433 10 4434 https://biblioteca.senasa.gob.ar/files/original/b2c5e050ad70d872c278fa5bbbc22704.pdf 19f1778ea173466d24c266dcf8a4d37c PDF Text Text ZOONOSIS LEPTOSPIROSIS CÓMO RECONOCERLA Y PREVENIRLA �LEPTOSPIROSIS CÓMO RECONOCERLA Y PREVENIRLA ¿CÓMO SE TRANSMITE? ¿CUÁLES SON LOS SIGNOS CLÍNICOS? Entre los animales se transmite de un animal portador de la enfermedad a otro, mediante el contacto con fluidos corporales que contienen leptospiras. En las personas: Los síntomas pueden ser leves o muy pronunciados, y aparecen entre los 7 a 32 días después del contagio. Los más comunes son: •ictericia (color amarillo en la piel y mucosas); •inapetencia; •decaimiento; •fiebre; •dolor de cabeza, hepático o renal; •vómitos y hemorragias; •dificultad respiratoria y tos. En las personas, la Leptospira ingresa al organismo a través de heridas en la piel y las mucosas conjuntival, nasal y bucal. Una vía de ingreso posible es la ingesta de agua o alimentos contaminados, mientras que la transmisión más común se produce por el contacto con la orina de animales enfermos o con aguas o superficies contaminadas con ésta, como: •Utensilios que se utilizan para comer o beber. •Ríos de corriente lenta, arroyos, lagos, lagunas o zanjas, banquinas anegadas, piletas o natatorios con falta de mantenimiento. •Terrenos húmedos con barro y vegetación contaminada. En los animales: La enfermedad puede presentarse sin signos clínicos. En el ganado puede provocar abortos, baja fertilidad, reducción en la producción láctea y/o ictericia. En los perros puede provocar fiebre, ictericia, congestión de las mucosas y letargo. ¿CÓMO PREVENIRLA? •Evite la presencia de roedores en la casa (especialmente en la cocina), galpón y alrededores. •No acumule basura ni aguas estancadas. table o potabilizada antes de preparar o comer alimentos, después de usar el baño y si participó de la limpieza de objetos y superficies en contacto con aguas que podrían estar contaminadas. •Higienice frecuentemente los comederos y bebederos de los animales. •Coloque todos los alimentos en recipientes cerrados. •Lave sus manos con jabón y agua po- •Lave los utensilios que se utilicen para �Es una enfermedad producida por la bacteria Leptospira interrogans, que afecta a animales silvestres y domésticos, y puede transmitirse a las personas, en las que puede ocasionar una infección grave. Los casos de leptospirosis suelen incrementarse con el aumento de temperaturas y lluvias, especialmente si ocurren inundaciones. ¿Cómo actuar ante la sospecha o confirmación de la enfermedad? La leptospirosis es una enfermedad grave para la salud pública. Por eso, si observa alguno de los síntomas mencionados – y en los 30 días previos ha estado en contacto con residuos, o realizado tareas en ambientes con posible exposición a la Leptospira – recurra al centro de atención médica más cercano para hacerse un chequeo. También consulte a un veterinario ante la presencia de los signos clínicos mencionados en animales domésticos. Cuanto antes reciba atención, más efectivo será el tratamiento. Asimismo, recuerde que la leptospirosis se encuentra dentro del grupo de enfermedades de notificación obligatoria por lo que ante la sospecha o confirmación de algún caso, contáctese con el Senasa para que las autoridades sanitarias puedan llevar a cabo las medidas correspondientes. preparar alimentos, antes y después de su uso, con agua potable o potabilizada. •Consulte a un veterinario sobre la vacunación de sus animales contra la leptospirosis. •Evite nadar o sumergirse en aguas potencialmente contaminadas y use botas en zonas anegadas. Roedores, perros, vacas, cerdos, caballos y animales silvestres son los principales portadores de la enfermedad. �La detección temprana y la notificación inmediata de casos de leptospirosis son fundamentales para la implementación de medidas de prevención, control y vigilancia por parte de los organismos competentes. Coordinación de Zoonosis del Senasa (011) 4121 -5000 coorzoonosis@senasa.gob.ar � Dublin Core The Dublin Core metadata element set is common to all Omeka records, including items, files, and collections. For more information see, http://dublincore.org/documents/dces/. Title A name given to the resource Publicaciones SENASA Dublin Core The Dublin Core metadata element set is common to all Omeka records, including items, files, and collections. For more information see, http://dublincore.org/documents/dces/. Title A name given to the resource Leptospirosis. Cómo reconocerla y prevenirla Publisher An entity responsible for making the resource available Servicio Nacional de Sanidad y Calidad Agroalimentaria Contributor An entity responsible for making contributions to the resource Coordinación de Zoonosis Language A language of the resource Es Type The nature or genre of the resource Monografía Identifier An unambiguous reference to the resource within a given context B.S.0060 Abstract A summary of the resource. Información sobre como reconocer y prevenir la leptospirosis, que es una enfermedad producida por la bacteria Leptospira interrogans, que afecta a animales silvestres y domésticos y puede transmitirse a las personas, en las que puede ocasionar una infección grave. Los casos de leptospirosis suelen incrementarse con el aumento de temperaturas y lluvias, especialmente si ocurren inundaciones. Leptospirosis https://biblioteca.senasa.gob.ar/files/original/d5fe676e729cbde8b94371427a87f7fd.pdf 0bb2c5b323319f7c1fc6b87bac9e03d1 PDF Text Text ZOONOSIS LEISHMANIASIS VISCERAL CANINA CÓMO RECONOCERLA Y PREVENIRLA �LEISHMANIASIS VISCERAL CANINA CÓMO RECONOCERLA Y PREVENIRLA ¿Cómo se transmite? Se transmite a otros canes y a las personas por la picadura de un insecto (Lutzomyia longipalpis, un flebótomo volador muy pequeño, parecido a un mosquito) que previamente ha ingerido sangre de un perro infectado con los parásitos. Al ser picados, los perros infectados se convierten en reservorios de la enfermedad y pueden volver a ser picados por otros flebótomos que seguirán diseminando la leishmaniasis. Los perros también pueden adquirir el parásito ya sea por vía sexual o desde las madres hacia sus crías a través de la placenta. ¿Cuáles son los SIGNOS CLÍNICOS? En las personas: •fiebre prolongada; •aumento de tamaño del abdomen; •pérdida de apetito y de peso; •tos seca; •diarrea y vómitos; •anemia (palidez de piel y/o mucosas); •ictericia (coloración amarilla de piel y/o mucosas). En los perros: •diarrea y vómitos; •decaimiento; •pérdida de apetito y pelo; •descamación, especialmente alrededor de los ojos y el hocico; •crecimiento exagerado de las uñas; •úlceras en la piel; •hemorragia nasal. ¿Cómo prevenirla? • Siempre realizar la castración del perro, sea hembra o macho. · Collares con Deltametrina al 4%. Protección estimada por 5 meses. • Evitar el traslado de los caninos hacia zonas del país con presencia del insecto vector. En caso de realizarlo, aplique a su perro algún repelente contra Lutzomyia longipalpis: · Pipetas que contengan Permetrina (50%) más Imidacloprid (10%). Protección estimada por 3 semanas. Si vive en zona con vector: • Coloque a su perro alguno de los repelentes recomendados. También puede rociar la cucha y otros lugares donde duerman los animales con esos productos. En perros menores de 12 semanas de edad – para los que no se indica el uso de pipetas �Es una enfermedad producida por el parásito Leishmania infantum, cuyo reservorio son los perros. La enfermedad en caninos solo tiene cura clínica pero no parasitológica, y no es transmisible de persona a persona. ¿Cómo actuar ante la sospecha o confirmación de la enfermedad? La leishmaniasis es una enfermedad grave para la salud pública. Por eso, si usted o su perro presentan alguno de los signos clínicos mencionados consulte a un médico para cuidar su salud y a un veterinario para realizar un chequeo de su mascota. Recuerde que preservar a un animal portador implica riesgos para su salud y la de su familia. Consulte con la Coordinación de Zoonosis del Senasa (coorzoonosis@senasa.gob.ar) o el Programa Nacional de Leishmaniasis del Ministerio de Salud de la Nación para informarse sobre cómo proceder. ni collares – use telas mosquiteras, que pueden ser tratadas con productos repelentes para aumentar su eficacia. • Encienda dispositivos antiinsectos desde el atardecer hasta el amanecer y coloque tela mosquitera en las puertas y ventanas de la vivienda. • Restrinja los movimientos al aire libre en horas de mayor circulación del vec- tor y contenga a los animales en recintos acondicionados con tela mosquitera. • Si va a realizar actividades al aire libre, utilice repelente y ropa que cubra el cuerpo lo más posible. • Evite que se junte materia orgánica húmeda como la hojarasca en los patios o el guano en los gallineros porque ahí es donde se desarrolla el insecto vector. �La detección temprana y la notificación inmediata de casos de leishmaniasis visceral canina son fundamentales para la implementación de medidas de prevención, control y vigilancia por parte de los organismos competentes. Coordinación de Zoonosis del Senasa (011) 4121 -5000 coorzoonosis@senasa.gob.ar � Dublin Core The Dublin Core metadata element set is common to all Omeka records, including items, files, and collections. For more information see, http://dublincore.org/documents/dces/. Title A name given to the resource Publicaciones SENASA Dublin Core The Dublin Core metadata element set is common to all Omeka records, including items, files, and collections. For more information see, http://dublincore.org/documents/dces/. Title A name given to the resource Leishmaniasis visceral canina. Cómo reconocerla y prevenirla Publisher An entity responsible for making the resource available Servicio Nacional de Sanidad y Calidad Agroalimentaria Contributor An entity responsible for making contributions to the resource Cordinación de Zoonosis Language A language of the resource Es Type The nature or genre of the resource Monografía Identifier An unambiguous reference to the resource within a given context B.S.0061 Abstract A summary of the resource. Informacion sobre como reconocer y prevenir la leishmaniasis visceral canina, que es una enfermedad producida por el parásito Leishmania infantum, cuyo reservorio son los perros. La enfermedad en caninos solo tiene cura clínica pero no parasitológica, y no es transmisible de persona a persona. Se transmite a otros canes y a las personas por la picadura de un insecto (Lutzomyia longipalpis, un flebótomo volador muy pequeño, parecido a un mosquito) que previamente ha ingerido sangre de un perro infectado con los parásitos. Leishmaniasis https://biblioteca.senasa.gob.ar/files/original/352919f105a78ab16e5505c6d40e9315.pdf 9aaca23651880ec969ee01f3dd9cfbaf PDF Text Text ZOONOSIS HIDATIDOSIS CÓMO RECONOCERLA Y PREVENIRLA �HIDATIDOSIS CÓMO RECONOCERLA Y PREVENIRLA ¿CÓMO SE TRANSMITE? Cuando los perros son alimentados con vísceras crudas de ovejas, cabras y vacas que tienen quistes hidatídicos, los huevos del parásito son eliminados con la materia fecal del canino. Las personas y el ganado se contagian al ingerir huevos del parásito que están en la tierra y el pasto, o por el consumo de productos de huerta contaminados. ¿CUÁLES SON LOS SIGNOS CLÍNICOS? La hidatidosis produce quistes que usualmente se desarrollan en el hígado, los pulmones o los riñones. Generalmente, la enfermedad es de curso asintomático durante largos períodos de tiempo, por lo que se suele detectar cuando el quiste alcanza un tamaño significativo o en eventuales ecografías o cirugías abdominales. ¿CÓMO PREVENIRLA? El riesgo de contagio es mayor en los lugares donde se cría ganado pero también se produce en zonas urbanas. Por eso, el Senasa le recomienda que: •No alimente a los perros con vísceras crudas. •Desparasite a los perros de zonas rurales cada 45 días y a los de zonas urbanas cada 4 a 6 meses. •Evite que los niños se lleven tierra a la boca. •Lave sus manos y las de los niños luego de estar en contacto con los animales o con la tierra. •Cerque las huertas. •Lave cuidadosamente los vegetales. •Mantenga a los perros lejos de los lugares donde se faena. �Es una enfermedad producida por el parásito Equinococos granuloso que se encuentra en el intestino de los perros y se transmite a través de su materia fecal. El parásito se difunde mediante un ciclo primario que comprende a perros y ovinos; y uno secundario que involucra al perro con otras especies. ¿CÓMO ACTUAR ANTE LA SOSPECHA O CONFIRMACIÓN DE LA ENFERMEDAD? La hidatidosis es una enfermedad grave para la salud pública. Por eso, si usted sospecha que pudo haber contraído la enfermedad recurra al centro de atención médica más cercano para un chequeo. Asimismo, recuerde que la hidatidosis se encuentra dentro del grupo de enfermedades de denuncia obligatoria por lo que si al faenar animales observa quistes (con apariencia de bolsas de agua) en los órganos, contáctese con el Senasa. El perro infectado elimina por materia fecal miles de huevos embrionados que contaminan el medioambiente por hasta 41 meses manteniendo vivo el ciclo biológico de la hidatidosis. Adopte las medidas necesarias para la prevención de esta enfermedad. FOCOS ENDÉMICOS El parásito que origina esta enfermedad se encuentra ampliamente difundido en el territorio argentino. FOCO MESOPOTÁMICO FOCO PAMPA HÚMEDA FOCO ALTA MONTAÑA FOCO MEDITERRÁNEO FOCO PATAGÓNICO FOCO CUYANO �La detección temprana y la notificación inmediata de casos de hidatidosis son fundamentales para la implementación de medidas de prevención, control y vigilancia por parte de los organismos competentes. Coordinación de Zoonosis del Senasa (011) 4121 -5000 coorzoonosis@senasa.gob.ar www.senasa.gob.ar � Dublin Core The Dublin Core metadata element set is common to all Omeka records, including items, files, and collections. For more information see, http://dublincore.org/documents/dces/. Title A name given to the resource Publicaciones SENASA Dublin Core The Dublin Core metadata element set is common to all Omeka records, including items, files, and collections. For more information see, http://dublincore.org/documents/dces/. Title A name given to the resource Hidatidosis. Cómo reconocerla y prevenirla Publisher An entity responsible for making the resource available Servicio Nacional de Sanidad y Calidad Agroalimentaria Contributor An entity responsible for making contributions to the resource Coordinacion de Zoonosis Language A language of the resource Es Type The nature or genre of the resource Monografía Identifier An unambiguous reference to the resource within a given context B.S.0062 Abstract A summary of the resource. Informacion sobre como reconocer y prevenir la hidatidosis, que es una enfermedad producida por el parásito Equinococos granuloso que se encuentra en el intestino de los perros y se transmite a través de su materia fecal. El parásito se difunde mediante un ciclo primario que comprende a perros y ovinos; y uno secundario que involucra al perro con otras especies. Hidatidosis https://biblioteca.senasa.gob.ar/files/original/4448865fcdcac572bd6e3c232c05e11a.pdf bbad26cd94f5641f606726e5e94d564a PDF Text Text ZOONOSIS CARBUNCO CÓMO RECONOCERLO Y PREVENIRLO �CARBUNCO CÓMO RECONOCERLO Y PREVENIRLO La enfermedad se transmite de animales enfermos o muertos a los humanos pero no se contagia entre personas enfermas o convalecientes. En estos casos, la severidad de la enfermedad variará según el modo de contagio y la celeridad en la atención del enfermo. Cuando la bacteria entra en contacto con el oxígeno forma una espora que es resistente en condiciones climáticas severas. Luego, las esporas ingresan al organismo de los animales o las personas donde liberan toxinas, que pueden llegar a causar la muerte. ¿Cuáles son los SIGNOS CLÍNICOS? En las personas: Según la vía de ingreso de la bacteria al organismo, el carbunco se manifiesta de distintas formas: •Carbunco dérmico o “grano malo”: la bacteria ingresa a través de la piel, donde produce una lesión con aspecto de grano o lastimadura que pica y no cura, y luego forma una cáscara negra y hundida. •Carbunco digestivo o intestinal: se adquiere a través del consumo de carne de animales enfermos; ocasiona malestar abdominal, fiebre, septicemia y muerte. •Carbunco respiratorio o pulmonar: se contagia por la inhalación de esporos; ocasiona fiebre, malestar general, tos, dolor torácico y una insuficiencia respiratoria que puede ocasionar la muerte. En los animales: Se produce la salida de sangre por los orificios naturales (boca, nariz y ano). Con la sangre, se liberan esporos al ambiente que quedan en el suelo y pueden ser ingeridos por otros rumiantes al alimentarse. ¿Cómo prevenirlO? En la manipulación y el consumo de alimentos: Para evitar el contagio de la enfermedad, el Senasa recomienda realizar las siguientes acciones: •No manipule ni consuma productos derivados de animales con signos de estar enfermos o muertos. •En campos con antecedentes de la enfermedad, vacune anualmente al ganado. •No queme cadáveres, ya que con esta práctica provoca la diseminación de �Es una enfermedad causada por la bacteria Bacillus anthracis que puede sobrevivir en el ambiente por más de 50 años, debido a que posee una forma de resistencia que se denomina esporo. Esta enfermedad también se conoce como ántrax, pústula maligna, enfermedad de los cardadores de lana o enfermedad de los traperos. ¿Cómo actuar ante la sospecha o confirmación de la enfermedad? El carbunco o ántrax es una enfermedad grave para la salud pública. Por eso, si observa alguno de los signos clínicos mencionados en personas o animales, recurra al centro de atención médica más cercano para un chequeo. Asimismo, recuerde que el carbunco se encuentra dentro del grupo de enfermedades de denuncia obligatoria por lo que ante la sospecha o confirmación de algún caso, contáctese con el Senasa para que le indique cómo tratar adecuadamente los cadáveres para disminuir el riesgo de contagio. Es importante la rápida adopción de medidas sanitarias, a fin de evitar la ocurrencia de casos humanos. En los establecimientos con antecedentes de carbunco, y ante la detección de casos de esta enfermedad, se recomienda la vacunación del ganado y la eliminación de los animales enfermos y del material contaminado. esporos y favorece el contagio por vía respiratoria. Los cadáveres deben ser enterrados y tapados en el mismo lugar donde fueron encontrados, siguiendo las indicaciones del Senasa. Recuerde que el carbunco afecta comúnmente a los animales como las ovejas, vacas y cabras. �La detección temprana y la notificación inmediata de casos de carbunco son fundamentales para la implementación de medidas de prevención, control y vigilancia por parte de los organismos competentes. Coordinación de Zoonosis del Senasa (011) 4121 -5000 coorzoonosis@senasa.gob.ar � Dublin Core The Dublin Core metadata element set is common to all Omeka records, including items, files, and collections. For more information see, http://dublincore.org/documents/dces/. Title A name given to the resource Publicaciones SENASA Dublin Core The Dublin Core metadata element set is common to all Omeka records, including items, files, and collections. For more information see, http://dublincore.org/documents/dces/. Title A name given to the resource Carbunco. Cómo reconocerlo y preverlo Publisher An entity responsible for making the resource available Servicio Nacional de Sanidad y Calidad Agroalimentaria Contributor An entity responsible for making contributions to the resource Coordinacion de Zoonosis Language A language of the resource Es Type The nature or genre of the resource Monografía Identifier An unambiguous reference to the resource within a given context B.S.0064 Abstract A summary of the resource. Información sobre como reconocer y prevenir el carbunco, que es una enfermedad causada por la bacteria Bacillus anthracis que puede sobrevivir en el ambiente por más de 50 años, debido a que posee una forma de resistencia que se denomina esporo. Esta enfermedad también se conoce como ántrax, pústula maligna, enfermedad de los cardadores de lana o enfermedad de los traperos. Carbunclo https://biblioteca.senasa.gob.ar/files/original/07b9f2d2ac0ed36e8a0e141c5d54ed5e.pdf a79e24f39f5ffab52ca37fd0bba8daa3 PDF Text Text ZOONOSIS BRUCELOSIS CAPRINA CÓMO RECONOCERLA Y PREVENIRLA �BRUCELOSIS CAPRINA CÓMO RECONOCERLA Y PREVENIRLA ¿Cómo se transmite? Las cabras se infectan a través de la ingesta de agua y alimentos que contienen esta bacteria, por el consumo de leche materna (cabritos) o por el contacto con fluidos corporales de animales enfermos. Además, se transmite a las personas que atienden los corrales y están en contacto con cabras enfermas, partos, placentas y fluidos corporales. Otra fuente usual de infección es el consumo de leche cruda, quesillos y otros productos lácteos que, en su elaboración, utilizan leche sin pasteurizar o hervir. ¿Cuáles son los SIGNOS CLÍNICOS? En las personas: •dolor muscular, articular y de cabeza; •fiebre intermitente; •orquitis (inflamación de los testículos); •sudor nocturno con frío y escalofríos; •pérdida de apetito y de peso; •estreñimiento; •aumento de tamaño del bazo, hígado y ganglios linfáticos. En los animales: •abortos tardíos; •menor producción de leche; •presencia de coágulos en la leche; •retención de placenta; •infección uterina e infertilidad; •glándulas mamarias infectadas con pequeños nódulos. ¿Cómo prevenir el contagio en los humanos? En el trabajo con animales •Utilice guantes, botas de goma, anteojos y ropa adecuada. Si tiene heridas en la piel, protéjalas. •Limpie los elementos y desinfecte las herramientas del corral fuera del alcance de los animales. •Lave y desinfecte sus manos antes y después de trabajar en el corral. •No tome ni se higienice con agua que estuvo en contacto con animales. •No fume ni coma mientras trabaja y evite llevarse las manos a la boca. •Queme los restos de abortos o partos y entiérrelos en un pozo. �Es una enfermedad producida por la bacteria Brucella melitensis que genera problemas reproductivos y abortos en las cabras, y puede transmitirse al hombre provocando una enfermedad crónica. ¿Cómo actuar ante la sospecha o confirmación de la enfermedad? En los animales En provincias donde la brucelosis está presente, el Senasa promueve diferentes medidas para controlarla dependiendo de la situación de la misma en cada zona: diagnóstico de la enfermedad, aplicación de la vacuna Rev.1 en zonas endémicas y control de movimientos. Contáctese con el Senasa para notificar cualquier sospecha de enfermedad y recibir asistencia en el manejo sanitario de su producción. En las personas Si observa alguno de los signos clínicos mencionados, recurra al centro de atención médica más cercano para hacerse un chequeo. Recomendaciones para el empleo de la vacuna En la manipulación y el consumo de alimentos •Para destruir la bacteria que produce la brucelosis, antes de consumir la leche o preparar productos derivados de ella, debe hervirla o bien pasteurizarla, calentándola a 65°C durante 30 minutos y revolviendo frecuentemente. •No consuma quesos de procedencia dudosa o que no hayan sido elaborados con leche pasteurizada. •Aplicar la vacuna por vía conjuntival Rev. 1, utilizando una dosis completa por animal (1 gota). •Ejecutar la vacunación únicamente durante el preservicio, pasada la parición o durante la lactación. No está indicado el uso de la vacuna durante la preñez. •Realizar campañas masivas cada dos años y como mínimo durante un período de diez años. �La detección temprana y la notificación inmediata de casos de brucelosis caprina son fundamentales para la implementación de medidas de prevención, control y vigilancia por parte de los organismos competentes. Coordinación de Zoonosis del Senasa (011) 4121 -5000 brucelosiscaprina@senasa.gob.ar coorzoonosis@senasa.gob.ar � Dublin Core The Dublin Core metadata element set is common to all Omeka records, including items, files, and collections. For more information see, http://dublincore.org/documents/dces/. Title A name given to the resource Publicaciones SENASA Dublin Core The Dublin Core metadata element set is common to all Omeka records, including items, files, and collections. For more information see, http://dublincore.org/documents/dces/. Title A name given to the resource Brucelosis caprina. Cómo reconocerla y prevenirla Publisher An entity responsible for making the resource available Servicio Nacional de Sanidad y Calidad Agroalimentaria Contributor An entity responsible for making contributions to the resource Coordinacion de Zoonosis Language A language of the resource Es Type The nature or genre of the resource Monografía Identifier An unambiguous reference to the resource within a given context B.S.0065 Abstract A summary of the resource. Informacion sobre como reconocer y prevenir la brucelosis caprina, que es una enfermedad producida por la bacteria Brucella melitensis que genera problemas reproductivos y abortos en las cabras, y puede transmitirse al hombre provocando una enfermedad crónica. Brucelosis Enfermedades de los Caprinos https://biblioteca.senasa.gob.ar/files/original/fda168dea2c199ca677d547d88ed0905.pdf 27444f4fffb447d0baf75a3eda6ded83 PDF Text Text Informe de Notificaciones de Enfermedades Denunciables – Trichinellosis. Coordinación General de Epidemiología Dirección de Planificación y Estrategia de Sanidad Animal La triquinosis o trichinellosis es una enfermedad parasitaria causada por las larvas de nematodes del género Trichinella spp, que afecta al ser humano, mamíferos domésticos, silvestres, aves y reptiles. Se trata de una zoonosis que se transmite a los seres humanos, de modo accidental, por la ingestión de carne o derivados cárnicos, crudos o mal cocidos que contienen larvas musculares viables de Trichinella spp. En Argentina, la principal fuente de infección para el ser humano es el cerdo, aunque también existen otras, como el jabalí o el puma. Con respecto a los cerdos domésticos, la parasitosis está estrictamente relacionada a las condiciones de crianza de los mismos, especialmente con la alimentación y presencia de animales sinantrópicos (por ejemplo, ratas) en el criadero o en basurales cercanos y hábitos canibalísticos del cerdo. Este parásito, además, puede encontrarse en la musculatura estriada de un amplio rango de mamíferos, especialmente carnívoros y carroñeros existiendo especies de Trichinella spp. que parasitan a aves y reptiles también. En el presente informe se describe la situación de la notificación de focos de trichinellosis, evento de notificación obligatoria por la Resolución SENASA N°422/2003 bajo el protocolo establecido y unificado para todo el territorio argentino reglamentado por la Resolución SENASA N° 540/2010. El análisis fue realizado por la Coordinación General de Epidemiología de la Dirección de Planificación y Estrategia de Sanidad Animal (DPYESA) y abarca el periodo 2010-2019. Durante el periodo establecido entre el 2010 y septiembre del 2017, la información se recibía en papel luego, a partir de septiembre 2017, el protocolo de notificación se empezó a completar online desde el Sistema Integrado de Gestión de Sanidad Animal (SIGSA). El sistema está en constante mejoramiento para lograr que la información obtenida sea lo más fidedigna posible. Por otro lado, a la fecha se encuentra vigente la Resolución ex SAGPYA Nº555/2006, que aprueba el Programa de Control y Erradicación de la Triquinosis Porcina en la República Argentina, y la Circular Nº17/2018 de notificación y registro de sospechas, foco y brotes de trichinellosis, donde se explica de qué manera notificar y atender las denuncias de esta enfermedad. Según la mencionada Circular se considera sospecha a un establecimiento sobre el que se ha tomado conocimiento a través de denuncias de terceros y/o cuando las condiciones ambientales observadas hagan sospechar de la presencia de animales parasitados o frente a un resultado serológico positivo. El foco se confirma cuando uno o más animales positivos resultan positivos al diagnóstico directo para la detección de Trichinella spp., ya sean silvestres o domésticos. Un brote de �triquinosis es la ocurrencia de uno o más casos humanos de triquinosis agrupados en tiempo y espacio. El procedimiento indica que al declararse un foco de trichinellosis el veterinario actuante debe realizar las siguientes acciones en el predio de origen:    Identificar e inspeccionar el predio de origen de los animales. En los casos en los que no se dispone el RENSPA del predio el primer paso constituye la investigación para poder llegar al predio de origen. Si el mismo no tiene RENSPA se le debe otorgar uno en cumplimiento de la Resolución SENASA N° 423/2014. Luego se deben determinar las existencias porcinas, verificar si hay diferencias de stock, interdictar el predio e identificar todos los animales. Completar desde el SIGSA los protocolos de Denuncia de Enfermedades de Notificación Obligatoria de la Resolución SENASA N° 540/2010. Remitir los animales a faena controlada. Dependiendo las características del foco y del establecimiento involucrado, la faena puede ser programada (respetando el ciclo productivo) o inmediata. La decisión de posponer la faena inmediata para hacerla de manera programada con o sin muestreo serológico quedará bajo la responsabilidad del coordinador regional de Sanidad Animal y en caso de decidir realizar el muestreo serológico deben comunicarse con la Dirección Nacional de Sanidad Animal para armar el diseño del muestreo acorde a las características de foco en cuestión y gestionar la autorización para remitir los sueros para su análisis a la Dirección de Laboratorio y Control Técnico (DILAB). Situación epidemiológica en Argentina 2010-2019  Trichinellosis en porcinos domésticos La trichinellosis es considerada una enfermedad de denuncia obligatoria por las resoluciones SENASA N° 422/2003 y 555/2006, siendo obligatorio para todo establecimiento faenador de porcinos la realización de la técnica de digestión artificial para liberar a consumo las carnes porcinas. Si bien el cerdo es quien se encuentra involucrado con mayor frecuencia en los brotes humanos, también se registran brotes por carnes de animales silvestres consumida generalmente en forma de chacinados y embutidos sin control bromatológico o carne fresca insuficientemente cocida. En nuestro país los hábitos de crianza de cerdos en forma domiciliaria (traspatio) sin las condiciones mínimas de higiene y alimentación son ideales para la propagación y mantenimiento de esta parasitosis. Esto se asocia, a su vez, con la faena domiciliaria o casera sin control sanitario, que trae como consecuencia la oferta de alimentos de riesgo para el consumidor (carne curada salada, cruda o insuficientemente cocida). �En el período 2010-2019 se registraron 509 protocolos emitidos para la enfermedad trichinellosis. Del total de notificaciones, 476 (93,5%) se registró como foco. El resto de los protocolos 33 registrados, fueron contabilizados como sospechas no confirmadas o casos descartados (6,5%). El año que presentó mayor cantidad de focos confirmados fue el año 2016 con un total de 73 y el año con menor cantidad de confirmaciones fue el 2010 con un total de 7 focos confirmados, por lo que la línea de tendencia se visibiliza de forma ascendente. En cuanto a las medidas de tendencia central para el total del periodo, la media y la mediana arrojan valores de 47,6 y 46 respectivamente. (Grafico 1) 80 Numero de focos 70 60 50 40 30 20 10 0 2010 2011 2012 2013 2014 2015 2016 2017 2018 2019 Año de notificación Grafico 1: Focos de trichinellosis registrados según año de notificación. Argentina-Total país. Periodo 2010-2019 N=476 Fuente: elaboración propia – SENASA La provincia con mayor cantidad de focos de trichinellosis fue la provincia de Buenos Aires con un total de 274 focos (57%) en los 10 años analizados. Los mismos se distribuyeron en 60 partidos de dicha jurisdicción siendo la mayoría focos en cerdos domésticos. Le sigue la provincia de Neuquén con 92 focos declarados (20%) durante el mismo periodo y distribuidos en 9 partidos provinciales. Siguiéndole las provincias de San Luis, Córdoba y La Pampa (Mapa 1 y Gráfico 1). Neuquén aporta una alta proporción de casos silvestres (Mapa 2). �Mapa 1: Focos de trichinellosis registrados según provincia. Argentina-Total país. Periodo 20102019 N=476 Número de focos 300 250 200 150 100 50 0 Provincia Grafico 2: Focos de trichinellosis registrados por provincia de notificación. Argentina. Periodo 2010-2019. N=476 Fuente: elaboración propia – SENASA La enfermedad mantiene su distribución a lo largo de los años en el centro del país en animales domésticos. Los casos en silvestres se detectan principalmente en el sur de la provincia de Neuquén, en relación a la caza de jabalíes en los parques nacionales de la zona (Mapa 2). Esto se debe también a un trabajo muy importante de concientización que se realizó sobre los cazadores por parte del SENASA y del Ministerio de Producción e Industria del Neuquén. �Mapa 2: Focos de Trichinellosis registrados en animales domésticos y silvestres según Provincia. Argentina-Total país. Periodo 2013-2019 N=476 En cuanto al origen de las intervenciones, según la Resolución SENASA N° 540/2010, las mismas se clasifican en:    denuncia espontánea: toda aquella denuncia efectuada por el productor afectado. denuncia de terceros: toda aquella denuncia efectuada por una persona diferente al productor afectado. de oficio: detecciones realizadas por el SENASA en sus actividades de rastreo epidemiológico, vacunaciones, baños precaucionales, instrucciones recibidas, aviso de detección en playas de faena o mercado terminal y cualquier otra acción oficial. A los fines de poder profundizar en el análisis del origen de las intervenciones, y en base a la información contenida en los protocolos, para trichinellosis se amplían las clasificaciones de denuncias de terceros o de oficio incorporando las siguientes sub categorías: denuncias relacionadas a control de caza, diagnóstico de faena en frigoríficos, diagnóstico de faena casera realizados en laboratorios y otros (sin datos). Los datos muestran que el 27% de los diagnósticos positivos se obtuvieron de muestras de animales domésticos provenientes de faenas caseras, el 14% de plantas frigoríficas y un 32% de las intervenciones ocurre por la denuncia de terceros (Gráfico 3). Se debe considerar que todos los cerdos que se envían a faena a frigoríficos son analizados por digestión artificial. Esto no ocurre con los cerdos que se faenan de manera casera, si bien existen numerosas campañas de concientización respecto a este tema. Otra fuente importante de origen de los focos son los controles que se realizan en animales �silvestres (17%). En varias zonas de nuestro país, como Patagonia, Buenos Aires y La Pampa entre otras, se realizan actividades de caza tanto deportiva como de subsistencia y en muchos casos los cazadores elaboran chacinados y/o salazones con carne de puma, jabalí y/o otros animales silvestres. Resulta fundamental que la carne sea analizada antes de la elaboración de alimentos. Del 32% de focos originados por denuncia de terceros, el 28% está relacionado a brotes en humanos (Gráfico 4). Control de caza 8% 17% De oficio 1% Denuncia de terceros 27% Denuncia espontánea Diagnostico de Faena (frigorifico) 32% Faena Casera (laboratorio) 14% Otros 1% Gráfico 3: Focos de trichinellosis registrados según origen de la denuncia. Argentina- Total país. Periodo 2010-2019. N=476 Fuente: elaboración propia – SENASA Sin presencia de brote humano Con presencia de brote humano 28% 72% Gráfico 4: Focos de trichinellosis registrados con denuncia de terceros con presencia o ausencia de brote humano. Argentina- Total país. Periodo 2010-2019. N=152 Fuente: elaboración propia – SENASA Del total de las notificaciones recibidas (476 protocolos registrados como foco) el 11% están relacionadas a brotes en humanos. Los casos humanos se registran en el Sistema Integrado de Información Sanitario Argentino (SISA) perteneciente al Ministerio de Salud de la Nación y desde SENASA accedemos a dicho sistema para tomar los datos e �intentar identificar el origen de los animales. También se reciben comunicaciones de los Ministerios de Salud provinciales (Gráfico 5). Sin presencia de brote humano Con presencia de brote humano 11% 89% Gráfico 5: Focos de trichinellosis registrados a partir de brotes humanos. Argentina- Total país. Periodo 2010-2019. N=476 Fuente: elaboración propia – SENASA Cuando se analiza la proporción de focos notificados, vemos que a lo largo de los años se mantiene estable la cantidad de focos que están asociados a brotes humanos y los que no (Gráfico 5). 70 60 50 40 30 20 10 0 2010 2011 2012 2013 2014 Sin presencia de brote humano 2015 2016 2017 2018 2019 Con presencia de brote humano Gráfico 5: Focos de trichinellosis registrados a partir de brotes humanos por año. Argentina- Total país. Periodo 2010-2019. N=476 Fuente: elaboración propia – SENASA Respecto al tiempo trascurrido entre el inicio del foco y la notificación del mismo al SENASA, la media es de 35 días y la mediana de 18, debido a un máximo de 244 días trascurridos en dos de los focos. No obstante el 92% de las notificaciones se realizaron dentro de la semana de inicio del foco. En relación al tiempo transcurrido entre la �notificación del foco y la atención del mismo por parte del Organismo, el 86 % de los focos fueron atendidos entre el mismo día o al día siguiente de ser notificados y el 99% dentro de la semana de notificación. La media es de 9 días debido a que el máximo en uno de los casos fue de 49, y con una mediana que arroja un valor de 6,5 días.  Trichinellosis en animales silvestres (jabalíes, cerdos cimarrones y pumas) La proporción de notificaciones de trichinellosis silvestre fue de 18% respecto a la totalidad de las notificaciones en general, para el periodo 2010 - 2019. Cabe resaltar que se comenzó a registrar los eventos en estas especies en el año 2013 y que desde dicho año se ha incrementado significativamente la cantidad de denuncias. Porcinos domésticos 1% Puma Porcino Silvestre/Jabali 17% 82% Gráfico 6: Focos de trichinellosis registrados según especie. Argentina- Total país. Periodo 20102019. N=476 Fuente: elaboración propia – SENASA De la totalidad de las denuncias recibidas en animales silvestres el 94 % corresponden a notificaciones en suinos. (Grafico 7) �Puma Porcino Silvestre/Jabali 6% 94% Gráfico 7: Focos de trichinellosis registrados en animales silvestres. Argentina- Total país. Periodo 2013-2019. N=90 Fuente: elaboración propia – SENASA La provincia con mayor frecuencia de notificación fue Neuquén. En la misma se destaca por el trabajo llevado adelante por los profesionales de SENASA en las oficinas locales y de la Dirección de Ganadería y Salud Animal del Ministerio de Producción e Industria del Neuquén, desarrollando una buena estrategia y concientización con los cazadores y laboratorios diagnósticos. Casos trichinellosis silvetre 25 20 15 10 5 0 2013 2014 2015 2016 2017 Año de notificación 2018 2019 Gráfico 8: Focos de trichinellosis registrados en animales silvestres. Argentina- Total país. Periodo 2013-2019. N=90 Fuente: elaboración propia – SENASA Como se mencionó anteriormente, las notificaciones de trichinellosis silvestres comenzaron a notificarse en el año 2013, y desde esa fecha hasta el 2019, la cantidad se ha visto incrementada, para luego sufrir una baja en las notificaciones. Se sigue trabajando en la mayor concientización de los cazadores, tanto en la notificación como el diagnóstico de los animales previo a su consumo (Grafico 8). �Análisis temporal de las notificaciones de trichinellosis El grafico 9 muestra la distribución del total de casos registrados de trichinellosis de todo el periodo bajo análisis según los meses de notificación. En teoría, dado que la trichinellosis no es una enfermedad infectocontagiosa, se espera que aparezcan casos a lo largo de todo el año, sin una estacionalidad marcada. Sin embargo, dado que la misma se presenta sin sintomatología aparente en los cerdos, pasa inadvertida hasta el momento de la faena. Con el comienzo del invierno y las bajas temperaturas empieza lo que a campo se conoce como “carneada”, la faena casera o domiciliaria sin control veterinario para la obtención de la “factura”, los chacinados, embutidos, salazones caseras, para consumo personal y familiar o venta informal. Dado que los chacinados se producen con materia prima cruda (siendo la cocción a más de 70ºC lo único que elimina a las larvas de Trichinella spp.) y no se analizan, coincidentemente con los meses de invierno se registran más brotes en personas. Debido a las múltiples campañas de capacitación y difusión elaboradas por SENASA y otros organismos, en esta época del año también aumenta la faena casera con análisis en laboratorios privados y/o municipales para consumo personal. Esto es lo que hace que haya mayor diagnóstico en cerdos faenados y, por lo tanto, se nota una marcada estacionalidad con una mayor incidencia de focos durante la época invernal (Gráfico 9). 70 Número de focos 60 50 40 30 20 10 0 Mes de notificación Grafico 9: Focos de trichinellosis según mes de notificación. Argentina- Total país. Periodo 20102019. N=476. Fuente: elaboración propia – SENASA El canal endémico (Gráfico 10) nos permite ver la incidencia de trichinellosis durante el año 2019 comparado con la incidencia histórica del periodo 2010-2018. El mismo nos ayuda a detectar valores de casos por fuera de lo esperado para dicha enfermedad. La enfermedad es endémica en la Argentina aunque se presenta en forma de brotes en época invernal. Si bien se la diagnostica en casi todos los meses del año, como ya �mencionamos, se presenta con más frecuencia en los meses de junio, julio y agosto. La curva de casos notificados en el 2019 ha transcurrido dentro de la zona de alerta (más casos de lo esperado) durante gran parte del año salvo en los meses de febrero, abril, noviembre y diciembre que transitó por la zona de éxito y seguridad. En el mes de marzo no se notificaron casos en el SIGSA. 25 20 15 10 5 0 Gráfico 10: Canal endémico mensual de trichinellosis año 2019. Argentina - Total País. Históricos 2010 a 2018.Fuente: elaboración propia – SENASA Los protocolos con los que se registran los focos de las enfermedades notificables pueden tener varios estados. Para este análisis diferenciamos dos grandes grupos: los protocolos finalizados donde se realizó la carga de toda la información pertinente, el foco se dio por concluido y el protocolo se finalizó; y los protocolos no finalizados donde no se encuentra cargada la totalidad de la información y lo mismos aún se encuentran abiertos. El gráfico 11 muestra la proporción de protocolos finalizados en relación a los no finalizados por año de notificación. 100% 90% 80% 70% 60% 50% 40% 30% 20% 10% 0% 2010 2011 2012 2013 2014 No finalizado 2015 2016 Finalizado 2017 2018 2019 �Gráfico 11: Estado de los protocolos notificados por año. Argentina- Total país. Periodo 2010-2019. N=476. Fuente: elaboración propia – SENASA La cantidad de protocolos no finalizados se debe a que en ciertos establecimientos las acciones sanitarias de despoblación se demoran por respectar el ciclo productivo, por dificultad de acceder a frigoríficos que faenen los animales o por otras cuestiones operativas y/o legales. Conclusiones Como se desprende del informe la triquinosis o trichinellosis es una enfermedad endémica en Argentina con focos distribuidos en varias jurisdicciones, principalmente en la región Centro, coincidente con la distribución de la producción porcina del país, y en la región cordillerana de Neuquén, donde encontramos la mayor parte de los focos asociados a especies silvestres. La estacionalidad de la enfermedad es marcada y es importante a la hora de planear estrategias de prevención de la misma, como campañas de difusión y prevención. Es muy importante de la notificación del evento ante la sospecha o ni bien se realiza el diagnóstico con el fin de conocer la epidemiologia de la enfermedad en nuestro país y poder aplicar las medidas de control para evitar los casos humanos. Respecto al diagnóstico, la digestión artificial es una de las principales medidas para evitar la transmisión de la enfermedad y permite que la prevención y control se lleven a cabo en forma temprana por parte de los veterinarios locales, autoridades provinciales y municipales. Se debe resaltar la importancia de realizar el diagnóstico de toda la carne de origen porcino o de animales silvestres previo a su consumo. Además de las medidas de buenas prácticas de producción de porcinos, como evitar la alimentación con desechos, la digestión artificial es la medida que logra prevenir la ocurrencia de la enfermedad en humanos. La trichinellosis en humanos es un evento de notificación obligatoria. Según datos del Ministerio de Salud de la Nación, para el periodo comprendido entre los años 20142019, se notificaron 5875 casos al Sistema Nacional de Vigilancia de la Salud (SNVS 2.0). Los mismos se clasifican como: caso sospechoso, caso probable, caso confirmado y caso confirmado por nexo epidemiológico, según consensos con los referentes del evento. Para descartar los casos sospechosos es necesario contar con tres muestras seriadas de resultado negativo. Dado que en reiteradas oportunidades no es posible acceder a una segunda o tercera muestra de sangre del paciente, algunos casos sospechosos no pueden ser reclasificados y permanecen como casos sospechosos. �Número de casos humanos 1600 1400 1200 1000 800 600 400 200 0 2014 2015 2016 2017 2018 2019 Año de notificación Gráfico 12: Casos humanos notificados al SNVS 2.0 por año. Argentina- Total país. Periodo 20142019. N=5875. Fuente: Ministerio de Salud. Aclaración: los casos descartados están excluidos. El trabajo en conjunto con todos los actores involucrados en la cadena de notificaciones permite poder llegar al origen del foco animal cuanto antes y de esta manera poder evitar que se afecten más personas, lo cual se ve reflejado en la tendencia descendente de los casos humanos notificados al Ministerio de Salud. Para mayor información sobre medidas a adoptar ante la ocurrencia esta enfermedad podrá consultar los siguientes links: https://www.argentina.gob.ar/senasa/publicaciones/triquinosis https://intranet.senasa.gob.ar/sites/default/files/archivos/circular_dnsa_n_17-2018_focos_triquinosis.pdf http://servicios.infoleg.gob.ar/infolegInternet/verNorma.do;jsessionid=022F552C8239D6850FA3D833CBD18567?id =119741 https://www.oie.int/fileadmin/Home/esp/Health_standards/tahc/current/chapitre_trichinella_spp.pdf �ANEXO I Tabla 1: Focos de trichinellosis registrados según partido. Argentina-Total país. Periodo 2010-2019 N=476 PROVINCIA RENSPAS CON FOCO DECLARADO BUENOS AIRES 274 Adolfo Alsina 10 Adolfo Alsina 1 Alberti 2 Ayacucho 5 Azul 30 Bahia Blanca 6 Bahía Blanca 4 Balcarce 1 Benito Juarez 8 Bolivar 2 Capitan Sarmiento 1 Carlos Casares 6 Carlos Tejedor 1 Carmen de Areco 2 Chacabuco 8 Chascomus 5 Chivilcoy 8 Coronel Brandsen 2 Coronel Dorrego 4 Coronel Rosales 3 Coronel Suarez 23 Doce de Octubre 1 Dolores 38 Exaltacion de la Cruz 2 Gral. Belgrano 2 Gral. Paz 2 Gral. Rodriguez 1 Gral. Alvarado 1 Gral. Guido 2 Gral. Lavalle 3 Gral. Pueyrredon 11 Gral. Rodriguez 1 Hipolito Irigoyen 7 Junin 3 Continúa tabla N° 1 �La Costa La Matanza La Plata Laprida Las Flores Leandro N. Alem Lincoln Loberia Maipu Mar Chiquita Marcos Paz Navarro Necochea Nueve de Julio Olavarria Puan Rauch Roque Perez Saavedra Saladillo Saliquelo San Andres de Giles Suipacha Tandil Tordillo Tornquist Tres Arroyos Tres Lomas Veinticinco de Mayo CATAMARCA La Paz CHACO Doce de Octubre CHUBUT Chushamen Cushamen Continúa tabla N° 1 1 1 1 1 2 1 8 8 3 1 1 1 4 2 4 5 3 1 1 1 3 1 1 3 1 4 2 2 1 1 1 1 1 2 1 1 �CORDOBA Calamuchita Marcos Juarez Rio Cuarto San Justo San Martin Santa Maria Tercero Arriba Union CORRIENTES Goya ENTRE RIOS Gualeguychu LA PAMPA Capital Hucal Lihuel-Calel Loventue Maraco Toay Utracan MENDOZA Guaymallen - C. Segovia Lavalle Maipu - Villa Seca Tupungato NEUQUEN Alumine Catan Lil Catan Lil Collon Cura Collunches Confluencia Huiliches Lacar Loberia Los Lagos San Martin de Los Andes Continúa tabla N° 1 20 4 1 7 1 1 4 1 1 1 1 1 1 18 2 1 1 3 1 2 8 4 1 1 1 1 92 26 1 2 6 1 3 14 33 1 4 1 �RIO NEGRO Avellaneda Bariloche General Roca Gral. Roca Ñorquinco SAN LUIS Capital Chacabuco Cnel Pringles General Pedernera Gral Pedernera Gral Pedernera Gral. Pedernera J. M. Pueyrredon J.M. Pueyrredon Junin La Capital Villa Mercedes SANTA CRUZ Guer Aike Lago Argentino SANTA FE Belgrano Caseros Constitucion Gral. Lopez Gral. Obligado Gral. Lopez Rosario San Lorenzo San Martin TIERRA DEL FUEGO Rio Grande Total general 16 1 7 5 2 1 28 1 1 1 8 3 3 3 4 1 1 1 1 2 1 1 14 1 1 1 2 1 4 2 1 1 2 2 476 �Tabla 2: Focos de Trichinellosis registrados en animales silvestres según Provincia y Departamento. Argentina-Total país. Periodo 2013-2019 N=90 PROVINCIA Buenos Aires Cordoba La Pampa Neuquen Rio Negro San Luis Total general PARTIDO Benito Juarez Dolores Tordillo Tornquist Calamuchita Lihuel-Calel Loventue Utracan Alumine Catan Lil Catan Lil Collon Cura Collunches Huiliches Lacar Loberia Los Lagos Bariloche Gob. Dupuy Villa Mercedes PUMA 1 1 1 2 5 Jabalies Total general 1 1 1 1 1 1 1 1 1 1 1 1 3 3 7 7 20 21 1 1 2 2 5 6 1 1 9 10 23 25 1 1 3 3 2 2 1 1 1 1 85 90 � Dublin Core The Dublin Core metadata element set is common to all Omeka records, including items, files, and collections. For more information see, http://dublincore.org/documents/dces/. Title A name given to the resource Publicaciones SENASA Dublin Core The Dublin Core metadata element set is common to all Omeka records, including items, files, and collections. For more information see, http://dublincore.org/documents/dces/. Title A name given to the resource Informe de Notificaciones de Enfermedades Denunciables - Trichinellosis. Publisher An entity responsible for making the resource available Servicio Nacional de Sanidad y Calidad Agroalimentaria Date A point or period of time associated with an event in the lifecycle of the resource 2020 Contributor An entity responsible for making contributions to the resource Coordinación General de Epidemiologia Dirección de Planificación y Estrategia de Sanidad Animal Language A language of the resource Es Type The nature or genre of the resource Monografía Identifier An unambiguous reference to the resource within a given context B.S.0066 Abstract A summary of the resource. La triquinosis o trichinellosis es una enfermedad parasitaria causada por las larvas de nematodes del género Trichinella spp, que afecta al ser humano, mamíferos domésticos, silvestres, aves y reptiles. Se trata de una zoonosis que se transmite a los seres humanos, de modo accidental, por la ingestión de carne o derivados cárnicos, crudos o mal cocidos que contienen larvas musculares viables de Trichinella spp. Enfermedades de los Porcinos Triquinosis https://biblioteca.senasa.gob.ar/files/original/bb27806584a1c4a0193dff19dd7c2be1.pdf 94f5dad2c637b443459bc58b67a6414a PDF Text Text Informe de Notificaciones de Enfermedades Denunciables – Carbunclo bacteridiano. Coordinación General de Epidemiología Dirección de Planificación y Estrategia de Sanidad Animal El carbunclo bacteridiano se encuentra en todo el mundo, en todos los continentes, excepto la Antártida. Es una enfermedad infecciosa aguda, febril, que está producida por el Bacillus anthracis y se presenta con carácter esporádico o enzoótico; afecta a todos los mamíferos, incluido el hombre. La presentación de la enfermedad tras largos espacios de tiempo en los mismos distritos se explica por la propiedad del agente causal de formar esporos extraordinariamente resistentes, para los que el suelo actúa como reservorio, y que puede sobrevivir durante decenas de años y multiplicarse cuando las condiciones son adecuadas. En el presente informe se describe la situación de la notificación de focos de carbunclo bacteridiano, enfermedad de notificación obligatoria según la Resolución SENASA N° 153/2021. El análisis fue realizado por la Coordinación General de Epidemiología de la Dirección de Planificación y Estrategia de Sanidad Animal (DPYESA) y abarca el periodo 2010-2019. Durante el periodo establecido entre el 2010 y septiembre del 2017, la información se recopilaba en papel luego, a partir de septiembre 2017, el protocolo de notificación comenzó a completarse de forma online a través del Sistema Integrado de Gestión de Sanidad Animal (SIGSA). El sistema está en constante mejoramiento para lograr una alta calidad de la información. Situación epidemiológica en Argentina 2010-2019 Durante el período 2010-2019 se registraron 132 protocolos emitidos con un diagnostico presuntivo de carbunclo bacteridiano. Del total de notificaciones, en 120 (91%) se confirmó la sospecha, el resto fueron descartadas. El año que presentó mayor cantidad de focos confirmados fue el año 2010 con un total de 22 y el año con menor cantidad de confirmaciones fue el 2017 con un total de 4 focos confirmados, por lo que la línea de tendencia se visibiliza de forma descendente. En cuanto a las medidas de tendencia central para el total del periodo, la media y la mediana arrojan valores de 12 y 12,5 respectivamente (Grafico 1). Página 1 �Número de focos 25 20 15 10 5 0 2010 2011 2012 2013 2014 2015 2016 Año de notificación 2017 2018 2019 Gráfico 1: Focos confirmados de carbunclo según año de notificación. Argentina-Total país. Periodo 2010-2019 N=120 Fuente: elaboración propia – SENASA La provincia con mayor cantidad de focos de carbunclo confirmados fue la provincia de Buenos Aires con un total de 80 focos (67%) en los 10 años analizados, los mismos se distribuyeron en 31 partidos de dicha jurisdicción. Le sigue la provincia de La Pampa con 21 focos confirmados (18%) durante el mismo periodo y distribuidos en 8 partidos provinciales. Los 19 focos confirmados restantes se distribuyeron en 9 jurisdicciones, con menos de 10 focos según el caso, completando los 120 focos confirmados del total país en el total del periodo (Mapa 1). Mapa 1: Focos confirmados de carbunclo según provincia. Argentina. Periodo 2010-2019. N=120 Página 2 �Es interesante resaltar que en el año 2014 la provincia de Buenos Aires incorporó la vacunación anual de carbunclo como estrategia de prevención de la enfermedad. Analizando los datos históricos, con una confianza del 95%, se ve una diferencia estadísticamente significativa (p=0,0006) en la incidencia de la enfermedad en dicha provincia a partir del año 2014, pasando de un total de 60 focos confirmados en el primer periodo quinquenal 2010-2014 a 20 focos confirmados en el segundo quinqueño 20152019 (Anexo 1). En Santa Fe también la vacunación comenzó a ser obligatoria a partir de octubre del 2014. Sin embargo, no se observan diferencias significativas entre el período previo y el período posterior al cambio de estrategia de vacunación (p=0,5), debido a que hubo solo 7 casos notificados en la provincia, cinco antes del 2014 y dos después del 2014. La cantidad total de casos de carbunclo es muy pequeña para detectar diferencias estadísticamente significativas. En el mapa 2 se observa que la distribución geográfica de los focos a lo largo de los años se mantiene constante, apareciendo la mayoría de los focos en el centro del país. Mapa 2: Focos confirmados de carbunclo según provincia y año. Argentina. Periodo 2010-2019. N=120 El gráfico 2 muestra la distribución del total de focos confirmados de carbunclo de todo el periodo bajo análisis según los meses de notificación1. En el mismo podemos ver una marcada estacionalidad con una mayor incidencia de focos durante la época estival. Este dato podría ser de relevancia a la hora de tomar la decisión sobre el momento de la vacunación en aquellas provincias que utilizan esa estrategia como medida de prevención, ya que podría ser más eficaz la vacunación de carbunclo aprovechando el movimiento de 1 No se presentaron notificaciones de focos durante el mes de noviembre en ninguno de los años del periodo analizado. Página 3 �la hacienda durante la segunda campaña anti aftosa (octubre, noviembre) para que los animales lleguen con una alta inmunidad al periodo de mayor riesgo o exposición (enero, febrero, marzo). 35 Focos notificados 30 25 20 15 10 5 0 Mes de notificación Gráfico 2: Focos de Carbunclo según mes de notificación. Argentina- Total país. Periodo 20102019. N=120. Fuente: elaboración propia – SENASA El canal endémico nos permite ver la incidencia de carbunclo durante el año 2019 comparado con la incidencia histórica del periodo 2010-2018. La misma nos ayuda a detectar valores de casos por fuera de lo esperado para dicha enfermedad. La enfermedad es endémica en la Argentina, aunque se presenta en forma de brotes esporádicos. Si bien se la diagnostica en casi todos los meses del año, se presenta con más frecuencia en verano y otoño. La curva de casos notificados en el 2019 ha transcurrido dentro de la zona de alerta (más casos de lo esperado) durante gran parte del año salvo en el mes de marzo que transitó por la zona de seguridad. En los meses de enero, julio, septiembre, noviembre y diciembre no se notificaron casos en el SIGSA (Gráfico 3). Se debe tener en cuenta para el análisis del corredor endémico que se notifican pocos casos de carbunclo, con lo cual un leve aumento en el número de casos informados en un mes puede llevar a que la curva se ubique en la zona de alerta. Página 4 �7 6 5 4 3 2 1 0 Seguridad Éxito Alerta Brote 2019 Gráfico 3: Canal endémico mensual de Carbunclo año 2019. Argentina – Total País. Históricos 2010 a 2018. Fuente: elaboración propia – SENASA Al analizar los datos poblacionales durante el total del periodo analizado, estuvieron expuestos en los distintos establecimientos afectados un total de 101.557 animales que incluyen bovinos (93%), ovinos, caprinos, cerdos y equinos. Del total de animales susceptibles, el 1% (1045) enfermaron y murieron a causa de la enfermedad. En su mayoría los animales muertos fueron bovinos. En el grafico 4 puede observarse cómo se distribuyen dichos datos por año en el total de los 120 focos confirmados. Si bien la letalidad de la enfermedad es alta, la incidencia es muy baja y las acciones sanitarias aplicadas ni bien se notifica el brote permiten evitar la dispersión de la misma a más animales reduciendo las pérdidas económicas asociadas. 25000 20000 15000 10000 5000 243 81 137 84 119 122 5 4 2016 2017 149 101 0 2010 2011 2012 2013 2014 Animales susceptibles 2015 2018 2019 Animales muertos Gráfico 4: Distribución de animales susceptibles y muertos según año de notificación. ArgentinaTotal país. Periodo 2010-2019. Fuente: elaboración propia – SENASA En cuanto al origen de las denuncias que recibe el SENASA, las mismas se clasifican en: denuncias espontáneas, denuncias de terceros y denuncias de oficio. Las denuncias Página 5 �espontáneas son aquellas efectuadas por el productor afectado, las denuncias de terceros son las remitidas por productores ajenos al establecimiento, mientras que las denuncias de oficio son detecciones realizadas por el Organismo en sus actividades de rastreo epidemiológico, vacunaciones, baños precaucionales, instrucciones recibidas, aviso de detección en playas de faena o mercado terminal, etc. En el gráfico 5 se describe la distribución de los focos confirmados de carbunclo según su origen. En dicho gráfico puede observarse que más del 50% de las denuncias son realizadas por el productor afectado. Respecto al tiempo trascurrido entre el inicio del foco y la notificación del mismo al SENASA, la media es de 12,5 días y la mediana de 10, con un máximo de 47 días. El 76% de las notificaciones se realizaron dentro de la semana de inicio del foco. En relación al tiempo transcurrido entre la notificación del foco y la atención del mismo por parte del Organismo, la media es de 10 días debido a que el máximo en uno de los casos fue de 56, y con una mediana que arroja un valor de 3,5 días, el 82% de los focos fueron atendidos entre el mismo día o al día siguiente de ser notificados y el 98% dentro de la semana de notificación. 3% 22% 23% 52% De oficio Denuncia de terceros Denuncia espontánea sin dato Gráfico 5: Focos confirmados de carbunclo según origen de la denuncia. Argentina- Total país. Periodo 2010-2019. N=120. Fuente: elaboración propia – SENASA Los protocolos con los que se registran los focos de las enfermedades notificables pueden tener varios estados, para este análisis diferenciamos dos grandes grupos: los protocolos finalizados donde se realizó la carga de toda la información pertinente, el brote se dio por concluido y el protocolo se finalizó; y los protocolos no finalizados donde no se encuentra cargada la totalidad de la información y lo mismos aún se encuentran abiertos. El gráfico 6 muestra la proporción de protocolos finalizados en relación a los no finalizados por año de notificación. Página 6 �100% 90% 80% 70% 60% 50% 40% 30% 20% 10% 0% 2011 2012 2013 2014 2015 Finalizado 2016 2017 2018 2019 No finalizado Gráfico 6: Estado de los protocolos notificados por año. Argentina- Total país. Periodo 2010-2019. N=120. Fuente: elaboración propia – SENASA Conclusiones Como se desprende del informe, el carbunclo bacteridiano es una enfermedad endémica en Argentina, de baja incidencia, alta letalidad, presente en forma de brotes esporádicos y distribuidos en varias jurisdicciones, principalmente en la región central del país. La estacionalidad de la enfermedad es marcada y es importante a la hora de planear estrategias de prevención de la misma. Se destaca la importancia de la notificación ante la sospecha con el fin de conocer la epidemiologia de la enfermedad en nuestro país. La realización de un diagnóstico oportuno permite tomar las medidas de prevención y control de forma temprana por parte de los veterinarios locales y autoridades provinciales a fin de evitar que la enfermedad se disemine. Se debe tomar en consideración el potencial zoonótico de esta bacteria siendo esencial, para evitar casos humanos, eliminar de modo adecuado los animales muertos una vez confirmado el brote. Ante la denuncia, notificación o actuación de oficio en un brote de carbunclo el Veterinario Local adoptará las medidas establecidas en el Manual de Procedimientos de Atención de Casos y Focos, confeccionando los protocolos correspondientes, que consisten en interdictar el predio y extraer y enviar muestras para un análisis microbiológico que permita emitir un diagnóstico. Los animales muertos o sospechosos de haber muerto de carbunclo deben ser quemados sin despojarlos del cuero en el sitio mismo donde se encuentren. Para la eliminación de los cadáveres los métodos más comunes son el quemado y el enterramiento profundo (más de dos metros); previo al enterrado debe cubrirse con cal el cadáver. No está autorizado su desuello de los cadáveres. Para que el quemado sea eficaz debe reducirse el cadáver a cenizas, esto debe hacerse en el mismo lugar de muerte del animal para evitar sembrar el campo con los Página 7 �líquidos infectantes que pierde el cadáver por los orificios naturales2. La desinfección se hará de acuerdo con lo establecido en el Manual de Desinfección, extendiéndola a las cosas que han estado en contacto con los animales enfermos o muertos de esta enfermedad. Una vez confirmada la enfermedad se debe indicar el tratamiento facultativo de los animales enfermos y la inmunización obligatoria de los animales susceptibles. El personal encargado de atender a los animales debe entrar en los corrales sólo con ropas protectoras y debe estar informado sobre las medidas de protección personal y práctica de desinfecciones a realizar. Se prohibirá que personas con heridas tengan acceso a entornos en los que existan animales enfermos o sospechosos de padecer carbunco. Cuando el brote surge en las praderas éstas se evacuarán de inmediato, se roturarán y no volverán a ser utilizadas por animales. Está prohibido el sacrificio de animales enfermos o sospechosos. Las materias primas procedentes de los mismos se eliminarán de manera inocua. El tratamiento lo más precoz posible de los animales enfermos o sospechosos con altas dosis de penicilina o con otro antibiótico adecuado (estreptomicina, oxitetraciclina) se ha manifestado como método eficaz. Las medidas de aislamiento se levantarán si 20 días después de la eliminación de los animales enfermos no se volvieron a presentar casos de carbunco y se realizó la desinfección de cierre. 2 Para mayor información puede consultar el Manual de procedimientos de Carbunclo en el siguiente link: https://intranet.senasa.gob.ar/sites/default/files/archivos/25_carbunco_manual_completo-1.pdf Página 8 �ANEXO 1. Tabla 1: Focos confirmados de carbunclo según partido. Argentina-Total país. Periodo 2010-2019 N=120 Provincia/Partido BUENOS AIRES Adolfo Alsina Arrecifes Ayacucho Azul Benito Juarez Carlos Casares Corones Dorrego Coronel Suarez Dolores Gonzales Chaves Gral. Alvear Gral. Belgrano Gral. Lavalle Gral. Villegas Guamini Laprida Las Flores Loberia Magdalena - Punta Indio Mar Chiquita Olavarria Puan Rauch Saavedra Saladillo San Antonio de Areco Tapalque Tornquist Trenque Lauquen Tres Arroyos Villarino LA PAMPA Atreuco Conhelo Hucal Lihuel Calel Loventue Realico Toay Utracan SANTA FE Constitucion Las Colonias San Cristobal SAN LUIS Capital Gral. Pedernera La Capital CHACO Libertador Gral. San Martin NEUQUEN Chos Malal RIO NEGRO Adolfo Alsina Pichi Mahuida CORDOBA Rio Cuarto ENTRE RIOS Nogoya LA RIOJA Capital SANTIAGO DEL ESTERO Ojo de Agua Total general 2010 2011 2012 2013 2014 2015 2016 2017 2018 2019 Total 16 8 11 12 13 7 4 2 3 4 80 1 1 1 1 1 1 4 1 2 7 1 1 2 2 2 2 2 1 1 1 1 1 3 1 1 2 1 1 1 3 1 1 1 1 2 2 1 1 2 5 1 1 7 1 1 1 1 1 1 2 1 3 1 5 3 1 1 11 1 1 2 3 1 1 2 1 8 1 1 1 1 1 1 1 1 1 1 3 3 4 1 5 2 2 2 6 1 1 2 1 3 5 22 1 1 1 1 2 4 1 1 2 1 1 2 1 1 2 1 0 3 1 1 2 2 1 1 2 6 2 3 2 7 2 2 2 2 4 1 1 1 2 1 4 1 1 2 2 1 1 1 1 1 1 1 2 1 1 2 2 1 1 1 1 1 1 1 1 1 1 1 1 1 1 1 1 1 1 1 1 22 14 13 14 16 11 5 4 9 12 120 Página 9 � Dublin Core The Dublin Core metadata element set is common to all Omeka records, including items, files, and collections. For more information see, http://dublincore.org/documents/dces/. Title A name given to the resource Publicaciones SENASA Dublin Core The Dublin Core metadata element set is common to all Omeka records, including items, files, and collections. For more information see, http://dublincore.org/documents/dces/. Title A name given to the resource Informe de Notificaciones de Enfermedades Denunciables - Carbunclo bacteridiano. Publisher An entity responsible for making the resource available Servicio Nacional de Sanidad y Calidad Agroalimentaria Date A point or period of time associated with an event in the lifecycle of the resource 2020 Contributor An entity responsible for making contributions to the resource Coordinación General de Epidemiologia Dirección de Planificación y Estrategia de sanidad Animal Language A language of the resource Es Type The nature or genre of the resource Monografía Identifier An unambiguous reference to the resource within a given context B.S.0067 Abstract A summary of the resource. El carbunclo bacteridiano es una enfermedad infecciosa aguda, febril, que está producida por el Bacillus anthracis y se presenta con carácter esporádico o enzoótico; afecta a todos los mamíferos, incluido el hombre. Carbunclo https://biblioteca.senasa.gob.ar/files/original/277a213691160b612b5f47f0b70dd6f5.pdf b74fcda38bc623526879c2544784848a PDF Text Text MANUAL DE APOYO ORIENTATIVO PARA EL DIAGNÓSTICO DE LAS ENFERMEDADES DE AVES Y LAGOMORFOS QUE PUEDEN APARECER EN LAS PLANTAS DE TRANSFORMACIÓN PRIMARIA DIRECCIÓN NACIONAL DE INOCUIDAD Y CALIDAD AGROALIMENTARIA DIRECCIÓN DE INOCUIDAD DE PRODUCTOS DE ORIGEN ANIMAL COORDINACIÓN DE AVES, OVOPRODUCTOS, PRODUCTOS DE LA CAZA Y ESPECIES MENORES. �CRÉDITOS SERVICIO NACIONAL DE SANIDAD Y CALIDAD AGROALIMENTARIA Presidente: Méd. Vet. Marcelo Miguez Vicepresidente: Méd. Vet. José María Moreno Gerente General: Ing. Agr. Eduardo Dillon DIRECCIÓN NACIONAL DE INOCUIDAD Y CALIDAD AGROALIMENTARIA Director: Dr. Ernesto Ferrarese DIRECCIÓN DE INOCUIDAD DE PRODUCTOS DE ORIGEN ANIMAL Director: Dr. Juan Carlos De María COORDINACIÓN DE AVES, OVOPRODUCTOS, PRODUCTOS DE LA CAZA Y ESPECIES MENORES Coordinador: Dr. Malvestiti, Leonardo Jorge Redactores: Dr. Malvestiti, Leonardo Jorge. Dr. Vicari, Carlos Alberto. Dr. Ball, Julio Cesar. Dr. Roberto, Marcelo Mario. Dr. Otero, Sebastián Ricardo. Colaboradores: Dr. Ramos, Mariano. Dra. Espinoza, Cora. Dra. Borgna, Patricia. Diseño, ilustración y edición: Coordinación de Relaciones Institucionales, Información y Comunicación �ÍNDICE 01. Glosario 01 02. Listado de enfermedades de las aves de declaración obligatoria OIE 02 03. Técnica de necropsia de la aves 03 04. Descripción de las enfermedades de las aves 04 05. Listado de enfermedades de lagomorfos de declaración obligatoria OIE 05 06. Técnica de necropsia de los lagomorfos 06 07. Descripción de las enfermedades de los lagomorfos 07 08. Bibliografía 08 09. Anexos 09 �4 �01. GLOSARIO Abscesos: acumulación de pus en los tejidos orgánicos internos o externos. Aerosaculitis: inflamación de los sacos aéreos. Agente antimicrobiano: designa una sustancia natural, semisintética o sintética, que da muestras de actividad antimicrobiana (mata o inhibe el desarrollo de microorganismos). Se excluyen de esta definición los antihelmínticos y las sustancias clasificadas en la categoría de los desinfectantes o los antisépticos. Análisis del riesgo: designa el proceso que comprende la identificación del peligro, la evaluación del riesgo, la gestión del riesgo y la información sobre el riesgo. Artritis: inflamación de una articulación, la cual por su curso puede ser aguda, subaguda o crónica. Exudativa; aquella que presenta derramamientos. Ascitis: acumulación de líquido en la cavidad celómica (abdominal). Produce abultamiento fluctuante e indoloro del abdomen con sonido mate a la percusión. Puede ser exudativa o traumática. Aves de un día: designa las aves que tienen, como máximo, 72 horas después de haber salido del huevo. Aves ponedoras: designa a las aves mantenidas para la producción de huevos que no están destinados a ser incubados. Aves reproductoras: designa a las aves conservadas para la producción de huevos para incubar. Bolsa De Fabricio: glándula del sistema inmune, asociada a la cloaca y ligada a ella en su parte superior, a través de una hendidura. Bronquitis: inflamación aguda o crónica de la membrana mucosa de los bronquios. Brote de enfermedad o de infección: designa la aparición de uno o más casos de enfermedad o de infección en una unidad epidemiológica. Bursitis: inflamación de las bolsas sinoviales de las articulaciones. Candidiasis: infección de la piel y las mucosas producida por hongos del género Cándida. Canibalismo: es el acto o la práctica de alimentarse de miembros de la propia especie . El término se aplica a cualquier tipo de animal. Para el caso de aves son diversos grados de pérdida de tejidos, debido al picoteo del ano, dedos, plumas o alrededor de la cabeza.. 5 �Caquexia: Estado de involución general caracterizado por pérdida de peso, astenia e incapacidad para desarrollar actividades mínimas. Suele acompañar a estadios terminales de enfermedades crónicas. También suele aplicarse este término a un órgano determinado, cuando el mismo se encuentra afectado por un trastorno. Caseoso: tejido que, por necrosis, adquiere una consistencia semejante a la del queso. Caso: designa un animal infectado por un agente patógeno, con o sin signos clínicos manifiestos. Cavidad del cuerpo: en las aves, la cavidad torácica, abdominal y pélvica se hallan unidas, conformándola. Cianótica: coloración azul y alguna vez negruzca o lívida de la piel, debida a trastornos circulatorios. Cirrosis: inflamación crónica del tejido de cualquier órgano; cirrosis hepática, inflamación del hígado. Cólera: epizootia que suelen padecer las gallinas, palomas, ánades, faisanes, etc., caracterizada por su breve curso y gran mortalidad. Es 6 producida por un bacilo específico. Colibacilosis: infección producida por Escherichia coli. Congestión: acumulación excesiva o anormal de sangre en los vasos de una parte del cuerpo. Conjuntivitis: inflamación de la conjuntiva ocular. Control veterinario oficial: significa que la Autoridad Veterinaria conoce el lugar de mantenimiento de los animales y la identidad de su propietario o de la persona encargada de cuidarlos y puede, en caso de necesidad, aplicar medidas apropiadas de control zoosanitario. Convulsiones: contracción violenta, involuntaria, de naturaleza morbosa, de los músculos voluntarios, que determina movimientos irregulares, localizados en uno o varios grupos musculares o generalizados en todo el cuerpo. Costra: lesión secundaria a la desecación de un exudado o secreción (serosa, sangre o pus). Crónico: enfermedad o proceso de larga duración. Degenerados: de Degeneración: Alteración de los tejidos y/o estructuras anatómicas, con cambios químicos de las sustancias constituyentes y pérdida de los caracteres esenciales y funciones. Deshidratación: perdida excesiva de agua y sales minerales en un organismo. Diátesis: predisposición orgánica a contraer una determinada enfermedad. Dislocación: sacar algo de su lugar. Referido a huesos y articulaciones. Disnea: dificultad de respirar. DNSA: Dirección Nacional de Sanidad Animal, SENASA. �Edema: hinchazón blanda de una parte del cuerpo, que cede a la presión y es ocasionada por la infiltración serosa de los tejidos. Emaciación: enflaquecimiento extremo por causa morbosa. Empastamiento: estado de una parte infiltrada o edematosa no inflamada agudamente; sensación de la mano que palpa. Encéfalomielitis: inflamación del cerebro y médula espinal combinadas. Enfermedad: designa la manifestación clínica y/o patológica de una infección. Enfermedad de declaración obligatoria: designa una enfermedad inscripta en una lista por la Autoridad Veterinaria y cuya presencia debe ser señalada a esta última en cuanto se detecta o se sospecha, de conformidad con la reglamentación nacional. Enfermedad emergente: designa una infección nueva consecutiva a la evolución o la modificación de un agente patógeno existente; una infección conocida que se extiende a una zona geográfica o a una población de la que antes estaba ausente; un agente patógeno no identificado anteriormente o una enfermedad diagnosticada por primera vez y que tiene repercusiones importantes en la salud de los animales o de las personas. Enfermedades de la Lista de la OIE: designa la lista de enfermedades transmisibles aprobada por el Comité Internacional de la OIE y presentada en el Capítulo 2.1.1. del Código Terrestre. Enteritis: inflamación de la membrana mucosa de los intestinos. Equivalencia de medidas sanitarias: designa la situación en la que la(s) medida(s) sanitaria(s) propuesta(s) por el país exportador para sustituir las del país importador, ofreciendo el mismo nivel de protección. Erradicación: designa la eliminación de un agente patógeno en un país o una zona. Erupción: aparición y desarrollo en la piel o en las mucosas de granos, manchas o vesículas. Grano o mancha de la piel. Estertores: respiración anhelante, generalmente ronca o silbante, propia de la agonía y del coma. Ruido de burbuja que se produce en ciertas enfermedades del aparato respiratorio y se percibe por la auscultación. Etiología: estudio o teoría de las causas de una enfermedad. Exantema: erupción de la piel, de color rojo más o menos subido, que desaparece momentáneamente con la presión del dedo, va acompañada o precedida de calentura y termina por descamación; como el sarampión, la escarlatina y otras enfermedades. Exsicosis: estado morboso producido por la insuficiencia de ingreso de agua en el organismo. 7 �Exudado: salida desde un reservorio de una sustancia, generalmente de origen infeccioso y/o inflamatorio. Exudativa: que produce exudación. Fibrinosos: agregados de coágulos blandos. Flácido: flaco, flojo, sin consistencia. Fluido: derrame o evacuación de un líquido normal o patológico. Además puede emplearse este término para el paso de un fluido por un conducto, como la sangre en una arteria o el aire en los bronquios. Focos: centro principal de un proceso morboso. Folículos: Cripta o pequeño saco en forma de dedo de guante, en una mucosa o en la piel, generalmente con función secretoria. Fotofobia: sensibilidad anormal a la luz; puede ser manifestación de enfermedades oculares como la queratitis, uveítis y úlceras cornéales, de enfermedades neurológicas como la migraña, hemorragia subaracnoidea y la meningitis o de patología mental como la depresión. Gangrena: muerte de los tejidos por falta de riego sanguíneo, generalmente a causa de una herida seguida de infección y putrefacción. Hemorragia: salida o derrame de sangre de los vasos sanguíneos. Hígado Graso: que ha sufrido la infiltración adiposa. Hipertrófico: aumento excesivo del volumen de un órgano. Inflamación: alteración patológica en una parte cualquiera del organismo, caracterizada por trastornos de la circulación de la sangre y, frecuentemente, por aumento de calor, enrojecimiento, hinchazón y dolor. 8 Infiltración: acumulación en un tejido, de una sustancia extraña al mismo. Lesión: toda alteración, discontinuidad patológica o traumática de un órgano o tejido. Letargo: síntoma de varias enfermedades nerviosas, infecciosas o tóxicas, caracterizado por un estado de somnolencia profunda y prolongada. Necropsia: autopsia o examen de los cadáveres. Necrosis: muerte celular, de un tejido u órgano, causada por agentes físicos, químicos y/o biológicos. Neumonía: inflamación del tejido pulmonar. Pulmonía. Nódulo/s: tumefacción circunscripta o conglomerado de estructuras con forma sólida, puede ser poco visible y detectarse por la palpación. OIE: la Organización Mundial de Sanidad Animal. Pápula: pequeña elevación sólida y circunscripta de la piel o mucosas. �Patogenia: ciencia que estudia el desarrollo de las enfermedades. Sinusitis: inflamación de los senos nasales. Puede ser purulenta o no. Parálisis: privación o disminución del movimiento en una o varias partes del cuerpo. Sufusiones: derrame especialmente sanguíneo; hemorragia con infiltración de tejidos. Paresia: parálisis leve que consiste en la debilidad de las contracciones musculares. Patogenicidad: de patogenia: Parte de la patología, que estudia cómo se engendran las enfermedades. Pericarditis: inflamación aguda o crónica del pericardio. Perihepatitis: inflamación de la cápsula de Glisson, o de la capa peritoneal del hígado. Peritonitis: inflamación del peritoneo. Petequias: mancha de color rojo púrpura, debida a efusión interna de sangre, del tamaño de la cabeza de un alfiler, perfectamente delimitada sobre la piel o mucosas y que puede cambiar de color al azul o amarillo. (Hemorragia petequial). Placas: área o zona que difiere del resto del tejido. Postración: abatimiento o agotamiento extremos. Pseudo membranas: falsa membrana o neomembrana, especialmente la producción morbosa que solo tiene de membrana la apariencia, estando constituida por un exudado fibrinoso coagulado que engloba leucocitos y bacterias. Tendosinovitis: inflamación aguda o crónica de la vaina de un tendón o de este y su vaina. Tortícolis: espasmo doloroso, de origen inflamatorio o nervioso, de los músculos del cuello, que obliga a tener la cabeza torcida e inmóvil. Tumefacto De tumefacción: aumento de tamaño de una zona por inflamación, tumor o edema; hinchazón. Tumores: tumefacción, aumento de tamaño o hinchazón de carácter patológico. Es uno de los signos fundamentales de la inflamación. Masa de células transformadas, con crecimiento y multiplicación anormales. Dependiendo de su posible evolución, se diferencia tumor benigno formado por células muy semejantes a las normales, que permanece en su lugar de inicio y no produce metástasis; y tumor maligno o cáncer, de carácter grave, invasivo, que produce metástasis. Variólico: relativo a la viruela. Secreción: sustancia que se vierte interna o externamente desde el organismo. Puede o no ser de origen infeccioso. Síndrome: conjunto de síntomas que ocurren en una enfermedad. Sinovitis: inflamación de la membrana sinovial de las grandes articulaciones. 9 �02. LISTADO DE ENFERMEDADES DE LAS AVES DE DECLARACIÓN OBLIGATORIA INFLUENZA AVIAR ALTAMENTE PATÓGENA ENFERMEDAD DE NEWCASTLE BRONQUITIS INFECCIOSA AVIAR LARINGOTRAQUEÍTIS INFECCIOSA AVIAR TUBERCULOSIS AVIAR HEPATITIS VIRAL DEL PATO ENTERITIS VIRAL DEL PATO CÓLERA AVIAR VIRUELA AVIAR TIFOSIS AVIAR BURSITIS INFECCIOSA (ENFERMEDAD DE GUMBORO) ENFERMEDAD DE MAREK MICOPLASMOSIS AVIAR (M. GALLISEPTICUM) CLAMIDIOSIS AVIAR PULLOROSIS 10 �03. TÉCNICA DE NECROPSIA DE LAS AVES DATOS ANAMNÉSICOS O ANTECEDENTES CLÍNICOS Estos datos son muy importantes, ya que sumados a la experiencia del necropsista orientan al mismo a llegar al diagnóstico de la enfermedad presente en el animal o lote de animales. Todos los datos anamnésicos se deben volcar a una ficha u hoja de protocolo, la cual deberá estar perfectamente identificada con un número; el mismo, servirá para poder identificar cualquier estudio complementario que se realice. También, se deberá consignar fecha de ingreso de la muestra, nombre y apellido del propietario, nombre del establecimiento, dirección, localidad y número telefónico. Estos datos son imprescindibles en caso de diagnosticarse una enfermedad exótica o de denuncia obligatoria ante las autoridades sanitarias. RAZA Se debe consignar si el lote está compuesto por animales de raza pesadas, semipesadas o livianas. Las razas pesadas y semipesados son más propensas a padecer afecciones del aparato locomotor o afecciones de la quilla debidas a su peso. Las razas livianas son más sanguíneas, por lo tanto más propensas a golpes y picaje. ORIGEN Es conveniente conocer el origen o procedencia de las aves. Existe un grupo importante de enfermedades que son trasmitidas a través del huevo y, por lo tanto, el problema no reside solo en el criador que recibe el producto, sino también en el propietario de los reproductores. Por lo tanto, las medidas adecuadas se deberán tomar en ambas explotaciones. EDAD En las explotaciones avícolas, el conocimiento de la edad de los animales adquiere una gran importancia. Existe un gran número de enfermedades que afectan solamente a animales jóvenes, como las hay, que afectan solamente a animales adultos. TIPO DE EXPLOTACIÓN Los sistemas de explotación más frecuentes son: reproductores, ponedoras de huevos para consumo y parrilleros. Existen enfermedades que afectan con mayor frecuencia a cada una de estas explotaciones, por lo tanto su importancia económica y profilaxis son distintas. TIEMPO QUE SE OBSERVA LA ENFERMEDAD Conocer cuánto tiempo hace que comenzaron los síntomas o la mortandad nos indicará la evolución de la enfermedad, de 11 �esta manera podemos dividirlas en agudas, subagudas y crónicas. Este dato nos permite conocer el período de incubación de la misma, dato éste muy importante en las enfermedades avícolas. MORBILIDAD Indica la cantidad de animales enfermos en el lote, y debe ser expresado en porcentaje. MORTALIDAD Indica la cantidad de animales muertos en el lote, se expresa también en porcentaje. Estos dos índices son muy importantes, pues nos dan pautas que orientan significativamente en el diagnóstico. Algunas enfermedades presentan altos índices de morbilidad con baja mortalidad, mientras que en otras, ambos índices son muy similares. CONSUMO DE ALIMENTO Y AGUA Se debe consignar con el objeto de determinar la disminución o aumento de los mismos. En casi todas las enfermedades, las aves disminuyen el consumo de alimento por falta de apetencia y movilidad, en las etapas febriles del consumo de agua está aumentado. Esto debe también deslindarse de los consumos aumentados normalmente en las épocas estivales. 12 VACUNAS Se deben conocer perfectamente los planes de vacunación establecidos en el criadero. Estos datos permiten interpretar ESTUDIOS SEROLÓGICOS posteriores, establecer posibles errores con respecto a la edad o vía de vacunación, etc. MEDICAMENTOS Se debe conocer si las aves fueron medicadas, qué droga se utilizó, por qué vía se suministró, y cuánto tiempo recibieron la medicación. Estos datos son muy importantes en casos de enfermedades bacterianas, ya que se pueden observar lesiones particulares de una determinada enfermedad, pero no se puede hacer el aislamiento del agente, la causa es que los animales estaban recibiendo un antibiótico, dato que se desconocía. También es importante en los casos de haberse suministrado una medicación, poder determinar si fue efectiva o no, y cambiarla si fuera necesario. SÍNTOMAS En este rubro consignaremos los síntomas observados por el propietario, estos datos debemos evaluarlos con precaución. Algunas veces los datos pueden ser equivocados o estar tergiversados ya sea por el encargado, el propietario o el mismo veterinario que nos trae la muestra, con el fin de disimular posibles errores de manejo. Otras veces el error se produce por desconocimiento o mala interpretación de los mismos, por esta razón los síntomas deben ser corroborados por el necropsista durante el examen externo de los animales. Los síntomas deben dividirse en: Respiratorios: por ejemplo; boqueo, exudado nasal u ocular, hipertrofia de los senos infraorbitarios, etc. Digestivos: por ejemplo; diarrea, aquí se debe consignar color, aspecto, etc. Nerviosos: por ejemplo; parálisis, paresias, torsión de cuello opistótonos, etc. Producción de huevos: se deberá consignar si está afectada la misma, ya sea en calidad o cantidad. INSPECCIÓN EXTERNA DEL AVE Una vez cumplimentados todos los datos anamnésicos, comienza a trabajar el necropsista, realizando la inspección externa de los animales. Corrobora primeramente si la sintomatología observada por el avicultor se corresponde con la que manifiestan las aves en ese momento. Se deberá observar el plumaje, si se encuentra brilloso, erizado, sucio, si las �plumas se encuentran limpias o aglutinadas con materia fecal alrededor de la cloaca. Es importante mirar la pigmentación de patas, pico y piel, coloración de la cresta, carúnculas y barbillones, estado de los párpados, forma y tamaño de las pupilas, coloración del iris, fosas nasales (presencia o ausencia de exudados), senos infraorbitarios (hipertrofia o no de los mismos) En la boca, observar la presencia de exudados, seudomenbranas, placas, etc. Se deberá prestar atención a la presencia de parásitos externos debajo del ala y alrededor de la cloaca. Las articulaciones se deberán observar con detenimiento sobre todo la tarsiana, así como las almohadillas plantares. (Pueden observarse desviaciones, exudados inflamatorios, hipertrofia, etc) En la quilla podemos encontrar exudados inflamatorios, desviaciones de la misma. Por último, debemos observar la presencia o ausencia de fracturas, traumas, heridas o malformaciones, como así también todo dato de interés que considere importante. SACRIFICIO DEL AVE Antes de sacrificar las aves, se extrae sangre; de este modo se obtiene suero para eventuales estudios serológicos. La extracción se puede realizar por punción cardíaca o a través de la vena axilar, en este momento se puede inyectar unos pocos centímetros de aire, los que serán suficientes para producir la muerte del animal. 13 �Otros métodos de sacrificio pueden ser: Punción Occipito - Atlantoide (esto se realiza con punzón, produciendo la destrucción de la masa encefálica) Torsión de cuello, con este método se produce la fractura de las vértebras cervicales. Sangrado a blanco, esto se logra con la sección de las venas yugulares o palatinas, o también por punción cardiaca extrayendo la sangre con una jeringa grande. Se debe tener en cuenta que el método de sacrificio será elegido de acuerdo a la sintomatología observada. Si, por ejemplo, los animales presentan signos nerviosos nunca se debe pensar en pacificar las aves por punción Occipito - Atlantoide; del mismo modo, si los animales presentan signos respiratorios, no se deben seccionar las venas yugulares, ni utilizar la torsión del cuello. El método de la embolia gaseosa tiene como ventaja que conserva la estructura de todos los órganos, pero como las aves no sangran, éstos se hallan pletóricos de sangre, y la sección de los vasos en la necropsia dificulta la observación por la gran acumulación de sangre. Por lo tanto, el necropsista es el que decidirá a su juicio, y de acuerdo a la inspección externa, el método de sacrificio. NECROPSIA Se denomina necropsia a la acción de examinar un cadáver (de nekros: muerto y opsie: ver). Los sinónimos más frecuentes son examen pos mortem o autopsia. La necropsia tiene como objetivo confirmar, rectificar o establecer un diagnóstico sobre un animal muerto. Hace un llamado a la observación, al conocimiento de la salud y la patología, utiliza la técnica de la disección. Es únicamente en el curso de una necropsia donde se tiene la posibilidad de examinar en detalle todos los órganos de un animal y rápidamente, darse una precisa idea de su estado. Por lo tanto, el examen de la necropsia ofrece las mejores facilidades para el establecimiento de un diagnóstico. Ante la falta de lesiones macroscópicas el operador tiene la posibilidad de extraer muestras para realizar exámenes complementarios que ayuden al diagnóstico. 14 Cuando se trate de establecer un diagnóstico en un grupo de animales, el estudio de las lesiones en conjunto permitirá arribar a un diagnóstico preciso. La necropsia se efectúa sobre un animal muerto en forma espontánea o sobre un animal enfermo o supuestamente enfermo que se ha sacrificado para tal fin, por lo tanto existe el riesgo de favorecer la liberación de elementos patógenos al medio ambiente. Es por esto que la necropsia nunca deberá realizarse hasta no estar seguro de la ausencia de riesgos de contaminación del medio ambiente y del operador. Una necropsia detallada requiere de la sección total del animal, por lo tanto se podrá realizar solo una vez. Una buena necropsia debe ser sistemática, precisa y completa. TÉCNICA Primeramente se debe introducir el ave en un recipiente que contenga agua con el agregado de una solución antiséptica. (Amonio cuaternario, espadol, etc) con el objeto de mojar las plumas y evitar que éstas se diseminen por la sala de necropsia. �Se coloca el ave en decúbito dorsal, se realizan dos incisiones en la piel, entre la quilla y las patas, luego se tracciona de las patas abriendo las articulaciones coxofemorales, de esta forma el ave queda en condiciones para comenzar la necropsia. Se realiza un ojal en la piel por debajo de la quilla y con tijera se hace una incisión hasta la comisura del pico, y hacia abajo, hasta la cloaca. Se tracciona la piel hacia los laterales dejando al descubierto los músculos Antes de tocar cualquier órgano, se deben observar los sacos aéreos pectorales del cuello y que de otra forma serían destruidos. de las patas. Se deben mirar con detenimiento los sacos aéreos interesternales, En este momento claviculares, axilares, torácicos anteriores, toracicos posteriores y se debe observar el abdominales. tejido subcutáneo y los En este momento se deben tomar muestras necesarias para los músculos. exámenes bacteriológicos. Se realiza un ojal Hacia el lado derecho del necropsista se debe buscar la unión del en los músculos estómago glandular y el esófago, donde, con tijera se realiza un corte, abdominales por debajo de la quilla, se a continuación se retira todo el aparato digestivo y el bazo (estómagos, intestino e hígado), terminando la extracción con un corte en el recto cortan los músculos pectorales a la altura cerca de la cloaca. Separar todos los órganos y dejarlos sobre la mesa, el intestino se separa de los estómagos con un corte a la altura del de las articulaciones píloro, se debe observar el páncreas (se encuentra incluido en el asa condrocostales, con duodenal). Abrir el estómago glandular y muscular por la línea media, tijera o costótomo se observando el contenido, las mucosas, etc. cortan las costillas hasta la clavícula. Disponer el intestino en forma de U invertida, abriéndolo en su totalidad, verificando el contenido, estado de las mucosas, presencia o Una vez cortada la no de parásitos, etc. clavícula y el hueso coracoides, con la En animales jóvenes observar con detenimiento la bolsa de Fabricio mano se vuelca la (ubicada por debajo de la cloaca con el animal en decúbito dorsal), quilla hacia un lado, tamaño, presencia de exudado, estado de los pliegues, etc. quedando expuesta la cavidad torácica y Retirar el corazón realizando un corte en los grandes vasos, observar el abdominal. pericardio y miocardio. Se observa el corazón, En la cavidad abdominal queda el aparato urogenital, en los machos el hígado, el estómago se deben observar los testículos, forma, tamaño, coloración, en las muscular y una hembras el ovario izquierdo (el derecho esta atrofiado), su grado de porción del intestino. 15 �desarrollo, lo que indica si el ave esta en postura, (si los hubiera) observar los óvulos, su tamaño, forma, color, etc. Retirar el oviducto en su totalidad, observar la presencia de lesiones. Se observan los riñones formados por tres lóbulos (anterior, medio y posterior) y ubicados centro-lateralmente a la columna vertebral, observar los úteros hasta su desembocadura en la cloaca. Luego se comienza la observación de digestivo y respiratorio. Se abre por la comisura del pico, se observa la lengua, pliegue palatino, paladar blando y fosa palatina. Luego se abre el esófago comenzando en la faringe hasta el buche, observando el contenido y estado de las mucosas. La inspección del aparato respiratorio se inicia en la laringe, donde comienza la apertura de la traquea, la que se abre en toda su extensión hasta la bifurcación de los bronquios, los que se cortan introduciéndonos en los pulmones, se observa la presencia de exudados en traquea o bronquios y estado de las mucosas. 16 Los pulmones se separan de la pared costal, a la que están fuertemente adheridos, se observa el color, la consistencia, etc. Por último se retira la traquea y los pulmones del cadáver. Para concluir con la inspección del sistema respiratorio, debemos observar las fosas nasales y los senos infraorbitales. Para la inspección de éstos últimos, se introduce la tijera por el orificio nasal y se corta paralelamente al pico por debajo del ojo, posteriormente, se corta el pico en forma perpendicular al eje y a la altura de los orificios nasales. A continuación, debemos observar el Sistema Nervioso Central, para tal fin se corta la piel por encima de los huesos craneanos, con una tijera se realiza un corte en los huesos frontales por detrás de la órbitas oculares, y dos cortes laterales por los huesos parietales que, partiendo del anterior, se unen en el orificio occipital. Se retira la tapa ósea, quedando a la vista cerebro y lóbulos ópticos (note que el cerebro no tiene circunvoluciones). Con tijera curva se retira el sistema nervioso central. El examen del Sistema Nervioso Periférico comienza con la observación de los neumogástricos, los que se localizan a lo largo del cuello, incluidos en el paquete vascular, del que deben ser disecados y observados. El plexo braquial se localiza a la entrada del pecho, los nervios intercostales se observan después de retirar los pulmones. El plexo lumbar y sacro se localizan por debajo del lóbulo medio del riñón, y por último, los nervios ciáticos entre los músculos aductores de la pata. Se debe verificar la disposición y forma de los folículos de las plumas dejando expuesta la piel, esto se realiza retirando las plumas en las zonas de los muslos, pecho, región dorsal, y especialmente a la altura del cuello. Por último, se deben observar los huesos largos, comprobar su dureza o fragilidad quebrando uno con ambas manos. Realizar un corte longitudinal a fin de comprobar el estado de la médula ósea y de las zonas de osificación, también se deben abrir las articulaciones principalmente la del tarso. �04. DESCRIPCIÓN DE LAS ENFERMEDADES DE LAS AVES INFLUENZA AVIAR (IA) DECLARACIÓN OBLIGATORIA (Ver manual de procedimientos específicos de la Dirección Nacional de Sanidad Animal.) DEFINICIÓN La influenza aviar o gripe aviar comúnmente gripe del pollo y gripe de los pájaros, designa a una enfermedad provocada por un virus que afecta a las aves, aunque algunas variantes pueden afectar al hombre y otros mamíferos. Esta afección es altamente contagiosa. ETIOLOGÍA Virus tipo ARN, de la familia Orthomyxoviridae, género Influenzavirus. Esta familia incluye varios virus clasificados en tres tipos, A, B ó C. El tipo A es el único que provoca infecciones naturales en las aves. Los tipos B y C infectan de modo primario a humanos y, ocasionalmente a cerdos. Todos los virus aislados altamente patógenos son del tipo A subtipos H5 y H7. Un subtipo del virus de influenza aviar H5N1, apareció en 1997 en Hong Kong, identificado como la fuente más probable de una futura pandemia de gripe humana. TRANSMISIÓN • Contacto directo con secreciones de aves infectadas, especialmente heces. • Alimentos, agua, equipos y ropa contaminados. • Huevos rotos contaminados pueden infectar a los pollitos. 17 �RESISTENCIA A LA ACCIÓN FÍSICA Y QUÍMICA Temperatura Se inactiva a: 56°C/3 horas; 60°C/30 min. pH Lo inactiva el pH ácido. Productos químicos Inactivado por agentes oxidantes, detergentes, disolventes de lípidos. Desinfectantes Soluciones de formol y compuestos de yodo. Supervivencia Sigue siendo viable durante mucho tiempo en los tejidos, las heces y el agua. SIGNOS CLÍNICOS Los signos de la enfermedad son en extremo variables y dependen de la especie afectada, edad, sexo, infecciones concomitantes, virus, factores ambientales, etcétera. La patogenicidad del virus de influenza, va a determinar su ubicación en el organismo. Los menos patógenos van a atacar el aparato respiratorio superior y a medida que aumenta la patogenicidad se distribuirá en el tracto digestivo, pudiéndose aislar hasta en el tejido muscular. Las infecciones pueden variar clínicamente en: subclínicas (no patogénicas), respiratoria aguda y/o urogenital (baja patogenicidad) y enfermedad sistémica severa (alta patogenicidad). Por lo tanto la IA puede manifestarse como una enfermedad respiratoria, entérica, reproductiva o neurológica. Los signos clínicos descriptos pueden incluir: descenso en la producción de huevos, huevos en fárfara o deformados, hinchazón de la cabeza, párpados, cresta y barbillones; cianosis de los barbillones, crestas y patas, problemas respiratorios con descargas nasales claras, mucopurulentas o sanguinolentas; tos; trastornos nerviosos, incoordinación; plumaje erizado; inapetencia; depresión y diarrea. Cualquiera de estos signos se puede producir solo o en varias combinaciones. En caso de explotaciones de aves a piso y en jaula, se observan signos nerviosos como tortícolis, opistótonos, imposibilidad de pararse, temblor de cabeza y cuello, cresta y barbillones edematosas a necróticos, edema en cabeza y patas, hemorragias subcutáneas en patas, edema, hemorragias viscerales, congestión y hemorragias en pulmones. En algunos casos, la enfermedad es rápidamente fulminante y se encuentran las aves muertas sin signos previos. Otras veces la enfermedad curso al principio con una enfermedad respiratoria aguda con aumento en mortalidad y declinación en la producción de huevos. 18 �DIAGNÓSTICO El período de incubación es de 3-5 días. • Depresión severa, inapetencia. • Marcada disminución de la producción de huevos. • Edema facial con crestas y barbillas tumefactas y cianóticas. • Hemorragias petequiales en las superficies de las membranas internas • Muertes súbitas (la mortalidad puede alcanzar 100%). • Aislamiento del virus necesario para un diagnóstico definitivo. • Aerosaculitis. DIAGNÓSTICO DIFERENCIAL • Cólera aviar agudo. • Enfermedad de Newcastle. • Enfermedades respiratorias, especialmente laringotraqueítis infecciosa. BRONQUITIS INFECCIOSA AVIAR DECLARACIÓN OBLIGATORIA DEFINICIÓN Enfermedad vírica aguda de la gallina, que produce signos respiratorios, problemas renales (broilers) y alteraciones en la puesta; disminución de la puesta de huevos; disminución de la calidad de los huevos: huevos en fárfara, con la cáscara rugosa y deformada, clara acuosa. Disminución de la incubabilidad (10-20%). Presencia de “falsas ponedoras”. Aumento del índice de transformación en pollos barrilleros. ETIOLOGÍA Coronavirus, Virus RNA pleomórficos, con envoltura y proyecciones glicoproteicas. Sensibles al calor y a la mayoría de desinfectantes. Más de 50 serotipos por SN: Massachusetts M-41 (respiratorio, ovario), Connecticut, Arkansas, Australia T (oviducto, aparato renal), Gray y Holte (renal). Cepas europeas (Dutch) D207; D212 (oviducto). Emergencia de nuevos serotipos. PATOGENIA Sensibilidad: afecta únicamente a las gallinas, la gravedad es inversamente proporcional a la edad y mayor al inicio de la puesta. La forma renal más frecuente en razas pesadas. Transmisión: vía aerógena a partir de exudados nasales y traqueales o de las deyecciones. Contagio directo o indirecto (muy contagioso). Algunas aves quedan portadoras y eliminan virus durante meses. Otros factores predisponentes: infecciones previas por virus con tropismo respiratorio (NC, LT, TRT) o por virus inmunosupresores (Gumboro, anemia infecciosa del pollo). Otras infecciones respiratorias: 19 �E. coli, Haemophilus paragallinarum, Mycoplasma gallisepticum. Malas condiciones higiénicas y de manejo: frío, calendario intensivo de vacunaciones, stress. Periodo de incubación: 18-36 horas. • Vía de entrada: aerógena multiplicación en tráquea, sacos aéreos o pulmón. • Digestiva: multiplicación en mucosa del proventrículo. • Viremia corta y multiplicación en células epiteliales del aparato respiratorio. • Según cepa del virus y edad del ave; oviducto y riñón. • Bolsa de Fabricio, tonsilas cecales y cloaca. SIGNOS CLÍNICOS Evolución en 10-14 días. 1 día - 1 mes: signos respiratorios: tos, estornudos, exudados nasales y oculares, estridor, disnea. Depresión, apilamiento en busca de calor, disminución del consumo de pienso, adelgazamiento. Morbilidad hasta el 100% y mortalidad hasta el 30%. Muerte por asfixia y aplastamiento. 5-20 semanas: signos respiratorios moderados. Atrofia del oviducto: aparición de falsas ponedoras (ponedoras internas). Cepas nefropáticas (en aves 3-6 semanas): depresión, signos respiratorios, plumas erizadas, sed intensa, diarrea blanquinosa, y hasta un 30% mortalidad. Más de 20 semanas: ligeros signos respiratorios. Caída de la puesta hasta el 50%. Recuperación lenta (4-6 semanas) sin volver al ritmo de producción normal. Disminución de la calidad: huevos en fárfara, cáscaras arrugadas, cáscaras frágiles, huevos deformados, claras acuosas. LESIONES MACROSCÓPICAS Inflamación catarral en tráquea, cavidad nasal y senos infraorbitarios. Atrofia de oviducto. Nefritis y palidez en riñones. DIAGNÓSTICO Signos respiratorios en pollitos, alta morbilidad, pero baja mortalidad. Caída de la puesta hasta del 50% y huevos de mala calidad. Presencia de alto porcentaje de falsas ponedoras. Mortalidad en pollos parrilleros con lesiones renales. 20 DIAGNÓSTICO DIFERENCIAL Signos respiratorios: Influenza aviar, Newcastle, Laringotraqueítis, Micoplasma gallisepticum, Coriza infeccioso (Haemophilus paragallinarum), Aspergilosis (Aspergillus fumigatus), Enfermedad de Gumboro, Deficiencias nutricionales, Intoxicación por sal (falta de agua), Síndrome de caída de la puesta (adenovirus EDS-76), Encefalomielitis aviar, Situaciones de stress. �BURSITIS INFECCIOSA AVIAR (ENFERMEDAD DE GUMBORO) DECLARACIÓN OBLIGATORIA DEFINICIÓN Es una enfermedad viral causada por un virus del género Avibirnavirus, de la familia Birnaviridae. La enfermedad clínica sólo la presentan los pollos, si bien se pueden infectar pavos, patos y avestruces. Únicamente se ven afectadas a nivel clínico las aves jóvenes. ETIOLOGÍA Es un virus Birnaviridae, género Birnavirus, virus RNA sin envoltura. Dos serotipos: serotipo 1: amplia distribución, cepas que causan inmunosupresión (no signos clínicos directos). Cepas altamente virulentas, alta mortalidad serotipo 2 (pavos y pollos), cepas no patógenas ni inmunosupresoras. PATOGENIA El grupo de aves afectado mostrará una morbilidad muy elevada acompañada de una depresión grave en la mayoría de las aves, lo que dura unos 5–7 días. La mortalidad se eleva drásticamente durante 2 días y a continuación desciende de forma rápida durante los siguientes 2–3 días. Normalmente, muere entre el 5% y el 10% de las aves, pero la mortalidad puede alcanzar el 30–40%. Vías de transmisión: oral, conjuntival, respiratoria. Fómites (virus muy resistente al medio ambiente). No demostrada vía vertical. Periodo de incubación muy corto: 2-3 días. SIGNOS CLÍNICOS Los principales signos clínicos son diarrea acuosa, plumaje erizado, apatía, anorexia, temblores y postración. LESIONES MACROSCÓPICAS Entre las lesiones post mortem destacan la deshidratación de los músculos con numerosas AMBIENTE CONTAMINADO (HECES) GUSANOS, ÁCAROS hemorragias equimóticas en oral muslo y pectoral, primera x en linfocitos y macrófagos intestinales 24h el agrandamiento y decoloración 24-48h anaranjada de los Bolsa de Fabricio (órgano diana) Segunda x en linfocitos riñones. Las bolsas de Linfocitos B precursores circulantes Fabricio muestran las lesiones diagnósticas principales. Las aves Necrosis y erosión Bazo, riñón, timo, hígado que mueren presentan una bolsa agrandada e inflamada con una decoloración Atrofia Bolsa inmunosupresión amarilla pálida. Pueden presentar hemorragias intrafoliculares y en 21 �algunos casos, la bolsa puede estar completamente hemorrágica con la apariencia de una cereza oscura. En muchas bolsas estarán presentes edemas de color pajizo peribursales. Incremento moco intestinal, esplenomegalia con focos de necrosis. Forma subclínica: pollos menores de 3 semanas: infecciones oportunistas, bajo rendimiento y productividad. Forma clínica: pollos mayores de 3 semanas: picaje de la cloaca, Anorexia, depresión, diarrea acusada (deshidratación, mal plumaje), Recuperación en 5-7 días. DIAGNÓSTICO Signos Clínicos. Animales mayores de 3 semanas: aparición rápida, alta morbilidad, rápida recuperación. Lesiones bolsa de Fabricio. En animales menores de 3 semanas: aumento infecciones secundarias. DIAGNÓSTICO DIFERENCIAL Anemia Infecciosa aviar, Leucosis linfoide, Enfermedad de Marek, Hepatitis por cuerpos de inclusión (adenovirus), Enfermedad de Newcastle, Bronquitis Infecciosa, Coccidiosis. MICOPLASMOSIS AVIAR DECLARACIÓN OBLIGATORIA (Ver directivas de la Dirección Nacional de Sanidad Animal.) DEFINICIÓN Es una enfermedad que puede producirse por diferentes factores, algunos de estos son determinantes, ocasionados por el Micoplasma Gallisepticum y el Micoplasma Synoviae. Influyen también factores como la mala ventilación, vacunación, despique, sobrepoblación o cualquier otro factor causante de estrés. Otros microorganismos pueden complicar el cuadro, como por ejemplo, bacterias como E. Coli y otros microorganismos del genero Proteus. TRANSMISIÓN Puede ser vertical a través del huevo u horizontal por aerosoles, agua, alimento y portadores sanos. SIGNOS Dificultad respiratoria, estornudos, estertor bronquial, caída en la producción de huevos, disminución del consumo de alimento, baja tasa de crecimiento, disminución del porcentaje de nacimientos. LESIONES MACROSCÓPICAS Pericarditis y perihepatitis con exudado fibrino purulento, opacidad en sacos aéreos, tendinosinovitis purulenta, peritonitis, salpingitis. MORBI- MORTALIDAD Es variable de acuerdo con la presentación del caso. Se agrava si hay deficiencias de manejo y/o si se combina con otros agentes infecciosos. DIAGNÓSTICO El diagnóstico clínico se basa en los signos y las lesiones antes mencionadas. El diagnóstico de laboratorio se realiza por aglutinación (placa, tubo) inmunofluorecencia e inhibición de la hemoaglutinación (Ver manuales de procedimientos operativos DNSA). 22 �CLAMIDIOSIS AVIAR DECLARACIÓN OBLIGATORIA DEFINICIÓN La clamidiosis aviar (CA) está causada por la bacteria Chlamidophila psittaci. Originalmente, la CA que afecta a humanos y a todo tipo de aves se denominó psitacosis, pero con posterioridad se introdujo el término ornitosis para referirse a la enfermedad adquirida de aves salvajes o domésticas o que se presenta en ellas, mientras que el término psitacosis se reserva para la enfermedad adquirida de aves psitácidas o que se presenta en ellas. Se ha descrito en varias partes del mundo la clamidiosis en el avestruz y en el ñandú. ETIOLOGÍA La clamidiosis aviar (CA) está causada por la bacteria Chlamidophila psittaci, perteneciente al género Chlamydia, dividida en dos géneros, Chlamydia y Chlamydophila. Todas las cepas aviares conocidas se encuentran ahora incluidas en la especie Chlamydophila psittaci. Las cepas aviares comprenden al menos seis serotipos que se relacionan con las especies de aves de las que se aíslan normalmente. La clamidiosis que se presenta naturalmente en las especies de mamíferos y que no se contrae de las aves, está causada por cepas del organismo claramente diferentes. PATOGENIA Para las aves en cautiverio, el período de incubación varía de tres días a varias semanas; sin embargo, las infecciones latentes son comunes y la enfermedad activa puede presentarse después de años de exposición. En aves de vida libre, la transmisión natural se produce principalmente por vía aerógena y, en segundo término, por vía digestiva. Las aves que sufren la enfermedad clínicamente, como aquellas que son portadoras, eliminan la bacteria con sus secreciones nasales y sus heces. La infección en las aves, tiene su punto de partida al tomar contacto con materiales contaminados o en la inhalación del polvillo resultante (aerosoles). La difusión del agente se facilita en aquellas aves que cohabitan en estrecho contacto, o que se desplazan en bandadas. La eliminación del agente infeccioso entre las aves con clamidiosis latente puede activarse con diversos factores de estrés, como el hacinamiento, el transporte y el enfriamiento. Las aves pueden parecer sanas, pero son portadoras de C. psittaci y pueden eliminar el agente en forma intermitente, el cual es resistente a la desecación permaneciendo infeccioso por varios meses. 23 �LESIONES MACROSCóPICAS La necropsia de las aves afectadas revela a menudo un aumento del bazo y del hígado, inflamación fibrinosa de los sacos aéreos, pericarditis y peritonitis. Además se puede observar caquexia, anorexia; las lesiones también pueden incluir sinusitis, traqueitis, rinotraqueitis, inflamación de los sacos aéreos, neumonía y enteritis. DIAGNóSTICO La infección puede presentarse en forma asintomática, o bien, producir una enfermedad aguda, subaguda o crónica. En el cuadro agudo los signos clínicos, al igual que los observados en otras enfermedades sistémicas, son somnolencia, anorexia, plumas erizadas, escalofríos y debilidad general. También se pueden agregar síntomas digestivos (diarrea, deposiciones amarillentas), respiratorios (descarga nasal, tos, estornudo y dificultad respiratoria) y oculares (conjuntivitis uni o bilateral con abundante flujo lacrimal y fotofobia) y una reducción en la producción de huevos. Muchas aves, especialmente las aves psitácidas viejas, pueden carecer de síntomas clínicos; sin embargo, liberan el agente durante períodos largos. El cuadro crónico lleva a un progresivo desmejoramiento del estado general y pérdida de peso del ave. El porcentaje de mortalidad puede alcanzar al 2,5%, valor que no llama la atención de los criadores de estas aves, permitiendo entonces una mayor difusión del microorganismo. Los casos de cuadros clínicos evidentes pueden alcanzar una mortalidad del 30–50%. 24 �ARTRITIS VIRAL DEFINICIÓN La artritis viral, denominada también tenosinovitis, es una infección causada por Reovirus, que afecta las aves de carne (parrillero y reproductores pesados) caracterizada por artritis y tenosinovitis (fundamentalmente del tarso y metatarso). ETIOLOGÍA 1. El agente etiológico es un reovirus. Varios serotipos han sido identificados. Desarrolla bien en huevos embrionados susceptibles, en cultivos celulares principalmente en células de riñon de pollos jóvenes. 2. Todos los serotipos de reovirus tienen antígenos precipitantes comunes, esta prueba puede ser usada para identificar las aves que han sido infectadas por el virus. 3. Los reovirus son sumamente resistentes al calor, y presumiblemente a muchos factores tarsianas y las vainas ambientales. tendinosas contienen exudado inflamatorio PATOGENIA y sanguinolento. El reovirus es eliminado por las heces de Los cartílagos los pollos infectados. Se trasmite en forma articulares pueden horizontal a pollos susceptibles y pueden estar ulcerados y las estar contaminados los huevos externamente membranas sinoviales (cáscara). Se ha demostrado la transmisión de la articulación a través del huevo. Puede persistir en aves y tendones pueden infectadas por un período de por lo menos estar hemorrágicas. 289 días. La transmisión por artrópodos de 2. Las aves que no los reovirus de las aves virémicas no ha sido pueden extender la probada pero se supone que es posible. articulación tarsiana a menudo tienen SIGNOS CLÍNICOS roturas del tendón Los primeros síntomas son la dificultad en la de los gastrocnemio, marcha manifestada por cojeras, inflamación justamente por de la articulación tarsiana y del tendón en encima de la su recorrido por la caña. La mayoría de las articulación, los aves se encuentran en buena condición, pero algunas están retrasadas en el crecimiento. La músculos de la pata están hemorrágicos, mortalidad es usualmente baja. estos pueden Si hay ruptura de los tendones de una o ambas fusionarse por patas las aves quedan inmovilizadas o muy adherencias. disminuidas en su movilidad. Se observa la hemorragia a través de la piel en la zona de la DIAGNÓSTICO DIFERENCIAL ruptura. LESIONES MACROSCóPICAS 1. En la fase aguda de la enfermedad hay hinchazón e inflamación de los tendones y hojas tendinosas justo encima de la articulación del tarso y a lo largo de la caña, en su parte posterior. Las articulaciones 1. Sinovitis. 2. Estafilocococcia de las patas. 3. Perosis. 4. Discondroplasias. 5. Enfermedad de Marek. 25 �LARINGOTRAQUEÍTIS INFECCIOSA AVIAR (DIFTERIA AVIAR) DECLARACIÓN OBLIGATORIA (Ver manual de procedimientos específicos de la Dirección Nacional de Sanidad Animal.) DEFINICIÓN La laringotraqueitis infecciosa es una enfermedad viral de curso agudo, que afecta a las gallinas, faisanes y que se caracteriza por disnea marcada, tos, boqueo y expectoración de un exudado mucohemorrágico. ETIOLOGÍA El agente causal es un virus Herpes, el que produce cuerpos de inclusión intranucleares en las células epiteliales de la tráquea, conjuntiva y membrana corioalantoidea de los huevos embrionados. Existe una sola cepa de virus, pero hay variabilidad en cuanto a su patogenicidad. PATOGENIA Las aves que han pasado la enfermedad son la fuente de infección, los animales vacunados, y en ciertas circunstancias fomites contaminados. La puerta de entrada es aerógena, siendo las aves adultas más susceptibles. El período de incubación es de aproximadamente entre 6 y 12 días. La difusión horizontal dentro del lote es muy lenta, a diferencia de otras enfermedades virales. SIGNOS CLÍNICOS Cepas patógenas: 1. Disnea bien manifiesta, boqueo, rales y posición muy característica durante la inspiración. 2. Expectoración muco-hemorrágica. 3. Portabilidad del 50-70%, mortandad del 10 a 20%. La enfermedad persiste en el lote entre 2 y 6 semanas. Cepas de baja patogenicidad: Conjuntivitis, lagrimeo, inflamación de los senos infraorbitarios, escara nasal y caída de la postura. 26 LESIONES MACROSCóPICAS 1. Severa laringotraqueitis hemorrágica, la cual puede extenderse a nivel de bronquios, también pueden estar afectados los sacos aéreos. En aves muertas se puede encontrar exudado pseudomenbranoso o caseoso en tráquea. 2. Presencia de sangre en la comisura del pico, boca, cabeza y plumas. 3. En brotes producidos por cepas de baja patogenicidad, es posible observar solamente conjuntivitis y sinusitis. DIAGNóSTICO DIFERENCIAL Se debe diferenciar de: 1. Enfermedad de Newcastle 2. Micoplasmosis 3. Difteroviruela aviar 4. Coriza infecciosa. �TIFUS DE LAS AVES (VER MANUAL DE PROCEDIMIENTOS ESPECÍFICOS DE LA DIRECCIÓN NACIONAL DE SANIDAD ANIMAL.) DEFINICIÓN La tifosis aviaria es una enfermedad bacteriana de curso agudo o subagudo que ataca principalmente a gallinas y pavos. SIGNOS CLíNICOS En los casos agudos pueden morir aves sin sintomatología clínica; en el curso de los ETIOLOGÍA primeros días las aves El agente etiológico es un bacilo, Gram muestran diarrea, negativo, inmóvil, llamado Salmonella pérdida de apetito, gallinarum. Esta bacteria posee algunos palidez de crestas y antígenos comunes a los de la Salmonella barbillones. La diarrea pullorum (productora de la pullorosis), por esta razón ambas Salmonellas dan reacción de es fétida acuosa y de color amarillento. aglutinación cruzada. PATOGENIA La infección se produce por la ingestión de alimentos y agua contaminada con excreciones de aves clínicamente afectadas o portadoras inaparentes. La puerta de entrada es digestiva, siendo las aves adultas y las razas pesadas las más susceptibles. La morbilidad y mortalidad son muy variables, pudiendo llegar esta última hasta más de un 60%. El período e incubación es de 4 a 6 días y la muerte en los casos agudos ocurre 48 horas después de aparecidos los síntomas. Las aves infectadas que sobreviven, se trasforman en portadoras inaparentes de la enfermedad, trasmitiendo la infección a la descendencia, esto ocurre debido a que la Salmonella se acantona en el ovario. Pullorosis LESIONES MACROSCóPICAS 1. Hepatomegalia, coloración bronceada del hígado, con presencia de pequeños focos de coloración blanco amarillenta. 2. Esplenomegalia e hipertrofia renal. 3. Enteritis en la porción anterior del intestino delgado algunas veces con presencia de pequeñas úlceras. 4. Palidez de crestas y barbillones, la sangre puede presentar aspecto aguachento. DIAGNóSTICO DIFERENCIAL Cólera aviar Histomoniasis Hepatitis vibriónica Hepatitis vírica a cuerpos de inclusión 27 �PULLOROSIS ENFERMEDAD DE MAREK DECLARACIÓN OBLIGATORIA DECLARACIÓN OBLIGATORIA (Ver manual de procedimientos específicos de la Dirección Nacional de Sanidad Animal.) DEFINICIÓN Es una enfermedad viral, neoplástica, que se presenta en gallinas; se caracteriza por la infiltración de varios plexos nerviosos y/u órganos internos con presencia de células neoplásticas y pleomórficas. DEFINICIóN La pullorosis es una salmonelosis específica de las aves. Hace 20 años esta enfermedad estaba muy extendida y causaba mucha mortalidad. Afecta fundamentalmente a gallinas, pavos y en un menor grado a los palomos. ETIOLOGÍA y PATOGENIA El agente productor de la pullorosis es la Salmonella pullorum. El contagio se puede producir por infección por el huevo. A diferencia de otras salmonellas que contaminan el huevo al ser puesto, en este caso la infección ya se encuentra en el interior antes de la puesta. Los embriones en estos casos suelen morir durante la incubación, aunque también pueden nacer. Infección por contacto. Infección por intermediarios. El calzado y la ropa pueden ser vehículos de contagio al transmitir la infección de un sitio a otro. SINTOMATOLOGÍA El periodo de incubación es de 2 a 5 días. ETIOLOGÍA La enfermedad es producida por un virus de la familia Alphaherpesvirinae, género Mardivirus DNA, la mayor parte de los virus aislados son serológicamente indistinguibles, el virus desarrolla bien en cultivos celulares de riñon de embrión de pollo y fibroblastos de embrión de pato. Produce inclusiones intranucleares en estos cultivos celulares o en el epitelio del folículo de la pluma de pollos infectados. Es bastante resistente a los factores ambientales. PATOGENIA Los pollos infectados diseminan el virus que está en las células descamadas del folículo de la pluma, el que infecta a muchos otros pollos susceptibles que inhalan estas células descamadas. Los portadores infectados pueden o no estar enfermos clínicamente. La enfermedad es sumamente contagiosa y estas células descamadas pueden diseminarse a grandes distancias, las mismas son posiblemente el mayor medio de difusión y diseminación de la enfermedad. Los pichones enfermos presentan debilidad general, falta de apetito y una mayor apetencia por el calor. La transmisión de la enfermedad a través del huevo no ha sido satisfactoriamente Los excrementos aparecen blancos y muy demostrada. Si ésta se produce la hace en muy fluidos, éstos pueden secarse en los plumones poca cantidad. que rodean la cloaca y obstruiría, produciendo un hinchazón en el vientre. Se sospecha que pueda producirse la difusión a través de un escarabajo (alphiotobuis DIAGNóSTICO diaperinus) que vive en las camas y que a Además de la necropsia, el diagnóstico de la veces se alimenta de cadáveres de pollos pullorosis se basa en las pruebas serológicas infectados. realizadas con la sangre de los animales vivos. El papel de otras aves en la difusión de la enfermedad es desconocido, sin embargo, algunas aves han sido afectadas con el virus. Es razonable, por lo tanto, pensar que otras aves pueden diseminar el virus. 28 �SIGNOS CLíNICOS 1. Forma nerviosa o neural: paresias o parálisis de las patas, cuello, párpados son observados. Las aves con lesiones de nervio ciático a menudo están caídas con una pata hacia delante y otra hacia atrás. 2. Forma ocular. El iris está gris y la pupila tiene forma irregular, puede estar excéntrica. Las aves con lesiones oculares están ciegas o tienen una visión deteriorada. 3. Forma cutánea: las áreas afectadas de la piel presentan folículos tumorales, deformados, más levantados y rugosas. Algunas aves, aparentemente, se recuperan de estas lesiones pero posteriormente mueren de otras manifestaciones de enfermedad Marek. 4. Forma aguda (visceral): la enfermedad tiene una presentación aguda y la mortalidad crece rápidamente alcanzando su pico en pocas semanas, para luego disminuir poco a poco. Las lesiones neoplasicas afectan principalmente los órganos internos. LESIONES MACROSCóPICAS Se observa una hipertrofia de los nervios periféricos con decoloración de los mismos que aparecen grisáceos-amarillentos, es necesario observar varios nervios para encontrar las lesiones (neumogástiricos, ciáticos, plexo braquial, plexo lumbosacro, intercostales). Tumores linfoides son observados en las vísceras fundamentalmente en hígado, bazo, riñones, pulmones, gónadas y corazón. Hay lesiones tumorales en piel y músculos esqueléticos. Hay decoloración del iris (color grisáceo) y deformación de la pupila en casos de presentación ocular. No es frecuente la lesión en Bolsa de Fabricio. DIAGNÓSTICO DIFERENCIAL 1. Leucosis lindoidea 2. Enfermedad de Newcastle 3. Tuberculosis 4. Histomoniasis 5. Avitaminosis (riboflavina) 6. Ojo gris por causas genéticas. ENFERMEDAD DE NEWCASTLE DECLARACIÓN OBLIGATORIA (Ver manual de procedimientos específicos de la Dirección Nacional de Sanidad Animal.) DEFINICIóN La enfermedad de Newcastle es de origen viral, contagiosa y letal, afecta a las aves domésticas y silvestres causándoles alta morbilidad y mortalidad, las que dependen de la virulencia de la cepa del virus, del grado de inmunidad a la vacunación, de las condiciones ambientales y del estado de las aves de la explotación. ETIOLOGÍA La ENC es causada por un virus de la familia Paramyxoviridae, del género Rubulavirus. Las cepas se clasifican de acuerdo a su grado de patogenicidad y virulencia en: lentogénicas, mesogénicas y velogénicas, es decir, de baja, moderada y alta patogenicidad, respectivamente. Estas últimas constituyen un serio problema sanitario y comercial para la avicultura. El virus no afecta a humanos, sin embargo, las personas, vehículos, equipos o herramientas, son las fuentes primarias que transportan la infección de una granja a otra. PATOGENIA Las fuentes de transmisión del virus entre las aves son las secreciones respiratorias y heces, así como los cuerpos de las aves muertas. El virus se transmite durante el período de incubación (2 a 15 días) por un período limitado durante la convalecencia. La transmisión es horizontal. Sin embargo, se ha demostrado que algunos psitácidos transmiten durante más de un año el virus de la enfermedad de Newcastle de manera intermitente. SIGNOS CLíNICOS La severidad de estos signos está relacionada con el tipo de cepa actuante, especie afectada, dosis, edad, estado inmune, ruta de exposición y condiciones ambientales. En los casos agudos se presenta la mortalidad sin otras manifestaciones clínicas. Se puede observar disnea, tristeza, debilidad, postración y muerte, la cual puede alcanzar 100%. Aquellas aves que no mueren en la fase aguda pueden presentar diarrea verdosa, torticolis, temblores 29 �musculares, parálisis de alas y de patas. Otra forma de presentación es con trastornos respiratorios severos, seguidos por signos neurológicos, caída de la producción de huevos y generalmente ausencia de cuadros gastrointestinales; la morbilidad puede alcanzar 100%, con una mortalidad en aves jóvenes de hasta 90% y en adultos 50%. En brotes de campo causados por algunas cepas, se pueden producir cuadros respiratorios, caída de la producción de huevos y puede durar varias semanas, con una mortalidad generalmente baja, excepto en aves susceptibles muy jóvenes. Los virus lentogénicos, usualmente, no causan enfermedad en las aves adultas; sin embargo, en pollos jóvenes pueden causar cuadros respiratorios con mortalidad cuando están presentes otros patógenos. LESIONES MACROSCóPICAS No existen lesiones patognomónicas asociadas con ninguna de las formas de la enfermedad. La presencia y severidad de las lesiones están relacionadas con los diferentes factores de patogenicidad ya 30 descritos. Cuando el sistema respiratorio está afectado se observan lesiones hemorrágicas y congestión de la tráquea, en algunos casos acompañados de aerosaculitis con exudado catarral. En aves de postura se observan óvulos flácidos y degenerados, hemorragias y palidez de otros órganos reproductores, así como yemas de huevos en la cavidad abdominal. La presencia de lesiones hemorrágicas en el tracto gastrointestinal, es un criterio que se ha empleado para diferenciar las cepas velogénicas viscerotrópicas de las neurotrópicas y estas lesiones son frecuentes en proventrículo, ciego, cloaca, tonsilas cecales, tracto intestinal y necrosis en la pared intestinal. DIAGNÓSTICO DIFERENCIAL 1. Cólera aviar 2. Influenza aviar 3. Laringotraqueítis 4. Viruela aviar (forma diftérica) 5. Psitacosis 6. Micoplasmosis 7. Bronquitis infecciosa 8. También errores de manejo, tales como falta de agua, aire, alimentación �DIFTERO VIRUELA AVIAR DEFINICIÓN La Difiero-Viruela Aviaria (DVA), es una enfermedad viral que afecta a las gallinas, pavos y otras aves ornamentales y silvestres, que se caracteriza por la presencia de lesiones cutáneas en las partes desprovistas de plumas y/o por lesiones en las mucosas del aparato digestivo y respiratorio superior. ETIOLOGÍA La DVA es causada por un virus POX. Las 4 cepas de virus más importantes están estrechamente relacionadas, y en condiciones naturales son especie-específicas. Estas son: Virus gallina, virus pavo, virus paloma y virus canario. Estos virus poseen grado de inmunidad cruzada, propiedad ésta utilizada para el control de la enfermedad por medio de la vacunación. PATOGENIA 1. La descamación epitelial, a partir de las formaciones costrosas, contiene virus el cual persiste en el ambiente, particularmente en las camas por varios meses. A partir de ese material las aves se infectan penetrando el virus a través de abrasiones cutáneas. 2. Ciertos mosquitos (Culex - Aedes) y también otros artrópodos chupadores pueden trasmitir el virus de animales enfermos a susceptibles. La difusión por esta vía dentro del lote de aves es rápida. 3. La penetración de virus da lugar a una corta viremia y la aparición de las lesiones cutáneas o diftéricas, solas o combinadas. El período de incubación es de cuatro a diez días. LESIONES MACROSCóPICAS 1. Lesiones cutáneas en cabeza, cuello o patas, que siguen una secuencia de pasos, a saber: pápulas, nódulos, hemorragia y costra. En general en las aves predominan las lesiones papulosas-costrosas. 2. Presencia en áreas fibrinonecróticas en las mucosas: boca, senos, cavidad nasal, conjuntiva, faringe, laringe, tráquea y esófago. 3. Forma atípica semejante a coriza infecciosa. 4. En los pavos la lesión más común es la cutánea con una marcada proliferación del tejido, formando nódulos, principalmente en la cabeza. 5. En las palomas la presentación más típica es la diftérica con lesiones en boca, faringe y laringe. 6. En los canarios la presentación es muy grave llegando a morir hasta el 100 % de los animales, muchas veces sin lesiones macroscópicas, cuando los animales permanecen vivos por un tiempo, pueden aparecer lesiones cutáneas alrededor de los ojos, pico y patas. SIGNOS CLíNICOS En las aves la presentación es solapada y la enfermedad se hace evidente con la presentación de las lesiones cutáneas ya descriptas. La difusión dentro del lote en general es lenta. El cuadro epizootiológico en general es: a. baja mortalidad, presentación frecuente en verano, poca ganancia de peso, pérdida de vigor, etc. b. disnea, inapetencia, secreción ocular, y nasal. La mortalidad puede llegar hasta el 50%. DIAGNóSTICO DIFERENCIAL 1. Laringotraqueítis infecciosa. 2. Coriza Infecciosa. 3. Avitaminosis A. 31 �DERMATITIS NECROTICA DEFINICIÓN Es una enfermedad que afecta a los pollos y pavos en crecimiento (4 a 16 semanas de vida), con incidencia baja que en los lotes afectados puede llegar al 60%. Se caracteriza por la presencia de áreas gangrenosas en la piel, acompañadas por una severa inflamación de los tejidos subyacentes (celulitis). ETIOLOGÍA Los distintos géneros de bacterias aisladas son: - Clostridium Perfringens tipo A - Clostridium septicum - Estafilococo spp. - Escherichia Coli PATOGENIA 1. Lesión primaria traumática puede ser producida por: heridas, traumatismos, canibalismo, etc. 2. Invasión secundaria de bacterias como: Estafilicocos spp, Escherichia coli, que producen anaerobiosis y entonces hay desarrollo de clostridium. 3. Existen mecanismos predisponentes, entre los que podemos mencionar: mal manejo, deficiencias inmunitarias, Enfermedad Infecciosa Bursal, Aflatoxicosis y otras afecciones como: adenovirus, deficiencias nutricionales, reovirus, (Síndrome de mala absorción) y Artritis viral. SIGNOS CLÍNICOS Necrosis de la piel y tejidos más profundos, en las zonas de muslos, pechuga, alas, patas y región lumbar. A nivel de la piel se observa dermatitis necrótica gangrenosa con pérdida de epitelio y plumas. A nivel muscular se observa miosis serohemorrágica con fragmentación de las fibras musculares y pérdida de las estriaciones. A nivel de los órganos podemos observar: hepatomegalia con focos de necrosis, allí se puede aislar el agente, riñones y corazón infartados con hemorragias petequiales. DIAGNóSTICO DIFERENCIAL Las lesiones son muy características, aunque se debe diferenciar de la díatesis exudativa por carencia de vitamina E. 32 �LEUCOSIS LINFOIDEA DEFINICIÓN La leucosis linfoidea es causada por un leucovirus. Es una enfermedad neoplástica que afecta a aves semimaduras y maduras, caracterizada por una difusión lenta dentro del lote, la mortalidad es baja pero persistente, con neoplasia de la bolsa de Fabricio, con metástasis a otros órganos internos, especialmente el hígado, bazo y riñones. SIGNOS CLíNICOS - Las aves afectadas no presentan síntomas de la enfermedad. Las aves enfermas en su última etapa presentan emaciación y palidez de crestas y barbillones. ETIOLOGÍA - Puede observarse 1. Leucosis Linfoidea y otras enfermedades una hipertrofia del neoplásticas tumorales correspondientes al abdomen con ascitis grupo Leucosis/sarcoma son causadas por demostrable a la un grupo estrechamente relacionado de RNA leucovirus. El grupo se subdivide en 5 grupos, palpación o examen clínico. denominados A, B, C, D y E. 2. Los virus del grupo L/S estimulan un grupo - La osteopetrosis ocasionalmente específico de anticuerpos en las gallinas acompaña a L.L y infectadas. Estos anticuerpos permiten la identificación serológica de las aves infectadas, se manifiesta por una hipertrofia de pero estas pruebas son engorrosas y de poca los huesos largos, aplicación en gran escala. especialmente de las PATOGENIA cañas. La hipertrofia 1. La más importante vía de difusión de la es bilateral y enfermedad es por transmisión vertical. Las simétrica. ponedoras infectadas transmiten la infección a través del huevo a algunos o toda su progenie. DIAGNóSTICO DIFERENCIAL Estas aves infectadas pueden diseminar el 1. Enfermedad de virus intermitentemente o continuamente Marek durante toda su vida. 2. Tuberculosis 2. El virus está presente en la saliva y las 3. Coligranuloma de heces de las aves infectadas y se difunde Hijarre lateralmente a las aves susceptibles. 3. Algunas aves son virémicas es probable que 4. Reticuloendeteliosis los artrópodos que se alimentan de estas aves virémicas puedan difundir la enfermedad. Hay poca información al respecto para comprobar esta posibilidad. LESIONES MACROSCóPICAS 1. Las lesiones se presentan frecuentemente en aves de 4 meses de edad y mayores, cuando éstas se aproximan a la madurez sexual. 2. Las lesiones que se observan en los órganos internos son focales o difusas, neoplasias de color blanco o grisáceo en la bolsa de Fabricio, hígado, bazo o riñones. Otros órganos pueden ser afectados pero menos frecuentemente. El hígado se encuentra con hipertrófia y nodular. Las lesiones de hígado, bazo y riñones recuerdan mucho a las producidas por Enfermedad de Marek. 33 �COCCIODIOSIS DE LAS AVES DEFINICIÓN Es una enfermedad de las aves y de muchas especies animales producidas por protozoarios que, salvo excepciones, afecta primordialmente al tracto intestinal produciendo enteritis y diarrea. de Eimeria que este actuando. SIGNOS CLíNICOS La sintomatología depende de la especie de coccidio OCURRENCIA que esté actuando. Es una enfermedad común en los pollos, El signo clínico que menos frecuente en los pavos, patos, gansos, casi siempre está faisanes y muchas otras aves. Si bien las presente es la diarrea aves jóvenes son las más atacadas, puede en intensidad y tipo ocurrir en aves adultas susceptibles. El calor, de exudado, las hay la humedad y el hacinamiento favorecen la desde muy leves a aparición de brotes agudos. muy sanguinolentas. Los otros signos ETIOLOGÍA que acompañan son El agente etiológico es un protozoario de género la deshidratación, Eimeria, habiéndose descrito en las gallinas anemia, apatía, 9 especies distintas que se diferencian por la somnolencia y retardo forma, tamaño, tiempo de esporulación, período en el desarrollo, de prepotencia, localización preferencial en los aves de postura hay diversos sectores del intestino, patogénia, etc. disminución en la En la gallina se describen las siguientes: producción de huevos. La mortalidad varían Nombre de la Localización considerablemente de Eimeria una especie a otra. Intestino medio Eimeria mitis LESIONES Duodeno Eimeria hagani MACROSCóPICAS Varían como los Duodeno Eimeria praecox signos y van desde Duodeno Eimeria mivati exudado mucoso, moco sanguinolento a Duodeno Eimeria acervulina verdaderas hemorragia Intestino medio Eimeria maxima intestinales (necatrix y tenella), con la Recto y ciego Eimeria brunetti presencia de gran Intestino medio Eimeria necatrix cantidad de sangre y coágulos. La Ciego Eimeria tenella localización de las lesiones también PATOGENIA depende de la especie Los coccidios tienen ciclo directo, los ooquistes actuante. eliminados con las heces por el ave infectada, esporulan en el medio ambiente en condiciones DIAGNÓSTICO de temperatura y humedad adecuadas. Al DIFERENCIAL ser ingeridos por animales susceptibles se 1. Enteritis ulcerativa liberan los esporozoitos, los que parasitan las 2. Enteritis necrótica células epiteliales del intestino, multiplicándose 3. Histomoniasis primero en forma asexual y luego sexualmente, 4. Enfermedad de provocando la destrucción de las células. La Gumboro gravedad del cuadro depende de la especie 5. Pullorosis 34 �ENCEFALOMIELITIS AVIARIA DEFINICIÓN Encefalomielielitis Aviaria (EMA) o tremor epidémico es una infección de las gallinas, pavos, faisanes y codornices, caracteriza en aves jóvenes por una ataxia progresiva y parálisis, frecuentemente se observa temblores de cabeza y cuello. Los animales adultos infectados no muestran sintomatología. se observa el tremor. Los pollos que caen postrados son pisados por otros y mueren. 1. Durante la fase aguda de la infección en reproductores y durante un período de aproximadamente un mes, algunas ponedoras diseminan el virus a través del huevo. La mayoría de los pollos que nacen de estos huevos infectados muestran síntomas de la enfermedad en el momento de nacer o a los pocos días. Los pollos infectados eliminan virus a través de las heces, las que pueden difundir en forma horizontal el virus a pollos sanos de la misma camada. 2. La transmisión de la enfermedad en adultos susceptibles es desconocida y puede variar. Cuando los lotes derivan de fuentes múltiples casi todas las aves tienen anticuerpos, mientras que los derivados de una misma fuente, frecuentemente están libres de anticuerpos, esto demuestra que la transmisión horizontal es importante en lotes grandes y de fuentes diversas. LESIONES MACROSCóPICAS La mayoría de las aves no se observan lesiones macroscópicas. Algunas áreas focales grises en la musculatura del proventrículo se han descrito, pero normalmente son muy difíciles de ver. La morbilidad es variable, puede llegar al 60%. Los pollos con síntomas raramente se recuperan en forma ETIOLOGÍA completa. Los que La EMA es causada por un picornavirus. No existen diferencias serológicas entre los distintos sobreviven se atrasan en el crecimiento y virus aislados, a pesar de que pueden variar en no hay una normal su tropismo tisular. Todos son enterotrópicos, producción de huevos. pero ciertas cepas son más neurotrópicas que Puede haber secuelas otras y varían en su patogenicidad. de visión disminuida o El virus de EMA desarrolla en saco vitelino cataratas. de huevos embrionados y en una variedad de Las aves adultas cultivos celulares. raramente presentan Está presente en las heces de las aves infectas síntomas, puede y sobrevive en ellas por lo menos durante 4 haber un leve semanas. descenso en el registro de postura. PATOGENIA DIAGNÓSTICO DIFERENCIAL 1. Enfermedad de Newcastle 2. Encefalomielitis esquina SIGNOS CLíNICOS 3. Disturbios En pollitos, la sintomatología se presenta nutricionales en el nacimiento o puede aparecer hasta la séptima semana de vida. Sin embargo, éstos se (raquitismo, presentan con más frecuencia entre la primera Encefalomalacia, y tercera semana de vida. Hay ataxia progresiva, Deficiencia de Riboflavina) indiferencia, parálisis, postración, tremor de cabeza y cuello. Cuando se excitan los animales 35 �HISTOMONIASIS DEFINICIÓN Histomoniasis es una enfermedad causada por un protozoario que afecta a los pollos, pavos, gallina de Guinea, gansos, codornices y posiblemente otras especies y se caracteriza por la presencia de lesiones en el ciego y el hígado. ETIOLOGÍA El agente etiológico es un protozoario denominado Histomona meleagridis, asistido en su carácter patógenos por bacterias secundarias. En trabajos experimentales con ausencia de bacterias, la histomona aparece como no patógena. La histomona meleagridis es flagelado en el lumen del ciego, pero adquiere forma ameboidea en los tejidos. La Histomona meleagridis se destruye rápidamente por los desinfectantes y por factores ambientales, a menos que se encuentre protegida dentro de lombrices en huevo de Heterakis gallinarum. PATOGENIA La transmisión de la Histomonas meleagridis, aves susceptibles, se realiza por tres vías: 1. Puede ser ingerida de heces frescas. Esta ruta probablemente sea la menos importante. 2. Puede ser ingerida dentro de los huevos de Heterakis gallinarum, que es un parásito común de pavos y gallinas. Entro de los huevos, las Histomonas pueden sobrevivir durante meses o años. La histomona es liberada en el intestino cuando se ingiere el huevo. Luego esta invade las paredes del ciego e inicia la enfermedad. 3. La histomona puede ser ingerida con la larva de heterakis gallinarum, que se encuentra en los tejidos de la lombriz de tierra. De la ingestión de la lombriz resulta entonces una infección. SIGNOS CLíNICOS 1. Los signos clínicos se observan entre los 7 a 11 días postinfección. Inicialmente hay indiferencia, anorexia moderada, alas caídas y diarrea amarrillenta. La cabeza puede estar cianótica (cabeza negra) a pesar de que no es muy frecuente. En las gallinas con cabeza negra puede observarse algo de sangre en las heces. 2. Posteriormente aumenta la depresión y permanecen con las alas caídas, los ojos cerrados y la cabeza caída. Es común la emaciación en casos crónicos y aves adultas. 3. En las aves jóvenes la morbilidad y mortalidad son altas, hasta 100 % (en pavos). Aves adultas tienden a ser mas resistentes. 36 LESIONES MACROSCóPICAS Hipertrofia bilateral del ciego con engrosamiento de las paredes del mismo. La mucosa usualmente está ulcerada. El ciego tiene contenido caseoso o de color amarillento gris o verde y puede estar laminado. En casos crónicos estas masas pueden ser expulsadas. El hígado contiene depresiones redondas irregulares que varían en color. Son de color amarrillo a gris pudiendo adquirir una coloración verde o roja. Varían en tamaño pero generalmente son de 1 a 2 cm. de diámetro y pueden unirse para formar lesiones más grandes. Las lesiones son bien observadas cuando se realiza la necropsia a un número representativo de aves. Pueden no ser enteramente típicas cuando están medicadas. DIAGNÓSTICO DIFERENCIAL 1. Tuberculois 2. Leucosis Linfoidea 3. Reticuloendoteliosis 4. Tifosis 5. Pullorosis �ASPERGILOSIS DEFINICIóN Es une enfermedad producida por un hongo, que afecta particularmente el aparato respiratorio incluyendo los sacos aéreos de los pollitos, pavos, aves silvestres y ornamentales. SIGNOS CLíNICOS Resultan de la localización del proceso inflamatorio. Se puede observar, disnea (polipnea) y ETIOLOGÍA boqueo, en general El agente causal es el Aspergillus fumigatus, no se escuchan aunque otros géneros y especies de hongos rales. Otros signos también pueden causar brotes similares. incluyen anorexia, somnolencia, PATOGENIA emancipación y Al igual que otros hongos, el Aspergillus diarrea. Si hay fumigatus esta regularmente presente en la cama y en el alimento. En condiciones ideales lesiones en SNC, de temperatura y humedad, crece rápidamente se observa: ataxia, opistótonos, parálisis y forma colonias esporuladas las que tienen y posturas anormales. color azul-verdoso. La puerta de entrada es aerógena y la infección resulta de la inhalación de gran número de esporos a partir de utensilios o cámaras contaminadas. La infección conjuntival ocurre por exposición directa a los esporos presentes en el aire. En general pavitos y pollitos menores de 6 semanas de vida son más susceptibles que los animales adultos. La fuente más importante de infección son las mecedoras las cuales por una deficiente desinfección, son el ambiente ideal para la manipulación del hongo (alta humedad y temperatura). DIGNóSTICO DIFERENCIAL Se debe diferenciar de: Pullorosis, Bronquitis infecciosa, Enfermedad respiratoria crónica, Encefalomielitis aviar, Enfermedad de Newcastle. El Aspergillus Fumigatus en ciertas circunstancias puede penetrar a través de la cáscara y afectar el embrión, que, cuando nace, presenta las lesiones típicas. LESIONES MACROSCóPICAS 1. Focos de aspecto nodular de color amarillo a gris-blanquecino, de un tamaño de 1 a 3-4 mm. localizados en la pared costal del pulmón. En la tráquea y en los sacos aéreos, las áreas lesionadas adoptan aspectos de placas. En el sistema nervioso central, también se pueden observar focos necróticos de color amarillo y gris. Con menor frecuencia se pueden encontrar lesiones en hígado y cavidad abdominal. 2. El crecimiento del hongo con esporulación, en los sacos aéreos, toma un aspecto velloso de color verdoso. 37 ��05. LISTADO DE ENFERMEDADES DE LAGOMORFOS DE DECLARACIÓN OBLIGATORIA Mixomatosis ENFERMEDAD HEMORRAGICA VIRAL (VHD) 39 �06. TÉCNICA DE NECROPSIA DE LOS LAGOMORFOS (CONEJOS Y LIEBRES) DATOS ANAMNESICOS O ANTECEDENTES CLíNICOS Estos datos son muy importantes, ya que sumados a la experiencia del necropsista orientan al mismo a llegar al diagnóstico de la enfermedad presente en el animal o lote de animales. Todos los datos anamnésicos se deben volcar a una ficha u hoja de protocolo, la cual deberá estar perfectamente identificada con un número, el mismo, servirá para el futuro poder identificar cualquier estudio complementario que se realice. También se deberá consignar fecha de ingreso de la muestra, nombre y apellido del propietario, nombre del establecimiento, dirección, localidad y número telefónico. Estos datos son imprescindibles en caso de diagnosticarse una enfermedad exótica o de denuncia obligatoria ante las autoridades sanitarias. EXAMEN EXTERNO Antes de comenzar a realizar la necropsia se deberá inspeccionar y palpar a los conejos (estén ellos vivos o muertos) a fin de determinar la presencia de anormalidades y el estado general, principalmente si se trata de animales de pelo. Se deberá comenzar la inspección observando el estado y la coloración de la piel, condición general del pelaje, suciedad, etc. A continuación se examinarán los ojos, nariz, y la boca incluyendo dientes, mucosa bucal y lengua, posteriormente las orejas, para, por último, palpar el cráneo en búsqueda de anormalidades. Los linfonódulos superficiales se palparán a fin de detectar agrandamiento de los mismos, 40 �de la misma manera se inspeccionarán los órganos genitales externos. SACRIFICIO Al elegir el método de eutanasia se deberán considerar varios factores entre los cuales debemos mencionar el de no producir dolor ni miedo al conejo y causar la muerte lo mas rápidamente posible. El método elegido no debe inferir en la recolección de las muestras. La inhalación de dióxido de carbono en una concentración del 40 % produce una rápida anestesia sin dolor. El halotano induce rápidamente la anestesia, causando ambos una aceptable y estética eutanasia. La aplicación de un golpe en los huesos centrales del cráneo también se podrá utiliza para producir una rápida inconsciencia y depresión del sistema nervioso central. La administración de pentobarbital en una concentración letal por vía endovenosa causa una rápida pérdida de la conciencia y muerte por depresión del centro respiratorio del cerebro. El éter puede ser utilizado para sacrificar los animales obligándolos a inhalar sus vapores. Una de las contraindicaciones del mismo, es que produce una irritación de las membranas mucosas causando una considerable excitación antes de la pérdida de la conciencia, asimismo es peligroso pues es altamente inflamable. Muchos otros anestésicos pueden ser utilizados a concentraciones letales, los mismos causan depresión del sistema nervioso central con la consecuente falla respiratoria y paro cardíaco. Las drogas de efecto semejante al curare fueron consideradas para la eutanasia, sin embargo las mismas producen solo parálisis de los músculos esqueléticos lo que conlleva a la anorexia y muerte. Es importante remarcar que el conejo durante la etapa inicial de la anorexia está absolutamente consciente, por tal razón este tipo de drogas nunca se deberá utilizar como eutanasia. NECROPSIA Antes de comenzar la necropsia, el conejo deberá ser introducido en un recipiente que contenga agua con el agregado de una solución antiséptica (ej. Amonio cuaternario) con el objeto de mojar el pelo evitando que éste se disemine por la sala de necropsia. Luego se colocará el cadáver en decúbito dorsal, y se realizará una incisión en la piel, por la línea media, comenzando en la periné, lo más cercano al ano y llegando hasta la mandíbula. Una vez realizado el corte se separará la piel hacia ambos lados, dejando al descubierto el tejido subcutáneo. Se desarticulan los miembros posteriores abriendo la articulación coxal y se seccionarán los músculos pectorales. De esta manera el conejo quedará en posición decúbito dorsal. Este es el momento en el cual se observarán el tejido subcutáneo y los músculos superficiales. Para abrir la cavidad abdominal se deberá hacer una incisión en los músculos abdominales, comenzando en el mismo lugar en donde se incidió la piel, cortando hacia la derecha del operador hasta llegar a la última costilla. Se deberá tener la precaución de no perforar el intestino. A partir de allí se cortará paralelamente al diafragma hasta llegar al lado opuesto, volcando los músculos hacia ese lado. De esta manera, nos quedarán expuestos los órganos abdominales. Antes de proseguir con la necropsia se realizará una inspección de la posición de los órganos, presencia de líquido exudados, etc. Para la extracción de los órganos abdominales se deberá cortar el esófago en su unión con el 41 �estómago y la cava caudal por delante del hígado, de esta forma se pueden extraer el estómago, el intestino, el páncreas, el bazo y el hígado, realizando el último corte en la porción final del recto. Se separarán todos los órganos abdominales. El bazo es relativamente aplanado, alargado con forma de lengüeta, adherido al lado izquierdo del estómago en el saco ciego y por su curvatura mayor. Se separará también el hígado, éste está formado por cuatro lóbulos, dos derechos y dos izquierdos, los que a su vez se dividen en lateral y medial. La vesícula biliar esta ubicada en una profunda depresión en la superficie visceral del lóbulo medial derecho en un área denominada lóbulo cuadrado. Antes de separar las distintas porciones del intestino se deberá observar el páncreas. Este se encuentra ubicado en el meso duodeno, unido a la porción craneal, descendente y ascendente del duodeno, acompañado de abundante tejido graso. Una vez realizado esto, se procederá a separar las distintas porciones del intestino comenzando por el duodeno, yeyuno e íleo, los que debridarán 42 de los mesos correspondientes. Se continuará con el ciego que tiene forma de espiral y en su porción saculada contiene constricciones internas formadas por repliegue de la mucosa, formando la válvula espiral y terminando en el apéndice vermiforme, por último se debrindará el colon hasta el recto. El intestino deberá ser abierto en su totalidad a fin de observar su contenido, estado de las mucosas, la presencia o no de lesiones y/o parásitos. También se abrirá el estómago, vaciando su contenido y observando el estado de la mucosa. A continuación se deberá observar el aparato urogenital, recordando que los riñones tienen superficie lisa y que el derecho está situado más hacia craneal que el izquierdo. Los uréteres se pueden seguir fácilmente desde el riñón hasta la vejiga, la uretra en los machos se extiende desde la vejiga hasta el vértice del pene, mientras que en las hembras es más corta y se abre dentro del vestíbulo. Una vez realizada la inspección se extraerán los riñones, cortándolos por su borde lateral, se observarán su aspecto, color, forma, etc. Se deberá retirar �la cápsula para su correcta observación de la superficie. Las adrenales situadas craneomedialmente de los riñones son aplanadas y de coloración amarillo-parduzco. Deberán ser inspeccionadas “In Situ” antes de retirar los riñones. En los machos se observarán los testículos y glándulas accesorias (vesículas seminales y próstata) en busca de anormalidades. En las hembras los ovarios tienen forma de elipse alargada, los cuernos uterinos (derecho e izquierdo) están separados en toda su longitud, desembocando cada uno de ellos por un cerviz en la vagina. Al igual que los otros órganos, una vez observados deberán ser abiertos en búsqueda de lesiones. Para observar los órganos torácicos, se deberá proceder a la apertura de la cavidad. Ello se realizará cortando las uniones condrocostales de ambos lados, de esta manera se retirará el esternón, se extraerá el corazón, se cortará el pericardio, y se observará la presencia de adherencias, hemorragias, etc. Para extraer la tráquea y los pulmones se deberán realizar dos incisiones paralelas a las ramas de las mandíbulas, se desprenderá la lengua y se extraerá junto con la tráquea y el esófago; una vez en la cavidad toracica se cortará el pliegue pulmonar para permitir la extracción del mismo. Se abrirá la tráquea en toda su longitud, penetrando por los bronquios y llegando hasta el parénquima pulmonar. También se deberá abrir el esófago en búsqueda de alguna lesión. Se observarán la mucosa bucal, paladar y dientes. Para observar las conchas nasales se realizará un corte horizontal. Para extraer el cerebro se deberá retirar la piel de la cabeza, se realizará un corte transversal por detrás de las órbitas y dos cortes laterales que se unen en el agujero occidental. Luego se extraerá la tapa craneana y se separarán el cerebro y el cerebelo. Se deberán observar las articulaciones mediante su apertura. También se cortará longitudinalmente un hueso largo (fémur o tibia) a fin de observar el estado de la médula ósea. 43 �07. ENFERMEDADES DE LOS LAGOMORFOS (CONEJOS Y LIEBRES) MIXOMATOSIS cabeza, también se encuentran en la región ano genital, dorsal. DECLARACIÓN OBLIGATORIA (Ver manual de procedimientos específicos de la Los ganglios linfáticos correspondientes a Dirección Nacional de Sanidad Animal.) las zonas afectadas, DEFINICIÓN ganglios cefálicos y Es la enfermedad vírica de mayor importancia axilares se encuentran económica de todas las que afectan a los conejos aumentados de domésticos y silvestres, comprometiendo tamaño, lo mismo que fundamentalmente piel y subcutáneo. el bazo. ETIOLOGÍA DIAGNÓSTICO El agente causante epizoótica es un pox virus, de El diagnóstico se aproximadamente 250 m, especie específico. efectúa por los signos y síntomas antes PATOGENIA descriptos de los La difusión dentro de la población de conejos se realiza tanto contacto directo entre animales cuales se destacan: como por la acción vehiculizadora de insectos • edemas y nódulos picadores y chupadores (mosquitos, pulgas, etc) o mixomas en cara y genitales, SIGNOS CLíNICOS posteriormente en el La primera manifestación clínica de un resto del cuerpo. período de incubación de 3 a 5 días es una • tumefacción de blefaroconjuntitivitis uni y luego bilateral. El exudado se hace purulento y el animal permanece labios, el hocico y la base de las orejas, las con los ojos cerrados. Aparecen inflamaciones edematosas y tumoraciones en los labios, hocico, cuales se caen por el peso del edema, por base de las orejas, deformando la cabeza, en esta etapa, por su aspecto se lo denomina cabeza lo que la cara toma un aspecto macizo y de león. Simultáneamente se inflama la vagina, deforme “cabeza de escroto, ano y se inicia una rinitis superada que león”. produce trastornos respiratorios. Las lesiones tienden a generalizarse en la superficie corporal y el animal muere con signos de debilidad y enflaquecimiento a los 8 a 10 días de contagio. LESIONES MACROSCóPICAS Las lesiones macroscópicas que se suscriben a piel y subcutáneo, son de tipo mixomatosas, de aspecto gelatinoso, difuso o nodular. La primera lesión es un blefaroconjuntivitis que pronto se transforma en un área mixomatosa en toda la 44 DIAGNÓSTICO DIFERENCIAL En los casos típicos no se puede confundir con otra enfermedad, sin embargo, en casos no muy típicos se debe diferenciar de Pasteurelosis y Estafilocococcia. �TULAREMIA DEFINICIÓN La tularemia es una zoonosis propia de lagomorfos y pequeños roedores. La enfermedad puede afectar además a las personas, animales domésticos (herbívoros y pequeños carnívoros) y otros mamíferos, aves, reptiles y anfibios. Llamada la enfermedad de los cazadores, se distribuye principalmente en el hemisferio norte. ETIOLOGÍA El agente etiológico es la Francisella tularensis, cocobacilo, gram-negativo, resistente al frío y soluciones alcalinas. La Francisella es capaz de resistir en agua más de tres meses a temperaturas de 13-15 ºC y de persistir en cadáveres de animales hasta cuatro meses, dependiendo de la temperatura ambiente. Sin embargo, muestra una baja resistencia a los desinfectantes comunes. PATOGENIA Los principales animales afectados son liebres y pequeños roedores. La transmisión en animales se realiza mediante contacto directo, contacto con orina, heces, secreciones y a través de vectores artrópodos (pulgas y garrapatas). En liebres y roedores la letalidad es alta, dejando inmunidad por varios años. En animales domésticos, a menudo la infección tiene un carácter subclínico. La enfermedad se transmite al hombre por contacto directo con el animal enfermo o muerto, ingestión de agua contaminada, inhalación, ingestión de carne cruda o poco cocida de animal enfermo o por picadura de artrópodos. SIGNOS CLÍNICOS Los signos clínicos son depresión grave, le sigue una septicemia mortal. El curso de la enfermedad es aproximadamente de 2–10 días y es habitual que estos animales mueran. Normalmente, la mayoría de las especies domésticas no manifiestan signos. Entre los animales domésticos, parece que los gatos pueden actuar como transmisores de la bacteria. LESIONES MACROSCÓPICAS Los animales que mueren por la tularemia aguda habitualmente se encuentran en buena condición física. Se presentan signos de septicemia caracterizada por focos blanquecinos de necrosis distribuidos al azar en el hígado, médula ósea y bazo. Además, el bazo suele estar agrandado. Los focos necróticos varían en tamaño y en algunos casos, puede que apenas se vean a simple vista. Normalmente los pulmones están congestivos y edematosos y pueden aparecer áreas de consolidación y neumonía fibrinosa y pleuritis. La fibrina puede estar presente en la cavidad abdominal. Con frecuencia existen focos de necrosis caseosa en uno o en más de un ganglio linfático. Los ganglios linfáticos, que a menudo están afectados, son los de las cavidades abdominal y pleural y los que drenan las extremidades. Observación de adelgazamiento extremo y presencia de nódulos grisáceo amarillentos, en las piezas de caza. DIAGNÓSTICO Los signos clínicos anteriores, unidos a infestación por garrapatas, afectando a diversos animales, supondrán el primer indicio de tularemia. Asilamiento del microorganismo a partir de lesiones hepáticas, ganglionares o pulmonares. Para el diagnóstico por laboratorio, debe enviar sangre y/o material patológico, solicitando investigación de Tularemia, bien por aislamiento de la F. tularensis a partir de muestras patológicas, bien por serología a partir de la sangre. Se debe manipular con extrema precaución, pues es altamente contagiosa para el hombre. DIAGNÓSTICO DIFERENCIAL Debe efectuarse con la parálisis flácida por garrapatas. 45 �ENFERMEDAD HEMORRÁGICA VIRAL (VHD) DECLARACIÓN OBLIGATORIA • Traquea: signos (Ver manual de procedimientos específicos de la de inflamación y Dirección Nacional de Sanidad Animal.) hemorrágica con petequias hemorragias DEFINICIÓN focales y congestión La enfermedad Vírica Hemorrágica (EVH), vascular edema y Enfermedad hemorrágica viral (EHV) septicemia trasudado espumoso vírica hemorrágica (SVH) hepatitis necrótica del hemorrágico. conejo, es una afección de origen vírico-infeccioso • Pulmón: Hemorragia que afecta a los conejos silvestres y domésticos. total o parcial Neumonía, edema ETIOLOGÍA generalizado. La mayoría de los autores lo han clasificado • Hígado: aumento del como un virus del grupo de los Calicivirus tamaño, congestivo, dentro de la familia Caliciviridae. hepatomegalia, PATOGENIA friabilidad, color La principal vía de contaminación es la oral, gris amarillento, conjuntiva ocular y respiratoria y también hemorragias a través de heridas en la piel. Se distribuye superficiales y rápidamente afectando a muchos individuos en degeneración grasa y poco tiempo, normalmente en conejos de 45 focos necróticos. días en adelante. • Riñón: Hiperplasia hemorrágica con Se produce una disminución de las plaquetas, hemorragias. aumentando el tiempo de pro trombina, • Bazo: congestivo y alterando la cascada de la coagulación, aumentado de tamaño. lo que produce hemorragias multifocales, • Intestino: con coagulación intravascular diseminada inflamación de las y muerte. La muerte súbita se produce por placas linfoides y fallo múltiple orgánico, congestión y edema hemorragias en pulmonar, necrosis adrenocortical, alteraciones mucosa. circulatorias, renales y necrosis hepática. • Corazón: a veces hemorrágico. SIGNOS CLÍNICOS Cuando la enfermedad aparece en un DIAGNÓSTICO criadero, su evolución es muy grave. La Es por los signos muerte sobreviene en uno a tres días después clínicos anteriores y del contagio. La signología es: decaimiento, lesiones. fiebre, angustia respiratoria, opistótonos, chillidos, exudado sanguinolento en nariz DIAGNÓSTICO (patognomónico), espuma en boca y nariz, DIFERENCIAL posiciones posturales características (patas • Septicemia delanteras estiradas). hemorrágica por Pasteurella multocida. Pueden existir convulsiones con fuertes • Altas temperaturas chillidos y después de muertos, las ambientales. extremidades y la cabeza se encuentran • Infecciones totalmente estiradas. mixtas con virus de Mixomatosis. LESIONES MACROSCÓPICAS Las lesiones pueden aparecer en varios órganos • Toxemia de la preñez. • Intoxicaciones pudiendo ser: warfarina. • Cerebro: congestivo. 46 �08. BIBLIOGRAFÍA The biology of the laboratory rabbit. Editors. S.H Weisbroth, R.E Flatt, A.L Kraus. Academic Press, Inc. san Diego California. 1974 Report of the AVMA Panel on Euthanasia. Javma, Vol. 202, January 15 Mikel Ruiz Veramendi GEFOR Tularemia. Francisella tularensis. Zoonosis y enfermedades transmisibles comunes al hombre y a los animales. Acha PN OPS. 1986. Arenas R. Tularemia. Estudio de un caso ulceroganglionar. Rev Semin Cátedra Patol Med A Barc. 1981. 14, 397-400. Chin J (ed.). Control of communicable diseases. Manual. 17ª Edición. American Public Health Association 2001. Center for Disease Control and Prevention (CDC). Case definitions for infectious conditions under public health surveillance. MMWR, 1997; 46 Daita Juan Carlos Presidente de la Cámara Argentina de Cunicultura. Enfermedad Hemorrágica Viral (VHD) Dr. Miguel Angel Pertuccelli, Med. Vet. Miguel V. Piscopo, Med. Vet. Miguel A. Herrero Loyola, Cátedra de Patología de Aves y Pilíferos. UNLP. Castellanos Echeverría, A. F., 1998, Manuales para la educación agropecuaria. Producción animal, editorial trillas. FAO: 2000, Manual on meta inspection for developing countries. FAO Animal Production and Health Paper 119. Chapman, J. A.: 1990. Rabbits, Hares and Pikas. Status Survey and Conservation Plan. IUCN. 47 �Barragán J. I. Med. Vet. La enfermedad del músculo verde en pollos: un proceso cada vez más frecuente. Parrado E. Programa de Conejos, MIXOMATOSIS: Enfermedad de Declaración Obligatoria. SENASA Fernández Alfonso, La Tularemia el mal de la liebres, ¡Afecta en Navarra? Malalties Infeccioses II (curso 2005/06) Enfermedad Hemorrágica Del Conejo SAMUS S. A. Médico Veterinário Bacteriólogo Clínico e Industrial Mixomatosis Bilgili S.F. y Joseph Hess ROSS TECH 08/48 Enfermedad del Músculo Verde Pautas para disminuir su incidencia en los lotes de broilers Marzo 2008 Organización Mundial de Sanidad Animal OIE, Sitio oficial de la página www.oie.int/ Manuales de procedimientos especificos desarrollados por la DNSA de SENASA. 48 �09. ANEXOS PROCEDIMIENTOS A SEGUIR EN PLANTAS DE FAENA DE AVES Y LAGOMORFOS ANTE LA SOSPECHA O CONFIRMACIÓN DE LA PRESENCIA DE UNA ENFERMEDAD EXÓTICA DE DECLARACIÓN OBLIGATORIA El caso de que el veterinario oficial asignado a un establecimiento de faena reciba por parte de su par de campo la confirmación de que un determinado lote o lotes ha sido enviado a faena a esa planta con su autorización, y proviene de una zona donde ha sido detectado un foco de una enfermedad exótica de denuncia obligatoria (Influenza, Newcastle, Laringotraqueitis, EVH lagomorfos, Mixomatosis) o dicha zona se encuentra bajo vigilancia por sospecha de ocurrencia de la misma, se deberá proceder de la siguiente manera: 1- Identificación del o los lotes indicados. 2- Autorizar la faena del o los lotes al final del día. 3- Garantizar que se realice una intensa limpieza y desinfección de la línea de faena al concluir la misma. 4- Garantizar que se realice una intensa limpieza y desinfección de los camiones que fueron utilizados para el transporte de esos lotes antes de que los mismos se retiren de la planta. 5- Identificar la partida faenada a fin de que la misma se destine a subproductos cocidos, harinas u otros, cuyo proceso de elaboración incluya la aplicación de temperatura suficiente de manera que garantice la destrucción de los agentes causales de la enfermedad. 49 �En el caso de que el veterinario no hubiera recibido comunicación pero observase en la inspección pre - mortem sintomatología compatible con una enfermedad exótica, se tendrá que proceder de la siguiente manera: 1- Extraer muestras de los animales sospechosos como lo indica el manual de procedimiento de campo, (según la enfermedad de la cual se sospecha) enviar las mismas al laboratorio de SENASA con carácter de urgente, a fin de que se confirme o no la sospecha. 2- Avisar al veterinario de SENASA de la oficina local que le corresponda a la zona de origen de los animales sospechados. 3- En lo referente a la faena del lote en cuestión, proceder como se indica en los puntos 1 al 4 del párrafo anterior. 4- Identificar las carcazas una vez faenadas, apartadas del resto en la cámara, a la espera de los resultados de laboratorio. 5- De confirmarse el diagnóstico con las pruebas de laboratorio, deberá cumplirse con el punto 5 del párrafo anterior. 6- Si los resultados de los análisis de laboratorio dieran negativos, se deberá liberar la mercadería para su posterior comercialización. 50 �51 �GUÍA DE ENFERMEDADES PARA EL LLENADO DE PLANILLAS Ante y Post Mortem AVES NOMBRE DE LA ENFERMEDAD ANTE MORTEM POST MORTEM VIRUELA AVIAR (DIFTEROVIRUELA AVIAR) Se produce una erupción variólica en regiones corporales desprovistas de plumas. Los nódulos aparecen en cresta y párpados, región nasal y ángulos del pico, barbillas y orejillas, en membranas interdigitales y a veces en cara interna de alas, cuello abdomen, dorso e intermediaciones de la cloaca. Se forman pseudomembranas o depósitos difteroides en la mucosa de la cavidad bucal, faringe, lengua y laringe. Las máculas de la mucosa aumentan de tamaño y de espesor en pocos días y se forman depósitos caseosos. Cuando se desprenden de la mucosa se forman hemorragias. Con esto, se ocasionan graves dificultades respiratorias y pueden provocar la muerte por sofocación. Al principio de tipo exantemático, a los pocos días se transforman en nódulos nacarados y brillantes, del tamaño de granos de arroz, color pardo oscuro. Éstos se desprenden solos al cabo de algunas semanas. Cuando se combinan la forma mucosa y la mixta, baja el consumo del pienso, descenso acusado del rendimiento, baja fecundidad, postración, adelgazamiento y alta mortalidad. LARINGO TRAQUEÍTIS Se muestran disturbios respiratorios graves y crecientes, con abundante secreción INFECCIOSA ocular y de flujo nasal. Las aves enfermas expulsan una secreción mucosa y hemorrágica procedente de la tráquea. El consumo del pienso disminuye. En la mucosa aparecen depósitos amarillogrises que pueden llegar al segundo o tercer anillo cartilaginoso de la tráquea. Estos depósitos llenan ampliamente la luz laríngea y traqueal originando disnea en primer lugar, y muerte por asfixia. Coloración cianótica de la cresta de las aves BRONQUITIS INFECCIOSA Dificultad respiratoria. Se presentan una disnea acrecentada. Aspiran aire por el pico abierto y el cuello extendido. Plumas erizadas, abatimiento, ruidos respiratorios sibilantes, estertores y flujo nasal claro, ojos llorosos, baja de consumo del pienso, caída abrupta de postura. Hemorragias puntiformes en mucosa traqueal, mucosidad en conductos nasales y senos; tapones caseosos en tráquea y bronquios, sacos aéreos opacos y con material caseoso. Desórdenes respiratorios, estornudos, INFLUENZA AVIAR ALTA PATOGENICIDAD ronquidos, descarga óculo-nasal, caída de Hemorragias en tarsos, patas y cabeza, hemorragias múltiples puntiformes en órganos viscerales ENFERMEDAD DE MAREK Hinchazón de nervios periféricos en patas y alas. Aparecen tumores en ovarios, proventrículo, hígado y focos blancogrisáseos en corazón y bazo (también hipertrófico), hígado agrandado, buche dilatado y colgante. Rara vez se presentan tumores en la bolsa de Fabricio. la producción, ocasionalmente tortícolis, paresia y parálisis. Hinchazón exudativa en la cabeza, letargo. Necrosis de la cresta y barbas. 52 Plumaje erizado, cabeza encogida y letargo. Parálisis, cojeras, marcha insegura, dedos retraídos, falta de apetito; el iris se tiñe de un color gris sucio y manchado, la pupila pierde su redondez neta normal y aparece rígida. �NOMBRE DE LA ENFERMEDAD ANTE MORTEM POST MORTEM LEUCOSIS Síntomas exteriores pueden ser indefinidos, a pesar de que la cresta y los barbillones están normalmente arrugados y ocasionalmente pálidos y escamosos, falta de apetito, aves pierden peso y es posible que tengan diarrea. Hígado y riñones son los más afectados; el hígado aparece tachonado de tumores suaves y duros, los riñones están agrandados y con una coloración marrón oscura; la bolsa de Fabricio siempre presenta tumores. ENFERMEDAD DE NEWCASTLE (PESTE AVIAR, PESTE AVIAR ATÍPICA) Postración, fotofobia, somnolencia, falta de apetito y agua, respiración con el pico abierto, estertores roncos, flujo nasal; crestas rojas azuladas flácidas y retraídas. Síntomas nerviosos como parálisis parcial o total de patas y alas, tienen una actitud característica de colocar la cabeza entre las patas o derecha y hacia atrás entre los hombros, caminan en círculos y hacia atrás, torsión de cuello, baja de postura a cero, ponen huevos en el piso siendo la cáscara de los mismos blandas y mal formados. Mucosidad y hemorragias puntiformes en tráquea, bronconeumonía, sacos aéreos de aspecto amarillentos, hemorragias en molleja, corazón, proventrículo e intestinos; folículos ováricos flácidos, degenerados y llenos parcialmente de sangre; a menudo se presenta peritonitis ENFERMEDAD DE GUMBORO (BURSITIS INFECCIOSA) Decaimiento, depresión, diarrea blanquecina y acuosa, enrojecimiento e inflamación del ano, falta de apetito, postración, plumaje erizado, extenuación, paso tembloroso y vacilante. Musculatura deshidratada (exsicosis), hemorragias superficiales en cara interna del muslo; bolsa de Fabricio puede adquirir el tamaño de nuez, puede aparecer amarillenta, hemorrágica y contener material caseoso; los riñones pueden estar tumefactos y teñidos de color gris rojizo claro. ENCEFALOMIELITIS AVIAR Somnolencia, falta de equilibrio, las aves se sientan sobre sus tarsos, temblores nerviosos en la cabeza, atontamiento e inestabilidad, caída de postura, parálisis. ARTRITIS VIRAL (TENDOSINOVITIS) Se sientan sobre los tarsos, cojeras, falta de crecimiento. La hinchazón de los tendones y vainas por arriba del tarso, metatarso y tibiometatarso. MICOPLASMOSIS (ENFERMEDAD RESPIRATORIA CRÓNICA) Respiración dificultosa, descarga nasalocular, estertores en traquea. Falta de apetito, debilidad, pechuga afinada, disminuye la producción. Hinchazón de la cara, principalmente alrededor de los ojos. Hígado recubierto con falsa membrana viscosa y amarillenta. Saco cardíaco engrosado y blanco. Exceso de mucosidad en traquea, material caseoso en bronquios, coloración amarillenta en sacos aéreos. SINOVITIS INFECCIOSA Plumaje erizado, falta de brillo y diarrea color amarillento. Cojeras, falta de apetito. Debilidad. Hinchazón de articulaciones del tarso, alas, muslos y almohadillas plantares. Ampollas en pecho y en algunos casos son víctimas del canibalismo por otras aves. Fluido en articulaciones del tarso o almohadillas plantares. SALMONELLOSIS TIFOSIS Agrandamiento, inflamación y coloración verdosa del hígado. Deshidratación, hígado impregnado con bilis color bronce y enteritis. 53 �NOMBRE DE LA ENFERMEDAD ANTE MORTEM PARATIFOSIS POST MORTEM Exudados en hígado y pulmones, bazo puede estar agrandado, ciego con tapones duros, pálidos y amarillentos, enteritis y nódulos en intestino delgado, fluido amarillo en el saco del corazón pudiendo contener exudado fibroso. PULLOROSIS Aves friolentas, falta de apetito y empastamiento blanquecino alrededor del ano. Hígado, bazo, corazón, pulmones y mollejas contienen nódulos grises ESCHERICHIA COLI COLIBACILOSIS Fiebre, falta de apetito, disminuye la producción, caída de la postura. Enteritis, los riñones se agrandan y congestionan con sangre. El hígado, su vesícula y el bazo también se agranda. El corazón aparece congestionado y flácido, con fluido color pajizo. Lesiones tumorales en hígado o intestino. Aerosaculitis, perihepatitis, peritonitis, pericarditis, coligranulomas, coliseptisemia, salpingitis. Falta de apetito, diarrea, caída de la proCÓLERA AVIAR (Pasteurela multocida) ducción, oscurecimiento e inflamación de Hemorragias puntiformes en corazón, hígado, proventrículo, molleja e intestino; puntos necróticos grisáceos en el hígado. STAPHILOCOCCOSIS Diarrea, depresión, hinchazón de las articulaciones, cojeras, emaciación debido a la falta de apetito. Hígado, bazo, riñones congestionados y agrandados; articulación del muslo hinchado con material inflamado que luego se torna caseoso, puede haber destrucción de tendones COCCIDIOSIS Eimeria Acervulina: pérdida de peso, palidez y decaimiento general. Eimeria Acervulina: Placas blanquecinas en la mitad superior del intestino delgado; enteritis. las cabezas, articulaciones de las patas, puede haber parálisis de las patas y dificultades respiratorias. Eimeria Necatrix: pérdida de peso, heces sanguinolentas, Eimeria Tenella: disminuye el consumo de alimento, diarrea con heces acuosas, las aves se acurrucan y encogen la cabeza, plumaje erizado Eimeria Necatrix: gran inflamación del intestino delgado, zonas hemorrágicas en el lado externo del intestino, mucosidad sanguinolenta y ciegos llenos de sangre. Eimeria Tenella: los ciegos aparecen hinchados y llenos de una maza sanguinolenta proveniente de la hemorragia de los vasos sanguíneos de la pared interior de las mismas; se presentan núcleos blancos o rosados en los ciegos. CANIBALISMO Amontonamiento Lomo rallado. Decoloración de la piel. PECHUGA VERDE MÚSCULO VERDE Los procesos actuales de producción de los pollos de carne están haciendo que la principal incidencia de problemas pase de los típicamente patológicos a los problemas considerados como metabólicos o de manejo. En los casos agudos, todo el supracoracoideo se presenta pálido y tumefacto y cubierto por una membrana fibrinosa y a veces, hemorrágica. El tejido necrótico es de color blanquecino o asalmonado, y solamente los extremos del mismo son de color verdoso. La lesión suele estar limitada a las zonas intermedias del músculo, otorgando un aspecto desagradable a la pechuga. No es de tipo infeccioso. 54 �NOMBRE DE LA ENFERMEDAD ANTE MORTEM POST MORTEM SÍNDROME DE HIGADO GRASO Falta de apetito, decaimiento, falta de producción. Zonas excesivamente grasas debajo de la piel y en la cavidad del cuerpo, entre los intestinos, cubriendo la molleja, riñones, y base del corazón. Hígado con extrema infiltración grasa, blando y pulposo, puede haber hemorragias debajo de la cápsula hepática. GUÍA DE ENFERMEDADES PARA EL LLENADO DE PLANILLAS Ante y Post Mortem LAGOMORFOS (CONEJOS LIEBRES) NOMBRE DE LA ENFERMEDAD ANTE MORTEM POST MORTEM MIXOMATOSIS Blefaroconjuntitivitis uni y luego bilateral. El exudado se hace purulento y el animal permanece con los ojos cerrados. Aparecen inflaciones edematosas y tumoraciones en los labios, hocico, base de las orejas, deformando la cabeza, en esta etapa, por su aspecto se lo denomina cabeza de león. Las lesiones son de aspecto gelatinoso, difuso o nodular. Los ganglios linfáticos correspondientes a las zonas afectadas, ganglios cefálicos y axilares se encuentran aumentados de tamaño, lo mismo que el bazo. TULAREMIA Decaimiento, depresión, fiebre. Focos blanquecinos de necrosis distribuidos al azar en el hígado, médula ósea, ganglios linfáticos y bazo. Además, el bazo suele estar agrandado. Los pulmones están congestivos y edematosos y aparece una pleuritis. La fibrina puede estar presente en la cavidad abdominal. Observación de adelgazamiento extremo y presencia de nódulos grisáceo amarillentos, en las piezas de caza. ENFERMEDAD HEMORRÁGICA VIRAL (VHD) Decaimiento, fiebre, angustia respiratoria, opistotonos, chillidos, exudado sanguinolento en nariz, espuma en boca y nariz. Convulsiones. Congestión, hemorragias, edema e inflamación en diferentes órganos: cerebro, aparato respiratorio, hígado, riñones, bazo, intestino, corazón, etc. 55 �� Dublin Core The Dublin Core metadata element set is common to all Omeka records, including items, files, and collections. For more information see, http://dublincore.org/documents/dces/. Title A name given to the resource Publicaciones SENASA Dublin Core The Dublin Core metadata element set is common to all Omeka records, including items, files, and collections. For more information see, http://dublincore.org/documents/dces/. Title A name given to the resource Manual de apoyo orientativo para el diagnostico de las enfermedades de aves y lagomorfos que pueden aparecer en las plantas de transformación primaria. Publisher An entity responsible for making the resource available Servicio Nacional de Sanidad y Calidad Agroalimentaria Date A point or period of time associated with an event in the lifecycle of the resource 2012 Contributor An entity responsible for making contributions to the resource Dirección Nacional de Inocuidad y Calidad Agroalimentaria Dirección de Inocuidad de Productos de Origen Animal Coordinación de aves, ovoproductos, productos de la caza y especies menores Language A language of the resource Es Type The nature or genre of the resource Monografía Identifier An unambiguous reference to the resource within a given context B.S.0068 Abstract A summary of the resource. Listado de enfermedades de las aves y de lagomorfos de declaracion obligatoria. Table Of Contents A list of subunits of the resource. 01. Glosario 02. Listado de enfermedades de las aves de declaración obligatoria OIE 03. Técnica de necropsia de la aves 04. Descripción de las enfermedades de las aves 05. Listado de enfermedades de lagomorfos de declaración obligatoria OIE 06. Técnica de necropsia de los lagomorfos 07. Descripción de las enfermedades de los lagomorfos 08. Bibliografía 09. Anexos Enfermedades de las Aves https://biblioteca.senasa.gob.ar/files/original/0b73209d0fd05faede1e255000ee7ef5.pdf b58aa19220929c75946df713bb53503a PDF Text Text �Manual de procedimientos de la Resolución Senasa N° 86/2016 2018 ÍNDICE Introducción ...............................................................................................................2 Objetivos....................................................................................................................2 Responsabilidades ....................................................................................................2 Veterinario responsable sanitario del establecimiento ...............................................2 Laboratorio adherido / Director técnico .....................................................................3 Veterinario de la Oficina Local del Senasa ................................................................5 Programa de Sanidad Aviar.....................................................................................5 Actividades en granjas de pollo de engorde ..............................................................6 1. Frecuencia de toma de muestra ............................................................................6 2. Indicaciones...........................................................................................................6 3. Método de muestreo ..............................................................................................6 Actividades en granjas de gallinas de postura...........................................................9 1. Frecuencia de toma de muestra ............................................................................9 2. Indicaciones...........................................................................................................9 3. Método de muestreo ..............................................................................................9 Medidas a adoptar ante una granja positiva ............................................................12 Links Senasa ...........................................................................................................14 Flujograma...............................................................................................................15 Marcha Bacteriológica .............................................................................................16 1 �Manual de procedimientos de la Resolución Senasa N° 86/2016 2018 Introducción El presente Manual de Procedimientos contiene los principios básicos técnicos y operativos del “Programa de vigilancia y control de la contaminación por Salmonella spp. en granjas avícolas comerciales” establecido por la Resolución Senasa N° 86 del 4 de marzo de 2016, es de aplicación en forma obligatoria en todas las granjas de pollos parrilleros y granjas de gallinas de posturas comerciales del país. El presente manual está dirigido a los veterinarios responsables sanitarios avícolas, a los responsables técnicos de los laboratorios adheridos y a los veterinarios de las oficinas locales del Senasa. Objetivos Controlar y disminuir la presencia de Salmonella ser. Enteritidis, Salmonella. ser. Typhimurium y Salmonella. ser. Heidelberg en el ambiente de establecimientos avícolas de pollos de engorde y gallinas de postura comerciales, mitigando la contaminación del producto avícola final, con estos gérmenes que ponen en riesgo la Salud Pública. Responsabilidades Veterinario responsable sanitario del establecimiento Cada granja avícola deberá contar con un profesional veterinario como responsable sanitario ante el Programa de Sanidad Aviar, que será el encargado de la implementación del presente programa en la granja a su cargo. Por consiguiente debe: a. Tomar la muestra del establecimiento. b. Remitir la muestra al laboratorio adherido al Programa de Sanidad Aviar (Se adjunta link de la lista de laboratorios adheridos en la página 14). c. Enviar la planilla de resultados a la oficina local del Senasa correspondiente a la jurisdicción del establecimiento, proporcionada por el laboratorio adherido. La 2 �Manual de procedimientos de la Resolución Senasa N° 86/2016 2018 misma debe estar firmada por el Director técnico.(Se adjunta link de planilla de informe de resultados pág. 14) d. Ante la presencia de Salmonella ser. Enteritidis, S. ser. Typhimurium y S. ser. Heidelberg, deberá contactarse en forma inmediata con el veterinario de la oficina local correspondiente a su zona. e. Implementar las medidas necesarias para la eliminación del agente en cuestión. f. Realizar un descargo por escrito de las medidas adoptadas en el establecimiento afectado y presentarlas en la oficina local. Laboratorio adherido / Director técnico a. El laboratorio adherido debe poseer Director Técnico con Título habilitante. b. Contar con un libro de actas foliado donde deberá registrar la totalidad de las muestras que ingresan. Deberán constar los siguientes datos: fecha de ingreso y Nº de Protocolo interno/n° de acta, RENSPA, procedencia, fecha de toma de muestra, tipo, cantidad de muestra, pruebas a realizar, resultados, fecha del mismo y fecha y firma del responsable que retira el resultado. c. Utilizar el método descripto en el Anexo D de la Norma ISO 6579 (2002), para “Detección de Salmonella spp. en heces de animales y en muestras a nivel de producción primaria”. Como medio selectivo se utiliza el medio semisólido Rappaport-Vassiliadis modificado (MSRV) o caldo Rappaport Vassiliadis (opcional) (Ver flujograma pág. 15) d. Serotipificación: se debe proceder a la serotipificación de 1 (UNA) cepa de cada muestra positiva como mínimo, siguiendo el esquema de White-Kaufmann-Le Minor. Como métodos alternativos se pueden utilizar las pruebas moleculares para identificación de genotipos. Cada laboratorio debe hacer la tipificación serológica (pruebas de aglutinación) utilizando los sueros polivalentes OS-A y OS-B y luego realizar la serotipificación para el hallazgo de los serovares Enteritidis, Typhimurium y Heidelberg pertenecen a ese serogrupo. 3 �Manual de procedimientos de la Resolución Senasa N° 86/2016 2018 e. Cuando los laboratorios no estén en condiciones de realizar las pruebas de tipificación serológica o por técnicas moleculares, deben remitir la cepa aislada de Salmonella a la Dirección del Laboratorio Animal (Dilab), perteneciente a la Dirección General de Laboratorios y Control Técnico del Senasa. Talcahuano 1660 Martínez, Buenos Aires. Previo al envío, se debe informar a mesa de entradas vía electrónica: mesalabadm@senasa.gob.ar con copia a maherrera@senasa.gob.ar o comunicarse por cualquier consulta a los siguientes teléfonos, (011) 48746702/03 en el horario de 8 a 15 hs. La muestra debe ser remitida con el protocolo “AVES- Tipificación de Salmonella spp”. (Se adjunta link de protocolo de tipificación en la página 14). f. Una vez concluidas las pruebas diagnósticas, los resultados serán remitidos en el formulario de resultados, debe estar firmada por el director técnico (se adjunta link de planilla de resultados en la página 14) a la oficina local, ya sea por el veterinario del establecimiento, propietario o responsable técnico del laboratorio. g. Ante un hallazgo positivo de algunas de las Salmonellas solicitadas por la Resolución N°86/2016 por el laboratorio adherido, deben informar al veterinario responsable de la granja y éste comunicar en forma inmediata al veterinario de la oficina local cercana al establecimiento. h. Conservación de las cepas: cuando el laboratorio adherido tenga la capacidad de serotipificar, debe conservar las cepas aisladas por un período no menor a UN (1) año, para estudios posteriores de fago tipificación; pruebas de sensibilidad antimicrobiana u otras. i. Debe presentar al Programa de Sanidad Aviar, de manera anual, un informe de los diferentes serotipos aislados. El cual debe detallar número de RENSPA, nombre del titular, fecha de aislamiento y bacteria aislada. 4 �Manual de procedimientos de la Resolución Senasa N° 86/2016 2018 Veterinario de la Oficina Local del Senasa Los profesionales con asiento en las oficinas locales deben: a. Recibir del veterinario responsable del establecimiento, del propietario de la granja avícola o del responsable técnico del laboratorio, las copias del formulario de resultados. Las mismas deben estar firmadas por el Director técnico. (Se adjunta link de formulario de resultados en la página 14) b. Cargar dicho informe en el Sistema Integrado de Gestión de Sanidad Animal (Sigsa), como antecedente sanitario, los cuales figuran como: - MUESTREO DE SALMONELLA SPP. EN AVES - PRODUCCION DE CARNE - MUESTREO DE SALMONELLA SPP. EN AVES - PRODUCCION DE HUEVO c. Será el encargado de actuar e informar al Programa de Sanidad Aviar ante la comunicación de los hallazgos positivos de Salmonella ser. Enteritidis, S. ser. Typhimurium y/o S. ser. Heidelberg (Ver página 12: Medidas a adoptar ante una granja positiva). Programa de Sanidad Aviar a. Cuando la Dilab confirme la serotipificación de la bacteria debe informar a la Oficina Local para su posterior prosecución. b. El Programa es el responsable del control de gestión, seguimiento del desarrollo y, particularmente, de la planificación de las inspecciones destinadas a constatar los resultados obtenidos. 5 �Manual de procedimientos de la Resolución Senasa N° 86/2016 2018 Actividades en granjas de pollo de engorde 1. Frecuencia de toma de muestra En las granjas de pollos parrilleros se debe realizar la toma de muestra con una frecuencia de 1 (UNA) vez por año. 2. Indicaciones Los resultados deben estar antes del ingreso del próximo lote, las mismas deberán muestrearse dentro de las 3 (TRES) semanas previas a la faena. 3. Método de muestreo 3.1 Cantidad de muestra Cuando la granja disponga de 5 (CINCO) o más galpones, deben extraerse muestras de 2 (DOS) galpones y en las granjas de menos de 5 (CINCO) galpones, la muestra debe tomarse de 1 (UN) galpón. 3.2 Materiales a utilizar  Guantes desechables,  Calcetines/calzas estériles,  Sachet de 250 ml de solución fisiológica estéril al 0,9%,  Bolsa contenedora estéril (bolsa tipo “stomacher”),  Conservadora,  Material para refrigeración.  Otros: tijera, cinta adhesiva ancha (cinta de embalar), marcador indeleble, protocolos, etc. 3.3 Procedimiento de muestreo La muestra estará constituida por DOS (2) pares de calcetines por galpón. Los pasos a seguir son: 6 �Manual de procedimientos de la Resolución Senasa N° 86/2016 2018 1º. Colocarse guantes desechables de un solo uso previa manipulación del material. 2º. Colocarse un cubre calzado al bajar del vehículo e ingresar a la granja. 3º. Primer par de calcetines: una vez en la entrada del galpón, y antes de colocárselos, humedecerlos utilizando aproximadamente 100 ml de solución fisiológica estéril al 0,9%, vertiendo la solución diluyente dentro de la bolsa individual que contiene cada par de calcetines. Una vez humedecidos, colocárselos sobre el cubre calzado. Este último par de calcetines será el que contendrá la muestra. 4º. Dividir la superficie del galpón en dos secciones (Figura 1), caminar dentro de cada sector para dar como mínimo 100 pasos por cada par de calzas (100 pasos ~ 50 metros lineales). Asegurarse de que todas las partes del sector son muestreadas. Cada par debe abarcar aproximadamente el 50 % del área del galpón. Figura 1 5°. Una vez finalizado el primer sector del galpón, quitarse los calcetines externos cuidadosamente para que no se desprenda el material adherido (se podrá dar la vuelta a los calcetines para retener el material en su interior) e introducirlas dentro de la bolsa estéril. 6º. Proceder con el segundo par de calcetines, repetir el punto 3º y hacer lo mismo en la otra mitad del galpón para luego seguir con el punto 5º. 7 �Manual de procedimientos de la Resolución Senasa N° 86/2016 2018 7º. Los dos pares de calzas serán colocados en la misma bolsa (enviadas mezcladas como una sola muestra), la cual deberá cerrarse con una cinta ancha (preferiblemente cinta de embalar). 8°. Los calcetines colocados en la bolsa, cerrada y etiquetada convenientemente deberán conservarse en todo momento a temperatura de refrigeración y enviarse refrigeradas al laboratorio dentro de las 24 horas de tomada la muestra, utilizando el protocolo de muestreo (se adjunta link de protocolo en la página 14). NOTA: Los dos pares de calcetines correspondientes a un galpón, se analizarán como única muestra, por lo tanto se realizará 1 (UNA) marcha bacteriológica. 1galpón= 2 pares de calcetines =1 marcha bacteriológica 2 galpones= 4 pares de calcetines = 2 marchas bacteriológicas 8 �Manual de procedimientos de la Resolución Senasa N° 86/2016 2018 Actividades en granjas de gallinas de postura 1. Frecuencia de toma de muestra En las granjas de gallinas de postura se debe realizar la toma de muestra con una frecuencia de 2 (DOS) veces por año. 2. Indicaciones Se debe muestrear aves que se encuentran dentro de las siguientes etapas:  Aves de 18-27 semanas (comienzo de la postura).  Aves de 70-86 semanas (con un máximo de NUEVE (9) semanas previas al envío a faena).  Aves replumadas en postura, preferentemente a partir de la 5ta. semana de producción. 3. Método de muestreo 3.1 Cantidad de muestra Cuando la granja disponga de 5 (CINCO) o más galpones, deben extraerse muestras de 2 (DOS) galpones y en las granjas de menos de 5 (CINCO) galpones, la muestra debe tomarse de 1 (UN) galpón. 3.2 Materiales a utilizar  Guantes desechables,  Frascos de plástico con tapa a rosca de un mínimo de 250 cc,  Cuchara plástica de primer uso  Conservadora,  Material para refrigeración.  Otros: tijera, cinta adhesiva ancha (cinta de embalar), marcador indeleble protocolos, etc. 3.3 Procedimiento de muestreo 9 �Manual de procedimientos de la Resolución Senasa N° 86/2016 2018 3.3.1 En galpones tradicionales Será preciso recoger una mezcla de materia fecal de la fosa. La muestra debe estar constituida por 2 (DOS) muestras de 150 gramos de materia fecal fresca cada una (utilizar dos frascos de 250 cc). La materia fecal se deberá recolectar en forma aleatoria de 60 lugares diferentes de las fosas. Es decir, de cada sitio seleccionado recolectar aproximadamente 2,5 gr. de materia fecal fresca (1/2 cucharadita). La distribución de las muestras debe ser representativa de todo el galpón. Tener en cuenta que algunos granjeros podrían llegar a colocar cal viva sobre la materia fecal, en este caso, seleccionar los galpones que no fueran sometidos a ese tratamiento o bien solicitar no realizar el tratamiento por al menos 15 a 20 días y regresar posteriormente para la toma muestra en otro período. c orrectame NOTA: Se debe procesar por separado cada muestra de 150 gr de materia fecal, por lo tanto se realizarán 2 (DOS) marchas bacteriológicas. 1 galpón = 2 muestras de materia fecal = 2 marchas bacteriológicas 2 galpones = 4 muestras de materia fecal = 4 marchas bacteriológicas. Aclaración: Cuando se trate de gallinas ponedoras a piso se debe tomar la muestra de la misma manera que en granjas de pollo de engorde (ver pág. 6) 3.3.2 En galpones automáticos En estos galpones se utilizan cintas que recogen el guano de jaulas, que se ponen en funcionamiento a intervalos regulares y descargan en un sistema transportador, por lo tanto, el día del muestreo se debe solicitar al granjero que ponga en funcionamiento las cintas de evacuación del guano o los raspadores temprano, y que no limpie el polvo de las cintas porta huevos ni de debajo de las jaulas antes de que haya tenido lugar el muestreo. Con guantes descartables nuevos, se debe tomar 2 (DOS) muestras constituidas por 150 gr. de materia fecal fresca de 60 lugares diferentes de las cintas 10 �Manual de procedimientos de la Resolución Senasa N° 86/2016 2018 transportadoras, de manera que todos los bloques estén representados en la muestra. Se debe complementar con una muestra de 150 g de polvo seco tomadas de al menos 20 lugares de las diferentes instalaciones del galpón. Determine con el encargado o propietario de la granja los mejores lugares del galpón para recoger el polvo. Normalmente son las rejillas de los ventiladores de extracción, los salientes adyacentes, vigas, divisorias o tuberías o cintas transportadoras de huevos. Si es posible es preferible tomar polvo de las partes bajas. Solamente recolecte polvo seco. Los frascos deben ser colocados en una bolsa, cerrada y etiquetada, luego colocarse en una conservadora, estando en todo momento a temperatura de refrigeración y deberá remitirse al laboratorio dentro de las 24 horas de tomada la muestra, utilizando el protocolo de referencia de remisión de muestras adjunto (Se adjunta link del modelo de protocolo de referencia página 14) NOTA: Se debe procesar por separado cada muestra de 150 gr de materia fecal, y una muestra de150 g de polvo seco, por lo tanto se realizarán 3 (TRES) marchas bacteriológicas. 1galpón = 2 muestras de materia fecal + 1 muestra de polvo seco = 3 marchas bacteriológicas 2 galpones = 4 muestras de materia fecal + 2 muestras de polvo seco = 6 marchas bacteriológicas 11 �Manual de procedimientos de la Resolución Senasa N° 86/2016 2018 Medidas a adoptar ante una granja positiva Se considera granja positiva cuando se detecte la presencia de Salmonella ser. Enteritidis, S. ser. Typhimurium y/o S. ser. Heidelberg (distintas de las cepas vacunales) en el ambiente. En este caso, el veterinario responsable del establecimiento, el responsable técnico del laboratorio, o bien, el Programa de Sanidad Aviar, comunicarán inmediatamente al veterinario oficial local con jurisdicción en el establecimiento en cuestión. En las granjas de Pollo de engorde el veterinario del Senasa debe: 1. Informar al Programa de Sanidad Aviar 2. Dar de baja la autogestión del establecimiento, permitir la faena del lote (en caso de estar en granja) y no permitir el ingreso del próximo lote. 3. Debe solicitar un descargo por parte del responsable veterinario del establecimiento de las medidas que implementará para solucionar dicha contaminación. 4. Debe inspeccionar la granja, a fin de identificar las medidas que considere insuficientes y/o deficientes e instruirá sobre las medidas de bioseguridad, control de plagas y buenas prácticas que deban adoptarse (Acta de constatación y Planilla de inspección a predios avícolas). 5. Corroborar el cumplimiento de las medidas dispuestas (Acta de constatación y Planilla de inspección a predios avícolas), permitir el ingreso de aves y dar de alta la autogestión, en caso de considerarlo pertinente. 6. Enviar la información al Programa de Sanidad avesygranja@senasa.gob.ar, para cerrar el caso. 12 Aviar vía mail: �Manual de procedimientos de la Resolución Senasa N° 86/2016 2018 En las granjas de granjas de gallinas de huevos para consumo el veterinario del Senasa debe: 1. Informar al Programa de Sanidad Aviar 2. Debe solicitar un descargo por parte del responsable veterinario de las medidas que implementará para solucionar dicha contaminación ambiental. 3. Inspeccionar la granja, a fin de identificar las medidas que considere insuficientes y/o deficientes e instruirá sobre las medidas de bioseguridad, control de plagas y buenas prácticas que deban adoptarse (Acta de constatación y Planilla de inspección a predios avícolas). 4. Corroborar el cumplimiento de las medidas dispuestas (Acta de constatación y Planilla de inspección a predios avícolas) 5. Las medidas implementadas pueden ser respaldadas con el uso de vacunas vivas y/o inactivadas contra S. Gallinarum y/o S. Enteritidis u otra serovariedad oportunamente aprobadas por el Senasa, a fin de alcanzar una reducción efectiva en la diseminación de Salmonellas y/o inhibición de su crecimiento en huevos. 6. Enviar la información al Programa de Sanidad avesygranja@senasa.gob.ar, para cerrar el caso. 13 Aviar vía mail: �Manual de procedimientos de la Resolución Senasa N° 86/2016 Links Senasa Listado de laboratorios adheridos al PNSA http://www.senasa.gob.ar/cadena-animal/aves/produccion-primaria/sanidadanimal Resolución Senasa Nº 86/2016 http://www.Senasa.gob.ar/normativas/resolucion-86-2016-ministerio-deagroindustria Protocolo de remisión de muestras de aves de la Res. N° 86/2016 http://www.senasa.gob.ar/sites/default/files/ARBOL_SENASA/ANIMAL/AVES/P ROD_PRIMARIA/SANIDAD_ANIMAL/MANUALES/2.protocolo_de_remision_m uestras_para_salmonella_en_granjas.pdf Protocolo para la tipificación de Salmonella spp. http://www.senasa.gob.ar/sites/default/files/ARBOL_SENASA/ANIMAL/AVES/P ROD_PRIMARIA/SANIDAD_ANIMAL/MANUALES/3._protocolo_tipificacion_sa monella_movil.pdf Planilla de informes de resultados de la Res. N° 86/2016 http://www.senasa.gob.ar/sites/default/files/ARBOL_SENASA/ANIMAL/AVES/P ROD_PRIMARIA/SANIDAD_ANIMAL/MANUALES/4._planilla_de_informe_de_r esultados_para_salmonella_para_pc.pdf 14 2018 �Manual de procedimientos de la Resolución Senasa N° 86/2016 Flujograma Método de detección de Salmonella spp. según Norma ISO 6579(2002) Muestra Agua de Peptona Tamponada (APT) 1:10 (25g+225ml) Rappaport Vassiliadis Semisólido Modificado (MSRV) 41,5±1ºC 24 h±3 XLD Agar 37±1ºC 24 h±3 37°C± 1 18h ± 2 Caldo Rappaport Vassiliadis (opcional) Otro medio selectivo Confirmación Bioquímica TSI-LIA-SIM-UREA-CITRATO Confirmación serológica OS-A /OS-B OS-A + Tipificación propia ó 15 Envío a la Dilab 2018 �Manual de procedimientos de la Resolución Senasa N° 86/2016 Marcha Bacteriológica Cuatro etapas sucesivas: 1) Pre enriquecimiento 2) Enriquecimiento selectivo 3) Siembra en placa e Identificación 4) Confirmación de Identidad 1) Pre enriquecimiento en medio líquido no selectivo El medio de pre enriquecimiento líquido no selectivo que se debe utilizar es Agua de Peptona Tamponada (APT) a temperatura ambiente, se añade en una proporción de 1:10 (25g +225ml), se mezcla bien y se incuba a 37 ± 1ºC durante 18 ± 2h. Este paso es de gran importancia en la recuperación de Salmonella spp. debido a que recupera números bajos o salmonellas lesionadas. Asimismo mantiene el pH favoreciendo el crecimiento de Salmonella. 2) Enriquecimiento selectivo El medio de enriquecimiento selectivo semisólido que se debe utilizar es el Rappaport Vassiliadis Semisólido Modificado (MSRV), se inocular 3 gotas de los cultivos de APT a una temperatura de 41,5 ± 1ºC durante 24 ± 3h, lectura de 24h o en su defecto caldo Rappaport Vassiliadis, dilución 1:10, a 41,5 ± 1ºC durante 24 ± 3h. 3) Siembra en placa e Identificación Se debe usar dos medios selectivos sólidos: De forma obligatoria debe utilizarse Xilosa Lisina Desoxicolato (XLD) y como segundo medio selectivo sólido se recomienda SS o Agar MacConkey o medio de cultivo cromogénico 16 2018 �Manual de procedimientos de la Resolución Senasa N° 86/2016 Equilibrar placas a T° ambiente y sembrar a 37 ± 1ºC durante 24 ± 3h. 4) Confirmación Se debe seleccionar las colonias sospechosas para su posterior confirmación. Tomar al menos 5 colonias sospechosas de cada uno de los medios sólidos selectivos. Cuando las colonias no estén bien aisladas o son sospechosas se recomienda reaislar las colonias en agar nutritivo antes de la confirmación. Utilizar 5 (cinco) pruebas bioquímicas a saber: TSI-LIA-SIM-UREA-CITRATO e incubarlas 37 ± 1ºC durante 24 h y proceder a su lectura. Realizar la confirmación serológica mediante la utilización de sueros somáticos OSA y OSB o mediante sueros polivalentes pertenecientes al género Salmonella spp. Antes de realizar el serotipado se debe comprobar que no sea cepa Autoaglutinable usando con solución Cloruro Sódico (NaCl 0.85%). En caso de no realizar la serotipificación debe enviarse la cepa aislada a la Dilab (ver pág.4 punto e). 17 2018 � Dublin Core The Dublin Core metadata element set is common to all Omeka records, including items, files, and collections. For more information see, http://dublincore.org/documents/dces/. Title A name given to the resource Publicaciones SENASA Dublin Core The Dublin Core metadata element set is common to all Omeka records, including items, files, and collections. For more information see, http://dublincore.org/documents/dces/. Title A name given to the resource Manual de procedimiento operativos. Programa de vigilancia y control de la contaminacion por salmonella spp. en granjas avicolas comerciales. Publisher An entity responsible for making the resource available Servicio Nacional de Sanidad y Calidad Agroalimentaria Date A point or period of time associated with an event in the lifecycle of the resource 2018 Contributor An entity responsible for making contributions to the resource Programa de Sanidad Aviar Dirección Nacional de Sanidad Animal Relation A related resource Resolución Senasa N° 86/20016 Language A language of the resource Es Type The nature or genre of the resource Monografía Identifier An unambiguous reference to the resource within a given context B.S.0069 Abstract A summary of the resource. El presente Manual de Procedimientos contiene los principios básicos técnicos y operativos del “Programa de vigilancia y control de la contaminación por Salmonella spp. en granjas avícolas comerciales” establecido por la Resolución Senasa N° 86 del 4 de marzo de 2016, es de aplicación en forma obligatoria en todas las granjas de pollos parrilleros y granjas de gallinas de posturas comerciales del país y está dirigido a los veterinarios responsables sanitarios avícolas, a los responsables técnicos de los laboratorios adheridos y a los veterinarios de las oficinas locales del Senasa. Table Of Contents A list of subunits of the resource. Introducción Objetivos Responsabilidades Veterinario responsable sanitario del establecimiento Laboratorio adherido / Director técnico Veterinario de la Oficina Local del Senasa Programa de Sanidad Aviar Actividades en granjas de pollo de engorde 1. Frecuencia de toma de muestra 2. Indicaciones 3. Método de muestreo Actividades en granjas de gallinas de postura 1. Frecuencia de toma de muestra 2. Indicaciones 3. Método de muestreo Medidas a adoptar ante una granja positiva Links Senasa Flujograma Marcha Bacteriológica https://biblioteca.senasa.gob.ar/files/original/cb0910a79b3b55cc90d26ac254b03b22.pdf d07b0d3a98ec2ad58feb3fe5b5ceeef0 PDF Text Text �ÍNDICE Objetivos .....................................................................................................2 Responsabilidades .....................................................................................3 Aspectos operativos ...................................................................................5 Actividades .................................................................................................6 1. Inscripción de establecimientos ..............................................................6 2. Muestreo .................................................................................................7 2.1. Tipo y cantidad de muestras ................................................. …………7 2.2. Frecuencia del Muestreo ................................................................. …8 3. Envío de muestras ..................................................................................8 3.1. Protocolo de Muestras .........................................................................8 3.2. Destino de las Muestras ......................................................................8 3.3. Acondicionamiento de las muestras ....................................................8 4. Actividades de los laboratorios ...............................................................8 4.1. Diagnósticos ........................................................................................8 5. Información de resultados.......................................................................9 6. Evaluación de los resultados ..................................................................9 7. Medidas a adoptar ante una granja positiva .........................................10 8. Influenza aviar ......................................................................................11 Diagrama de flujo de las actividades del PNSA ........................................12 Diagrama de flujo para la remisión de muestras del PNSA ......................13 Marcha Bacteriológica para la detección de Salmonellas spp. .................14 Senasa Links ............................................................................................15 �Plan Nacional de Sanidad Avícola (Res. Senasa N° 882/02) 2018 Introducción El presente Manual de Procedimientos contiene los principios básicos técnicos y operativos del Programa de Control de las Micoplasmosis y Salmonelosis de las aves establecido por la Resolución Senasa N° 882/2002, y la base operativa para la Vigilancia Epidemiológica de la Influenza Aviar en planteles de reproducción, en el marco del Plan Nacional de Sanidad Avícola (PNSA). Está dirigido a los veterinarios locales de las oficinas del Senasa, a los veterinarios de las empresas avícolas a cargo de planteles de reproducción y a los responsables técnicos de los laboratorios adheridos al Programa, encargados de analizar las muestras. Objetivos 1. Controlar las micoplasmosis producidas por Mycoplasma gallisepticum (MG) y Mycoplasma synoviae (MS) y las salmonelosis producidas por Salmonellas inmóviles (Salmonella ser. Gallinarum biovares Gallinarum y Pullorum) y Salmonellas móviles (Salmonella ser. Enteritidis, S. ser. Typhimurium y S. ser. Heidelberg) en planteles de aves reproductoras abuelos, reproductoras padres de todo el país. 2. Incorporar en la vigilancia epidemiológica de la influenza aviar a la totalidad de las cabañas de reproductores abuelos y padres del país. 3. Detectar la presencia de anticuerpos de influencia aviar de baja patogenicidad en aves reproductoras. 5. Controlar la sanidad de la totalidad de las aves vivas (aves de hasta 72 hs.) y huevos fértiles que ingresan al país en carácter de importaciones, mediante la toma de muestras en el punto de ingreso, la cuales serán procesadas por la Dilab, para el diagnóstico de micoplasmosis, salmonelosis, influenza aviar y de la enfermedad de Newcastle. 2 �Plan Nacional de Sanidad Avícola (Res. Senasa N° 882/02) 2018 Responsabilidades Veterinario responsable sanitario del establecimiento Cada granja de reproducción avícola deberá contar con un profesional veterinario como responsable sanitario ante el Programa de Sanidad Aviar, que será el encargado de la implementación del presente programa en la granja a su cargo. Por consiguiente debe: a. Tomar la muestra del establecimiento b. Remitir la muestra al laboratorio adherido al Programa de Sanidad Aviar (Se adjunta link de la lista de laboratorios adheridos en la página 15). c. Enviar la planilla de resultados a la oficina local del Senasa, proporcionado por el laboratorio adherido. (Se adjunta link de planilla de envío de resultados, página 15) d. Presentar a la oficina local del Senasa autorización de vacunación contra Micoplasma en aquellos lotes autorizados. e. Ante hallazgos positivos deberá contactarse en forma inmediata con el veterinario de la oficina local correspondiente a su zona. Veterinario de la Oficina Local del Senasa Los profesionales con asiento en las oficinas locales deben: a. En cada oficina local deberá estar la planilla de inscripción de cada establecimiento que corresponda al PNSA, actualizado, es decir, en cuanto a capacidad del establecimiento y firmado por el Veterinario Responsable vigente. b. Recibir del veterinario responsable del establecimiento, del propietario de la granja avícola o del responsable técnico del laboratorio las copias del formulario de resultados, las mismas deben estar firmado por el Director Técnico del laboratorio. (Se adjunta link de formulario de resultados en la página 15). 3 �Plan Nacional de Sanidad Avícola (Res. Senasa N° 882/02) 2018 c. Cargar dicho informe en el Sistema Integrado de Gestión de Sanidad Animal (Sigsa), como antecedente sanitario, los cuales figuran como: MUESTREO DE SALMONELLA Y MICOPLASMA EN AVES-REPRODUCTORES (PNSA) d. Debe fiscalizar el cumplimiento del plan y archivar en la carpeta N° 24 las planillas de informe de resultados. e. En caso de recibir resultados positivos debe comunicase con el Programa de Sanidad Aviar. f. Debe firmar el protocolo de remisión de muestras (punto 8) presentado por el laboratorio adherido. De esta forma las muestras para el diagnóstico de influenza aviar son recibidas por la Dilab sin arancel. g. Verificar el cumplimiento del Plan Nacional de Sanidad Avícola en plantas de incubación mediante la toma de muestra de huevos picados no nacidos, provenientes de la granja de reproductoras abuelas y padres, (Auditorias PNSA), según el cronograma enviado por el Programa de Sanidad Aviar, al principio de cada año. Laboratorio adherido / Director técnico a. El laboratorio adherido debe poseer Director Técnico con Título habilitante. b. El laboratorio debe contar con un libro de actas foliado donde deberá registrar la totalidad de las muestras que ingresan. En donde figuren los siguientes datos: fecha de ingreso y Nº de Protocolo interno/n° de acta, RENSPA, procedencia, fecha de toma de muestra, tipo, cantidad de muestra, pruebas a realizar, resultados, fecha del mismo, firma y fecha del responsable quien retira el resultado. c. Procesar la muestra remitida por el veterinario responsable del establecimiento avícola. d. Informar el resultado al veterinario sanitario de la granja. En el caso que el veterinario responsable de la granja no puede remitirlo, deberá llevarlo a la oficina local del Senasa correspondiente a la jurisdicción del establecimiento. (Se adjunta link de formulario de resultados en la página 15). e. Cuando los laboratorios no estén en condiciones de realizar las pruebas de serotipificación deben remitir la cepa aislada de Salmonella a la Dirección 4 �Plan Nacional de Sanidad Avícola (Res. Senasa N° 882/02) 2018 del Laboratorio Animal, perteneciente a la Dirección General de Laboratorios y Control Técnico del Senasa (Dilab). Talcahuano 1660 Martínez, Buenos Aires. Previo al envío, se debe informar a mesa de entradas vía electrónica: mesalabadm@senasa.gob.ar con copia a maherrera@senasa.gob.ar o comunicarse por cualquier consulta a los siguientes teléfonos, (011) 48746702/03 en el horario de 8 a 15 hs. La muestra debe ser remitida con el protocolo “AVES- Tipificación de Salmonella spp”. (Se adjunta link de protocolo de tipificación en la página 15). f. Conservación de las cepas: cuando el laboratorio adherido tenga la capacidad de serotipificar, debe conservar las cepas aisladas por un período no menor a UN (1) año, para estudios posteriores de fago tipificación; pruebas de sensibilidad antimicrobiana u otras. g. Debe presentar al Programa de Sanidad Aviar, de manera anual, un informe de los diferentes serotipos aislados. El cual debe detallar número de RENSPA, nombre del titular, fecha de aislamiento y bacteria aislada Programa de Sanidad Aviar El Programa de Sanidad Aviar, desde el Senasa Central coordinará las actividades del Plan, auditará y actuará ante la aparición de casos positivos. Aspectos operativos La estrategia para controlar y erradicar la micoplasmosis y salmonelosis se basa en la utilización de planteles de reproductores libres de estos patógenos, manejados bajo estrictas medidas de bioseguridad. En lo que respecta a la vacunación, cabe mencionar: Salmonelosis: no está permitida la vacunación con Cepa 9R en planteles de reproductoras, debido a que el Senasa ha aprobado su uso en gallinas de postura comercial. En planteles de reproductoras está autorizada la vacunación con bacterinas y con cepas vivas de Salmonella Enteritidis. 5 �Plan Nacional de Sanidad Avícola (Res. Senasa N° 882/02) 2018 Micoplasmosis: no está permitida la vacunación en planteles de reproductoras, las vacunas vivas de MG y MS están aprobadas por el Senasa para gallinas de postura comercial. Sin embargo, atento a que actualmente se cuenta con lotes de reproductores vacunados, se procederá a un retiro paulatino, estando permitida la misma hasta el 1 de enero del 2019. Asimismo, el uso de vacunas vivas en reproductores, será restringido bajo solicitud de autorización ante Senasa. Procedimiento para la solicitud de la vacuna El procedimiento para solicitar la vacunación la realizará el veterinario responsable del establecimiento, elevando una nota de pedido al laboratorio proveedor de la vacuna, en la que justificará su utilización, indicando nombre de la granja, Renspa, tipo de explotación, categoría de aves, cantidad de aves e identificación del lote. El Laboratorio enviará la solicitud al Programa de Sanidad Aviar quien otorgará la autorización de vacunación del establecimiento, informando al veterinario solicitante y al mismo laboratorio para la liberación de la vacuna. Al momento de presentar los resultados en la Oficina Local, el veterinario privado deberá acompañar la planilla de resultados con la correspondiente copia de la autorización de vacunación. Actividades 1. Inscripción de establecimientos Todas las empresas avícolas que posean granjas de aves reproductoras abuelas o padres y/o plantas de incubación deberán inscribir cada una de ellas en el Programa Nacional de Sanidad Avícola (PNSA). Como pre requisito para inscribirse en el mismo, se deberá completar los formularios del Registro Nacional de Multiplicadores e Incubadores Avícolas (Renavi), creado por medio de la Resolución Nº 79 en el ámbito de la Ex Secretaría de Agricultura, Ganadería, Pesca y Alimentos y tiene la finalidad de disponer de datos relativos a la población avícola, necesarios desde el punto 6 �Plan Nacional de Sanidad Avícola (Res. Senasa N° 882/02) 2018 de vista estadístico y económico. La inscripción al Renavi es de carácter gratuito y obligatorio. Se instrumenta a través de la presentación de dos formularios que deberán enviarse por correo postal. Para consultas puede ingresar al sitio web http://www.agroindustria.gob.ar/sitio/areas/renavi/#, o comunicarse telefónicamente al (011) 4349-2157 Fax 011-4349-2349, o vía correo electrónico renavi@magyp.gob.ar Una vez inscripto en el Renavi, deberán cumplirse los siguientes pasos: 1. La inscripción se realiza en la oficina Local del Senasa que corresponde a la jurisdicción del establecimiento. 2. Completar una planilla de inscripción que figura como Anexo II de la Resolución Senasa N° 882/2002 para cada granja de reproducción y/o planta incubación. (se adjunta link página 15) 3. Conjuntamente con la planilla de inscripción, deberán presentar una memoria descriptiva de las instalaciones y una memoria operativa del establecimiento que incluya los planes sanitarios (vacunas, edades, tratamientos y controles) que se aplican en el mismo. 2. Muestreo Inmediatamente después de la inscripción se deberá comenzar con el muestreo de las aves bajo el siguiente esquema: 2.1. Tipo y cantidad de muestras Se considera como unidad epidemiológica al núcleo o plantel o lote, partiendo del concepto que se trata de aves de la misma edad, distribuidas en uno, dos o más galpones, que reciben el mismo manejo sanitario y productivo. a. Granjas de recría: se tomarán 30 muestras de sueros individuales y 30 muestras de hisopados cloacales por núcleo, plantel o lote de recría. Las mismas serán de 15 muestras por galpón, tomándose 2 galpones. Por lo tanto se obtendrá 15 hisopos por pool, armándose 2 pooles de hisopos, uno por galpón. 7 �Plan Nacional de Sanidad Avícola (Res. Senasa N° 882/02) 2018 b. Granjas de reproductores: se tomarán 30 muestras de suero individuales y 30 muestras de hisopados cloacales por núcleo, plantel o lote de reproducción. Las mismas serán de 15 muestras por galpón, tomándose 2 galpones. Por lo tanto se obtendrá 15 hisopos por pool, armándose 2 pooles de hisopos, uno por galpón. 2.2. Frecuencia del Muestreo a. Reproductores en período de recría: a las 9 y 18 semanas. b. Reproductores abuelos: cada 4 semanas. c. Reproductores padres: cada 9 semanas. 3. Envío de muestras 3.1. Protocolo de Muestras Las muestras deben ser tomadas por el veterinario responsable de la empresa y deben ser enviadas al laboratorio adherido al Programa de Sanidad Aviar acompañada de un protocolo. En la página 15 del presente manual, figura el link en el cual se podrá encontrar el protocolo referencia con los datos mínimos requeridos por el Senasa. 3.2. Destino de las Muestras Las muestras deben ser remitidas a los laboratorios adheridos para realizar los análisis en apoyo al PNSA (ver link de laboratorios adheridos página 15). 3.3. Acondicionamiento de las muestras Las muestras deberán enviarse refrigeradas, identificadas, en envase cerrado y acompañadas del protocolo de envío mencionado en el punto 3.1. 4. Actividades de los laboratorios 4.1. Diagnósticos A partir de las muestras remitidas se realizan las siguientes pruebas: 8 �Plan Nacional de Sanidad Avícola (Res. Senasa N° 882/02) 2018 - Micoplasma Gallinarum y Micoplasma Synoviae: prueba serológicas de aglutinación rápida en placa (ARP) y/o Elisa. - Salmonella spp.: bacteriología para aislamiento y posterior tipificación de Salmonella ser. Gallinarum, biovares Gallinarum y Pullorum, Salmonella ser. Enteritidis, Salmonella ser. Typhimurium, Salmonella ser. Heidelberg. (Ver flujograma pág. 15) 5. Información de resultados 1. Los veterinarios responsables de cada empresa avícola, o en su defecto el responsable técnico del laboratorio deben entregar una copia de la planilla de resultados a la Oficina Local correspondiente a la granja. La misma, debe estar firmada y sellada por el Director Técnico del laboratorio. 2. Si bien los muestreos/análisis deben realizarse según el punto 2.2, los resultados de cada establecimiento pueden presentarse en la oficina local dentro de un período no mayor a 6 (seis) meses. Estos datos sanitarios se cargaran al Sigsa con fecha del último resultado, constatando el cumplimiento de los análisis. 6. Evaluación de los resultados Las planillas deben ser presentadas en las oficinas locales correspondiente a la jurisdicción del establecimiento, con el objetivo de registrar el cumplimiento del PNSA en el Sistema. Cabe mencionar, que también se considerará negativos a aquellos establecimientos presenten la planilla de informe con resultados “positivos” para MG y/o MS, y que la acompañen del permiso de vacunación contra estos agentes. En caso de resultados positivos, los veterinarios responsables del establecimiento estarán obligados a informar los resultados dentro de las 48 horas de haber recibido la confirmación de la serotipificación a la oficina local del Senasa, la cual informará al Programa de Sanidad Aviar, que evaluará las medidas a tomar ante esta situación. 9 �Plan Nacional de Sanidad Avícola (Res. Senasa N° 882/02) 2018 7. Medidas a adoptar ante una granja positiva La estrategia para controlar y erradicar la micoplasmosis y salmonelosis se basa en la utilización de planteles de reproductores libres de estos patógenos, manejados bajo estrictas medidas de bioseguridad. En caso de detectar planteles infectados con Mycoplasma gallisepticum (MG) y/o Mycoplasma synoviae (MS) y las salmonelosis producidas por Salmonellas inmóviles (Salmonella ser. Gallinarum biovares Gallinarum y Pullorum) los lotes deben ir a faena controlada. En caso de detectar Salmonellas móviles (Salmonella ser. Enteritidis, Salmonella ser. Typhimurium y Salmonella ser. Heidelberg), se debe realizar el tratamiento correspondiente. Cada situación se analizará en forma particular, elaborándose una propuesta de trabajo que deberá considerarse un compromiso de trabajo al que le dará cumplimiento en un plazo establecido. 10 �Plan Nacional de Sanidad Avícola (Res. Senasa N° 882/02) 2018 PROGRAMA DE VIGILANCIA EPIDEMIOLÓGICA PARA LA INFLUENZA AVIAR 8. Influenza aviar Los laboratorios adheridos que procesan las muestras, deben remitir sueros para el análisis serológico de esta enfermedad exótica en nuestro país, a la Dilab (Talcahuano 1660, Martínez Buenos Aires) al Departamento de Enfermedades Exóticas 1 (UNA) vez al año en reproductores abuelas y padres. Se tomarán 20 sueros por plantel o lote 1 vez al año. Los resultados estarán disponibles en el Sistema Integral de laboratorio (SIL), y los originales serán enviados al Centro Regional y luego distribuidos a las Oficinas Locales, los cuales cargaran el Antecedente Sanitario de su cumplimiento en el Sigsa. Las muestras se deben remitir a la Dilab utilizando el “Protocolo de remisión de muestras de aves” (se adjunta link en la página 15), considerando para completarlo los siguientes puntos: 1. Motivo: 1.1 Vigilancia Programada en Granja de reproductoras - PNSA (IA). 2. Establecimiento: todos los datos de la granja (importante el Renspa ya que por sistema se obtiene el resto de los datos) y el nombre del Laboratorio del adherido del cual proviene la muestra. 3. Tipo de Producción: Reproductoras Livianas o Pesadas (Padres o Abuelas). 4. Muestras. Tipo: Sueros / Cantidad: 20 (VEINTE) / Identificación: número del lote. 5. Funcionario Actuante: Veterinario del Senasa, de esta forma las muestras son recibidas por la Dilab sin arancel. Puede firmar el veterinario local correspondiente a la granja muestreada, o bien, el veterinario de la oficina local más cercana al laboratorio adherido 11 �Plan Nacional de Sanidad Avícola (Res. Senasa N° 882/02) 2018 Diagrama de flujo de las actividades del PNSA Programa de control de las micoplasmosis, salmonelosis e IA Muestras tomadas por veterinarios responsables del establecimiento Laboratorios Adheridos al PNSA Informe de resultados a los veterinarios de la empresa Programa de vigilancia epidemiológica para la influenza aviar Laboratorio central de Martínez (Dilab) Informe a la Oficina Local Resultados a la oficina local Cargar datos en Sigsa Cargar datos en Sigsa 12 �Plan Nacional de Sanidad Avícola (Res. Senasa N° 882/02) 2018 Diagrama de flujo para la remisión de muestras del PNSA Plantel o Núcleo Recría Reproductores Abuelos Reproductores Padres 9 semanas y 18 semanas Cada 4 semanas Cada 9 semanas 30 sueros 30 hisopados cloacales (2 pooles de 15 c/u) LABORATORIOS ADHERIDOS AL PNSA 30 sueros Micoplasma MG y MS ARP O ELISA 30 hisopados cloacales (pool de 15) 2 marchas bacteriológicas. Marcha bacteriológica Salmonella ser. Gallinarum, Pullorum, Enteritidis, Typhimurium y Heidelberg INFLUENZA AVIAR RA/RP: 20 sueros una vez al año. Serotipificación Envío al Dilab-Senasa RA: reproductores abuelos RP: reproductores padres Tipificación propia 13 o Envío a la Dilab �Plan Nacional de Sanidad Avícola (Res. Senasa N° 882/02) 2018 Marcha Bacteriológica para la detección de Salmonella spp. Muestra Agua de Peptona Tamponada (APT) 1/10 (15 hisopos + 135 ml) 37° C 18 h ± 2 Caldo Rappaport Vassiliadis 1:10 41,5±1ºC 24 h XLD Agar 37±1ºC 24 h±3 Nota: No usar Tetrathionato M. Kauffmann debido a que inhibe el crecimiento de las Salmonellas inmóviles Siembra directa Mac Conkey 37±1ºC 24 h±3 Otro medio selectivo (SS o Mac Conkey o medio cromogénico) 37±1ºC 24 h Confirmación Bioquímica TSI-LIA-SIM-UREA-CITRATO Confirmación serológica OS-A / OS-B OS-A + o Envío a la Dilab 14 Tipificación propia �Plan Nacional de Sanidad Avícola (Res. Senasa N° 882/02) 2018 Senasa Links Listado de laboratorios adheridos al PNSA http://www.Senasa.gob.ar/laboratorio/laboratorios-adheridos-al-programa-deaves Resolución Senasa Nº 882/2002 http://www.Senasa.gob.ar/normativas/resolucion-882-2002-Senasa-servicionacional-de-sanidad-y-calidad-agroalimentaria Planilla de inscripción al Plan Nacional de Sanidad Avícola http://www.senasa.gob.ar/sites/default/files/ARBOL_SENASA/ANIMAL/AVES/P ROD_PRIMARIA/SANIDAD_ANIMAL/MANUALES/2._planilla_de_inscripcion_a l_pnsa_882-02.pdf Protocolo de remisión de muestras de aves del PNSA http://www.senasa.gob.ar/sites/default/files/ARBOL_SENASA/ANIMAL/AVES/P ROD_PRIMARIA/SANIDAD_ANIMAL/MANUALES/3.protocolo_remision_de_m uestras_salmonella_spp_pnsa_882.02.pdf Protocolo para tipificación de Salmonella spp. http://www.senasa.gob.ar/sites/default/files/ARBOL_SENASA/ANIMAL/AVES/P ROD_PRIMARIA/SANIDAD_ANIMAL/MANUALES/5._protocolo_tipificacion_sa monella_movil_0.pdf Protocolo de remisión de muestras para IA http://www.senasa.gob.ar/sites/default/files/ARBOL_SENASA/ANIMAL/AVES/P ROD_PRIMARIA/SANIDAD_ANIMAL/MANUALES/4._protocolo_de_remision_d e_muestras_para_ia1.pdf Planilla de informes de resultados del PNSA http://www.senasa.gob.ar/sites/default/files/ARBOL_SENASA/ANIMAL/AVES/P ROD_PRIMARIA/SANIDAD_ANIMAL/MANUALES/6._planilla_de_envio_de_res ultados_-pnsa.pdf 15 � Dublin Core The Dublin Core metadata element set is common to all Omeka records, including items, files, and collections. For more information see, http://dublincore.org/documents/dces/. Title A name given to the resource Programa de control de Dublin Core The Dublin Core metadata element set is common to all Omeka records, including items, files, and collections. For more information see, http://dublincore.org/documents/dces/. Title A name given to the resource Publicaciones SENASA Dublin Core The Dublin Core metadata element set is common to all Omeka records, including items, files, and collections. For more information see, http://dublincore.org/documents/dces/. Title A name given to the resource Manual de procedimientos operativos. Programa de control de micoplasmosis y salmonelosis en aves reproductoras abuelos y padres. Programa de vigilancia epidemiologica para la influenza aviar en aves reproductoras. Publisher An entity responsible for making the resource available Servicio Nacional de Sanidad y Calidad Agroalimentaria Date A point or period of time associated with an event in the lifecycle of the resource 2018 Relation A related resource Resolución Senasa N° 882/02 Language A language of the resource Es Type The nature or genre of the resource Monografía Identifier An unambiguous reference to the resource within a given context B.S.0070 Abstract A summary of the resource. l presente Manual de Procedimientos contiene los principios básicos técnicos y operativos del Programa de Control de las Micoplasmosis y Salmonelosis de las aves establecido por la Resolución Senasa N° 882/2002, y la base operativa para la Vigilancia Epidemiológica de la Influenza Aviar en planteles de reproducción, en el marco del Plan Nacional de Sanidad Avícola (PNSA). Está dirigido a los veterinarios locales de las oficinas del Senasa, a los veterinarios de las empresas avícolas a cargo de planteles de reproducción y a los responsables técnicos de los laboratorios adheridos al Programa, encargados de analizar las muestras. Table Of Contents A list of subunits of the resource. Objetivos Responsabilidades Aspectos operativos Actividades 1. Inscripción de establecimientos 2. Muestreo 2.1. Tipo y cantidad de muestras 2.2. Frecuencia del Muestreo 3. Envío de muestras 3.1. Protocolo de Muestras 3.2. Destino de las Muestras 3.3. Acondicionamiento de las muestras 4. Actividades de los laboratorios 4.1. Diagnósticos 5. Información de resultados 6. Evaluación de los resultados 7. Medidas a adoptar ante una granja positiva 8. Influenza aviar Diagrama de flujo de las actividades del PNSA Diagrama de flujo para la remisión de muestras del PNSA Marcha Bacteriológica para la detección de Salmonellas spp. Senasa Links Enfermedades de las Aves