia de orientación y marco estratégico de las políticas prioritarias del MINISTERIO DE SALUD y de la institución, así como de las acciones a cargo de sus unidades organizativas, programas y proyectos, de los valores éticos y deontológicos de la función pública, del equipo de salud y de la investigación en el sector, así como del marco normativo que regula el empleo público y del Convenio Colectivo de Trabajo General y Sectorial respectivo. ii. Fortalecimiento de Competencias Laborales Profesionales Específicas, para el desempeño laboral específico y la gestión de los servicios en temáticas propias y especializadas del Equipo de Salud. iii. Fortalecimiento de Competencias Directivas para el mejor ejercicio de las funciones jerarquizadas comprendidas en el Convenio Colectivo de Trabajo Sectorial. iv. Reubicación Laboral, para facilitar el cumplimiento de lo establecido por el artículo 76 del Convenio Colectivo de Trabajo General, al cambio de Agrupamiento según el artículo 34 del CCTS. TITULO IV.- DEL RELEVAMIENTO DE NECESIDADES Y DEMANDAS DE CAPACITACION Artículo 7°.- El titular del Establecimiento o Instituto definirá antes del último día hábil del mes de agosto, las prioridades a seguir en materia de capacitación en cumplimiento del artículo 62 del CCTS. El relevamiento de las necesidades y demandas de capacitación se realizarán durante los meses de agosto y septiembre y se gestionará de manera de asegurar que antes del 30 de noviembre de cada año, se esté en condiciones de aprobar el respectivo Plan Anual de Capacitación o PEC, según corresponda. Artículo 8°.- Los titulares de unidades organizativas con funciones jerarquizadas son responsables de relevar y determinar las necesidades y demandas de capacitación de los profesionales a su cargo. Para ello, también estimarán las necesidades a atender que surjan de la evaluación de desempeño de personal a su cargo. Asimismo, podrán establecerse encuestas o relevamientos voluntarios y bajo condiciones de anonimato entre el personal, con el objeto de contar con mayor información sobre necesidades y preferencias identificadas por los profesionales. Artículo 9°.- Para contribuir a la mejor planificación de las actividades, cada profesional podrá elevar los requerimientos que estime conveniente para su mejor desempeño y actualización ante el titular de la función jerarquizada del que dependa, para lo cual contará con un plazo de DIEZ (10) días hábiles contados a partir de la aprobación de las prioridades según lo establecido en el artículo 7º del presente. TITULO V.- DE LAS ACTIVIDADES, PROGRAMAS Y EXIGENCIAS PARA LA PROMOCION Artículo 10.- Las exigencias de capacitación podrán serán satisfechas mediante actividades realizadas bajo diversas modalidades que sean aceptables según el presente. Aquellas actividades que no se encuadren dentro de las reguladas por la Ley de Educación Superior deberán ser acreditadas por el INAP, con intervención previa del Comité de Certificación y Evaluación de la Educación Permanente en Salud a conformarse en el MINISTERIO DE SALUD. El Comité estará integrado por DOS (2) representantes por la Secretaría de Políticas Regulación e Institutos, UNO (1) de los cuales lo presidirá, DOS (2) representantes de la Subsecretaría de Gestión de Servicios Asistenciales, UNO (1) del INSTITUTO NACIONAL DE LA ADMINISTRACION PUBLICA a propuesta del titular de la Subsecretaría de Gestión y Empleo Público y UN (1) representante por cada Establecimiento o Instituto. El Comité intervendrá en todas las cuestiones previstas en el presente, asesorará en la coordinación general de las políticas y acciones de capacitación del personal profesional y promoverá la complementariedad de los esfuerzos e inversiones en la materia de los Establecimientos e Institutos. Artículo 11.- A los efectos previstos en los artículos precedentes y para una más efectiva gestión de las actividades, éstas se identificarán como de: a. Formación: orientadas al logro o finalización de titulación académica que permita la adquisición de Página 4 �https://www.boletinoficial.gob.ar/pdf/linkQR/VDNnQnpQWGdDcG8rdTVReEh2ZkU0dz09 nuevas competencias o profundización en un área específica del conocimiento de las profesiones incorporadas en el Convenio Colectivo de Trabajo Sectorial. Estas actividades se corresponden con carreras reconocidas a nivel nacional por la autoridad educativa, en el marco de la legislación vigente para la educación superior. b. Capacitación: orientadas a mantener, mejorar o actualizar competencias laborales del profesional para el ejercicio de las funciones propias de su puesto de trabajo en el marco de las políticas de salud y de su institución. Aquí se incluyen actividades organizadas por las instituciones y/o por entidades del ámbito académico debidamente reconocidas y las actividades de educación permanente organizadas en forma sistemática. c. Docencia: orientadas a fortalecer el perfil académico en las actividades correspondientes de los Establecimientos e Institutos, las que podrán realizarse tanto al interior de cada uno de ellos o interinstitucionalmente, en el marco de actividades programadas por el MINISTERIO DE SALUD de la Nación así como de carreras universitarias de grado o posgrado relacionadas con las funciones previstas para el Equipo de Salud. d. Investigaciones y Publicaciones: orientadas a ampliar el conocimiento en el marco de las funciones de los profesionales incluidos en el convenio. e. Reubicación Laboral: por permitir desarrollar nuevas funciones o puestos de trabajo con o sin cambio de agrupamiento o para la recuperación del nivel de desempeño laboral de conformidad con lo establecido por el Convenio Colectivo Sectorial. TITULO VI.- DE LA PROMOCION DE GRADO ESCALAFONARIO Artículo 12.- Para promover de grado escalafonario, los profesionales de ambos agrupamientos deberán reunir la cantidad de créditos de capacitación por período de promoción y según su Categoría Escalafonaria conforme al siguiente detalle: CATEGORIA ESCALAFONARIA CREDITOS DE CAPACITACION POR PERIODO DE PROMOCION Profesional Asistente CIENTO SESENTA Y OCHO (168) Profesional Adjunto CIENTO NOVENTA Y DOS (192) Profesional Principal CIENTO NOVENTA Y DOS (192) Profesional Superior DOSCIENTOS DIECISEIS (216) UN (1) crédito de capacitación corresponde a UNA (1) hora reloj de clase de las distintas actividades académicas previstas en el presente. El profesional deberá reunir la cantidad de créditos de capacitación en la proporción establecida a continuación en cada uno de los tipos de actividades de capacitación comprendidos en los incisos i, ii, e iii del Artículo 6º del presente. Página 5 �https://www.boletinoficial.gob.ar/pdf/linkQR/VDNnQnpQWGdDcG8rdTVReEh2ZkU0dz09 TIPOS DE CATEGORIA ACTIVIDAD Artículo ESCALAFONARIA 6° Asistente Adjunto Principal Superior 168 192 192 216 Desarrollo y Fortalecimiento de Competencias Generales 64 56 40 40 Fortalecimiento de Competencias Laborales Profesionales Específicas 88 96 112 136 Fortalecimiento de Competencias Directivas 16 40 40 40 Créditos de Capacitación La autoridad superior del establecimiento podrá autorizar de manera fundada y circunstanciada, una eventual alteración en el cumplimiento de los créditos a reunir en algún tipo de las actividades previstas de conformidad con lo establecido en el artículo 6 del presente. Artículo 13.- Sin perjuicio de la obtención de la cantidad de créditos de capacitación prescriptos en el artículo precedente, el profesional deberá satisfacer un mínimo de créditos por año en cualquiera de los Tipos de Actividades previstos en el artículo 6° del presente y según la categoría Escalafonaria a razón de: CATEGORIA ESCALAFONARIA Profesional Asistente CREDITOS DE CAPACITACION POR AÑO TREINTA Y DOS (32) Página 6 �https://www.boletinoficial.gob.ar/pdf/linkQR/VDNnQnpQWGdDcG8rdTVReEh2ZkU0dz09 Profesional Adjunto CUARENTA (40) Profesional Principal CUARENTA (40) Profesional Superior CUARENTA Y OCHO (48) Artículo 14.- El personal que ejerciera puesto con Función Directiva o de Jefatura Profesional comprendido en los alcances de los artículos 36 y 38 del Convenio Colectivo de Trabajo Sectorial, podrá acreditar hasta el CIENTO POR CIENTO (100%) y hasta el CINCUENTA POR CIENTO (el 50%), respectivamente, de los créditos exigidos en el eje profesional mediante actividades encuadradas en el inciso iii del Artículo 6° del presente. Artículo 15.- Para asegurar la permanente actualización, y la estrecha relación de las inversiones en capacitación con las prioridades fijadas según lo establecido en el artículo 62 del CCTS, los créditos obtenidos por un profesional por actividades encuadradas en los incisos i y iii del artículo 6° del presente que excedan la cantidad exigida para promover de Grado, podrán ser transferidos en un CINCUENTA POR CIENTO (50%) para la satisfacción de los requisitos para la promoción al Grado siguiente. TITULO VII.- DE LA PROMOCION DE CATEGORIA ESCALAFONARIA ARTICULO 16.- A los efectos previstos en el artículo 60 del Convenio Colectivo de Trabajo Sectorial concernientes a la satisfacción de las exigencias de capacitación y acreditación de competencias laborales para la promoción a Categoría Escalafonaria Superior, los profesionales someterán las solicitudes de reconocimiento de actividades que hubieran aprobado, conforme al primer párrafo del citado artículo, o realizado, conforme a su segundo párrafo, para la previa intervención del titular del establecimiento comprendido en el Anexo I del citado Convenio Colectivo. Este titular las elevará, de contar con su parecer favorable y siempre que se cumpliese con el criterio de atinencia respectiva, a la consideración de la Autoridad Superior de la que dependa para la posterior intervención del Instituto Nacional de la Administración Pública. Las actividades de capacitación organizadas o promovidas por el Establecimiento que sean acreditables para la promoción de Categoría Escalafonaria deberán de ser comunicadas en tal carácter al momento de su divulgación. A este último efecto, en los respectivos PEC y PAC deberá disponerse como mínimo actividades que permitan satisfacer las exigencias previstas en los incisos b) a h), ambos inclusive, del artículo 20, inciso d) y última frase del inciso e) del artículo 22, inciso d) del artículo 24, e, inciso c) del artículo 26, todos del Convenio Colectivo de Trabajo Sectorial. En todas estas actividades se deberán arbitrar los procedimientos que permitan acreditar las competencias profesionales objeto de dichas actividades. Conforme a lo dispuesto en los incisos c) del artículo 22 y c) del artículo 24 del Convenio Colectivo de Trabajo Sectorial y en aquellos casos en que la oferta de formación de especialistas sea escasa o poco específica tal como se expresa en el artículo 3º del presente régimen, la validación de la formación especializada proporcionada por instituciones reconocidas será responsabilidad del Comité de Certificación y Evaluación de la Educación Permanente en Salud previsto en el Artículo 10 de este reglamento, el que actuará como Comité de Certificación según lo previsto en el Convenio Colectivo de Trabajo Sectorial. Página 7 �https://www.boletinoficial.gob.ar/pdf/linkQR/VDNnQnpQWGdDcG8rdTVReEh2ZkU0dz09 TITULO VIII.- ACTIVIDADES ORGANIZADAS POR LAS INSTITUCIONES QUE INTEGRAN EL CONVENIO Artículo 17.- El titular de la Unidad Organizativa a cargo de la acciones en materia de Personal y/o Capacitación elaborará la oferta y asegurará la difusión de las actividades programadas según el correspondiente PAC, con intervención del Comité establecido en el artículo 10 del presente y del responsable del Area de Docencia e Investigación. En supuestos debida y circunstanciadamente fundados podrán ofertarse actividades de capacitación o desarrollo no programados ni incluidas en las ofertas vigentes. Para asegurar la igualdad de oportunidades, el titular de la referida Unidad Organizativa procederá a la divulgación de las ofertas con una antelación no inferior a QUINCE (15) días hábiles previos a la fecha al inicio de la inscripción. A ese efecto deberá garantizarse una difusión amplia mediante las carteleras habilitadas al efecto, notificación a los titulares de las funciones directivas para la difusión de las ofertas entre personal a su cargo, la página web del Establecimiento o Instituto y de otros medios a su disposición. Cada convocatoria deberá contener las fechas, horas, lugares o direcciones electrónicas, de inicio y/o cierre para efectuar la inscripción, las fechas y horarios de realización de la actividad, el perfil de los profesionales habilitados para efectuarlas, la carga horaria total, los créditos asignables sea para la promoción de grado o de categoría escalafonaria y otra información que se considere de interés. TITULO IX.- INSCRIPCION A LAS ACTIVIDADES Artículo 18.- El inicio de inscripción se realizará con una antelación no menor a QUINCE (15) días hábiles previos al comienzo de la actividad programada y permanecerá abierta durante no menos de DIEZ (10) días hábiles. Artículo 19.- Cada profesional completará el Formulario de Inscripción, el que se establece como Anexo al presente, y lo tramitará para la previa intervención de su jefe inmediato superior y posterior resolución del titular de la Jefatura de Servicio o superior del que dependa, quién evaluará la pertinencia de la demanda y autorizará o no, la inscripción según corresponda. El titular de la respectiva Jefatura de Servicio o superior podrá disponer de oficio la inscripción del profesional a su cargo cuando estime las actividades pertinentes para su desarrollo y/o para el mejor desempeño de sus funciones y/o de las acciones de la unidad organizativa. Para ello, completará los Formularios de Inscripción autorizándolos y notificando al personal que fuera inscripto para su participación y a todo efecto. Artículo 20.- La inscripción en las actividades de capacitación y desarrollo implica conocer y aceptar los requisitos de asistencia, puntualidad y exigencias académicas que se establezcan en cada caso y de reunir las condiciones de habilitado para inscribirse según lo establecido en el último párrafo del artículo 17 del presente. Artículo 21.- Los titulares competentes para autorizar la inscripción podrán negar la autorización y la eventual asistencia a las actividades pertinentes requeridas para la promoción de Grado, o de cambio de Agrupamiento, cuando razones fundadas en el servicio así lo justifiquen, dejándolo consignado en el Formulario de Inscripción y haciendo saber de lo resuelto al profesional, siempre que esta postergación no impida la oportuna promoción de éste. Si se diera el caso de que al profesional le correspondiera promover ese año y no hubiera podido reunir los créditos por razones de servicio, el profesional podrá promover de grado pero deberá reunir los créditos de capacitación adeudados dentro del siguiente período, no pudiendo Página 8 �https://www.boletinoficial.gob.ar/pdf/linkQR/VDNnQnpQWGdDcG8rdTVReEh2ZkU0dz09 promover al grado siguiente hasta que los haya acreditado. Esta situación operará en forma excepcional no pudiendo repetirse en los dos períodos de promoción subsiguientes. Artículo 22.- En el supuesto previsto en el artículo precedente, el titular de la Unidad Organizativa a cargo de las acciones de Personal y/o Capacitación deberá asegurar la inscripción y asistencia del profesional a las actividades en el siguiente año calendario, informando de esta situación y exigencia al titular competente para autorizar las inscripciones. Artículo 23.- Para asignar las plazas previstas en las actividades de capacitación se garantizará la igualdad de oportunidades y la preferencia en favor de los profesionales que deban satisfacer o complementar los requisitos de capacitación para la promoción al Grado siguiente durante el ejercicio en el que se desarrollen las actividades. Artículo 24.- El profesional será notificado oportunamente de la asignación de la plaza para participar de la actividad en los términos previstos en el artículo 25 del presente. En caso que no se le hubiera asignado plaza deberá ser notificado de los motivos de tal decisión. TITULO X.- DE LA ASISTENCIA Y EVALUACION DE LAS ACTIVIDADES DE CAPACITACION DE LA ASISTENCIA Artículo 25.- El profesional con plaza asignada deberá concurrir puntualmente a las sesiones programadas y cumplir los requisitos de cursada y demás exigencias académicas establecidos para el aprovechamiento y aprobación de la actividad. Artículo 26.- Cualquier incumplimiento deberá ser debidamente justificado por el trabajador o por las autoridades que prestaron su conformidad a la inscripción, según corresponda, y será comunicado al titular de la unidad organizativa a cargo de las acciones en materia de Personal y/o Capacitación, el que se expedirá en consecuencia. En el supuesto de incumplimiento declarado injustificado, el personal no podrá inscribirse en actividades de capacitación alguna por un período de SEIS (6) meses. MODALIDADES DE EVALUACION Artículo 27.- Todas las actividades de capacitación deberán prever modalidades de evaluación que permitan comprobar la adquisición, fortalecimiento y/o capacidad de aplicación de los conocimientos, métodos, técnicas, habilidades y/o competencias laborales impartidas o desarrolladas, de conformidad con lo establecido en el segundo párrafo del artículo 58 del CCTS. Artículo 28.- Se entregará constancia a cada profesional de la aprobación de la actividad, consignando el total de créditos de capacitación que hubiere reunido. Artículo 29.- La Unidad Organizativa a cargo de las acciones de Personal y/o Capacitación mantendrá actualizado el registro y archivo en el Legajo Unico del Personal con los antecedentes de las actividades realizadas por los profesionales incluyendo las efectuadas por el personal no organizadas ni patrocinadas por el Establecimiento o Instituto. Artículo 30.- Los créditos de capacitación surten efecto para la promoción de Grado a partir del día siguiente a la fecha en que el trabajador haya aprobado la actividad, la que corresponderá con la del día en que se efectuara la última evaluación por la que el profesional aprobará la actividad. Artículo 31.- Sólo serán acreditadas las actividades de capacitación finalizadas durante el período de promoción de grado o en el período de calificación del desempeño inmediato anterior. TITULO XI.- CERTIFICACION DE ACTIVIDADES REALIZADAS A TITULO INDIVIDUAL Página 9 �https://www.boletinoficial.gob.ar/pdf/linkQR/VDNnQnpQWGdDcG8rdTVReEh2ZkU0dz09 Artículo 32.- Los profesionales podrán reunir los créditos de capacitación exigidos mediante actividades de capacitación organizadas en modalidades formales, sea en calidad de cursantes, docentes o investigadores, realizadas por capacitadores o entidades no integrantes del Sistema de Capacitación y Desarrollo según lo prescripto en el primer párrafo del artículo 4° del presente, siempre que fueran acreditadas por el INSTITUTO NACIONAL DE LA ADMINISTRACION PUBLICA de conformidad con lo establecido en el artículo 74 del Convenio Colectivo de Trabajo General para la Administración Pública Nacional y la previa intervención del Comité establecido en el artículo 10 de este Anexo. Artículo 33.- La solicitud de acreditación de las actividades de realizadas en los términos del artículo 32 del presente se gestionará a través de la Unidad Organizativa a cargo de las acciones en materia de Personal y/o Capacitación con intervención favorable del Comité de Docencia e Investigación, el que evaluará su pertinencia y asignación al tipo de actividad correspondiente a lo prescripto en el artículo 6° del presente. A este efecto, el profesional adjuntará toda la documentación que permita evaluar la actividad de acuerdo con lo establecido en el artículo 60 del CCTS. Aquéllas consideradas pertinentes serán remitidas al Comité de Certificación y Evaluación de la Educación Permanente en Salud, el que efectuará la propuesta de asignación de créditos para la debida resolución del INAP conforme a su normativa. El INSTITUTO NACIONAL DE LA ADMINISTRACION PUBLICA resolverá las solicitudes dentro de los TREINTA (30) días corridos a partir de recibir la actuación y los créditos asignados surtirán efecto para la promoción de grado, a partir de la fecha del dictado de dicha resolución o del día siguiente al cumplimiento del plazo de TREINTA (30) días antes establecido, el que sea anterior. A) CERTIFICACION POR EDUCACION FORMAL Artículo 34.- De conformidad con lo establecido en el artículo 59 del Convenio Colectivo de Trabajo Sectorial, la obtención de título correspondiente a SEGUNDAS Carreras de Grado Universitario incluidas en el ANEXO I del Convenio Colectivo de Trabajo Sectorial o de carreras de Postgrado autorizadas por los órganos competentes del MINISTERIO DE EDUCACION, en orientaciones o especialidades consideradas pertinentes a las funciones, servicios y/o prioridades establecidas por el titular del Establecimiento, Instituto o del MINISTERIO DE SALUD, satisfacen el CIEN POR CIENTO (100%) de las exigencias para la promoción al grado siguiente al que ocupase el profesional en el año en que se produjeran, sin perjuicio de su reconocimiento posterior para la promoción de categoría. Artículo 35.- El profesional que cursara una formación de grado universitario o posgrado reconocido por la COMISION NACIONAL DE ACREDITACION Y EVALUACION UNIVERSITARIA (CONEAU) y con validez nacional, podrá solicitar el reconocimiento de las materias aprobadas, las cuales serán consideradas para satisfacer hasta el CIEN POR CIENTO (100%) de las exigencias de capacitación para la promoción de grado en el tipo de actividad, dentro del período máximo de SEIS (6) años contados desde el inicio en las carreras de Grado, y de CUATRO (4) desde el inicio en las de Posgrado con excepción de Doctorados para los cuales se extenderá a DOS (2) años adicionales a los citados precedentemente para el posgrado. Artículo 36.- La certificación de los créditos de capacitación por actividades de educación formal en las modalidades establecidas será resuelta por el titular de la Unidad Organizativa a cargo de las acciones de Personal y/o Capacitación mediante la presentación de las constancias correspondientes debidamente autenticadas. B) CERTIFICACION POR ACTIVIDADES DE DOCENCIA Página 10 �https://www.boletinoficial.gob.ar/pdf/linkQR/VDNnQnpQWGdDcG8rdTVReEh2ZkU0dz09 Artículo 37.- El profesional que revistara en la categoría de Adjunto, Principal y Superior podrá reunir el CUARENTA POR CIENTO (40%), el CINCUENTA POR CIENTO (50%) o el SESENTA POR CIENTO (60%),respectivamente, del total de créditos de capacitación para la promoción al grado siguiente mediante el ejercicio de la docencia en el ámbito del MINISTERIO DE SALUD, o, en actividades encuadradas dentro de la formación permanente y/o en servicio tales como residencias, seminarios, cursos o equivalentes. La acreditación deberá realizarse en el marco de un programa de formación formalizado previamente ante la Unidad de Organización a cargo de las acciones de Personal y/o Capacitación y el Comité de Docencia e Investigación de la institución, si se tratara de programas incluidos en el marco del presente convenio. En el caso de programas de formación no incluidos, el profesional deberá aportar el programa aprobado por la autoridad competente. En todos los casos, deberá ajustarse a las normas establecidas por el Comité de Certificación y Evaluación de la Educación Permanente en Salud, el que realizará la categorización de la actividad antes de su remisión al INAP. El profesional deberá presentar las certificaciones del caso que permita acreditar fehacientemente la carga horaria cumplida, los contenidos desarrollados y su evaluación como docente, bajo la modalidad que haya sido previamente consignada en el programa. Las certificaciones estarán a cargo del responsable del respectivo Comité de Docencia e Investigación o del MINISTERIO DE SALUD cuando se tratara de actividades dictadas en el marco de programas del Ministerio o de la autoridad competente cuando los programas no se encuentren en la órbita del MINISTERIO DE SALUD. El profesional que revistaba en categoría Asistente podrá satisfacer hasta un VEINTE POR CIENTO (20%) del total de las exigencias de capacitación para la promoción al grado siguiente mediante actividades comprendidas en los alcances del presente artículo. Podrán acreditarse horas de docencia universitaria por fuera de las instituciones del CCTS hasta un VEINTE POR CIENTO (20%) del total de la carga de créditos exigidas en cada tipo de actividad según lo establecido en el artículo 6° del presente. La Unidad de Organización a cargo de las acciones de Personal y/o Capacitación y el Comité de Docencia e Investigación evaluarán la pertinencia de las mismas. Artículo 38.- Se podrá asignar créditos por hasta el VEINTE POR CIENTO (20%) de los exigidos para la promoción de grado y hasta un máximo de VEINTICUATRO (24) horas por año por la participación en eventos académicos o de actualización y/o de intercambio técnico-profesional, sea que el agente participe en carácter de disertante, relator, conferencista, coordinador u organizador general o como asistente. Para este último caso, los créditos a asignar a los participantes, podrán ser reconocibles por hasta la mitad de la carga horaria de la actividad. Artículo 39.- Podrán asignarse créditos de capacitación para la promoción por la publicación de libros, artículos o informes de investigación o de compilaciones, siempre y cuando los mismos fueran parte de las funciones que el profesional cumple en la institución, de acuerdo con el siguiente detalle. a) Libros de autoría individual, Artículos originales o informes de investigación editados en publicaciones académicas, científicas o profesionales de aparición periódica con referato: hasta CUARENTA POR CIENTO (40%) de la cantidad de créditos exigibles conforme al tipo de actividad prevista de conformidad con el artículo 12 del presente. b) Libros o artículos en coautoría: hasta TREINTA POR CIENTO (30%) de la cantidad de créditos exigibles Página 11 �https://www.boletinoficial.gob.ar/pdf/linkQR/VDNnQnpQWGdDcG8rdTVReEh2ZkU0dz09 conforme al tipo de actividad prevista de conformidad con el artículo 12 del presente. c) Libros en los que el agente sea compilador: hasta VEINTICINCO POR CIENTO (25%) de la cantidad de créditos exigibles conforme al tipo de actividad prevista de conformidad con el artículo 12 del presente. d) Artículos editados en otras publicaciones académicas, científicas, profesionales o de divulgación sin referato: hasta QUINCE POR CIENTO (15%) de la cantidad de créditos exigibles conforme al tipo de actividad prevista de conformidad con el artículo 12 del presente. El reconocimiento de las publicaciones no podrá exceder el CUARENTA POR CIENTO (40%) del total de créditos exigidos para la promoción al grado siguiente. La solicitud de acreditación será acompañada por DOS (2) ejemplares de la publicación, los que serán ingresados al patrimonio bibliográfico del Establecimiento o Instituto y del MINISTERIO DE SALUD. TITULO XII.- ASIGNACION DE CREDITOS DE CAPACITACION Artículo 40.- Para determinar la cantidad de horas anuales a asignar a las actividades contempladas en el presente, se tendrán en consideración los siguientes criterios: 1. La calidad del prestador individual o institucional de la actividad; 2. La intensidad y/o grado de intervención o participación del agente en la actividad; y, 3. La calidad del proceso evaluador de la participación y aprovechamiento por parte del profesional en la actividad. TITULO XIII.- DE LA EVALUACION GENERAL DE LAS ACTIVIDADES DE CAPACITACION Y DESARROLLO EJECUTADAS Artículo 41.- El titular de la Unidad Organizativa a cargo de las acciones de Personal y/o Capacitación y el responsable del Comité de Docencia e Investigación coordinarán las actividades orientadas a evaluar las actividades incluidas en el PAC respecto a: 1. La calidad de la prestación docente, los contenidos, materiales y la actividad efectuada. 2. El grado de aplicación y/o aplicabilidad de lo acreditado por los profesionales en las actividades de capacitación reconocidas según el presente. Para ello, podrán recabar la elaboración de los informes correspondientes a los cursantes, a sus superiores, así como disponer las tareas de observación o encuesta necesarias para tal finalidad. Deberán elevar un informe antes del 31 de julio de cada año ante el Titular del Establecimiento o Instituto, quien lo pondrá en conocimiento de la Delegación Jurisdiccional de la COPICPROSA y del Comité de Certificación y Evaluación de la Educación Permanente en Salud para mejor proveer a la efectividad de las acciones de capacitación en los siguientes ejercicios. TITULO XIV.- DE LAS ACTIVIDADES DE CAPACITACION Y DESARROLLO DEL PERSONAL DE PLANTA NO PERMANENTE Artículo 42.- El personal no permanente a su requerimiento o a criterio de la autoridad podrá ser autorizado para concurrir a las actividades de capacitación necesarias para la mejor prestación de los servicios encuadrados en lo dispuesto en los incisos i y II del artículo 6° del presente y tendrá derecho a la certificación correspondiente. Las certificaciones que dicho personal obtenga surtirán efecto al momento de la ponderación de sus antecedentes en los concursos que pudieran realizarse. e. 26/05/2014 Nº 34546/14 v. 26/05/2014 Página 12 �https://www.boletinoficial.gob.ar/pdf/linkQR/VDNnQnpQWGdDcG8rdTVReEh2ZkU0dz09 Fecha de publicacion: 26/05/2014 Página 13 � Dublin Core The Dublin Core metadata element set is common to all Omeka records, including items, files, and collections. For more information see, http://dublincore.org/documents/dces/. Title A name given to the resource Otros organismos Dublin Core The Dublin Core metadata element set is common to all Omeka records, including items, files, and collections. For more information see, http://dublincore.org/documents/dces/. Title A name given to the resource Resolución Conjunta Ministerio de Salud N° 0728/2014 Description An account of the resource Apruébese el régimen para el Sistema de Capacitación y Desarrollo del personal profesional de los Establecimientos Hospitalarios y Asistenciales e Institutos de Investigación y Producción Creator An entity primarily responsible for making the resource Ministerio de Salud Source A related resource from which the described resource is derived <a href="https://servicios.infoleg.gob.ar/infolegInternet/verNorma.do;jsessionid=10607D27F61C2F61DB3BF7D7F4C295E1?id=230374">Resolución Conjunta N° 728/2014</a> Date A point or period of time associated with an event in the lifecycle of the resource Viernes 16 de Mayo de 2014 Contributor An entity responsible for making contributions to the resource <a href="https://servicios.infoleg.gob.ar/infolegInternet/verNorma.do;jsessionid=10607D27F61C2F61DB3BF7D7F4C295E1?id=230374">Resolución Conjunta 168/2014 - Secretaria de Gabinete y Coordinación Administrativa</a> Language A language of the resource Es Type The nature or genre of the resource Resolución Abstract A summary of the resource. Apruébase el régimen para el Sistema de Capacitación y Desarrollo del personal profesional de los Establecimientos Hospitalarios y Asistenciales e Institutos de Investigación y Producción dependientes del MINISTERIO DE SALUD para la evaluación correspondiente desde el ejercicio 2013 inclusive, en adelante, que como Anexo I forman parte integrante de la presente. https://biblioteca.senasa.gob.ar/files/original/fc9048bd278d972e9c9f1554e5d0d676.pdf 1af7906d9b4a34d0b74b33fa1cd408aa PDF Text Text ���� Dublin Core The Dublin Core metadata element set is common to all Omeka records, including items, files, and collections. For more information see, http://dublincore.org/documents/dces/. Title A name given to the resource Resoluciones SENASA Dublin Core The Dublin Core metadata element set is common to all Omeka records, including items, files, and collections. For more information see, http://dublincore.org/documents/dces/. Title A name given to the resource Resolución SENASA N° 0532/2007 Description An account of the resource Establece puntos de control fitosanitarios en el NOA Creator An entity primarily responsible for making the resource Servicio Nacional de Sanidad y Calidad Agroalimentaria Source A related resource from which the described resource is derived <a href="https://servicios.infoleg.gob.ar/infolegInternet/verNorma.do?id=131625">Resolución SENASA N° 0532/2007</a> Date A point or period of time associated with an event in the lifecycle of the resource Viernes 24 de Agosto de 2007 Language A language of the resource Es Type The nature or genre of the resource Resolución Abstract A summary of the resource. Establecer los Puestos de Control Zoofitosanitario del Noroeste Argentino (NOA) que se detallan en el Anexo que forma parte integrante de la presente resolución y que funcionarán bajo la dependencia, conforme el ámbito geográfico correspondiente, de los Centros Regionales NOA NORTE y NOA SUR. Is Replaced By A related resource that supplants, displaces, or supersedes the described resource. <strong>Abrogada por el Art. 5° de la <a href="https://digesto.senasa.gob.ar/items/show/978">resolucion N° 135/2026 del SENASA&nbsp;</a></strong> https://biblioteca.senasa.gob.ar/files/original/01f3ee0c7a221b7741b2693633a71879.pdf d65e860f7e1bcffa28fa2e6bce5774b5 PDF Text Text INSTRUCTIVO Carga del acta de toma de muestras en SIGATM para veterinarios acreditados Control de las Micoplasmosis y Salmonelosis en aves de corral �El Servicio Nacional de Sanidad y Calidad Agroalimentaria (Senasa) es un organismo descentralizado, responsable de ejecutar las políticas nacionales en materia de sanidad y calidad animal, vegetal y de la inocuidad de los alimentos de su competencia, así como de verificar el cumplimiento de la normativa vigente en la materia. Equipos de trabajo Programa Nacional de Sanidad Aviar Dirección Nacional de Sanidad Animal Coordinación General de Comunicación Institucional Edición 2025 �Índice Introducción 4 Objetivo 4 Acceso al sistema 4 Veterinarios acreditados Carga de acta 4 5 Consideraciones de los campos para completar Muestras 6 8 Carga múltiple de muestras 9 Ensayos 13 Laboratorio de destino 14 Visualización e impresión de actas 15 Contacto 18 INSTRUCTIVO. CARGA DEL ACTA DE TOMA DE MUESTRAS EN SIGATM PARA VETERINARIOS ACREDITADOS 3 �Introducción El Sistema Integral de Gestión de Acta de Toma de Muestra (SIGATM) permite vincular de manera automática las actas con el sistema de Gestión de Resultados y Certificados de laboratorios de red (GRECERT), de forma tal que agiliza el procesamiento de las muestras y el flujo de información. Como resultado, el SIGATM optimiza los procesos de certificación, mejorando la eficiencia en los diagnósticos y la comunicación de resultados en tiempo real. Objetivo El presente instructivo tiene como objetivo proporcionar información a los veterinarios acreditados en Sanidad y Bienestar de las Aves sobre el procedimiento para cargar digitalmente el acta de toma de muestras en el SIGATM, en relación a la recolección de muestras para aves de corral acorde a la vigilancia para el control de las Micoplasmosis y Salmonelosis en planteles de Reproductoras – Resolución Senasa N.° 882/2002 – , y de Salmonelosis en producción (parrilleros y ponedoras) – Resolución Senasa N.° 86/2016 –. Se trata de un instructivo destinado al modo de operatividad del sistema y su correcto uso para la confección y carga del acta digital. Acceso al sistema Veterinarios acreditados Para ingresar al SIGATM, el acreditado en sanidad y bienestar de las aves deberá dirigirse al sitio web de la Agencia de Recaudación y Control Aduanero (ARCA)1 y acceder con clave fiscal. Allí deberá contar con el servicio del Senasa “SIGATM” vinculado. De lo contrario, se deberá buscar en la página principal el servicio y luego hacer clic en “Agregar”. 1 Ex - Afip INSTRUCTIVO. CARGA DEL ACTA DE TOMA DE MUESTRAS EN SIGATM PARA VETERINARIOS ACREDITADOS 4 �Una vez vinculado el servicio, el acreditado podrá acceder al sistema a través del botón visualizado en la siguiente pantalla. Al momento de ingresar al SIGATM, el veterinario debe tener vigente su acreditación en Sanidad y Bienestar Aviar. De lo contrario, el sistema no permitirá el ingreso. Carga de acta Un vez que haya ingresado, el usuario deberá dirigirse al apartado “Actas DNSA” generar “Nueva Acta”. Posteriormente, en la sección “Área” se deberá abrir el menú desplegable y seleccionar la opción “Programa de Sanidad Avícola”. INSTRUCTIVO. CARGA DEL ACTA DE TOMA DE MUESTRAS EN SIGATM PARA VETERINARIOS ACREDITADOS 5 �En la siguiente pantalla, el sistema mostrará una serie de campos que el veterinario acreditado deberá completar, de acuerdo a la explotación a muestrear (gallinas ponedoras, pollos parrilleros o reproductores). Consideraciones de los campos para completar a. En “Motivo de Muestreo”, se deberá seleccionar “Muestreo Aves”. b. Luego, en el “Submotivo de Muestreo”, se deberá indicar “Gallinas ponedoras”, “Pollos Parrilleros” o “Reproductores”. c. El “Número de Acta” será asignado automáticamente, luego de generar el acta. d. La “Fecha de Alta” se genera automáticamente (es el día en que se dio de alta el acta). e. El “Responsable de Toma de Muestras” se genera de forma automática (es el usuario que ingresó con su CUIT y clave fiscal). f. La “Fecha de Toma de Muestra” corresponde al día en que se tomó la muestra. g. En Usuario GDE/Documento GDE no se debe completar, ya que es de uso para agentes oficiales. h. “Observaciones”: Campo de libre escritura en el cual se puede poner cualquier observación que sea relevante. Posteriormente, en el apartado “Lugar de Toma de Muestras”, se deberá abrir el menú desplegable y seleccionar la opción “Unidad productiva”. INSTRUCTIVO. CARGA DEL ACTA DE TOMA DE MUESTRAS EN SIGATM PARA VETERINARIOS ACREDITADOS 6 �Si el usuario conoce el número del Registro Nacional Sanitario de Productores Agropecuarios (Renspa) deberá detallarlo en el espacio indicado y hacer clic en la lupa . Luego, se desplegarán automáticamente los datos asociados al registro. Si se desconoce el número de Establecimiento o existen dudas sobre el mismo, hacer clic en el ícono del cuadro. El sistema abrirá un buscador que permite indicar el nombre del campo, del titular, o parte del número de Renspa. Al finalizar, el sistema arrojará los datos del establecimiento. Es posible detallar el responsable privado y cargo, aunque no es un dato obligatorio. Luego, el acreditado deberá completar la información solicitada en el apartado “Naturaleza del lote o muestra”. Al hacer clic en “Seleccionar Especie”, se deberá indicar la opción “Aves” y luego confirmar la especie con el botón . INSTRUCTIVO. CARGA DEL ACTA DE TOMA DE MUESTRAS EN SIGATM PARA VETERINARIOS ACREDITADOS 7 �En el menú desplegable correspondiente a la “Matriz”, se podrá seleccionar para salmonelosis la opción “Ambiental” para el envío de polvo ambiental o calzas; “Materia fecal” para el envío de guano en ponedoras o hisopado cloacal para reproductores, como tipo de material a analizar. Para muestra por micoplasmosis se deberá seleccionar “Suero”. Sólo se permite cargar un tipo de matriz por acta. Si hay más de una matriz, se deberá confeccionar un acta distinta para cada matriz. Muestras Luego, en el apartado “Muestras”, se deberá seleccionar el botón azul “Agregar Muestra”. Esta opción permite la carga de muestras de manera individual (una a la vez). Para detallar los datos solicitados de cada muestra, se abrirá un cuadro denominado “Ítem de muestra”. El usuario deberá completar todos los campos y, al finalizar, hacer clic en “Grabar”. * Los campos marcados con asteriscos son obligatorios. INSTRUCTIVO. CARGA DEL ACTA DE TOMA DE MUESTRAS EN SIGATM PARA VETERINARIOS ACREDITADOS 8 �Si alguno de los ítems no corresponde con la naturaleza de la muestra, se deberá seleccionar “No aplica” o “N/A”. Carga múltiple de muestras Para los casos donde se requiera cargar una alta cantidad de actas de toma de muestras, será necesario completar un Excel con la información de cada una de ellas. Para esto, se deberá descargar la Plantilla para incorporar muestras y otro archivo de Excel que contiene los códigos necesarios para completar la plantilla. INSTRUCTIVO. CARGA DEL ACTA DE TOMA DE MUESTRAS EN SIGATM PARA VETERINARIOS ACREDITADOS 9 �Una vez completada la plantilla preestablecida, el usuario deberá seleccionar la opción “Buscar” para cargarla en el sistema. Consideraciones En la Plantilla, las columnas “Número de tubo/muestra”, “Animal muestreado”, “Tipo identificación”, “Identificador”, “Categoría” y “Edad” son campos obligatorios. Si por la naturaleza de la muestra no corresponde, se deberá completar con el código correspondiente a “No Aplica” o “N/A”. Las columnas no obligatorias como “Fecha de Vacunación” y “Observaciones” podrán dejarse en blanco si no corresponde a la naturaleza de la muestra. La Plantilla para incorporar muestras solicita los datos que se visualizan en la siguiente tabla: N° tubo Código de Código de Identificador / muestra animal tipo identif. muestreado 1 2 12 12345 2 2 3 4 Código de categoría 512 Código de edad Fecha Observaciones vacunación 10 17/1/2025 12 12346 431 10 17/1/2025 2 12 12347 10 17/1/2025 2 12348 512 12 10 17/1/2025 513 Para completarla, se deberá tener en cuenta: a. Número de tubo/muestra. Indicar el número del tubo/muestra. Se recuerda que el acreditado que tome la muestra deberá rotular con un número el tubo o la muestra que remitirá. Ejemplo: tubo 1. b. Animal muestreado. Allí debe completarse el estado del animal (animal sano/enfermo/hallado muerto/no aplica), según la tabla códigos. c. Tipo identificación. No Aplica (Código N.° 12). d. Identificador. No aplica, dejar espacio en blanco. e. Categoría. Completar con el código numérico, según la tabla códigos. f. Edad. Agregar el código numérico, según la tabla de códigos. g. Fecha vacunación. Se debe informar fecha de vacunación contra Salmonella si fuera el caso. h. Observaciones. Si corresponde, agregar observaciones o comentarios que tengan que ver con la muestra. Ejemplo: si en caso de muestreo ambiental se remite Calza o Polvo ambiental. Por su parte, la tabla de códigos contiene cuatro solapas: INSTRUCTIVO. CARGA DEL ACTA DE TOMA DE MUESTRAS EN SIGATM PARA VETERINARIOS ACREDITADOS 10 �Para visualizar los códigos, en la solapa “Tipos de Identificación Animal” se encuentra el cuadro con los números correspondientes. En de aves de corral, se deberá ingresar el código N.° 12 (No aplica). En la solapa “Categorías por especie” deberán aplicarse los filtros preestablecidos, indicando especie o área para identificar el código correspondiente a la categoría. Por ejemplo: el N.° 506 corresponde a “Gallinas ponedoras blancas”. En la solapa “Edades” deberán aplicarse los filtros de especie o área, necesarios para identificar el código correspondiente a la edad. Por ejemplo, el N.° 113 es el código de “Producción”. INSTRUCTIVO. CARGA DEL ACTA DE TOMA DE MUESTRAS EN SIGATM PARA VETERINARIOS ACREDITADOS 11 �En la solapa “Animal Muestreado” se encuentran las opciones para indicar el código, según el estado del animal. Por ejemplo, el código N.° 2 corresponde a “Animal sano”. Una vez completada la plantilla del Excel, se deberá guardar el archivo y subirlo al sistema, haciendo clic en el botón “Buscar” y luego en “Agregar muestra”. De esta manera, se cargarán todas las filas de los ítems de muestras. Buscar Agregar muestras Una vez cargadas las muestras de forma individual o por medio de la plantilla de Excel, la pantalla deberá visualizarse de la siguiente manera: Si el usuario requiere modificar o eliminar algún dato de las muestras, podrá hacerlo antes de finalizar el acta, utilizando los ítems de edición o borrar . El sistema indicará error si no se cargan correctamente los códigos, se incorporan letras en lugar de números o se eliminan columnas. INSTRUCTIVO. CARGA DEL ACTA DE TOMA DE MUESTRAS EN SIGATM PARA VETERINARIOS ACREDITADOS 12 �Ensayos Dentro del apartado “Ensayos”, en el menú desplegable “Grupo de análisis”, el veterinario acreditado deberá seleccionar la opción “Detección de Salmonella Spp”. Una vez seleccionado el grupo de análisis, se desplegarán las técnicas diagnósticas asociadas a la matriz. El usuario deberá indicar la opción “Cultivo y aislamiento bacteriano”, y luego hacer clic en el botón “Asignar” para confirmar el ensayo. Luego, se podrán visualizar listados los ensayos seleccionados. De ser necesario, el usuario podrá modificar el listado, seleccionando y eliminándolo individualmente con el ícono . Al indicar los ensayos, se deberá considerar que luego, en la selección del Laboratorio de Red de destino, solo se visualizarán aquellos que tengan habilitada y disponible la técnica. Para carga de acta de toma muestra de Micoplasma, dentro del apartado “Ensayos”, en el menú desplegable “Grupo de análisis”, el veterinario acreditado deberá seleccionar la opción “Diagnóstico de Micoplasmosis Aviar”. INSTRUCTIVO. CARGA DEL ACTA DE TOMA DE MUESTRAS EN SIGATM PARA VETERINARIOS ACREDITADOS 13 �La técnica diagnóstica que el veterinario acreditado deberá seleccionar es “Elisa”. Laboratorio de destino En el apartado “Laboratorio de destino”, el usuario deberá seleccionar a cuál se enviarán las muestras. Solo deberán ser remitidas a laboratorios habilitados que se encuentren en la Red Nacional del Senasa INSTRUCTIVO. CARGA DEL ACTA DE TOMA DE MUESTRAS EN SIGATM PARA VETERINARIOS ACREDITADOS 14 �Otras acciones En la parte inferior del acta se observarán los siguientes botones: Cancelar. Se borrarán los datos efectuados sin guardarse. Grabar borrador. Permite guardar el acta como borrador y luego continuar con su confección, pudiendo también modificar los datos previamente guardados. Esta opción puede realizarse en cualquier momento durante la confección del acta. Finalizar. Con esta opción se finaliza la carga del acta, permitiendo que el número asignado ingrese al sistema. Solo al poner finalizar el laboratorio de destino podrá recuperar el acta en su propio sistema. Nota: Al volver atrás con el navegador o por desconexión de internet se perderán los datos cargados. Solo si se grabó como borrador se podrá recuperar la información desde el menú principal. Se recomienda grabar frecuentemente a medida que se avanza en el proceso. Visualización e impresión de actas En el menú principal del SIGATM se podrán consultar las actas en preparación (borrador), pendientes de despacho o finalizadas. INSTRUCTIVO. CARGA DEL ACTA DE TOMA DE MUESTRAS EN SIGATM PARA VETERINARIOS ACREDITADOS 15 �Si se requiere buscar algún acta en particular, el agente deberá seleccionar la opción de “Filtros” e ingresar el campo que desee filtrar. Las actas que figuren en preparación podrán editarse haciendo clic en el ícono , mientras que aquellas actas que figuren como finalizadas no podrán editarse. Únicamente podrán visualizarse, copiarse o imprimirse en formato PDF; o bien imprimir el talón. Esta última opción se utiliza para agregarlo a las muestras que corresponden al acta. Aunque la posibilidad esté disponible, no es necesario imprimir el acta completa para acompañar las muestras. Cuando sean despachadas o entregadas al Laboratorio de Red por parte de los veterinarios acreditados, las muestras físicas deberán ir acompañadas del número de acta, entregado al finalizar el proceso de carga en el sistema. INSTRUCTIVO. CARGA DEL ACTA DE TOMA DE MUESTRAS EN SIGATM PARA VETERINARIOS ACREDITADOS 16 �MÓDULO ACTAS DNSA Contar con este número es fundamental, ya que será el que utilice el laboratorio para incorporar la información del acta digital en sus sistemas (ver diagrama). Imprimir Acta borrador para llevar al establecimiento en caso de ser necesario INICIO Grabar borrador Completar los datos del acta Generar el acta LLEGADA AL LABORATORIO REMISIÓN DE MUESTRAS Finalizar Enviar las muestras al laboratorio de red Laboratorio Imprimir el Talón y adjuntar a la caja donde se envían las muestras, correspondientes a ese Nº de Acta. Recepción de muestras y talón con su Nº de Acta de SIGATM FIN INSTRUCTIVO. CARGA DEL ACTA DE TOMA DE MUESTRAS EN SIGATM PARA VETERINARIOS ACREDITADOS 17 �Información complementaria • Sitio web de Sanidad Aviar de Senasa. • Buscador de Laboratorios de Red. • Buscador de Veterinarios Acreditados. Contacto Programa de Sanidad Aviar Correo electrónico: avesygranja@senasa.gob.ar Teléfono de contacto: (011) 4121-5409 Mesa de ayuda Correo electrónico: sigatmayuda@senasa.gob.ar INSTRUCTIVO. CARGA DEL ACTA DE TOMA DE MUESTRAS EN SIGATM PARA VETERINARIOS ACREDITADOS 18 �� Dublin Core The Dublin Core metadata element set is common to all Omeka records, including items, files, and collections. For more information see, http://dublincore.org/documents/dces/. Title A name given to the resource Publicaciones SENASA Dublin Core The Dublin Core metadata element set is common to all Omeka records, including items, files, and collections. For more information see, http://dublincore.org/documents/dces/. Title A name given to the resource Instructivo. Carga del acta de toma de muestras en SIGATM para veterinarios acreditados. Control de las Micoplasmosis y Salmonelosis en aves de corral Publisher An entity responsible for making the resource available Servicio Nacional de Sanidad y Calidad Agroalimentaria Date A point or period of time associated with an event in the lifecycle of the resource 2025 Contributor An entity responsible for making contributions to the resource Programa Nacional de Sanidad Aviar Dirección Nacional de Sanidad Animal Coordinación General de Comunicación Institucional Language A language of the resource Es Type The nature or genre of the resource Manual Identifier An unambiguous reference to the resource within a given context B.S.0192 Abstract A summary of the resource. El presente instructivo tiene como objetivo proporcionar información a los veterinarios acreditados en Sanidad y Bienestar de las Aves sobre el procedimiento para cargar digitalmente el acta de toma de muestras en el SIGATM, en relación a la recolección de muestras para aves de corral acorde a la vigilancia para el control de las Micoplasmosis y Salmonelosis en planteles de Reproductoras – Resolución Senasa N.° 882/2002 – , y de Salmonelosis en producción (parrilleros y ponedoras) – Resolución Senasa N.° 86/2016 –. Se trata de un instructivo destinado al modo de operatividad del sistema y su correcto uso para la confección y carga del acta digital. Table Of Contents A list of subunits of the resource. Introducción Objetivo Acceso al sistema Veterinarios acreditados Carga de acta Consideraciones de los campos para completar Muestras Carga múltiple de muestras Ensayos Laboratorio de destino Visualización e impresión de actas Contacto Enfermedades de las Aves Micoplasmosis Salmonelosis Toma de muestras Veterinarios https://biblioteca.senasa.gob.ar/files/original/be3d20ede2085807614b98b2f436bc74.pdf 6bc4dc8fb4ff56660af19463a70d30f5 PDF Text Text INSTRUCTIVO Carga del acta de toma de muestras en SIGATM para veterinarios acreditados Vigilancia epidemiológica activa – Aves de corral �El Servicio Nacional de Sanidad y Calidad Agroalimentaria (Senasa) es un organismo descentralizado, responsable de ejecutar las políticas nacionales en materia de sanidad y calidad animal, vegetal y de la inocuidad de los alimentos de su competencia, así como de verificar el cumplimiento de la normativa vigente en la materia. Equipos de trabajo Programa Nacional de Sanidad Aviar Dirección de Planificación y Estrategia de Sanidad Animal Dirección Nacional de Sanidad Animal Coordinación General de Comunicación Institucional Edición 2025 �Índice Introducción 4 Objetivo 4 Acceso al sistema 4 Veterinarios acreditados Carga de acta 4 5 Consideraciones de los campos para completar Muestras 6 8 Carga múltiple de muestras 9 Ensayos 13 Laboratorio de destino 14 Visualización e impresión de actas 14 Información complementaria 17 Contacto 17 INSTRUCTIVO. CARGA DEL ACTA DE TOMA DE MUESTRAS EN SIGATM PARA VETERINARIOS ACREDITADOS 3 �Introducción El Sistema Integral de Gestión de Acta de Toma de Muestra (SIGATM) permite vincular de manera automática las actas con el sistema de Gestión de Resultados y Certificados de laboratorios de red (GRECERT), de forma tal que agiliza el procesamiento de las muestras y el flujo de información. Como resultado, el SIGATM optimiza los procesos de certificación, mejorando la eficiencia en los diagnósticos y la comunicación de resultados en tiempo real. Objetivo El presente instructivo tiene como objetivo proporcionar información a los veterinarios acreditados en Sanidad y Bienestar Aviar sobre el procedimiento para cargar digitalmente el acta de toma de muestras en el SIGATM, en relación a la recolección de muestras para aves de corral acorde a la vigilancia epidemiológica activa que realiza anualmente Senasa (Resolución Senasa N.° 468/2025). Se trata de un documento destinado al modo de operatividad del sistema y su correcto uso para la confección y carga del acta digital. Acceso al sistema Veterinarios acreditados Para ingresar al SIGATM, el acreditado en sanidad y bienestar de las aves deberá dirigirse al sitio web de la Agencia de Recaudación y Control Aduanero (ARCA)1 y acceder con clave fiscal. Allí deberá contar con el servicio del Senasa “SIGATM” vinculado. De lo contrario, se deberá buscar en la página principal el servicio y luego hacer clic en “Agregar”. 1 Ex - Afip INSTRUCTIVO. CARGA DEL ACTA DE TOMA DE MUESTRAS EN SIGATM PARA VETERINARIOS ACREDITADOS 4 �Una vez vinculado el servicio, el acreditado podrá acceder al sistema a través del botón visualizado en la siguiente pantalla. Al momento de ingresar al SIGATM, el veterinario debe tener vigente su acreditación en Sanidad y Bienestar Aviar. De lo contrario, el sistema no permitirá el ingreso. Carga de acta Un vez que haya ingresado, el usuario deberá dirigirse al apartado “Actas DNSA” generar “Nueva Acta”. Posteriormente, en la sección “Área” se deberá abrir el menú desplegable y seleccionar la opción “Programa de Sanidad Avícola”. INSTRUCTIVO. CARGA DEL ACTA DE TOMA DE MUESTRAS EN SIGATM PARA VETERINARIOS ACREDITADOS 5 �En la siguiente pantalla, el sistema mostrará una serie de campos que el veterinario acreditado deberá completar, de acuerdo a la explotación a muestrear. Consideraciones de los campos para completar a. En “Motivo de Muestreo”, la opción que se deberá seleccionar es “Muestreo Aves”. b. Para el “Submotivo de muestreo” se deberá indicar la opción correspondiente a la categoría a muestrear I. Gallinas ponedoras: corresponde al muestreo de aves de producción de huevo. II. Pollos parrilleros: corresponde al muestreo en aves de producción de carne. III. Reproductores: corresponde al muestreo de aves de reproducción abuelas y padres de línea liviana y pesada. IV. Muestreo en Zona De Control Sanitario (ZCS): corresponde a los establecimientos ubicados dentro de esta zona. V. Planta de faena: corresponde al muestreo en aves de producción de carne en planta de faena. c. El “Número de Acta” será asignado automáticamente, luego de generar el acta. d. La “Fecha de Alta” se genera automáticamente (es el día en que se dio de alta el acta). e. El “Responsable de Toma de Muestras” se genera de forma automática (es el usuario que ingresó con su CUIT y clave fiscal). f. La “Fecha de Toma de Muestra” corresponde al día en que se tomó la muestra. g. En Usuario GDE/Documento GDE no se debe completar es de uso para agentes oficiales. h. “Observaciones”: Campo de libre escritura en el cual se puede poner cualquier observación que sea relevante. INSTRUCTIVO. CARGA DEL ACTA DE TOMA DE MUESTRAS EN SIGATM PARA VETERINARIOS ACREDITADOS 6 �Posteriormente, en el apartado “Lugar de Toma de Muestras”, se deberá abrir el menú desplegable y seleccionar la opción “Unidad productiva”. Si el usuario conoce el número del Registro Nacional Sanitario de Productores Agropecuarios (Renspa) deberá detallarlo en el espacio indicado y hacer clic en la lupa . Luego, se desplegarán automáticamente los datos asociados al registro. Si se desconoce el número de o existen dudas sobre el mismo, hacer clic en el ícono del cuadro. El sistema abrirá un buscador que permite indicar el nombre del campo, del titular, o parte del número de Renspa. Al finalizar, el sistema arrojará los datos del establecimiento. Nota: cuando el muestreo se realice en Plantas de Faena, se deberán registrar los datos correspondientes a dicha planta como lugar de toma de muestra. Posteriormente, deberá completarse el apartado “Completar si el origen es distinto del lugar de toma de muestra” con la información del establecimiento de origen de las aves. Es posible detallar el responsable privado y cargo, aunque no es un dato obligatorio. Luego, el acreditado deberá completar la información solicitada en el apartado “Naturaleza del lote o muestra”. INSTRUCTIVO. CARGA DEL ACTA DE TOMA DE MUESTRAS EN SIGATM PARA VETERINARIOS ACREDITADOS 7 �Al hacer clic en “Seleccionar Especie”, se deberá indicar la opción “Aves” y luego confirmar la especie con el botón . En el siguiente menú desplegable correspondiente a la “Matriz”, será necesario indicar la opción “Suero” como tipo de material a analizar. Muestras Luego, en el apartado “Muestras”, se deberá seleccionar el botón azul “Agregar Muestra”. Esta opción permite la carga de muestras de manera individual (una a la vez). INSTRUCTIVO. CARGA DEL ACTA DE TOMA DE MUESTRAS EN SIGATM PARA VETERINARIOS ACREDITADOS 8 �Para detallar los datos solicitados de cada muestra, se abrirá un cuadro denominado “Ítem de muestra”. El usuario deberá completar todos los campos y, al finalizar, hacer clic en “Grabar”. * Los campos marcados con asteriscos son obligatorios. Si alguno de los ítems no corresponde con la naturaleza de la muestra, se deberá seleccionar “No aplica” o “N/A”. Carga múltiple de muestras Para los casos donde se requiera cargar una alta cantidad de actas de toma de muestras, será necesario completar un Excel con la información de cada una de ellas. Para esto, se deberá descargar la Plantilla para incorporar muestras y otro archivo de Excel que contiene los códigos necesarios para completar la plantilla. Una vez completada la plantilla preestablecida, el usuario deberá seleccionar la opción “Buscar” para cargarla en el sistema. INSTRUCTIVO. CARGA DEL ACTA DE TOMA DE MUESTRAS EN SIGATM PARA VETERINARIOS ACREDITADOS 9 �Consideraciones En la Plantilla, las columnas “Número de tubo/muestra”, “Animal muestreado”, “Tipo identificación”, “Identificador”, “Categoría” y “Edad” son campos obligatorios. Si por la naturaleza de la muestra no corresponde, se deberá completar con el código correspondiente a “No Aplica” o “N/A”. Las columnas no obligatorias como “Fecha de Vacunación” y “Observaciones” podrán dejarse en blanco si no corresponde a la naturaleza de la muestra. La Plantilla para incorporar muestras solicita los datos que se visualizan en la siguiente tabla: N° tubo Código de Código de Identificador / muestra animal tipo identif. muestreado 1 Código de categoría Código de edad 2 12 506 113 2 2 12 506 113 3 2 12 506 113 4 2 12 506 113 Fecha Observaciones vacunación Para completarla, se deberá tener en cuenta: a. Número de tubo/muestra. Indicar el número del tubo/muestra. Se recuerda que el acreditado que tome la muestra deberá rotular con un número el tubo o la muestra que remitirá. Ejemplo: tubo 1. b. Animal muestreado. Allí debe completarse el estado del animal (animal sano/enfermo/hallado muerto/no aplica), según la tabla códigos. c. Tipo identificación. No Aplica (Código N.° 12). d. Identificador. No aplica, dejar espacio en blanco. e. Categoría. Completar con el código numérico, según la tabla códigos. f. Edad. Agregar el código numérico, según la tabla de códigos. g. Fecha vacunación. No aplica, dejar espacio en blanco. h. Observaciones. Si corresponde, agregar observaciones o comentarios que tengan que ver con la muestra. Ejemplo: si en caso de muestreo ambiental se remite Calza o Polvo ambiental. Por su parte, la tabla de códigos contiene cuatro solapas: INSTRUCTIVO. CARGA DEL ACTA DE TOMA DE MUESTRAS EN SIGATM PARA VETERINARIOS ACREDITADOS 10 �Para visualizar los códigos, en la solapa “Tipos de Identificación Animal” se encuentra el cuadro con los números correspondientes. En de aves de corral, se deberá ingresar el código N.° 12 (No aplica). En la solapa “Categorías por especie” deberán aplicarse los filtros preestablecidos, indicando especie o área para identificar el código correspondiente a la categoría. Por ejemplo: el N.° 506 corresponde a “Gallinas ponedoras blancas”. En la solapa “Edades” deberán aplicarse los filtros de especie o área, necesarios para identificar el código correspondiente a la edad. Por ejemplo, el N.° 113 es el código de “Producción”. INSTRUCTIVO. CARGA DEL ACTA DE TOMA DE MUESTRAS EN SIGATM PARA VETERINARIOS ACREDITADOS 11 �En la solapa “Animal Muestreado” se encuentran las opciones para indicar el código, según el estado del animal. Por ejemplo, el código N.° 2 corresponde a “Animal sano”. Una vez completada la plantilla del Excel, se deberá guardar el archivo y subirlo al sistema, haciendo clic en el botón “Buscar” y luego en “Agregar muestra”. De esta manera, se cargarán todas las filas de los ítems de muestras. Buscar Agregar muestras Una vez cargadas las muestras de forma individual o por medio de la plantilla de Excel, la pantalla deberá visualizarse de la siguiente manera: INSTRUCTIVO. CARGA DEL ACTA DE TOMA DE MUESTRAS EN SIGATM PARA VETERINARIOS ACREDITADOS 12 �Si el usuario requiere modificar o eliminar algún dato de las muestras, podrá hacerlo antes de finalizar el acta, utilizando los ítems de edición o borrar . El sistema indicará error si no se cargan correctamente los códigos, se incorporan letras en lugar de números o se eliminan columnas. Ensayos Dentro del apartado “Ensayos”, en el menú desplegable “Grupo de análisis”, el veterinario acreditado deberá seleccionar la opción “Detección de Influenza Aviar”. Una vez seleccionado el grupo de análisis, se desplegarán las técnicas diagnósticas asociadas a la matriz. El usuario deberá tildar la opción “Elisa Tipo A” y luego hacer clic en el botón “Asignar” para confirmar el ensayo. Luego, se podrán visualizar listados los ensayos seleccionados. De ser necesario, el usuario podrá modificar el listado, seleccionando y eliminándolo individualmente con el ícono . Al indicar los ensayos, se deberá considerar que luego, en la selección del Laboratorio de Red de destino, solo se visualizarán aquellos que tengan habilitada y disponible la técnica. INSTRUCTIVO. CARGA DEL ACTA DE TOMA DE MUESTRAS EN SIGATM PARA VETERINARIOS ACREDITADOS 13 �Laboratorio de destino En el apartado “Laboratorio de destino”, el usuario deberá seleccionar a cuál se enviarán las muestras. Solo deberán ser remitidas a laboratorios habilitados que se encuentren en la Red Nacional del Senasa Otras acciones En la parte inferior del acta se observarán los siguientes botones: Cancelar. Se borrarán los datos efectuados sin guardarse. Grabar borrador. Permite guardar el acta como borrador y luego continuar con su confección, pudiendo también modificar los datos previamente guardados. Esta opción puede realizarse en cualquier momento durante la confección del acta. Finalizar. Con esta opción se finaliza la carga del acta, permitiendo que el número asignado ingrese al sistema. Solo al poner finalizar el laboratorio de destino podrá recuperar el acta en su propio sistema. Nota: Al volver atrás con el navegador o por desconexión de internet se perderán los datos cargados. Solo si se grabó como borrador se podrá recuperar la información desde el menú principal. Se recomienda grabar frecuentemente a medida que se avanza en el proceso. Visualización e impresión de actas En el menú principal del SIGATM se podrán consultar las actas en preparación (borrador), pendientes de despacho o finalizadas. INSTRUCTIVO. CARGA DEL ACTA DE TOMA DE MUESTRAS EN SIGATM PARA VETERINARIOS ACREDITADOS 14 �Si se requiere buscar algún acta en particular, el agente deberá seleccionar la opción de “Filtros” e ingresar el campo que desee filtrar. Las actas que figuren en preparación podrán editarse haciendo clic en el ícono , mientras que aquellas actas que figuren como finalizadas no podrán editarse. Únicamente podrán visualizarse, copiarse o imprimirse en formato PDF; o bien imprimir el talón. Esta última opción se utiliza para agregarlo a las muestras que corresponden al acta. Aunque la posibilidad esté disponible, no es necesario imprimir el acta completa para acompañar las muestras. INSTRUCTIVO. CARGA DEL ACTA DE TOMA DE MUESTRAS EN SIGATM PARA VETERINARIOS ACREDITADOS 15 �Cuando sean despachadas o entregadas al Laboratorio de Red por parte de los veterinarios acreditados, las muestras físicas deberán ir acompañadas del número de acta, entregado al finalizar el proceso de carga en el sistema. MÓDULO ACTAS DNSA Contar con este número es fundamental, ya que será el que utilice el laboratorio para incorporar la información del acta digital en sus sistemas (ver diagrama). Imprimir Acta borrador para llevar al establecimiento en caso de ser necesario INICIO Grabar borrador Completar los datos del acta Generar el acta LLEGADA AL LABORATORIO REMISIÓN DE MUESTRAS Finalizar Enviar las muestras al laboratorio de red Laboratorio Imprimir el Talón y adjuntar a la caja donde se envían las muestras, correspondientes a ese Nº de Acta. Recepción de muestras y talón con su Nº de Acta de SIGATM FIN INSTRUCTIVO. CARGA DEL ACTA DE TOMA DE MUESTRAS EN SIGATM PARA VETERINARIOS ACREDITADOS 16 �Información complementaria • Sitio web de Sanidad Aviar de Senasa. • Buscador de Laboratorios de Red. • Buscador de Veterinarios Acreditados. Contacto Programa de Sanidad Aviar Correo electrónico: avesygranja@senasa.gob.ar Teléfono de contacto: (011) 4121-5409 Programa de Sanidad Aviar Mesa de ayuda: sigatmayuda@senasa.gob.ar INSTRUCTIVO. CARGA DEL ACTA DE TOMA DE MUESTRAS EN SIGATM PARA VETERINARIOS ACREDITADOS 17 �� Dublin Core The Dublin Core metadata element set is common to all Omeka records, including items, files, and collections. For more information see, http://dublincore.org/documents/dces/. Title A name given to the resource Publicaciones SENASA Dublin Core The Dublin Core metadata element set is common to all Omeka records, including items, files, and collections. For more information see, http://dublincore.org/documents/dces/. Title A name given to the resource Instructivo. Carga del acta de toma de muestras en SIGATM para veterinarios acreditados. Vigilancia epidemiológica activa. Aves de corral Publisher An entity responsible for making the resource available Servicio Nacional de Sanidad y Calidad Agroalimentaria Date A point or period of time associated with an event in the lifecycle of the resource 2025 Contributor An entity responsible for making contributions to the resource Programa Nacional de Sanidad Aviar Dirección de Planificación y Estrategia de Sanidad Animal Dirección Nacional de Sanidad Animal Coordinación General de Comunicación Institucional Language A language of the resource Es Type The nature or genre of the resource Manual Identifier An unambiguous reference to the resource within a given context B.S.0193 Abstract A summary of the resource. El presente instructivo tiene como objetivo proporcionar información a los veterinarios acreditados en Sanidad y Bienestar Aviar sobre el procedimiento para cargar digitalmente el acta de toma de muestras en el SIGATM, en relación a la recolección de muestras para aves de corral acorde a la vigilancia epidemiológica activa que realiza anualmente Senasa (Resolución Senasa N.° 468/2025). Se trata de un documento destinado al modo de operatividad del sistema y su correcto uso para la confección y carga del acta digital. Table Of Contents A list of subunits of the resource. Introducción Objetivo Acceso al sistema Veterinarios acreditados Carga de acta Consideraciones de los campos para completar Muestras Carga múltiple de muestras Ensayos Laboratorio de destino Visualización e impresión de actas Información complementaria Contacto Enfermedades de las Aves SISTEMAS INFORMATICOS Toma de muestras Vetrinarios https://biblioteca.senasa.gob.ar/files/original/950116c639df5b128d1bc7c384903ead.pdf 52e2fa34eb5e641bf74c92b8ce4451bd PDF Text Text INSTRUCTIVO Toma de muestras para la vigilancia epidemiológica activa en aves de corral Veterinarios acreditados en Sanidad y Bienestar de las Aves �El Servicio Nacional de Sanidad y Calidad Agroalimentaria (Senasa) es un organismo descentralizado, responsable de ejecutar las políticas nacionales en materia de sanidad y calidad animal, vegetal y de la inocuidad de los alimentos de su competencia, así como de verificar el cumplimiento de la normativa vigente en la materia. Equipos de trabajo Programa Nacional de Sanidad Aviar Dirección Nacional de Sanidad Animal Coordinación General de Comunicación Institucional Edición 2025 �Índice Objetivo 4 Normativa 4 Criterios de selección de establecimientos 5 Responsables 5 Período de muestreo 6 Definiciones 6 Medidas de bioseguridad 6 Procedimiento de muestreo 7 Cantidad de muestras 7 Materiales 7 Procedimiento para la extracción de sangre 8 Condiciones de conservación y transporte 8 Acondicionamiento 8 Protocolo de remisión de muestras -SIGATM 9 Envío de las muestras 10 Cuadro resumen 11 Información complementaria 12 Contacto 12 �Introducción La Dirección Nacional de Sanidad Animal (DNSA) del Senasa, por medio de la Coordinación General de Epidemiología —dependiente de la Dirección de Planificación y Estrategia de Sanidad Animal— y en articulación con el Programa Nacional de Sanidad Aviar, define anualmente los establecimientos que deberán ser muestreados, conforme a los criterios establecidos en una matriz de riesgo. Estos establecimientos deberán ser incorporados de manera obligatoria en las actividades de vigilancia. En este contexto, la nueva Resolución Senasa N.° 468/2025 establece los criterios técnicos y operativos que deben aplicarse para la toma de muestras en el marco de estas acciones de vigilancia. La vigilancia epidemiológica serológica constituye una herramienta clave para la detección temprana de la Influenza aviar, permitiendo la adopción de medidas de control oportunas y la prevención de su diseminación. La participación activa y comprometida de todos los actores del sector es fundamental para fortalecer y ampliar el sistema de vigilancia, asegurando así la sanidad del sector avícola. Objetivo El presente instructivo tiene como objetivo proporcionar a los veterinarios acreditados en Sanidad y Bienestar de las Aves los lineamientos técnicos necesarios para la ejecución del muestreo serológico en aves de corral. En el mismo se detallan los procedimientos a seguir, la metodología para la selección de establecimientos, las especificaciones sobre el tipo y cantidad de muestras a remitir, así como su posterior envío a los laboratorios que integran la red del Senasa. De esta manera, se garantiza el cumplimiento de las acciones de vigilancia sanitaria establecidas. INSTRUCTIVO. TOMA DE MUESTRAS PARA LA VIGILANCIA EPIDEMIOLÓGICA ACTIVA EN AVES DE CORRAL 4 �Normativa Las siguientes resoluciones constituyen el marco regulatorio que deberá contemplarse para la realización del procedimiento del presente instructivo. • Resolución Senasa N.° E1/2018 - Procedimiento único de registro para veterinarios y técnicos acreditados. • Resolución Senasa N.° 153/2021 - Sistema Nacional de Vigilancia Epidemiológica de enfermedades animales. • Resolución Senasa N.° 466/2025 - Plan de Contingencia para la Influenza Aviar. • Resolución Senasa N.° 468/2025 - Programa de Vigilancia Epidemiológica Activa y Pasiva de la Influenza Aviar. Criterios de selección de establecimientos La selección de establecimientos a muestrear se encuentra basada en riesgo permitiendo identificar de manera eficiente aquellos establecimientos con mayor probabilidad de transmisión de patógenos de interés sanitario, lo que posibilita aplicar medidas preventivas que generan un mayor impacto sobre la cadena avícola. Para ello, se consideran distintos indicadores y factores de riesgo que conforman un índice de riesgo. Entre ellos se incluye: la antigüedad del establecimiento, la proximidad a humedales o cuerpos de agua permanentes ubicados dentro de un radio de 10 kilómetros, y la cercanía a frigoríficos o granjas situadas en zonas de alta densidad avícola dentro de un radio de 3 kilómetros, según buffers obtenidos mediante herramientas de georreferenciación, la cantidad de inspecciones oficiales realizadas en los últimos 12 meses, entre otros. En el caso de pollos parrilleros, las muestras tomadas en planta de faena serán analizadas por los laboratorios de la Red Nacional del Senasa, correspondientes a aquellos establecimientos que, durante un período continuo de seis meses, hayan presentado una elevada mortalidad en su ciclo productivo y en los cuales la sospecha de enfermedad haya sido descartada por los agentes oficiales del Senasa, conforme a los protocolos vigentes. Responsables Veterinario acreditado en Sanidad y Bienestar de las Aves: debe proceder a la toma de muestra de sueros, el acondicionamiento y la remisión de muestras, correspondientes a cada unidad epidemiológica de aves de los predios que correspondan ser muestreados. Red Nacional de Laboratorios del Senasa: los laboratorios públicos/privados incorpo- rados en a la Red del Senasa son los encargados del análisis serológico y la emisión de resultados. INSTRUCTIVO. TOMA DE MUESTRAS PARA LA VIGILANCIA EPIDEMIOLÓGICA ACTIVA EN AVES DE CORRAL 5 �Remisión de muestras y diagnóstico serológico para la Influenza Aviar Las muestras obtenidas deben ser remitidas a los laboratorios comprendidos dentro de la Red Nacional de Laboratorios de Controles Analíticos Oficiales (REDLAB) del SENASA, según normativa vigente. Período de muestreo El muestreo se debe realizar una vez por año, con excepción de establecimientos ubicados dentro de la Zona de Control Sanitario (ZCS). Se recomienda ver cuadro disponible en página 11. Definiciones Con el objetivo de promover una comprensión precisa, es fundamental establecer las siguientes definiciones: • Aves de corral: designa a todas las aves criadas o mantenidas en cautiverio para la obtención de productos comerciales avícolas, o la reproducción para estos fines. Las aves no de corral se consideran como aves de corral cuando tengan contacto directo o indirecto con aves de corral o instalaciones avícolas. • Aves no de corral: incluye las aves silvestres de vida libre, traspatio, así como las silvestres cautivas, criadas para espectáculos, competencias, exposiciones, colecciones de zoológicos y concursos, y para la reproducción o la venta a dichos efectos, así como las aves de compañía, siempre que no tengan contacto directo o indirecto con aves de corral o instalaciones de producción avícolas. • Aves de raza: se refiere a especies de aves como gallinas o gallos, pavos, gallinetas, faisanes, codornices, patos o gansos de razas puras con fines de exposición en ferias y/o eventos. • Aves ornamentales: se refiere a aves como canarios o psitácidos de razas puras con fines de exposición en ferias y/o eventos. • Aves de traspatio: se refiere a las aves domésticas criadas a pequeña escala cuya producción se consume en el lugar. • Sistema Integrado de Gestión de Actas de Toma de Muestras (SIGATM): herramienta digital del Senasa que permite registrar, gestionar y realizar el seguimiento de las muestras tomadas en campo para distintos programas de vigilancia sanitaria y control oficial. • Unidad epidemiológica: designa a un grupo de aves con la misma probabilidad de exposición a un agente patógeno, que están bajo el mismo manejo sanitario y comparten condiciones de alojamiento, alimentación y bioseguridad. INSTRUCTIVO. TOMA DE MUESTRAS PARA LA VIGILANCIA EPIDEMIOLÓGICA ACTIVA EN AVES DE CORRAL 6 �Medidas de bioseguridad Las medidas de bioseguridad son fundamentales para prevenir la introducción y propagación de enfermedades dentro de los establecimientos avícolas. Entre ellas, se destaca el uso obligatorio de elementos de protección personal (EPP) durante todas las tareas, lo que incluye, entre otros, botas, guantes, mamelucos y barbijos, según el riesgo de la actividad. Es imprescindible realizar la desinfección rigurosa de calzado, manos, vehículos y equipos, antes y después de ingresar al establecimiento, asegurando que todos los elementos que entren o salgan se encuentren libres de posibles contaminantes. Además, es crucial evitar la contaminación cruzada entre lotes mediante la correcta planificación de los recorridos, la utilización exclusiva de equipos por lote, y la limpieza y desinfección adecuada entre visitas. Estas medidas, aplicadas de forma estricta y constante, son esenciales para proteger la salud de las aves, mantener la bioseguridad de las producciones y preservar la sanidad del sistema productivo en su conjunto. Procedimiento de muestreo Cantidad de muestras Se deberán tomar muestras de 20 aves. TIPO DE MUESTRA Una muestra de sangre de cada ave (una por tubo). Las muestras deben centrifugarse y enviarse sólo el suero libre de hemólisis. Cantidad mínima: 1 ml. Especies y categorías a muestrear • Aves destinadas a la producción de carne. • Aves destinadas a la producción de huevo. • Aves de reproducción abuelas y padres de línea pesada y liviana • Establecimientos ubicados dentro de la Zona de Control Sanitario (ZCS) en caso de presentarse un brote de IA H5/H7, determinado por el Senasa. • Aves de raza. INSTRUCTIVO. TOMA DE MUESTRAS PARA LA VIGILANCIA EPIDEMIOLÓGICA ACTIVA EN AVES DE CORRAL 7 �Materiales • Viales tipo Eppendorf (estériles). • Jeringas estériles de 2,5 ml a 3 ml. • Agujas (dependerá del tamaño del ave a muestrear). • Guantes. • Gradillas, alcohol, marcador indeleble y algodón. • Conservadora y refrigerantes. Procedimiento para la extracción de sangre Para la punción de la vena cubital (ala), se deberá: • Colocar el ave en posición de decúbito lateral, extender el ala, mojar las plumas con algodón húmedo; o levantar las mismas sobre la cara ventral de la base ósea del eje humeral, identificar la vena la cubital (vena del ala). • Presionar para ingurgitarla y extraer como mínimo 2.5 ml de sangre. Para obtener un suero sin hemólisis, se deberá transferir cuidadosamente la sangre de la jeringa al tubo, dejando que la sangre escurra por su pared lateral. Nunca se debe vaciar la sangre de forma brusca ni en el fondo del tubo. Además, es muy importante evitar agitar los tubos mientras se deja que la sangre repose para separar el suero. Los sueros deben mantenerse refrigerados entre +2 °C y +8 °C, desde el momento de su obtención hasta su envío al laboratorio. Este proceso no debe superar las 72 horas, siendo lo ideal completarlo dentro de las primeras 24 horas. Condiciones de conservación y transporte Acondicionamiento Embalaje primario • Debe ser hermético (ej: vial tipo Eppendorf). • En el caso de que se vayan a enviar varios recipientes primarios, cada uno de ellos deberá estar envuelto individualmente para evitar posibles daños. La/s muestra/s deberán colocarse de forma tal que no se produzcan derrames. Cada una de ellas deberá estar debidamente identificada – correspondiente al número de establecimiento – en una bolsa de nylon o conservadora. INSTRUCTIVO. TOMA DE MUESTRAS PARA LA VIGILANCIA EPIDEMIOLÓGICA ACTIVA EN AVES DE CORRAL 8 �Se deberán colocar una cantidad de refrigerantes suficiente, considerando el tiempo de duración del transporte; luego, se deberá cerrar y sellar la tapa. Tener en cuenta que, cuanto menor espacio “libre” en la conservadora, las muestras se mantendrán refrigeradas por mayor cantidad de tiempo Embalaje secundario • Debe ser hermético. • Debe contar con material absorbente suficiente, para prevenir eventuales roturas o filtraciones del embalaje primario. El embalaje secundario deberá ser acondicionado en una caja de telgopor, de forma tal que evite roturas y/o posibles derrames. Embalaje terciario a. Se deberá poner, cuando sea necesario, hielo seco o húmedo alrededor de embalaje secundario. En el caso de emplear hielo seco, el envoltorio debe permitir la salida del dióxido de carbono para evitar incrementos de presiones que lleven a la ruptura del paquete. Si se usa hielo húmedo, el embalaje será a prueba de goteo. b. Colocar refrigerantes en cantidad suficiente, considerando el tiempo de duración del transporte; luego se deberá cerrar y sellar la tapa. Tener en cuenta que cuanto menor espacio “libre” en la conservadora, las muestras se mantendrán refrigeradas por mayor cantidad de tiempo. c. En el exterior de la caja deberá colocarse un sobre de polietileno que contenga la documentación correspondiente. Cuando las muestras se envíen a Laboratorios de la Red del Senasa, se deberá incluir el talón con el número de acta generada en Sistema Integral de Gestión de Actas de Toma de Muestra (SIGATM). Protocolo de remisión de muestras-SIGATM Para que el veterinario acreditado pueda ingresar al SIGATM, primero deberá dirigirse al sitio web de la Agencia de Recaudación y Control Aduanero (ARCA)1 y acceder con clave fiscal. 1 ex AFIP INSTRUCTIVO. TOMA DE MUESTRAS PARA LA VIGILANCIA EPIDEMIOLÓGICA ACTIVA EN AVES DE CORRAL 9 �Allí deberá contar con el servicio del Senasa “SIGATM” vinculado. De lo contrario, se deberá buscar en la página principal el servicio y luego hacer clic en “Agregar”. Una vez vinculado el servicio, el acreditado podrá acceder al sistema a través del botón visualizado en la siguiente pantalla. Al momento de ingresar al SIGATM, el veterinario debe tener vigente su acreditación en Sanidad y Bienestar Aviar. De lo contrario, el sistema no permitirá el ingreso. Al momento de completar el protocolo, se deberá considerar el Instructivo SIGATM para la carga del acta de toma de muestras en aves de corral, disponible en el sitio web de Sanidad Aviar del Senasa. Envío de las muestras Previo al envío de las muestras, el veterinario deberá comunicarse con el laboratorio seleccionado para su recepción. Finalizado el embalaje de las conservadoras, las mismas deben ser despachadas para su análisis y diagnóstico al laboratorio seleccionado al confeccionar el acta en SIGATM. En el exterior de la caja debe colocarse un sobre de polietileno que contenga la documentación correspondiente. Se deberá incluir el talón con el número de acta generado en SIGATM. Se recuerda que el embalaje externo debe introducirse en una bolsa sellada de plástico para protegerlo de la humedad. INSTRUCTIVO. TOMA DE MUESTRAS PARA LA VIGILANCIA EPIDEMIOLÓGICA ACTIVA EN AVES DE CORRAL 10 �Cuadro resumen Categoría Selección Frecuencia Cantidad de muestra Tipo de muestra Edad de las aves Remisión de las muestras Resultados Observaciones Aves de producción de carne y producción de huevo El Senasa definirá anualmente los criterios para seleccionar los establecimientos que deberán incluirse obligatoriamente en la vigilancia. Anual 20 por unidad epidemiológica Suero Producción de carne: dentro de los 14 días previos a la faena. Producción de huevos: a partir de los 30 días de vida. Dentro de las 48 hs. Deben ser informados dentro de los 5 días de recibida la muestra. Serología positiva a IA H5/H7 es sospecha a IA. La notificación al Senasa debe ser inmediata. Aves de reproducción – abuelas y padres de línea liviana y pesada Todos los establecimientos de genética de abuelos y padres Anual 20 por unidad epidemiológica Suero Aves en la recría: dentro de los 14 días previos a pasar a producción y 14 días antes del envío a faena. Dentro de las 48 hs. Deben ser informados dentro de los 5 días de recibida la muestra. Serología positiva a IA H5/H7 es sospecha a IA. La notificación al Senasa debe ser inmediata. Establecimientos ubicados dentro de la Zona de Control Sanitario (ZCS) La vigilancia está implementada cuando los establecimientos de aves de corral queden comprendidos dentro de la ZCS dispuesta por el Senasa. Zona de perifoco: cada siete días. Zona de vigilancia: cada 14 días. 20 por unidad epidemiológica Suero Las edades que en ese momento se encuentre dentro de las zonas. Dentro de las 24 hs. Deben ser informados dentro de las 48 hs de recibida la muestra. Serología positiva a IA H5/H7 es sospecha a IA. La notificación al Senasa debe ser inmediata. Aves de raza Predios que envíen aves a exposiciones Anual, previo a la exposición 20 por unidad epidemiológica Suero Las edades que en ese momento se encuentre. Dentro de las 48 hs. Deben ser informados dentro de los 5 días de recibida la muestra. Serología positiva a IA H5/H7 es sospecha a IA. La notificación al Senasa debe ser inmediata. INSTRUCTIVO. TOMA DE MUESTRAS PARA LA VIGILANCIA EPIDEMIOLÓGICA ACTIVA EN AVES DE CORRAL 11 �Información complementaria • Sitio web de Sanidad Aviar de Senasa. • Buscador de Laboratorios de Red. • Buscador de Veterinarios Acreditados. Contacto Programa de Sanidad Aviar • Correo electrónico: avesygranja@senasa.gob.ar • Teléfono de contacto: (011) 4121-5409 INSTRUCTIVO. TOMA DE MUESTRAS PARA LA VIGILANCIA EPIDEMIOLÓGICA ACTIVA EN AVES DE CORRAL 12 �� Dublin Core The Dublin Core metadata element set is common to all Omeka records, including items, files, and collections. For more information see, http://dublincore.org/documents/dces/. Title A name given to the resource Publicaciones SENASA Dublin Core The Dublin Core metadata element set is common to all Omeka records, including items, files, and collections. For more information see, http://dublincore.org/documents/dces/. Title A name given to the resource Instructivo. Toma de muestras para la vigilancia epidemiológica activa en aves de corral. Veterinarios acreditados en Sanidad y Bienestar de las Aves Publisher An entity responsible for making the resource available Servicio Nacional de Sanidad y Calidad Agroalimentaria Date A point or period of time associated with an event in the lifecycle of the resource 2025 Contributor An entity responsible for making contributions to the resource Programa Nacional de Sanidad Aviar Dirección Nacional de Sanidad Animal Coordinación General de Comunicación Institucional Language A language of the resource Es Type The nature or genre of the resource Manual Identifier An unambiguous reference to the resource within a given context B.S.0194 Abstract A summary of the resource. El presente instructivo tiene como objetivo proporcionar a los veterinarios acreditados en Sanidad y Bienestar de las Aves los lineamientos técnicos necesarios para la ejecución del muestreo serológico en aves de corral. En el mismo se detallan los procedimientos a seguir, la metodología para la selección de establecimientos, las especificaciones sobre el tipo y cantidad de muestras a remitir, así como su posterior envío a los laboratorios que integran la red del Senasa. Table Of Contents A list of subunits of the resource. Objetivo Normativa Criterios de selección de establecimientos Responsables Período de muestreo Definiciones Medidas de bioseguridad Procedimiento de muestreo Cantidad de muestras Materiales Procedimiento para la extracción de sangre Condiciones de conservación y transporte Acondicionamiento Protocolo de remisión de muestras -SIGATM Envío de las muestras Cuadro resumen Información complementaria Contacto Enfermedades de las Aves Toma de muestras Veterinarios https://biblioteca.senasa.gob.ar/files/original/c4c4a638a7a2434e26811d9273bcc468.pdf 20f322d46add1cb588935f67a8b88816 PDF Text Text INSTRUCTIVO Toma de muestras en aves de raza Veterinarios oficiales y acreditados en sanidad y bienestar aviar �El Servicio Nacional de Sanidad y Calidad Agroalimentaria (Senasa) es un organismo descentralizado, responsable de ejecutar las políticas nacionales en materia de sanidad y calidad animal, vegetal y de la inocuidad de los alimentos de su competencia, así como de verificar el cumplimiento de la normativa vigente en la materia. Equipos de trabajo Programa Nacional de Sanidad Aviar Dirección de Planificación y Estrategia de Sanidad Animal Dirección Nacional de Sanidad Animal Coordinación General de Comunicación Institucional Edición 2025 �Índice Introducción 4 Normativa 4 Definiciones 4 Establecimientos 5 Período de muestreo 5 Cantidad de aves a muestrear por establecimiento 6 Toma de muestra 6 Materiales 6 Procedimiento para la extracción de sangre 6 Embalaje primario 7 Embalaje secundario 7 Embalaje terciario 7 Protocolo de remisión de muestras - SIGATM 8 Personal interno del Senasa 8 Veterinarios acreditados 9 Envío de las muestras 10 Información complementaria 10 Contacto 10 �Introducción El presente instructivo tiene como finalidad establecer los procedimientos y la metodología que deben aplicar los veterinarios oficiales y los acreditados en Sanidad y Bienestar Aviar Senasa para realizar el muestreo serológico en aves de raza, como requisito obligatorio para su participación en eventos y exposiciones. Asimismo, el instructivo detalla el procedimiento adecuado para la toma, acondicionamiento y envío de las muestras a los Laboratorios de la Red Senasa, garantizando la trazabilidad y la calidad del material remitido para su análisis. La vigilancia epidemiológica serológica es una herramienta esencial para la detección temprana de la Influenza Aviar, lo que permite la implementación oportuna de medidas de control y prevención de la enfermedad. La participación activa y comprometida de todos los actores involucrados — en particular, los productores y los veterinarios acreditados — es fundamental para fortalecer el sistema de vigilancia y asegurar la sanidad del sector avícola. La notificación inmediata al Senasa de cualquier sospecha clínica es obligatoria y constituye un pilar esencial para la respuesta rápida y efectiva ante eventuales casos de Influenza Aviar. Normativa Las siguientes resoluciones constituyen el marco regulatorio que deberá contemplarse para la realización del procedimiento del presente instructivo. • Resolución Senasa N° E1/2018 - Procedimiento único de registro para veterinarios y técnicos acreditados. • Resolución Senasa N° 421/2025 - Requisitos sanitarios y documentales y las actividades de control necesarios para el ingreso y egreso de los animales de todas las especies que concurren a exposiciones ganaderas. • Resolución Senasa N° 468/2025 – Programa de Vigilancia Epidemiológica Activa y Pasiva de la Influenza Aviar. Definiciones Con el objetivo de promover una comprensión precisa, es fundamental establecer las siguientes definiciones: • Aves de raza: refiere a especies de aves como gallinas o gallos, pavos, gallinetas, faisanes, codornices, patos o gansos de razas puras con fines de exposición en ferias y/o eventos. INSTRUCTIVO. TOMA DE MUESTRAS EN AVES DE RAZA 4 �• Aves ornamentales: refiere a aves como canarios o psitácidos de razas puras, con fines de exposición en ferias y/o eventos. • Aves de traspatio: aves domésticas criadas a pequeña escala cuya producción se consume en el lugar. • Exposición: evento donde se concentran aves de distintos orígenes para ser expuestos, visitados y/o vendidos. Una vez finalizado el evento, las aves se trasladan al lugar de origen o son vendidos a otros destinos. • Establecimiento: predio donde se encuentran alojadas aves, pertenecientes a uno o varios titulares. Dicho predio debe estar registrado ante el Senasa y se identifica mediante los primeros 11 dígitos del Registro Nacional Sanitario de Productores Agropecuarios (Renspa). Ejemplo: 00.000.0.00000 • Unidad Productiva: es la relación entre un productor y su actividad productiva dentro de un establecimiento agropecuario, vinculada a una ubicación física específica. El Senasa identifica y registra esta relación a través del Registro Nacional Renspa. Ejemplo: 00.000.0.00000/00 Establecimientos Las muestras deberán ser recolectadas por cada establecimiento. Si dentro de un mismo establecimiento hay más de una Unidad Productiva (UP), se deberán tomar muestras en aves de todas las UP presentes. El resultado obtenido será válido para la emisión del Documento de Tránsito electrónico (DT-e) correspondiente a cada UP. Período de muestreo El muestreo se debe realizar una vez por año, previo a la asistencia de la primera exposición. El resultado del mismo tendrá validez durante todo el año en curso. INSTRUCTIVO. TOMA DE MUESTRAS EN AVES DE RAZA 5 �Cantidad de aves a muestrear por establecimiento En establecimientos cuya cantidad de aves sea igual o menor a 20, se deberá muestrear la totalidad de ellas. En aquellos que cuenten con una cantidad superior a 20, solo se deberán tomar muestras de 20 aves. TIPO DE MUESTRA 1 Una (1) muestra de sangre de cada ave (una por tubo). Las muestras deben centrifugarse y enviarse sólo el suero libre de hemólisis. Cantidad mínima: 1 ml. Toma de muestra Materiales • Viales tipo Eppendorf (estériles). • Jeringas estériles de 2,5 ml a 3 ml. • Agujas dependerá de la especie a muestrear. • Guantes. • Gradillas, alcohol, marcador indeleble y algodón. • Conservadora y refrigerantes. Procedimiento para la extracción de sangre Para punción de la vena cubital (ala) se deberá colocar el ave en posición de decúbito lateral, extender el ala, mojar con algodón húmedo las plumas y/o levantarlas sobre la cara ventral de la base ósea de eje humeral, identificar la vena la cubital (vena del ala), presionar para ingurgitarla y extraer como mínimo 2.5 ml de sangre. Para obtener un suero sin hemólisis, se deberá transferir cuidadosamente la sangre de la jeringa al tubo, dejando que la misma escurra por su pared lateral. Nunca se debe vaciar la sangre de forma brusca ni en el fondo del tubo. INSTRUCTIVO. TOMA DE MUESTRAS EN AVES DE RAZA 6 �Además, es muy importante evitar agitar los tubos mientras se deja que la sangre repose para separar el suero. Los sueros deben mantenerse refrigerados entre +2 °C y +8 °C, desde el momento de su obtención hasta su envío al laboratorio. Este proceso no debe superar las 72 horas, siendo lo ideal completarlo dentro de las primeras 24 horas. Acondicionamiento Embalaje primario • Debe ser hermético (ej: vial tipo Eppendorf). • En el caso de que se vayan a enviar varios recipientes primarios, cada uno de ellos deberá estar envuelto individualmente para evitar posibles daños. La/s muestra/s deberán colocarse de forma tal que no se produzcan derrames. Cada una de ellas deberá estar debidamente identificada – correspondiente al número de establecimiento – en una bolsa de nylon o conservadora. Se deberán colocar una cantidad de refrigerantes suficiente, considerando el tiempo de duración del transporte; luego, se deberá cerrar y sellar la tapa. Tener en cuenta que, cuanto menor espacio “libre” en la conservadora, las muestras se mantendrán refrigeradas por mayor cantidad de tiempo. Embalaje secundario • Debe ser hermético. • Debe contar con material absorbente suficiente, para prevenir eventuales roturas o filtraciones del embalaje primario. El embalaje secundario deberá ser acondicionado en una caja de telgopor, de forma tal que evite roturas y/o posibles derrames. Embalaje terciario a. Se deberá poner, cuando sea necesario, hielo seco o húmedo alrededor de embalaje secundario. En el caso de emplear hielo seco, el envoltorio debe permitir la salida del dióxido de carbono para evitar incrementos de presiones que lleven a la ruptura del paquete. Si se usa hielo húmedo, el embalaje será a prueba de goteo. b. Colocar refrigerantes en cantidad suficiente, considerando el tiempo de duración del transporte; luego se deberá cerrar y sellar la tapa. Tener en cuenta que cuanto menor espacio “libre” en la conservadora, las muestras se mantendrán refrigeradas por mayor cantidad de tiempo. INSTRUCTIVO. TOMA DE MUESTRAS EN AVES DE RAZA 7 �c. En el exterior de la caja deberá colocarse un sobre de polietileno que contenga la documentación correspondiente. Cuando las muestras se envíen a Laboratorios de la Red del Senasa, se deberá incluir el talón con el número de acta generada en Sistema Integral de Gestión de Actas de Toma de Muestra (SIGATM). Si las muestras se remiten a un Laboratorio Oficial del Senasa, deberá adjuntarse el remito correspondiente al acta, también confeccionado en el SIGATM. El embalaje externo debe introducirse en una bolsa sellada de plástico para protegerlo de la humedad. Protocolo de remisión de muestras - SIGATM Personal interno del Senasa Para realizar la Carga del acta de toma de muestras en el SIGATM, el veterinario oficial del Senasa deberá ingresar al sitio web interno del organismo y dirigirse al Portal de Aplicaciones. Allí, en el menú principal, deberá seleccionar la opción “SIG UNILAB Actas SIGATM”. Veterinarios acreditados Para que el veterinario acreditado pueda ingresar al SIGATM, primero deberá dirigirse al sitio web de la Agencia de Recaudación y Control Aduanero (ARCA)1 y acceder con clave fiscal. 1Ex - Afip INSTRUCTIVO. TOMA DE MUESTRAS EN AVES DE RAZA 8 �Allí deberá contar con el servicio del Senasa “SIGATM” vinculado. De lo contrario, se deberá buscar en la página principal el servicio y luego hacer clic en “Agregar”. Una vez vinculado el servicio, el acreditado podrá acceder al sistema a través del botón visualizado en la siguiente pantalla. Al momento de ingresar al SIGATM, el veterinario debe tener vigente su acreditación en Sanidad y Bienestar Aviar. De lo contrario, el sistema no permitirá el ingreso. Al momento de completar el protocolo, se deberá considerar el Instructivo del SIGATM para la carga del acta de toma de muestras de aves de raza, disponible aquí. INSTRUCTIVO. TOMA DE MUESTRAS EN AVES DE RAZA 9 �Envío de las muestras Previo al envío de las muestras, el veterinario deberá comunicarse con el laboratorio seleccionado para su recepción. Finalizado el embalaje de las conservadoras, las mismas deben ser despachadas para su análisis y diagnóstico al laboratorio seleccionado al confeccionar el acta en SIGATM. En el caso de los Veterinarios Acreditados en Sanidad y Bienestar Aviar, los envíos serán acordados con el Laboratorio de Red seleccionado o vía remito si se selecciona el Laboratorio Oficial de Senasa en Martínez. Los veterinarios del Senasa deberán enviar las muestras de la misma manera que para la Vigilancia Epidemiológica. Información complementaria • Sitio web de Sanidad Aviar de Senasa. • Buscador de Laboratorios de Red. • Buscador de Veterinarios Acreditados. Contacto Programa de Sanidad Aviar • Correo electrónico: avesygranja@senasa.gob.ar • Teléfono de contacto: (011) 4121-5409 Mesa de Entradas - Laboratorio oficial de Senasa • Correo electrónico: mesalabadm@senasa.gob.ar INSTRUCTIVO. TOMA DE MUESTRAS EN AVES DE RAZA 10 �� Dublin Core The Dublin Core metadata element set is common to all Omeka records, including items, files, and collections. For more information see, http://dublincore.org/documents/dces/. Title A name given to the resource Publicaciones SENASA Dublin Core The Dublin Core metadata element set is common to all Omeka records, including items, files, and collections. For more information see, http://dublincore.org/documents/dces/. Title A name given to the resource Instructivo. Toma de muestras en aves de raza. Veterinarios oficiales y acreditados en sanidad y bienestar aviar Publisher An entity responsible for making the resource available Servicio Nacional de Sanidad y Calidad Agroalimentaria Date A point or period of time associated with an event in the lifecycle of the resource 2025 Contributor An entity responsible for making contributions to the resource Programa Nacional de Sanidad Aviar Dirección Nacional de Sanidad Animal Coordinación General de Comunicación Institucional Language A language of the resource Es Type The nature or genre of the resource Manual Identifier An unambiguous reference to the resource within a given context B.S.0195 Abstract A summary of the resource. El presente instructivo tiene como finalidad establecer los procedimientos y la metodología que deben aplicar los veterinarios oficiales y los acreditados en Sanidad y Bienestar Aviar Senasa para realizar el muestreo serológico en aves de raza, como requisito obligatorio para su participación en eventos y exposiciones. Table Of Contents A list of subunits of the resource. Introducción Normativa Definiciones Establecimientos Período de muestreo Cantidad de aves a muestrear por establecimiento Toma de muestra Materiales Procedimiento para la extracción de sangre Embalaje primario Embalaje secundario Embalaje terciario Protocolo de remisión de muestras - SIGATM Personal interno del Senasa Veterinarios acreditados Envío de las muestras Información complementaria Contacto Enfermedades de las Aves Toma de muestras Veterinarios https://biblioteca.senasa.gob.ar/files/original/f5869bc5a2d94d7ab8287e499e7ec6cb.pdf c0345eb7774d04118c9a801958bc9bff PDF Text Text GUÍA OPERATIVA Centinelización o muestreo ambiental en aves de corral �El Servicio Nacional de Sanidad y Calidad Agroalimentaria (Senasa) es un organismo descentralizado encargado de ejecutar las políticas nacionales en materia de sanidad y calidad animal y vegetal e inocuidad de los alimentos de su competencia, así como de verificar el cumplimiento de la normativa vigente en la materia. Equipos de trabajo Dirección Nacional de Sanidad Animal Programa Nacional de Sanidad Aviar Coordinación General de Comunicación Institucional Edición 2026 �Contenido Introducción 4 Marco normativo 4 Glosario conceptual 5 Requerimientos previos a la repoblación del predio afectado 5 Criterios de selección de un predio proveedor de aves centinelas 6 Procedimiento de centinelización 6 Acta de toma de muestras 7 Criterios a tener en cuenta para la confección en el SIGATM 7 Procedimiento de recolección de muestras en aves 9 Protocolo de recolección de muestras 10 Insumos necesarios 10 Procedimiento de toma de muestra según tipo de hisopado 10 Conservación 10 Acondicionamiento 11 Muestreo ambiental 11 Insumos necesarios 12 Consideraciones 12 Acondicionamiento 13 Resultados 13 Acta de toma de muestras 14 Carga del antecedente sanitario 14 Contactos 15 Programa de Sanidad Aviar 15 Mesa de ayuda del SIGATM 15 GUÍA OPERATIVA. CENTINELIZACIÓN O MUESTREO AMBIENTAL EN AVES DE CORRAL 3 �Introducción La centinelización o el muestreo ambiental constituyen procedimientos oficiales ejecutados por el Servicio Nacional de Sanidad y Calidad Agroalimentaria (Senasa), cuyo objetivo es verificar la ausencia del agente viral de influenza aviar (IA) en las unidades productivas que fueron afectadas por este virus. Esta determinación es un requisito indispensable para autorizar el levantamiento de la interdicción sanitaria y el repoblamiento del establecimiento. Dichos procedimientos se implementan únicamente tras el cumplimiento de un período de vacío sanitario no menor a 28 días posteriores al cierre del brote y con previa constatación oficial del acatamiento de las medidas de manejo, higiene y bioseguridad, conforme a la normativa vigente y con respaldo de resultados diagnósticos moleculares negativos. La metodología de centinelización contempla, entre otras alternativas técnicas, la introducción de aves centinelas susceptibles, las cuales son objeto de un seguimiento clínico sistemático y estudios diagnósticos mediante técnicas de biología molecular, necesarias para confirmar la erradicación viral. Por su parte, el muestreo ambiental contempla la recolección de muestras de superficies, polvo y equipos en áreas críticas del establecimiento, con el fin de detectar la posible persistencia del agente viral en el ambiente productivo, evaluar la eficacia de los procedimientos de limpieza y desinfección implementados y reducir el riesgo de reintroducción o diseminación del agente etiológico. Marco normativo El marco legal que sustenta las acciones vinculadas a la sanidad aviar y la respuesta ante enfermedades está compuesto por un conjunto de leyes, decretos y resoluciones vigentes en la República Argentina, así como también por recomendaciones internacionales. Entre ellas, se reconocen: • Ley N.° 27.233. Declara de interés nacional la sanidad animal y vegetal, así como la prevención, control y erradicación de enfermedades y plagas que afecten la producción agropecuaria, la flora y la fauna. Designa al Senasa como autoridad de aplicación, responsable de planificar, ejecutar y controlar las acciones sanitarias en todas las etapas de la producción, transformación, transporte, comercialización y consumo de agroalimentos, incluyendo producciones familiares y artesanales. • Ley de Policía Sanitaria Animal N.° 3.959. Establece la defensa de los ganados en la República Argentina frente a la introducción de enfermedades contagiosas exóticas. • Resolución Senasa N.° 466/2025 establece el Plan de Contingencia ante la presencia de uno o más casos de IA H5/H7 en la República Argentina. GUÍA OPERATIVA. CENTINELIZACIÓN O MUESTREO AMBIENTAL EN AVES DE CORRAL 4 �Glosario conceptual - Aves Centinelas: son ejemplares de aves de corral susceptibles a la infección viral por influenza aviar, las cuales son introducidas de manera controlada y estratégica en un predio que previamente fue afectado por IA H5/H7. - Unidad epidemiológica: designa a un grupo de aves con la misma probabilidad de exposición a un agente patógeno. - Vacío sanitario: constituye la fase temporal durante la cual se mantiene la interdicción sanitaria oficial del predio, iniciándose formalmente tras la certificación del cierre del brote. Este período se caracteriza por un aislamiento biológico estricto, quedando terminantemente prohibida la movilización de cualquier material inanimado (equipos, elementos, utensilios) dentro o fuera del predio. Asimismo, se impone una restricción rigurosa al movimiento de personas y vehículos. Cualquier movilización esencial de personal, vehículos o activos dentro de los flujos operacionales deberá contar con la autorización expresa y formal del Senasa, garantizando la bioseguridad del proceso. Requerimientos previos a la repoblación del predio afectado Antes de volver a repoblar el predio afectado, el productor/ titular de la habilitación sanitaria debe: a. Haber cumplimentado un vacío sanitario de al menos VEINTIOCHO (28) días desde el cierre del brote. Considerando el cierre del brote a la culminación de las tareas de sacrificio, enterramiento, limpieza y desinfección de las instalaciones. Adicionalmente en este tiempo el predio avícola podrá continuar con limpieza y desinfección y no deberá haber ninguna especie animal en las áreas de producción situadas dentro del cerco perimetral. b. Haber constatado las medidas de manejo, de higiene y de bioseguridad del predio, según Resolución Senasa N.° 1699/2019 (acción constatada mediante SIGACTAS y carga de antecedente sanitario correspondiente). c. De introducir aves centinelas, se podrá seleccionar en conjunto con el productor/titular de la habilitación un predio proveedor de las mismas, el cual deberá ser muestreado por el servicio oficial para el diagnóstico molecular de IA, en el Laboratorio Nacional del Senasa en la localidad de Martínez, Buenos Aires. GUÍA OPERATIVA. CENTINELIZACIÓN O MUESTREO AMBIENTAL EN AVES DE CORRAL 5 �Criterios de selección de un predio proveedor de aves centinelas • Las aves centinelas deben tener como mínimo 3 semanas de edad y ser, preferentemente, libres de patógenos específicos (Specific Patogen Free –SPF). • Las aves deben provenir de un predio con un resultado molecular negativo a IA, dentro de los 14 días anteriores a su introducción. Procedimiento de centinelización La cantidad de aves a ingresar se establecerá en función de la superficie de la unidad epidemiológica, considerando un rango comprendido entre el 1 y el 5% y de la capacidad calculada por metro cuadrado. En todos los casos, deberá asegurarse un mínimo de 20 aves centinelas por cada galpón del predio. Las aves deberán tener acceso y contacto con toda la superficie del galpón, para lo cual se forzará a su contacto mediante el uso de corrales o desplazamiento por paredes ajustables. En el caso de galpones con jaulas, el proceso de centinelización debe asegurar que las aves tomen contacto con la mayor superficie posible, pudiendo aumentar el número de aves, de acuerdo al criterio establecido por el Senasa. Una vez transcurridos los 14 días dentro del galpón (correspondiente a un periodo de incubación), se tomarán muestras oficiales de al menos 20 aves a través de hisopados traqueales/orofaríngeos, en pooles de 5 hisopos, considerando una prevalencia esperada del 15% y una confianza del 95%, para su posterior diagnóstico molecular de RT-PCR a IA en el Laboratorio Nacional del organismo sanitario. Si todas las muestras resultan negativas, se considera al galpón como negativo y el proceso de centinelización estará cumplido para ese espacio. El predio será declarado negativo cuando todos sus galpones cumplan el procedimiento. Solo así se levantará la interdicción del establecimiento, pudiendo realizar el repoblamiento una vez cumplidos todos los requisitos previamente mencionados. Respecto a las aves centinelas, una vez que han cumplido su función de vigilancia y han confirmado la negatividad del predio, podrán permanecer en el establecimiento o bien se podrá realizar su eliminación sanitaria controlada (sacrificio). Tanto los muestreos, como el procesamiento de las muestras y emisión de resultados solo serán válidos si son ejecutados por el Senasa. GUÍA OPERATIVA. CENTINELIZACIÓN O MUESTREO AMBIENTAL EN AVES DE CORRAL 6 �Durante el periodo de permanencia de las aves centinelas en el predio, el veterinario acreditado en Sanidad Aviar será el responsable de informar al Senasa la presencia de mortandad o signos clínicos compatibles con IA. Si hubiese alguna mortandad de aves centinelas, se procederá a la actuación de sospecha de IA, siguiendo los lineamientos del protocolo de notificación y atención de enfermedad denunciable. En caso de registrarse un resultado positivo a IA H5/H7, se suspenderá el proceso de centinelización y se reiniciarán las actividades de sacrificio controlado de las aves centinelas, disposición de mortalidad, sanitización de la cama, limpieza, desinfección, vacío sanitario y nueva centinelización. Acta de toma de muestras Las actas de toma de muestras deberán ser confeccionadas por el veterinario oficial del Senasa a través del sistema SIGATM, tanto para las aves muestreadas previo a su egreso del predio proveedor como para aquellas evaluadas para finalizar el período de centinelización. Una vez generadas, las actas deberán ser vinculadas al remito digital correspondiente mediante el mismo sistema y remitidas al Laboratorio del Central del Senasa. Criterios a tener en cuenta para la confección en el SIGATM Área: Programa de Sanidad Avícola. Motivo: Muestreo Aves. El submotivo se debe seleccionar según a la instancia de toma de muestra: • Proveedores aves centinela para el muestreo previo de las aves a centinelizar. • Muestreo aves centinela para el muestreo el día 14 de las aves centinela que se encuentran en el galpón. GUÍA OPERATIVA. CENTINELIZACIÓN O MUESTREO AMBIENTAL EN AVES DE CORRAL 7 �Para el campo correspondiente a la “Matriz”, el veterinario oficial deberá seleccionar la opción “Hisopados”. En los Ítems muestras, es necesario indicar el origen del hisopado (traqueal/ orofaríngeo/cloacal) y la cantidad de hisopos que contiene cada pool. GUÍA OPERATIVA. CENTINELIZACIÓN O MUESTREO AMBIENTAL EN AVES DE CORRAL 8 �En el apartado “Ensayos”, se deberá completar el grupo de análisis correspondiente e indicar la opción “Diagnóstico molecular de influenza aviar”. Luego, se deberá tildar el análisis “RT-PCR EN TIEMPO REAL GEN M” y hacer clic en el botón “Asignar”. Por último, se deberá seleccionar el laboratorio de destino al que se enviará la muestra, que será en este caso la Dirección General de Laboratorios y Control Técnico del Senasa. Procedimiento de recolección de muestras en aves Se deben respetar las prácticas de bioseguridad, incluido el uso de equipo de protección personal, para la recolección de muestras. Se recuerda que la toma, acondicionamiento, remisión y análisis es competencia del Senasa. GUÍA OPERATIVA. CENTINELIZACIÓN O MUESTREO AMBIENTAL EN AVES DE CORRAL 9 �Protocolo de recolección de muestras Insumos necesarios • Elementos de protección personal (guantes, mameluco, gafas, barbijo, botas y cubrebotas). • Hisopos de material sintético (rayón o dacrón, no algodón y no deben ser con mango de madera ya que inhibe la técnica de PCR). • Tijeras. • Desinfectantes. • Tubos. • Medio de transporte viral o en su defecto PBS/ solución fisiológica (líquido de conservación). • Marcador indeleble para rotular. • Etiquetas. • Conservadoras y refrigerantes. Procedimiento de toma de muestra según tipo de hisopado - Traqueal: Uno por ave. Levantar la cabeza del ave, abrir el pico, extraer suavemente la lengua e introducir el hisopo en la tráquea girando 2 o 3 veces de manera enérgica, para extraer algunas células (al extraer la lengua, se hace más visible el orificio traqueal). - Orofaríngeo: Uno por ave. Levantar la cabeza del ave, abrir el pico, movilizar el hisopo 3 a 4 veces raspando de manera enérgica las paredes de la cavidad orofaríngea, para retirar algunas células. Luego de tomar la muestra, cortar de inmediato la extremidad del hisopo y sumergirlo en el tubo previamente identificado. Los hisopos deben estar sumergidos en el medio de transporte viral (BHI): caldo cerebro corazón, caldo triptosa fosfato tamponado, caldo nutritivo, caldo peptona o medio comercial de transporte para virus) o en su defecto solución fisiológica de cloruro de sodio al 0,9%, estéril o PBS, hasta cubrir la cabeza del hisopo (de 3 a 5 ml por pool). Se deben remitir hasta 5 hisopos por tubo y no se deben mezclar hisopados traqueales/orofaríngeos con cloacales, es decir que no pueden ir en un mismo pool. Conservación Las muestras deberán ser conservadas y transportadas, desde su obtención hasta su envío al laboratorio a (+2ºC a +8ºC), en un período que no supere las 72 horas. Plazo ideal: inferior a las 24 horas. GUÍA OPERATIVA. CENTINELIZACIÓN O MUESTREO AMBIENTAL EN AVES DE CORRAL 10 �Acondicionamiento Embalaje primario • El recipiente primario debe ser hermético. En el caso de que se vayan a enviar varios recipientes primarios, cada uno deberá estar envuelto individualmente para evitar posibles daños. • Cuando se calcule el volumen de las muestras que se van a enviar, se deberá tener en cuenta el volumen del medio de transporte. • Colocar las muestras de tal forma que no se produzcan derrames. • Colocar las muestras identificadas individualmente (de un mismo predio) en una bolsa de nylon o bolsa conservadora, identificando a esta última con el número de Renspa o nombre del titular del predio. • Colocar refrigerantes en cantidad suficiente, considerando el tiempo de duración del transporte. Cerrar y sellar la tapa. Embalaje secundario El contenedor secundario debe ser hermético y contener material absorbente, suficiente para absorber todo el contenido de los embalajes primarios en caso de rotura o filtraciones. Embalaje terciario Se deberá poner —cuando sea necesario— hielo seco o húmedo alrededor del embalaje secundario. En caso de emplear hielo seco, el envoltorio debe permitir la salida del dióxido de carbono para evitar incrementos de presiones que lleven a la ruptura del paquete. Si se utiliza hielo húmedo, el embalaje deberá ser a prueba de goteo. El embalaje debe introducirse en una bolsa sellada de plástico para protegerlo de la humedad. Colocar en su exterior el remito generado en el Sistema Integral de Gestión de Acta de Toma de Muestra (SIGATM). Muestreo ambiental Esta metodología comprende la recolección de muestras de ambientales — tales como superficies, polvo y equipos— en áreas críticas del establecimiento, con el propósito de detectar la posible persistencia del agente viral en el ambiente productivo, verificar la eficacia de los procedimientos de limpieza y desinfección aplicados y minimizar el riesgo de reintroducción o diseminación del agente etiológico. Durante la actividad de muestreo ambiental deberán respetarse las medidas de bioseguridad vigentes, incluyendo el uso obligatorio de equipo de protección personal (EPP). GUÍA OPERATIVA. CENTINELIZACIÓN O MUESTREO AMBIENTAL EN AVES DE CORRAL 11 �La toma de muestras, su acondicionamiento, remisión y análisis son competencia exclusiva del personal de Senasa. El muestreo podrá realizarse mediante el uso de hisopos o gasas, debiendo definirse previamente el insumo a emplear en consulta con la Dirección Nacional de Sanidad Animal y conforme a los criterios técnicos establecidos. Insumos necesarios • Elementos de protección personal (guantes, mameluco, gafas, barbijo, botas y cubrebotas). • Hisopos de material sintético (rayón o dacrón, no algodón y no deben ser con mango de madera ya que inhibe la técnica de PCR) o gasas 4x4. • Tijeras. • Desinfectantes. • Tubos. • Bolsa hermética. • Medio de transporte viral o en su defecto PBS/ solución fisiológica (líquido de conservación). • Marcador indeleble para rotular y etiquetas. • Conservadoras y refrigerantes. Consideraciones a. Entre las zonas adecuadas para la toma de muestras, se incluyen las superficies dentro del galpón que estuvieron en contacto con las aves enfermas (bebederos, suelo, paredes, jaula, manijas, puertas, áreas de nidificación (de corresponder), los comederos, ventiladores de circulación y de extracción (si hubiese). b. Para la recolección de muestras, el/los hisopos o la/las gasas a utilizar se deben humedecer previamente con solución fisiológica. c. Recolectar muestras de al menos 10 lugares seleccionados en el galpón. d. Si se utiliza gasa, se deberá introducir en una bolsa y verter el líquido de conservación adentro de la misma. Luego, sellarla sacando el aire presionando levemente. Hacer presión con las manos suavemente por 15 segundos, para liberar la muestra en el líquido. Por último, verter el contenido del líquido de la mezcla en un tubo rotulado. Identificar el tubo correctamente, con fecha, número de muestra, origen. GUÍA OPERATIVA. CENTINELIZACIÓN O MUESTREO AMBIENTAL EN AVES DE CORRAL 12 �e. Si la muestra fuese tomada con un hisopo, luego de la recolección se deberá introducir el mismo en un tubo y agitarlo vigorosamente. Identificar el tubo correctamente, con fecha, número de muestra, origen. f. Cada hisopo o gasa podrá utilizarse para el muestreo de múltiples superficies correspondientes a una misma zona específica de la instalación (por ejemplo, diferentes sectores de una pared). A su vez, se pueden utilizar varios hisopos para obtener muestras de un mismo lugar o zona, y agruparlas en un único tubo. En ningún caso deberán mezclarse hisopos provenientes de distintos lugares o zonas. Cada tubo deberá estar rotulado de manera clara y precisa, consignando el origen de la muestra. g. Evitar que se cree una muestra demasiado oscura, densa o viscosa. h. Eliminar los materiales descartables de manera correcta, siguiendo las medidas de bioseguridad. i. Desde la toma de muestra hasta el arribo al Laboratorio Central del Senasa, la muestra debe estar refrigerada, siendo 72 horas el plazo máximo de recepción. j. No congelar ni freezar la muestra. Para períodos de tiempo más prologados se puede colocar en ultrafreezer (-80°C). Acondicionamiento Para el acondicionamiento de la muestras, seguir el mismo procedimiento que para la centinelización (ver página 11). Resultados El predio será declarado negativo cuando la totalidad de las muestras obtenidas arrojen resultados negativos. En dicho momento, el Senasa procederá a levantar la interdicción sanitaria y el predio quedará habilitado para el repoblamiento de aves, siempre y cuando se hayan cumplido todos los requisitos previamente establecidos. GUÍA OPERATIVA. CENTINELIZACIÓN O MUESTREO AMBIENTAL EN AVES DE CORRAL 13 �En caso de que los diagnósticos resulten positivos, se deberá proceder a la reiteración de los procedimientos de limpieza y desinfección, los cuales serán ejecutados y verificados conforme a los protocolos vigentes, hasta que se obtengan resultados negativos que permitan la repoblación del predio. Acta de toma de muestras Para la confección de las actas de toma de muestras en el SIGATM, se debe tener en cuenta los siguientes criterios: Área: Programa de Sanidad Avícola Motivo: Muestreo Aves Submotivo: Muestreo ambiental Posteriormente, para la confección del acta en SIGATM, se deberá proceder de igual manera que en el proceso de centinelización, asegurando el registro completo de la toma de muestra. Carga del antecedente sanitario Luego de realizar el muestreo de las aves centinelas en el proveedor de origen y en el predio afectado, y una vez obtenidos los resultados negativos, se deberá cargar en el Sistema Único de Registro (SUR) el antecedente “Autorización de Ingresos y Egresos de Aves Centinela”, adjuntando el resultado de laboratorio y la documentación correspondiente a la actuación. GUÍA OPERATIVA. CENTINELIZACIÓN O MUESTREO AMBIENTAL EN AVES DE CORRAL 14 �Contactos Programa de Sanidad Aviar • Correo electrónico: avesygranja@senasa.gob.ar • Teléfono de contacto: (011) 4121-5409. Mesa de ayuda del SIGATM • Correo electrónico: sigatmayuda@senasa.gob.ar GUÍA OPERATIVA. CENTINELIZACIÓN O MUESTREO AMBIENTAL EN AVES DE CORRAL 15 �� Dublin Core The Dublin Core metadata element set is common to all Omeka records, including items, files, and collections. For more information see, http://dublincore.org/documents/dces/. Title A name given to the resource Publicaciones SENASA Dublin Core The Dublin Core metadata element set is common to all Omeka records, including items, files, and collections. For more information see, http://dublincore.org/documents/dces/. Title A name given to the resource Guía operativa. Centinelización o muestreo ambiental en aves de corral Publisher An entity responsible for making the resource available Servicio Nacional de Sanidad y Calidad Agroalimentaria Date A point or period of time associated with an event in the lifecycle of the resource 2026 Contributor An entity responsible for making contributions to the resource Dirección Nacional de Sanidad Animal Programa Nacional de Sanidad Aviar Coordinación General de Comunicación Institucional Language A language of the resource Es Type The nature or genre of the resource Manual Identifier An unambiguous reference to the resource within a given context B.S.0196 Abstract A summary of the resource. La centinelización o el muestreo ambiental constituyen procedimientos oficiales ejecutados por el Servicio Nacional de Sanidad y Calidad Agroalimentaria (Senasa), cuyo objetivo es verificar la ausencia del agente viral de influenza aviar (IA) en las unidades productivas que fueron afectadas por este virus. Esta determinación es un requisito indispensable para autorizar el levantamiento de la interdicción sanitaria y el repoblamiento del establecimiento. Table Of Contents A list of subunits of the resource. Introducción Marco normativo Glosario conceptual Requerimientos previos a la repoblación del predio afectado Criterios de selección de un predio proveedor de aves centinelas Procedimiento de centinelización Acta de toma de muestras Criterios a tener en cuenta para la confección en el SIGATM Procedimiento de recolección de muestras en aves Protocolo de recolección de muestras Insumos necesarios Procedimiento de toma de muestra según tipo de hisopado Conservación Acondicionamiento Muestreo ambiental Insumos necesarios Consideraciones Acondicionamiento Resultados Acta de toma de muestras Carga del antecedente sanitario Contactos Programa de Sanidad Aviar Mesa de ayuda del SIGATM Enfermedades de las Aves Influenza Aviar Toma de muestras https://biblioteca.senasa.gob.ar/files/original/2351c7e4d120fd0ddb012599f830a81f.pdf ed45d4614cbf519e317fed8066462c84 PDF Text Text GUÍA OPERATIVA Notificación y atención de sospechas de influenza aviar y enfermedad de Newcastle En aves (de corral y de no corral) y mamíferos marinos �El Servicio Nacional de Sanidad y Calidad Agroalimentaria (Senasa) es un organismo descentralizado, responsable de ejecutar las políticas nacionales en materia de sanidad y calidad animal, vegetal y de la inocuidad de los alimentos de su competencia, así como de verificar el cumplimiento de la normativa vigente en la materia. Equipos de trabajo Dirección Nacional de Sanidad Animal Dirección General de Laboratorios y Control Técnico Coordinación General de Comunicación Institucional Edición 2025 �INDICE Introducción 5 Definiciones 5 Obligatoriedad de notificar 5 Vías de notificación 6 Sospecha de influenza aviar/enfermedad de Newcastle 6 Consideraciones generales de sospecha 6 Aves de corral y de traspatio 6 Eventos sanitarios 7 Consideraciones epidemiológicas 7 Aves silvestres 7 Mamíferos marinos 8 Procedimientos 8 Sospecha 8 Previo a la visita al predio 9 En el predio con sospecha 11 Medidas de protección personal 11 Secuencia de colocación del EPI 12 Secuencia de retirada del EPI 12 Otras consideraciones 13 Inspección del establecimiento 13 Interdicción del establecimiento 14 Movimientos o traslados 14 Censo 14 Ficha técnica 14 Extracción de muestras 18 Aves comerciales 18 Materiales 18 Tipo de muestra 18 Consideraciones para tener en cuenta 19 Aves silvestres (observaciones y recolección de datos) 19 Conservación 21 Tipo y cantidad 21 Aves de corral 22 Aves no de corral (traspatio) 22 Aves silvestres y mamíferos marinos 22 Resumen de tipo y cantidad de muestras 23 Acondicionamiento 23 Embalaje primario 23 Embalaje secundario 23 � Embalaje terciario 24 Envío 24 Protocolo en SIGATM 26 Envío al laboratorio oficial del Senasa 26 Aislamiento 27 Tránsito 27 Carga en el SUR 27 Diagnóstico 28 Contacto 29 Anexo 29 �Introducción La presente guía tiene como objetivo proporcionar información técnica a los profesionales y técnicos del Senasa sobre las acciones que deben seguir en caso de recibir una notificación de sospecha por Influenza Aviar (IA) o enfermedad de Newcastle (ENC) –ambas de declaración obligatoria– en aves de corral, aves no de corral y mamíferos marinos. La Influenza Aviar y enfermedad de Newcastle son enfermedades zoonóticas, cuya transmisión puede efectuarse por contacto indirecto a través de vehículos (autos, celulares, ropa, calzados, etc.) o por contacto directo, con la manipulación de aves enfermas, sospechosas o muertas, o bien durante el desarrollo de actividades que impliquen el contacto con fluidos o excreciones de animales. Los animales infectados eliminan el virus por medio de sus excreciones y secreciones. Si se confirma la presencia de alguna de estas enfermedades, las medidas sanitarias de control y erradicación previstas en la legislación deberán ser implementadas de forma inmediata. Definiciones Aves de corral: designa todas las aves criadas o mantenidas en cautiverio para la producción de productos comerciales animales, o la reproducción para estos fines. Las aves no de corral se consideran como aves de corral cuando tengan contacto directo o indirecto con aves de corral o instalaciones avícolas. Aves de traspatio: designa a las aves que se crían en un predio registrado ante el Senasa como aves de traspatio, cuyos productos están destinados únicamente para el autoconsumo. Aves silvestres cautivas: designa a aves cuyo fenotipo no se ha visto significativamente afectado por la selección humana, pero que están cautivas o viven bajo supervisión o control de los seres humanos. Aves silvestres de vida libre: designa a aves cuyo fenotipo no se ha visto afectado por la selección humana y que viven independientes, sin necesitad de supervisión o control por parte de los seres humanos. Aves no de corral: incluye a las aves silvestres de vida libre, las de traspatio y las silvestres cautivas criadas para espectáculos, competencias, exposiciones, colecciones de zoológicos y concursos, reproducción o la venta. También abarca a las aves de compañía, siempre y cuando no tengan contacto directo o indirecto con aves de corral o instalaciones de producción avícolas. Mamíferos marinos: incluye a los mamíferos marinos que se han adaptado a vivir en el mar y que, según el conocimiento actual, son susceptibles a los virus de influenza aviar, como por ejemplo los delfines, lobos marinos, focas, elefantes marinos. Obligatoriedad de notificar El artículo 6º de la Resolución Senasa N° 153/2021 establece la obligatoriedad para toda autoridad nacional, provincial o municipal, veterinarios, trans- 5 �portistas, entes sanitarios, personas responsables o encargadas de cualquier explotación ganadera, industrial o doméstica, universidades, organismos de investigación, zoológicos, parques o reservas naturales nacionales, provinciales o municipales y laboratorios diagnósticos estatales o privados, o cualquier persona humana o jurídica, de notificar y reportar al Senasa una sospecha o confirmación de caso de todas las enfermedades, síndromes y eventos listados en la normativa en cuestión, en todas las especies de animales domésticos y de la fauna silvestre. Vías de notificación La notificación de sospechas de enfermedades de notificación obligatoria debe realizarse a través de los siguientes canales oficiales: Presencial (o telefónicamente) en las oficinas del Senasa. WhatsApp al (11) 5700 5704. Correo electrónico notificaciones@senasa.gob.ar Formulario Avisá al Senasa, disponible en el sitio web oficial. Sospecha de influenza aviar/enfermedad de Newcastle Se considera sospecha a las situaciones en las que se presenta un cuadro clínico sindrómico compatible o se detectan resultados patológicos post mortem o resultados de laboratorio indicativos de la posible infección por IA o ENC, pero que no son concluyentes; o se ha establecido un vínculo epidemiológico con un caso confirmado de una infección o infestación. Consideraciones generales de sospecha a. La detección de una o más aves con algún signo clínico o lesiones anatomopatológicas compatibles con IA y ENC, aumento repentino de la mortandad o alteración de parámetros productivos. b. Una o más aves que, según investigación epidemiológica, resulten nexo epidemiológico a un brote, y que pueden o no presentar signos clínicos o lesiones anatomopatológicas compatibles con la/s enfermedades. c. En aves de corral, un diagnóstico positivo de laboratorio a IA H5/H7 por pruebas serológicas o moleculares, sin la presencia de signos clínicos compatibles, mortandad o alteración de parámetros productivos asociados. d. En aves de no corral, un diagnóstico positivo de laboratorio a IA H5/H7 por pruebas serológicas, sin la presencia de signos clínicos compatibles, mortandad o alteración de parámetros productivos asociados. Aves de corral y de traspatio La decisión de considerar como sospechosa a una explotación de IA/ENC se encuentra normada en la Res. Senasa N.° 153/2021, la cual establece los siguientes síndromes y criterios: Caída de postura: disminución de la postura mayor al 5% durante más 6 �de 2 días sin ninguna justificación. Los huevos pueden ser deformes, sin pigmentación, de color anormal, ásperos, de cáscara delgada o sin cáscara y con albúmina acuosa. Síndrome neurológico (SN): tortícolis, opistótonos, movimientos rítmicos laterales de la cabeza, temblores, ataxia, incoordinación, paresia o parálisis, espasmos clónicos, desorientación, nistagmo, alteraciones visuales, movimientos circulares y convulsiones. Síndrome respiratorio (SR): estornudos, tos, jadeo, rales, supuración ocular y nasal, senos paranasales infraorbitarios inflamados o sinusitis, conjuntivitis asfixia y estertores. La cabeza y el cuello se encuentran extendidos hacia delante y hacia arriba durante la inspiración. Se debe notificar cuando está asociado a una mortandad semanal superior al 3% sin justificar. Eventos sanitarios Son aquellos que, por sus características epidemiológicas, presentan las siguientes características: Aparición por primera vez de una enfermedad o una cepa nueva de un agente patógeno, en el país o en una región. Mortandades de animales superiores a la media habitual de la unidad productiva; en aves representa un índice de mortalidad semanal superior al 3%. Mortandad de fin de ciclo mayor o igual al 10%, sin justificar. Reducción de la ingesta de alimento y agua superior al 20%, sin causa aparente, en planteles comerciales de aves de corral. Cualquier situación sanitaria fuera de lo común. Todo indicio clínico o lesión post mortem que sugiera la presencia de IA/ENC. Consideraciones epidemiológicas Si las aves han estado en contacto directo o indirecto con una explotación avícola que haya estado infectada con el virus de la IA o ENC. Si una explotación de cría o recría ha distribuido aves que, según se haya demostrado posteriormente, estuvieran infectados con el virus de la IA o ENC. Si existe la posibilidad de que las aves hayan estado expuestos al virus de la IA o ENC, por ejemplo, debido a la entrada en la explotación de personas, vehículos, etc. Aves silvestres Al momento de determinar una sospecha de IA/ENC en aves silvestres, se deberá tener en cuenta: Que se trate de una mortalidad que afecta a una o más especies, y más de 3 individuos en el mismo lugar o área. Que las aves muertas se localicen cercanas a establecimientos avícolas. Que las aves muertas se localicen en zonas húmedas (lagunas, ríos, 7 �embalses etc.), y en particular cuando estas áreas se encuentren próximas a establecimientos avícolas. Especies de mayor interés: aves acuáticas y marinas, como patos, gansos, cisnes, grullas, playeritos, gaviotas, pelicanos, flamencos, petreles; y aves rapaces, como jotes, chimangos, caranchos, gavilanes, búhos. Nota: ante cualquier consulta, comunicarse con la Coordinación General de Epidemiología de la Dirección Nacional de Sanidad Animal. El contacto de aves silvestres con aves domésticas es un factor determinante para la aparición de nuevos brotes. Mamíferos marinos Al momento de determinar una sospecha1 de influenza aviar en mamíferos marinos, se deberá tener en cuenta: La detección de animales con signos clínicos compatibles con IA o animales muertos. Coexistencia de mamíferos marinos y aves silvestres con sintomatología compatible a IA o mortandad. En este caso, se deberá tomar muestras de ambas especies. 1 Dado que la situación epidemiológica de la influenza aviar es dinámica se deben verificar las indicaciones vigentes comunicadas por memorándum oficial de la Dirección Nacional de Sanidad Animal. Procedimientos Sospecha Ante la recepción de una notificación de sospecha, como medida preventiva inmediata y hasta confirmar si efectivamente se trata de un caso sospechoso, se deberá bloquear la autogestión del predio, restringir los ingresos y egresos y comunicar de inmediato al área de notificación de sospechas de enfermedades de denuncia obligatoria, la cual articulará con el Programa Nacional de Sanidad Aviar y la Coordinación General de Epidemiologia para que se indiquen las medidas sanitarias que se implementarán. 8 �El veterinario del Senasa debe cumplir, dentro de las 24 horas de recibida una notificación, con la intervención sanitaria en el predio. Es posible descartar la sospecha antes de concurrir al predio cuando: Se identifica otra posible causa de la sintomatología. La mortandad observada está relacionada al manejo de la temperatura, la humedad, altos niveles de amoníaco. Se reconocen intoxicaciones alimenticias o por el agua, por ejemplo. En esos casos, el veterinario oficial deberá completar en el Sistema Integrado de Gestión de Sanidad Animal (SIGSA) el protocolo de enfermedad directamente como Caso Descartado de influenza aviar o enfermedad de Newcastle (según corresponda), seleccionando el síndrome o evento que más se ajuste a la situación: síndrome respiratorio, nervioso, caída de postura y/o mortandad, según Res. Senasa N.° 153/2021, justificando correctamente el motivo de descarte. De proseguir con la atención de la sospecha de IA o ENC, se deberá registrar el correspondiente Protocolo de Enfermedad de Notificación Obligatoria ingresando al SIGSA. Previo a la visita al predio Las medidas de biocontención y procedimientos de atención tienen la finalidad de controlar y evitar la dispersión del posible patógeno, hasta tanto se descarte o confirme la presencia de un agente infeccioso. Entre las acciones que el veterinario oficial del Senasa deberá seguir antes de la visita al establecimiento, se incluyen: a. En caso de no poseer número de Renspa, otorgar y registrar la actividad avícola correspondiente. b. Reconfirmar el bloqueo de la autogestión y de emisión de movimientos efectuado. El establecimiento quedará interdictado con prohibición de ingreso y salida de aves. Durante el tiempo que dure la sospecha, no se podrán retirar cadáveres de aves, carne de aves de corral, piensos, utensilios, materiales, desperdicios, guano, cama, huevos, o cualquier otro elemento de la explotación que pueda ser portador del virus de la IA/ENC, en cumplimiento con las medidas de bioseguridad necesarias para minimizar el riesgo de propagación de la enfermedad. c. Verificar en el SIGSA y en el Sistema Único de Registros (SUR): 1. stock de aves; 2. últimos movimientos 14 días previos a la sospecha; 3. georreferenciación; 4. infraestructura; 5. veterinario acreditado en sanidad y bienestar de las aves. 9 �Cualquier desvío observado en la visita se debe subsanar en el sistema al regreso de la misma. d. Cargar el antecedente sanitario “Muestreo sospecha de I.AVIAR/ENC”, con la fecha de atención de la sospecha. e. Comunicar con el veterinario acreditado en sanidad y bienestar de las aves para poder fiscalizar con su presencia el establecimiento. f. En caso de que la sospecha sea en aves o mamíferos silvestres en cautiverio (zoológicos, ecoparques, centros de rescate o similar) se deberán tomar las mismas medidas, contemplando las diferencias entre un predio rural y este tipo de establecimientos. Particularmente, para estos casos, se debe: I. Prohibir el traslado de animales dentro o fuera de las instalaciones, excepto situaciones específicas que se evaluarán en conjunto entre las autoridades de fauna, los responsables veterinarios del predio y el Senasa. II. Suspender temporalmente la administración de exámenes médicos rutinarios/preventivos a las aves y mamíferos marinos. III. Posponer todas las actividades no esenciales para evitar la dispersión del virus entre los diferentes recintos. IV. Exigir la desinfección del calzado/cubrebotas desechables y ropa exterior para entrar y al salir de los recintos de animales y/o áreas de manejo en los recintos de animales. g. En caso de que la sospecha sea en aves o mamíferos silvestres de vida libre, se deberá comunicar con las autoridades provinciales de fauna silvestre. Particularmente, para estos casos, se debe: I. recomendar que se limite el acceso de personas, animales de compañía y vehículos a la zona donde ocurrió la sospecha. II. evaluar la posibilidad de implementar - de ser necesario - el procedimiento veterinario para realizar sedación, eutanasia y toma de muestras. Los protocolos de eutanasia serán elegidos por los equipos locales con experiencia en la materia, en función de la disponibilidad de drogas aptas para esta especie y de acuerdo a los criterios y legislación vigente en cada jurisdicción. III. realizar la remoción y disposición final del cadáver (a cargo de la autoridad municipal, provincial o nacional correspondiente), con el fin de evitar el contacto con el público y la propagación del virus mediante perros, aves y mamíferos carroñeros que puedan acceder al cadáver. IV. desaconsejar el traslado de los animales con sintomatología relacionada a Influenza aviar a centros de rehabilitación o atención primaria de fauna marina. h. Registro y protocolización. Completar en el SIGSA el protocolo de enfermedad, según el siguiente criterio: motivo del protocolo: sospecha; seleccionar el síndrome o evento que más se ajuste a la situación: sín- 10 �drome respiratorio, nervioso, caída de postura y/o mortandad, según Res. Senasa N.° 153/2021; especie: seleccionar “Aves” en caso de tratarse de explotaciones comerciales o traspatio. Indicar “Fauna Silvestre” si se encuentran involucradas aves o mamíferos de la fauna silvestre (por ejemplo, lobo marino); enfermedad: seleccionar “Influenza aviar” o “enfermedad de Newcastle”, según corresponda. tipo: en caso de haber seleccionado la especie “Ave”, deberá indicar en este campo si corresponde a una explotación de traspatio o comercial. En los casos en que se encuentren afectadas aves y mamíferos, cuando se inicie el protocolo se deberán detallar todas las especies afectadas en la tabla de población. Por ejemplo. preparar los insumos necesarios para la toma y acondicionamiento de la muestra. En el predio con sospecha Medidas de protección personal A partir de la detección de casos de IA en personas, se han desarrollado una serie de recomendaciones que el veterinario oficial debe tener en cuenta al momento de atender una sospecha de la enfermedad en aves de corral y no corral. Antes de ingresar a predios con aves y proceder a la manipulación de aves enfermas, sospechosas o materiales contaminados, se deberá disponer de Equipos de Protección Individual (EPI) que serán utilizados durante toda la jornada de trabajo, esto es, mientras dure la exposición al riesgo. Una vez finalizadas las tareas, los elementos deberán quitarse y desecharse en el mismo establecimiento. Se debe asegurar que todos los agentes tengan acceso a los EPI. Los componentes del mismo son: Protección corporal: ropas protectoras, preferiblemente mamelucos desechables con manga larga y ajustables en los extremos más un delantal impermeable. Protección de cabeza con gorro/cofia desechable que cubra completamente los cabellos. 11 � Protección de pies con botas de goma o poliuretano que puedan ser desinfectados y, preferentemente, cubrebotas desechables. Protección de manos con guantes protectores desechables (de nitrilo o vinilo) o guantes de trabajo de goma resistente que puedan desinfectarse; para evitar dermatitis pueden usarse guantes de algodón por debajo de los guantes protectores. Protección respiratoria mediante respiradores que cubran boca y nariz. En casos particulares se podrán requerir equipos de respiración autónoma. Protección ocular por medio de anteojos protectores, que deben lavarse y desinfectarse después de su uso. El procedimiento de colocación y retirada del EPI tiene como objetivo reducir al mínimo la posibilidad de autocontaminación y autoinoculación. Secuencia de colocación del EPI 1. Colocar el primer par de cubrecalzados. 2. Colocar el mameluco descartable. 3. Colocar el primer par de guantes, asegurándose de que queden debajo de las mangas del mameluco; para ello, perforar el mameluco con el dedo pulgar. 4. Colocar el segundo par de guantes sobre las mangas del mameluco. Si es necesario, sellar los extremos con cinta adhesiva para asegurar el ajuste. 5. Colocar el segundo par de cubrecalzados. 6. Colocar el protector respiratorio (barbijo) y verificar que esté bien ajustado. 7. Colocar el gorro o cofia desechable. 8. Colocar los anteojos protectores. En el caso de usar botas, las mismas deben quedar debajo del mameluco. Luego, colocar por encima un par de cubrebotas. Secuencia de retirada del EPI Previo al retiro del equipo, es necesario conseguir una bolsa de residuos para desechar el EPI y un balde con líquido desinfectante. Luego, seguir los siguientes pasos: 1. Realizar un lavado higiénico de los guantes con el desinfectante. 2. Retirar el gorro/cofia. 3. Desanudar el segundo cubrecalzado. 12 �4. Retirar el mameluco con una mano desde el lado externo, de manera que el par de guantes externo se desprenda junto con él. Enrollar el mameluco hacia abajo, dejando expuesta la parte interna y manteniendo la externa hacia adentro. 5. Realizar un lavado higiénico de los guantes en contacto con la piel con el desinfectante. 6. Retirar los anteojos protectores y lavarlos en el desinfectante. 7. Retirar el primer cubrecalzado. 8. Retirar la mascarilla, tomándola desde las bandas elásticas, sin tocar la parte frontal. 9. Realizar un tercer lavado higiénico de manos. 10. Retirar el primer par de guantes en forma de rollo, tratando de no tocar la parte externa del guante. En caso de tener botas, lavarlas y desinfectarlas con cepillo, luego proceder como indican los puntos 9 y 10. Otras consideraciones Con respecto a la higiene de las manos, las mismas deben lavarse con agua y jabón durante 15/20 segundos o utilizar otros procedimientos estándares de desinfección de las manos. Los EPI deben desecharse adecuadamente, disponiéndolos en bolsas plásticas y dentro de un recipiente con tapa, cuidando que no contaminen otros lugares. El dispositivo plástico debe cerrarse cuidadosamente antes de su eliminación. Usar una muda limpia de ropa protectora en cada instalación visitada. Después de visitar una instalación sospechosa/afectada, las personas no deben acudir a lugares de reunión pública sin haberse bañado, incluyendo lavado del pelo y cambiado de ropa. Asimismo, el profesional no podrá ingresar a otro establecimiento/predio avícola sin un vacío sanitario de 72 horas. Material audiovisual Para visualizar el procedimiento de colocación y retirada del EPI, acceder aquí. Inspección del establecimiento De tratarse de un establecimiento de aves de corral, el veterinario oficial deberá realizar la inspección utilizando el SIG APP formularios (ID: 9015). >> Siempre se debe llevar el acta de constatación, la cual luego será cargada en el sistema SIGACTAS (también se deberá realizar si el predio es de aves no de corral o mamíferos marinos). 13 �El veterinario deberá llevar a cabo una anamnesis exhaustiva del establecimiento y de los síntomas presentados: Renspa, edad de las aves, plan de vacunación (especificar si se encuentran vacunadas contra la enfermedad de ENC), cantidad de aves, mortalidad, morbilidad, tipo de alimento proporcionado, constatar medidas de bioseguridad, movimientos realizados, visitas, posibles nexos epidemiológicos, etc. según corresponda. En primera instancia, se deberá visitar la zona de almacenamiento de alimento para evaluar esta vía como posible fuente de infección. Luego, se deberá observar los alrededores del predio para evaluar la presencia de aves silvestres, cuerpos de agua (natural o artificial) y estado de la malla antipájaros. Posteriormente, el veterinario del Senasa deberá recorrer únicamente los galpones afectados. En el caso de zoológicos y entidades afines, primero se deberán recorrer las áreas donde no haya animales, a fin de evaluar el almacenamiento de alimentos y otras potenciales vías de ingreso de la enfermedad. Luego, se deberá recorrer las zonas no afectadas para comprobar que no haya sintomatología compatible o animales muertos. Por último, se deberán visitar las zonas afectadas. Interdicción del establecimiento En este caso, se deberá realizar la comunicación de lo actuado al propietario o responsable mediante el labrado de un Acta de constatación. En la misma debe figurar el motivo de la inspección y la comunicación al productor de la interdicción del establecimiento, indicando de manera detallada que no podrá ingresar ni egresar aves, productos ni subproductos hasta que se descarte la sospecha. De observarse la presencia de sintomatología compatible, se deberá proceder a la atención de sospecha descripta. Es importante considerar que, de ser necesario, se interdictarán los establecimientos vecinos que por razones geográficas o de contacto justifiquen la medida. Movimientos o traslados Los movimientos de personas, otras especies animales, vehículos, alimentos, residuos o cualquier elemento capaz de transmitir IA/ENC estarán subordinados a la autorización de la Dirección Nacional de Sanidad Animal (DNSA) o a las personas que el Senasa designe. Censo Se deberá realizar el censo de todas las aves del establecimiento/predio o local por categoría (identificando el número de aves halladas vivas, muertas y enfermas), así como también de otras especies animales presentes en la explotación. Ficha técnica Completar y enviar al área de notificación de sospechas de enfermedad denunciable (vía correo electrónico o WhatsApp) las siguientes fichas técnicas: 14 �Aves de corral y aves de traspatio Datos generales Historial N.° de protocolo: Signos clínicos: Oficina: Fecha inicio de signos: Tipo de ave (Ejemplo: ponedoras). Establecimiento positivo en un radio de 10 km: SI/NO. Especie. Ejemplo: gallina. N.° total de animales (tipo y cantidad). Ejemplo: 5 patos, 10 gallinas, 2 gansos. N.° total de animales con signos clínicos (tipo y cantidad): N.° total de animales muertos hasta día de atención. Muestras Muestras en aves vivas: describir si se envía en pool o no, la especie muestreada y cantidad de hisopos de cada especie muestreada. No se debe mezclar hisopos de diferentes especies. Hisopados orofaríngeos o traqueales: por ejemplo: pool N°1: contiene 5 hisopos de gallina, pool N°2: contiene 2 hisopos de pato. Hisopados cloacales: Envío Tipo de envío: vehículo oficial/ ómnibus/ aéreo/ puerta-puerta. Fecha de despacho: solo en caso de encomiendas tercerizadas. Muestras aves muertas: describir el tipo de hisopo, si se envía en pool o no, la especie muestreada y cantidad de hisopos de cada especie muestreada. Si se envían cadáveres, detallar la especie y la cantidad. No se debe mezclar hisopos de diferentes especies. Hisopados cloacal y traqueal: tomar una muestra cloacal y una traqueal por cada animal muerto. Responsables de atención Atendió: Supervisó: Contactos: Vehículo oficial: dominio (exclusivo uso de vehículos oficiales o vehículos afectados). Fecha de arribo al laboratorio: 15 �Mamíferos y aves silvestres Datos generales N.° de protocolo: Oficina local: Nombre establecimiento/lugar: Historial mamíferos marinos Signos clínicos. Ejemplo: signos respiratorios, letargo. N.° total de animales presentes (especie y cantidad): Especies afectadas con signos clínicos. Ejemplo: 2 lobos marinos y 1 elefante marino. Especies afectadas c/mortandad. Ejemplo: 1. Historial aves silvestres Presencia de aves silvestres muertas o con signos: SI/NO. Especies (sacar foto): N.° total de animales (tipo y cantidad). Ejemplo: 5 gaviotas, 10 gaviotines, 2 pelícanos. N.° total de animales con signos clínicos (tipo y cantidad). N.° total de animales muertos hasta el día de la atención Muestras: detallar la especie y cantidad de hisopos por especie Hisopados nasales: Hisopados rectales: Hisopados pulmonares: Hisopados cerebrales: Muestras aves vivas: describir el tipo de hisopo, si se envía en pool o no, la especie muestreada y cantidad de hisopos de cada especie muestreada. Hisopados orofaríngeos o traqueales: Hisopados cloacales: Envío Tipo de envío: vehículo oficial/ ómnibus/aéreo/puerta-puerta. Fecha de despacho: solo en caso de encomiendas tercerizadas. Muestras aves muertas: describir si se envía en pool o no, la especie muestreada y cantidad de hisopos de cada especie muestreada. Hisopados orofaríngeos o traqueales: Hisopados cloacales y traqueales. Tomar una muestra cloacal y una traqueal por cada animal muerto. Responsables de atención Atendió: Supervisó: Contactos: Vehículo oficial: dominio (exclusivo uso de vehículos oficiales o vehículos afectados). Fecha de arribo al laboratorio: 16 �Se debe tomar fotografías de las aves afectadas, con especial hincapié en crestas, barbillas y patas. La información debe ser enviada junto con la ficha técnica. Ejemplos de fotografías tomadas durante la atención de sospecha s en 2023 en Argentina: 17 �Extracción de muestras El contagio de las personas puede producirse tanto por vía aerógena como por contacto a través de las mucosas. Por ello, es fundamental tomar los recaudos necesarios durante la recolección de muestras y su posterior envío al laboratorio. La IA y ENC pueden afectar a las aves comerciales y silvestres, por lo que se debe considerar que una mortandad de especies silvestres también deberá trabajarse como sospecha, según se indica a continuación. Aves comerciales Materiales EPI: guantes, mameluco descartable, cubre calzado, protección respiratoria y ocular. Gradillas, alcohol, marcador indeleble y algodón. Hisopos estériles de dracrón, rayón o fibra de poliéster (no de algodón ni de alginato de calcio) con palillo de plástico (no madera). Tubo de polipropileno transparente, fondo redondo, dimensiones (mm) 11 x 55, volumen (ml) de 3 a 4. Con tapón a presión con aletas o tapón a rosca. Medio de transporte viral (BHI: caldo cerebro corazón, caldo triptosa fosfato tamponado, caldo nutritivo, caldo peptona o medio comercial de transporte para virus) o en su defecto solución fisiológica de cloruro de sodio al 0,9%, estéril o PBS, hasta cubrir la cabeza del hisopo (de 3 a 5 ml por pool). Se deben remitir hasta 5 hisopos por tubo. Tijera para corte de los cabos de los hisopos. Conservadora y refrigerantes. Tipo de muestra 1 Hisopado (uno por ave): a. Cloacal: Levantar las plumas de la cola despejando la zona cloacal e introducir el hisopo en la cloaca. Se debe girar el hisopo 2 o 3 veces hasta obtener una muestra. El virus no se encuentra en la materia fecal, sino dentro de las células, por lo que se debe raspar fuerte contra la pared de la cloaca para que el hisopo arrastre algunas células. b. Traqueal: Levantar la cabeza del ave, abrir su pico, extraer suavemente la lengua e introducir el hisopo en la tráquea, girando 2 o 3 veces de manera enérgica para extraer algunas células (al extraer la lengua se hace bien visible el orificio traqueal). c. Orofaríngeo: Levantar la cabeza del ave, abrir su pico, movilizar el hisopo de 3 a 4 veces, raspando de manera enérgica las paredes de la cavidad orofaríngea para retirar algunas células. 18 �Para mamíferos marinos, se sugiere realizar hisopado nasal, rectal, pulmonar (a través de una incisión intercostal) y cerebral (a través del foramen atlanto-occipital). Consideraciones para tener en cuenta Se debe mojar el hisopo con el medio de transporte viral o en su defecto solución fisiológica de cloruro de sodio al 0,9%, estéril o PBS previo a la extracción del material. Luego de tomar la muestra cortar de inmediato la extremidad del hisopo y sumergirlo en el tubo previamente identificado. Los hisopos deben estar sumergidos en el medio de transporte viral (BHI: caldo cerebro corazón, caldo triptosa fosfato tamponado, caldo nutritivo, caldo peptona o medio comercial de transporte para virus) o en su defecto solución fisiológica de cloruro de sodio al 0,9%, estéril o PBS, hasta cubrir la cabeza del hisopo (de 3 a 5 ml por pool). Se deben remitir hasta cinco (5) hisopos por tubo. No mezclar hisopados traqueales/orofaríngeos con cloacales, es decir que no pueden ir en un mismo tubo. No mezclar hisopos de diferentes especies. 2. Cadáveres: No está indicado enviar cadáveres al momento de la sospecha, salvo por expresa indicación de la Dirección Nacional de Sanidad Animal. 3. Órganos: No está indicado realizar necropsias por la potencial dispersión de la enfermedad, salvo expresa indicación de la Dirección Nacional de Sanidad Animal. 4. Alimento (opcional): Cantidad mínima 1 kg, con doble bolsa plástica por muestra. Aves silvestres (observaciones y recolección de datos) La información recogida durante la toma de muestras en aves silvestres debe incluir: 1. Localización geográfica mediante utilización de coordenadas. 2. Descripción de la zona de captura (océano, lago, río, estanque, etc.) y su distancia a pueblos y granjas de aves. 3. Tiempo desde que inició el evento. 4. Número y tipo de otras aves silvestres presentes en el área de captura que no fueron muestreadas. Se debe prestar especial atención a las aves que presenten signos de enfermedad, pero que no pudieron ser muestreadas. Registrar la cantidad de animales afectados y su sintomatología. 5. Si es posible, información sobre los movimientos normales de aves silvestres en el área de captura. 19 �También se deberán tomar fotografías digitales, las cuales deberán sacarse lo antes posible luego de la toma de muestras. Es muy importante que, junto al ave fotografiada, aparezca algún objeto que sirva de referencia para poder apreciar bien el tamaño del animal. Las imágenes se deben tomar de la siguiente manera: Ave completa: por su lado dorsal, con un ala extendida y con la cola extendida y visible. Cabeza: de perfil, con el pico claramente visible. Cola: de los extremos de las plumas de la cola, ya que pueden ayudar a valorar la edad del animal. Parte ventral: en condiciones ideales, tomar fotos de esta parte del ave. En estas imágenes se deben apreciar las patas y los dedos, que pueden resultar también útiles para identificar la especie. También debe apreciarse la anilla, si estuviera presente. Ejemplos de fotos tomadas en el transcurso de atención de sospechas durante 2023 en Argentina: 20 �Dado que ya no se remitirán cadáveres al laboratorio, para corroborar la identificación exacta es necesario que se fotografíe toda ave muestreada. Las imágenes deben tener un código que permita relacionarlo con el de las muestras tomadas (cuando se toma la foto, se puede colocar un papel con el número de protocolo al lado del ave). La fotografía es imprescindible en el caso de aves que no hayan podido ser reconocidas por el personal que tomó la muestra. Si no se puede identificar la especie, se perderá información muy valiosa para poder definir el curso de la enfermedad en nuestro país. Conservación Hisopos: las muestras deberán ser conservadas y transportadas, desde su obtención hasta su envío al laboratorio a (+2ºC a +8ºC), en un período que no supere las 72 horas. Plazo ideal: inferior a las 24 horas. Cadáveres: como se mencionó anteriormente, no está indicado el envío de cadáveres o realización de necropsias de aves. Sin embargo, en caso de ser indicado por la DNSA, las aves enteras deberán enviarse de forma inmediata en bolsas de polietileno que no pierdan su contenido y se remitirán refrigeradas (+2ºC a +8ºC) al laboratorio. Plazo máximo: 72 horas. Órganos: en caso de indicarse, se recomienda el envío de los siguientes órganos en bolsa de polietileno estéril o recipiente estéril: tráquea, pulmón, bazo, hígado e intestino (tonsilas cecales). Los intestinos se deben acondicionar en forma separada al resto de los órganos. Si las aves o mamíferos presentan signos nerviosos se tendrá que enviar encéfalo o directamente la cabeza del ave. Tipo y cantidad La toma de muestras se realizará por parte de los veterinarios oficiales del Senasa, teniendo en consideración los siguientes criterios: 21 �Aves de corral Ave viva: 20 hisopados traqueales u orofaríngeos de 20 aves enfermas o en contacto estrecho y colocarlos en pooles de 5 hisopos (remitir 4 pooles). Cadáveres: hisopado cloacal + traqueal u orofaríngeo de 2 cadáveres, en caso que los hubiera. Las aves muertas de las cuales se extraen muestras deben tener menos de 24 horas en este estado (según condiciones climáticas). En el caso de hallar aves moribundas, deberán ser sacrificadas por el veterinario del Senasa. Aves no de corral (traspatio) Ave viva: 10 hisopados traqueales u orofaríngeos de 10 aves o la totalidad, en caso de ser menos de 10 las aves enfermas o con contacto estrecho. Colocarlos en pooles de 5 hisopos si son la misma especie (remitir 2 pooles). Cadáveres: Tomar un hisopado cloacal + traqueal u orofaríngeo de 2 cadáveres en caso que los hubiera. Las aves muertas de las cuales se extraen muestras deben tener menos de 24 horas en este estado (según condiciones climáticas). Si por alguna razón resultase imposible realizar los hisopados, se podrá recoger una muestra de heces frescas. En el caso de hallar aves moribundas, deberán ser sacrificadas considerando la normativa vigente por el personal veterinario del Senasa. Aves silvestres y mamíferos marinos En el caso de aves silvestres de vida libre, si es posible, se deberán hisopar animales sanos que compartan el mismo ambiente, dando prioridad a las aves que viven en tierras húmedas junto a las aves afectadas. Salvo por indicación de la DNSA, no se enviarán al laboratorio aves silvestres muertas. Ave viva: hasta 10 hisopados traqueales u orofaríngeos de aves enfermas o en contacto estrecho. Colocarlos en pooles de 5 hisopos si son la misma especie (remitir 2 pooles). Cadáveres: tomar hisopado cloacal + traqueal u orofaríngeo de 2 cadáveres. Enviar también el cerebro o la cabeza entera de 2 cadáveres. Las aves muertas de las cuales se extraen las muestras deben tener menos de 24 horas sin vida, de acuerdo a las condiciones climáticas. Todas las aves muestreadas deben ser identificadas. La identificación de la especie resulta fundamental para evaluar el rol de las aves silvestres en la dispersión de la influenza aviar. Cuando sea posible, se debe aportar información sobre la edad, sexo, peso, condición corporal del ave y anillado. Mamíferos marinos: se sugiere tomar muestras de los individuos muertos de todas las especies afectadas. Se debe identificar la especie de la cual se toma muestras. Las muestras recomendadas son hisopado nasal, rectal, pulmonar (a través de una incisión intercostal) y cerebral (a través 22 �del foramen atlanto-occipital) de animales muertos. No debe acercarse a animales vivos, dado que pueden ser peligrosos y agresivos. Resumen de tipo y cantidad de muestras MUESTRAS CATEGORÍAS Aves vivas Cadáveres 20 hisopados traqueales u orofaríngeos. Hisopado cloacal + traqueal u orofaríngeo de 2 cadáveres. Traspatio 10 hisopados traqueales u orofaríngeos. Hisopado cloacal + traqueal u orofaríngeo de 2 cadáveres. Silvestres Hasta 10 hisopados traqueales u orofaríngeos. Hisopado cloacal + traqueal u orofaríngeo y cerebro de 2 cadáveres. Aves de corral Aves de no corral Mamíferos marinos Hisopados nasal, rectal, pulmonar y cerebral de animales muertos Acondicionamiento Embalaje primario El recipiente primario debe ser hermético. En el caso de que se vayan a mandar varios recipientes primarios, cada uno deberá estar envuelto individualmente para evitar posibles daños. Cuando se calcule el volumen de las muestras que se van a enviar, se deberá tener en cuenta el volumen del medio de transporte. Colocar las muestras de tal forma que no se produzcan derrames. Colocar las muestras identificadas individualmente (de un mismo predio) en una bolsa de nylon o bolsa conservadora, identificando a esta última con el número de Renspa o titular del predio. Colocar refrigerantes en cantidad suficiente, considerando el tiempo de duración del transporte. Cerrar y sellar la tapa. Tener en cuenta que cuanto menor espacio “libre” haya en la conservadora, las muestras se mantendrán refrigeradas por mayor cantidad de tiempo. Embalaje secundario El contenedor secundario debe contener material absorbente, suficiente para absorber todo el contenido de los embalajes primarios en caso de rotura o filtraciones. Debe ser hermético. 23 � Acondicionar el embalaje primario en cajas de telgopor, de forma tal que evite roturas y derrames. Embalaje terciario Se deberá poner, cuando sea necesario, hielo seco o húmedo alrededor de embalaje secundario. En caso de emplear hielo seco, el envoltorio debe permitir la salida del dióxido de carbono para evitar incrementos de presiones que lleven a la ruptura del paquete. Si se usa hielo húmedo, el embalaje será a prueba de goteo. El embalaje externo debe introducirse en una bolsa sellada de plástico para protegerlo de la humedad. Colocar en el exterior de la caja un cartel que diga SOSPECHA, el remito generado en el Sistema Integral de Gestión de Acta de Toma de Muestra (SIGATM) y el Número de Protocolo del SIGSA asociado. Pegar etiqueta con la leyenda “refrigerado”/ “congelado”, según corresponda. Envío Finalizado el embalaje de las conservadoras, las mismas deben ser despachadas a la Dirección de Laboratorio Animal (DILAB) o bien al laboratorio regional de la provincia de Santa Fe, mediante tres alternativas: 1. Si los centros regionales cuentan con laboratorios con mesas de entradas propias deberán entregarse en estas a los efectos de que sean remitidas a la Mesa de Entrada de Muestras (MEM) de la DILAB, o al laboratorio de Santa Fe (consultar previamente disponibilidad de este último). 2. De no contar con laboratorios con mesas de entradas propias, las consevadoras deben ser despachadas directamente con destino a la MEM de la DILAB –Talcahuano 1660, Martínez (CP 1640), Provincia de Buenos Aires– o al laboratorio regional de Santa Fe –Boulevard Pellegrini 3100, 1° Piso, provincia de Santa Fe–. Consultar previamente disponibilidad de este último. 3. Entrega “puerta a puerta”, con recepción durante las 24 horas. En cualquiera de las tres modalidades (envío/entrega), se debe completar la “Solicitud de retiro de encomiendas” y proceder de la siguiente manera, según el destino de la muestra: a. Laboratorio Central (Buenos Aires) En caso de entrega puerta a puerta, se deberá informar en simultáneo (vía correo electrónico) a la siguiente dirección: mesalabadm@senasa.gob.ar . La persona que envíe el correo electrónico desde los correos institucionales deberá identificarse con nombre y apellido ya que, en ocasiones, es necesario transmitir información o hacer consultas y se desconoce el remitente. De ser mediante transporte (público o privado, terrestre o aéreo), una vez obtenido el número de guía que entrega la empresa se debe enviar a los correos de logisticadilab@senasa.gob.ar (con copia a Ana Cardozo y Marcelo Girgenti) la “Solicitud de retiro de encomiendas” para informar el despacho y la solicitud de retiro de las conservadoras enviadas. La solicitud cuenta con un campo específico para informar entregas puerta a puerta. 24 �Contactos para envíos y retiros: Ana Cardozo: acardozo@senasa.gob.ar. Tel: (11) 5155-5139; o #379. Marcelo Girgenti: mgirgenti@senasa.gob.ar. Tel: (11) 4874-6700; interno 2719. Coordinación Administrativa de Laboratorios: (11) 4874-6700; interno 2794. Para entregas puerta a puerta: (11) 2270-6127; (11) 3685-4523. (11) 4874-6762, interno 2603. (11) 4874-6700, internos 2603, 2763, 2662. b. Laboratorio regional (Santa Fe) Para muestras provenientes de Santa Fe Capital, el funcionario actuante las entregará puerta a puerta en el laboratorio. Para muestras provenientes del interior de Santa Fe y Entre Ríos, vía comisionista, las mismas se entregarán puerta a puerta en el laboratorio. En todos los casos, previamente se deberá informar el envío de las muestras. Completar toda la información solicitada en el formulario, ya que el tipo de muestra enviada o el plazo aproximado de arribo impacta en la programación del trabajo del área técnica. Es responsabilidad del centro regional la logística y el aseguramiento del envío y arribo de las muestras a las distintas terminales de transporte, para su posterior retiro y entrega en la MEM del Laboratorio Animal ubicado en Martínez. Contacto regional Ileana Balette: WhatsApp al (11) 3685 – 4809. Correo electrónico al jrlabsafe@senasa.gob.ar 25 �Protocolo en SIGATM Envío al laboratorio oficial del Senasa En todos los casos, las muestras deberán estar amparadas bajo el acta de toma de muestras que debe generarse en el SIGATM. Para ello, se deberá ingresar en el módulo ACTAS DNSA del Sistema, con el siguiente criterio: En el caso de la especie “aves” o “animales silvestres” (si son aves silvestres o fauna marina), se deberá cargar un acta para cada tipo de Matriz disponible (hisopado traqueal, hisopado cloacal o hisopado orofaríngeo); es decir, no incluir en una misma acta dos tipos de hisopado distintos. Para el caso de los mamíferos, se deberá cargar una sola acta para la matriz “hisopado”, independientemente si corresponden a hisopados pulmonares, rectales, nasales o cerebrales. Área: Coordinación General de Control Territorial (CGCT). Motivo de muestreo: sospecha de enfermedad notificable. Submotivo: no hay disponibles. Protocolo: indicar el número de protocolo que generó previamente en SIGSA. Observaciones: describir información de interés. Lugar de toma de muestras: se carga automáticamente ya que el sistema arrastra la información del protocolo de SIGSA. Fecha de toma de muestra: seleccionar manualmente. Naturaleza del lote. Especie: se carga automáticamente ya que el sistema arrastra la información del protocolo del SIGSA. Matriz: para el caso de aves comerciales/traspatio/silvestres, seleccionar hisopado traqueal, orofaríngeo o cloacal según corresponda. Para el caso de mamíferos, seleccionar solo hisopado. Muestras: agregar cada tubo de muestras tomadas, indicando el número de tubo, animal muestreado (muy importante discriminar sano, enfermo o muerto), tipo de identificación, categoría, edad, etc; discriminar por cantidad de hisopos y cantidad de pooles (ej: 2 pooles con 5 hisopados cada uno). Ensayo: seleccionar Diagnóstico Molecular de Influenza Aviar → RTPCR en tiempo real. En el caso de aves silvestres y aves de traspatio, seleccionar también Diagnóstico de Enfermedad de Newcastle → RT-PCR en tiempo real. Laboratorio destino: Senasa - Dirección de Laboratorio y Control Técnico. Oprimir el botón Finalizar. Además, el veterinario deberá generar el remito y preparar el despacho, según las indicaciones disponibles en el instructivo de carga de acta de toma de muestra en SIGATM. 26 �Al momento de despachar las muestras a la MEM de la DILAB, no se deberá hacer a nombre de alguna persona en particular. Aislamiento Las muestras se deberán aislar de todas las aves involucradas, con el fin de garantizar que no tomen contacto con otras aves. Tránsito El tránsito de aves, productos o subproductos de aves susceptibles a IA/ENC, sin la autorización correspondiente, será considerado ilegal y de alto riesgo sanitario, por lo que se decomisará inmediatamente y se procederá al sacrificio sanitario o destrucción, sin que el titular tenga derecho a indemnización. Carga en el SUR Una vez finalizada la visita, se deberá cargar en el SUR los antecedentes sanitarios (AS) y adjuntar la documentación respaldatoria. De acuerdo a lo observado al momento de la inspección, se deberá cargar el AS de acuerdo al siguiente cuadro: Antecedente Sanitario Motivo Inspección predio/establecimiento avícola - sin inconsistencias Se deberá cargar cuando no se encuentren inconsistencias al cumplimiento de la Res. Senasa 1699/2019 al momento de la visita al predio de aves de corral. Si el predio es de aves de traspatio, se deberá cargar cuando visita el mismo. Inspección predio/establecimiento avícola - con inconsistencias graves Se deberá cargar cuando se encuentren inconsistencias graves en el incumplimiento de la Res. Senasa 1699/2019 al momento de la visita al predio de aves de corral o en caso de visitar predio de aves de traspatio y observar que conviven con producción industrial. Inspección predio/establecimiento avícola - con inconsistencias moderadas Se deberá cargar cuando se encuentran inconsistencias moderadas en el incumplimiento de la Res. Senasa 1699/2019 al momento de la visita al predio de aves de corral. Inspección predio/establecimiento avícola - con inconsistencias leves Se deberá cargar cuando se encuentren inconsistencias leves en el incumplimiento de la Res. Senasa 1699/2019 al momento de la visita al predio de aves de corral. 27 �Además, considerando el antecedente sanitario de Muestreo Sospecha de I. AVIAR/ENC, se deberá colocar: Si el resultado es negativo: la fecha del resultado de laboratorio y adjuntar documentación respaldatoria (acta de constatación y resultado de laboratorio). Si el resultado es positivo: la fecha del resultado de laboratorio, adjuntar la documentación respaldatoria (acta de constatación y resultado de laboratorio) y agregar el AS correspondiente a la enfermedad (ejemplo: “Brote de influenza aviar H5”), con la fecha de confirmación del evento. Luego, continuar con la implementación de los procedimientos destinados al control y rápida erradicación de la enfermedad. En caso de no detectarse la secuencia específica de influenza aviar tipo A o de la enfermedad de Newcastle (Paramyxovirus aviar tipo 1) de declaración obligatoria mediante la técnica RT - PCR en tiempo real o aislamiento viral, se deberá proceder al levantamiento de la interdicción, desbloquear la autogestión, permitir movimientos e indicar la finalización de las actuaciones en el establecimiento a través del SIGACTAS. Diagnóstico En este apartado no se describirá el tratamiento de las muestras ni el procedimiento detallado de las técnicas analíticas para el diagnóstico de la influenza aviar y enfermedad de Newcastle, las cuales se encuentran contenidas en los procedimientos (según normas de calidad vigentes) de la Dirección General de Laboratorios y Control Técnico (DGLYCT). Estos últimos siguen los lineamentos de los laboratorios de referencia internacional para el diagnóstico de IA e ENC La totalidad de las muestras son analizadas por el Senasa en su Laboratorio Central en Martínez o en su laboratorio regional de la provincia de Santa Fe. En el cuadro siguiente, se detallan los ensayos que se deben seleccionar para cada detección, según categoría: Resumen de tipo y cantidad de muestras DIAGNÓSTICO CATEGORÍAS Influenza aviar RT - PCR Enfermedad de Newcastle RT - PCR Sí NO (*) Traspatio Sí Sí Silvestres Sí Sí Sí Sí Aves de corral Aves de no corral Mamíferos marinos (*) Excepto signos compatibles o animales no vacunados. 28 �Contacto Coordinación General de Epidemiología Correo electrónico: notificaciones@senasa.gob.ar/ amarcos@senasa.gob.ar Teléfono: (11) 4121 - 5349 Corporativos: #1590 o #336 Segato Lucila: (11) 3698 - 8143 Zumpano Romina: (11) 3685 - 2674 Programa Nacional de Sanidad Aviar Correo electrónico: avesygranja@senasa.gob.ar Teléfono: (11) 4121 - 5409 Corporativo: #1438 o #772 Anexo Para descargar la Solicitud de retiro de encomiendas para traslados al Dilab, acceder a la carpeta 36 de Enfermedades de notificación obligatoria. 29 �� Dublin Core The Dublin Core metadata element set is common to all Omeka records, including items, files, and collections. For more information see, http://dublincore.org/documents/dces/. Title A name given to the resource Publicaciones SENASA Dublin Core The Dublin Core metadata element set is common to all Omeka records, including items, files, and collections. For more information see, http://dublincore.org/documents/dces/. Title A name given to the resource Guía operativa. Notificación y atención de sospechas de influenza aviar y enfermedad de Newcastle. En aves (de corral y de no corral) y mamíferos marinos Publisher An entity responsible for making the resource available Servicio Nacional de Sanidad y Calidad Agroalimentaria Date A point or period of time associated with an event in the lifecycle of the resource 2025 Contributor An entity responsible for making contributions to the resource Dirección Nacional de Sanidad Animal Dirección General de Laboratorios y Control Técnico Coordinación General de Comunicación Institucional Language A language of the resource Es Type The nature or genre of the resource Manual Identifier An unambiguous reference to the resource within a given context B.S.0197 Abstract A summary of the resource. La presente guía tiene como objetivo proporcionar información técnica a los profesionales y técnicos del Senasa sobre las acciones que deben seguir en caso de recibir una notificación de sospecha por Influenza Aviar (IA) o enfermedad de Newcastle (ENC) –ambas de declaración obligatoria– en aves de corral, aves no de corral y mamíferos marinos. Table Of Contents A list of subunits of the resource. Introducción Definiciones Obligatoriedad de notificar Vías de notificación Sospecha de influenza aviar/enfermedad de Newcastle Procedimientos Extracción de muestras Protocolo en SIGATM Tránsito Carga en el SUR Diagnóstico Contacto Anexo Enfermedad de Newcastle Enfermedades de las Aves Influenza Aviar https://biblioteca.senasa.gob.ar/files/original/5a7c417d73cb54c9539b576055764d14.pdf cefc722553a1fb17dd03ff75b2363f89 PDF Text Text GUÍA OPERATIVA Influenza aviar en aves de corral Plan de contingencia Servicio Nacional de Sanidad y Calidad Agroalimentaria (Senasa) �El Servicio Nacional de Sanidad y Calidad Agroalimentaria (Senasa) es un organismo descentralizado, responsable de ejecutar las políticas nacionales en materia de sanidad y calidad animal, vegetal y de la inocuidad de los alimentos de su competencia, así como de verificar el cumplimiento de la normativa vigente en la materia. Equipos de trabajo Dirección Nacional de Sanidad Animal Dirección General de Laboratorios y Control Técnico Coordinación General de Comunicación Institucional Edición 2025 �CONTENIDO Introducción Marco legal: referencias normativas y recomendaciones internacionales Glosario conceptual La enfermedad Sistema Nacional de Emergencias Sanitarias Estrategia sanitaria y procedimientos de respuesta Procedimiento de atención y seguimiento de influenza aviar tipo a H5H7 en aves de corral Consideraciones generales Equipo de protección individual Medidas sanitarias en el brote Medidas sanitarias en la Zona de Control Sanitario Procedimiento de muestreo - Establecimientos dentro de la ZCS Vigilancia molecular Vigilancia serológica Acondicionamiento de las muestras Envío de las muestras Sacrificio sanitario y disposición final de las aves Sacrificio sanitario Consideraciones generales Captura previa al sacrificio de las aves Métodos para el sacrificio de aves 5 5 6 8 9 9 9 9 10 12 14 18 18 19 19 20 22 22 22 23 25 Gasificación con dióxido de carbono (CO2) 25 Sistema de espuma de alta hermeticidad 29 Dislocación cervical 30 Electrocución 31 Agentes inyectables Adición de anestésicos a los alimentos o al agua 31 Decapitación Desangrado 32 Eliminación de los cadáveres Enterramiento Incineración 31 33 33 33 35 �Compostaje Eliminación de la cama, deyecciones de aves o productos avícolas Medidas higiénico-sanitarias para el sacrificio y eliminación Biodigestor Procedimiento de limpieza y desinfección Limpieza Desinfección 35 36 36 36 37 37 37 Desinfectantes y productos químicos recomendados 38 Registro 44 Anexos Anexo 4 Anexo 5 Anexo 6 Contacto 39 41 43 44 49 �Introducción El presente documento tiene como objetivo proporcionar información técnica al personal profesional del Senasa sobre las estrategias, medidas sanitarias, acciones y actividades generales que debe realizar el Servicio ante la confirmación de uno o más brotes de influenza aviar (IA) en aves de corral en la República Argentina. Resulta igualmente esencial que veterinarios acreditados en sanidad y bienestar aviar, técnicos, productores –así como cualquier persona involucrada en la avicultura– conozcan los procedimientos que implementará el Senasa como servicio veterinario oficial (SVO) en caso de presentarse IA H5/H7: el propósito es trabajar conjuntamente para fortalecer las acciones para el control y eliminación del virus. Atento a lo mencionado, es responsabilidad exclusiva de los veterinarios acreditados en sanidad y bienestar aviar y de las empresas avícolas la elaboración y aplicación de un plan de contingencia propio, adecuado a las particularidades de cada establecimiento. El plan debe ser diseñado según los lineamientos y valores establecidos en la presente guía operativa. El mismo deberá prever los insumos necesarios y los contactos para la notificación inmediata, así como también los procedimientos para la ejecución del sacrificio sanitario y el posterior enterramiento. Este último procedimiento incluye la disposición adecuada de las aves muertas, de sus productos y subproductos (huevos, cama, plumas, plumones, guano, alimento, entre otros) y de todos los equipos de trabajo utilizados durante las tareas (mamelucos, cubrebotas, cofias, etc.). Además, deberá garantizar la correcta limpieza y desinfección de las instalaciones, asegurando así el cumplimiento integral del protocolo sanitario. Marco legal: referencias normativas y recomendaciones internacionales El marco legal que sustenta las acciones vinculadas a la sanidad aviar y la respuesta ante enfermedades está compuesto por un conjunto de leyes, decretos y resoluciones vigentes en la República Argentina, así como también por recomendaciones internacionales. >> Ley N.° 22.421. Establece las competencias sanitarias entre las jurisdicciones provinciales y nacionales, en línea con la legislación vigente. >> Ley N.° 27.233. Declara de interés nacional la sanidad animal y vegetal, así como la prevención, control y erradicación de enfermedades y plagas que afecten la producción agropecuaria, la flora y la fauna. Designa al Senasa como autoridad de aplicación, responsable de planificar, ejecutar y controlar las acciones sanitarias en todas las etapas de la producción, transformación, transporte, comercialización y consumo de agroalimentos, incluyendo producciones familiares y artesanales. >> Ley N.° 27.342. Amplía el alcance de la Ley N.° 3.959 extendiendo la defensa sanitaria a todas las especies animales, incluso aquellas que no se consideran “ganado”, siempre que el Poder Ejecutivo las incluya en la nomenclatura sanitaria correspondiente. 5 �>> Ley de Policía Sanitaria Animal N.° 3.959. Establece la defensa de los ganados en la República Argentina frente a la introducción de enfermedades contagiosas exóticas. >> Resolución Senasa N.° 779/1999. Aprueba el Sistema Nacional de Emergencias Sanitarias que establece los niveles, estructuras, responsabilidades y funciones para la gestión de emergencias sanitarias por enfermedades exóticas, persistentes o situaciones epidemiológicas de riesgo en el país y en naciones limítrofes. >> Resolución Senasa N.° 153/2021. Determina la obligatoriedad de notificar de forma inmediata al Senasa la sospecha de enfermedades incluidas en el Grupo I, entre ellas la influenza aviar. >> Resolución Senasa N.° 466/2025. Aprueba el Plan de Contingencia para Influenza Aviar (IA) como herramienta específica para la gestión de brotes. >> Código Sanitario de los Animales Terrestres - Organización Mundial de Sanidad Animal (OMSA). Proporciona directrices y recomendaciones internacionales para la prevención, control y erradicación de enfermedades animales, armonizando las acciones nacionales con los estándares internacionales. Capítulos 7.6 y 10.4. Glosario conceptual - Área de prevención (AP): corresponde a un área territorial donde se detecta un brote de IA H5/H7 en aves no de corral, cuyos límites son determinados por el Senasa y tienen por finalidad realizar actividades de biocontención y vigilancia. - Aves de corral: designa todas las aves criadas o mantenidas en cautiverio para la producción de mercancías comerciales avícolas o la reproducción para estos fines. Las aves no de corral se considerarán como aves de corral cuando tengan contacto directo o indirecto con estas últimas o con instalaciones avícolas. - Aves silvestres: designa un ave cuyo fenotipo no se ha visto afectado por la selección humana y que vive independiente, sin necesitar supervisión o control de seres humanos. - Aves de traspatio: designa a las aves que se crían en un predio registrado ante el Senasa como aves de traspatio, cuyos productos solo se ofrecen directamente para el autoconsumo. - Aves de un día: designa a las aves que tienen, como máximo, setenta y dos (72) horas después de haber salido del huevo. - Aves no de corral: incluye las aves silvestres de vida libre, traspatio, así como las silvestres cautivas criadas para espectáculos, competencias, exposiciones, colecciones de zoológicos y concursos, y para la reproducción o la venta a dichos efectos, así como las aves de compañía, siempre que no tengan contacto directo o indirecto con aves de corral o instalaciones de producción avícolas. 6 �- Aves silvestres cautivas: designa a aves cuyo fenotipo no se ha visto significativamente afectado por la selección humana, pero que están cautivas o viven bajo o necesitan supervisión o control de seres humanos. - Aves silvestres de vida libre: designa a aves cuyo fenotipo no se ha visto afectado por la selección humana y que viven independientes sin necesitar supervisión o control de seres humanos. - Biocontención: acciones que se implementan para disminuir el riesgo biológico de diseminación de un patógeno. - Bioseguridad: designa a un conjunto de medidas de gestión, manejo, sanitarias y profilácticas, cuyo objetivo es reducir el riesgo de introducción, radicación y propagación de enfermedades, infecciones o infestaciones animales hacía, desde y dentro de una población animal. - Brote: designa la presencia de uno (1) o más casos de IA H5/H7 en una (1) unidad epidemiológica. - Caso: designa a un ave con o sin signos clínicos manifiestos, que ha resultado positivo a las pruebas diagnósticas confirmatorias de IA H5/H7, o a aves con sintomatología en las que mediante una evaluación epidemiológica se compruebe un nexo epidemiológico con un caso confirmado. - Interdicción de predio: de acuerdo con la normativa vigente del Senasa, equivale a vedar o prohibir. Es una medida que impide disponer de aquello que está interdicto. La medida de interdicción, entre otras cosas, tiende a la imposibilidad de trasladar (ingreso y egreso) animales, productos, subproductos o materiales potencialmente infectantes, con relación al predio interdicto, ya sea por razones sanitarias u otras irregularidades y que, como consecuencia, se encuentran bajo control o fiscalización del Senasa. - Nexo epidemiológico: se refiere al contacto directo o indirecto entre aves susceptibles y aves enfermas a través del cual es posible que se haya transmitido el virus de IA H5/H7 por las vías de transmisión habituales. - Predio: designa al lugar donde se encuentran las aves de corral y no de corral. - Rastrillaje epidemiológico: proceso sistemático y activo de búsqueda y seguimiento de casos de IA en aves de corral y de no corral. Este procedimiento tiene como objetivo identificar aves infectadas, prevenir la propagación de la enfermedad y controlar brotes. - Sacrificio sanitario: designa la operación, efectuada bajo la supervisión del Senasa, diseñada para eliminar un brote. Consiste en llevar a cabo las siguientes actividades: i. matanza de los animales afectados o que se sospeche han sido afectados o que hayan estado expuestos a la infección por contacto directo con estos animales, o contacto indirecto con el agente patógeno causal; ii. eliminación de los animales muertos o de los productos de origen animal, según el caso, por enterramiento, transformación, incineración o cualquier otro método que oportunamente disponga el Senasa; 7 �iii. limpieza y la desinfección de las explotaciones, a través de los procedimientos recomendados por OMSA, con el fin de destruir el agente infeccioso de la IA. Se aplica en instalaciones, vehículos y objetos diversos que puedan haber sido directa o indirectamente contaminados. - Unidad epidemiológica: designa a un grupo de aves con la misma probabilidad de exposición a un agente patógeno. - Zona de Control Sanitario (ZCS): corresponde a un área territorial donde se detecta uno (1) o más brotes de IA H5/H7 en aves de corral, cuyos límites son determinados por el Senasa, y tiene por finalidad realizar actividades de bioseguridad, biocontención y vigilancia para contener y erradicar el o los brotes de la zona. En brotes de aves de corral, esta ZCS está compuesta por la Zona de Perifoco (ZP) con un radio de tres (3) kilómetros y la Zona de Vigilancia (ZV) con un radio de siete (7) kilómetros alrededor de la anterior. Cuando existan cursos o espejos de agua o nexos epidemiológicos del brote, el Senasa puede modificar la ZCS, según riesgo epidemiológico. - Zoológico y entidades afines: entidad o institución, pública o privada, donde se mantienen animales silvestres bajo cuidado humano, independientemente de su finalidad, como parques zoológicos, acuarios, reservas, bioparques, centros de rescate y santuarios, entre otros. La enfermedad La influenza aviar, también conocida como “gripe aviar”, es una infección viral contagiosa producida por el virus de la influenza aviar tipo “A”, familia Orthomyxoviridae, género influenzavirus. Esta enfermedad puede afectar a varias especies de aves de corral, así como también a las aves de compañía y silvestres. Cabe aclarar que se han aislado virus de IA –con menos frecuencia– en algunas especies de mamíferos, como ratas, ratones, comadrejas, hurones, cerdos, gatos, tigres, perros, caballos, así como en los humanos. La enfermedad se encuentra incluida en la lista única de enfermedades de notificación obligatoria de la OMSA y es una de las enfermedades de denuncia obligatoria definidas en la normativa, según la Resolución Senasa N.° 153/2021. Las medidas de control que deben aplicarse ante la aparición de un brote de IA en un establecimiento se encuentran legisladas en el ámbito nacional. La influenza aviar de alta patogenicidad (IAAP) es una enfermedad sobre la que deben implementarse acciones de erradicación inmediatas, tan pronto como se detecte su existencia. También deben adoptarse medidas para evitar su propagación ante la entrada o desplazamientos a otras regiones, establecimientos y ecosistemas sobre los cuales se mantiene un sistema de vigilancia para su control. Para mayor información, acceder al sitio web oficial de la OMSA o al micrositio del Senasa. 8 �Sistema Nacional de Emergencias Sanitarias El Sistema Nacional de Emergencias Sanitarias se compone por los niveles central y regional, y la estructura organizacional que establece responsabilidades y funciones que determinan el funcionamiento de la cadena de comandos de incidentes para la gestión de eventos emergenciales, basado en la normativa vigente en la materia. Este sistema se activa ante la detección de enfermedades persistentes, exóticas o situaciones epidemiológicas que así lo justifiquen, tanto dentro del territorio nacional como en países limítrofes, cuando estas impliquen un riesgo sanitario. Estrategia sanitaria y procedimientos de respuesta De detectarse la presencia de la enfermedad de un brote de IA H5/H7, la política adoptada por el Senasa busca lograr la erradicación de esta enfermedad en el país, en el menor tiempo posible. El objetivo principal es la biocontención de la misma y así evitar la difusión del virus a otras poblaciones de aves. Como resultado, se salvaguarda la salud pública y la sanidad avícola, se protege la biodiversidad y se mitigan las posibles consecuencias económicas en la avicultura nacional e internacional. Procedimiento de atención y seguimiento de influenza aviar tipo a H5H7 en aves de corral Consideraciones generales Una vez confirmada la detección de la presencia del virus de IA H5/H7 a través de los resultados oficiales emitidos por la Dirección General de Laboratorios y Control Técnico (DGLyCT) del Senasa e informada por la Dirección Nacional de Sanidad Animal (DNSA), se deberá conformar un equipo exclusivo de trabajo para el establecimiento del brote y otros (los que fueran necesarios) para la ZCS, conforme al Sistema Nacional de Emergencias Sanitarias. Los vehículos utilizados deben ser exclusivos para tal fin, quedar fuera de los predios/establecimientos involucrados y proceder a su desinfección, antes y después de la recorrida. Se deberá constatar y cargar en el Sistema Único de Registro (SUR) los siguientes antecedentes sanitarios (AS) y la documentación respaldatoria en cada AS, según el trabajo realizado: - Inspección de predio/establecimiento avícola. En la fecha de alta, se deberá colocar el día de inspección/atención. Adjuntar la documentación respaldatoria (ver Anexo 3). - Muestreo sospecha de I.AVIAR/ENC. En la fecha de alta, se deberá colocar el día de atención, mientras que en la fecha de baja corresponde indicar el día de emisión de la orden de trabajo de la DGLyCT. Adjuntar la documentación respaldatoria (ver Anexo 2). 9 �- Brote influenza aviar H5. En la fecha de alta, se deberá asentar el día de emisión de la orden de trabajo de la DGLyCT; en la fecha de baja, indicar el día en que finalizaron las tareas de sacrificio, enterramiento, limpieza y desinfección. En observaciones, colocar el número de protocolo de enfermedad denunciable (ver Anexo 1). Equipo de protección individual Antes de ingresar al predio afectado se deberá disponer de equipos de protección individual (EPI) que serán utilizados durante toda la jornada de trabajo, esto es, mientras dure la exposición al riesgo. Una vez finalizadas las tareas, los elementos deberán quitarse y desecharse en el mismo establecimiento. Es fundamental que todos los agentes tengan acceso a los EPI, cuyos componentes son: • Protección corporal con ropas protectoras, preferiblemente mamelucos desechables con manga larga y ajustables en los extremos más un delantal impermeable. • Protección de cabeza con gorro/cofia desechable que cubra completamente los cabellos. • Protección de pies con botas de goma o poliuretano que puedan ser desinfectados y, preferentemente, cubrebotas desechables. • Protección de manos con guantes protectores desechables (de nitrilo o vinilo) o guantes de trabajo de goma resistente que puedan desinfectarse; para evitar dermatitis pueden usarse guantes de algodón por debajo de los guantes protectores. • Protección respiratoria mediante respiradores que cubran boca y nariz. En casos particulares se podrán requerir equipos de respiración autónoma. • Protección ocular por medio de anteojos protectores, que deben lavarse y desinfectarse después de su uso. Secuencia de colocación del EPI 1. Colocar el primer par de cubrecalzados. 2. Colocar el mameluco descartable. 3. Colocar el primer par de guantes, asegurándose de que queden debajo de las mangas del mameluco; para ello, perforar el mameluco con el dedo pulgar. 4. Colocar el segundo par de guantes sobre las mangas del mameluco. Si es necesario, sellar los extremos con cinta adhesiva para asegurar el ajuste. 5. Colocar el segundo par de cubrecalzados. 6. Colocar el protector respiratorio (barbijo) y verificar que esté bien ajustado. 7. Colocar el gorro o cofia desechable. 8. Colocar los anteojos protectores. El procedimiento de colocación y retirada del EPI tiene como objetivo reducir al mínimo la posibilidad de autocontaminación y autoinoculación. 10 �Secuencia de retirada del EPI Previo al retiro del equipo, es necesario conseguir una bolsa de residuos para desechar el EPI y un balde con líquido desinfectante. Luego, seguir los siguientes pasos: 1. Realizar un lavado higiénico de los guantes con el desinfectante. 2. Retirar el gorro/cofia. 3. Desanudar el segundo cubrecalzado. 4. Retirar el mameluco con una mano desde el lado externo, de manera que el par de guantes externo se desprenda junto con él. Enrollar el mameluco hacia abajo, dejando expuesta la parte interna y manteniendo la externa hacia adentro. 5. Realizar un lavado higiénico de los guantes en contacto con la piel con el desinfectante. 6. Retirar los anteojos protectores y lavarlos en el desinfectante. 7. Retirar el primer cubrecalzado. 8. Retirar la mascarilla, tomándola desde las bandas elásticas, sin tocar la parte frontal. 9. Realizar un tercer lavado higiénico de manos. 10. Retirar el primer par de guantes en forma de rollo, tratando de no tocar la parte externa del guante. Otras consideraciones • Con respecto a la higiene de las manos, la misma debe consistir en el lavado con agua y jabón durante 15/20 segundos o en el uso de otros procedimientos estándares de desinfección de las manos. • Los EPI deben ser desechados adecuadamente, disponiéndolos en bolsas plásticas y dentro de un recipiente con tapa, cuidando que no contaminen otros lugares. El dispositivo de plástico debe ser cerrado cuidadosamente antes de su eliminación. • Usar una muda limpia de ropa protectora en cada instalación visitada. • Después de visitar una instalación sospechosa/afectada las personas no deben acudir a lugares de reunión pública (como restaurantes) sin haberse duchado –incluyendo lavado del pelo y cambiado de ropa–. Asimismo, no podrá ingresar a otro establecimiento/predio avícola sin un vacío sanitario de 72 horas. Material audiovisual Para visualizar el procedimiento de colocación y retirada del EPI, acceder aquí. 11 �Medidas sanitarias en el brote a. En primer lugar, el personal oficial actuante debe resguardar y asegurar las medidas de bioseguridad al ingreso y egreso del establecimiento. Para ello, deberá continuar con la interdicción del establecimiento en donde fueron halladas las aves que resultaron positivas a IA H5/H7, asimismo, se deberá prohibir el acceso de personas y vehículos ajenos al mismo. b. El veterinario del Senasa deberá informar al propietario y al veterinario acreditado en sanidad y bienestar aviar las medidas sanitarias que deberán realizarse en el predio, tales como interdicción, sacrificio, disposición de cadáveres de aves, productos, subproductos y medidas de limpieza y desinfección, condiciones de levantamiento de la interdicción. c. Es importante destacar que todas las acciones y comunicaciones entregadas deben registrarse en un acta de constatación emitida a través del sistema de gestión de actas de constatación del Senasa (SIGACTAS). Se deberá constatar detalladamente que continúa la interdicción del predio, lo que implica que queda prohibido el egreso de aves, productos y subproductos, así como cualquier otro material que pudiera representar un riesgo sanitario. El ingreso de personas y vehículos quedará restringido exclusivamente a aquellos autorizados por el Senasa. El titular del establecimiento deberá proceder al sacrificio sanitario de la totalidad de las aves, al enterramiento adecuado de los animales y a la posterior limpieza y desinfección integral de las instalaciones. La medida de interdicción permanecerá vigente hasta tanto el Senasa determine su levantamiento. d. Asimismo, el agente oficial deberá dar intervención a las dependencias de Salud Pública, Ambiente y Fauna Silvestre de la jurisdicción competente. e. Respecto a los ingresos y egresos al establecimiento, se deberá investigar, evaluar y documentar la trazabilidad de las aves, productos y subproductos durante los catorce (14) días previos de confirmada la enfermedad. f. El veterinario oficial deberá completar el Formulario de relevamiento epidemiológico, disponible en la carpeta interna N.° 24 de Sanidad Aviar. g. En cuanto al sacrificio, el mismo debe incluir a la totalidad de las aves presentes en la unidad epidemiológica. El mismo debe realizarse con la mayor rapidez posible, respetando los lineamientos de bienestar animal establecidos en la normativa vigente. Todos los datos del sacrificio deberán constatarse a través del SIGACTAS, en el “Acta de sacrificio de aves y/o destrucción de productos y subproductos avícolas” (ver Anexo 4). Además, la misma deberá adjuntarse al AS de “Brote de Influenza Aviar H5”. h. Las aves muertas, sus productos y subproductos, y todos los elementos utilizados para el sacrificio sanitario (mameluco, cubrebotas, cofias, etc.) deberán enterrarse en el lugar, teniendo la precaución de tapar correctamente la fosa para que no quede expuesto a ningún predador. En caso de no poder realizarse la disposición de los cadáveres en el mismo predio, la misma deberá efectuarse en un lugar previamente autorizado por el Senasa. 12 �i. La infraestructura, los elementos y las maquinarias existentes en la unidad epidemiológica (instalaciones, comederos, bebederos, nidales, jaulas, dependencias ajenas como baño, almacenes de alimentos y utensilios, depósito de pienso, depósito de agua, botas, etc.) deberán someterse a una profunda limpieza y desinfección, con productos autorizados por la autoridad competente. Desinfectantes y productos químicos recomendados Los desinfectantes que pueden emplearse en el proceso de desinfección en brotes de IAAP recomendados para el virus de la influenza aviar son: • Agentes tensoactivos catiónicos (sales de amonio cuaternario 4 %). • Agentes oxidantes (hipoclorito de sodio 2 %, hipoclorito de calcio 2% y Virkon®). • Aldehídos (glutaraldehido 2 %). • Ácidos (ácido cítrico 2 %) y álcalis (hidróxido de sodio 2 %, hidróxido de calcio 3 %; carbonato de sodio 4 %). • Fenoles sintéticos 2 % • Ácido cresílico 2 %. Este listado no es definitivo y se podrán utilizar otros compuestos que determine oportunamente el Senasa. El procedimiento debe quedar constatado en SIGACTAS y se puede registrar en la misma acta de sacrificio –si ambos procedimientos se realizaron en el mismo día– o, de lo contrario, registrarlo en el “Acta de limpieza y desinfección” (ver Anexo 5), cuando el procedimiento demore más de un día. También se deberá cargar en el AS. j) Se considerará como “día 0” a la fecha de finalización de las tareas de sacrificio sanitario, enterramiento, limpieza y desinfección. k) Cierre de brote. Se procederá al cierre del brote, luego de haber culminado con las tareas de sacrificio sanitario, enterramiento, limpieza y desinfección, manteniendo la interdicción del predio (día cero). La acción también deberá cargarse en el AS mediante Acta de constatación. Asignar la fecha de baja (la del cierre del brote) al antecedente sanitario. l) Se procederá a levantar la interdicción del predio de aves de corral luego de haber cumplimentado un vacío sanitario de al menos veintiocho (28) días desde el cierre del brote, de haber constatado las medidas de manejo, de higiene y de bioseguridad del predio (según normativa vigente) y de haber realizado un proceso de centinelización o muestreo ambiental con resultados moleculares negativos. 13 �La acción debe ser respaldada mediante Acta de constatación y deberá cargarse en sistema el AS “Inspección de predio/establecimiento avícola” (ver Anexo 3). m) Finalmente, cumpliendo satisfactoriamente con los incisos anteriores, el veterinario actuante puede permitir la repoblación completa del establecimiento. Medidas sanitarias en la Zona de Control Sanitario Una vez confirmado el brote en aves de corral, la Dirección Nacional de Sanidad Animal (DNSA), en conjunto con el centro regional interviniente, establecerá la ZCS a partir del brote, la cual estará conformada por la zona de perifoco y zona de vigilancia. Cuando existan cursos/espejos de agua o nexos epidemiológicos del brote, el Senasa puede modificar la ZCS según riesgo epidemiológico. Asimismo, la DNSA bloqueará la autogestión, así como el ingreso y egreso de aves (de corral y no de corral) en todos los establecimientos ubicados dentro de la Zona de Control Sanitario (ZCS). Además, esta Dirección identificará dichos establecimientos en los sistemas informáticos del Senasa mediante la asignación del AS “Renspa en Zona De Control Sanitario de Brote de IAAP”. Tanto las restricciones como el AS permanecerán vigentes hasta que la zona recupere su estatus de zona libre. Este antecedente permitirá identificar adecuadamente los movimientos de las aves que se envían a faena, con el objetivo de realizar la adecuada segregación de la exportación de la carne y subproductos derivados de la faena de dichas aves. Además, se deberá notificar a los médicos veterinarios acreditados en sanidad y bienestar aviar que sus establecimientos están situados dentro de una ZCS, instándolos a reforzar sus medidas de manejo, higiene y bioseguridad. El titular, responsable y el veterinario del establecimiento deberán comunicar de forma inmediata cualquier sospecha de la enfermedad. Movimientos de aves de corral i. Los movimientos de los predios deben ser solicitados por el veterinario acreditado en sanidad y bienestar aviar. Los mismos serán autorizados exclusivamente por el Senasa, sujeto a cumplimiento de normativa vigente y evaluación del riesgo. ii. Previo a la emisión del Documento de Tránsito electrónico (DT-e), el Senasa establecerá el recorrido para el traslado de aves de corral procedentes de la ZCS, así como los puntos de control, ya sean fijos o móviles, para asegurar la verificación del cumplimiento de dicho recorrido. iii. Los vehículos utilizados deben encontrarse debidamente habilitados y transitar con el correspondiente Certificado Único de Lavado y Desinfección de Vehículos de Transporte de Animales Vivos (CULyD). El conductor debe adoptar las pertinentes medidas de bioseguridad y procurar mantenerse dentro del habitáculo del vehículo durante el trayecto. iv. El personal oficial y el veterinario acreditado en sanidad y bienestar aviar deberán verificar la aptitud sanitaria de las aves y supervisar su carga. Si la verificación la realiza el agente oficial, la misma se deberá registrar en sistema mediante SIGACTAS y colocar el AS de inspección adjuntando la documentación correspondiente. En caso de ser realizada por el veterinario 14 �acreditado del establecimiento, deberá registrarse en el sistema el correspondiente “Registro de Criador”, debidamente suscripto por el profesional interviniente. Las actividades recreativas que involucren la concentración de aves de raza u ornamentales quedarán prohibidas. Asimismo, los agentes del Senasa en la región realizarán un rastrillaje epidemiológico en la ZCS, verificando si los establecimientos ubicados dentro del radio delimitado cuentan con el registro correspondiente en el Renspa. En caso de no tenerlo, se deberá gestionarlo. Además, es fundamental documentar la visita de cada establecimiento en el sistema SUR, registrando la condición sanitaria del lugar y la presencia de aves, con la cantidad y la especie. En caso de ser necesario, se deberán realizar las correcciones pertinentes en los sistemas informáticos del Senasa para actualizar la información. El acta se cargará dentro del AS de inspección correspondiente. En caso de identificarse una sospecha, el veterinario oficial del Senasa deberá proceder según el procedimiento de notificación y atención de sospechas de influenza aviar y enfermedad de Newcastle. En cuanto a la vigilancia epidemiológica, los predios con aves de corral estarán sujetos a una vigilancia clínica, a controles serológicos y/o moleculares. En el caso de aves que no sean de corral, la vigilancia se realizará de acuerdo al riesgo epidemiológico que presenten. Estas acciones serán implementadas conforme a lo establecido por el Sistema Nacional de Emergencias Sanitarias, en coordinación con la autoridad central y regional correspondiente. 3 km 7 km 10 km Brote en ave de corral y de no corral Zona de perifoco (3km) Zona de vigilancia (7km) Zona de control sanitario (10 km) Acciones en la zona de perifoco (3 km) • En los establecimientos con aves de traspatio deberá realizarse el rastrillaje epidemiológico previamente mencionado. Además, será obligatorio establecer contacto con el productor con una frecuencia mínima de una (1) vez por semana –presencial o telefónicamente–, con el objetivo de monitorear el estado sanitario de las aves. 15 �Si durante estas visitas/comunicaciones se detectan aves muertas o signos clínicos compatibles con la enfermedad (como cianosis de crestas y barbillones, petequias en patas, entre otros) deberá activarse de inmediato el protocolo de sospecha de enfermedad de denuncia obligatoria y registrar las acciones implementadas. • En establecimientos de aves de corral se deberá realizar una vigilancia clínica, serológica y/o molecular dentro de los siete (7) días de la atención del brote y repetir cada siete (7) días, hasta que la ZCS recupere la condición de libre. La vigilancia que se desarrolla-rá será determinada por la DNSA. Se recuerda que para la carga del acta de toma de muestra deberá utilizarse el SIGATM. Luego, se deberá cargar en sistema el AS “Muestreo en Zona de Control Sanitario” con el resultado del laboratorio. MOVIMIENTOS EN LA ZONA DE PERIFOCO Categoría Ingresos Egresos Aves de corral No. Sí. Se permite el egreso de aves a faena o de aves recriadas, siempre que cuenten con un (1) resultado negativo mediante la prueba de RT-PCR realizada dentro de los tres (3) días previos a la fecha del egreso. Aves de no corral No. No. Cama No. No. No. No. Excepcionalmente solo se permitirá el egreso del guano de los predios que cuenten con galpones automáticos, siempre y cuando las aves cumplan con la vigilancia con resultados negativos. El mismo debe ser eliminado dentro de la ZCS. Guano Sí, según evaluación de Huevo fértil/fresco riesgo. Sí, siempre que las aves de las que provienen cuenten con un (1) resultado negativo en el análisis de laboratorio. Carne aviar Sí, según evaluación de riesgo. Sí, con documentación respaldatoria. Aves de un día No. Sí, con documentación respaldatoria. Feria/exposiciones No. No. Nota: todo movimiento será autorizado por la oficina del Senasa correspondiente a la jurisdicción donde se encuentra la ZCS. 16 �Acciones en la zona de vigilancia (7 km) • En los establecimientos con aves de traspatio, deberá realizarse el rastrillaje epidemiológico previamente mencionado. Además, será obligatorio establecer contacto con el productor con una frecuencia mínima de una (1) vez por semana –durante dos semanas, presencial o telefónicamente–, con el objetivo de monitorear el estado sanitario de las aves. Si durante estas visitas/comunicaciones se detectan aves muertas o signos clínicos compatibles con la enfermedad (como cianosis de crestas y barbillones, petequias en patas, entre otros) deberá activarse de inmediato el protocolo de sospecha de enfermedad de denuncia obligatoria y registrar las acciones implementadas. • En establecimientos de aves de corral se deberá realizar una vigilan- cia dentro de los catorce (14) días de la atención del brote y repetir cada catorce (14) días hasta que la ZCS recupere la condición de libre. La vigilancia que se desarrollará será determinada por la DNSA. Se recuerda que para la carga del acta de toma de muestra deberá utilizarse el SIGATM. Luego, se deberá cargar en sistema el AS “Muestreo en Zona de Control Sanitario” con el resultado del laboratorio. MOVIMIENTOS EN LA ZONA DE VIGILANCIA Categoría Ingresos Egresos Aves de corral Sí, una vez ingresada entra en vigilancia. Sí. Se permite el egreso de aves a faena o de aves recriadas, que cuenten con un (1) resultado negativo mediante la prueba de RT-PCR realizada dentro de los tres (3) días previos a la fecha del egreso. Aves de no corral No. No. Cama No. No. Guano No. No. Excepcionalmente solo se permitirá el egreso del guano de los predios que cuenten con galpones automáticos, siempre y cuando las aves cumplan con la vigilancia con resultados negativos. El mismo debe ser eliminado dentro de la ZCS. Huevo fértil/fresco Sí, según evaluación de Sí, según evaluación de riesgo. riesgo. Carne aviar Sí, según evaluación de Sí, con documentación respaldatoriesgo. ria. Aves de un día Sí. Una vez ingresada entra en vigilancia. Feria/exposiciones No. Sí, según evaluación de riesgo. No. Nota: todo movimiento será autorizado por la oficina del Senasa correspondiente a la jurisdicción donde se encuentra la ZCS. 17 �Procedimiento de muestreo - Establecimientos dentro de la ZCS Para coordinar la toma de muestras, el agente oficial del Senasa deberá comunicarse previamente con el veterinario acreditado en sanidad y bienestar aviar de la granja en cuestión. Se deberán contemplar los tiempos de vacío sanitario entre granjas (72 horas como mínimo). La vigilancia a implementar será definida por la DNSA en función del riesgo epidemiológico y puede consistir en estudios serológicos y/o moleculares. Al momento del muestreo, se deberá realizar la inspección del establecimiento avícola, contemplando la confección del formulario mediante la aplicación SIGAPP y del acta de constatación a través de SIGACTAS. Luego, se deberá cargar en el SUR los AS de: • Inspección de predio/establecimiento avícola, con la actualización de los datos en el SIGSA. • Muestreo en Zona de Control Sanitario, adjuntando el resultado de laboratorio. Vigilancia molecular El procedimiento de toma de muestra y carga del acta en SIGATM para la vigilancia molecular (ver frecuencia según ZCS) debe contemplar las siguientes consideraciones: • Cantidad de aves a muestrear: 20. • Tipo de muestras: 20. Materiales • Gradillas, alcohol, marcador indeleble y algodón. • Hisopos estériles de dacrón, rayón o fibra de poliéster (no de algodón ni de alginato de calcio) con palillo de plástico (no madera). • Tubo de polipropileno transparente, fondo redondo, dimensiones 11 x 55 mm, volumen de 3 a 4 ml. Tapón a presión con aletas o tapón a rosca. • Medio de transporte viral o en su defecto solución fisiológica de cloruro de sodio al 0,9 %, estéril, sachet por 100 o 250ml o PBS. • Tijera para corte de los cabos de hisopos. • Conservadora y refrigerantes. Extracción de las muestras Hisopado: es necesario elegir una opción: traqueal u orofaríngeo. -Traqueal. Uno por ave. Levantar la cabeza del ave, abrir el pico, extraer suavemente la lengua e introducir el hisopo en la tráquea girando 2 o 3 veces (al extraer la lengua se hace bien visible el orificio traqueal). Pasar un hisopo por ave, luego cortar de inmediato la extremidad del hisopo que estaba en contacto con la 18 �mano y sumergir el resto en el tubo previamente identificado. Los mismos deben estar sumergidos en PBS o solución fisiológica estéril hasta cubrir la cabeza del hisopo (de 3 a 5 ml por pool). Se debe remitir cinco (5) hisopos por tubo. - Orofaríngeo: Uno por ave. Levantar la cabeza del ave, abrir el pico, movilizar el hisopo 3 a 4 veces tomando contacto con las paredes de la cavidad orofaríngea y luego cortar de inmediato la extremidad del hisopo que estaba en contacto con la mano y sumergir el resto en el tubo previamente identificado. Los mismos deben estar sumergidos en PBS o solución fisiológica estéril hasta cubrir la cabeza del hisopo (de 3 a 5 ml por pool). Se debe remitir cinco (5) hisopos por tubo. SIGATM: Carga de protocolo de toma de muestra • Área: Programa de Sanidad Avícola. • Motivo: Muestreo aves. • Submotivo: Muestreo en Zona de Control Sanitario. • Observaciones: colocar el número de protocolo de enfermedad denunciable correspondiente al brote. • Matriz: hisopados. • Muestras: identificar de manera clara los pooles, señalando qué tipo de hisopado corresponde. • Grupo de análisis: Diagnóstico molecular de influenza aviar (tildar RT-PCR en tiempo real gen M). Vigilancia serológica El procedimiento se implementará conforme a la frecuencia establecida para cada ZCS y según las indicaciones de la DNSA. Cabe destacar que dicha vigilancia estará a cargo del sector privado, de acuerdo con lo dispuesto en la Resolución Senasa N.º 468/2025. Acondicionamiento de las muestras Embalaje primario a. El recipiente primario debe ser hermético. b. En el caso de que se envíen varios recipientes primarios, cada uno de ellos deberá estar envuelto individualmente para evitar posibles daños. c. Cuando se calcule el volumen de las muestras que se van a enviar, también se deberá tener en cuenta el volumen del medio de transporte. d. Las muestras se deben colocar de tal forma que no se produzcan derrames. e. Las muestras identificadas individualmente –correspondientes a un mismo predio– se deben colocar en una bolsa de nylon o bolsa conservadora, identificando esta última con el N.° de Renspa o titular del predio. f. Se debe colocar refrigerantes en cantidad suficiente, considerando el tiempo de duración del transporte; cerrar y sellar la tapa. Tener en 19 �cuenta que cuanto menor sea el espacio “libre” en la conservadora, mayor será el tiempo en que las muestras se mantengan refrigeradas. Embalaje secundario a. El recipiente secundario debe ser hermético. b. El embalaje debe contener material absorbente suficiente para embeber todo el contenido de los embalajes primarios, en caso de rotura o filtraciones. Embalaje terciario a. Se deberá acondicionar el embalaje primario y secundario dentro del terciario, de forma tal que evite roturas y derrames. b. En este recipiente se debe incorporar, cuando sea necesario, hielo seco o húmedo alrededor del embalaje secundario. En caso de emplear hielo seco, el envoltorio debe permitir la salida del dióxido de carbono para evitar incrementos de presiones que ocasionen la ruptura del paquete. Si se usa hielo húmedo, el embalaje deberá ser a prueba de goteo. c. El embalaje externo debe introducirse en una bolsa sellada de plástico para protegerlo de la humedad. d. Colocar refrigerantes en cantidad suficiente considerando el tiempo de duración del transporte; cerrar y sellar la tapa. Tener en cuenta que cuanto menor sea el espacio “libre” en la conservadora, mayor será el tiempo en que las muestras se mantengan refrigeradas. e. En el exterior de la caja debe adherirse un sobre de polietileno con los protocolos correspondientes a las muestras remitidas. Envío de las muestras Finalizado el embalaje de las conservadoras, las mismas deben ser despachadas a un laboratorio oficial mediante tres (3) alternativas: 1. Si los centros regionales cuentan con laboratorios con mesas de entrada de muestras (MEM) propias, deberán entregarse en estas a los efectos de que sean remitidas a la MEM de la Dirección de Laboratorio Animal (DILAB). 2. De no contar con laboratorios con MEM propias, las conservadoras deben ser despachadas directamente con destino a la MEM de la DILAB, ubicada en Talcahuano 1660, Martínez (CP 1640), Provincia de Buenos Aires. 3. Entrega puerta a puerta al Laboratorio Animal en Martínez, con recepción durante las 24 horas. En caso de entrega puerta a puerta, se deberá informar en simultáneo vía correo electrónico a los responsables de recibir las muestras en Martínez. Quien envíe el correo electrónico desde los correos institucionales, deberá indicar nombre y apellido del remitente ya que, en ocasiones, es necesario transmitir información o hacer consultas por datos faltantes. 20 �De ser mediante transporte (público o privado, terrestre o aéreo), una vez obtenido el N.° de Guía que entrega la empresa, se deberá enviar a los correos de los responsables de recibir las muestras en Martínez el formulario para informar el despacho y la solicitud de retiro de las conservadoras enviadas. Cabe aclarar que para informar entregas “puerta a puerta”, el formulario de despacho cuenta con un campo específico para indicar dicha modalidad de envío. Las muestras se podrán recibir de lunes a jueves, de 08:30 a 14:30 h, y los viernes de 08:00 a 12:00 h (fuera de ese horario, se deberá entregar en la guarda). Listado de contactos del laboratorio AREA MAIL Coordinación Administrativa logisticadilab@senasa.gob.ar MEM Laboratorio Animal de Martínez Envíos y retiros de encomiendas acardozo@senasa.gob.ar mgirgenti@senasa.gob.ar CORPORATIVO - (11) 4874 6700 TELÉFONO - Int. 2794 - (11) 5155 5139 - - #379 - - Int. 2719 - Int. 2762/2763 MEM Laboratorio Martínez Recepción puerta a puerta mesalabadm@senasa.gob.ar - (11) 3685 4523 - Int. 2662/2603 bcarrera@senasa.gob.ar - (11) 2270 6127 - (11) 4874 6762 - Int. 2603 Cuadro modalidad de envíos Modalidad Comunicación Informar envío a: Puerta a puerta - Ana Cardozo: acardozo@senasa.gob.ar - Marcelo Girgenti: mgirgenti@senasa.gob.ar - MEM: mesalabadm@senasa.gob.ar - Bárbara Carrera Ojeda: bcarrera@senasa.gob.ar Enviar el formulario para informar el despacho y la solicitud de retiro de las conservadoras enviadas: Transporte - Ana Cardozo: acardozo@senasa.gob.ar - Marcelo Girgenti: mgirgenti@senasa.gob.ar - Logística: logisticadilab@senasa.gob.ar 21 �Sacrificio sanitario y disposición final de las aves Sacrificio sanitario Los criterios principales para el sacrificio de las aves, en términos de bienestar animal, contemplan que el método sea indoloro y obtenga una rápida inconciencia y muerte; que requiera una mínima inmovilización y evite la excitación; que sea apropiado para la especie, irreversible y minimice el estrés animal. El método de sacrificio debe garantizar la seguridad de los operarios, así como también de otras especies animales que se encuentren en la explotación, sin perjudicar o generar consecuencias adversas sobre el ambiente. Se debe fijar una zona buffer externa y comenzar allí con el sacrificio –de afuera– hacia adentro, para evitar diseminaciones de la epizootia durante el proceso. El sacrificio sanitario se realizará lo más rápido posible (24-48 horas) luego de la confirmación de la enfermedad y dentro de la misma explotación infectada (o lo más cerca posible). Consideraciones generales Para la correcta ejecución del sacrificio es esencial programar previamente las actividades, teniendo en cuenta cuál será el método más adecuado, según las características del establecimiento y de las aves involucradas. Se deberá considerar con anterioridad: • La ubicación de la explotación o predio. • La distancia desde el galpón a otros edificios (viviendas, otras granjas). • El acceso a las instalaciones, considerando la posibilidad de ingreso de maquinaria. • Las especies, el tamaño y el número de animales presentes en la explotación. • El sistema de producción existente (a piso, a jaula, semiintensivo, u otro). La presencia o ausencia de una estructura donde encerrar a las aves es un factor clave para decidir el método más efectivo. • Los detalles estructurales del galpón (cerrado, abierto, con subdivisiones o separaciones del galpón, sistema de ventilación, tipo y características de las aberturas, volumen total del galpón). • El acopio del material necesario en relación al método de sacrificio a implementar (abastecimiento de CO2 u otro, material para el sellado de aberturas, disponibilidad de contenedores aptos para la inundación con gases, maquinaria, ropa protectora, materiales de captura como redes, copos, equipos de limpieza y desinfección, etc.). • La cantidad suficiente de personal y operarios especializados. 22 �Captura previa al sacrificio de las aves Sistemas confinados Durante la captura, las técnicas ruidosas, bruscas o agresivas pueden ocasionar que las aves se asusten y dificulten la captura. En un espacio cerrado, las aves asustadas pueden apelotonarse, pudiendo provocar la muerte por asfixia o aplastamiento, que no son considerados métodos autorizados. Un correcto manejo garantiza la seguridad del ave y del operario. Los equipos de alimentación y agua deben estar retirados del camino para facilitar las actividades de la despoblación, de limpieza y desinfección, así como también para favorecer el movimiento seguro de las personas, las aves y los equipos. Esto debe hacerse de manera oportuna para minimizar el estrés de las aves relacionado con el tiempo total que permanecen sin alimento ni agua. Reducir la intensidad de la luz o trabajar con luz azul puede hacer que las aves sean más dóciles en estos sistemas. Sistemas abiertos Instalar pequeños corrales para confinar a las aves antes de capturarlas. Se puede utilizar una mediasombra o tela similar. Si son aves que pueden volar, este corral deberá contar con techo. Inducir el desplazamiento de los animales hacia el corral, ya sea mediante arreo coordinado entre varias personas o asistido por el uso de tela tipo mediasombra a modo de embudo. Para facilitarlo y atraer a las aves, se puede colocar un cebo en el corral. Dependiendo del tamaño de las aves, de su cantidad y de si pueden volar o no, la captura también puede realizarse mediante el uso de uno o de una combinación de algunos de los siguientes elementos: a. Redes de niebla. b. Copos o redes de pesca para captura individual. Se debe tener precaución y no lesionar a las aves con el borde de la red. Luego de capturarla, se deberá retirar al ave de la red con cuidado, sujetándole las patas con una mano, y el cuerpo y las alas (o el cuello, en el caso de especies de cuello largo como gansos y cisnes) con la otra. 23 �Imagen 1. Captura de un pollo usando una red de pesca de 50 cm de diámetro. Imagen 2. Captura de un ganso con una red de pescar salmón más larga y fuerte. Estas imágenes no contemplan las medidas de bioseguridad y protección personal. Imágenes 3 y 4. Retiro de ave de la red de pesca. En esta instancia, es fundamental retirar al ave de las patas. Una vez que las mismas estén sujetas, se deberá asegurar el cuello (para especies como gansos y cisnes) o el cuerpo y las alas, y luego sacar con cuidado al ave de la red. Es importante implementar correctamente las medidas de bioseguridad y protección personal al manipular las aves en caso de sospecha o confirmación de enfermedad. En el siguiente enlace se podrá visualizar un video de una jornada de capacitación sobre captura y sujeción de aves, dictada por personal del Ecoparque de la Ciudad de Buenos Aires a los agentes del Senasa. 24 �c. Pistolas o cañones lanza redes (para ver el video, acceder al enlace aquí). d. Capuchas (o similar) para colocar en la cabeza de las aves impidiendo que vean (esto las calma), pero sin asfixiarlas. e. Toallas o trapos para la manipulación segura de las aves, cubriendo las partes que puedan dañar a la persona (garras, picos, etc.). f. Guantes de cuero para la protección personal de las manos. Métodos para el sacrificio de aves El Senasa acompañará al sector privado en los procedimientos de sacrificio que posean los establecimientos. El organismo también podrá implementar la matanza por faena sanitaria, según las condiciones prácticas que se detecten, el número y especies de animales afectados, y la patogenicidad del subtipo viral encontrado. Por lo tanto, no se considera definitiva la lista de los procedimientos posibles. De este modo, son factibles los siguientes métodos químicos y físicos para sacrificio de aves: • Gasificación con dióxido de carbono (CO2). • Sistema de espuma de alta hermeticidad. • Dislocación cervical. • Electrocución. • Gasificación con nitrógeno o argón. • Gasificación con mezclas de gases. • Agentes inyectables. • Adición de anestésicos a los alimentos o al agua. • Decapitación. • Desangrado. • Gasificación con monóxido de carbono (CO). • Gasificación con ácido cianhídrico (HCN). A continuación, se desarrollan los métodos considerados más óptimos para el sacrificio de aves. Gasificación con dióxido de carbono (CO2) Este método de eutanasia para aves es muy rápido y eficaz, fácil de utilizar y con riesgos mínimos para los operarios. Requiere que las explotaciones cuenten con alguna estructura (fija o móvil) donde encerrar a las aves. 25 �El dióxido de carbono CO2 es un gas incoloro, no inflamable y no explosivo, que no genera efectos adversos en el ambiente. A concentraciones superiores al 60 %, el gas actúa como agente anestésico y produce depresión del sistema nervioso central, con rápida pérdida de la conciencia y muerte. La bibliografía sugiere situar a las aves en una atmósfera de CO2 mayor al 70 %, ya que pierden la conciencia muy rápido debido al efecto narcótico del gas. Sin embargo, por experiencias prácticas, parece ser suficiente la exposición a una concentración mínima del 55 % al 60 % del volumen del compartimiento. La concentración incidirá en la velocidad de muerte de las aves. Los patos y las ocas son resistentes a los efectos del dióxido de carbono y, por ende, requerirán una concentración mínima de CO2 del 80 % y mayor tiempo de exposición para morir. En animales conscientes, el CO2 al 100 % puede causar grave disnea y angustia. Solo se recomienda su uso al 100 % en pollitos de hasta 72 horas de vida, debido a que son más tolerantes al mismo. Si es posible, se debe disponer de mecanismos por los cuales la concentración de CO2 se pueda medir rápidamente y con exactitud. Se debe tener precaución de mantener su concentración constante por al menos 3 minutos y, luego de 20 minutos de exposición al gas, hay que asegurarse de que los animales estén muertos. Materiales requeridos: • Tubo de CO2. • Válvula de doble manómetro. • Manguera de ½ pulgada. • Calentador. • Láminas de polietileno 200 micrones. • Mediasombra. • En casos en los que las aves no se encuentren en confinamiento, será necesario contar con un contenedor donde colocar a las aves para el gaseado. Se debe conocer con anterioridad cuáles son las empresas abastecedoras del gas y un volumen de gas estimado para solicitar el suministro necesario. Para ello, será necesario calcular previamente el volumen (m3) del compartimiento donde se sacrificarán las aves, siendo: - Volumen efectivo por gasificar: Largo x ancho x altura x 0,55; o largo x ancho x (altura de la cabeza del ave + aproximadamente 50 cm). Cantidad necesaria de CO2 en kg a solicitar: volumen efectivo a gasificar x 2. >> En conclusión: 1 m3= 1,9 kg CO2. Un tubo de 50 litros alcanza para sacrificar aproximadamente 22.000 a 30.000 aves, dependiendo de la etapa reproductiva que se encuentre. Se debe tener presente que se requiere de una fuente de energía eléctrica de al menos 0,8 Kva. 26 �Las gasificaciones con CO2 pueden realizarse mediante diferentes métodos, dependiendo del sistema de producción de las aves (en sistemas confinados a piso, a jaula, en aviario o en sistemas abiertos) y –en caso de contar con uno– las características estructurales del galpón. En el galpón Este método se puede utilizar en aves que son criadas a piso, como por ejemplo pollos de engorde, reproductores, recría de gallinas de alta postura, entre otras. Existen dos procedimientos posibles: a. Gaseado total. Se debe cerrar con telas plásticas las ventanas, puertas y otras salidas de aire lo más herméticamente posible, a fin de minimizar la fuga del gas. Posteriormente, se deberá introducir el gas con mangueras. b. Gaseado parcial. Formando previamente corrales dentro del galpón o bien en galpones equipados con paredes ajustables, se deben forzar las aves hacia un lugar más restringido. Luego deben encerrarse las aves bajo una tela plástica, formando una cápsula lo más hermética posible, en donde se introduzca el gas por medio de mangueras desde la parte inferior de la cápsula (el CO2 es un gas más pesado que el oxígeno y tiende a acumularse en la parte inferior). >> Pasos por seguir 1. Se debe conformar una cámara virtual, empleando láminas de polietileno de al menos 6 metros de ancho. De dicho ancho, se utilizarán 2 m para conformar el piso, mientras que el resto se eleva para constituir las paredes laterales del túnel, las cuales son sostenidas en alto por los operarios. 2. Se ingresa una determinada cantidad de aves –por ejemplo, para 240 m2 debería ser de 3.000 a 3.200 gallinas– y luego se introduce una manguera de 30 metros de largo perforada, que se encuentra conectada a la válvula de liberación de CO2. Posteriormente, se deben cubrir las aves con la mediasombra, con el fin de evitar la ruptura de la lámina de polietileno con las garras. Es muy importante sellar bien las uniones de las láminas de polietileno para que no se filtre el gas. Luego, se debe indicar con un color dónde se encuentran las primeras perforaciones, de modo tal que se garantice que se encuentren dentro de la cámara virtual. 3. A continuación, se deben plegar las paredes laterales, anteriores y posteriores de esta cámara virtual, y se libera el gas durante aproximadamente 5 a 8 minutos (o el tiempo que sea necesario) hasta evidenciar la muerte de todas las aves. Un equipo de sacrificio entrenado (6 a 8 personas), en un plantel industrial de aves, podrá sacrificar 30.000 aves con un tubo de gas. De acuerdo con estos parámetros, se debe definir un modelo que determine cuántos puntos de aplicación de gas se requieren, en función del rendimiento de cada uno. Para ambos métodos, luego del sacrificio el personal especializado determinará la concentración de gas en el interior, para que comience la extracción segura de las aves. Los animales muertos deben ser humidificados mediante una fina neblina de agua y la recolección y eliminación posterior realizarse con la menor producción de polvo posible. 27 �Únicamente ingresará el personal necesario para el retiro de las aves y el número del mismo debe ser reducido al mínimo. En contenedores o receptáculos El contenedor o receptáculo debe ser lo suficientemente hermético como para mantener una concentración adecuada de gas durante el tiempo suficiente, a fin de garantizar la muerte de las aves colocadas en su interior. Sin embargo, debe tener una ventilación adecuada para permitir que el aire salga cuando se inyecte el gas. Existen dos métodos posibles: a. Colocación de las jaulas o módulos que contienen a las aves dentro en una unidad de gas confinada (UGC). Antes de manipular a las aves, se aconseja pulverizar agua sobre las jaulas para disminuir la producción de polvo y reducir el riesgo de dispersión del agente. >> Pasos por seguir 1. Colocar la UGC en un emplazamiento nivelado, sólido y abierto. 2. Conectar el cilindro de gas a la UGC. 3. Llenar la cámara con CO2 hasta el 55–60 % de su volumen antes de introducir las aves en ella. 4. Cargar las jaulas o módulos con las aves en la UGC. Luego, cerrarla y asegurar la puerta. 5. Introducir el gas hasta lograr una concentración de dióxido de carbono del 45 % por volumen en la parte superior de la cámara. El CO2 es más pesado que el oxígeno, por ello un llenado incompleto del contenedor puede evitar la exposición a los animales más altos o que se encuentran en la parte superior. 6. Esperar el tiempo necesario para permitir la pérdida del conocimiento y la muerte de las aves. 7. Abrir la puerta y dejar que se libere el gas. 8. Extraer las jaulas o módulos con las aves. 9. Verificar cada jaula o módulo en busca de aves supervivientes. En caso de encontrar algunas, proceda a su eliminación de manera humanitaria. Por ejemplo, mediante dislocación cervical o agente eutanásico farmacológico. 10. Disponer las carcasas correctamente. Para ello, las aves pueden colocarse en un camión y ser transportados hasta el lugar escogido para su eliminación. Los camiones que contengan aves sacrificadas –en caso de brote– deben vigilarse hasta el final de su recorrido. b. Instalación de los animales en un contenedor o aparato lleno de gas. En el caso de aves individuales o pequeños grupos en sistemas abiertos (por ejemplo traspatio, ornamentales y silvestres), prácticamente cualquier contenedor sellable puede utilizarse como recipiente para el gaseado. Desde un cubo de basura con tapa, hasta unidades especialmente construidas con sistemas automatizados de suministro de gas. También se han utilizado contenedores forrados de lona o camiones de mercancías a prueba de fugas con mangueras de tanques de CO2. 28 �El tamaño y el número de contenedores deben ser apropiados para la cantidad de aves. Contenedores para aves En todos los casos, el material utilizado debe estar diseñado, construido y mantenido de modo que los animales no se puedan lesionar y puedan ser observados. Además, los contenedores o aparatos no se deben sobrecargar para evitar que los animales se asfixien trepando unos sobre otros. De ser necesario, debe utilizarse acostado, con la salida en orientación lateral, para que puedan ingresar más aves sin ser apiladas unas sobre otras. Sistema de espuma de alta hermeticidad Es un método eficiente, que hace posible un sacrificio sanitario rápido y seguro para la erradicación de enfermedades, permite mejorar el bienestar animal durante el proceso de sacrificio sanitario y disminuye el riesgo potencial de exposición humana, debido que se requieren de 2 a 3 operarios. El proceso completo de despoblamiento toma entre dos y tres horas, y requiere de grandes cantidades de agua para su utilización. Para realizarlo, es necesario que las aves se mantengan en un espacio confinado con paredes y suelo herméticos. Emplea una tecnología que combina el agua y espuma con burbujas de CO2, que es efectiva solo para aves criadas en el piso. El método fue probado para el despoblamiento de pollos, codorniz, patos y pavos, y estableció diferencias en el tiempo de deceso entre especies de aproximadamente 3 a 5 minutos en pollos y 10 minutos para patos y pavos. Las espumas a base de agua utilizadas para el sacrificio de las aves deben ser de fácil disponibilidad, biodegradables, compatibles con los métodos de eliminación de canales y no deben implicar riesgo alguno para la salud humana. La aplicación debe realizarse de una manera que perturbe a las aves lo menos posible y evite el amontonamiento o el hacinamiento. La espuma se aplica al 1 %, por lo tanto, si para 10 m2 se necesitan 160 a 180 litros de agua, se utilizará de 1,6 a 1,8 litros espuma. Para sacrificar pavos, se debe utilizar el doble, debido a la altura a la que debe alcanzar la espuma. Los concentrados de espuma pueden usarse con agua potable, dura o salada, y puede haber diferencias de rendimiento (el agua potable es más recomendada). 29 �Estos sistemas deben producir espuma con una consistencia y densidad adecuada para ocluir completamente la vía aérea superior de las aves domésticas de modo que, cuando se sumerge en la espuma, la oclusión de las vías respiratorias se produzca de manera rápida y abrumadora, y las aves no luchen indebidamente. En este momento, el tamaño de burbuja deseado de la espuma basada en agua usada para la despoblación de aves de corral no debe exceder 1,58 cm. En solo 15 minutos, la máquina elimina 15.000 pollos alojados en un galpón de 100 metros de largo por 12 de ancho. Inicialmente, el equipo de sacrificio deberá ser conducido a la puerta del galpón y comenzar a rociar espuma densa con altura ajustable. Cabe aclarar que la espuma no mata a las aves por contacto, ni las ahoga o desinfecta. El método solo produce un bloqueo del aire, motivo por el cual la cabeza de las aves debe tener una cobertura de espuma de 15 a 30 cm. La espuma a base de agua debe demostrar un tiempo de persistencia de no menos de 30 minutos (independientemente de las condiciones climáticas o la exposición solar) para asegurar que todas las aves han sido sacrificadas correctamente. En términos de tiempo hasta la muerte y porcentaje total de población muerta, cuando la espuma es utilizada en cualquier tipo o edad de aves de corral, debe dar como resultado una mortandad del 95 % de las aves dentro de los 7 minutos (o menos) posteriores a que hayan sido completamente sumergidas. Algunos trabajos señalan que puede utilizarse espuma de los bomberos para apagar incendios, por lo que se puede buscar la colaboración del departamento de bomberos más cercano para facilitar este insumo. Dislocación cervical Las aves de corral inconscientes pueden ser sacrificadas por dislocación cervical (estiramiento del cuello) manual o mecánica. La sobredosis de un anestésico disociativo inyectado intramuscularmente, como la tiletamina/zolazepam o proporcionado en el alimento o agua, debe utilizarse para inducir la inconsciencia. Una vez que se ha alcanzado un nivel profundo de inconsciencia, puede procederse al sacrificio mediante dislocación cervical. Si se realiza correctamente, la dislocación cervical provoca una rápida pérdida de consciencia. La técnica consiste en separar el cráneo y el cerebro de la médula espinal aplicando una presión a la base posterior del cráneo. 30 �Procedimiento de la técnica 1. Sostenga al ave al revés, por encima de las rodillas, y afirme las piernas contra su cuerpo. 2. Sostenga la cabeza entre los dedos anular e índice a cada lado del cuello (en la base del cráneo) y doble la cabeza hacia atrás. 3. En un movimiento coordinado, aplicar fuerza creciente para estirar el cuello, hasta que la cabeza esté separada de la espina cervical del cuello. Electrocución Es la técnica utilizada en plantas de faena, pero este sacrificio es realizado por unidades de matanza móvil, en caso de disponer de las mismas. Agentes inyectables Es una buena opción cuando se trabaja con un pequeño número de aves. Una inyección mortal de altas dosis de anestésicos y sedativos provoca depresión del sistema nervioso central, pérdida de conocimiento y la muerte. Por lo general, se utilizan barbitúricos combinados con otros fármacos, en inyección intravenosa o intraperitoneal. Por ejemplo, el pentobarbital sódico puede utilizarse a una concentración del 20 %, (200 mg/ml) a una dosis de 200 mg/kg (esta dosis es orientativa y debe evaluarse a efecto). La inyección intravenosa produce una muerte más rápida, pero la ruta intraperitoneal puede ser más fácil de realizar en muchas especies, reduciendo de ese modo el estrés causado por la manipulación. Sin embargo, el pentobarbital sódico puede producir irritación del peritoneo lo que se puede evitar diluyéndolo. Los frascos de anestésicos y barbitúricos que se utilizarán deben ser transportados en cajas cerradas con algún sistema de seguridad (candado, llave u otro mecanismo de cerrado). La misma solo debe ser manipulada por el agente oficial actuante y no debe quedar al alcance de ninguna otra persona. Los frascos deben sacarse solo al momento de ser utilizados y vueltos a guardar inmediatamente después. Adición de anestésicos a los alimentos o al agua Puede ser una alternativa para las especies de passeriformes que se encuentran alojadas en jaulones. Se puede añadir a los alimentos o al agua de las aves un producto anestésico, como la tiletamina/zolazepam. Las aves que estén solo anestesiadas, pero no muertas después de la ingestión requerirán que se les aplique otro método de sacrificio como, por ejemplo, la dislocación cervical o destrucción de la masa encefálica. Para una utilización eficaz, los animales deben ingerir rápidamente cantidades suficientes de anestésicos, lo cual se facilitará si se pone a los animales en ayuno o se les retira el agua una o dos horas antes. Este método es únicamente aplicable en aves adultas, según los lineamientos dispuestos por la OMSA. 31 �Puede presentar ventajas desde el punto de vista de la bioseguridad, en caso de que haya un número elevado de aves enfermas. No obstante, no se debe aplicar al aire libre, ya que otros animales pueden acceder accidentalmente a los alimentos o al agua medicada. Los resultados pueden variar, dado que no es posible regular la dosis ingerida con exactitud. Además, los animales pueden rechazar los alimentos o el agua adulterados debido a la enfermedad o al mal sabor. Es importante tener sumo cuidado al preparar y suministrar los alimentos o el agua tratados, al eliminar sus restos y al eliminar los cadáveres contaminados. Decapitación La decapitación implica el corte de la cabeza por el cuello, utilizando una cuchilla afilada. Ya que la actividad cerebral puede continuar durante hasta 30 segundos y es dudoso que el ave quede inconsciente de inmediato. Previo al sacrificio, se deben utilizar anestésicos. La decapitación produce la muerte por isquemia cervical. Las actividades motoras que se producen tras la pérdida de postura –aunque potencialmente angustiosas para los observadores– no son percibidas por un animal inconsciente como dolor o angustia. El pataleo reflejo en animales inconscientes puede confundirse con actividad consciente y puede producirse incluso después de la decapitación, ya que los circuitos neurológicos implicados en la marcha se localizan en la médula espinal. El material que se utilizará, sea una guillotina o cuchillo, debe mantenerse en buenas condiciones de funcionamiento, estar limpio y siempre bien afilado. • En aves pequeñas de menos de 200 gr la decapitación se realiza con tijeras de disección: se secciona la articulación atlanto-occipital, separando la cabeza del cuello por medio de un corte firme y rápido. • Para aves de corral se recomienda contar con una superficie elevada (mesa o tabla), a fin de realizar la decapitación sobre la misma y contar con un recipiente debajo para contener los fluidos corporales de las aves. Para evitar el derrame de líquidos, se recomienda la utilización de un embudo que ayude a la contención de los mismos. Es importante tener en cuenta que las aves sacrificadas por este método deben ser depositadas en bolsas o contenedores (tambor) que no filtren los líquidos al ambiente hasta finalizado el sacrificio de todas las aves del lugar; luego, los cadáveres deben ser trasladados en los contenedores hacia el lugar determinado para su enterramiento. La sangre debe ser desechada junto con los cadáveres. Los recipientes utilizados para la contención de fluidos y los cadáveres deben ser debidamente lavados y desinfectados en el mismo establecimiento. En la granja, se puede utilizar el cono como dispositivo de inmovilización: se coloca a las aves boca abajo en el dispositivo con la cabeza a través de un agujero y se puede llevar a cabo el sacrificio inmediatamente. 32 �Imagen 5. Uso de cono para la inmovilización de un pavo. Desangrado El ave se coloca en el cono que la inmoviliza, evitándole lesiones. Con cuchillos limpios y desinfectados (agua clorada) se procede al corte de grandes vasos del cuello, produciendo el desangrado. El ave debe permanecer un mínimo de 3 minutos en este proceso para asegurar un correcto desangrado. La sangre se recolecta en un recipiente para tal fin. Eliminación de los cadáveres Existen varios métodos para eliminar las aves muertas, desechos y otros desperdicios. Preferentemente se debe proceder al enterramiento en el mismo establecimiento u otro lugar adecuado para este fin, aprobado previamente por el Senasa. Cuando nos es posible o conveniente el enterramiento, la mejor opción es elaborar compostas o bien la incineración. Los huevos u otro material orgánico contaminante (guano, cama de galpón, restos de alimentos, productos, basura, etc.) deben recogerse con cuidado a fin de que se elimine junto con los cadáveres. Enterramiento El enterramiento es el procedimiento más adecuado para la eliminación de animales y otros elementos de riesgo, ya que generalmente es cómodo, económico, rápido y seguro. No obstante, es necesario considerar los siguientes factores para la toma de decisiones: • Los lugares para el entierro deben contar con la aprobación de la autoridad competente del lugar. • Disponibilidad del terreno para reducir al mínimo la distancia a través de la cual se transporta el material infectado, es apropiado que el enterramiento se realice en la misma granja. 33 �• Tipo de suelos (los rocosos pueden imposibilitar la actividad). • Profundidad del manto freático. • Presencia de tuberías de agua, gas, electricidad, drenaje, teléfonos u otras. • Disponibilidad de la máquina retroexcavadora, camiones de volteo, tractores, así como su accesibilidad al terreno. • Presencia de corrientes de aguas como canales, arroyos, ríos u otros. • Posibilidad de inundación del terreno. • Pendientes del suelo. Otra opción que podría resultar adecuada es optar por un lugar de enterramiento común para varias granjas en una zona determinada. Para la construcción de la fosa debe usarse maquinaria pesada (camiones de volteo, tractores, excavadoras y retroexcavadoras). Asimismo, antes de iniciar su construcción, es importante considerar: • El tamaño, en función del número y peso de las aves. • Para su llenado se debe calcular 600 kg/m3 de fosa. • No debe ser muy ancha (no más de 6 metros). • Debe ser larga, con la posibilidad de irse rellenando por fracciones. • Es conveniente dejar un terraplén por el frente para que pueda ingresar el vehículo con los cadáveres o los residuos. • Se debe dejar un metro entre las aves sacrificadas y el piso superior (relleno). • Se puede construir más de una fosa, previendo que no se cruce por alguna que esté llena. En las fosas, también se debe depositar restos de alimentos, excretas, huevos, basura y material que no garantice la desinfección. El peso del lote de aves que será preciso enterrar depende del tipo de producción (pollos de engorde, reproductores pesados o livianos, gallinas de alta postura de huevos blancos o de color, u otras especies). La edad de las aves o las semanas de cría pueden ser provistas por el propietario, por técnicos especializados en avicultura o bien obtenerse de tablas. • Un kilogramo de peso tiene un volumen promedio de 0,06242 m3. • El volumen de la fosa se debe calcular multiplicando el valor anterior por el peso medio y la cantidad promedio de aves alojadas. Se recomienda cubrir la fosa con láminas geotextiles o nylon para evitar la contaminación del manto freático. Posteriormente, depositar los cadáveres, cubrirlos con 40 centímetros de tierra y colocar sobre la misma una capa uniforme de hidróxido de calcio [Ca (OH)] antes de finalizar el llenado. También es conveniente evitar poner la cal directamente sobre los cadáveres porque retrasa y puede evitar su descomposición. 34 �Debido a la producción de gases por descomposición de los cadáveres, se puede producir una considerable expansión del material enterrado por lo cual no se compactará la tierra al recubrir la fosa, asimismo, para evitarlo se deben colocar tubos cribados para su ventilación. En caso de usar como método de sacrifico la espuma, no colocar en la fosa de eliminación las aves junto al guano o cama debido al exceso de gas metano, lo cual puede causar la explosión de la fosa. Incineración Es el método menos recomendable para la eliminación de una gran cantidad de aves, principalmente por su elevado costo y por el tiempo que se requiere para hacerlo cenizas. Sin embargo, si por alguna razón fuera necesario realizar este método, se debe considerar: • Aprobación de los organismos oficiales encargados de la protección medio ambiente. • Disponibilidad de agua o material contra incendios. • El método no puede utilizarse en épocas de lluvias. • Se requiere gran cantidad de combustible. • Se requiere de un acomodo especial de los cadáveres para asegurar una buena incineración. • Una inadecuada incineración incrementa el riesgo de escape de virus, al dejar cadáveres semiquemados. • Un error puede generar accidentes personales, locales o ambientales. • Las cenizas deben enterrarse o llevarse a un relleno sanitario. • El método provoca severa contaminación ambiental. • Se deben utilizar hornos crematorios convencionales cuando se trate de pocas aves sacrificadas. Compostaje El compostaje es un proceso de descomposición controlada de la materia orgánica. La descomposición ocurre en un ambiente aerobio en presencia de determinadas condiciones de pH, temperatura y humedad, en la cual microorganismos mesófilos y termófilos elevan la temperatura por un tiempo determinado permitiendo así la inactivación viral. Este método puede ser alternativo al enterramiento en sitios en que, por razones de legislación o alto nivel de las napas freáticas, no se permita el enterramiento. Para su planeamiento, se deben considerar la disponibilidad de materiales necesarios para su realización (ej.: fuente de carbono como paja), su ubicación y el tiempo requerido para la inactivación viral a temperaturas adecuadas (15 días a temperaturas mayores a 62 ºC). Se puede realizar luego una eliminación definitiva, enterrando el compost. 35 �Eliminación de la cama, deyecciones de aves o productos avícolas La cama, las deyecciones, los huevos u otros deben tratarse mediante un método idóneo para eliminar el virus. Dicho método debe incluir una de las siguientes manipulaciones: a. Se enterrarán con los cadáveres a una profundidad que impida el acceso a parásitos, aves silvestres u otros animales. b. Se incinerarán o tratarán con vapor de agua a temperatura de >70°C. c. Se amontonarán y humidificarán (si resultara necesario para facilitar la fermentación), se cubrirán para mantener el calor de forma que se alcance una temperatura de fermentación mínima de 20 °C y se mantendrán cubiertos durante 42 días. d. En el caso de haber utilizado como método de sacrificio la espuma, la cama o guano debe enterrarse en forma separada de las aves sacrificadas. Medidas higiénico-sanitarias para el sacrificio y eliminación La realización del sacrificio y la eliminación de los lotes afectados se realizarán bajo la supervisión del Senasa. Teniendo en cuenta que el humano es el principal vehiculizador del virus entre granjas y sobre todo a grandes distancias, estas actuaciones exigen contemplar una serie de medidas higiénico-sanitarias destinadas a la eliminación efectiva del virus y a evitar su propagación. Por ello, es necesario que: • en el sacrificio y eliminación participen exclusivamente el número de personas necesarias para el mismo (únicamente el personal afectado a estas áreas, sin tener contacto con otras granjas avícolas); • se disponga de un lugar de desinfección a la entrada y salida de la explotación para vehículos y calzados. • todo el personal utilice ropa adecuada para tal fin y todo el material descartable sea eliminado en la misma explotación; • el material no desechable sea desinfectado en forma adecuada, previo a su retiro de la explotación; • se mantenga una adecuada y estricta higiene de las manos y desinfección de botas, después del contacto con aves de corral o con superficies contaminadas. Biodigestor La tecnología de digestión anaeróbica es utilizada para el procesamiento de residuos orgánicos, consolidándose con la implementación de plantas de biogás. Las aves sacrificadas deben moverse, previa autorización del Senasa, en camiones herméticamente cerrados y desinfectados al egreso e ingreso del establecimiento. El mismo debe ir con la documentación correspondiente y con certificado de desinfección suscrito por el veterinario acreditado en Sanidad y Bienestar Aviar. 36 �Procedimiento de limpieza y desinfección La limpieza se define como la eliminación de la materia orgánica, suciedad, grasitud o polvo que es visible en una superficie. Por su parte, la desinfección es el procedimiento de reducción de los microorganismos infectantes a niveles seguros, mediante la aplicación de productos específicos para tal uso. La desinfección solo es efectiva si antes se realizó una correcta limpieza de la superficie o zona infectada. Las operaciones de limpieza y desinfección se llevarán a cabo bajo la supervisión y en concordancia con el veterinario oficial del Senasa. Previo a la desinfección, se informará al avicultor/propietario de las medidas de bioseguridad y el protocolo de limpieza que se deberá efectuar. El personal que conforma el equipo de limpieza y desinfección debe estar provisto de ropa protectora adecuada, en lo posible descartable. Todo el equipo de protección individual, incluyendo calzado, deberá limpiarse y desinfectarse al terminar el operativo. Limpieza Una vez extraídos los cadáveres, restos de alimentos o cualquier materia orgánica para su eliminación, se realizará una limpieza profunda de las instalaciones con un producto desengrasante (detergentes u otros surfactantes autorizados) y agua. Deben preferentemente emplearse sistemas de limpieza a presión con agua caliente, a fin de favorecer la eliminación de la suciedad adherida. Como se mencionó anteriormente, todo material infectivo, cadáveres, alimento, guano, cama, subproductos y demás materia orgánica se debe eliminar por enterramiento. Desinfección Se rociarán todas las superficies limpias que hayan estado en contacto con las aves infectadas y las cercanas a los mismos con desinfectantes autorizados por el Senasa, dejando que el producto actúe el tiempo que indique el fabricante. Luego, se deberá enjuagar con agua fría. El desinfectante debe permanecer durante veinticuatro horas como mínimo. Los implementos, bebederos, comederos, jaulas, nidos, incluyendo las dependencias ajenas como cuartos de baños, almacenes de alimentos y utensilios, depósitos de pienso, depósitos de agua de bebida, entre otros, deben tratarse en forma similar con especial atención al uso de agua caliente o vapor a temperatura de >70 °C. Aquellos implementos que se pudieran remover del galpón se ubicarán en un lugar apartado y cubierto al amparo de otros animales o aves durante por lo menos 28 días. 37 �Los desagües y conductos de evacuación se llenarán con desinfectantes concentrados. Una vez transcurridos los siete días de la primera limpieza y desinfección, se recomienda repetir el procedimiento de limpieza y desinfección. Posteriormente, se procederá a realizar un programa integrado de control de plagas (artrópodos y roedores), ya que los mismos pueden actuar como vectores mecánicos, mediante productos insecticidas y rodenticidas autorizados por el Senasa. Desinfectantes y productos químicos recomendados Los desinfectantes recomendados que pueden emplearse en el proceso de desinfección en brotes de IAAP son los agentes tensoactivos catiónicos (sales de amonio cuaternario 4 %), agentes oxidantes (hipoclorito de sodio 2 %, hipoclorito de calcio 2 % y Virkon®), aldehídos (glutaraldehido 2 %), ácidos (ácido cítrico 2 %) y álcalis (hidróxido de sodio 2 %, hidróxido de calcio 3 %; carbonato de sodio 4 %); fenoles sintéticos 2 % y ácido cresílico 2 %. Este listado no es definitivo y se podrán utilizar otros compuestos que determine oportunamente el Senasa. Registro Se debe elaborar y conservar un registro escrito de todas las actividades, consignando el trabajo realizado, la fecha y los productos aprobados por el Senasa, como se observa en el Anexo N.° 6. 38 �Anexos Anexo 1: Actas que se deben cargar en el SUR con el antecedente sanitario correspondiente a cada momento de la detección de IAAP Actividades dentro del período de vigilancia Confirmación de brote Tipo de antecedente BROTE DE INFLUENZA AVIAR H5 INSPECCIÓN DE PREDIO/ ESTABLECIMIENTO AVÍCOLA Documentación para adjuntar en cada AS Fecha de alta Fecha de baja Orden de análisis con resultado positivo Fecha de la orden de análisis Formulario de encuesta epidemiológica Fecha de realización de la encuesta Acta de sacrificio (incluye limpieza y desinfección) Fecha inicio sacrificio Fecha fin de limpieza y desinfección Acta constatación de Cierre de brote Fecha de cierre de brote (la misma que fin de limpieza y desinfección) Acta de constatación de levantamiento de interdicción Fecha de realización de levantamiento Anexo 2: Actas que se deben cargar en el SUR con el antecedente sani- tario correspondiente al momento de la atención la sospecha de IA Atención de la sospecha Tipo de antecedente AVES MUESTREO SOSPECHA DE I.AVIAR/ENC Documentación para adjuntar en cada AS Fecha de alta Fecha de baja Actas toma de muestra (SIGATM) Fecha toma de muestra Fecha de emisión de resultado Acta constatación (constatando existencias, signos clínicos e interdicción) Fecha de realización de acta 39 �Anexo 3: Se deberá considerar la carga del correspondiente antecedente sanitario, según lo observado al momento de la inspección en función del siguiente cuadro ANTECEDENTE SANITARIO MOTIVO INSPECCIÓN PREDIO/ ESTABLECIMIENTO AVÍCOLA - SIN INCONSISTENCIAS Se debe cargar cuando al momento de la visita al predio de aves de corral no se encuentra inconsistencias al cumplimiento de la Resolución Senasa N.° 1699/2019. Si el predio es de aves de traspatio se debe cargar cuando visita el mismo. INSPECCIÓN PREDIO/ ESTABLECIMIENTO AVÍCOLA - CON INCONSISTENCIAS GRAVES Se debe cargar cuando al momento de la visita al predio de aves de corral se encuentra inconsistencias graves en el incumplimiento de la Resolución Senasa N.° 1699/2019 o en caso de visitar predio de aves de traspatio y observa que convive con producción industrial. INSPECCIÓN PREDIO/ ESTABLECIMIENTO AVÍCOLA - CON INCONSISTENCIAS MODERADAS Se debe cargar cuando al momento de la visita al predio de aves de corral se encuentra inconsistencias moderadas en el incumplimiento de la Resolución Senasa N.° 1699/2019. INSPECCIÓN PREDIO/ ESTABLECIMIENTO AVÍCOLA - CON INCONSISTENCIAS LEVES Se debe cargar cuando al momento de la visita al predio de aves de corral encuentra inconsistencias leves en el incumplimiento de la Resolución Senasa N.° 1699/2019 40 �Anexo 4 41 �42 �Anexo 5 43 �Anexo 6 44 �45 �46 �47 �48 �Contacto Programa Nacional de Sanidad Aviar Correo: avesygranja@senasa.gob.ar Teléfono de contacto: (011) 4121 – 5409. 49 �argentina.gob.ar/senasa � Dublin Core The Dublin Core metadata element set is common to all Omeka records, including items, files, and collections. For more information see, http://dublincore.org/documents/dces/. Title A name given to the resource Publicaciones SENASA Dublin Core The Dublin Core metadata element set is common to all Omeka records, including items, files, and collections. For more information see, http://dublincore.org/documents/dces/. Title A name given to the resource Guía operativa. Influenza aviar en aves de corral. Plan de contingencia Publisher An entity responsible for making the resource available Servicio Nacional de Sanidad y Calidad Agroalimentaria Date A point or period of time associated with an event in the lifecycle of the resource 2025 Contributor An entity responsible for making contributions to the resource Dirección Nacional de Sanidad Animal Dirección General de Laboratorios y Control Técnico Coordinación General de Comunicación Institucional Language A language of the resource Es Type The nature or genre of the resource Manual Identifier An unambiguous reference to the resource within a given context B.S.0198 Abstract A summary of the resource. El presente documento tiene como objetivo proporcionar información técnica al personal profesional del Senasa sobre las estrategias, medidas sanitarias, acciones y actividades generales que debe realizar el Servicio ante la confirmación de uno o más brotes de influenza aviar (IA) en aves de corral en la República Argentina. Table Of Contents A list of subunits of the resource. Introducción Marco legal: referencias normativas y recomendaciones internacionales Glosario conceptual La enfermedad Sistema Nacional de Emergencias Sanitarias Estrategia sanitaria y procedimientos de respuesta Procedimiento de atención y seguimiento de influenza aviar tipo a H5H7 en aves de corral Procedimiento de muestreo - Establecimientos dentro de la ZCS Sacrificio sanitario y disposición final de las aves Procedimiento de limpieza y desinfección Anexos Enfermedades de las Aves Influenza Aviar https://biblioteca.senasa.gob.ar/files/original/2f7cfe2ce8c5eb7293869feae43d3494.pdf 670fdf2ef61d606e4e2ccc76bc6b427c PDF Text Text GUÍA OPERATIVA Influenza aviar en aves no de corral (traspatio) Plan de contingencia Servicio Nacional de Sanidad y Calidad Agroalimentaria (Senasa) �El Servicio Nacional de Sanidad y Calidad Agroalimentaria (Senasa) es un organismo descentralizado encargado de ejecutar las políticas nacionales en materia de sanidad y calidad animal y vegetal e inocuidad de los alimentos de su competencia, así como de verificar el cumplimiento de la normativa vigente en la materia. Equipos de trabajo Dirección Nacional de Sanidad Animal Programa Nacional de Sanidad Aviar Coordinación General de Comunicación Institucional Edición 2026 �Introducción El presente documento tiene como objetivo establecer los lineamientos técnicos destinados al personal profesional del Servicio Nacional de Sanidad y Calidad Agroalimentaria (Senasa), en relación con las estrategias, medidas sanitarias, acciones y actividades generales que deberán adoptarse ante la confirmación de uno o más brotes de influenza aviar (IA), subti-pos H5 o H7, en aves de traspatio (no comerciales) dentro del territorio de la República Argentina. La confirmación del evento sanitario se efectúa mediante la técnica de RTPCR, a partir de la detección del ácido ribonucleico (ARN) viral específico del virus de IA H5 o H7, con resultado emitido por el Laboratorio Central del Senasa. Una vez confirmada la detección, deberán implementarse las medidas sanitarias correspondientes en el predio positivo, así como las acciones de fiscalización y control dentro del área de prevención vinculada al brote, con el propósito de contener y erradicar la enfermedad. En caso de detectarse un brote de IA H5/H7 en aves de traspatio, la Dirección Nacional de Sanidad Animal (DNSA), en conjunto con el Centro Regional involucrado, serán los responsables de diseñar y establecer el área de prevención correspondiente. Los límites serán determinados por el Senasa, en función de la situación epidemiológica local. La delimitación del área de prevención tendrá como finalidad la implementación de acciones de biocontención, vigilancia epidemiológica y control sanitario, orientadas a prevenir la diseminación del agente y proteger el estatus sanitario del país. Marco legal: referencias normativas y recomendaciones internacionales El marco legal que sustenta las acciones vinculadas a la sanidad aviar y la respuesta ante enfermedades está compuesto por un conjunto de leyes, decretos y resoluciones vigentes en la República Argentina, así como también por recomendaciones internacionales. • Ley N.° 27.233. Declara de interés nacional la sanidad animal y vegetal, así como la prevención, control y erradicación de enfermedades y plagas que afecten la producción agropecuaria, la flora y la fauna. Designa al Senasa como autoridad de aplicación, responsable de planificar, ejecutar y controlar las acciones sanitarias en todas las etapas de la producción, transformación, transporte, comercialización y consumo de agroalimentos, incluyendo producciones familiares y artesanales. • Ley N.° 27.342. Amplía el alcance de la Ley N° 3.959, extendiendo la defensa sanitaria a todas las especies animales, incluso aquellas que no se consideran “ganado”, siempre que el Poder Ejecutivo las incluya en la nomenclatura sanitaria correspondiente. GUÍA OPERATIVA. INFLUENZA AVIAR EN AVES NO DE CORRAL (TRASPATIO). PLAN DE CONTINGENCIA 3 �• Ley de Policía Sanitaria Animal N.° 3.959. Establece la defensa de los ganados en la República Argentina frente a la introducción de enfermedades contagiosas exóticas. • Resolución Senasa N.° 779/1999. Aprueba el Sistema Nacional de Emergencias Sanitarias, que establece los niveles, estructuras, responsabilidades y funciones para la gestión de emergencias sanitarias por enfermedades exóticas, persistentes o situaciones epidemiológicas de riesgo en el país y en naciones limítrofes. • Resolución Senasa N.° 153/2021. Determina la obligatoriedad de notificar de forma inmediata al Senasa la sospecha de enfermedades incluidas en el Grupo I, entre ellas la Influenza Aviar. • Resolución Senasa N.° 466/2025. Aprueba el Plan de Contingencia para Influenza Aviar (IA) como herramienta específica para la gestión de brotes. • Código Sanitario de los Animales Terrestres - Organización Mundial de Sanidad Animal (OMSA). Proporciona directrices y recomendaciones internacionales para la prevención, control y erradicación de enfermedades animales, armonizando las acciones nacionales con los estándares internacionales. Capítulos 7.6 y 10.4. Glosario conceptual - Área de prevención (AP): corresponde a un área territorial donde se detecta un brote de IA H5/H7 en aves no de corral, cuyos límites son determinados por el Senasa y tienen por finalidad realizar actividades de biocontención y vigilancia. – Aves de corral: designa todas las aves criadas o mantenidas en cautiverio para la producción de mercancías comerciales avícolas o la reproducción para estos fines. Las aves no de corral se considerarán como aves de corral cuando tengan contacto directo o indirecto con estas últimas o con instalaciones avícolas. – Aves silvestres: designa un ave cuyo fenotipo no se ha visto afectado por la selección humana y que vive independiente, sin necesitar supervisión o control de seres humanos. – Aves de traspatio: designa a las aves que se crían en un predio registrado ante el Senasa como aves de traspatio, cuyos productos solo se ofrecen directamente para el autoconsumo. – Aves de un día: designa a las aves que tienen, como máximo, 72 horas después de haber salido del huevo. – Aves no de corral: incluye las aves silvestres de vida libre, traspatio, así como las silvestres cautivas criadas para espectáculos, competencias, exposiciones, GUÍA OPERATIVA. INFLUENZA AVIAR EN AVES NO DE CORRAL (TRASPATIO). PLAN DE CONTINGENCIA 4 �colecciones de zoológicos y concursos, y para la reproducción o la venta a dichos efectos, así como las aves de compañía, siempre que no tengan contacto directo o indirecto con aves de corral o instalaciones de producción avícolas. – Aves silvestres cautivas: designa a aves cuyo fenotipo no se ha visto significativamente afectado por la selección humana, pero que están cautivas o viven bajo o necesitan supervisión o control de seres humanos. – Aves silvestres de vida libre: designa a aves cuyo fenotipo no se ha visto afectado por la selección humana y que viven independientes sin necesitar supervisión o control de seres humanos. – Biocontención: acciones que se implementan para disminuir el riesgo biológico de diseminación de un patógeno. – Bioseguridad: designa a un conjunto de medidas de gestión, manejo, sanitarias y profilácticas, cuyo objetivo es reducir el riesgo de introducción, radicación y propagación de enfermedades, infecciones o infestaciones animales hacía, desde y dentro de una población animal. – Brote: designa la presencia de uno o más casos de IA H5/H7 en una unidad epidemiológica. – Caso: designa a un ave con o sin signos clínicos manifiestos, que ha resultado positivo a la/s prueba/s diagnóstica/s confirmatoria/s de IA H5/H7, o a aves con sintomatología en las que mediante una evaluación epidemiológica se compruebe un nexo epidemiológico con un caso confirmado. – Cierre del brote: se define como tal o “Día 0”, a la fecha en que se culmina con las tareas de sacrificio de las aves, enterramiento, limpieza y desinfección del predio. – Interdicción de predio: de acuerdo con la normativa vigente del Senasa, equivale a vedar o prohibir. Es una medida que impide disponer de aquello que está interdicto. La medida de interdicción, entre otras cosas, tiende a la imposibilidad de trasladar (ingreso y egreso) animales, productos, subproductos o materiales potencialmente infectantes, con relación al predio interdicto, ya sea por razones sanitarias u otras irregularidades y que, como consecuencia, se encuentran bajo control o fiscalización del Senasa. – Nexo epidemiológico: se refiere al contacto directo o indirecto entre aves susceptibles y aves enfermas a través del cual es posible que se haya transmitido el virus de IA H5/H7 por las vías de transmisión habituales. – Predio: designa al lugar donde se encuentran las aves de corral y no de corral. – Rastrillaje epidemiológico: proceso sistemático y activo de búsqueda y seguimiento de casos de IA en aves de corral y de no corral. Este procedimiento tiene como objetivo identificar aves infectadas, prevenir la propagación de la enfermedad y controlar brotes. GUÍA OPERATIVA. INFLUENZA AVIAR EN AVES NO DE CORRAL (TRASPATIO). PLAN DE CONTINGENCIA 5 �– Sacrificio sanitario: designa la operación, efectuada bajo la supervisión del Senasa, diseñada para eliminar un brote. Consiste en llevar a cabo las siguientes actividades: i. matanza de los animales afectados o que se sospeche han sido afectados o que hayan estado expuestos a la infección por contacto directo con estos animales, o contacto indirecto con el agente patógeno causal; ii. eliminación de los animales muertos o de los productos de origen animal, según el caso, por enterramiento, transformación, incineración o cualquier otro método que oportunamente disponga el Senasa; iii. limpieza y la desinfección de las explotaciones, a través de los procedimientos recomendados por OMSA, con el fin de destruir el agente infeccioso de la IA. Se aplica en instalaciones, vehículos y objetos diversos que puedan haber sido directa o indirectamente contaminados. – Unidad epidemiológica: designa a un grupo de aves con la misma probabilidad de exposición a un agente patógeno. – Zona de Control Sanitario (ZCS): corresponde a un área territorial donde se detecta uno o más brotes de IA H5/H7 en aves de corral, cuyos límites son determinados por el Senasa, y tiene por finalidad realizar actividades de bioseguridad, biocontención y vigilancia para contener y erradicar el o los brotes de la zona. En brotes de aves de corral, esta ZCS está compuesta por la Zona de Perifoco (ZP) con un radio de 3 kilómetros y la Zona de Vigilancia (ZV) con un radio de 7 kilómetros alrededor de la anterior. Cuando existan cursos o espejos de agua o nexos epidemiológicos del brote, el Senasa puede modificar la ZCS, según riesgo epidemiológico. – Zoológico y entidades afines: entidad o institución, pública o privada, donde se mantienen animales silvestres bajo cuidado humano, independientemente de su finalidad, como parques zoológicos, acuarios, reservas, bioparques, centros de rescate y santuarios, entre otros. La enfermedad La influenza aviar, también conocida como “gripe aviar”, es una infección viral contagiosa, producida por el virus de la influenza aviar tipo “A”, familia Orthomyxoviridae, genero influenzavirus. Esta enfermedad puede afectar a varias especies de aves de corral, así como también a las aves de compañía y silvestres. Cabe aclarar que se han aislado virus de IA, con menor frecuencia, en algunas especies de mamíferos, como ratas, ratones, comadrejas, hurones, cerdos, gatos, tigres, perros, caballos, así como en los humanos. La enfermedad se encuentra incluida en la lista única de enfermedades de notificación obligatoria de la OMSA y, según la Resolución Senasa N.° 153/2021, es una de las enfermedades de denuncia obligatoria definidas en la normativa. GUÍA OPERATIVA. INFLUENZA AVIAR EN AVES NO DE CORRAL (TRASPATIO). PLAN DE CONTINGENCIA 6 �Aunque la presencia del virus en aves de traspatio no compromete el estatus sanitario del país ni afecta el comercio internacional, es indispensable implementar medidas de contención y bioseguridad ante la detección de un brote de influenza aviar en un predio de estas características, con el objetivo de controlar y erradicar la enfermedad. La influenza aviar de alta patogenicidad (IAAP) es una enfermedad sobre la que deben implementarse acciones de erradicación inmediatas, tan pronto como se detecte su existencia. Para mayor información, acceder al sitio web oficial de la OMSA o al Micrositio del Senasa. Sistema Nacional de Emergencias Sanitarias El Sistema Nacional de Emergencias Sanitarias se compone por los niveles central y regional, y la estructura organizacional, responsabilidades y funciones que determinan el funcionamiento de la cadena de comandos de incidentes para la gestión de eventos emergenciales, basado en la normativa vigente en la materia. Este sistema se activa ante la detección de enfermedades persistentes, exóticas o situaciones epidemiológicas que así lo justifiquen, tanto dentro del territorio nacional como en países limítrofes, cuando éstas impliquen un riesgo sanitario. Estrategia sanitaria y procedimientos de respuesta De detectarse la presencia de la enfermedad de un brote de IA H5/H7, la política adoptada por el Senasa busca lograr la erradicación de esta enfermedad en el país, en el menor tiempo posible. El objetivo principal es la biocontención de la misma y así evitar la difusión del virus a otras poblaciones de aves, salvaguardando la salud pública y sanidad avícola, protegiendo la biodiversidad y mitigando las posibles consecuencias económicas en la avicultura nacional e internacional. Procedimiento de atención y seguimiento de influenza aviar tipo a H5H7 en aves de traspatio Consideraciones generales Una vez confirmada la detección de la presencia del virus de IA H5/H7 a través de los resultados oficiales emitidos por la Dirección General de Laboratorios y Control Técnico (DGLyCT) del Senasa e informada por la Dirección Nacional de Sanidad Animal (DNSA), se deberá conformar un equipo exclusivo de tra- GUÍA OPERATIVA. INFLUENZA AVIAR EN AVES NO DE CORRAL (TRASPATIO). PLAN DE CONTINGENCIA 7 �bajo para el predio del brote y otros (los que fueran necesarios) para el área de prevención (AP), conforme al Sistema Nacional de Emergencias Sanitarias. Los vehículos utilizados deben ser exclusivos para tal fin, quedar fuera de los predios involucrados, tanto en el brote como en el Área de Prevención y proceder a su desinfección, antes y después de la recorrida. Se deberá constatar y cargar en el Sistema Único de Registro (SUR) los siguientes antecedentes sanitarios (AS) y la documentación respaldatoria en cada AS, según el trabajo realizado: – Inspección de predio/establecimiento avícola. En la fecha de alta, se deberá colocar el/los día/s de inspección y atención. Adjuntar la documentación respaldatoria (ver Anexo 1y 3). – Brote influenza aviar H5. En la fecha de alta, se deberá asentar el día de emisión de la orden de trabajo de la DGLyCT; en la fecha de baja, indicar el día en que finalizaron las tareas de sacrificio, enterramiento, limpieza y desinfección. En observaciones, colocar el número de protocolo de enfermedad denunciable (ver Anexo 1). – Muestreo sospecha de I.AVIAR/ENC. Verificar que se haya realizado la carga dicho antecedente al momento de la atención. La fecha de alta se deberá colocar el día de atención, mientras que en la de baja corresponde indicar el día de emisión de la orden de trabajo emitida por la DGLyCT. Adjuntar la documentación respaldatoria (ver Anexo 2). Equipo de protección individual Antes de ingresar al predio afectado se deberá disponer de Equipos de Protección Individual (EPI) que serán utilizados durante toda la jornada de trabajo, esto es, mientras dure la exposición al riesgo. Una vez finalizadas las tareas, los elementos deberán quitarse y desecharse en el mismo establecimiento. Es fundamental que todos los agentes tengan acceso a los EPI, cuyos componentes son: • Protección corporal, con ropas protectoras, preferiblemente mamelucos desechables con manga larga y ajustables en los extremos más un delantal impermeable. • Protección de cabeza, con gorro/cofia desechable que cubra completamente los cabellos. • Protección de pies, con botas de goma o poliuretano que puedan ser desinfectados y, preferentemente, cubre botas desechables. • Protección de manos, con guantes protectores desechables (de nitrilo o vinilo) o guantes de trabajo de goma resistente que puedan desinfectarse; para evitar dermatitis pueden usarse guantes de algodón por debajo de los guantes protectores. GUÍA OPERATIVA. INFLUENZA AVIAR EN AVES NO DE CORRAL (TRASPATIO). PLAN DE CONTINGENCIA 8 �• Protección respiratoria, mediante respiradores que cubran boca y nariz. En casos particulares se podrán requerir equipos de respiración autónoma. • Protección ocular por medio de anteojos protectores, que deben lavarse y desinfectarse después de su uso. Secuencia de colocación del EPI 1. Colocar el primer par de cubrecalzados. 2. Colocar el mameluco descartable. 3. Colocar el primer par de guantes, asegurándose de que queden debajo de las mangas del mameluco; para ello, perforar el mameluco con el dedo pulgar. 4. Colocar el segundo par de guantes sobre las mangas del mameluco. Si es necesario, sellar los extremos con cinta adhesiva para asegurar el ajuste. 5. Colocar el segundo par de cubrecalzados. 6. Colocar el protector respiratorio (barbijo) y verificar que esté bien ajustado. 7. Colocar el gorro o cofia desechable. 8. Colocar los anteojos protectores. El procedimiento de colocación y retirada del EPI tiene como objetivo reducir al mínimo la posibilidad de autocontaminación y autoinoculación. Secuencia de retirada del EPI Previo al retiro del equipo, es necesario conseguir una bolsa de residuos para desechar el EPI y un balde con líquido desinfectante. Luego, continuar con los siguientes pasos: 1. Realizar un lavado higiénico de los guantes con el desinfectante. 2. Retirar el gorro/cofia. 3. Desanudar el segundo cubrecalzado. 4. Retirar el mameluco con una mano desde el lado externo, de manera que el par de guantes externo se desprenda junto con él. Enrollar el mameluco hacia abajo, dejando expuesta la parte interna y manteniendo la externa hacia adentro. 5. Realizar un lavado higiénico de los guantes en contacto con la piel con el desinfectante. 6. Retirar los anteojos protectores y lavarlos en el desinfectante. 7. Retirar el primer cubrecalzado. 8. Retirar la mascarilla, tomándola desde las bandas elásticas, sin tocar la parte frontal. 9. Realizar un tercer lavado higiénico de manos. 10. Retirar el primer par de guantes en forma de rollo, tratando de no tocar la parte externa del guante. GUÍA OPERATIVA. INFLUENZA AVIAR EN AVES NO DE CORRAL (TRASPATIO). PLAN DE CONTINGENCIA 9 �Otras consideraciones >> Con respecto a la higiene de las manos, la misma debe consistir en el lavado con agua y jabón durante 15/20 segundos o en el uso de otros procedimientos estándares de desinfección de las manos. >> Los EPI deben desecharse adecuadamente, disponiéndolos en bolsas plásticas y dentro de un recipiente con tapa, cuidando que no contaminen otros lugares. El dispositivo de plástico debe cerrarse cuidadosamente antes de su eliminación. >> Usar una muda limpia de ropa protectora en cada instalación visitada. >> Después de visitar una instalación sospechosa/afectada, las personas no deben acudir a lugares de reunión pública (bares, restaurantes, etc.) sin haberse duchado –incluyendo lavado del pelo y cambiado de ropa–. Asimismo, no podrá ingresar a otro establecimiento/predio avícola sin un vacío sanitario de 72 horas. Material audiovisual Para visualizar el procedimiento de colocación y retirada del EPI, acceder aquí. Medidas sanitarias en el brote En primer lugar, el personal oficial actuante debe resguardar y asegurar las medidas de bioseguridad al ingreso y egreso del predio. Para ello, deberá continuar con la interdicción del predio en donde fueron halladas las aves que resultaron positivas a IA H5/H7 y prohibir el acceso de personas y vehículos ajenos al mismo. El veterinario del Senasa deberá informar al propietario las medidas sanitarias que deberán realizarse en el predio, tales como interdicción, sacrificio, disposición de cadáveres de aves, productos, subproductos y medidas de limpieza y desinfección, condiciones de levantamiento de la interdicción. Es importante destacar que todas las acciones y comunicaciones entregadas deben registrarse en un acta de constatación emitida a través del sistema de gestión de actas de constatación del Senasa (SIGACTAS). en la cual se deberá constatar detalladamente lo siguiente: GUÍA OPERATIVA. INFLUENZA AVIAR EN AVES NO DE CORRAL (TRASPATIO). PLAN DE CONTINGENCIA 10 �“Continúa la interdicción del predio, implicando la prohibición del ingreso y egreso de aves, productos y subproductos, así como cualquier otro material que pudiera representar un riesgo sanitario. El ingreso de personas y vehículos quedará restringido exclusivamente a aquellos autorizados por el Senasa. El SENASA procederá al sacrificio sanitario de la totalidad de las aves, al enterramiento adecuado de los animales y a la posterior limpieza y desinfección integral del predio. La medida de interdicción permanecerá vigente hasta tanto el Senasa determine su levantamiento”. Asimismo, el agente oficial deberá dar intervención a las dependencias de Salud Pública, Ambiente y Fauna Silvestre de la jurisdicción competente. Además, deberán investigarse, evaluarse y documentarse los ingresos y egresos al predio realizados durante los 14 días previos a la confirmación de la enfermedad, mediante el Formulario de relevamiento epidemiológico, disponible en la carpeta interna N.° 24 de Sanidad Aviar. En cuanto al sacrificio, el mismo será realizado por personal del Senasa, con colaboración del propietario. Debe incluir a la totalidad de las aves presentes en la unidad epidemiológica y realizarse con la mayor rapidez posible, respetando los lineamientos de bienestar animal establecidos por la normativa vigente.. Todos los datos del sacrificio deberán constatarse a través del SIGACTAS, en el “Acta de sacrificio de aves y/o destrucción de productos y subproductos avícolas” (ver Anexo 4). Además, la misma deberá adjuntarse al AS de “Brote de Influenza Aviar H5”. La infraestructura, los elementos y las maquinarias existentes en el predio (instalaciones, comederos, bebederos, nidales, jaulas, almacenes de alimentos y utensilios, depósito de pienso, depósito de agua, botas, etc.) deberán someterse a una profunda limpieza y desinfección, con productos autorizados por el Senasa Métodos para la captura de las aves Instalar pequeños corrales en donde confinar a las aves antes de capturarlas. Se puede utilizar media sombra o tela similar. Si son aves que pueden volar, este corral debe contar con techo. Inducir el desplazamiento de los animales hacia el corral, ya sea mediante arreo coordinado entre varias personas y/o asistido por el uso de tela tipo media sombra o red a modo de embudo. También se puede colocar cebo en el corral para atraerlas. Dependiendo del tamaño de las aves, de su cantidad y de si pueden volar o no, la captura también puede realizarse mediante el uso de uno o de una combinación de algunos de los siguientes implementos: >> Redes de niebla. GUÍA OPERATIVA. INFLUENZA AVIAR EN AVES NO DE CORRAL (TRASPATIO). PLAN DE CONTINGENCIA 11 �>> Copos o redes de pesca para captura individual (se debe tener precaución de no lesionar a las aves con el borde de la red. Para ello sacar al ave de la red con cuidado, sujetándole las patas con una mano y el cuerpo y las alas -o el cuello en el caso de especies de cuello largo como gansos y cisnes- con la otra (Figuras 1 y 2). >> Pistolas o cañones lanza redes. >> Capuchas (o similar) para colocar en la cabeza de las aves impidiendo que vean (esto las calma) pero sin asfixiarlas. >> Toallas o trapos para la manipulación segura de las aves, cubriendo las partes que puedan dañar al personal (garras, picos, etc.). >> Guantes de cuero para protección de las manos del personal. Figura 1. Captura de un pollo usando una red de pesca de 50 cm de diámetro. Figura 2. Captura de un ganso con una red de pescar salmón más larga y fuerte. Estas imágenes no contemplan las medidas de bioseguridad y protección personal. Recuerde implementarlas correctamente al manipular las aves en caso de sospecha o confirmación de enfermedad. Figuras 3 y 4. Retiro de ave de la red de pesca. GUÍA OPERATIVA. INFLUENZA AVIAR EN AVES NO DE CORRAL (TRASPATIO). PLAN DE CONTINGENCIA 12 �En el siguiente enlace se podrá visualizar el video de una jornada de capacitación para la captura y sujeción de aves, dictada por el personal del Ecoparque de la Ciudad de Buenos Aires para agentes del Senasa. Métodos para el sacrificio de las aves Gasificación con dióxido de carbono en contenedores Cálculo del CO2 necesario (en kg) • Volumen efectivo a gasificar (m3) = largo x ancho x altura del contenedor x 0,55. • CO2 necesario (en kg) = volumen efectivo a gasificar x 2 m3 ~ 1,9 kg CO2. Concentración del gas y tiempo de exposición i. Llene el contenedor con CO2 hasta el 55 - 60% de su volumen antes de introducir las aves en ella. ii. Cargue las aves en el contenedor, luego cierre y asegure la puerta. iii. Introduzca el gas hasta lograr una concentración de dióxido de carbono del 45% por volumen en la parte superior de la cámara. iv. Espere el tiempo necesario para permitir la pérdida del conocimiento y la muerte de las aves. Si el contenedor es transparente o tiene ventana, continúe el gaseado por dos minutos más luego del cese de la respiración. v. Abra la puerta y deje que se libere el gas en el aire. vi. Verifique en busca de aves supervivientes. En caso de encontrar algunas, proceda a su eliminación de manera humanitaria. Por ejemplo, mediante dislocación cervical o agente eutanásico farmacológico. Los patos y las ocas son resistentes a los efectos del CO2 y requerirán una concentración mínima del 80% y mayor tiempo de exposición para morir. Contenedores Prácticamente, cualquier contenedor sellable puede utilizarse como recipiente para el gaseado: desde algo tan simple como un cubo de basura con tapa, hasta unidades especialmente construidas con sistemas automatizados de suministro de gas. El tamaño y el número de contenedores deben ser apropiados para la cantidad de aves y el equipo disponible para manipular los contenedores. También se han utilizado contenedores forrados de lona o camiones de mercancías a prueba de fugas con mangueras de tanques de CO2. A continuación se presentan algunos ejemplos. GUÍA OPERATIVA. INFLUENZA AVIAR EN AVES NO DE CORRAL (TRASPATIO). PLAN DE CONTINGENCIA 13 �i. Tanque de agua de 1000 litros • Altura x Largo x Ancho: 120 cm x 100 cm x 100 cm. • Se le debe realizar una abertura superior para ingresar a las aves, procurando que no pierda hermeticidad. Por ejemplo, se puede recubrir los bordes de la abertura con un burlete de goma para evitar la salida del gas. • Las aves no se deben colocar unas sobre otras. Todas deben estar apoyando en el suelo y ninguna sobre otra ave. • Desventaja: su altura hace que se necesite más gas. ii. Caja plástica de polietileno gran espesor • Altura x Largo x Ancho: 57.5 cm x 86 cm x 53.5 cm. • Se le debe realizar una abertura para que ingrese el conducto con el gas y sellarla. Además, se debe verificar que el sellado de la tapa no deje salir el gas o procurar un método de sellado adicional. • El plástico es traslúcido y permite ver las aves. • Las rueditas facilitan su traslado. • Desventaja: Entran pocas aves y no entran las de gran tamaño. iii. Contenedor gigante con tapa Mascardi • Altura x Ancho x Largo: 71 cm x 104 cm x 70 cm. • Se le debe realizar una abertura para que ingrese el conducto con el gas y sellarla. Además, se debe verificar que el sellado de la tapa no deje salir el gas o procurar un método de sellado adicional. • Desventaja: Entran pocas aves y no entran las de gran tamaño. iv. Tambor de 200 litros con suncho • Alto x Diámetro = 98 cm 59 cm. • Se le debe realizar una abertura para que ingrese el conducto con el gas y sellarla. • Debe utilizarse acostado para que entren más aves sin apilarlas unas sobre otras. • Para que permanezca de costado y no se mueva, se le deben colocar topes o algún soporte. • Desventaja: Entran pocas aves y no entran las de gran tamaño. Al acostarlo, la tapa queda de costado lo que puede dificultar su colocación. v. Bateas rectangulares o cilíndricas Rectangulares con tapa: • RR – 550 lt c/tapa (83x 67x 98.5 cm). • RR - 600 c/tapa (59.5x 59.5x 198 cm) Cilíndricos: • RC -1000 (Diámetro: 121 Altura: 122 Diámetro inferior: 110 cm). • Se puede solicitar el agregado de una llave/canilla. • A solicitud el fabricante puede realizar una abertura para que ingrese el conducto con el gas y sellarla con un costo adicional. • Debe utilizarse acostado para que entren más aves sin apilarlas unas sobre otras. • Para que permanezca de costado y no se mueva, se le deben colocar topes o algún soporte. • Desventaja: producto caro, el precio es muy superior a los anteriores. GUÍA OPERATIVA. INFLUENZA AVIAR EN AVES NO DE CORRAL (TRASPATIO). PLAN DE CONTINGENCIA 14 �Métodos alternativos al CO2 para el sacrificio sanitario Adición de anestésicos a los alimentos o al agua Como alternativa al uso de CO2 y para el refinamiento de la técnica de dislocación cervical, se sugiere realizar una adición de anestésicos a los alimentos o al agua. Esta puede ser una alternativa para las especies de paseriformes que se encuentran alojadas en jaulones. El producto anestésico (tiletamina/zolazepam, por ejemplo) puede añadirse a los alimentos o al agua de las aves. Las que estén sólo anestesiadas, pero no muertas, después de la ingestión requerirán que se les aplique otro método como, por ejemplo, la dislocación cervical o destrucción de la masa encefálica. Para un uso eficaz, los animales deberán ingerir rápidamente cantidades suficientes de anestésicos. Para ello, se recomienda dejar a los animales en ayuno o retirarles el agua durante una o dos horas antes. Este método, de acuerdo a las sugerencias de la OMSA, sólo es aplicable en aves adultas y no debe realizarse al aire libre, ya que otros animales pueden acceder accidentalmente a los alimentos o al agua medicada. Otras observaciones >> Puede presentar ventajas desde el punto de vista de la bioseguridad, en caso de que haya un número elevado de aves enfermas. >> Los resultados pueden variar, dado que no es posible regular la dosis ingerida con exactitud. Además, los animales pueden rechazar los alimentos o el agua adulterada debido a la enfermedad o al mal sabor. >> Se debe tener sumo cuidado al preparar y suministrar los alimentos o el agua tratada, al desechar sus restos y al eliminar los cadáveres contaminados. Dislocación cervical Las aves de traspatio inconscientes pueden ser sacrificadas mediante dislocación cervical (estiramiento del cuello), ya sea manual o mecánica. La técnica consiste en separar el cráneo y el cerebro de la médula espinal mediante la aplicación de presión sobre la base posterior del cráneo (ver figura 5), lo que provoca la muerte por anoxia cerebral, debido al cese de la respiración y/o del riego sanguíneo cerebral. La sobredosis de un anestésico disociativo administrado por vía intramuscular, como la tiletamina/zolazepam, o suministrado en el alimento o en el agua, debe emplearse para inducir un estado de inconsciencia profunda. Una vez alcanzado este nivel, puede procederse a la aplicación del método. Cuando se realiza correctamente, la dislocación cervical produce una rápida pérdida de la consciencia. GUÍA OPERATIVA. INFLUENZA AVIAR EN AVES NO DE CORRAL (TRASPATIO). PLAN DE CONTINGENCIA 15 �En situaciones en las que el número de aves a sacrificar es reducido y no se dispone de otros métodos, las aves conscientes con un peso inferior a 3 kg pueden ser sacrificadas mediante dislocación cervical. Este procedimiento puede aplicarse en gallinas y, dependiendo de su tamaño, también en patos y pavos. La dislocación cervical puede realizarse manualmente. Sin embargo, en aves de mayor tamaño —como gansos, pavos y, en algunos casos, patos— se requiere una mayor aplicación de fuerza. Por este motivo, se recomienda el uso de dispositivos de dislocación cervical asistida mecánicamente, que emplean brazos de palanca largos y un punto de contacto corto y estrecho sobre el cuello, lo que permite incrementar la eficacia del procedimiento. Para este fin puede utilizarse una pinza de Burdizzo. Figura 5. Procedimiento de dislocación cervical. Para obtener resultados consecuentes se necesita fuerza y técnica, por lo que el personal deberá descansar con regularidad para ser eficaz. Además, se requiere de agentes capacitados, que actúen de forma humanitaria. Las aves deben ser observadas hasta comprobar su muerte por la ausencia de reflejos del tronco cerebral. Para grandes concentraciones de aves es preferible recurrir a otros métodos de mayor velocidad de ejecución. GUÍA OPERATIVA. INFLUENZA AVIAR EN AVES NO DE CORRAL (TRASPATIO). PLAN DE CONTINGENCIA 16 �Procedimiento de la técnica 1. Sostenga al ave al revés, por encima de las rodillas, y afirme las piernas contra su cuerpo. 2. Sostenga la cabeza entre los dedos anular e índice a cada lado del cuello (en la base del cráneo) y doble la cabeza hacia atrás. 3. En un movimiento coordinado, aplicar fuerza creciente para estirar el cuello, hasta que la cabeza esté separada de la espina cervical del cuello. Inyección de barbitúricos y otros medicamentos Es una buena opción cuando las aves involucradas son de mayor porte, como es el caso de pavos y gansos. Por lo general, para la eutanasia se utiliza el pentobarbital sódico, administrado por vía intravenosa o intraperitoneal (seguir las indicaciones según prospecto). La administración por vía intravenosa provoca una muerte más rápida; no obstante, en muchas especies la vía intraperitoneal resulta más sencilla de aplicar, lo que permite reducir el estrés asociado a la manipulación (ver figura 6). Cabe señalar que el pentobarbital sódico puede generar irritación del peritoneo, efecto que puede evitarse mediante su dilución. La inyección intracardiaca debe emplearse exclusivamente cuando el animal se encuentra completamente anestesiado, dado que se trata de un procedimiento altamente doloroso. Por su parte, la administración intracefálica a través del foramen magnum es eficaz en aves de gran tamaño y de corral, aunque requiere la intervención de personal con experiencia técnica. Figura 6. Lugar recomendado para realizar la inyección en aves. GUÍA OPERATIVA. INFLUENZA AVIAR EN AVES NO DE CORRAL (TRASPATIO). PLAN DE CONTINGENCIA 17 �Los frascos de anestésicos y barbitúricos a utilizar deberán ser transportados en cajas cerradas con algún sistema de seguridad (candado, llave u otro mecanismo de cerrado). La misma debe ser manipulada únicamente por el agente oficial actuante, sin quedar al alcance de ninguna otra persona. Los frascos deben sacarse sólo al momento de ser utilizados y ser guardados inmediatamente después. Decapitación La decapitación implica el corte de la cabeza por el cuello, utilizando una cuchilla afilada. Como la actividad cerebral puede continuar hasta 30 segundos posteriores a la decapitación y es posible que el ave no quede inconsciente de inmediato, se deben suministrar anestésicos antes de iniciar el sacrificio. La decapitación produce la muerte por isquemia cervical. Las actividades motoras que se producen tras la pérdida de postura, aunque sean potencialmente angustiosas para los observadores, no son percibidas por un animal inconsciente como dolor o angustia. El pataleo reflejo en animales inconscientes puede confundirse con actividad consciente y puede producirse incluso después de la decapitación, ya que los circuitos neurológicos implicados en la marcha se localizan en la médula espinal. El material a utilizar —guillotina o cuchillo— debe mantenerse en óptimas condiciones de funcionamiento, bien afilado y correctamente limpio. En aves pequeñas, de un peso menor a 200 gramos, la decapitación se realiza con tijeras de disección: se secciona la articulación atlanto-occipital, separando la cabeza del cuello, y se aplica un corte firme y rápido. >> Ventajas: La técnica es eficaz y no necesita ser controlada. >> Desventajas: Los fluidos corporales contaminan la zona de trabajo. El animal puede sentir dolor si no hay pérdida inmediata del conocimiento. Para aves de corral, se recomienda contar con una superficie elevada (mesa o tabla) a fin de realizar la decapitación sobre la misma y contar con un recipiente debajo para contener los fluidos corporales de las aves. Para evitar el derrame de líquidos se recomienda la utilización de un embudo que ayude a la contención de los mismos. Es importante tener en cuenta que las aves sacrificadas por este método deben ser depositadas en bolsas o contenedores (tambor) que no filtren los líquidos al ambiente hasta. Al finalizar el sacrificio de todas las aves, los cadáveres (y su sangre) deben ser trasladados en estos contenedores hacia el espacio determinado para su enterramiento. Los recipientes utilizados para la contención de fluidos y los cadáveres deben ser debidamente lavados y desinfectados en el mismo establecimiento. GUÍA OPERATIVA. INFLUENZA AVIAR EN AVES NO DE CORRAL (TRASPATIO). PLAN DE CONTINGENCIA 18 �En la granja, se puede utilizar el cono como dispositivo de inmovilización, introduciendo a las aves boca abajo a través del agujero, de manera que su cabeza quede expuesta y al descubierto. Cono para inmovilizar. El tiempo durante el que se inmoviliza a las aves en un cono debería ser el menor posible antes del aturdimiento (no superar los dos minutos en pavos, gansos y patos, o un minuto para las demás aves de corral). Para calmar al ave, se recomienda mantener contacto manual con la misma durante los primeros segundos que esté en el cono. Desangrado El ave debe colocarse en el cono que la inmoviliza, para evitar lesiones. Luego, con cuchillos limpios y desinfectados (agua clorada), se procede al corte de grandes vasos del cuello para causar el desangrado, debiendo el ave permanecer un mínimo de 3 minutos en este estado para asegurar la efectividad del método. La sangre debe recolectarse en un recipiente para tal fin. Técnica de desangrado. GUÍA OPERATIVA. INFLUENZA AVIAR EN AVES NO DE CORRAL (TRASPATIO). PLAN DE CONTINGENCIA 19 �Arma de fuego Este método en aves no está aprobado por la OMSA. Además, la pérdida de fluidos corporales puede representar un riesgo para la bioseguridad. Sin embargo, la American Veterinary Medical Association (AVMA) aprueba su uso en ratites (ñandúes, avestruces y otras aves emparentadas de gran porte). Nota: Es de suma importancia efectuar una recorrida exhaustiva de la totalidad del predio (sin excepción), con el objetivo de verificar y asegurar que no permanezcan aves vivas, cadáveres, ni materiales utilizados que deban ser eliminados. Todo elemento que represente un riesgo sanitario deberá ser identificado y dispuesto, conforme a lo establecido en los protocolos vigentes, sin dilación ni omisión. Eliminación de los cadáveres Existen diferentes métodos para eliminar las aves muertas, desechos y otros desperdicios. Preferentemente, se debe proceder al enterramiento en el mismo establecimiento u otro espacio adecuado para este fin, aprobado previamente por el Senasa. Cuando nos es posible o conveniente el enterramiento, la mejor opción es elaborar compostas o recurrir a la incineración. Los huevos u otro material orgánico contaminante (guano, cama de galpón, restos de alimentos, productos, basura, etc.) deben recogerse con cuidado, a fin de que se elimine junto con los cadáveres. Enterramiento El enterramiento es el procedimiento más adecuado para la eliminación de animales y otros elementos de riesgo, ya que generalmente es cómodo, económico, rápido y seguro. No obstante, es necesario considerar los siguientes factores para la toma de decisiones: • Los lugares para el entierro deben contar con la aprobación de la autoridad competente del lugar. • Disponibilidad del terreno para reducir al mínimo la distancia a través de la cual se transporta el material infectado. Es apropiado que el enterramiento se realice en la misma granja. • Tipos de suelos (los rocosos pueden imposibilitar la actividad) y pendientes. • Profundidad del manto freático. • Presencia de tuberías de agua, gas, electricidad, drenaje, cable de telefonía u otras. • Disponibilidad de la máquina retroexcavadora, camiones de volteo, tractores, así como su accesibilidad al terreno. • Presencia de corrientes de aguas como canales, arroyos, ríos u otros. • Posibilidad de inundación del terreno. Otra opción que podría resultar adecuada es optar por un lugar de enterramiento común para varias granjas, en una zona determinada. GUÍA OPERATIVA. INFLUENZA AVIAR EN AVES NO DE CORRAL (TRASPATIO). PLAN DE CONTINGENCIA 20 �Para la construcción de la fosa, debe utilizarse maquinaria pesada, como camiones de volteo, tractores, excavadoras y retroexcavadoras, entre otras. Asimismo, antes de iniciar su construcción, es importante considerar: • El tamaño, en función del número y peso de las aves. • Para su llenado se debe calcular 600 kg/m3 de fosa. • No debe ser muy ancha (inferior a 6 metros). • Debe ser larga, con la posibilidad de irse rellenando por fracciones. • Es conveniente dejar un terraplén por el frente, para que pueda ingresar el vehículo con los cadáveres o los residuos. • Se debe dejar un metro entre las aves sacrificadas y el piso superior (relleno). • Se puede construir más de una fosa, previendo que no se cruce con alguna que esté llena. En las fosas, también se debe depositar restos de alimentos, excretas, huevos, basura y material que no garantice la desinfección. El peso del lote de aves que será preciso enterrar depende del tipo de producción (pollos, gallinas, pavos, patos, gansos, etc.). La edad de las aves o las semanas de cría pueden ser provistas por el propietario, por técnicos especializados en avicultura o bien obtenerse de tablas. Un kilogramo de peso tiene un volumen promedio de 0,06242 m3. El volumen de la fosa se debe calcular multiplicando el valor anterior por el peso medio y la cantidad promedio de aves alojadas. Se recomienda cubrir la fosa con láminas geotextiles o nylon para evitar la contaminación del manto freático. Posteriormente, depositar los cadáveres, cubrirlos con 40 centímetros de tierra y colocar sobre la misma una capa uniforme de hidróxido de calcio (Ca (OH)2) antes de finalizar el llenado. Los cadáveres no se deben cubrir directamente con cal, ya que esta retrasa su descomposición. Incineración Es el método menos recomendable para la eliminación de una gran cantidad de aves, principalmente por su elevado costo y por el tiempo que se requiere. Sin embargo, si por alguna razón fuera necesario realizar este método, se debe considerar: • Aprobación de los organismos oficiales encargados de la protección del ambiente. • Disponibilidad de agua o material contra incendios. • El método no puede realizarse en épocas de lluvias. • Se requiere gran cantidad de combustible. GUÍA OPERATIVA. INFLUENZA AVIAR EN AVES NO DE CORRAL (TRASPATIO). PLAN DE CONTINGENCIA 21 �• Se requiere de un acomodo especial de los cadáveres para asegurar una buena incineración. • Una inadecuada incineración aumenta el riesgo de escape de virus, al dejar cadáveres semiquemados. • Un error puede generar accidentes personales, locales o ambientales. • Las cenizas deben enterrarse o llevarse a un relleno sanitario. • El método provoca severa contaminación ambiental. • Se deben utilizar hornos crematorios convencionales cuando se trate de pocas aves sacrificadas. Compostaje El compostaje es un proceso de descomposición controlada de la materia orgánica. La descomposición ocurre en un ambiente aerobio en presencia de determinadas condiciones de pH, temperatura y humedad, en la cual microorganismos mesófilos y termófilos elevan la temperatura por un tiempo determinado permitiendo así la inactivación viral. Este método puede ser alternativo al enterramiento en sitios en que, por razones de legislación o alto nivel de las napas freáticas, no se permita el enterramiento. Para su planeamiento, se deben considerar la disponibilidad de materiales necesarios para su realización (ej.: fuente de carbono como paja), su ubicación y el tiempo requerido para la inactivación viral a temperaturas adecuadas (15 días a temperaturas mayores a 62ºC). Se puede realizar luego una eliminación definitiva, enterrando el compost. Limpieza y desinfección La infraestructura, elementos y maquinarias existentes en la unidad epidemiológica (instalaciones, comederos, bebederos, nidales, jaulas, almacenes de alimentos y utensilios, depósito de alimento, depósito de agua, botas, etcétera) deben ser sometidas a limpieza y desinfección, con productos autorizados por el Senasa. El personal oficial actuante debe resguardar y asegurar las medidas de bioseguridad al ingreso y egreso del predio. El procedimiento debe quedar constatado en el SIGACTAS (o el sistema informático que el organismo sanitario considere a futuro) y podrá registrarse en el acta de sacrificio, en caso que ambos procedimientos se realicen en el mismo día; o en el “Acta de limpieza y desinfección” del sistema SIG (ver anexo 5), debiéndose cargar en el AS de “Brote de Influenza Aviar H5”. GUÍA OPERATIVA. INFLUENZA AVIAR EN AVES NO DE CORRAL (TRASPATIO). PLAN DE CONTINGENCIA 22 �Cierre del brote Se efectuará el cierre del brote y levantamiento de la interdicción cuando hayan finalizado las tareas de sacrificio sanitario, enterramiento, limpieza y desinfección. Estas acciones se deberán registrar mediante un Acta de Constatación en SIGACTAS. La misma se carga en sistema dentro del AS “Inspección de Predio/ Establecimiento Avícola” (ver anexo 3) y subir la documentación correspondiente. Luego se procederá a bajar el AS de “Brote de Influenza Aviar H5”, con la fecha del cierre del brote. Nota: Si durante las inspecciones se observan aves enfermas o muertas debido al ingreso de aves silvestres o domésticas (accidental), se debe proceder como una atención de sospecha. Área de prevención El área de prevención (AP) en la que se detecta un brote de IA H5/H7 en aves no de corral será delimitada por el Senasa a través de la Dirección Nacional de Sanidad Animal, en coordinación con el Centro Regional correspondiente a la jurisdicción donde se registró el brote. Dicha área tiene por finalidad la implementación de medidas de biocontención y la ejecución de actividades de vigilancia epidemiológica. El área de prevención estará determinada a partir de un análisis de riesgo integral, el cual considera factores epidemiológicos, productivos y ambientales, con el fin de definir de manera adecuada el alcance de las medidas de vigilancia, control y bioseguridad necesarias para prevenir la diseminación del virus. Deberá informarse de manera inmediata la confirmación de la situación sanitaria a los veterinarios acreditados en Sanidad y Bienestar de las Aves que se encuentren involucrados dentro del área de prevención. El objetivo de esta comunicación es que los profesionales refuercen las medidas de manejo, higiene y bioseguridad en los establecimientos bajo su supervisión, y promuevan activamente la importancia de la notificación temprana de cualquier signo compatible con influenza aviar ante el Senasa. Las tareas sanitarias a implementar, así como la duración del mantenimiento del área bajo medidas de prevención, serán definidas por la DNSA en función de los criterios técnicos y sanitarios aplicables a cada caso. La comunicación de las acciones a implementarse será mediante comunicación oficial a través del Sistema de Gestión Documental Electrónica (GDE). El área recuperará su condición de libre una vez declarado el cierre oficial del brote, siempre que durante el período establecido por la autoridad competente se haya ejecutado la vigilancia epidemiológica, sin la aparición de nuevos eventos sanitarios. GUÍA OPERATIVA. INFLUENZA AVIAR EN AVES NO DE CORRAL (TRASPATIO). PLAN DE CONTINGENCIA 23 �El Senasa será el responsable de llevar a cabo la vigilancia, pudiendo delegar dicha función a los veterinarios acreditados en Sanidad y Bienestar de las Aves, según la Resolución N.° 468/2025 Acciones en predios de aves de traspatio Se deberá realizar un rastrillaje epidemiológico y visitar los predios comprendidos en la zona, para verificar la existencia de aves, signos clínicos, coordenadas geográficas, entre otros aspectos. En caso de no contar con registro ante el Senasa, se deberá asignar un número de RENSPA. El tipo de vigilancia (clínica, serológica o molecular) a implementar será determinada por la Dirección Nacional de Sanidad Animal mediante comunicación oficial. Luego de cada visita a establecimientos, se deberá dar cuenta de la actualización mediante un Acta de Constatación y subirla al AS de “Inspección de Predio/Establecimiento Avícola” (ver anexo 3). En caso de encontrar nexo epidemiológico o presencia de aves con mortandad y/o síntomas compatibles al momento de la inspección, se debe proceder a la actuación de sospecha de enfermedad denunciable. Acciones en establecimientos de aves de corral En los establecimientos de producción avícola industrial involucrados se dispondrá el bloqueo de todos los movimientos de ingreso y egreso, así como de las actividades de autogestión, hasta tanto el Senasa, como autoridad sanitaria competente, lo autorice expresamente. En cada establecimiento inspeccionado se deberán asentar las acciones realizadas mediante la confección de un Acta de Constatación en SIGACTAS, verificando el cumplimiento de las medidas de manejo, higiene y bioseguridad vigentes. Dicha acta deberá ser cargada en el aplicativo AS “Inspección de Predio/Establecimiento Avícola” (ver anexo 3). En caso de detectarse la existencia de nexo epidemiológico o la presencia de aves con mortandad y/o signos clínicos compatibles durante la inspección, se deberá proceder de inmediato conforme al protocolo de actuación ante sospecha de enfermedad de denuncia obligatoria. La vigilancia sanitaria a implementar en el área de prevención será definida por la Dirección Nacional de Sanidad Animal mediante comunicación oficial, pudiendo esta delegar su ejecución en veterinarios acreditados en Sanidad y Bienestar Avícola, conforme a lo establecido en la Resolución SENASA N.º 468/2025. GUÍA OPERATIVA. INFLUENZA AVIAR EN AVES NO DE CORRAL (TRASPATIO). PLAN DE CONTINGENCIA 24 �Vigilancia epidemiológica en el área de prevención Vigilancia clínica Es un componente de la vigilancia sanitaria, que consiste en la observación sistemática y continua del estado de salud de los animales, con el fin de detectar de manera temprana la presencia de signos clínicos, aumento de morbilidad o mortalidad, o cualquier manifestación compatible con enfermedades de importancia sanitaria. En el ámbito de la sanidad animal, la vigilancia clínica se basa en la inspección directa de los animales, la evaluación de parámetros productivos y el análisis de cambios en el comportamiento o en la presentación clínica habitual de las poblaciones bajo seguimiento. Esta actividad puede ser realizada por un veterinario oficial o acreditado, y/o por los productores de los establecimientos, quienes deben notificar de forma inmediata a la autoridad sanitaria ante la detección de hallazgos sospechosos. Su finalidad principal es identificar precozmente los eventos sanitarios relevantes, activar oportunamente los mecanismos de notificación y respuesta, y contribuir a la prevención de la diseminación de la enfermedad. Vigilancia serológica El procedimiento se implementará conforme a la frecuencia establecida, según las indicaciones de la DNSA. Cabe destacar que dicha vigilancia estará a cargo del sector privado, de acuerdo con lo dispuesto en la Resolución Senasa Nº 468/2025 contemplando las siguientes consideraciones: • Cantidad de aves a muestrear: aves de corral 20. Aves no de corral : hasta 10 • Tipo de muestras: suero. • Materiales: • Viales tipo Eppendorf (estériles). • Jeringas estériles de 2,5 ml a 3 ml. • Agujas dependerá de la especie a muestrear. • Guantes. • Gradillas, alcohol, marcador indeleble y algodón. • Conservadora y refrigerantes. Procedimiento para la extracción de sangre Para punción de la vena cubital (ala) se deberá colocar el ave en posición de decúbito lateral, extender el ala, mojar con algodón húmedo las plumas y/o levantarlas sobre la cara ventral de la base ósea de eje humeral, identificar la vena la cubital (vena del ala), presionar para ingurgitarla y extraer como mínimo 2.5 ml de sangre. GUÍA OPERATIVA. INFLUENZA AVIAR EN AVES NO DE CORRAL (TRASPATIO). PLAN DE CONTINGENCIA 25 �Para obtener un suero sin hemólisis, se deberá transferir cuidadosamente la sangre de la jeringa al tubo, dejando que la misma escurra por su pared lateral. Además, es muy importante evitar agitar los tubos mientras se deja que la sangre repose para separar el suero. Los sueros deben mantenerse refrigerados entre +2 °C y +8 °C, desde el momento de su obtención hasta su envío al laboratorio. Este proceso no debe superar las 72 horas, siendo lo ideal completarlo dentro de las primeras 24 horas. Vigilancia molecular El procedimiento para la toma de muestras y la correspondiente carga del acta en el SIGATM deberá ajustarse a las directrices impartidas por la DNSA y contemplar las siguientes consideraciones: • Cantidad de aves a muestrear: aves de corral 20. Aves no de corral hasta 10. • Tipo de muestras: hisopado traqueal, hisopado orofaríngeo o hisopado cloacal. • Materiales: - Gradillas, alcohol, marcador indeleble y algodón. - Hisopos estériles de dacrón, rayón o fibra de poliéster (no de algodón ni de alginato de calcio) con palillo de plástico (no madera). - Tubo de polipropileno transparente, fondo redondo, dimensiones 11 x 55 mm, volumen de 3 a 4 ml. Tapón a presión con aletas o tapón a rosca. - Medio de transporte viral o en su defecto solución fisiológica de cloruro de sodio al 0,9 %, estéril o PBS. - Tijera para corte de los cabos de hisopos. - Conservadora y refrigerantes. Extracción de las muestras • Hisopado: es necesario elegir una opción (traqueal u orofaríngeo). Se debe realizar uno por ave. Para el hisopado traqueal, el veterinario actuante debe levantar la cabeza del ave, abrir el pico, extraer suavemente la lengua (para hacer más visible el orificio traqueal) e introducir el hisopo en la tráquea, girándolo dos o tres veces. Luego se deberá cortar de inmediato la extremidad del hisopo que estaba en contacto con la mano y sumergir el resto en el tubo previamente identificado. Si se opta por el hisopado orofaríngeo, el profesional debe levantar la cabeza del ave, abrir el pico y movilizar el hisopo 3 a 4 veces tomando contacto con las paredes de la cavidad orofaríngea. Luego deberá cortar de inmediato la extremidad del hisopo que estaba en contacto con la mano y sumergir el resto en el tubo previamente identificado. GUÍA OPERATIVA. INFLUENZA AVIAR EN AVES NO DE CORRAL (TRASPATIO). PLAN DE CONTINGENCIA 26 �Se deberá remitir un pool de 5 hisopos por tubo. Los hisopos deben estar sumergidos en el medio de transporte viral; o en su defecto solución fisiológica de cloruro de sodio al 0,9 %, estéril o PBS estéril hasta cubrir la cabeza (de 3 a 5 ml por pool). Consideraciones para la carga de protocolo de toma de muestra en SIGATM • Área: Programa de sanidad avícola. • Motivo: Muestreo aves. • Submotivo: Muestreo en área de prevención. • Observaciones: colocar el número de protocolo de enfermedad denunciable correspondiente al brote. • Matriz: hisopados. • Muestras: identificar de manera clara los pooles, señalando qué tipo de hisopado y que cantidad corresponde. • Grupo de análisis: diagnóstico molecular de influenza aviar (tildar RTPCR en tiempo real gen M). • Laboratorio: SENASA – Dirección General de Laboratorios y Control Técnico. Acondicionamiento de las muestras Embalaje primario a. El recipiente primario debe ser hermético. b. En el caso de que se envíen varios recipientes primarios, cada uno de ellos deberá estar envuelto individualmente para evitar posibles daños. c. Cuando se calcule el volumen de las muestras que se van a enviar, también se deberá tener en cuenta el volumen del medio de transporte. d. Las muestras se deben colocar de tal forma que no se produzcan derrames. e. Las muestras identificadas individualmente –correspondientes a un mismo predio– se deben colocar en una bolsa de nylon o bolsa conservadora, identificando esta última con el N.° de Renspa o titular del predio. f. Se debe colocar refrigerantes en cantidad suficiente, consideran do el tiempo de duración del transporte; cerrar y sellar la tapa. Tener en cuenta que cuanto menor sea el espacio “libre” en la conservadora, mayor será el tiempo en que las muestras se mantengan refrigeradas. Embalaje secundario a. El recipiente secundario debe ser hermético. b. El embalaje debe contener material absorbente suficiente para embeber todo el contenido de los embalajes primarios, en caso de rotura o filtraciones. GUÍA OPERATIVA. INFLUENZA AVIAR EN AVES NO DE CORRAL (TRASPATIO). PLAN DE CONTINGENCIA 27 �Embalaje terciario a. Se deberá acondicionar el embalaje primario y secundario dentro del terciario, de forma tal que evite roturas y derrames. b. En este recipiente se debe incorporar, cuando sea necesario, hielo seco o húmedo alrededor del embalaje secundario. En caso de emplear hielo seco, el envoltorio debe permitir la salida del dióxido de carbono para evitar incrementos de presiones que ocasionen la ruptura del paquete. Si se usa hielo húmedo, el embalaje deberá ser a prueba de goteo. c. El embalaje externo debe introducirse en una bolsa sellada de plástico para protegerlo de la humedad. d. Colocar refrigerantes en cantidad suficiente considerando el tiempo de duración del transporte; cerrar y sellar la tapa. Tener en cuenta que cuanto menor sea el espacio “libre” en la conservadora, mayor será el tiempo en que las muestras se mantengan refrigeradas. e. En el exterior de la caja debe adherirse un sobre de polietileno con los protocolos correspondientes a las muestras remitidas. Envío de las muestras Finalizado el embalaje de las conservadoras, las mismas deben ser despachadas a un laboratorio oficial mediante 3 alternativas: 1. Si los centros regionales cuentan con laboratorios con mesas de entrada de muestras (MEM) propias, deberán entregarse en estas a los efectos de que sean remitidas a la MEM de la Dirección de Laboratorio Animal (DILAB). 2. De no contar con laboratorios con MEM propias, las conservadoras deben ser despachadas directamente con destino a la MEM de la DILAB, ubicada en Talcahuano 1660, Martínez (CP 1640), Provincia de Buenos Aires. 3. Entrega puerta a puerta al Laboratorio Animal en Martínez, con recepción durante las 24 horas. En caso de entrega puerta a puerta, se deberá informar en simultáneo vía correo electrónico a los responsables de recibir las muestras en Martínez. Nota: Quien envíe el correo electrónico desde los correos institucionales, deberá indicar nombre y apellido del remitente ya que, en ocasiones, es necesario transmitir información o hacer consultas por datos faltantes. Si se remiten mediante transporte terrestre o aéreo, una vez obtenido el N.° de Guía que entrega la empresa se deberá enviar por correo a los responsables de recibir las muestras en Martínez el formulario para informar el despacho y la solicitud de retiro de las conservadoras enviadas. Cabe aclarar que para informar entregas “puerta a puerta”, el formulario de despacho cuenta con un campo específico para indicar dicha modalidad de envío. Las muestras se podrán recibir de lunes a jueves, de 08:30 a 14:30 horas, y los viernes de 08:00 a 12:00 horas. Fuera de ese horario, se deberá entregar en la guardia. GUÍA OPERATIVA. INFLUENZA AVIAR EN AVES NO DE CORRAL (TRASPATIO). PLAN DE CONTINGENCIA 28 �Listado de contactos del laboratorio AREA Coordinación administrativa MEM Laboratorio Martínez Envíos y retiros de encomiendas MEM Laboratorio Martínez Recepción puerta a puerta MAIL logisticadilab@senasa.gob.ar CORPORATIVO - (11) 4874 6700 TELÉFONO - Int. 2794. acardozo@senasa.gob.ar - (11) 5155 5139 - #379 mgirgenti@senasa.gob.ar - mesalabadm@senasa.gob.ar - (11) 3685 4523 - (11) 2270 6127 - Int. 2762/2763. - Int. 2662/2603. - (11) 4874 6762 - Int. 2603. bcarrera@senasa.gob.ar - Int. 2719. Cuadro modalidad de envíos MODALIDAD COMUNICACIÓN Informar envío a: Puerta a puerta - Ana Cardozo: acardozo@senasa.gob.ar - Marcelo Girgenti: mgirgenti@senasa.gob.ar - MEM: mesalabadm@senasa.gob.ar - Bárbara Carrera Ojeda: bcarrera@senasa.gob.ar Enviar el formulario para informar el despacho y la solicitud de retiro de las conservadoras enviadas: Transporte - Ana Cardozo: acardozo@senasa.gob.ar - Marcelo Girgenti: mgirgenti@senasa.gob.ar - Logística: logisticadilab@senasa.gob.ar Contactos Programa de Sanidad Aviar • Correo electrónico: avesygranja@senasa.gob.ar • Teléfono de contacto: (011) 4121-5409. GUÍA OPERATIVA. INFLUENZA AVIAR EN AVES NO DE CORRAL (TRASPATIO). PLAN DE CONTINGENCIA 29 �Anexos Anexo 1 - Actas que se deben cargar en el SUR con el antecedente sanitario correspondiente a cada momento de la detección de IAAP. Confirmación de brote Actividades dentro del período de vigilancia Tipo de antecedente BROTE DE INFLUENZA AVIAR H5 Documentación para adjuntar en cada AS Fecha de baja Orden de análisis con resultado positivo Fecha de la orden de análisis Formulario de encuesta epidemiológica Fecha de realización de la encuesta Acta de sacrificio (incluye limpieza y desinfección) INSPECCION DE PREDIO/ ESTABLECIMIENTO AVICOLA Fecha de alta Acta constatación de Cierre de brote Acta de constatación de levantamiento de interdicción Fecha inicio sacrificio Fecha fin de limpieza y desinfección Fecha de cierre de brote (la misma que fin de limpieza y desinfección) Fecha de realización de levantamiento. Anexo 2 - Actas que se deben cargar en el SUR con el antecedente sanitario correspondiente al momento de la atención la sospecha de IA. Atención de la sospecha Tipo de antecedente Documentación para adjuntar en cada AS OActas toma de muestra (SIGATM) AVES MUESTREO SOSPECHA DE I.AVIAR/ENC Acta constatación (constatando existencias, signos clínicos e interdicción) Fecha de alta Fecha de baja Fecha toma de muestra Fecha de emisión de resultado Fecha de realización de acta GUÍA OPERATIVA. INFLUENZA AVIAR EN AVES NO DE CORRAL (TRASPATIO). PLAN DE CONTINGENCIA 30 �Anexo 3 Se deberá considerar la carga del correspondiente antecedente sanitario, según lo observado al momento de la inspección según el siguiente cuadro. ANTECEDENTE SANITARIO Inspección predio/establecimiento avícola - sin inconsistencias MOTIVO Se debe cargar cuando al momento de la visita al predio de aves de corral no se encuentra inconsistencias al cumplimiento de la Resolución Senasa N.° 1699/2019. Si el predio es de aves de traspatio se debe cargar cuando visita el mismo. Se debe cargar cuando al momento de la vi- Inspección predio/establecimiento sita al predio de aves de corral se encuentra avícola - con inconsistencias gra- inconsistencias graves en el incumplimiento de la Resolución Senasa N.° 1699/2019 o en ves caso de visitar predio de aves de traspatio y observa que convive con producción industrial. Inspección predio/establecimiento avícola - con inconsistencias moderadas Inspección predio/establecimiento avícola - con inconsistencias leves Se debe cargar cuando al momento de la visita al predio de aves de corral se encuentra inconsistencias moderadas en el incumplimiento de la Resolución Senasa N.° 1699/2019. Se debe cargar cuando al momento de la visita al predio de aves de corral encuentra inconsistencias leves en el incumplimiento de la Resolución Senasa N.° 1699/2019. GUÍA OPERATIVA. INFLUENZA AVIAR EN AVES NO DE CORRAL (TRASPATIO). PLAN DE CONTINGENCIA 31 �Anexo 4 - Acta de sacrificio sanitario Acta de sacrificio de aves y/o destrucción de productos y subproductos avícolas SENASA -SIGACTAS (Cfr. Art. 14 del ANEXO aprobado por art. 1º del Decreto 776/2019) CUVE: 6237766 NÚMERO DE ACTA: 0000000037766 INDIVIDUALIZACIÓN Y CONSTATACIÓN Siendo __:__hs, del __ día del mes de________________ del 20___, el funcionario del SENASA: __________________________________ ___________________ , cuil: ____-___________-___ , se constituyen en el RENSPA Nº ___________________________________ el cual desarrolla la actividad de AVE TRASPATIO [ ] /AVE COMERCIAL [ ] , sito en la calle ____________________________________________ ______ , ubicado en la localidad de ______________________________________, departamento de ______________________, provincia de ____________________, titularidad atendidos por de ____________________________________, C.U.I.T./C.U.I.L. Nº ____-___________ -___, siendo _____________________________________, D.N.I./L.E./L.C. Nº ___________________ en calidad de _________________________ .Con la finalidad de dar continuidad al Acta de Toma de Muestras CUVE N° ________________________de fecha ____/____/20___, habiendo recibido el resultado de POSITIVO A INFLUENZA AVIAR (H5/H7) protocolizada bajo el Protocolo Nº_________________, y cuyos resultados de laboratorio se registran con la Orden de Análisis Nº___________________________, como medida de prevención sanitaria, de conformidad con las facultades conferidas en la Resolución ex MAGyP Nº 38/2012 SE PROCEDE AL SACRIFICIO DEL TOTAL DE LOS ANIMALES constatados (sanos y enfermos) siendo un total de (________________) animales y/o a la destrucción de los PRODUCTOS/SUBPRODUCTOS constatados siendo un total de (______________________) cajones/unidades. Dicho procedimiento inicio el día ____/____/20____ a las ___:___ hs. y finalizo el día ____/____/20____ a las ___:___hs., cuyas cantidades se detallan a continuación: (Completar el dato edad solamente en AVES COMERCIALES) (Especie / categoría)___________________edad _________ (días /semanas), (_____________) animales sanos, (_____________) animales enfermos y (______________) muertos antes del sacrificio. (Especie / categoría)___________________edad __________ (días /semanas), (_____________) animales sanos, (_____________) animales enfermos y (______________) muertos antes del sacrificio. (Especie / categoría)___________________edad _________ (días /semanas), (_____________) animales sanos, (_____________) animales enfermos y (______________) muertos antes del sacrificio. (Especie / categoría)___________________edad __________ (días /semanas), (_____________) animales sanos, (_____________) animales enfermos y (______________) muertos antes del sacrificio. (Especie / categoría)___________________edad _________ (días /semanas), (_____________) animales sanos, (_____________) animales enfermos y (______________) muertos antes del sacrificio. (Especie / categoría)___________________edad __________ (días /semanas), (_____________) animales sanos, (_____________) animales enfermos y (______________) muertos antes del sacrificio. HUEVOS FÉRTILES _______________ (unidades). HUEVOS FRESCOS_______________ (cajones /unidades). (Agente del SENASA) ___________________________________ ___________________________________ Firma y Aclaración Firma y Aclaración Testigo Interesado y/o Propietario 1/2 GUÍA OPERATIVA. INFLUENZA AVIAR EN AVES NO DE CORRAL (TRASPATIO). PLAN DE CONTINGENCIA 32 �Anexo 5 - Acta de limpieza y desinfección Acta de Limpieza y Desinfección SENASA -SIGACTAS (Cfr. Art. 14 del ANEXO aprobado por art. 1º del Decreto 776/2019) CUVE: 6237766 NÚMERO DE ACTA: 0000000037766 INDIVIDUALIZACIÓN Y CONSTATACIÓN Siendo __:__hs, del __ día del mes de________________ del 20___, el funcionario del SENASA: __________________________________ ___________________ , cuil: ____-___________-___ , se constituyen en el RENSPA Nº ___________________________________ el cual desarrolla la actividad de AVE TRASPATIO [ ] /AVE COMERCIAL [ ] , sito en la calle ____________________________________________ _____________________ , ubicado en la localidad de ___________________________________________, ______________________, provincia de _________________________, titularidad departamento de de _________________________________________ _____________, C.U.I.T./C.U.I.L. Nº ______-____________ -____, siendo atendidos por _________________________________________, D.N.I./L.E./L.C. Nº ___________________ en calidad de _________________________ .Con la finalidad de dar continuidad al Acta de Toma de Muestras CUVE N° ________________________de fecha ____/____/20___, habiendo recibido el resultado de POSITIVO A INFLUENZA AVIAR (H5/H7) protocolizada bajo el Protocolo Nº__________________, y cuyos resultados de laboratorio se registran con la Orden de Análisis Nº_________________________, se procede a la primera [ ] / segunda [ ] / tercera [ ] LIMPIEZA - DESINFECCIÓN DE LAS INSTALACIONES, actividad que inició el día __/___/20___ a las ___:___ horas y finalizó el día __/___/20___ a las ___:___ horas .- Se notifica por este acto que el presente procedimiento se realiza en el marco de la Emergencia Sanitaria declarada por la Resolución SENASA Nº 147 de fecha 15 de febrero de 2023, en virtud de la Ley 3959 y sus modificatorias y la Ley 27.233 y su Decreto Reglamentario 776/2019. Se labra la presente acta en DOS (2) ejemplares de un mismo tenor y a un solo efecto, de las cuales todas sus copias son firmadas en original, que previa lectura se firman de CONFORMIDAD/ DISCONFORMIDAD / NO FIRMA con los términos vertidos en la misma por parte del/los funcionario/s del Servicio interviniente/s, el inspeccionado y en su caso los testigos. Se deja Expresa constancia que el inspeccionado recibe UNA (1) Copia de todo lo actuado, quedando debidamente NOTIFICADO.- (Agente del SENASA) ___________________________________ ___________________________________ Firma y Aclaración Firma y Aclaración Testigo Interesado y/o Propietario 1/1 GUÍA OPERATIVA. INFLUENZA AVIAR EN AVES NO DE CORRAL (TRASPATIO). PLAN DE CONTINGENCIA 33 �� Dublin Core The Dublin Core metadata element set is common to all Omeka records, including items, files, and collections. For more information see, http://dublincore.org/documents/dces/. Title A name given to the resource Publicaciones SENASA Dublin Core The Dublin Core metadata element set is common to all Omeka records, including items, files, and collections. For more information see, http://dublincore.org/documents/dces/. Title A name given to the resource Guía operativa. Influenza aviar en aves no de corral (traspatio). Plan de contingencia Publisher An entity responsible for making the resource available Servicio Nacional de Sanidad y Calidad Agroalimentaria Date A point or period of time associated with an event in the lifecycle of the resource 2026 Contributor An entity responsible for making contributions to the resource Dirección Nacional de Sanidad Animal Programa Nacional de Sanidad Aviar Coordinación General de Comunicación Institucional Language A language of the resource Es Type The nature or genre of the resource Manual Identifier An unambiguous reference to the resource within a given context B.S.0199 Abstract A summary of the resource. El presente documento tiene como objetivo establecer los lineamientos técnicos destinados al personal profesional del Servicio Nacional de Sanidad y Calidad Agroalimentaria (Senasa), en relación con las estrategias, medidas sanitarias, acciones y actividades generales que deberán adoptarse ante la confirmación de uno o más brotes de influenza aviar (IA), subti-pos H5 o H7, en aves de traspatio (no comerciales) dentro del territorio de la República Argentina. Table Of Contents A list of subunits of the resource. Introducción Marco legal: referencias normativas y recomendaciones internacionales Glosario conceptual La enfermedad Sistema Nacional de Emergencias Sanitarias Estrategia sanitaria y procedimientos de respuesta Procedimiento de atención y seguimiento de influenza aviar tipo a H5H7 en aves de traspatio Medidas sanitarias en el brote Cierre del brote Area de prevención Vigilancia epidemiológica en el área de prevención Contactos Anexos Enfermedades de las Aves Influenza Aviar